JPS592683A - 凍結乾燥微生物による種子の接種法 - Google Patents
凍結乾燥微生物による種子の接種法Info
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- JPS592683A JPS592683A JP58101841A JP10184183A JPS592683A JP S592683 A JPS592683 A JP S592683A JP 58101841 A JP58101841 A JP 58101841A JP 10184183 A JP10184183 A JP 10184183A JP S592683 A JPS592683 A JP S592683A
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- seeds
- microorganisms
- freeze
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- seed
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-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01C—PLANTING; SOWING; FERTILISING
- A01C1/00—Apparatus, or methods of use thereof, for testing or treating seed, roots, or the like, prior to sowing or planting
- A01C1/06—Coating or dressing seed
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/04—Preserving or maintaining viable microorganisms
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- Environmental Sciences (AREA)
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、生産力を高めるための農業および園芸用種子
の微生物処理に関する。
の微生物処理に関する。
植物種子に微生物を接種して、種子からの植物の成長を
向上させること゛が、多年にわたって行われている。た
とえば、窒素固定微生物を使用してマメ科植物を処理し
、発芽した植物の成育が土壌硝酸塩により左右されるの
を小さくすることが行われてきた。
向上させること゛が、多年にわたって行われている。た
とえば、窒素固定微生物を使用してマメ科植物を処理し
、発芽した植物の成育が土壌硝酸塩により左右されるの
を小さくすることが行われてきた。
接種技術は種子と微生物との接触を必要とする。
このような接触には、微生物培養液を水中に分散させた
ような接種液が多く使用される。微生物に加えて、表面
張力低下剤、成長促進物質などの有益な補助物質を接種
液に存在させることも時に行われてきた。ビート、炭素
などの担体に担持した菌を、希薄な水性シロップ中に分
散させて接種液とすることも行われている。微生物、種
子および植物に対して有害あるいは破壊作用があると認
められる物質は、接種液から排除されてきた。
ような接種液が多く使用される。微生物に加えて、表面
張力低下剤、成長促進物質などの有益な補助物質を接種
液に存在させることも時に行われてきた。ビート、炭素
などの担体に担持した菌を、希薄な水性シロップ中に分
散させて接種液とすることも行われている。微生物、種
子および植物に対して有害あるいは破壊作用があると認
められる物質は、接種液から排除されてきた。
接種液は、スラリー形成、噴霧および浸漬処理を始めと
する多様な方法により利用されてきた。種子の接種は、
種子をバレル内でタンブルさせながら、これに接種液を
噴霧するか、種子と接種液との混合物からなるスラリー
を形成することにより行われている。
する多様な方法により利用されてきた。種子の接種は、
種子をバレル内でタンブルさせながら、これに接種液を
噴霧するか、種子と接種液との混合物からなるスラリー
を形成することにより行われている。
種子の接種法においては、種子1精通たりの有効菌量が
最小となる均一に接種された種子を生ずるように試みる
のが普通である。この最小有効菌量は、処理を受けたす
べての宿主植物において目的とする種子の菌個体数は、
使用する種子および菌の種類に応じて決まる。
最小となる均一に接種された種子を生ずるように試みる
のが普通である。この最小有効菌量は、処理を受けたす
べての宿主植物において目的とする種子の菌個体数は、
使用する種子および菌の種類に応じて決まる。
米国特許第2,954,643号では、流動床を使用し
て種子を接種している。微生物を含有する接種液が、不
活性ガスにより流動状態に保持されている種子の流動床
に導入される。
て種子を接種している。微生物を含有する接種液が、不
活性ガスにより流動状態に保持されている種子の流動床
に導入される。
米国特許第3,054,219号には、最小有効菌量が
種子上に確実に保有されるように、種子に過剰量の微生
物を接種することが記載されている。
種子上に確実に保有されるように、種子に過剰量の微生
物を接種することが記載されている。
米国特許第2.313,057号、米国特許第2,99
5,867号および米国特許第4,149.869号に
は、植物に有益な物質を含む材料による種子のペレット
化、すなわち種子の被覆が記載されている。
5,867号および米国特許第4,149.869号に
は、植物に有益な物質を含む材料による種子のペレット
化、すなわち種子の被覆が記載されている。
別の接種法が米国特許第3.499,748号に記載さ
れている。この方法では、粒状の焼石膏をアゾトバクタ
−(八zotobacter )またはリソ゛ビウム(
Rhizobium 。
れている。この方法では、粒状の焼石膏をアゾトバクタ
−(八zotobacter )またはリソ゛ビウム(
Rhizobium 。
根瘤菌)属の細菌の培養液で処理する。この粒状物を次
いで種子と混合し、この混合物を土壌に播種する。
いで種子と混合し、この混合物を土壌に播種する。
米国特許第4.i55.737号では、微生物をポリマ
ーゲルに混入する。このゲルを小粒子に粉砕し、これを
種子とともに播く。
ーゲルに混入する。このゲルを小粒子に粉砕し、これを
種子とともに播く。
種子に適用する微生物の商品化は、乾燥種子上で微生物
生存能力を維持するのがが困難であることが障害となっ
ており、特にアクロモバクタ−(Achromobac
ter ) 、アルスロバクタ−(八rthrobac
ter)、アゾトバクタ−およびシュードモナス(Ps
eudomonaS)属の乾燥感受性のある細菌ではそ
うであった〔Brown、 Ann、 Rev、 Ph
to ath、 12 : 181−97 (197
4); Kloepper and 5chroth、
ハ■肚虹紅71 : 590−92(1981)
)。
生存能力を維持するのがが困難であることが障害となっ
ており、特にアクロモバクタ−(Achromobac
ter ) 、アルスロバクタ−(八rthrobac
ter)、アゾトバクタ−およびシュードモナス(Ps
eudomonaS)属の乾燥感受性のある細菌ではそ
うであった〔Brown、 Ann、 Rev、 Ph
to ath、 12 : 181−97 (197
4); Kloepper and 5chroth、
ハ■肚虹紅71 : 590−92(1981)
)。
本発明は農業用種子に微生物を接種する方法およびその
方法から得られた接種された種子に関する。
方法から得られた接種された種子に関する。
別の側面では、本発明は凍結乾燥した微生物を種子に接
種する方法に関する。さらに別の側面では、本発明は凍
結乾燥した微生物を含有するコーティングを種子に被覆
する方法に関する。
種する方法に関する。さらに別の側面では、本発明は凍
結乾燥した微生物を含有するコーティングを種子に被覆
する方法に関する。
本発明を実施する場合、有用微生物を凍結乾燥し、これ
を結合剤とともに農業用種子に被覆し、植物の種類に応
じて3〜8重量%の水分含有量になるまで、約45℃よ
り低温で乾燥する。別法として、凍結乾燥した微生物を
結合剤および充填剤とともに農業用種子に被覆してもよ
い。さらに別の方法として、農業用種子を予め結合剤お
よび充填剤により被覆ないしペレット化し、この種子に
凍結乾燥した微生物を追加の結合剤とともに接種するこ
ともできる。
を結合剤とともに農業用種子に被覆し、植物の種類に応
じて3〜8重量%の水分含有量になるまで、約45℃よ
り低温で乾燥する。別法として、凍結乾燥した微生物を
結合剤および充填剤とともに農業用種子に被覆してもよ
い。さらに別の方法として、農業用種子を予め結合剤お
よび充填剤により被覆ないしペレット化し、この種子に
凍結乾燥した微生物を追加の結合剤とともに接種するこ
ともできる。
本発明で使用しうる微生物は、植物に有利な根城作用を
及ばず土壌微生物として記載されたことのあるものであ
る。この種の微生物およびその作用については、米国特
許第4,155,737号に記載されている。
及ばず土壌微生物として記載されたことのあるものであ
る。この種の微生物およびその作用については、米国特
許第4,155,737号に記載されている。
有用微生物の例としては、リゾビウム、エンテロバクタ
−(Enterobacter) 、スピリルム(Sp
trillum)、バクラス(Bacillus) 、
シュードモナス、アシドバククー、アルスロバクタ−、
アクロモバクタ−および放線菌類(^(tinomyc
etes )に属するものが挙げられるが、これらに限
定されるわけではない。
−(Enterobacter) 、スピリルム(Sp
trillum)、バクラス(Bacillus) 、
シュードモナス、アシドバククー、アルスロバクタ−、
アクロモバクタ−および放線菌類(^(tinomyc
etes )に属するものが挙げられるが、これらに限
定されるわけではない。
真菌の例としては、ペニシリウム(Penicilli
u+s )、トリコデルマ(Trichoderma
) 、ケトミウム(Chaetomium) 、ならび
に外菌根および胞状(vesicular)−フルハス
キュクー(arbuscular)菌根を形成するもの
が挙げられる。別の微生物は、菌寄生真菌(mycop
arastic fung+) 、線虫捕捉菌ならびに
関連植物病原体により引き起こされる病気を抑制するこ
とができる病原真菌もしくは細菌の無毒隔離物である。
u+s )、トリコデルマ(Trichoderma
) 、ケトミウム(Chaetomium) 、ならび
に外菌根および胞状(vesicular)−フルハス
