JPS59166099A - Atpまたはnmnの高感度測定法 - Google Patents
Atpまたはnmnの高感度測定法Info
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- JPS59166099A JPS59166099A JP4120283A JP4120283A JPS59166099A JP S59166099 A JPS59166099 A JP S59166099A JP 4120283 A JP4120283 A JP 4120283A JP 4120283 A JP4120283 A JP 4120283A JP S59166099 A JPS59166099 A JP S59166099A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、ATP (アデノシントリホスフェ−1−)
またはNMN にコチン酸アミドモノヌクレオチド)の
高感度測定法に関する。更(・こ詳しくは1.ATPお
よびNMNのいずれが一成分を含有する被検液に、主反
応系(こおいてNMNまたはAT2+ P、Mg (マグネシウムイオン)の存在下eこN
MNアデニリルトランスフエラーゼを作用させてNAD
とピロリン酸に変換させ、主反応の後、生したNADを
、N A D (P)を補酵素とする酸化還元反応系、
たとえば少なくともNADを消費して還元型NADを生
成する反応を形成するデヒドロゲナーゼおよびその基質
tこよる反応系と、還元型N A D (P)を補酵素
とする酸化還元反応系たとえば還元型NADを消費して
NADを生成するジアホラーゼおよびテトラゾリウム塩
とQこよる反応系との組合せtこよる補酵素サイクリン
グ反応を行ない、次いで反応において生成または消費さ
れる成分を定量してなるATPおよびNMNのいずれか
一成分を含有する被検液中の成分の高感度測定法に関す
る。
またはNMN にコチン酸アミドモノヌクレオチド)の
高感度測定法に関する。更(・こ詳しくは1.ATPお
よびNMNのいずれが一成分を含有する被検液に、主反
応系(こおいてNMNまたはAT2+ P、Mg (マグネシウムイオン)の存在下eこN
MNアデニリルトランスフエラーゼを作用させてNAD
とピロリン酸に変換させ、主反応の後、生したNADを
、N A D (P)を補酵素とする酸化還元反応系、
たとえば少なくともNADを消費して還元型NADを生
成する反応を形成するデヒドロゲナーゼおよびその基質
tこよる反応系と、還元型N A D (P)を補酵素
とする酸化還元反応系たとえば還元型NADを消費して
NADを生成するジアホラーゼおよびテトラゾリウム塩
とQこよる反応系との組合せtこよる補酵素サイクリン
グ反応を行ない、次いで反応において生成または消費さ
れる成分を定量してなるATPおよびNMNのいずれか
一成分を含有する被検液中の成分の高感度測定法に関す
る。
NMNアデニリルトランスフエラーセ(EC。
2.7.7./)は下記の酵素作用を有し、ネズミの肝
臓、脳細胞、およびブタの肝臓の細胞核eこ存在するこ
とが知られている( M、 R,ALkinson。
臓、脳細胞、およびブタの肝臓の細胞核eこ存在するこ
とが知られている( M、 R,ALkinson。
J、F、 Jaelcson、 R,に、 Morto
n、 Biocbcm、J、 。
n、 Biocbcm、J、 。
NMNアデニリルトランスフエラーゼ
本酵素の活性測定法としては、反応Qこより生じたNA
Dをアルコールデヒドロゲナーゼ(EC,/。
Dをアルコールデヒドロゲナーゼ(EC,/。
/、/、/)で還元して、生じた還元型NADを311
0nmlこよる吸光度測定する方法の報告がなされてい
る( A、Kornberg、 ” Methods
inEnzymology” 、 vol、u 、
P、乙70 (/953))。
0nmlこよる吸光度測定する方法の報告がなされてい
る( A、Kornberg、 ” Methods
inEnzymology” 、 vol、u 、
P、乙70 (/953))。
しかし、この活性測定法をこ基いてATPまたはNMN
の定量法となしても、その感度が低く、ATPまたはN
MNの定量法としては利用し帰いものであった。
の定量法となしても、その感度が低く、ATPまたはN
MNの定量法としては利用し帰いものであった。
本発明者は、上記反応eこより生じたNADを測定する
ことにより、さらQここのNApを、NAD(P)を補
酵素とする酸化還元反応系と貸元型NAD (P)を補
酵素とする反応系との組合ぜeこよる補酵素サイクリン
グ反応(こより増幅反応させ、生成または消費される成
分を定量することQこより高感度に測定できることを見
い出した。
ことにより、さらQここのNApを、NAD(P)を補
酵素とする酸化還元反応系と貸元型NAD (P)を補
酵素とする反応系との組合ぜeこよる補酵素サイクリン
グ反応(こより増幅反応させ、生成または消費される成
分を定量することQこより高感度に測定できることを見
い出した。
補酵素サイクリングは、従来よりよく知られた方法であ
り(生化学実験講座よ 酵素研究法、」二/2/〜/3
!;、8本生化学会編、東京化学同人)、基質や酵素活
性を増幅定量する方法てあり、生体内の微量成分の測定
Qこは適した方法である。
り(生化学実験講座よ 酵素研究法、」二/2/〜/3
!;、8本生化学会編、東京化学同人)、基質や酵素活
性を増幅定量する方法てあり、生体内の微量成分の測定
Qこは適した方法である。
しかしながら、従来おこなわれていたサイクリング法で
は、主反応系QこはNADおよび還元型NADの側方が
共存しており、このNADおよび還元型NADのいずれ
か一方を定量する場合?こは、まず反応系に共存する定
量対象外のNADまたは還元型NADのいずれかを消去
するアルカリまたは酸の添加、加熱処理の操作を必須と
し、次いでp Hをサイクリング反応(こ適した値に調
整後サイクリング反応を行ない、さらに指示反応をおこ
なわなければならず、操作性に問題があり、その指示反
応自体が被測定物質以外の影響を受ける場合が多かった
。しかも油井のよりな粕殊な反応容器を必要とし、非常
に微量の反応液量でおこなわれてきた。さらtこ、従来
の方法では、共存する定量対象外のNADまたは還元型
NAD補酵素を消去する場合、酸またはアルカリを添加
、加熱処理後、中和するものて、この中和のためのアル
カリまたは酸の量を非常Qこ正確に用いて中和すること
を要し、良好tこ中和できず、p H&’−ばらつきが
生じた場合、これがサイクリング率tこ大きく影響し、
測定値の誤差の原因となっていた。
は、主反応系QこはNADおよび還元型NADの側方が
共存しており、このNADおよび還元型NADのいずれ
か一方を定量する場合?こは、まず反応系に共存する定
量対象外のNADまたは還元型NADのいずれかを消去
するアルカリまたは酸の添加、加熱処理の操作を必須と
し、次いでp Hをサイクリング反応(こ適した値に調
整後サイクリング反応を行ない、さらに指示反応をおこ
なわなければならず、操作性に問題があり、その指示反
応自体が被測定物質以外の影響を受ける場合が多かった
。しかも油井のよりな粕殊な反応容器を必要とし、非常
に微量の反応液量でおこなわれてきた。さらtこ、従来
の方法では、共存する定量対象外のNADまたは還元型
NAD補酵素を消去する場合、酸またはアルカリを添加
、加熱処理後、中和するものて、この中和のためのアル
カリまたは酸の量を非常Qこ正確に用いて中和すること
を要し、良好tこ中和できず、p H&’−ばらつきが
生じた場合、これがサイクリング率tこ大きく影響し、
測定値の誤差の原因となっていた。
本発明者は上記の種々の欠点を解決するために補酵素サ
イクリング法Qこよる増幅高感度測定法を改良すべく種
々研究した結果、サイクリング反応自体を指示反応とす
