JPH09505202A

JPH09505202A - プロスタグランジン受容体ｅｐ▲下１▼をコードするｄｎａ

Info

Publication number: JPH09505202A
Application number: JP7500054A
Authority: JP
Inventors: フオード−ハツチンソン，アンソニー; フアンク，コリン; グリジヨルジイク，リシヤール; ミーターズ，キヤスリーン
Original assignee: メルクフロストカナダインコーポレーテツド; バンダービルト・ユニバーシテイ
Priority date: 1993-05-26
Filing date: 1994-05-25
Publication date: 1997-05-27
Also published as: EP0700437B1; EP0700437A1; WO1994028125A2; CA2163755A1; US6440680B1; US5985597A; ES2106544T3; WO1994028125A3; CA2163755C; DK0700437T3; MX9403899A; ATE157398T1; DE69405230D1; GR3025402T3; DE69405230T2; CA2329473A1; CA2329473C; US6031079A; AU6839994A

Abstract

(57)【要約】新規のプロスタグランジン受容体を同定し、該受容体をコードするＤＮＡを単離し、精製し、配列決定し、宿主細胞内で発現させた。新規のプロスタグランジン受容体をコードする前記ＤＮＡ及び前記受容体を発現する宿主細胞を用いて、プロスタグランジン受容体のモジュレーターを選定する。

Description

【発明の詳細な説明】プロスタグランジン受容体ＥＰ₁をコードするＤＮＡ発明の背景プロスタグランジン（ＰＧ）Ｅ₂の生理的作用は、プロスタグランジンＥ受容体との相互作用を介して発揮される。ＥＰ受容体には３つのサブタイプ、ＥＰ₁ 、ＥＰ₂及びＥＰ₃がある（Ｃｏｌｅｍａｎら，１９８９の総説参照）。これら３つのサブタイプはいずれもＰＧＥ₂に対して大きな親和性を示すが、種々のアゴニスト及びアンタゴニストに対する各サブタイプの親和性には差異が見られ、その作用はそれぞれ異なる二次形質導入メカニズムを介して発揮される。例えば、ＥＰ₁受容体の活性化はＩＰ３及び細胞内カルシウムの増加に関連しており、ＥＰ₂受容体の活性化は細胞内環状ＡＭＰを増加させ、ＥＰ₃受容体の活性化は細胞内環状ＡＭＰを減少させ、次いで細胞内カルシウムを増加させる。これまでにクローニングされたこの種のものは、マウスＥＰ₂（Ｈｏｎｄａら，１９９３）並びにマウスＥＰ_3α及びＥＰ_3β（Ｓｕｇｉｍｏｔｏら，１９９２；Ｓｕｇｉｍｏｔｏら，１９９３）サブタイプだけである。ＥＰ₁受容体は通常、ヒト及び他の動物の小腸、腎臓、胃、筋肉、目、子宮及び気管を含む広範な細胞上に存在する。ＥＰ₁受容体タンパク質がプロスタグランジンと結合すると、細胞内カルシウムの濃度が増加する。組織はこのシグナルに基づいて、例えば筋肉収縮により応答する。発明の概要ＥＰ₁と称する新規のプロスタグランジン受容体タンパク質がヒト細胞から同定された。完全長ＥＰ₁タンパク質をコードするＤＮＡ分子を単離し、精製し、ヌクレオチド配列を決定した。ＥＰ₁をコードするＤＮＡを発現ベクター内にクローニングし、これらの発現ベクターを組換え宿主細胞内に導入すると、組換え宿主細胞が機能的ＥＰ₁受容体タンパク質を発現した。これらの新規のＥＰ₁タンパク質、ＥＰ₁をコードするＤＮＡ、発現ベクター及び組換えＥＰ₁を発現する組換え宿主細胞は、ＥＰ₁受容体活性のモジュレーターの選定に有用である。組換えＥＰ₁発現宿主細胞を使用するＥＰ₁受容体モジュレーターの同定方法も開示する。