JPS58101692A - エラスタ−ゼの精製法 - Google Patents

エラスタ−ゼの精製法

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JPS58101692A
JPS58101692A JP19834381A JP19834381A JPS58101692A JP S58101692 A JPS58101692 A JP S58101692A JP 19834381 A JP19834381 A JP 19834381A JP 19834381 A JP19834381 A JP 19834381A JP S58101692 A JPS58101692 A JP S58101692A
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JP
Japan
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elastase
antibody
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insoluble
alkaline solution
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JP19834381A
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JPS5928395B2 (ja
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Mamoru Sugiura
衛 杉浦
Kazuyuki Hirano
和行 平野
Akio Kawasaki
川崎 昭男
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明はエラスターゼの精製方法に関する。
エラスターゼは生体内に広く見出され、特に豚の膵臓中
にその含有′iiは高い。
またエラスターゼは血管等の結合組織に存在する不溶性
峡タンパク質であるエラスチンを分解する唯一の酵素で
あり、動脈硬化のヴら症進展及び組織障害に関与すると
考えられ、近年注目されている。
エラスターゼの精製法としては従来硫安分画の後、得ら
れるオイク′ロブリ/I!!II分をさらに結晶化する
方法、陽イオン交換体及び陰イオン交換体ケ用いたイオ
ン交換クロマト等があるが、こi]らの方法はエラスタ
ーゼと夾雑蛋白との分離、除来が困姉であり%異性に欠
け、また時間、労ノ〕ヲ要するという欠点を有し、王朶
的Vt適した方法とは思われない。
本発明は抗原−抗体反応の喘異性を利用することにより
、従来方法における欠点を回避、克服し、高純度のエラ
スターゼを高収率に取得するエラスターゼの精製法に関
する。
本発明においては1ず目的とする純度のエラスターゼを
動物に免疫することによって得た抗体?不溶性担体と化
学的に共有結合させて、不溶型エラスターゼ抗体を調製
する。
担体と17では不活性であり、疎であり、不溶性でおる
担体、例えばアガロース、デキストラン、ポリアクリル
アミド、ガラスピーズ鳴音用いることができ、先の抗体
とは公知の方法で化学的に共有結合させて不溶型エラス
ターゼ抗体を1製する。
このような不溶型エラスターゼ抗体に粗製エラスターゼ
滴液をゴ橿用することにより、上記抗体にエラスターゼ
を特異的に吸着せしめたのち、その吸着物を洗浄するこ
とにより不純物を完全に除去し、ついでアルカリ溶液に
よりエラスターゼ比活性することによって高純度なエラ
スターゼ全高収率で得ることができるものである。
本発明によって得られるエラスターゼの純度は原料とし
て用いる粗製エラスターゼ溶液の純度の良し悪しに関係
なく用いた不溶型エラスターゼ抗体の特異性に依存する
なお、エラスターゼはアルカリ性側では安定であり、本
発明に用いる溶出液例えば0.2MNatCO5溶1 
(PH11,0−11,5)中では25℃、3時間処理
後も97%以上の活性を残存すなことが明らかになり1
(。
また、本発明で用いるアルカリ性溶液は不溶性11A体
−抗体結合に何ら影Wを与えず、PH8(3〕 付近の適当な緩衝液で再生することにより半永久的にく
り返し使用が可能であり、その吸着容重、活性回収率及
び純度に変化はない。
さらには、その溶離剤は安価でその後の脱塩及び廃棄が
非常に容易である。
以上の点より不溶型エラスターゼ抗体による溶離剤とし
てアルカリ性溶液を用いるエラスターゼの精製法は従来
方法に比して非常に優れ′Cいるといえる。
次に、実施例を挙げて本発明全説明するが本発明はこれ
に限定されるものではない。
実施例1 豚膵臓原末I LI 09’を冷水1000 mlK懸
濁し、約2時間攪拌抽出し5000回転10分間達沈し
てエラスターセ抽出液を得た。
この抽出液全抗エラスターゼ抗体を固定化したセファo
−ス(5epharoae) 4 Bカラム(500m
l )に流下し、吸着させたi(1,15M(4) −25によジ脱#i後、凍結乾燥する。
この処理によりエラスターゼ比活性は11500単位/
9、又活性回収率Fi96.5%であった。
実施例2 豚膵臓原末1009から実施例1と同様の操作によって
得た抽出液會抗エラスクーゼ抗体を固定化したセファロ
ース4BカラムC500m1)に流下し、吸着させたG
 O,15MNaC45含む0.1Mリン酸塩緩衝液、
PH8,0で洗浄後0.1Mグリシン−N a OH緩
衝液、PH11,5により溶出し、これをセファデック
ス(5ephadex ) G −25icより脱塩後
、凍結乾燥する。
この処理によってエラスターゼ比活性は110旧)単位
/9、又活性回収率は86.0%であった。
実施例3 豚生Kf臓5 (l 09をミンチ、水1500dを加
え自己消化させて抽出する。この抽出液を濾過して謔液
倉得た。
この抽出液會抗エラスターゼ抗nt固定化したセファロ
ース4Bカラム(500tnl )に流下し、吸sgせ
た後、0.15 M NaC,ek含む帆IMリン醜塩
緩衝液、1)H8,Oで洗浄体、0゜2MNa、C0g
浴液で浴出し、これをセファテックスG−25により脱
#i後凍結乾燥する。
この処理によりエラスターゼ比活性は10000単位/
g又活性回収率は84.0%であった。
実施例4 粗製エラスターゼ溶液200−を抗エラスターゼ抗体を
固定化したガラスピーズのカラム(200mA)に流下
し、吸着させた後、0.15MNaC−6’に含む0.
1 M Tria−HC,e緩衝液、PH7,5で洗浄
捗、0.2 M Na、 CO,溶液で溶出し、これを
セファテックスG−25により脱環後凍結乾燥する。
この処理によりエラスターゼ比活性は11000単位/
ノ、又活性回収率は87.0%でおった。
抗体作製例 白色家兎に対し、抗原である精製エラスターゼをアジ−
バンドとともに免疫注射し、数回の追加免疫の後全採血
し、抗エラスターゼ抗血涜?得る。
この抗血清を1/3飽和硫安分画、DEAE−セルロー
スにより、抗エラスターセ抗体を精製する。
抗エラスターゼ抗体固定化セファロース4Bの調製例C
NB r活性化セファロース4 B (Pharmac
iaFine  Chemicals社製) 1009
 t” 1mMHCAにて洗浄膨fI41行ない0.5
 M NaC6’に含む0.1MNaHCO,緩衝液、
PH8,3中で1.59の抗エラスターゼ抗体と結合さ
せ、室温で2時間攪拌し、未反応の活性基t−IMのエ
タノールアミンP)18.0でブロッキング(2時間)
する。
次VC上記のNaHCO,緩衝液によりプロノキングカ
;薬を洗浄し、抗エラスターゼ抗体固定化セファロース
4Bとする。
この担体は0,15 M NaCA’を含む0.1Mリ
ンIIII塩緩衝液PII8.Oで充分洗浄することに
より再使用が可能である。
エラスターゼ活性測定法 sue −Aeal −FNA (5ucciny# 
−(L−alanine )1−P−nitroani
Aide ) k基質としてBiathらの方法(Bi
ochem 、 Medicine 11 、350−
357.1974)に基づいて試料を0.2 M Tr
i8−HcisvJM、(PH8,0)2.5rntに
加え基質125 m M sue −Aha。
−PNAのN −methy−# −2−pyrro#
1done溶液20μ、8を加えて25℃下410 n
mの吸光度増加(ΔA 410/m1n) k 2−3
分間測定した。
エラスターゼ活性は1分間当たり1MモルのP−nlt
roaniAine k遊離する酵素Jim’ k I
 Unitとした。
なお、P −n1troani#ineの分子吸光係数
は、1M E    = 8800 ′?を用いた。
10nm

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 1、 不溶型エラスターゼ抗体にて羽1%!5!エラス
    ターセ溶液全処理して上記抗体にエラスターゼ倉%異的
    に吸着ゼしぬ、その吸着物全洗浄したのち、溶離剤とし
    てアルカリ性溶液を用いてエラスターゼを溶ll#する
    ことt%徴とするエラスターゼの精製法。
JP19834381A 1981-12-11 1981-12-11 エラスタ−ゼの精製法 Expired JPS5928395B2 (ja)

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JP19834381A JPS5928395B2 (ja) 1981-12-11 1981-12-11 エラスタ−ゼの精製法

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JPS58101692A true JPS58101692A (ja) 1983-06-16
JPS5928395B2 JPS5928395B2 (ja) 1984-07-12

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