ること、それtこより指示反応のための操作も試薬も必
要とぜず、エンド・ポイント法だけてなく、レイ1−法
も可能である特徴を有し、しかも特殊な反応容器を必要
とぜず、一般の恒温槽で反応が可能であるばかりでなく
ドライケミカル法(フィルム法、固定化法)にも利用で
きる非常(こ簡便な方法であることを見い出した。
イクリング法Qこよる増幅高感度測定法を改良すべく種
々研究した結果、サイクリング反応自体を指示反応とす
ること、それtこより指示反応のための操作も試薬も必
要とぜず、エンド・ポイント法だけてなく、レイ1−法
も可能である特徴を有し、しかも特殊な反応容器を必要
とぜず、一般の恒温槽で反応が可能であるばかりでなく
ドライケミカル法(フィルム法、固定化法)にも利用で
きる非常(こ簡便な方法であることを見い出した。
さらに本発明Qこおいては、主反応系において補酵素を
必要としないので、主反応Qこ要した物質が残存してい
ても被測定物質の測定に影響を及ぼさないため、主反応
の後補酵素の不活性化の操作を必要とぜす、正確な測定
が可能であることを見い出した。
必要としないので、主反応Qこ要した物質が残存してい
ても被測定物質の測定に影響を及ぼさないため、主反応
の後補酵素の不活性化の操作を必要とぜす、正確な測定
が可能であることを見い出した。
本発明は上記知見eこ基くものて、ATPおよびNMN
のいずれか一成分を含有する被検液Qこ、主柱下にkb
Nアデニリルトランスフエラーゼヲ作用させてNADと
ピロリン酸(こ変換させ、主反応の後、生したNA、D
を、NAD(P)を補酵素とする酸化還元反応系と、還
元型NAD(P)を補酵素とする反応系との組合せぐこ
よる補酵素サイクリング反応をおこない、次いてこのサ
イクリンク反応において生成または消費される成久を定
石することを特徴とす゛る被検液中の成分の高1・と度
測定法である。
のいずれか一成分を含有する被検液Qこ、主柱下にkb
Nアデニリルトランスフエラーゼヲ作用させてNADと
ピロリン酸(こ変換させ、主反応の後、生したNA、D
を、NAD(P)を補酵素とする酸化還元反応系と、還
元型NAD(P)を補酵素とする反応系との組合せぐこ
よる補酵素サイクリング反応をおこない、次いてこのサ
イクリンク反応において生成または消費される成久を定
石することを特徴とす゛る被検液中の成分の高1・と度
測定法である。
本発明3こおける反応系は以下のように説明される。
NMNアデニリルl・ランヌフエフーゼ■ 補酵素サイ
クリング反応系: ■NAD(P)を補酵素とする酸化還元反応系:Eユ N A、 D + Sユーーーー−一一一→還元型NA
D+−P1酸化還元反応 ■還元型NAD(P)を補酵素とする反応系:2 還元型N A 、D +S 2−一→NAD十P2還元
型NADおよびPl を生成する反応を触媒するデヒ
ドロゲナーゼ。
クリング反応系: ■NAD(P)を補酵素とする酸化還元反応系:Eユ N A、 D + Sユーーーー−一一一→還元型NA
D+−P1酸化還元反応 ■還元型NAD(P)を補酵素とする反応系:2 還元型N A 、D +S 2−一→NAD十P2還元
型NADおよびPl を生成する反応を触媒するデヒ
ドロゲナーゼ。
E 2 +、還元型NADおよびS2を消費して、N
ADおよJ’ P 2を生成する反応を触媒する作用物
質。
ADおよJ’ P 2を生成する反応を触媒する作用物
質。
S□ :Eユの基質。
S2二E2の基質。
P□ :S□の酸化生成物。
P2:82の還元生成物。
これを図示すると以下のようになる。
本発明の被検液としては、少なくともATPまたはNM
Nのいずれか一成分を含有するものであればよく、AT
PまたはNMNを予め含有してなる被検液や、ATPま
たはNMNを遊離生成せしめてなるATPまたはNMN
含有被検液か挙げられる。ATPを遊離生成せしめてな
るATP含有被検液としては、通常キナーゼ、ADPお
よびキナーゼ基質用リン化合物による酵素反応(こでそ
のADF’がリン酸化されてATPを遊離、生成せしめ
る酵素反応系のものが挙げられる。さらQこ詳しくは、
下記の酵素反応系か例示さλする力・、こ’、ltらは
例示であって何んら本発明のA象を限定1−るものでは
ない。
Nのいずれか一成分を含有するものであればよく、AT
PまたはNMNを予め含有してなる被検液や、ATPま
たはNMNを遊離生成せしめてなるATPまたはNMN
含有被検液か挙げられる。ATPを遊離生成せしめてな
るATP含有被検液としては、通常キナーゼ、ADPお
よびキナーゼ基質用リン化合物による酵素反応(こでそ
のADF’がリン酸化されてATPを遊離、生成せしめ
る酵素反応系のものが挙げられる。さらQこ詳しくは、
下記の酵素反応系か例示さλする力・、こ’、ltらは
例示であって何んら本発明のA象を限定1−るものでは
ない。
■クレアチンキナーゼ(EC,2,7,3,,2)、A
DPおよびクレアチン1貫ノ、フェートの酵素反応系で
、クレアチンキナーゼgia:ン1111、A D P
ノQ 量、クレアチンホノフエートの定mのυ\i’
h 力A−一成分測定のためQこ用いられる。
DPおよびクレアチン1貫ノ、フェートの酵素反応系で
、クレアチンキナーゼgia:ン1111、A D P
ノQ 量、クレアチンホノフエートの定mのυ\i’
h 力A−一成分測定のためQこ用いられる。
クレアチンホヌフエート+ADP
クレアチンキナーゼ
(還元剤:β−メルカブトエクノール、還元型グルタチ
オン、シヌテイン、N−アセチルシヌテイン、ジチオヌ
レイー1゛−pなど) ■ピルベートキナーゼ(Ec、、2.7. /、、
グO)、ADPおよびホスホエリ−ルビルピン酸の酵
素反応系で、ピルベートキナーゼ活性測定、ADPの定
量、ホヌホエノールビルビン酸のいずれか一成分の測定
に用いられる。
オン、シヌテイン、N−アセチルシヌテイン、ジチオヌ
レイー1゛−pなど) ■ピルベートキナーゼ(Ec、、2.7. /、、
グO)、ADPおよびホスホエリ−ルビルピン酸の酵
素反応系で、ピルベートキナーゼ活性測定、ADPの定
量、ホヌホエノールビルビン酸のいずれか一成分の測定
に用いられる。
木ヌホエノ=pピルビン酸−1−ADPピルビン酸+A
TP ■アセテートキナーゼ(EC,2,7,2,/)系て、
b”tいずれか一成分の測定eこ用いられる。
TP ■アセテートキナーゼ(EC,2,7,2,/)系て、
b”tいずれか一成分の測定eこ用いられる。
アセチルホヌフエート+A、 D P
アセテートキナーゼ
以下、各酵素反応系を簡略して挙げる。
■カルバモイルホヌフェート+ADP
Mg”
NH3+ C’02+ A T P
■グーホヌホーX−アヌパルティl−+ A D PM
g”” アヌバルテイ1−キナーゼ(Ec、 、!、 7..2
.グL−アヌパルテイト+ATP ■乙3−ジホヌホーD−ダリセレイl−+ A D P
Mg2+またはMn”+ ホスホグリセレイトキナーゼ(EC,2,7,13)3
−ホヌホーD−クリセレイト+ATPOアルギニンホス
フェ−1−+ADP Mg2+ ま lこ ば Mn 2” L−アルギニン+ATP ■AD P +AD P Mg”” ミオキナーゼ(EC,,2,7,<1!、 3)■XD
P十ADP Mg2+、 Mn ”+4たハca2+XMP十ATP (ただしXDP−ヌクレオザイISジホスフェ−1−x
==cr、:c、G、CまたはAを示ず)これらの酵素
反応系3こおけるキナーゼとしては、例エバ前記のクレ
アチンボスフェート、ボスポエノールヒルビン酸、アセ
チルポヌフェ−1・、カルベモイルホスフェート、クー
ホヌポーL−アスパルテイl−1/、3−シホスホーD
−グリセレイト、アルギニンホスフェート、ADP、X
DPなとのキナーゼ基質用リン化合物のリン酸基をAD
P&こ転位ぜしめてATPを生成遊離する作用を有する
酵素であればよく、例えばクレアチンボスフェートをキ
ナーゼ基質用リン化合物とするクレアチンキナーゼ、ホ