ＥＰ₁活性モジュレーターは、プロスタグランジン関連の疾患の治療及びＥＰ₁受容体に対するプロスタグランジンの作用の調節に有用である。図面の簡単な説明第１図は、ＥＰ₁受容体タンパク質をコードするＤＮＡの完全配列を示している。第２図は、ＥＰ₁受容体タンパク質の推定アミノ酸完全配列を示している。第３図Ａ及び第３図Ｂは、ｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁トランスフェクションＣＯＳ− Ｍ６膜への［³Ｈ］ＰＧＥ₂結合の競合を示している。［³Ｈ］ＰＧＥ₂結合アッセイは、第３図Ａ：０．０３ｎＭ〜１０μＭＰＧＥ₂（△），ＰＧＥ₁（■），ＰＧＥ_2α（□），ＰＧＤ₂（●）、第３図Ｂ：３ｎＭ〜１００μＭＡＨ６８０９（○），ＳＣ１９２２０（▲）及びＢｕｔａｐｒｏｓｔ（◇）の存在下で、「方法」の説明に記載のように実施した。Ｂｕｔａｐｒｏｓｔ及びＡＨ６８０９はＭｉｌｅｓＩｎｃ．及びＧｌａｘｏＧｒｏｕｐＲｅｓｅａｒｃｈＬｔｄ．の好意によるものである。第４図Ａ〜第４図Ｅは、アフリカツメガエル卵母細胞内でのプロスタグランジンＥ₂受容体の発現を示している。第４図Ａ：１μＭのＰＧＥ₂の浴潅流（ｂａｔｈｐｅｒｆｕｓｉｏｎ）で生起した内向Ｃａ²依存Ｃｌ^-流（下方への偏位として示される）。卵母細胞に５ｎｇのｐｃＤＮＡ−ＥＰ１（Ｂａｍ）を注入し、−６０ｍＶで電圧クランプした。第４図Ｂ〜Ｄ：エクオリンを導入した卵母細胞内でのＰＧＥ₂誘発光応答。エクオリン発光の強度は相対単位で示されており、バックグラウンド発光は典型的には０．５〜０．７単位であった。ＰＧＥ₂は各実験毎に示されている最終濃度で１０秒の時点で記録キュベット内に注入した。第４図Ｅ：光応答を種々の濃度のＰＧＥ₂及びＰＧＦ_2αで誘起した。各縦グラフは、４個のドナーに由来する１０〜１５個の卵母細胞のデータの平均値 ±ｓ．ｅ．ｍ．を示している。データは、１μＭのＰＧＥ₂を使用した時に観察された応答に対する百分率で表されている。発明の詳細な説明本発明は、ＥＰ₁とここに命名する新規のプロスタグランジン受容体をコードするｃＤＮＡに関する。本発明は、組換え発現プラスミド内に含まれているクローン化ＥＰ₁コーディングＤＮＡを発現する組換え宿主細胞にも関する。本発明は、ＥＰ₁受容体活性を調節する物質のスクリーニング方法にも関する。本発明のＤＮＡは、ＥＰ₁産生細胞から単離される。本明細書で使用するＥＰ₁という用語は、プロスタグランジン分子に特異的に結合できるＧタンパク質結合受容体を意味する。本発明は、ＥＰ₁産生細胞から単離され、やはりＥＰ₁と称する特定のプロスタグランジン受容体タンパク質にも関する。本明細書で使用するＥＰ₁受容体タンパク質という用語は、プロスタグランジン分子に特異的に結合できるＧタンパク質結合型受容体を意味する。ＥＰ₁を産生することができる哺乳動物細胞の非限定的具体例としては、小腸、腎臓、胃、筋肉、目、子宮及び気管に由来する細胞が挙げられる。ＥＰ₁を産生する形質転換哺乳動物細胞系の非限定的具体例としては、ＨＥＬ細胞が挙げられる。本発明のために好ましい細胞は例えばヒト正常腎臓細胞であり、最も好ましい細胞はヒト赤白血病細胞である。他の細胞及び細胞系もＥＰ₁ｃＤＮＡの単離に使用するのに適当であり得る。適当な細胞の選択は、細胞表面のＥＰ₁のスクリーニングによって実施し得る。ＥＰ₁活性検出方法は当業者によく知られており（）、受容体に特異的な放射性標識リガンドの結合を測定する。このアッセイでＥＰ₁活性を示す細胞は、ＥＰ₁ｃＤＮＡの単離に適当であり得る。ＥＰ₁ｃＤＮＡのクローニングには、種々の方法のうちの任意のものを使用し得る。これらの方法の非限定的具体例としては、適当な発現ベクター系内でＥＰ₁ 含有ｃＤＮＡライブラリーを構築した後、ＥＰ₁ｃＤＮＡを直接機能発現させる方法が挙げられる。