キュクー(arbuscular)菌根を形成するもの
が挙げられる。別の微生物は、菌寄生真菌(mycop
arastic fung+) 、線虫捕捉菌ならびに
関連植物病原体により引き起こされる病気を抑制するこ
とができる病原真菌もしくは細菌の無毒隔離物である。
本発明の方法により被覆することができる種子としては
、すべての農業用または園芸用種子が包含される。「農
業用種子」という用語は、本明細書においては、農業用
および園芸用のいずれの種子をも包含する広い意味で使
用している。このような種子の例としては、レタス、ブ
ロッコリ、カリフラワー、キャベツ、セロリ、にんじん
、たまねぎ、ラディシュ、トマト、とうもろこし、カラ
ス麦、マメ科植物、イネ科植物、および観賞用花卉が挙
げられる。
、すべての農業用または園芸用種子が包含される。「農
業用種子」という用語は、本明細書においては、農業用
および園芸用のいずれの種子をも包含する広い意味で使
用している。このような種子の例としては、レタス、ブ
ロッコリ、カリフラワー、キャベツ、セロリ、にんじん
、たまねぎ、ラディシュ、トマト、とうもろこし、カラ
ス麦、マメ科植物、イネ科植物、および観賞用花卉が挙
げられる。
微生物の凍結乾燥は、任意の市販各種凍結乾燥機により
実施することができる。凍結乾燥機の1例は、ラブコン
コ社(Labconco、米国ミズーリ州カンザスシチ
ー)製の凍結乾燥機5型である。
実施することができる。凍結乾燥機の1例は、ラブコン
コ社(Labconco、米国ミズーリ州カンザスシチ
ー)製の凍結乾燥機5型である。
凍結乾燥操作は約−40℃未満、好ましくは約−76℃
〜−65゛Cの凝縮機温度で実施しうる。有用な圧力範
囲は約0.25トル以下、好ましくは約0.025
トル以下である。
〜−65゛Cの凝縮機温度で実施しうる。有用な圧力範
囲は約0.25トル以下、好ましくは約0.025
トル以下である。
、 凍結乾燥操作を実施する場合、微生物を含有す名培
養液を直接凍結乾燥してもよい。しかし、菌体から過剰
の培地を例えば遠心分離または濾過により除去し、次い
で菌体を別の液体に懸濁させるのが好ましい。懸濁用液
体として水を使用してもよム、)が、菌体を凍結保護剤
中に懸濁させるのが好ましい。凍結保護剤の例としては
、グリセリン、スキムミルク、しょ糖およびジメチルス
ルホキシドが挙げられる。
養液を直接凍結乾燥してもよい。しかし、菌体から過剰
の培地を例えば遠心分離または濾過により除去し、次い
で菌体を別の液体に懸濁させるのが好ましい。懸濁用液
体として水を使用してもよム、)が、菌体を凍結保護剤
中に懸濁させるのが好ましい。凍結保護剤の例としては
、グリセリン、スキムミルク、しょ糖およびジメチルス
ルホキシドが挙げられる。
好ましい凍結保護剤の1例は、O,1MLよ糖、0.0
5Mグリセリン、0.07M安息香酸ナトリウムおよび
0.01と硫酸マグネシウムの水溶液から調製されたも
のである。菌体ば、凍結保護剤:菌体の体積比で約3=
1ないし約1:1、好ましくは約2:1となる量の凍結
保護剤中に懸濁させる。凍結乾燥すると、微生物は乾燥
粉末状で回収される。凍結乾燥した生成物は、−iに、
1g当たり10 のオーダーでコロニー形成単位(c
f u)を含んでいる。微生物の凍結乾燥および凍結乾
燥操作に使用する凍結保護剤についての詳細は、米国メ
リーランド州ロックビル所在のATCCの「アメリカ模
式菌培養蒐集法」に説明されているので、参照されたい
。
5Mグリセリン、0.07M安息香酸ナトリウムおよび
0.01と硫酸マグネシウムの水溶液から調製されたも
のである。菌体ば、凍結保護剤:菌体の体積比で約3=
1ないし約1:1、好ましくは約2:1となる量の凍結
保護剤中に懸濁させる。凍結乾燥すると、微生物は乾燥
粉末状で回収される。凍結乾燥した生成物は、−iに、
1g当たり10 のオーダーでコロニー形成単位(c
f u)を含んでいる。微生物の凍結乾燥および凍結乾
燥操作に使用する凍結保護剤についての詳細は、米国メ
リーランド州ロックビル所在のATCCの「アメリカ模
式菌培養蒐集法」に説明されているので、参照されたい
。
凍結乾燥した微生物を、一般には少量の結合剤とともに
、好ましくは結合剤および充填剤とともに、種子に均一
に被覆する。この被覆は、回転皿もしくは回転式セメン
トミキサーあるいは流動床で実施することができる。微
生物を直接種子に被覆する場合、微生物粉末が種子を均
一に被覆するように種子と微生物を一緒にタンブルさせ
る。次いで、微生物を種子に付着させるために、タンブ
ル中の種子に少量の結合剤を噴霧する。接種された種子
を、その後約20〜45“Cの温度で強制空気流により
、接種された種子の重量に基づいて約3〜8重量%の水
分含有量になるまで乾燥する。
、好ましくは結合剤および充填剤とともに、種子に均一
に被覆する。この被覆は、回転皿もしくは回転式セメン
トミキサーあるいは流動床で実施することができる。微
生物を直接種子に被覆する場合、微生物粉末が種子を均
一に被覆するように種子と微生物を一緒にタンブルさせ
る。次いで、微生物を種子に付着させるために、タンブ
ル中の種子に少量の結合剤を噴霧する。接種された種子
を、その後約20〜45“Cの温度で強制空気流により
、接種された種子の重量に基づいて約3〜8重量%の水
分含有量になるまで乾燥する。
好ましくは、凍結乾燥した微生物を、ペレ・ノド化種子
、すなわち、結合剤と充填剤を被覆する種子に通用する
。ペレット化操作では、種子を回転装置内でタンブルさ