ヌホエノールヒルビン酸をキナーゼ基質用リン化合物と
するピルベートオキシダーゼ、アセチルホヌフェートを
キナーゼ基質用リン化合物とするアセテートキナーゼ、
その他のホスホグリセレイトキナーゼ、アルギニンキナ
ーゼ、ミオキナーゼ、ヌクレオサイドモノホスフェート
キナーゼなどが挙げられる。NMNを遊離生成せしめて
なるNMN含有被検液としては、下記の酵素反応系が例
示されるが、これは例示であって本発明の対象を何ら限
定するものではない。
g”” アヌバルテイ1−キナーゼ(Ec、 、!、 7..2
.グL−アヌパルテイト+ATP ■乙3−ジホヌホーD−ダリセレイl−+ A D P
Mg2+またはMn”+ ホスホグリセレイトキナーゼ(EC,2,7,13)3
−ホヌホーD−クリセレイト+ATPOアルギニンホス
フェ−1−+ADP Mg2+ ま lこ ば Mn 2” L−アルギニン+ATP ■AD P +AD P Mg”” ミオキナーゼ(EC,,2,7,<1!、 3)■XD
P十ADP Mg2+、 Mn ”+4たハca2+XMP十ATP (ただしXDP−ヌクレオザイISジホスフェ−1−x
==cr、:c、G、CまたはAを示ず)これらの酵素
反応系3こおけるキナーゼとしては、例エバ前記のクレ
アチンボスフェート、ボスポエノールヒルビン酸、アセ
チルポヌフェ−1・、カルベモイルホスフェート、クー
ホヌポーL−アスパルテイl−1/、3−シホスホーD
−グリセレイト、アルギニンホスフェート、ADP、X
DPなとのキナーゼ基質用リン化合物のリン酸基をAD
P&こ転位ぜしめてATPを生成遊離する作用を有する
酵素であればよく、例えばクレアチンボスフェートをキ
ナーゼ基質用リン化合物とするクレアチンキナーゼ、ホ
ヌホエノールヒルビン酸をキナーゼ基質用リン化合物と
するピルベートオキシダーゼ、アセチルホヌフェートを
キナーゼ基質用リン化合物とするアセテートキナーゼ、
その他のホスホグリセレイトキナーゼ、アルギニンキナ
ーゼ、ミオキナーゼ、ヌクレオサイドモノホスフェート
キナーゼなどが挙げられる。NMNを遊離生成せしめて
なるNMN含有被検液としては、下記の酵素反応系が例
示されるが、これは例示であって本発明の対象を何ら限
定するものではない。
ルビロホスフェート
NMN+ピロリン酸
これらの酵素反応系におけるATPまたNMNの定量目
的は、酵素反応系における酵素の活性測定や用いられる
他の成分の定量のいずれが一成分の測定のため(こ行な
われるもので、また酵素反応系の測定成分以外の成分は
試薬として一定介用いればよい。この際用いられる被検
液や試薬の量は、測定すべき目的や選択する条件(こよ
って適宜設計変更すればよ(、特Qこ限定されるもので
はない。またこの酵素反応では通常37℃で一分間以上
行なえばよい。このように本発明の被検液としてはAT
P、NMNのいずれか一成分を含有するものが対象とし
て挙げられるものである。
的は、酵素反応系における酵素の活性測定や用いられる
他の成分の定量のいずれが一成分の測定のため(こ行な
われるもので、また酵素反応系の測定成分以外の成分は
試薬として一定介用いればよい。この際用いられる被検
液や試薬の量は、測定すべき目的や選択する条件(こよ
って適宜設計変更すればよ(、特Qこ限定されるもので
はない。またこの酵素反応では通常37℃で一分間以上
行なえばよい。このように本発明の被検液としてはAT
P、NMNのいずれか一成分を含有するものが対象とし
て挙げられるものである。
本発明Qこ用いられるN M Nアデニリル1−ランヌ
フエラーセは、ATPおよびNMNを基質とし、Mg
イオンの存在下NADおよびピロリン酸を生成する
反応を触媒する酵素(EC,,2,7,7,7)であり
、動物または微生物のいずれQこ由来するものでもよく
、例えばブタ肝臓、酵母由来のものか挙げられる( M
、 R、Atkinson、 J、 F。
フエラーセは、ATPおよびNMNを基質とし、Mg
イオンの存在下NADおよびピロリン酸を生成する
反応を触媒する酵素(EC,,2,7,7,7)であり
、動物または微生物のいずれQこ由来するものでもよく
、例えばブタ肝臓、酵母由来のものか挙げられる( M
、 R、Atkinson、 J、 F。
Jaclcson、R,K、 Morton、Bio
cl+am、J、、 gQ。
cl+am、J、、 gQ。
3/gC/9g/))。このNMNアデニリルトランス
フエラーゼの作用3こより、被検液中のATPば、用い
るNMNとともQこNADおよびピロリン酸を生成し、
また被検液中のNMNは用いるATPとともにNADお
よびピロリン酸を生成する主反応を行わせしめる。
フエラーゼの作用3こより、被検液中のATPば、用い
るNMNとともQこNADおよびピロリン酸を生成し、
また被検液中のNMNは用いるATPとともにNADお
よびピロリン酸を生成する主反応を行わせしめる。
この主反応Qこついて、その反応液量は、通常/テスト
当り10μtから3mlの範囲の容量で反応L ’4
ル、 N M Nアデニリルトランスフエラーゼは、反
応時間または待時間により異なるが、通常/テスト当り
05〜700単位、好ましくは70承位以上で作用し得
る。また用いられるNMNまたはATPは、少なくとも
被検液中のATPまたはNMNの量販上(こ用いればよ
く、またこの主反応Qこおいて被検液中のATPまたは
NMNの量に相応したNADが生成される。
当り10μtから3mlの範囲の容量で反応L ’4
ル、 N M Nアデニリルトランスフエラーゼは、反
応時間または待時間により異なるが、通常/テスト当り
05〜700単位、好ましくは70承位以上で作用し得
る。また用いられるNMNまたはATPは、少なくとも
被検液中のATPまたはNMNの量販上(こ用いればよ
く、またこの主反応Qこおいて被検液中のATPまたは
NMNの量に相応したNADが生成される。
次Qこ補酵素サイクリングにより増幅反応させるのであ
るが、本発明においては、主反応系(こおいて試料中の
ATPまたはNMN量に相応して変換され生じたNAD
を、NAD(P)を補酵素とする酸化還元反応系と、還
元型NAD(P)を補酵素とする反応系との組合せeこ
よる補酵素サイクリング反応をおこない、次いてこのサ
イクリング反応において生成または消費される成分を定
帝する。
るが、本発明においては、主反応系(こおいて試料中の
ATPまたはNMN量に相応して変換され生じたNAD
を、NAD(P)を補酵素とする酸化還元反応系と、還
元型NAD(P)を補酵素とする反応系との組合せeこ
よる補酵素サイクリング反応をおこない、次いてこのサ
イクリング反応において生成または消費される成分を定
帝する。
NiバD (P)とは、NADのみ、またはNADとN
ADPの両方とのいずれかの意味を示するもめで、NA
’D(P)を補酵素とする酸化還元反応系ととしては例
えば、NADを消費して還元型NADを生成する反応を
形成するデヒドロゲナーゼ(El)およびその基質(S
l) &こよる反応系や、NADとNADPの両方を補
酵素とするデヒドロゲナーゼ(El)およびその基質(
S□)による反応系を用いることができる。上記のデヒ
ドロゲナーゼは、特に限定されることなく、少なくとも
NADを補酵素として消費するものであればよく、かつ
過剰量用いる特定の基質シこ作用して還元型NADを生
成するデヒドロゲナーゼであればいかなる起源の酵素て
あってもよい。これらの酵素およびその基質の例として
は[酵素ハンドブックJ ’+こ記載されているが、例
として、ラクデートデヒドロゲナー/、’/、6)およ
びグリセロール、グリセロール−3−ホスフェートデヒ
ドロゲナーゼ(EC,/、 /、’ /、 g )オ、
、l:ヒグリセロール−3−ホヌフエート、グルコース
デヒドロゲナーゼ(EC,/、、/、/’、 グア)
およびグルコース、マレートデヒドロゲナーゼ(EC,
/、y、 7.37)およびL−マレート、グルタメイ