別の方法として、バクテリオファージ又はプラスミドシャトルベクター内で構築したＥＰ₁含有ｃＤＮＡライブラリーを、ＥＰ₁タンパク質のアミノ酸配列から設計した標識オリゴヌクレオチドプローブでスクリーニングする方法もある。好ましい方法は、バクテリオファージ又はプラスミドシャトルベクター内で構築したＥＰ₁含有ｃＤＮＡライブラリーを、ＥＰ₁タンパク質をコードする部分的ｃＤＮＡでスクリーニングすることからなる。前記部分的ｃＤＮＡは、プロスタグランジンＥＰ₁受容体と相関している別のＧタンパク質結合受容体について知られているアミノ酸配列から縮重オリゴヌクレオチドプライマーを設計して、ＥＰ₁ＤＮＡフラグメントの特異的ＰＣＲ増幅を行うことにより得る。当業者には容易に理解されるように、別の種類のライブラリー、並びに別の細胞もしくは細胞種類から構築したライブラリーも、ＥＰ₁をコードするＤＮＡの単離に有用であり得る。別の種類のライブラリーの非限定的具体例としては、ヒト赤白血病細胞以外の細胞又は細胞系に由来するｃＤＮＡライブラリー、及びゲノムＤＮＡライブラリーが挙げられる。当業者には明らかなように、適当なｃＤＮＡライブラリーは、ＥＰ₁活性を有する細胞又は細胞系から製造し得る。ＥＰ₁ｃＤＮＡを単離するためのｃＤＮＡライブラリーの製造で使用する細胞又は細胞系の選択は、本発明で使用する前述の公知の標識リガンド結合アッセイを用いて、事前に細胞結合ＥＰ₁活性を測定することにより実施し得る。ｃＤＮＡライブラリーの製造は、当業者によく知られている標準的方法で実施できる。よく知られているｃＤＮＡライブラリー構築方法は、例えばＭａｎｉａｔｉｓ，Ｔ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｅ．Ｆ．，Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ，ＮｅｗＹｏｒｋ，１９８２）に記載されている。これも当業者には明らかであろうが、ＥＰ₁をコードするＤＮＡは適当なゲノムＤＮＡライブラリーからも単離し得る。ゲノムＤＮＡライブラリーの構築は、当業者によく知られている標準的方法で実施できる。よく知られているＤＮＡライブラリー構築方法は、例えばＭａｎｉａｔｉｓら，前出に記載されている。好ましい方法のいずれかによってＥＰ₁遺伝子をクローニングするためには、ＥＰ₁又は相同タンパク質のアミノ酸配列又はＤＮＡ配列が必要である。そのためには、ＥＰ₁タンパク質又は相同タンパク質を精製し、自動配列決定器で部分的アミノ酸配列を決定し得る。完全なアミノ酸配列を決定する必要はないが、部分的ＥＰ₁ＤＮＡフラグメントのＰＣＲ増幅のためには、アミノ酸６〜８個の二つの領域の直鎖配列を決定するとよい。適当なアミノ酸配列が同定されたら、これらをコードすることができるＤＮＡ配列を合成する。遺伝子コードは縮重であるため、特定のアミノ酸をコードするためには１個以上のコドンを使用し得、従ってアミノ酸配列は、一組の類似のＤＮＡオリゴヌクレオチドのうち任意のものでコードできる。前記一組のＤＮＡオリゴヌクレオチドのうち一つだけがＥＰ₁配列と同じであるが、その組の残りも不適正状態のＤＮＡオリゴヌクレオチドの存在下でもＥＰ₁ＤＮＡにハイブリダイズすることができる。不適正ＤＮＡオリゴヌクレオチドでも、ＥＰ₁をコードするＤＮＡの同定及び単離を可能にするのに十分な程度にＥＰ₁ＤＮＡにハイブリダイズし得る。好ましい方法のいずれかを用いて、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）ベースの技術及びｃＤＮＡライブラリースクリーニングを使用する２段階方法で、ＥＰ₁ をコードするｃＤＮＡクローンを単離する。第１段階では、精製ＥＰ₁又は相同タンパク質からのＮＨ₂末端及び内部アミノ酸配列情報を用いて、ＥＰ₁特異的ＤＮＡフラグメントの増幅のための縮重オリゴヌクレオチドプライマーを設計する。第２段階では、前記フラグメントをクローニングして、ヒト赤白血病細胞由来のｃＤＮＡライブラリーから完全長ｃＤＮＡを単離するためのプローブとして使用する。ＥＰ₁をコードするほぼ完全長のｃＤＮＡの配列を表１に示し、これをクローンＥＰ₁と名付けた。クローン化ｃＤＮＡに基づくＥＰ₁の推定アミノ酸配列を表２に示す。決定されたｃＤＮＡ配列を調べると、アミノ酸４０２個のタンパク質をコードする単一の大きな読取り枠の存在が明らかになる。前述の方法で得たクローン化ＥＰ₁ｃＤＮＡは、組換えＥＰ₁を産生するために、適当なプロモーターと他の適当な転写調節エレメントとを含む発現ベクター内への分子クローニングにより組換え的に発現し、原核又は真核宿主細胞内にトランスファーし得る。この種の操作の方法は、前出のＭａｎｉａｔｉｓらの文献に記載されており、当業者によく知られている。本明細書では、発現ベクターは、クローン化ＤＮＡの転写と、適当な宿主内で対応するｍＲＮＡの翻訳とに必要なＤＮＡ配列であると定義される。この種のベクターは、種々の宿主、例えば細菌、藍藻、植物細胞、昆虫細胞及び動物細胞内で真核生物ＤＮＡを発現させるのに使用し得る。特異的に設計したベクターは、細菌−酵母間又は細菌−動物細胞間のような宿主間のＤＮＡシャトリングを可能にする。適当に構築した発現ベクターは、宿主細胞内での自律複製のための複製起点と、選択可能マーカーと、限定数の有用な制限酵素部位と、高コピー数の可能性と、活性プロモーターとを含んでいなければならない。プロモーターは、ＲＮＡポリメラーゼをＤＮＡに結合させてＲＮＡ合成を開始させるＤＮＡ配列であると定義される。強力なプロモーターは、ｍＲＮＡを高頻度で開始させるプロモーターである。発現ベクターの非限定的具体例としては、クローニングベクター、修飾クローニングベクター、特異的に設計したプラスミド又はウイルスが挙げられる。哺乳動物細胞内で組換えＥＰ₁を発現するためには種々の哺乳動物発現ベクターを使用し得る。組換えＥＰ₁の発現に適当であり得る市販の哺乳動物発現ベクターの非限定的具体例としては、ｐＭＣ１ｎｅｏ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）、ｐＸＴ１（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）、ｐＳＧ５（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）、ｐｃＤＮＡＩ、ｐｃＤＮＡＩａｍｐ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ＥＢＯ−ｐＳＶ２−ｎｅｏ（ＡＴＣＣ３７５９３）、ｐＢＰＶ−１（８−２）（ＡＴＣＣ３７１１０）、ｐｄＢＰＶ−ＭＭＴｎｅｏ（３４２−１２）（ＡＴＣＣ３７２２４）、ｐＲＳＶｇｐｔ（ＡＴＣＣ３７１９９）、ｐＲＳＶｎｅｏ（ＡＴＣＣ３７１９８）、ｐＳＶ２−ｄｈｆｒ（ＡＴＣＣ３７１４６）、ｐＵＣＴａｇ（ＡＴＣＣ３７４６０）及びＩＺＤ３５（ＡＴＣＣ３７５６５）が挙げられる。ＥＰ₁をコードするＤＮＡは、宿主細胞内での発現のために発現ベクター内にクローニングしてもよい。宿主細胞は原核細胞又は真核細胞であり得、非限定的具体例としては細菌、酵母、哺乳動物細胞、例えばヒト、ウシ、ブタ、サル及び齧歯類の細胞系、並びに昆虫細胞、例えばショウジョウバエ由来細胞系が挙げられる。適当であり得る市販の哺乳動物由来細胞系の非限定的具体例としては、ＣＶ−１（ＡＴＣＣＣＣＬ７０）、ＣＯＳ−１（ＡＴＣＣＣＲＬ１６５０）、ＣＯＳ−７（ＡＴＣＣＣＲＬ１６５１）、ＣＨＯ−Ｋ１（ＡＴＣＣＣＣＬ６１）、３Ｔ３（ＡＴＣＣＣＣＬ９２）、ＮＩＨ／３Ｔ３（ＡＴＣＣＣＲＬ１６５８）、ＨｅＬａ（ＡＴＣＣＣＣＬ２）、Ｃ１２７Ｉ（ＡＴＣＣＣＲＬ１６１６）、ＢＳ−Ｃ−１（ＡＴＣＣＣＣＬ２６）及びＭＲＣ−５（ＡＴＣＣＣＣＬ１７１）が挙げられる。発現ベクターは、非限定的具体例として例えば形質転換、トランスフェクション、プロトプラスト融合法及び電気穿孔法のような種々の方法のいずれかを用いて、宿主細胞内に導入し得る。発現ベクター含有細胞を個々に分析して、その細胞がＥＰ₁タンパク質を産生するか否かを決定する。ＥＰ₁発現細胞の同定は、幾つかの方法、例えば非限定的具体例として抗ＥＰ₁抗体に対する免疫学的反応性、及び宿主細胞結合ＥＰ₁活性の存在等により実施し得る。ＥＰ₁ＤＮＡの発現は、ｉｎｖｉｔｒｏで製造した合成ｍＲＮＡを用いて実施してもよい。合成ｍＲＮＡは、種々の無細胞系、非限定的具体例として例えばコムギ胚芽抽出物及び網状赤血球抽出物中で効率的に翻訳できると共に、細胞ベースの系、非限定的具体例として例えばカエル卵母細胞内へのマイクロインジェクションでも効率的に翻訳できる。好ましいのはカエル卵母細胞へのマイクロインジェクションである。受容体活性及び／又はＥＰ₁タンパク質を最適レベルにするＥＰ₁ｃＤＮＡ配列を決定するために、例えば下記のようなＥＰ₁ｃＤＮＡ分子を構築し得る：ＥＰ₁ ｃＤＮＡの完全長読取り枠、並びに受容体タンパク質の特定ドメインのみもしくは該タンパク質の再構成ドメイン（ｒｅａｒｒａｎｇｅｄｄｏｍａｉｎ）をコードするｃＤＮＡの一部を含む種々の構築物。総ての構築物は、ＥＰ₁ｃＤＮＡの５’及び／又は３’非翻訳領域を全く含まないか、総て含むか、又は一部含むように設計し得る。ＥＰ₁活性及びタンパク質発現レベルは、これらの構築物を単独で又は組合わせて適当な宿主細胞内に導入した後で決定し得る。過渡アッセイ（ｔｒａｎｓｉｅｎｔａｓｓａｙ）での最適発現を生起させるＥＰ₁ｃＤＮＡカセットの決定に次いで、このＥＰ₁ｃＤＮＡ構築物を種々の発現ベクター（組換えウイルスを含む）、例えば哺乳動物細胞、植物細胞、昆虫細胞、卵母細胞、大腸菌及び酵母細胞用の発現ベクターにトランスファーする。哺乳動物細胞トランスフェクタントを、ＥＰ₁受容体活性レベル及びＥＰ₁タンパク質濃度の両方について、下記の方法でアッセイする。ＥＰ₁受容体活性の測定では、標識リガンドを細胞に直接導入し、ＥＰ₁発現細胞へのリガンドの特異的結合の量を決定する。受容体活性に関する結合アッセイは当業者に公知である（Ｆｒｅｙら，１９９３，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，２４４，ｐｐ２３９−２５０）。宿主細胞内のＥＰ₁タンパク質濃度は、種々の方法、例えば非限定的具体例としてイムノアフィニティ及び／又はリガンドアフィニティ法で定量する。ＥＰ₁ 特異的アフィニティビーズ又はＥＰ₁特異的抗体を用いて、³⁵Ｓ−メチオニン標識又は非標識ＥＰ₁タンパク質を単離する。標識ＥＰ₁タンパ久質はＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析する。非標識ＥＰ₁タンパク質は、ＥＰ₁特異的抗体を用いて、ウエスタンブロッティング、ＥＬＩＳＡ又はＲＩＡアッセイで検出する。宿主細胞内でのＥＰ₁の発現後、ＥＰ₁特異的リガンドに結合することができる活性形態のＥＰ₁を得るべく、ＥＰ₁タンパク質を回収し得る。使用し得るＥＰ₁ 精製操作は幾つか存在する。組換えＥＰ₁は、塩分別、イオン交換クロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、ヒドロキシルアパタイト吸収クロマトグラフィー及び疎水性相互作用クロマトグラフィーを単独で又は様々に組合わせて使用することにより、細胞溶解物及び抽出物から、又はならし培養培地から精製し得る。また、組換えＥＰ₁は、完全長発生期ＥＰ₁又はＥＰ₁のポリペプチドフラグメントに特異的なモノクローナル又はポリクローナル抗体を用いて形成したイムノアフィニティカラムの使用により、別の細胞タンパク質と分離する。ＥＰ₁に対する単一特異性抗体は、ＥＰ₁と反応する抗体を含む哺乳動物抗血清から精製するか、又はＫｏｈｌｅｒ及びＭｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ２５６：４９５−４９７（１９７５）に記載の方法を用いて、ＥＰ₁と反応するモノクローナル抗体として製造する。本明細書中の単一特異性抗体は、ＥＰ₁に対して均一結合特性を示す単一抗体種又は多重抗体種であると定義される。本明細書で使用する均一結合という用語は、抗体種が特定の抗原又はエピトープ、例えば前述のようにＥＰ₁と結合した抗原又はエピトープに結合する能力を意味する。ＥＰ₁特異的抗体は、マウス、ラット、テンジクネズミ、ウサギ、ヤギ、ウマ等のような動物を、免疫アジュバントを用いて又は用いずに、適当な濃度のＥＰ₁で免疫感作することにより形成する。最初の免疫感作の前に免疫前血清を採取する。各動物に、約０．１μｇ〜約１０００μｇのＥＰ₁を、許容し得る免疫アジュバントと組合わせて投与する。許容し得るアジュバントの非限定的具体例としては、フロイント完全アジュバント、フロイント不完全アジュバント、ミョウバン沈降物、Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍｐａｒｖｕｍ含有油中水滴エマルション及びｔＲＮＡが挙げられる。最初の免疫感作は、好ましくはフロイント完全アジュバント中の酵素を皮下（ＳＣ）、腹腔内（ＩＰ）又はこれら両方の経路で複数の部位に投与することによって実施した。各動物の採血を一定の時間間隔、好ましくは１週間おきに行い、抗体力価を測定した。動物には、最初の免疫感作後に、ブースター注射をしてもよく、又はしなくてもよい。ブースター注射をする動物には通常、フロイント不完全アジュバント中の同量のＥＰ₁を同一経路で投与する。ブースター注射は、最大力価が得られるまで約３週間の間隔で行った。各ブースター免疫感作から約７日後、又は単一免疫感作から約１週間後に動物の採血を行い、血清を回収し、アリコートを約−２０℃で貯蔵した。近交系マウス、好ましくはＢａｌｂ／ｃをＥＰ₁で免疫感作することにより、ＥＰ₁に反応するモノクローナル抗体（ｍＡｂ）を製造する。マウスは、ＩＰ又はＳＣ経路により、同量の前述のような許容し得るアジュバントに混入した約０．５ｍｌの緩衝液又は食塩水中の約１μｇ〜約１００μｇ、好ましくは約１０μ ｇのＥＰ₁で免疫感作する。好ましいアジュバントはフロイント完全アジュバントである。マウスは０日目に最初の免疫感作を行い、約３〜約３０週間休息させる。免疫マウスに、リン酸塩緩衝食塩水のような緩衝溶液中約１〜約１００μｇのＥＰ₁のブースター免疫を静脈内（ＩＶ）経路で一回以上行う。抗体陽性マウスのリンパ球、好ましくは脾臓リンパ球を、当業者に公知の標準的方法で免疫マウスから脾臓を除去することによって得る。脾臓リンパ球を、安定なハイブリドーマを形成させる条件下で、適当な融合相手、好ましくは骨髄腫細胞と混合して、ハイブリドーマ細胞を形成する。融合相手の非限定的具体例としては、マウス骨髄腫Ｐ３／ＮＳ１／Ａｇ４−１；ＭＰＣ−１１；Ｓ−１９４及びＳｐ２／０が挙げられる。好ましいのはＳｐ２／０である。抗体産生細胞及び骨髄腫細胞を分子量約１０００のポリエチレングリコール中約３０％〜約５０％の濃度で融合させる。融合したハイブリドーマ細胞を、当業者に公知の方法で、ヒポキサンチン、チミジン及びアミノプテリン添加ダルベッコ改質イーグル培地（ＤＭＥＭ）中で増殖させることにより選択する。約１４日目、１８日目及び２１日目に増殖陽性ウェルから上清を回収し、ＥＰ₁を抗原として用いて、固相イムノラジオアッセイ（ＳＰＩＲＡ）のようなイムノアッセイで抗体産生に関するスクリーニングを行う。培養液をＯｕｃｈｔｅｒｌｏｎｙ沈降アッセイでも検査して、ｍＡｂのイソタイプを調べる。抗体陽性ウェル由来のハイブリドーマ細胞を、ＳｏｆｔＡｇａｒＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，ＴｉｓｓｕｅＣｕｌｔｕｒｅＭｅｔｈｏｄｓａｎｄＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｋｒｕｓｅ及びＰａｔｅｒｓｏｎ編，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，１９７３に記載のＭａｃＰｈｅｒｓｏｎの軟寒天法のような方法によってクローニングする。マウス当たり約０．５ｍｌのプリスタンで感作したＢａｌｂ／ｃマウスに、約２×１０⁶〜約６×１０⁶のハイブリドーマ細胞を感作処理の約４日後に注入することにより、モノクローナル抗体をｉｎｖｉｖｏで産生する。細胞トランスファーの約８〜１２日後に腹水を採取し、モノクローナル抗体を当業者に公知の方法で精製する。十分な量の特異的ｍＡｂを得るために、ハイブリドーマを約２％のウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培地で増殖させることにより、抗ＥＰ₁ｍＡｂをｉｎｖｉｔｒｏで製造する。ｍＡｂは当業者に公知の方法で精製する。腹水又はハイブリドーマ培養液の抗体力価を、種々の血清学的又は免疫学的アッセイ、例えば非限定的具体例として、沈降、受動凝集、酵素結合イムノソルベント抗体（ＥＬＩＳＡ）法及びラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）法で測定する。類似のアッセイを使用して、体液又は組織及び細胞抽出物中のＥＰ₁の存在を検出する。当業者には明らかなように、単一特異性抗体を産生するための前述の方法は、ＥＰ₁ポリペプチドフラグメント又は完全長ＥＰ₁ポリペプチドに特異的な抗体の産生に使用し得る。抗体がアガロースゲルビーズ支持体との間で共有結合を形成するようにＮ−ヒドロキシスクシンイミドエステルで予備活性化したゲル支持体であるＡｆｆｇｅｌ−１０（Ｂｉｏｒａｄ）に抗体を加えることによりＥＰ₁抗体アフィニティカラムを形成する。抗体はスペーサーアームとのアミド結合を介してゲルに結合する。次いで、残りの活性化エステルを１ＭエタノールアミンＨＣｌ（ｐＨ８）で失活させる。カラムを水及び０．２３ＭグリシンＨＣｌ（ｐＨ２．６）で順衣洗浄して、非結合抗体又は外来タンパク質を除去する。次いでカラムをリン酸塩緩衝食塩水（ｐＨ７．３）中で平衡化し、ＥＰ₁又はＥＰ₁フラグメントを含む細胞培養上清又は細胞抽出物をゆっくりとカラムに通す。次いで、カラムを、光学密度（Ａ₂₈₀）がバックグラウンドに低下するまでリン酸塩緩衝食塩水で洗浄し、その後タンパク質を０．２３Ｍグリシン−ＨＣｌ（ｐＨ２．６）で溶離する。次いで精製ＥＰ₁タンパク質をリン酸塩緩衝食塩水に対して透析する。本発明のプロスタグランジン受容体をコードするＤＮＡの単離に適した方法の一つは、別のＧタンパク質結合受容体から得たアミノ酸及び／又はＤＮＡ配列情報を使用することからなる。別のプロスタグランジン受容体はＧタンパク質結合であることが知られているため、トランスメンブラン及び／又は細胞質ドメインといったような特定の領域又はドメインは、新規の受容体を単離するためのプローブを形成するのに十分な程度の相同を有すると予想される。プロスタグランジン及びロイコトリエンは、結合したＧタンパク質結合受容体を介して自己のシグナルを形質導入することが知られている。種々の組織中に存在する異なるＰＧＨ₂／トロンボキサン、Ａ₂、ＰＧＩ₂、ＰＧＥ₂、ＰＧＤ₂、ＰＧＦ_2α、ＬＴＢ₄及びＬＴＤ₄受容体は文献に記述されている。これらの受容体のうちの一部は可溶化され、部分的に精製きれ（Ｄｕｔｔａ−Ｒｏｙ，Ａ．Ｋ．ら，（１９８７）ＪＢＣ，２６２，ｐｐ．１２６８５；Ｔｓａｉ，Ａ．Ｌ．ら，（１９８９），ＪＢＣ，２６４，ｐｐ６１；１６８−Ｗａｔａｗａｂｅ，Ｔ．ら，（１９９０），ＪＢＣ，２６５，ｐｐ．２１２３７）、ヒト血小板ＴＸＡ₂受容体は明らかな均質性を示すまで精製された（Ｕｓｈｉｋｕｂｉ，Ｆ．ら，（１９８９），ＪＢＣ，２６４，ｐｐ．１６４９６）。精製トロンボキサン受容体は、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル上で約５７ｋＤａを中心とする極めて広いバンドを示した。部分的配列情報を得るのに十分なタンパク質が得られた。オリゴヌクレオチドプローブを用いて、ヒト巨核球細胞系（ＭＥＧ−０１）ｃＤＮＡライブラリーがスクリーニングされた（Ｈｉｒａｔａ，Ｍ．ら，（１９９１），Ｎａｔｕｒｅ，３４９，ｐｐ．６１７）。部分長ｃＤＮＡクローンが得られた。配列決定の結果、該ｃＤＮＡクローンは、推定上のＧタンパク質結合受容体のＣ末端側の半分をコードすることが判明した。このクローンを標識し、ヒト胎盤ライブラリーのスクリーニングに使用した。一つの完全長（約２．９ｋｂ）クローンは、５’及び３’側にそれぞれ広い非コーディング領域と、Ｍ_r約３７０００の３４３アミノ酸タンパク質をコードする１０２９塩基対の読取り枠とを含んでいた。予測された配列は、推定上の細胞外アミノ末端（２９残基）内の二つのＮ結合グリコシル化部位（Ａｓｎ−４及びＡｓｎ−１６）と、細胞外ループ１及び２内の保存Ｃｙｓ残基（Ｃｙｓ−１０５及びＣｙｓ−１８３）と、小さいアミン含有リガンドを有する受容体にとって必須であることが知られているトランスメンブラン３内に存在するＡｓｐ残基（Ｓｔｒｏｓｂｅｒｇ，Ａ．Ｄ．（１９９１），ＥＪＢ，１９６，ｐｐ．１）を除く、トランスメンブラン領域内の他の幾つかの保存残基とを含む７個のトランスメンブランＧ結合受容体の特性を示す。この配列は極めて短い予測された第三の細胞内ループ（２７残基）を有する。分子のこの部分はおそらく、ホスホリパーゼＣとの相互作用に関与し、その結果カルシウムイオン流束を変化させるＧタンパク質（Ｇ_q又はより大きいＧタンパク質）に結合し得る（Ｓｈｅｎｋｅｒ，Ａ．ら，（１９９１），ＪＢＣ，２６６，ｐｐ．９３０９．１７３−Ｍｏｒａｎ，Ｎ．ら，（１９９０），Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ，Ｓｕｐｐｌ．８２，抄録１８３０）。トロンボキサン受容体をコードする領域はＧ＋Ｃが極めて多い（７０％）。このｃＤＮＡを普通の変性条件下（９４〜９５℃）でＴａｑポリメラーゼを用いて胎盤又は血小板逆転写ＲＮＡから単離することは殆ど不可能であった。しかしながら、変性温度を９８℃に変え且つＶｅｎｔポリメラーゼ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ）を使用すると、完全ｃＤＮＡの増幅が可能になった。トロンボキサン受容体はアフリカツメガエル卵母細胞内で発現された。該受容体は、内在性シグナルトランスダクション成分と結合して、カルシウム活性化Ｃｌ^-流を発生させることができる。該Ｃｌ^-流は、Ｈｉｒａｔａ，ＭらによりＮａｔｕｒｅ，３４９，ｐｐ．６１７（１９９１）に記載の方法を用いて、電気生理学的測定により記録される。リガンドＳ−１４５を用いてトロンボキサン受容体ｃＤＮＡでトランスフェクションしたＣＯＳ−１細胞膜について結合検査が実施された（Ｈｉｒａｔａ，Ｍ．ら，前出）。我々は、トロンボキサン受容体ｃＤＮＡでトランスフェクションしたヒト初期腎臓２９３細胞及び膜におけるトロンボキサンアンタゴニストