JPS60137287A - 新規グルタチオン・オキシダ−ゼおよびその製造法 - Google Patents
新規グルタチオン・オキシダ−ゼおよびその製造法Info
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- JPS60137287A JPS60137287A JP58250400A JP25040083A JPS60137287A JP S60137287 A JPS60137287 A JP S60137287A JP 58250400 A JP58250400 A JP 58250400A JP 25040083 A JP25040083 A JP 25040083A JP S60137287 A JPS60137287 A JP S60137287A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は新規グルタチオン・オキシダーゼおよびその製
造法に関する。さらに詳しくは、還元型グルタチオン(
以下GSHと略す)のみに作用して、他のスルフヒドリ
ル化合物には全く作用しない新規グルタチオン・オキシ
ダーゼ、および担子菌によるその製造法に関する。
造法に関する。さらに詳しくは、還元型グルタチオン(
以下GSHと略す)のみに作用して、他のスルフヒドリ
ル化合物には全く作用しない新規グルタチオン・オキシ
ダーゼ、および担子菌によるその製造法に関する。
本発明の新規グルタチオン・オキシダーゼは酸素の存在
丁、GSI(のみに作用して、酸化型グルタチオン(以
下G55Gと略す)と過酸化水素を生成する。それ故、
過酸化水素の生成量あるいは酸素の減少量を公知の方法
で測定することによって、生体試料中または食品中のG
SHil)を測定することが”]能である。
丁、GSI(のみに作用して、酸化型グルタチオン(以
下G55Gと略す)と過酸化水素を生成する。それ故、
過酸化水素の生成量あるいは酸素の減少量を公知の方法
で測定することによって、生体試料中または食品中のG
SHil)を測定することが”]能である。
従来、フラビン化合物を補酵素としてGSHをG55G
に酸化する酵素、スルフヒドリル・オキシダーゼがラッ
ト精のう分泌物から単離されている〔バイオケミストリ
ー(Biochemistry )第19巻第2639
頁(1,980年)〕。しかし、この酵素はGSHのみ
ならずシスティン、2−メルカプトエタノール、ジチオ
スレイトールなどのスルフヒドリル化合物にも作用し、
特にジチオスレイトールには最も強い親和性を示す。ま
た、微生物起源の酵素として、特開昭57−13287
9号公報にアスペルギルス属、ペニシリウム属、フザリ
ウム嘱、トリコデルマ属、バエシロミセス属またはグリ
オクラディウム属に属する微生物がGSHに特異性が高
くフラビン化合物を補酵素とするグルタチオン・スルフ
ヒドリル・オキシダーゼを生産するという報告がある。
に酸化する酵素、スルフヒドリル・オキシダーゼがラッ
ト精のう分泌物から単離されている〔バイオケミストリ
ー(Biochemistry )第19巻第2639
頁(1,980年)〕。しかし、この酵素はGSHのみ
ならずシスティン、2−メルカプトエタノール、ジチオ
スレイトールなどのスルフヒドリル化合物にも作用し、
特にジチオスレイトールには最も強い親和性を示す。ま
た、微生物起源の酵素として、特開昭57−13287
9号公報にアスペルギルス属、ペニシリウム属、フザリ
ウム嘱、トリコデルマ属、バエシロミセス属またはグリ
オクラディウム属に属する微生物がGSHに特異性が高
くフラビン化合物を補酵素とするグルタチオン・スルフ
ヒドリル・オキシダーゼを生産するという報告がある。
しかし、これらの菌株の生産するグルタチオン・スルフ
ヒドリル・オキシダーゼはジチオスレイトール、L−シ
スティン、2−メルカプトエタノール、その他のスルフ
ヒドリル化合物にも作用し、GSHのみに特異性がある
とはいい難い。さらに、上記酵素は主に固体培地で生産
されるから大量生産には不適当である。
ヒドリル・オキシダーゼはジチオスレイトール、L−シ
スティン、2−メルカプトエタノール、その他のスルフ
ヒドリル化合物にも作用し、GSHのみに特異性がある
とはいい難い。さらに、上記酵素は主に固体培地で生産
されるから大量生産には不適当である。
本発明者らは、生体試料中あるいは食品中のGSHを特
異的に定量する方法について鋭意検討を重ねた結果、あ
る種の担子菌が培養物中にGSHのみに特異性を示し、
優れた性質を有する新規グルタチオン・オキシダーゼを
生産することを見出し、本発明を完成した。それ故、本
発明の目的は、OS、Hを特異的に定量できる新規グル
タチオン拳オキシダーゼおよび担子菌を培養して上記酵
素を工業的に安価に製造する方法を提供することにある
。
異的に定量する方法について鋭意検討を重ねた結果、あ
る種の担子菌が培養物中にGSHのみに特異性を示し、
優れた性質を有する新規グルタチオン・オキシダーゼを
生産することを見出し、本発明を完成した。それ故、本
発明の目的は、OS、Hを特異的に定量できる新規グル
タチオン拳オキシダーゼおよび担子菌を培養して上記酵
素を工業的に安価に製造する方法を提供することにある
。
本発明を概説すれば、本発明は新規グルタチオン・オキ
シダーゼ、およびその製造法に関するものであって、詳
しくはチャフ1リタケに4およびツウセンタケ属に属し
、新規グルタチオン会オキシダーゼ生産能を有する担子
菌を培養し、培fit物から新規グルタチオン・オキシ
ダーゼを採取することからなる。
シダーゼ、およびその製造法に関するものであって、詳
しくはチャフ1リタケに4およびツウセンタケ属に属し
、新規グルタチオン会オキシダーゼ生産能を有する担子
菌を培養し、培fit物から新規グルタチオン・オキシ
ダーゼを採取することからなる。
本発明に使用される担子菌は、イボタケ科(Phyla
cter’1ceae )チャハリタケ属(Ca1od
on )に属する菌株、例えばニオイハリタケに一16
71株(Ca1odon 5uaveolens K−
1671)またはツウセンタケ科(Cortinari
aceae )ツウセンタケ属(Cortinariu
s )に属する菌株、例エバ、サザナミツバフウセンタ
ケに一946株(Go−rtinarius bovi
nus K −945)である。ニオイハリタケに一1
671株は富士山にて針葉樹林内の地上に群生していた
子実体より分離さベサザナミッパフウセンタケに−94
6株は奈良県春日山にて松林内地上に群生していた子実
体より分離された。
cter’1ceae )チャハリタケ属(Ca1od
on )に属する菌株、例えばニオイハリタケに一16
71株(Ca1odon 5uaveolens K−
1671)またはツウセンタケ科(Cortinari
aceae )ツウセンタケ属(Cortinariu
s )に属する菌株、例エバ、サザナミツバフウセンタ
ケに一946株(Go−rtinarius bovi
nus K −945)である。ニオイハリタケに一1
671株は富士山にて針葉樹林内の地上に群生していた
子実体より分離さベサザナミッパフウセンタケに−94
6株は奈良県春日山にて松林内地上に群生していた子実
体より分離された。
上記菌株の子実体および胞子の形態的特徴は以下のとお
りである。
りである。
(a)ニオイハリタケに’−1671株高さは3〜5c
I11位、傘は直径5〜12釦、肉は厚く扁平、はぼ円
形、2〜3癒着して構に運なっている。その表面は凸凹
で、あらい皺と瘤があり、最初はほとんど白く、後に淡
茶と青味をおびる。肉は革質で厚さ5咽前後、上層は軟
らかく、下層は硬く、肯藍色の輪紋を示す。針は3〜6
閣位で灰藍色、後に灰褐色になる、先端は白色、茎に垂
生じている。茎は太く短く、硬いコルク質であり、1〜
3 X O,6〜1c+1位で濃藍色を呈し、内部には
同じ色の輪紋がある。
I11位、傘は直径5〜12釦、肉は厚く扁平、はぼ円
形、2〜3癒着して構に運なっている。その表面は凸凹
で、あらい皺と瘤があり、最初はほとんど白く、後に淡
茶と青味をおびる。肉は革質で厚さ5咽前後、上層は軟
らかく、下層は硬く、肯藍色の輪紋を示す。針は3〜6
閣位で灰藍色、後に灰褐色になる、先端は白色、茎に垂
生じている。茎は太く短く、硬いコルク質であり、1〜
3 X O,6〜1c+1位で濃藍色を呈し、内部には
同じ色の輪紋がある。
胞子は類球形でほとんど無色で、4〜6×4〜5μであ
る。
る。
以上の特徴を保育社発行、今関六也および本郷次雄共著
「原色日本菌類図鑑」の記載と比較すると本菌はニオイ
ハリタケであることが明瞭である。本菌は工業技術院微
生物工業技術研究所に微生物受託番号祁・工研条寄第3
98号として寄託されている。
「原色日本菌類図鑑」の記載と比較すると本菌はニオイ
ハリタケであることが明瞭である。本菌は工業技術院微
生物工業技術研究所に微生物受託番号祁・工研条寄第3
98号として寄託されている。
(b)サザナミツバフウセンタケに一946株傘は直径
4〜7C++1で、開けばほとんど平になる、表面は粘
性がなく、汚褐色あるいはニラケイ褐色で、周辺部は最
初白色繊維状である。ヒダはやや疎で茎に上止し、灰褐
色後にニラケイ褐色となる。茎は高さ5〜8cm、根元
はふくれて直径15〜35σ、中央部付近に早落性の白
いツバ様のものかあり、これより上部は白色で、下部は
傘とほぼ同じ色である。胞子は7゜5〜10.5X5〜
6.5声である。
4〜7C++1で、開けばほとんど平になる、表面は粘
性がなく、汚褐色あるいはニラケイ褐色で、周辺部は最
初白色繊維状である。ヒダはやや疎で茎に上止し、灰褐
色後にニラケイ褐色となる。茎は高さ5〜8cm、根元
はふくれて直径15〜35σ、中央部付近に早落性の白
いツバ様のものかあり、これより上部は白色で、下部は
傘とほぼ同じ色である。胞子は7゜5〜10.5X5〜
6.5声である。
以上の特徴を保育者発行、今関六也および本郷次雄共著
「原色日本菌類図鑑」の記載と比較すると本菌はサザナ
ミツバフウセンタケであることが明瞭である。本菌は工
業技術院微生物工業技術研究所に微生物受託番号微工研
条寄第399号として寄託されている。
「原色日本菌類図鑑」の記載と比較すると本菌はサザナ
ミツバフウセンタケであることが明瞭である。本菌は工
業技術院微生物工業技術研究所に微生物受託番号微工研
条寄第399号として寄託されている。
本発明方法を更に詳しく説明すれは、培地に−加える栄
養源は使用する菌株が利用し得るものであればよく、炭
素源としては例えばグリセロール、グルコース、テンプ
ン、シュクロース、マルトース、ラクトース、デキスト
リン、油脂類などが利用でき、窒素源としては酵母エキ
ス、ペプトン、脱脂大豆、コーンステイープリカー、肉
エキスなどが適当である。その他にリン酸塩、カリウム
塩、マグネシウム塩などの無機質および金属塩類を加え
てもよく、史にはビタミン類、生長促進因子を加えても
よい。
養源は使用する菌株が利用し得るものであればよく、炭
素源としては例えばグリセロール、グルコース、テンプ
ン、シュクロース、マルトース、ラクトース、デキスト
リン、油脂類などが利用でき、窒素源としては酵母エキ
ス、ペプトン、脱脂大豆、コーンステイープリカー、肉
エキスなどが適当である。その他にリン酸塩、カリウム
塩、マグネシウム塩などの無機質および金属塩類を加え
てもよく、史にはビタミン類、生長促進因子を加えても
よい。
担子菌を培養するにあたり、新規グルタチオン・オキシ
ダーゼの生産量は培養条件により大きく変動するが、一
般に培養温度は20〜35℃、培地のpH4〜8が良く
、3〜15日間の通気攪拌培養で新規グルタチオン拳オ
キシダーゼの生産は最高に達する。培養条件は使用する
菌株、培地組成などに応じ、新規グルタチオン・オキシ
ダーゼの生産量が最大になるように設定するのは当然で
ある。本発明の菌株によって生成された新規グルタチオ
ン[株]オキシダーゼは主に培養P液中にあり、培養P
液に可溶性塩類(例えば硫安、食塩など)を20〜90
″/1%加えることによりあるいは親水性有機溶媒(例
えばエタノール、アセトンなど)を50〜80v/V%
加えるこ吉により沈殿として分離される。得られた沈殿
物を透析あるいはセファデックス処理によって脱塩し、
粗酵素液を得る。得られた粗酵素液を精製するには、あ
らかじめ0.01M酢酸緩衝液(pH5,0)で緩衝化
したsp−セファデックス(C−50)のカラムに粗酵
素液を吸着させ、g&着物を003M酢酸緩衝液(pH
5,0)で洸浄後、0.1M酢!I!2緩衝液(pH5
,0)で溶出して活性区分を集める。次にこの活性区分
をコロジオン膜で濃縮後、あらかじめ0.1Mに酸緩衝
液(pH7,0)で緩衝化したセファクリルS−200
のカラムでゲル沖過を行ない、活性区分を得る。この活
性区分を再びコロジオン膜で濃縮後、あらかじめ0.1