トデヒドロゲナーゼ(EC’、 /、 ll−、/、
、2 )およびL−グルタメイト、3−α−ヒドロキシ
ステロイドデヒドロゲナーゼ(EC,/、/、/、30
)および3−α−ヒト゛ロキシヌテロイドなどが挙げら
れる。これらの酵素を用いる酸化還元反応系における酵
素(El)、基質(Sl)、酵素反応、生成物(Pl)
は以下に示す通りである。
ADPの両方とのいずれかの意味を示するもめで、NA
’D(P)を補酵素とする酸化還元反応系ととしては例
えば、NADを消費して還元型NADを生成する反応を
形成するデヒドロゲナーゼ(El)およびその基質(S
l) &こよる反応系や、NADとNADPの両方を補
酵素とするデヒドロゲナーゼ(El)およびその基質(
S□)による反応系を用いることができる。上記のデヒ
ドロゲナーゼは、特に限定されることなく、少なくとも
NADを補酵素として消費するものであればよく、かつ
過剰量用いる特定の基質シこ作用して還元型NADを生
成するデヒドロゲナーゼであればいかなる起源の酵素て
あってもよい。これらの酵素およびその基質の例として
は[酵素ハンドブックJ ’+こ記載されているが、例
として、ラクデートデヒドロゲナー/、’/、6)およ
びグリセロール、グリセロール−3−ホスフェートデヒ
ドロゲナーゼ(EC,/、 /、’ /、 g )オ、
、l:ヒグリセロール−3−ホヌフエート、グルコース
デヒドロゲナーゼ(EC,/、、/、/’、 グア)
およびグルコース、マレートデヒドロゲナーゼ(EC,
/、y、 7.37)およびL−マレート、グルタメイ
トデヒドロゲナーゼ(EC’、 /、 ll−、/、
、2 )およびL−グルタメイト、3−α−ヒドロキシ
ステロイドデヒドロゲナーゼ(EC,/、/、/、30
)および3−α−ヒト゛ロキシヌテロイドなどが挙げら
れる。これらの酵素を用いる酸化還元反応系における酵
素(El)、基質(Sl)、酵素反応、生成物(Pl)
は以下に示す通りである。
■L−ラクテート(Sl) + NAD(El)
ピルビン酸(Pl)十還元型NAD
■エ タ ノ −ル (Sよ)+NAD(El)
アセトアルデヒド(Pl)十還元型NAD■グリセロー
ル(Sl)+NA D (El) ジヒドロキシアセトン(PI )十還元型NAD■グリ
セロール−3−ホスフェ−1〜(Sl)+NAD(El
) デヒドロゲナーゼ ジヒドロキシアセトンホヌフエート(PI )+還元型
NAD ■グルコース(S□)+NAD(P) (El) ノ グルコN−δ−ラクトン(Pl)十還元型NAD■L−
マレ−)(Sよ)+NAD (El) マレートデヒドロゲナーゼ オギザロ酢酸(Pよ)十還元型NAD ■L−グルタメイト(S□)+H20+NAD(El) 2−オギソグルタレイト(P□)十還元型NAD■3−
α−ヒドロキシヌテロイ)’(Sl)+NAD(El) デヒドロゲナーゼ 3−ケトヌテロイド(Pl)十還元型N、、ADこれら
の酸化還元反応に使用する酵素量は、酵素力価、基質の
種類および補酵素サイクリング率によって異なる。基質
量は、/サイクル毎に/モル比の基質を消費してなるも
ので、サイクリングする補酵素より比較にならない程は
るかに多いモル量が使用されるもので、通常単位時間当
りのザイク/I/数および反応時間に基いて決定すれば
よ(、またその酸化還元酵素の反応速度が最大を示すよ
うな濃度以上であればよい。通常0. / m Mない
し100mMの濃度範囲で存在し得る。
ル(Sl)+NA D (El) ジヒドロキシアセトン(PI )十還元型NAD■グリ
セロール−3−ホスフェ−1〜(Sl)+NAD(El
) デヒドロゲナーゼ ジヒドロキシアセトンホヌフエート(PI )+還元型
NAD ■グルコース(S□)+NAD(P) (El) ノ グルコN−δ−ラクトン(Pl)十還元型NAD■L−
マレ−)(Sよ)+NAD (El) マレートデヒドロゲナーゼ オギザロ酢酸(Pよ)十還元型NAD ■L−グルタメイト(S□)+H20+NAD(El) 2−オギソグルタレイト(P□)十還元型NAD■3−
α−ヒドロキシヌテロイ)’(Sl)+NAD(El) デヒドロゲナーゼ 3−ケトヌテロイド(Pl)十還元型N、、ADこれら
の酸化還元反応に使用する酵素量は、酵素力価、基質の
種類および補酵素サイクリング率によって異なる。基質
量は、/サイクル毎に/モル比の基質を消費してなるも
ので、サイクリングする補酵素より比較にならない程は
るかに多いモル量が使用されるもので、通常単位時間当
りのザイク/I/数および反応時間に基いて決定すれば
よ(、またその酸化還元酵素の反応速度が最大を示すよ
うな濃度以上であればよい。通常0. / m Mない
し100mMの濃度範囲で存在し得る。
還元型NAD(P)を補酵素とする反応系としては、少
なくとも還元型N’A Dを消費してNADを生成する
作用物質(E2)およびその基ff(S2)の反応系が
挙げられ、その作用物rとその基質の反応系としては、
少な(とも還元型NADを消費してNADを生成する酸
化還元酵素およびその基質の反応系や、電子伝達物質お
よびテトラゾリウム塩の反応系などが挙げられる。
なくとも還元型N’A Dを消費してNADを生成する
作用物質(E2)およびその基ff(S2)の反応系が
挙げられ、その作用物rとその基質の反応系としては、
少な(とも還元型NADを消費してNADを生成する酸
化還元酵素およびその基質の反応系や、電子伝達物質お
よびテトラゾリウム塩の反応系などが挙げられる。
還元型NADを消費してNADを生成する酸化還元酵素
としては、少なくとも還元型NADを補酵素とし、過剰
量用いる特定の基質(S2) kこ作用してN、ADお
よびS2の還元型生成物(P2)を生成するデヒドロゲ
ナーゼ、または少なくとも還元型NADを補酵素とし、
チトクローム、ジフルフィド化合物、キノンおよびその
類縁体等を受容体とする還元型NAD(P):受容体酸
化還元酵素であればそのいずれでも良く、その起源も限
定されることはない。これらの酵素およびその基質また
は受容体の例としては、「酵素ハンドブック」tこ記載
されているが、デヒドロゲナーゼおよびその基質の例と
しては、ラクテートデヒドロゲナーゼ(EC,/、/、
/、27 )およびピルビン酸、アルコールデヒドロゲ
ナーゼ(EC,/、/、/。
としては、少なくとも還元型NADを補酵素とし、過剰
量用いる特定の基質(S2) kこ作用してN、ADお
よびS2の還元型生成物(P2)を生成するデヒドロゲ
ナーゼ、または少なくとも還元型NADを補酵素とし、
チトクローム、ジフルフィド化合物、キノンおよびその
類縁体等を受容体とする還元型NAD(P):受容体酸
化還元酵素であればそのいずれでも良く、その起源も限
定されることはない。これらの酵素およびその基質また
は受容体の例としては、「酵素ハンドブック」tこ記載
されているが、デヒドロゲナーゼおよびその基質の例と
しては、ラクテートデヒドロゲナーゼ(EC,/、/、
/、27 )およびピルビン酸、アルコールデヒドロゲ
ナーゼ(EC,/、/、/。
/)およびアセトアルテ゛ヒト、グリセロールデヒドロ
ゲナーゼ(EC,/、/、/、乙)およびジヒドロキシ
アセトン、グリセロール−3−ホヌフエートデヒドロゲ
ナーゼ(EC,/、/、/、g)およびジヒドロキシア
セトン°ホスフェート)、マレートデヒドロゲナーゼ(
EC,/、/、/。
ゲナーゼ(EC,/、/、/、乙)およびジヒドロキシ
アセトン、グリセロール−3−ホヌフエートデヒドロゲ
ナーゼ(EC,/、/、/、g)およびジヒドロキシア
セトン°ホスフェート)、マレートデヒドロゲナーゼ(
EC,/、/、/。
37)およびオギザロ耐酸、3−α−ヒドロキシステロ
イドデヒドロゲナーゼ(EC,/、/、/、50)およ
び3−ケトーヌテロイドなどの例が挙げられる。また還
元型NAD(P):受容体酸化還元酵素としては、チト
クロームb5レダククーゼ(EC,’/、乙、、2..