せながら、適当な大きさのペレ・ノド化種子が得られる
まで、結合剤と充填剤とを交互に添加する。ペレット化
した種子を、次いで、約30〜45°Cの温度で、ペレ
ット化種子の重量に基づいて約3〜8重量%の水分含有
量になるまで、強制空気流中で乾燥する。この方法では
、上記操作中の任意の時点で微生物を種子混合物に添加
することができる。好ましくは、微生物が被膜のほぼ中
央に(るように微生物の添加を行う。
、すなわち、結合剤と充填剤を被覆する種子に通用する
。ペレット化操作では、種子を回転装置内でタンブルさ
せながら、適当な大きさのペレ・ノド化種子が得られる
まで、結合剤と充填剤とを交互に添加する。ペレット化
した種子を、次いで、約30〜45°Cの温度で、ペレ
ット化種子の重量に基づいて約3〜8重量%の水分含有
量になるまで、強制空気流中で乾燥する。この方法では
、上記操作中の任意の時点で微生物を種子混合物に添加
することができる。好ましくは、微生物が被膜のほぼ中
央に(るように微生物の添加を行う。
既にペレット化した種子に対して微生物を被覆すること
もできる。これは、ペレット化された種子をタンブルさ
せ、結合剤の軽い噴霧を行いながら凍結乾燥した微生物
を添加し、次いで接種したペレ・7ト化種子を前述のよ
うにして乾燥することにより実施される。
もできる。これは、ペレット化された種子をタンブルさ
せ、結合剤の軽い噴霧を行いながら凍結乾燥した微生物
を添加し、次いで接種したペレ・7ト化種子を前述のよ
うにして乾燥することにより実施される。
種子への接種物の被覆量は、微生物、種子および土壌の
種類により異なる。一般に、この接種物の量は、約10
2〜108cfu/種子の程度であろう。
種類により異なる。一般に、この接種物の量は、約10
2〜108cfu/種子の程度であろう。
cfu/種子で表した量を重量で表す場合、106cf
u/種子が1種子あたり約1〜5マイクログラムの接種
物に相当する。これは、実際の種子に換算すると、レタ
ス種子1kg当たり0.56〜1.12gの接種物、ま
たはラディシュ種子1kg当たり0.06〜0゜11g
の接種物という量になる。
u/種子が1種子あたり約1〜5マイクログラムの接種
物に相当する。これは、実際の種子に換算すると、レタ
ス種子1kg当たり0.56〜1.12gの接種物、ま
たはラディシュ種子1kg当たり0.06〜0゜11g
の接種物という量になる。
接種および被覆操作に使用できる結合剤は、水溶性また
は水分散性合成ポリマーまたは天然ガム製品の希薄溶液
である。このような結合剤物質の例は、メチルセルロー
ス、メチルエチルセルロース、アラビアゴム、グアー、
カゼイン、ゼラチン加水分解物、ポリビニルアルコール
、ポリオキシエチレングリコール、澱粉、ヒドロキシエ
チルセルロース、カラヤゴム、トラガカントゴム、ポリ
酢酸ビニルなどである。
は水分散性合成ポリマーまたは天然ガム製品の希薄溶液
である。このような結合剤物質の例は、メチルセルロー
ス、メチルエチルセルロース、アラビアゴム、グアー、
カゼイン、ゼラチン加水分解物、ポリビニルアルコール
、ポリオキシエチレングリコール、澱粉、ヒドロキシエ
チルセルロース、カラヤゴム、トラガカントゴム、ポリ
酢酸ビニルなどである。
有用な充填剤は、種子に悪影響を与えずに種子上に被膜
を堆積するのに使用できる、有機および無機粉末である
。このような充填剤の例は、ベントナイト、二酸化チタ
ン、炭素1.バーミキュライト、サンド、ケイソウ土、
クレー、シリカ、マイカなどである。
を堆積するのに使用できる、有機および無機粉末である
。このような充填剤の例は、ベントナイト、二酸化チタ
ン、炭素1.バーミキュライト、サンド、ケイソウ土、
クレー、シリカ、マイカなどである。
肥料および保湿剤などの他の成分も、所望により被V!
操作に際に添加しうる。
操作に際に添加しうる。
ペレット化した種子に微生物を被覆する最初の試みでは
、野菜の種子のペレット化の操作中に、シュードモナス
属の菌株の微生物の水性懸濁液を、ポリビニルアルコー
ル(結合剤)およびケイソウ土(充填剤)とともに噴霧
した。この微生物はペレット化工程中は生存していたが
、20〜45℃の範囲内で変化させた乾燥温度および時
間には関係なく乾燥工程中に死滅した。水分含有量30
%未満のペレット化種子からは生存能力のある菌を回収
することができなかった。ペレット化種子の水分含有量
は、一般に約3〜8重量%、好ましくは約4〜6重量%
の範囲内に保たれる。
、野菜の種子のペレット化の操作中に、シュードモナス
属の菌株の微生物の水性懸濁液を、ポリビニルアルコー
ル(結合剤)およびケイソウ土(充填剤)とともに噴霧
した。この微生物はペレット化工程中は生存していたが
、20〜45℃の範囲内で変化させた乾燥温度および時
間には関係なく乾燥工程中に死滅した。水分含有量30
%未満のペレット化種子からは生存能力のある菌を回収
することができなかった。ペレット化種子の水分含有量
は、一般に約3〜8重量%、好ましくは約4〜6重量%
の範囲内に保たれる。
メチルセルロース/ケイソウ土の組成の+11Fftに
菌を存在させた場合、ペレット化種子を43℃で乾燥す
ると、菌の生存は全く認められなかった。M、 N。
菌を存在させた場合、ペレット化種子を43℃で乾燥す
ると、菌の生存は全く認められなかった。M、 N。
5chroth研究室により調製された接種物中のシュ
ードモナス属の1菌種[Phytopath 71 :
590−92 (1981ができなかった。
ードモナス属の1菌種[Phytopath 71 :
590−92 (1981ができなかった。
KIoepperおよび5chro thの方法(Ph
ytopath 71 :590−92 (1981)
)により、約3X108cfu/gの菌含有量を有す
るキサンタンゴム/ケイソウ土混合物中の接種物を調製
した。この接種物を、ラディシュの種子のペレット化中
に、2X106c f u/種子の測定値が得られるべ
き量で適用した。しかし、ペレット化した種子を強制空
気循環乾燥機により20℃で乾燥した場合でも、種子上
の菌量体数は3×10’cfu/種子に減少していた。
ytopath 71 :590−92 (1981)
)により、約3X108cfu/gの菌含有量を有す
るキサンタンゴム/ケイソウ土混合物中の接種物を調製
した。この接種物を、ラディシュの種子のペレット化中
に、2X106c f u/種子の測定値が得られるべ
き量で適用した。しかし、ペレット化した種子を強制空
気循環乾燥機により20℃で乾燥した場合でも、種子上
の菌量体数は3×10’cfu/種子に減少していた。
また、このような低温で乾燥したにもがかわらず、種子
上の被覆はひび割れし、種子から剥脱していた。
上の被覆はひび割れし、種子から剥脱していた。
ス呈狙上
シュードモナスMCB−IA菌株をキング(King)
ブロスで2日間振盪培養した培養液を遠心分離し、捕集
された菌体を蒸溜水で2回洗浄した。2Nのブロス培養
液から集めた洗浄菌体を100 mlの蒸溜水に懸濁
し、0.25)ル、−76℃で8時間凍結乾燥した。得
られた粉末を分析したところ、5 XIO’ cfu
7gの菌を含有していることが判明した。この粉末2g
を、ポリビニルアルコールとケイソウ土でペレット化中
のブロッコリ種子28g(〜9750粒)に被覆した。
ブロスで2日間振盪培養した培養液を遠心分離し、捕集
された菌体を蒸溜水で2回洗浄した。2Nのブロス培養
液から集めた洗浄菌体を100 mlの蒸溜水に懸濁
し、0.25)ル、−76℃で8時間凍結乾燥した。得
られた粉末を分析したところ、5 XIO’ cfu
7gの菌を含有していることが判明した。この粉末2g
を、ポリビニルアルコールとケイソウ土でペレット化中
のブロッコリ種子28g(〜9750粒)に被覆した。
ペレット化が済んだ種子の試料を乾燥の前に分析すると
、計算上の理論量であるI Xl06cfu 7種子の
菌量体数を有していることが判明した。強制空気循環乾
燥機で20℃において5〜6重量%の水分含有量になる
まで乾燥した後、乾燥種子上の細菌の個体数を測定する
と、5 Xl05cfu 7種子であった。同様に被覆
した種子を43℃の温度で乾燥した場合にも、種子上の
細菌の量は同じであった。
、計算上の理論量であるI Xl06cfu 7種子の
菌量体数を有していることが判明した。強制空気循環乾
燥機で20℃において5〜6重量%の水分含有量になる
まで乾燥した後、乾燥種子上の細菌の個体数を測定する
と、5 Xl05cfu 7種子であった。同様に被覆
した種子を43℃の温度で乾燥した場合にも、種子上の
細菌の量は同じであった。
夫施皿l
シュードモナスMCB−170菌株(MCB−1^菌株
より乾燥感受性が高い)の培養液150m1を遠心分離
し、捕集された菌体を蒸溜水で2回洗浄した。洗浄した
菌体(細胞数5×10′2)を、0.IMLヨ糖、0.
05Mグリセリン、0.01M Mg5O,および0.
07M安息香酸すトリウムを含有する水溶液6mlに懸
濁させた。0.25)ル、−76℃で8時間凍結乾燥す
ると、得られた乾燥粉末は3 XIOcfu 7gの菌
を含有することが判明した。この粉末0.77 gを、
ポリビニルアルコールとケイソウ土でペレット化中のレ
タスの種子7gに被覆した。強制空気循環乾燥機により
43℃で5〜6重量%の水分含有量になるまで乾燥した
後、乾燥種子上の菌量体数を測定すると、4.7 xi
o’ cfu 7種子であった。
より乾燥感受性が高い)の培養液150m1を遠心分離
し、捕集された菌体を蒸溜水で2回洗浄した。洗浄した
菌体(細胞数5×10′2)を、0.IMLヨ糖、0.
05Mグリセリン、0.01M Mg5O,および0.
07M安息香酸すトリウムを含有する水溶液6mlに懸
濁させた。0.25)ル、−76℃で8時間凍結乾燥す
ると、得られた乾燥粉末は3 XIOcfu 7gの菌
を含有することが判明した。この粉末0.77 gを、
ポリビニルアルコールとケイソウ土でペレット化中のレ
タスの種子7gに被覆した。強制空気循環乾燥機により
43℃で5〜6重量%の水分含有量になるまで乾燥した
後、乾燥種子上の菌量体数を測定すると、4.7 xi
o’ cfu 7種子であった。
犬墨週1
実施例2に記載の方法にしたがって、シュードモナスM
CB−170菌株の凍結乾燥粉末を、実施例2に記載の
凍結保護剤水溶液を懸濁媒として利用して調製した。こ
の粉末を、ポリビニルアルコールとケイソウ土でペレッ
ト化中のレタス種子に、3 XIO’ cfu/種子の
菌量体数を与える量で被覆した。その際、3種類の実験
を行った。第1の実験では、被覆すべき接種物を種子の
近くに位置させ、第2の実験では接種物を被膜の中間部
に位置させ、第3の実験では接種物を被膜の表面近くに
位置させた。最終的に得られたベレットの直径は3〜3
.5mmであった。43℃で強制空気流により6〜7重
量%の水分含有量になるまで乾燥した後、種子を分析す
ると、いずれの実験でも種子の菌量体数は1.4〜2.
OxlO’ cfu 7種子であることがわかった。接
種した種子を野外土壌と滅菌鉢植用混合土の両方に播種
した。発根の個数の差異は非常に小さかったが、被膜の
中間部に接種した種子が発根の個数がやや多いことが認
められた。
CB−170菌株の凍結乾燥粉末を、実施例2に記載の
凍結保護剤水溶液を懸濁媒として利用して調製した。こ
の粉末を、ポリビニルアルコールとケイソウ土でペレッ
ト化中のレタス種子に、3 XIO’ cfu/種子の
菌量体数を与える量で被覆した。その際、3種類の実験
を行った。第1の実験では、被覆すべき接種物を種子の
近くに位置させ、第2の実験では接種物を被膜の中間部
に位置させ、第3の実験では接種物を被膜の表面近くに
位置させた。最終的に得られたベレットの直径は3〜3
.5mmであった。43℃で強制空気流により6〜7重
量%の水分含有量になるまで乾燥した後、種子を分析す
ると、いずれの実験でも種子の菌量体数は1.4〜2.
OxlO’ cfu 7種子であることがわかった。接
種した種子を野外土壌と滅菌鉢植用混合土の両方に播種
した。発根の個数の差異は非常に小さかったが、被膜の
中間部に接種した種子が発根の個数がやや多いことが認
められた。
大施興土
シュードモナスMCB−170菌株(乾燥感受性が弗素
に高い)の培養液1iを遠心分離し、回収された菌体を
実施例2に記載の凍結保護剤水溶液560 mlに懸濁
させ、0.025 )ルの圧力、−65℃の凝縮器温
度で20時間凍結乾燥した。凍結乾燥した接種物を、ポ
リビニルアルコールとケイソウ土でペレット化中のにん
じんの種子に、1.5 Xl05cfu 7種子の歯間
体数を与える量で添加した。その際、3種類の実験を行
った。第1の実験では、被覆すべき接種物を種子の近く
に位置させ、第2の実験では接種物を被膜の中間部に位
置させ、第3の実験では接種物を被膜の表面近くに位置
させた。最終的に得られたペレットの直径は2.0〜2
.4mmであった。43℃で強制空気流により4〜5重
量%の水分含有量になるまで乾燥した後、種子を分析す
ると、種子の歯間体数はそれぞれ3.6 XIO’ c
fu 7種子(接種物が種子の近くの場合) 、1.3
Xl03cfu 7種子(同被膜の中間部)および1
.9 Xl02cfu 7種子(同被膜の外面付近)で
あることがわかった。
に高い)の培養液1iを遠心分離し、回収された菌体を
実施例2に記載の凍結保護剤水溶液560 mlに懸濁
させ、0.025 )ルの圧力、−65℃の凝縮器温
度で20時間凍結乾燥した。凍結乾燥した接種物を、ポ
リビニルアルコールとケイソウ土でペレット化中のにん
じんの種子に、1.5 Xl05cfu 7種子の歯間
体数を与える量で添加した。その際、3種類の実験を行
った。第1の実験では、被覆すべき接種物を種子の近く
に位置させ、第2の実験では接種物を被膜の中間部に位
置させ、第3の実験では接種物を被膜の表面近くに位置
させた。最終的に得られたペレットの直径は2.0〜2
.4mmであった。43℃で強制空気流により4〜5重
量%の水分含有量になるまで乾燥した後、種子を分析す
ると、種子の歯間体数はそれぞれ3.6 XIO’ c
fu 7種子(接種物が種子の近くの場合) 、1.3
Xl03cfu 7種子(同被膜の中間部)および1
.9 Xl02cfu 7種子(同被膜の外面付近)で
あることがわかった。
実施例1
前記と同様にして製造したシュードモナスMCB−17
2菌株の凍結乾燥接種物を、ペレット化中のレタス種子
に被覆した。別に、予めペレット化して乾燥したレタス
種子にも、このペレットに凍結乾燥粉末を被覆し、これ
にポリビニルアルコール結合剤を噴霧し、ペレットを4
3℃で乾燥することにより、同じ接種物を被覆した。こ
の両者の方法の間で、菌生存率および発根数に差異は認
められなかった。
2菌株の凍結乾燥接種物を、ペレット化中のレタス種子
に被覆した。別に、予めペレット化して乾燥したレタス
種子にも、このペレットに凍結乾燥粉末を被覆し、これ
にポリビニルアルコール結合剤を噴霧し、ペレットを4
3℃で乾燥することにより、同じ接種物を被覆した。こ
の両者の方法の間で、菌生存率および発根数に差異は認
められなかった。
実施例1
シュードモナスMCB〜114菌株の凍結乾燥接種物に
よるレタス種子の処理を、この接種物をポリビニルアル
コール結合剤の軽い噴霧とともに被覆した後、43℃で
短時間乾燥することにより行った。微生物の生存率は、
ペレット化中のレタス種子に同じ菌株を被覆した場合と
同等であるか、あるいはそれより良かった。ペレット化
中に接種した場合と裸の種子に接種した場合とを比較す
ると、接種後の種子の発根数に差異は認められなかった
。
よるレタス種子の処理を、この接種物をポリビニルアル
コール結合剤の軽い噴霧とともに被覆した後、43℃で
短時間乾燥することにより行った。微生物の生存率は、
ペレット化中のレタス種子に同じ菌株を被覆した場合と
同等であるか、あるいはそれより良かった。ペレット化
中に接種した場合と裸の種子に接種した場合とを比較す
ると、接種後の種子の発根数に差異は認められなかった
。
実呈拠1
ペレット化種子上の凍結乾燥細菌の死滅率を検査した。
ブロッコリとラディシュの種子を、凍結乾燥したシュー
ドモナスMCB−IA菌株を添加しながらペレット化処
理した。ペレット化種子を密閉プラスチック容器に入れ
て、4℃、14℃および22℃で貯蔵し、34週間にわ
たって定期的に分析した。10 ’ cfu/種子の最
初の歯間体数が105cfu/種子まで減少する期間は
、22°Cでは2.5〜3週間、14°Cでしま4〜5
週間、4℃では34週間であった。4°Cで貯蔵した種
子上のMCB−IA菌株では、プロ・ノコリとラデイシ
ュのいずれの種子についても、種子の歯間体数番よ18
週で最初の約10%に、34週で最初の約1%に減少し
た。
ドモナスMCB−IA菌株を添加しながらペレット化処
理した。ペレット化種子を密閉プラスチック容器に入れ
て、4℃、14℃および22℃で貯蔵し、34週間にわ
たって定期的に分析した。10 ’ cfu/種子の最
初の歯間体数が105cfu/種子まで減少する期間は
、22°Cでは2.5〜3週間、14°Cでしま4〜5
週間、4℃では34週間であった。4°Cで貯蔵した種
子上のMCB−IA菌株では、プロ・ノコリとラデイシ
ュのいずれの種子についても、種子の歯間体数番よ18
週で最初の約10%に、34週で最初の約1%に減少し
た。
夫蓋班工
真菌のペニシリウムオギザリカム(Penicilli
umoxalicum) MCF−6菌株を、ATCC
法に記載のように20%スキムミルクの懸濁液中で凍結
乾燥した。この真菌でレタスの種子ペレットを充分に接
種できた。
umoxalicum) MCF−6菌株を、ATCC
法に記載のように20%スキムミルクの懸濁液中で凍結
乾燥した。この真菌でレタスの種子ペレットを充分に接
種できた。
トリコブルマスピーシースの菌株(MCF−20) モ
、上記と同様に処理し、ベレ・ノド化種子に適用して好
結果を得た。
、上記と同様に処理し、ベレ・ノド化種子に適用して好
結果を得た。
夫胤拠工
11のキングブロス(g/42単位で、Dircoプロ
テオーゼペプトン階3を20;グリセリンを12.6
i MgSO4・7H20を1.5;およびに2HPO
aを1.5含有)に、シュードモナスMCB−121菌
株を接種し、回転式振盪機を使用して、20Orpmで
20〜22°Cにお(、Mて3日間培養した。その後、
遠心分離(5℃、10,000Xgで20分)により菌
体を培地から分離した。次いで菌体を凍結保護液(0,
1MLよ糖および0.05Mグリセリン) 40m1に
懸濁させ、0.051−ルの真空度および一76℃の凝
縮器温度で6時間凍結乾燥した。得られた乾燥粉末を回
収し、秤量すると4.54 gであった。
テオーゼペプトン階3を20;グリセリンを12.6
i MgSO4・7H20を1.5;およびに2HPO
aを1.5含有)に、シュードモナスMCB−121菌
株を接種し、回転式振盪機を使用して、20Orpmで
20〜22°Cにお(、Mて3日間培養した。その後、
遠心分離(5℃、10,000Xgで20分)により菌
体を培地から分離した。次いで菌体を凍結保護液(0,
1MLよ糖および0.05Mグリセリン) 40m1に
懸濁させ、0.051−ルの真空度および一76℃の凝
縮器温度で6時間凍結乾燥した。得られた乾燥粉末を回
収し、秤量すると4.54 gであった。
接種物中の細菌個体数を測定するために、この粉末0.
01 gを滅菌蒸溜水9.9 mlと試験管内で30分
間振り混ぜて、再水和させた。その希釈液を半固体のキ
ングB寒天(キングブロスを15g/Jの寒天で補足し
たもの)で平板培養した。このようにして測定した歯間
体数は6.4 XIOcfu 7gであった。
01 gを滅菌蒸溜水9.9 mlと試験管内で30分
間振り混ぜて、再水和させた。その希釈液を半固体のキ
ングB寒天(キングブロスを15g/Jの寒天で補足し
たもの)で平板培養した。このようにして測定した歯間
体数は6.4 XIOcfu 7gであった。
残りの接種物(4,53g)をペレット化中の種子に添
加した。ラディシュの1変種チェリーベル(Cherr
y Be1le)の種子2ボンド(906g) (発
芽率90%、78.775粒/ボンド)を用いて、ペレ
・ノド化の実験を行った。15%ポリビニルアルコール
Ge1vatol 4O−20(モンサンド社製)およ
び1%グリセリンからなる結合剤と、ケイソウ土/セル
ロース繊維混合物(Fibracel 8^、John
s−Manville Corp、製)の充填剤とを使
用した。乾燥は強制空気循環乾燥機内で43℃の温度で
1.5時間行った。
加した。ラディシュの1変種チェリーベル(Cherr
y Be1le)の種子2ボンド(906g) (発
芽率90%、78.775粒/ボンド)を用いて、ペレ
・ノド化の実験を行った。15%ポリビニルアルコール
Ge1vatol 4O−20(モンサンド社製)およ
び1%グリセリンからなる結合剤と、ケイソウ土/セル
ロース繊維混合物(Fibracel 8^、John
s−Manville Corp、製)の充填剤とを使
用した。乾燥は強制空気循環乾燥機内で43℃の温度で
1.5時間行った。
種子の理論菌個体数は次式により求めた。
−1,8XIO’ cfu /種子
種子の実際の歯間体数は、種子10粒を9.9 mlの
滅菌蒸溜水中で30分間振盪した後、希釈液をキングB
寒天で平板培養することにより測定すると、5X10’
5cfu/種子であった。
滅菌蒸溜水中で30分間振盪した後、希釈液をキングB
寒天で平板培養することにより測定すると、5X10’
5cfu/種子であった。
これらのベレット化種子を、米国サリナスパレ−(Sa
linas Valley)から採取した3種類の野外
土壌を入れた鉢に温室内で播種した。播種後の植物の成
長は、夜間温度12〜17℃、昼間温度18〜22℃で
30〜35日間行った。接種した種子から3種類の土壌
中で成長したラディシュの根の重量は、未接種のベレッ
ト化種子から同一条件下で成長させた根の重量のそれぞ
れ119%、119%および151%であった。
linas Valley)から採取した3種類の野外
土壌を入れた鉢に温室内で播種した。播種後の植物の成
長は、夜間温度12〜17℃、昼間温度18〜22℃で
30〜35日間行った。接種した種子から3種類の土壌
中で成長したラディシュの根の重量は、未接種のベレッ
ト化種子から同一条件下で成長させた根の重量のそれぞ
れ119%、119%および151%であった。
以上に本発明の原理、好適態様および実施方式について
詳述したが、これらは単に例示であって、制限を意図し
たものではないので、本発明は以上の具体的開示内容に
限定されると解されるものではない。
詳述したが、これらは単に例示であって、制限を意図し
たものではないので、本発明は以上の具体的開示内容に
限定されると解されるものではない。
当業者により本発明の範囲内で多くの変更がなされよう
。
。
420−
Claims (12)
- (1)農業用種子に有用微生物を接種する方法であって
、前記微生物を凍結乾燥し、これを水溶性もしくは水分
散性結合剤被覆とともに種子に被覆し、種子を乾燥する
ことを特徴とする方法。 - (2)該結合剤被覆が充填剤を含む特許請求の範囲第1
項記載の方法。 - (3)被覆した種子を、約20〜45°Cの温度で、被
覆した種子の重量に基づいて約3〜8重量%の水分含有
量になるまで乾燥する特許請求の範囲第1項記載の方法
。 - (4)温度が約30〜45℃、水分含有量が約4〜6重
量%である特許請求の範囲第3項記載の方法。 - (5)微生物の凍結乾燥を、−40℃より低い温度で、
0.25 )ル以下の圧力において行う特許請求の範囲
第1項記載の方法。 - (6)温度が約−76〜−65℃、圧力が0.0251
−ル以下である特許請求の範囲第5項記載の方法。 - (7)接種された種子の重量に基づいて約3〜8重量%
の水分含有量を有する、凍結乾燥した有用微生物が接種
された農業用種子。 - (8)約4〜6M量%の水分含有量を有する特許請求の
範囲第7項記載の種子。 - (9)被覆された種子の重量に基づいて約3〜8重量%
の水分含有量を有する、凍結乾燥した有用微生物と水溶
性もしくは水分散性結合剤とが被覆された農業用種子。 - (10)約4〜6重量%の水分含有量を有する特許請求
の範囲第9項記載の種子。 - (11)被覆された種子の重量に基づいて約3〜8重量
%の水分含有量を有する、凍結乾燥した有用微生物と水
溶性もしくは水分散性結合剤と充填剤とが被覆された農
業用種子。 - (12)約4〜6重量%の水分含有量を有する特許請求
の範囲第11項記載の種子。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US38730682A | 1982-06-11 | 1982-06-11 | |
US387306 | 1995-02-27 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS592683A true JPS592683A (ja) | 1984-01-09 |
JPH0620364B2 JPH0620364B2 (ja) | 1994-03-23 |
Family
ID=23529307
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58101841A Expired - Lifetime JPH0620364B2 (ja) | 1982-06-11 | 1983-06-09 | 凍結乾燥微生物による種子の接種法 |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0097459B1 (ja) |
JP (1) | JPH0620364B2 (ja) |
AU (1) | AU562627B2 (ja) |
BR (1) | BR8303076A (ja) |
CA (1) | CA1203087A (ja) |
DE (1) | DE3368370D1 (ja) |
DK (1) | DK157049C (ja) |
ES (1) | ES8500007A1 (ja) |
IE (1) | IE55186B1 (ja) |
NO (1) | NO165052C (ja) |
NZ (1) | NZ204507A (ja) |
PT (1) | PT76842B (ja) |
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-
1983
- 1983-06-09 EP EP83303346A patent/EP0097459B1/en not_active Expired
- 1983-06-09 AU AU15635/83A patent/AU562627B2/en not_active Ceased
- 1983-06-09 JP JP58101841A patent/JPH0620364B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1983-06-09 BR BR8303076A patent/BR8303076A/pt not_active IP Right Cessation
- 1983-06-09 IE IE1360/83A patent/IE55186B1/en not_active IP Right Cessation
- 1983-06-09 ES ES523113A patent/ES8500007A1/es not_active Expired
- 1983-06-09 NZ NZ204507A patent/NZ204507A/en unknown
- 1983-06-09 DK DK263483A patent/DK157049C/da not_active IP Right Cessation
- 1983-06-09 NO NO832091A patent/NO165052C/no unknown
- 1983-06-09 CA CA000430063A patent/CA1203087A/en not_active Expired
- 1983-06-09 DE DE8383303346T patent/DE3368370D1/de not_active Expired
- 1983-06-09 PT PT76842A patent/PT76842B/pt not_active IP Right Cessation
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