、M ’Jン酸緩衝液(pH7,0)で緩衝化したセ
ファロースCL−5Bのカラムでゲル濾過を行ない、得
ら第1た活性区分を水で透析後、凍結乾燥し、精製酵素
粉末を得る。この酵素粉末はポリアクリルアミドゲルデ
ィスク電気泳動的に単一である。
ダーゼの生産量は培養条件により大きく変動するが、一
般に培養温度は20〜35℃、培地のpH4〜8が良く
、3〜15日間の通気攪拌培養で新規グルタチオン拳オ
キシダーゼの生産は最高に達する。培養条件は使用する
菌株、培地組成などに応じ、新規グルタチオン・オキシ
ダーゼの生産量が最大になるように設定するのは当然で
ある。本発明の菌株によって生成された新規グルタチオ
ン[株]オキシダーゼは主に培養P液中にあり、培養P
液に可溶性塩類(例えば硫安、食塩など)を20〜90
″/1%加えることによりあるいは親水性有機溶媒(例
えばエタノール、アセトンなど)を50〜80v/V%
加えるこ吉により沈殿として分離される。得られた沈殿
物を透析あるいはセファデックス処理によって脱塩し、
粗酵素液を得る。得られた粗酵素液を精製するには、あ
らかじめ0.01M酢酸緩衝液(pH5,0)で緩衝化
したsp−セファデックス(C−50)のカラムに粗酵
素液を吸着させ、g&着物を003M酢酸緩衝液(pH
5,0)で洸浄後、0.1M酢!I!2緩衝液(pH5
,0)で溶出して活性区分を集める。次にこの活性区分
をコロジオン膜で濃縮後、あらかじめ0.1Mに酸緩衝
液(pH7,0)で緩衝化したセファクリルS−200
のカラムでゲル沖過を行ない、活性区分を得る。この活
性区分を再びコロジオン膜で濃縮後、あらかじめ0.1
、M ’Jン酸緩衝液(pH7,0)で緩衝化したセ
ファロースCL−5Bのカラムでゲル濾過を行ない、得
ら第1た活性区分を水で透析後、凍結乾燥し、精製酵素
粉末を得る。この酵素粉末はポリアクリルアミドゲルデ
ィスク電気泳動的に単一である。
本発明の新規グルタチオン・オキシダーゼの酵素化学的
および理化学的性質は次のとおりである。
および理化学的性質は次のとおりである。
(1)作用:
本発明の酵素は、酸素の存在下GSHのみを酸化し、G
55Gと過酸化水素を生成する新規なグルタチオン・オ
キシダーゼである。本酵素は下記反応式のことく、GS
H2モルと酸素1モルからassa 1モルと過酸化水
素1モルを生成する。
55Gと過酸化水素を生成する新規なグルタチオン・オ
キシダーゼである。本酵素は下記反応式のことく、GS
H2モルと酸素1モルからassa 1モルと過酸化水
素1モルを生成する。
2 GSH十〇、 −〉G55ci−1−H,O□(2
)基質特異性: GSHのみに作用する。他のスルフヒドリル化合物、例
えばL−システィン、N−アセチル−L−システィン、
L−システィンメチルエステル、システアミン、2−メ
ルカプトエタノール、ジチオスレイトール、チオフェノ
ール、チオリンゴ酸、チオサリチル酸、メチルメルカプ
タン、D−システィン、DL−ホモシスティン、コエン
ザイムA、2−メルカプトベンズイミダゾール、6−メ
ルカプトプリンには全く作用しない(pH560、pH
7,0およびpH9,0で測定)。
)基質特異性: GSHのみに作用する。他のスルフヒドリル化合物、例
えばL−システィン、N−アセチル−L−システィン、
L−システィンメチルエステル、システアミン、2−メ
ルカプトエタノール、ジチオスレイトール、チオフェノ
ール、チオリンゴ酸、チオサリチル酸、メチルメルカプ
タン、D−システィン、DL−ホモシスティン、コエン
ザイムA、2−メルカプトベンズイミダゾール、6−メ
ルカプトプリンには全く作用しない(pH560、pH
7,0およびpH9,0で測定)。
(3)至適PすおよびpH安定性:
本酵素の至適pHは第1図の曲線で表わされるごとく、
pH7,0付近に高い活性を有している。
pH7,0付近に高い活性を有している。
本酵素を37℃においてそれぞれのpHで60分間処理
したときのpH安定性を第3図に示した。
したときのpH安定性を第3図に示した。
第3図より明らかなように本酵素はpH4,0〜pH8
0の間で“安定である。
0の間で“安定である。
(4)至適温度および熱安定性:
本酵素の至適温度は第2図の曲線で表わされるごとく5
0℃付近に至適温度を有している。
0℃付近に至適温度を有している。
本酵素をpH7,0においてそれぞれの温度で10分間
処理したときの熱安定性を第4図に示し九本酵素は60
℃まで安定であった。
処理したときの熱安定性を第4図に示し九本酵素は60
℃まで安定であった。
(5)分子量:
本酵素の分子量は、セファロースCL−6B(ファルマ
シア製)によるゲル濾過法では約450000であり、
S、DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法では約5
5000であることから、本酵素はサブユニット8個か
ら構成されている。
シア製)によるゲル濾過法では約450000であり、
S、DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法では約5
5000であることから、本酵素はサブユニット8個か
ら構成されている。
(6)均一性:
7.5%ポリアクリルアミドゲル(pH9,4)を用い
てディスク電気泳動を行ない、タンパク染色したところ
1本の染色帯が認められ単一であった。また、5DS−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動でも単一バンドを示し
た。
てディスク電気泳動を行ない、タンパク染色したところ
1本の染色帯が認められ単一であった。また、5DS−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動でも単一バンドを示し
た。
(7)補酵素:
本酵素を熱処理あるいはトリクロロ酢酸(TCA )処
理し、遠心分離して得られた上澄の薄層クロマトグラフ
ィーを行なったところ、Rf値が標準フラビン・アデニ
ン・ジヌクレオチド(FAD )のRf値と同じであっ
た。また、この上澄はD−アミノ酸オキシダーゼのアポ
酵素を活性化したので、FADが本酵素の補酵素である
ことが判明した。FADの450nmにおける分子吸光
係数から判断すると、本酵素1分子当たり4分子のFA
Dが含まれていた(第5図参照)。
理し、遠心分離して得られた上澄の薄層クロマトグラフ
ィーを行なったところ、Rf値が標準フラビン・アデニ
ン・ジヌクレオチド(FAD )のRf値と同じであっ
た。また、この上澄はD−アミノ酸オキシダーゼのアポ
酵素を活性化したので、FADが本酵素の補酵素である
ことが判明した。FADの450nmにおける分子吸光
係数から判断すると、本酵素1分子当たり4分子のFA
Dが含まれていた(第5図参照)。
(8)等電点:
ファルマライト(pH3〜10、ファルマシア製)を用
いた焦点電気泳動法によりめた本酵素の等電点は5.6
5土0,05であった。
いた焦点電気泳動法によりめた本酵素の等電点は5.6
5土0,05であった。
(9)阻害剤、金属イオン、金属キレート剤の影響二本
酵素はPCMB (p−クロルメルクリ安息香釦、L−
アスコルビン酸ナトリウム、Hg”などによって阻害さ
れた(第1表)。
酵素はPCMB (p−クロルメルクリ安息香釦、L−
アスコルビン酸ナトリウム、Hg”などによって阻害さ
れた(第1表)。
(1■糖含幇:
本酵素は糖を含む糖蛋白であり、糖含量をフェノール・
硫酸法で測定したところ約40%であった。
硫酸法で測定したところ約40%であった。
(11)酵素活性測定法:
新規グルタチオン・オキシダーゼ活性の測定は、酸素電
極法およびGSHの減少量より測定した。即ち、lQm
MのGSHQ、 l me、、、 Q、 3 Mリン酸
緩衝液(pH7,0) 1.0 me、水1.3 me
および適当に希釈した酵素液0.1me、反応液量3.
Omeで37℃1.10分間反応させ、酸素電極法で
は酸素消費速度を測定して、1分間に1マイクロモルの
酸素を消費する酵素量を1単位としシこ。また、OSH
の減少量はエルマンの方法〔アーカイブeオブ・バイオ
ケミストリー・アンド・バイオフィジックス(Arch
、Biochem、Biophys、)第82巻第70
頁(1959年)〕により測定°し、1分間に2pMの
GSHを減少させる酵素量を1単位とした。
極法およびGSHの減少量より測定した。即ち、lQm
MのGSHQ、 l me、、、 Q、 3 Mリン酸
緩衝液(pH7,0) 1.0 me、水1.3 me
および適当に希釈した酵素液0.1me、反応液量3.
Omeで37℃1.10分間反応させ、酸素電極法で
は酸素消費速度を測定して、1分間に1マイクロモルの
酸素を消費する酵素量を1単位としシこ。また、OSH
の減少量はエルマンの方法〔アーカイブeオブ・バイオ
ケミストリー・アンド・バイオフィジックス(Arch
、Biochem、Biophys、)第82巻第70
頁(1959年)〕により測定°し、1分間に2pMの
GSHを減少させる酵素量を1単位とした。
以下に本発明による新規グルタチオン・オキシダーゼの
製造法を実施例をもって示す。%は他に特記せぬ限りW
/v%である。
製造法を実施例をもって示す。%は他に特記せぬ限りW
/v%である。
実施例 1
グルコース2%、エビオス0.5%および寒天1.5%
(エビオス培地)の組成の斜面培地にニオイハリタケに
、1671株を接種し、25℃にて1週間静置培養して
種菌とした。グルコース2.0%、酵母エキス03%、
ペプトン1%、KH*PJ O,3%およびMg5Ot
・7H100,1%の組成の培地100 meを500
me容の三角フラスコに分注し、120℃で20分間
殺菌後、冷却し、これに上記の種菌をかきとり接種して
、25℃で7日間、毎分100回転で振盪培養した。培
養終了後、濾過して菌体を除き、P液を得た。
(エビオス培地)の組成の斜面培地にニオイハリタケに
、1671株を接種し、25℃にて1週間静置培養して
種菌とした。グルコース2.0%、酵母エキス03%、
ペプトン1%、KH*PJ O,3%およびMg5Ot
・7H100,1%の組成の培地100 meを500
me容の三角フラスコに分注し、120℃で20分間
殺菌後、冷却し、これに上記の種菌をかきとり接種して
、25℃で7日間、毎分100回転で振盪培養した。培
養終了後、濾過して菌体を除き、P液を得た。
この新規グルタチオン・オキシダーゼ活性は0.25単
位/ meであった。
位/ meであった。
実施例 2
実施例1のエビオス培地で培養したニオイノ1リタケに
一1671株をグルコース2%、酵母エキス03%、ペ
プトン1%、KH*PO40,3%およびMgSO4”
7H2o o、 1 %の培地100 meを分注し
て殺菌(120℃、20分間)した5 00 rnl!
の三角フラスコに接種し、25℃で4日間培養して、種
培養液とした。グルコース2%、酵母エキス01%、ペ
プトン2憾、KH2PO40,3%、Mg!304・7
H,O’0.1%および消泡剤(日本油脂社製cB=
442 ) 0.02%(/、)の組成の培地201を
301容のジャーファーメンタ−に入れ、120℃で2
0分間殺菌した。冷却後、上記の種培養液100+++
eを接種し、27℃で3日間、毎分20/の通気速度と
毎分250回転の攪拌速度の条件で培養した。培養終了
後、沢過して菌体を除き、P液を得た。この新規グルタ
チオン・オキシダーゼ活性は042単位/ meであっ
た。この培1液161を分子[15000の限外p過膜
で濃縮後硫酸アンモニウムを90%飽和になるように加
えた。−昼夜放置後、得た硫安沈殿物を大量の0.01
M酢酸緩衝液(pH5,0)で、−昼夜透析した。得ら
れた粗酵素液をあらかじめ0.01M酢酸緩衝液(pH
5,0)で緩衝化したSP−セファデックス(C−50
)のカラム(φ5. Ocm X 20 cm )に吸
着させ、吸着物0.03M酢酸緩衝液(pH5,0)で
洗浄後、0.1 M酢酸緩衝液(pH5,0)で溶出し
た。この活性区分をコロジオン膜で濃縮後、あらかじめ
0.1Mリン酸緩衝液(pH7,0)で緩衝化したセフ
ァクリルs−200のカラム(φ3.6 cm X 9
0 cm )でゲル濾過を行なった。この活性区分を再
びコロジオン膜で濃縮後、あらかじめ0.1 y リン
酸緩衝液(pH7,0)で緩衝化したセファロースCL
−5Bのカラム(φ2.5 am X 105 cm
)でゲル沢過を行ない、得た活性区分を水で透析後凍結
乾燥し、精製酵素粉末20ツを得た。この粉末の比活性
は90単位/IIIyであった。この酵素粉末はポリア
クリルアミドゲルディスク電気泳動的に単一であった。
一1671株をグルコース2%、酵母エキス03%、ペ
プトン1%、KH*PO40,3%およびMgSO4”
7H2o o、 1 %の培地100 meを分注し
て殺菌(120℃、20分間)した5 00 rnl!