2)、ジアホラーゼ(EC0/、乙、4.3)、ナイト
レートレダクターゼ(EC,/、乙、乙、/)、還元型
NADPデヒドロゲナーゼ(EC,/、 乙、7り、/
)、還元型N A D、(P)デヒドロゲナーゼ(EC
,/、 乙。
イドデヒドロゲナーゼ(EC,/、/、/、50)およ
び3−ケトーヌテロイドなどの例が挙げられる。また還
元型NAD(P):受容体酸化還元酵素としては、チト
クロームb5レダククーゼ(EC,’/、乙、、2..
2)、ジアホラーゼ(EC0/、乙、4.3)、ナイト
レートレダクターゼ(EC,/、乙、乙、/)、還元型
NADPデヒドロゲナーゼ(EC,/、 乙、7り、/
)、還元型N A D、(P)デヒドロゲナーゼ(EC
,/、 乙。
タデ、2)、還元型NADデヒドロゲナーゼ(EC1/
、乙、ワタ、3)、還元型NADデヒドロゲナーゼ(キ
ノン)(EC,/、乙、タデ、3−)などが挙げられる
。受容体としては、メチレン・ブル−、フラビン類、キ
ノン類、2.乙−シクロロフェノールインドフェノール 塩,テトラゾリウム塩,チトクローム、なとが用いられ
得るが、更に具体的には、フラビン類としてはりボフラ
ビン,フラビンモノヌクレオチド(FMN )、フラビ
ンアデニンジヌクレオチド(FAD)、キノン類として
はナフトキノン類として、/,ll−ナフトキノン、2
−メチル−/,グーナフトキノン、ベンゾキノン類とし
ては!,3 −ジメトキシ−S−メチル−/.4−ベン
ゾキノン、テl゛ラメチルー戸ーペンゾキノン,戸−ペ
ンゾギ/ン,ユビキノン、テトラゾリウム塩としては3
、 3’−( 3. 3’−ジメトキシーグ+ <z’
−ジフェニレン)ビ;xC2−(P−二トロフエニル)
−5−7−フエニルーチトラゾリウムクロライド〕にト
ロテトラゾリウムブルー (f−二トロフェニル)−37(f’−ヨードフエニ/
L/ ) − 3−フエ二〜テトラゾリウムクロライド
( INT )l’ 2−(j′,S′−ジメチル−2
′−チアゾリル)−3.3−ジフェニルテトラゾリウム
ブロマイド( +,)−MTT )、チトクロームとし
てはフェリチトクロームb5, チトクロームCなど
が挙げられる。
、乙、ワタ、3)、還元型NADデヒドロゲナーゼ(キ
ノン)(EC,/、乙、タデ、3−)などが挙げられる
。受容体としては、メチレン・ブル−、フラビン類、キ
ノン類、2.乙−シクロロフェノールインドフェノール 塩,テトラゾリウム塩,チトクローム、なとが用いられ
得るが、更に具体的には、フラビン類としてはりボフラ
ビン,フラビンモノヌクレオチド(FMN )、フラビ
ンアデニンジヌクレオチド(FAD)、キノン類として
はナフトキノン類として、/,ll−ナフトキノン、2
−メチル−/,グーナフトキノン、ベンゾキノン類とし
ては!,3 −ジメトキシ−S−メチル−/.4−ベン
ゾキノン、テl゛ラメチルー戸ーペンゾキノン,戸−ペ
ンゾギ/ン,ユビキノン、テトラゾリウム塩としては3
、 3’−( 3. 3’−ジメトキシーグ+ <z’
−ジフェニレン)ビ;xC2−(P−二トロフエニル)
−5−7−フエニルーチトラゾリウムクロライド〕にト
ロテトラゾリウムブルー (f−二トロフェニル)−37(f’−ヨードフエニ/
L/ ) − 3−フエ二〜テトラゾリウムクロライド
( INT )l’ 2−(j′,S′−ジメチル−2
′−チアゾリル)−3.3−ジフェニルテトラゾリウム
ブロマイド( +,)−MTT )、チトクロームとし
てはフェリチトクロームb5, チトクロームCなど
が挙げられる。
還元型NAD(P):受容体酸化還元酵素および受容体
の組合せは少なくとも還元型NADを補酵素としてなる
酵素および電子受容体となり得るものであれば特(・こ
制限されないが好ましい組み合せとしては、ジアホラー
ゼ(EC,/、乙、11.3)およびテトラゾリウム塩
、還元5NADPデヒドロゲナーゼ(EC,/、 乙、
り7./)およびメチレン・ブルー、還元型N、IMD
デヒドロゲナーゼ(’EC,/、乙。99.3)および
チトクロームCなどが挙げられる。還元型NAD(P)
:受容体酸化酵素は還元型NAD?こ特異性の高いもの
か好ましく、使用濃度は通常0.03〜/ 00 U
/ mlの範囲で存在し得る。テトラゾリウム塩の使用
濃度は、テトラゾリウム塩および究極的tこ形成される
ホルマザンの双方の水溶性がむしろ限定されるが、通常
は試薬/ ml当り/μグから100μグの濃度範囲で
存在し得る。
の組合せは少なくとも還元型NADを補酵素としてなる
酵素および電子受容体となり得るものであれば特(・こ
制限されないが好ましい組み合せとしては、ジアホラー
ゼ(EC,/、乙、11.3)およびテトラゾリウム塩
、還元5NADPデヒドロゲナーゼ(EC,/、 乙、
り7./)およびメチレン・ブルー、還元型N、IMD
デヒドロゲナーゼ(’EC,/、乙。99.3)および
チトクロームCなどが挙げられる。還元型NAD(P)
:受容体酸化酵素は還元型NAD?こ特異性の高いもの
か好ましく、使用濃度は通常0.03〜/ 00 U
/ mlの範囲で存在し得る。テトラゾリウム塩の使用
濃度は、テトラゾリウム塩および究極的tこ形成される
ホルマザンの双方の水溶性がむしろ限定されるが、通常
は試薬/ ml当り/μグから100μグの濃度範囲で
存在し得る。
電子伝達物質としては、還元型NADをNADに酸化す
る能力を有し、しかも補酵素サイクリング反応に悪影警
を及ぼさないような物質であり、例えばフェナジンメタ
ルザルフェート、メルドーラ・ブルー、ピロシアニンな
どが挙げられる。使用濃度は、サイクリング率に応じて
設定すればよいが、通常反応液/ml当り、!;pf〜
0.3 mVの濃度範囲で存在し得る。
る能力を有し、しかも補酵素サイクリング反応に悪影警
を及ぼさないような物質であり、例えばフェナジンメタ
ルザルフェート、メルドーラ・ブルー、ピロシアニンな
どが挙げられる。使用濃度は、サイクリング率に応じて
設定すればよいが、通常反応液/ml当り、!;pf〜
0.3 mVの濃度範囲で存在し得る。
上記のサイクリング反応は、通常室温ないし37℃付近
の温度、好ましくは30〜37℃の温度で行われる。反
応時間は、特に限定されるものでなく、通常7分以上、
好ましくはS分以上行なえばよい。予定された時間の終
りで反応を迅速eこ停止するには、酸、例えば塩酸、リ
ン酸などを添加すること(こより行なわれる。
の温度、好ましくは30〜37℃の温度で行われる。反
応時間は、特に限定されるものでなく、通常7分以上、
好ましくはS分以上行なえばよい。予定された時間の終
りで反応を迅速eこ停止するには、酸、例えば塩酸、リ
ン酸などを添加すること(こより行なわれる。
このようにしてサイクリング反応を行なった後、このサ
イクリング反応tこおいて生成または消費される部分を
定量するのであるが、生成する成分としてはEユの基質
(S□)の酸化生成物(Pl)またはE2の基質(S2
)の還元生成物(P2)を対象とすればよく、消費され
る成分としてはE□の基質(Sl)またはE2の基質(
S2)を対象とすればよく、これらのPl、’P2.S
1.S2のいずれか一成分の量を定量すればよい。簡便
には、基質の状態では無色であり、生成物の状態にて呈
色または螢光を呈する吸光波長を変化する場合の生成物
の定量手段を用いることである。例えばテトラゾリウム
塩を基質(S2)として、生成するホルマザンを還元生
成物(P2)とせしめて、このホルマザンを比色定量し
てなるものである。さら?こフラビン類やキノン類を基