の三角フラスコに接種し、25℃で4日間培養して、種
培養液とした。グルコース2%、酵母エキス01%、ペ
プトン2憾、KH2PO40,3%、Mg!304・7
H,O’0.1%および消泡剤(日本油脂社製cB=
442 ) 0.02%(/、)の組成の培地201を
301容のジャーファーメンタ−に入れ、120℃で2
0分間殺菌した。冷却後、上記の種培養液100+++
eを接種し、27℃で3日間、毎分20/の通気速度と
毎分250回転の攪拌速度の条件で培養した。培養終了
後、沢過して菌体を除き、P液を得た。この新規グルタ
チオン・オキシダーゼ活性は042単位/ meであっ
た。この培1液161を分子[15000の限外p過膜
で濃縮後硫酸アンモニウムを90%飽和になるように加
えた。−昼夜放置後、得た硫安沈殿物を大量の0.01
M酢酸緩衝液(pH5,0)で、−昼夜透析した。得ら
れた粗酵素液をあらかじめ0.01M酢酸緩衝液(pH
5,0)で緩衝化したSP−セファデックス(C−50
)のカラム(φ5. Ocm X 20 cm )に吸
着させ、吸着物0.03M酢酸緩衝液(pH5,0)で
洗浄後、0.1 M酢酸緩衝液(pH5,0)で溶出し
た。この活性区分をコロジオン膜で濃縮後、あらかじめ
0.1Mリン酸緩衝液(pH7,0)で緩衝化したセフ
ァクリルs−200のカラム(φ3.6 cm X 9
0 cm )でゲル濾過を行なった。この活性区分を再
びコロジオン膜で濃縮後、あらかじめ0.1 y リン
酸緩衝液(pH7,0)で緩衝化したセファロースCL
−5Bのカラム(φ2.5 am X 105 cm
)でゲル沢過を行ない、得た活性区分を水で透析後凍結
乾燥し、精製酵素粉末20ツを得た。この粉末の比活性
は90単位/IIIyであった。この酵素粉末はポリア
クリルアミドゲルディスク電気泳動的に単一であった。
以上の精製工程を第2表に示す。
実施例 3
実施例1のエビオス培地にサザナミツバフウセンタケに
−946株を接種し、25℃にて1週間静置培養して種
菌とした。グルコース2.0−%、酵母エキスo、a(
fo、ペプトン1%、KW、Po。
−946株を接種し、25℃にて1週間静置培養して種
菌とした。グルコース2.0−%、酵母エキスo、a(
fo、ペプトン1%、KW、Po。
03%およびMgSO4・7 HtO,、0,1%の組
成の培地100 meを分注して殺菌(120℃、20
分間)した5 00 meの三角フラスコに上記の種菌
をかきとり接種して、実施例1と同様に25℃で7日間
振盪培養した。この培養炉液中の新規グルタチオン・オ
キシダーゼ活性は0.15単位/ meであった。
成の培地100 meを分注して殺菌(120℃、20
分間)した5 00 meの三角フラスコに上記の種菌
をかきとり接種して、実施例1と同様に25℃で7日間
振盪培養した。この培養炉液中の新規グルタチオン・オ
キシダーゼ活性は0.15単位/ meであった。
紀1図は本発明により得られる新規グルタチオン・オキ
シダーゼのpHと活性の関係を表わし、第2図は温度と
活性の関係を表わし、第3図は本発明による酵素を37
℃においでそれぞれのpHで60分間処理した後のpH
と活性の関係を表わし、第4図はpH,7,0において
それぞれの温度で10分間処理した後の温度と活性の関
係を表わす。第5図は本発明による酵素の可視部吸収ス
ペクトル(酵素濃度0.45%、pH7,0)を表わす
。 特許出願人 壺酒造株式会社 同 安 達 智 ご預 1占モ 第1図 第2図 第3図 第4図 pH@C 第5図 波長(nm) 手、続補正書(自覚) ( 昭和59年2月17日 1、事件の表示 隋相58年特許願第250401、発
明の名称 新規グルタチオン・オキシダーゼおよびその裂貨法3、
補正をする者 事件との関係 特許出願人 N訴挑触 7 リ ガナ 効2シュゾウ 孤客名称 翳酒造体式会社 4、代理人 5、補正の対象 6、補正の内容 1)明細書第9頁第19行「0.1 Mに酸」を「0.
1MリンI酸」と訂正する。 2)同第11頁第16行「安定である。」の次に「第1
川および第3図において、pH3ではグリシン−塩酸緩
衝液、pH4〜5では酢酸緩衝液、pH6〜8ではリン
酸緩衝液、pH9〜10ではホウ酸緩衝液を使用した。 」を挿入する。 13)同第15頁第12行「1マイクロモル」を「1μ
M」と訂正する。 (4)同第15頁第14行「アーカイブ」を「アーカイ
ブズ」と訂正する。 以 上
シダーゼのpHと活性の関係を表わし、第2図は温度と
活性の関係を表わし、第3図は本発明による酵素を37
℃においでそれぞれのpHで60分間処理した後のpH
と活性の関係を表わし、第4図はpH,7,0において
それぞれの温度で10分間処理した後の温度と活性の関
係を表わす。第5図は本発明による酵素の可視部吸収ス
ペクトル(酵素濃度0.45%、pH7,0)を表わす
。 特許出願人 壺酒造株式会社 同 安 達 智 ご預 1占モ 第1図 第2図 第3図 第4図 pH@C 第5図 波長(nm) 手、続補正書(自覚) ( 昭和59年2月17日 1、事件の表示 隋相58年特許願第250401、発
明の名称 新規グルタチオン・オキシダーゼおよびその裂貨法3、
補正をする者 事件との関係 特許出願人 N訴挑触 7 リ ガナ 効2シュゾウ 孤客名称 翳酒造体式会社 4、代理人 5、補正の対象 6、補正の内容 1)明細書第9頁第19行「0.1 Mに酸」を「0.
1MリンI酸」と訂正する。 2)同第11頁第16行「安定である。」の次に「第1
川および第3図において、pH3ではグリシン−塩酸緩
衝液、pH4〜5では酢酸緩衝液、pH6〜8ではリン
酸緩衝液、pH9〜10ではホウ酸緩衝液を使用した。 」を挿入する。 13)同第15頁第12行「1マイクロモル」を「1μ
M」と訂正する。 (4)同第15頁第14行「アーカイブ」を「アーカイ
ブズ」と訂正する。 以 上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、 次の理化学的性質を有する新規グルタチオン・オ
キシダーゼ。 (1)作用:酸素の存在下、還元型グルタチオンに作用
し、酸化型グルタチオンと過酸化水素を生成する。 (2)基質特異性二速元型グルタチオンのみに作用し、
他のスルフヒドリル化合物には全く作用しない。 (3)至適pHおよびpH安定性:至適pHが7.0付
近であり、37℃、60分間処理ではpH4,0〜8.
0の間で安定である。 (4)至適温度′および熱安定性:至適温度が50℃付
近であり、pH7,0,10分間処理では60℃まで安
定である。 (5)分子′@ニゲルp過法で測定した分子量が約45
0000で、ドデシル硫酸ナトリウム(SDS )−ポ
リアクリルアミドゲル電気泳動で測定した分子量が約5
5000で、サブユニット8個から構成されている。 (6)補酵素:補酵素であるフラビンアデニン・ジヌク
レオチド(FAD )か酵素1分子当り4分子存在する
。 (′7)等電点:5.65±0.05゜(8)阻害剤二
Hg”+、P−クロルメルクリ安息香酸、L−アスコル
ビン酸ナトリウムなどによって阻害される。 (9)糖含針:約40%の糖を含む。 2、 チャハリタケ属またはツウセンタケ属に属する新
規グルタチオン・オキシダーゼ生産菌を培養し、培養物
より新規グルタチオン・オキシダーゼを採取することを
特徴とする新規グルタチオン・オキシダーゼの製造法。
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58250400A JPS60137287A (ja) | 1983-12-23 | 1983-12-23 | 新規グルタチオン・オキシダ−ゼおよびその製造法 |
US06/678,767 US4610963A (en) | 1983-12-23 | 1984-12-05 | Novel glutathione oxidase, its production and use |
DE3447410A DE3447410C2 (de) | 1983-12-23 | 1984-12-24 | Neue Glutathionoxidase, deren Herstellung und Verwendung derselben |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58250400A JPS60137287A (ja) | 1983-12-23 | 1983-12-23 | 新規グルタチオン・オキシダ−ゼおよびその製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60137287A true JPS60137287A (ja) | 1985-07-20 |
JPH0147995B2 JPH0147995B2 (ja) | 1989-10-17 |
Family
ID=17207346
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58250400A Granted JPS60137287A (ja) | 1983-12-23 | 1983-12-23 | 新規グルタチオン・オキシダ−ゼおよびその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS60137287A (ja) |
-
1983
- 1983-12-23 JP JP58250400A patent/JPS60137287A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0147995B2 (ja) | 1989-10-17 |
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