質(S2)として、用いた場合には、それらの基質(S
)の消費量をその特有の吸光波長に基いて吸光度測定し
て定量すればよい。
イクリング反応tこおいて生成または消費される部分を
定量するのであるが、生成する成分としてはEユの基質
(S□)の酸化生成物(Pl)またはE2の基質(S2
)の還元生成物(P2)を対象とすればよく、消費され
る成分としてはE□の基質(Sl)またはE2の基質(
S2)を対象とすればよく、これらのPl、’P2.S
1.S2のいずれか一成分の量を定量すればよい。簡便
には、基質の状態では無色であり、生成物の状態にて呈
色または螢光を呈する吸光波長を変化する場合の生成物
の定量手段を用いることである。例えばテトラゾリウム
塩を基質(S2)として、生成するホルマザンを還元生
成物(P2)とせしめて、このホルマザンを比色定量し
てなるものである。さら?こフラビン類やキノン類を基
質(S2)として、用いた場合には、それらの基質(S
)の消費量をその特有の吸光波長に基いて吸光度測定し
て定量すればよい。
さらに上記反応(こおいて、テトラゾリウム塩から形成
されるホルマザンの沈澱の防止をたすけるために界面活
性剤を添加することが好ましい。界面活性剤としてはト
ライトンX−100,アデカト一ルSO−/ll−3な
どの非イオン界面活性剤が挙げられる。使用濃度は試薬
tこ対し、00/〜3%の濃度範囲で存在し得る。この
界面活性剤の添加Qこより、測定値の感度の上昇とホル
マザン色素の安定化を計ることができる。
されるホルマザンの沈澱の防止をたすけるために界面活
性剤を添加することが好ましい。界面活性剤としてはト
ライトンX−100,アデカト一ルSO−/ll−3な
どの非イオン界面活性剤が挙げられる。使用濃度は試薬
tこ対し、00/〜3%の濃度範囲で存在し得る。この
界面活性剤の添加Qこより、測定値の感度の上昇とホル
マザン色素の安定化を計ることができる。
生じたホルマザン色素の比色定量はホルマザンの特異的
吸光波長にて吸光度(OD)を測定すればよく、例えば
、300”330nmの波長により吸光度を測定して、
被測定物質の定量を行うことができる。
吸光波長にて吸光度(OD)を測定すればよく、例えば
、300”330nmの波長により吸光度を測定して、
被測定物質の定量を行うことができる。
本発明tこよれば、エンド・ポイント法だけでなく、レ
イト法、ドライケミカル法(フィルム法、固定化力も可
能である。
イト法、ドライケミカル法(フィルム法、固定化力も可
能である。
本発明はATPの高感度測定法として有用であり、試料
中tこ遊離しているATPの定量や、キナーゼ、ADP
およびキナーゼ基質用リン化合物による酵素反応シこて
ADPがリン酸化されて生成、M離されるATPの定量
、NMNの定量、NMNピロホスホリラーゼ、ニコチン
アミドおよびs−ホヌホーα−1) −+)ボシルピロ
ホヌフエートによる酵素反応にて生成、遊離されるNM
Nの定量に有用である。さらtこ酵素反応系におけるキ
ナーゼ活性測定、ADP、キナーゼ基質用リン化合物、
ニコチンアミド、5−ホスホ−α−?−D−リボシルピ
ロホヌフエートのいずれか一成分の定量に利用すること
も可能である。
中tこ遊離しているATPの定量や、キナーゼ、ADP
およびキナーゼ基質用リン化合物による酵素反応シこて
ADPがリン酸化されて生成、M離されるATPの定量
、NMNの定量、NMNピロホスホリラーゼ、ニコチン
アミドおよびs−ホヌホーα−1) −+)ボシルピロ
ホヌフエートによる酵素反応にて生成、遊離されるNM
Nの定量に有用である。さらtこ酵素反応系におけるキ
ナーゼ活性測定、ADP、キナーゼ基質用リン化合物、
ニコチンアミド、5−ホスホ−α−?−D−リボシルピ
ロホヌフエートのいずれか一成分の定量に利用すること
も可能である。
これらの定量において、ATPまたはNMNの1モル比
に対して極めて高モル比の生成物質を形成せしめるため
、ATPまたはNMNの高感度測定法として有用である
。
に対して極めて高モル比の生成物質を形成せしめるため
、ATPまたはNMNの高感度測定法として有用である
。
次tこ実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、こ
れにより本発明を限定するものではない。
れにより本発明を限定するものではない。
実施例/
(試薬)
1 (1) 30 m M Tris−HCI
緩衝液pH7,ff(213mM MgC12 (3+ / mM NMN (4) NMNアデニリルトランスフェラーセ(イ
ースト由来: / g U/ml! )11(1)
100 mM リン酸M衝液PHjif、Q(2+
アルコールデヒドロゲナーゼ(イースト由来=−
グOU / ml )(3) 0.0 / %
NT’B(4) ジアホラーゼ (バチルスメガテリウム由来: 2グOU/m1) (5) o、g M エタノール(6)
04 % ト リ ト ンX−10
0(操作) 試薬I O,/ mltコO,−3〜’、2夕p Mノ
ATP / OpLを添加し、37℃で73分間反応を
行ない、反応後37℃に予1絹加温した後、試薬■を。
緩衝液pH7,ff(213mM MgC12 (3+ / mM NMN (4) NMNアデニリルトランスフェラーセ(イ
ースト由来: / g U/ml! )11(1)
100 mM リン酸M衝液PHjif、Q(2+
アルコールデヒドロゲナーゼ(イースト由来=−
グOU / ml )(3) 0.0 / %
NT’B(4) ジアホラーゼ (バチルスメガテリウム由来: 2グOU/m1) (5) o、g M エタノール(6)
04 % ト リ ト ンX−10
0(操作) 試薬I O,/ mltコO,−3〜’、2夕p Mノ
ATP / OpLを添加し、37℃で73分間反応を
行ない、反応後37℃に予1絹加温した後、試薬■を。
/ ml添加における吸光度の間にきわめて良好な直線
的関係が得られた。
的関係が得られた。
実施例2
実施例/て用いた試薬のうち、アルコールデヒドロゲナ
ーゼおよび0. g Mエタノールの代わり。こ、グリ
セロール−3−ホヌフェートデヒドロゲナーゼ(ウサギ
筋肉由来、EC,/、/、/、g)300U7mlおよ
び10mMグリセa −1v −3’−ホヌフエートを
用いて、以下実施例/と同様の反応を行なった。結果は
第2図の通りてあって、実施例/と同様に、ATPと3
夕On m fこおける吸光度の間にきわめて良好な
直線関係が得られた。
ーゼおよび0. g Mエタノールの代わり。こ、グリ
セロール−3−ホヌフェートデヒドロゲナーゼ(ウサギ
筋肉由来、EC,/、/、/、g)300U7mlおよ
び10mMグリセa −1v −3’−ホヌフエートを
用いて、以下実施例/と同様の反応を行なった。結果は
第2図の通りてあって、実施例/と同様に、ATPと3
夕On m fこおける吸光度の間にきわめて良好な
直線関係が得られた。
実施例3
実施例/pこおける試薬■のうち、アルコールデヒドロ
ゲナーゼおよび0. g Mエフノールをグリセロール
デヒドロゲナーゼ(バチルス・メガテリウム由来、EC
,/、/、/、、4 )、2乙OU / mlおよび/
Mクリセロールを用いて、以下実施例/と同様の反応を
行なった。結果は第3図に示される通りである。
ゲナーゼおよび0. g Mエフノールをグリセロール
デヒドロゲナーゼ(バチルス・メガテリウム由来、EC
,/、/、/、、4 )、2乙OU / mlおよび/
Mクリセロールを用いて、以下実施例/と同様の反応を
行なった。結果は第3図に示される通りである。
実施例グ
(試薬)
1 (1) 50 m M Tris−HC]
緩衝液pH7,3(2) 3 mM M
gC12(3) 3 rnM ATP(4)
NMNアデニリルトランスフエラーゼ(イースト
由来: / g U / ml )11(1)
100 mM リ ン5.”fijj’$
7’e pHg、0(2) アルコールデヒ
ドロゲナーゼ(イースト由来:2グOU/m1) (3) 0.0 / % NTB(4) ジア
ホラーゼ (バチルスメガテリウム由来: 2グOU / ml、 ) (5) Og M エ タ
ノ −ル(6) 0.7 %
ト リ ト ンx−−/ o。
緩衝液pH7,3(2) 3 mM M
gC12(3) 3 rnM ATP(4)
NMNアデニリルトランスフエラーゼ(イースト
由来: / g U / ml )11(1)
100 mM リ ン5.”fijj’$
7’e pHg、0(2) アルコールデヒ
ドロゲナーゼ(イースト由来:2グOU/m1) (3) 0.0 / % NTB(4) ジア
ホラーゼ (バチルスメガテリウム由来: 2グOU / ml、 ) (5) Og M エ タ
ノ −ル(6) 0.7 %
ト リ ト ンx−−/ o。
(操作)
試薬10. / ml E O03〜、2:3pM(f
)NMN /。
)NMN /。
μtを添加し、37℃で75分間反応を行ない、反応後
37℃に予備加温した後、試薬■をQ、 / ml添加
し、正確tこ10分間反応を行ない1.:l、 g m
eの0、/NHClを添加し、反応を停止したのち、3
3011Inにて比色定量した。
37℃に予備加温した後、試薬■をQ、 / ml添加
し、正確tこ10分間反応を行ない1.:l、 g m
eの0、/NHClを添加し、反応を停止したのち、3
3011Inにて比色定量した。
(結果)
第7図に示される通りで、NMNの濃度と330nmに
おける吸光度の間(こきわめて良好な直線的関係が得ら
れた。
おける吸光度の間(こきわめて良好な直線的関係が得ら
れた。
実施例j
(反応液I)
(1) 30 m M Tris−HC]緩衝液
pH7J(2) 20 mM MgC12(3)
アセテートキナーゼ (大腸菌由来、gU/m1) (4) 10 mM MgC12(5) /
mM NMN (6) NMNアデニルドラススフェラーゼ(/gU
/m1) (操作) 反応液IO,2mlを小試験管(・ことり、各0度のア
セチルホヌフエート溶W10μL ヲ’l?A加L、3
7℃で20分反反応行なったのち、実施例/シこ示した
試薬■をQ、 、;l ml加え、10分間反応したの
ち、/、 g mlの0. / N HCl溶液を加え
て反応を停止したのち!;30nmで比色定量した結果
、第S図に示す如く良好な直線が得られた。
pH7J(2) 20 mM MgC12(3)
アセテートキナーゼ (大腸菌由来、gU/m1) (4) 10 mM MgC12(5) /
mM NMN (6) NMNアデニルドラススフェラーゼ(/gU
/m1) (操作) 反応液IO,2mlを小試験管(・ことり、各0度のア
セチルホヌフエート溶W10μL ヲ’l?A加L、3
7℃で20分反反応行なったのち、実施例/シこ示した
試薬■をQ、 、;l ml加え、10分間反応したの
ち、/、 g mlの0. / N HCl溶液を加え
て反応を停止したのち!;30nmで比色定量した結果
、第S図に示す如く良好な直線が得られた。
第1図は指示反応系eこアルコールデヒドロゲナーゼ、
エタノール、ジアホラーゼ、テトラゾリウム塩を用いて
なるATPの検量曲線を示し、第2図は指示反応シこグ
リセロ−/l/ −’3−ホスフェートデヒドロゲナー
ゼ、グリセロ−1v−3’−ホヌフエート、ジアホラー
ゼ、テトラゾリウム塩を用いてなるATPの検量曲線を
示し、第3図は指示反応系にグリセロールデヒドロゲナ
ーゼ、グリセロール、ジアホラーゼ、テトラゾリウム塩
を用いてなるATPの検量曲線を示し、第1図は指示反
応系にアルコールデヒドロゲナーゼ、エタノール、ジア
ホラーゼ、テトラゾリウム塩を用いてなるNMNの検量
曲線を示し、第5図は本発明にょるアセチルホヌフエー
トの検量曲線を示す。 特許出願人 東洋而造株式会社 代表者 伊東富士馬 第 l 図 、イ自ミ54!中の711TP^A1番(、iHン第2
図 ooツ1.Q 1.シ202り 功軒へATP^紡(Q) 第3図 0 2 4 6 & IQ□ATP^1
(PM、1 第9図 o o、5 1.0 1.5 2.o 25ホ付
い間口へ尉(かり 第5 0 0S1.0 +、5 2.0 矛デ2Pセ^7℃ナレソン65へ端隈 5 塗h)
エタノール、ジアホラーゼ、テトラゾリウム塩を用いて
なるATPの検量曲線を示し、第2図は指示反応シこグ
リセロ−/l/ −’3−ホスフェートデヒドロゲナー
ゼ、グリセロ−1v−3’−ホヌフエート、ジアホラー
ゼ、テトラゾリウム塩を用いてなるATPの検量曲線を
示し、第3図は指示反応系にグリセロールデヒドロゲナ
ーゼ、グリセロール、ジアホラーゼ、テトラゾリウム塩
を用いてなるATPの検量曲線を示し、第1図は指示反
応系にアルコールデヒドロゲナーゼ、エタノール、ジア
ホラーゼ、テトラゾリウム塩を用いてなるNMNの検量
曲線を示し、第5図は本発明にょるアセチルホヌフエー
トの検量曲線を示す。 特許出願人 東洋而造株式会社 代表者 伊東富士馬 第 l 図 、イ自ミ54!中の711TP^A1番(、iHン第2
図 ooツ1.Q 1.シ202り 功軒へATP^紡(Q) 第3図 0 2 4 6 & IQ□ATP^1
(PM、1 第9図 o o、5 1.0 1.5 2.o 25ホ付
い間口へ尉(かり 第5 0 0S1.0 +、5 2.0 矛デ2Pセ^7℃ナレソン65へ端隈 5 塗h)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)ATP(アデノシントリホヌフエート)およびN
MNにコチン酸アミドモノヌクレオチド)のいずれか−
成分を含有する被検液に、主反応系eこおいてNMNま
たはATP、マグネシウムイオンの存在下tこN M
Nアデニリルトランスフエラーゼを作用させてNADと
ピロリン酸に変換させ、主反応の後、生したNADを、
N A D (P)を補酵素とする酸化還元反応系と、
還元型N A D (P)を補酵素とする反応系との組
合せ(こよる補酵素サイクリング反応をおこない、次い
てこのザイクリンク反応において生成または消費される
成分を定量することを特徴とするATPおよびNMNの
いずれか一成分を含有する被検液中の成分の高感度測定
法(2) A T Pか、キナーゼ、ADP(アデノシ
ンジヌクレオチド)およびキナーゼ基質用リン化合物の
反応系によって生成されるATPである特許請求の範囲
第1項記載の高感度測定法。 (3)キナーゼ、ADPおよびキナーゼ基質用リン化合
物の反応系が、クレアチンキナーゼ、ADPおよびクレ
アチン繍スフエートの反応系、ピルベートキナーゼ、A
DPおよびホヌホエノールピルビン酸の反応系、アセテ
ートキナーゼ、ADP。 アセチルホヌフエートの反応系、カルバメートキナーゼ の反応系,アメパルティトキナーゼ、ADP,Z−ホス
ホ−L−アメパルティトの反応系,ホスホクリセレイト
キナーゼ,ADP,/.3−ジホスホーDークリセレイ
トの友応系,アルギニンモナーセ,ADP,アルギニン
ホヌフエートの反応系。 ミオキナーゼ、ADP,ADPの反応系,またはヌクレ
オザイドモノホヌフエートキナーセ, ADP,ヌクレ
オサイドジホヌフエ−1・の反応系である特許請求の範
囲第2項記載の高感度測定法。 (4i N M Nが下記tこ示される酵素反応によっ
て生成されるNMNである特許請求の範囲第1項記載の
高感度測定法。 ルピロホヌフエート NMN+ピロリン酸 (5)N A D (P)を補酵素とする酸化還元反応
系が、少なくともNADを消費して還元型NADを生成
する反応を形成するデヒドロゲナーゼおよびその基質t
こよる反応系である特許請求の範囲第1項記載の高感度
測定法。 (6)デヒドロゲナーゼおよびその基質が、ラクテート
デヒドロゲナーゼおよびL−ラフチー1−.アルコール
デヒドロゲナーゼおよびエタノール、クリセロールデヒ
Fロゲナーゼおよびグリセロール、グリ、セロ−ルー3
−ホヌフェートデヒドロゲナーゼおよびグリセロール−
31ホスフェ−1−、グルコーヌデヒドロゲナーゼおよ
びグルコース、マレートデヒドロゲナーゼおよびL−マ
レート、グルタメイトデヒドロゲナーゼおよびL−グル
クメナーゼおよび3−α−ヒドロキシヌテロイドのいず
れかの反応系である特許請求の範囲第S項記載の高Iざ
度測定法。 (7)還元型N A D (P)を補酵素とする反応系
が、少なくとも還元型NADを消費してNADを生成す
る反応を形成する酸化還元酵素およびその基質よりなる
反応系である特許請求の範囲第1項記載の高感度測定法
。 (8)少なくとも還元型NADを消費してNADを生成
する酸化還元酵素およびその基質が、ラクテートデヒド
ロゲナーゼおよびピルビン酸、アルコールデヒドロゲナ
ーゼおよびアセトアルデヒド。 クリセロールデヒドロゲナーゼおよびジヒドロキシアセ
トン、グリセロール−3−ホスフェ−1−デヒドロゲナ
ーゼおよびシヒドロキシアセトンポヌフエート、マレー
トデヒドロゲナーゼおよびオギザロ酢酸、3−α−ヒド
ロキシステロイドデヒドロゲナーゼおよび3−ケトヌテ
ロイドのいずれかの反応系である特許請求の範囲第7項
記載の高感度測定法。 (9)少なくとも還元型NADを消費してNADを生成
する反応を形成する酸化還元酵素およびその基質が、還
元型N A D (P) :受容体酸化還元酵素および
その受容体である特許請求の範囲第7項記載の高感度測
定法。 αO)還元型N A D (P) :受容体酸化還元酵
素およびその受容体が、還元5 N A D (P)デ
ヒドロゲナーゼおよびフラビン類、キノン類9.2.乙
−ジクロロフェノールインドフェノール、フェリシアン
化塩。 テトラゾリウム塩、チトクロームCまたは酸素である特
許請求の範囲第7項記載の高感度測定法。 (n)還元型NAD(P):受容体酸化還元型酵素およ
びその基質が、ジアホラーゼおよびテトラゾリウム塩で
ある特許請求の範囲第7項記載の高感度測定法。 (12)還元型N A D (P)を補酵素とする反応
系が、電子伝達物質およびテトラゾリウム塩である特許
請求の範囲第1項記載の高感度測定法。 (13) %1 子伝a 物51が、フエナシンーメク
サルフエ一ト、メルドーラ・ブル−またはピロシアニン
である特許請求の範囲第7.2項記載の高感度測定法(
14)サイクリング反応において、界面活性剤を添加す
ることからなる特許請求の範囲第1項記載の高感度測定
法。 (]5)界面活性剤が非イオン系界面活性剤である特許
請求の範囲第14’項記載の高感度測定法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4120283A JPS59166099A (ja) | 1983-03-11 | 1983-03-11 | Atpまたはnmnの高感度測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4120283A JPS59166099A (ja) | 1983-03-11 | 1983-03-11 | Atpまたはnmnの高感度測定法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS59166099A true JPS59166099A (ja) | 1984-09-19 |
JPH047200B2 JPH047200B2 (ja) | 1992-02-10 |
Family
ID=12601828
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP4120283A Granted JPS59166099A (ja) | 1983-03-11 | 1983-03-11 | Atpまたはnmnの高感度測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS59166099A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7122333B2 (en) | 2001-11-21 | 2006-10-17 | Unitika Ltd. | Method and reagent for visually measuring ATP |
JP2009225784A (ja) * | 2008-02-28 | 2009-10-08 | Asahi Kasei Pharma Kk | ピロリン酸の測定方法 |
JP2019024468A (ja) * | 2017-08-03 | 2019-02-21 | 旭化成ファーマ株式会社 | タンパク質およびその製造方法、タンパク質組成物ならびにそれを用いたnmnの測定方法および測定組成物 |
WO2021241446A1 (ja) | 2020-05-25 | 2021-12-02 | 横河電機株式会社 | 検体中の標的分子の検出方法、及び標的分子検出キット |
-
1983
- 1983-03-11 JP JP4120283A patent/JPS59166099A/ja active Granted
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7122333B2 (en) | 2001-11-21 | 2006-10-17 | Unitika Ltd. | Method and reagent for visually measuring ATP |
JP2009225784A (ja) * | 2008-02-28 | 2009-10-08 | Asahi Kasei Pharma Kk | ピロリン酸の測定方法 |
US8105766B2 (en) | 2008-02-28 | 2012-01-31 | Asahi Kasei Pharma Corporation | Method of measuring pyrophosphate |
JP2019024468A (ja) * | 2017-08-03 | 2019-02-21 | 旭化成ファーマ株式会社 | タンパク質およびその製造方法、タンパク質組成物ならびにそれを用いたnmnの測定方法および測定組成物 |
WO2021241446A1 (ja) | 2020-05-25 | 2021-12-02 | 横河電機株式会社 | 検体中の標的分子の検出方法、及び標的分子検出キット |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH047200B2 (ja) | 1992-02-10 |
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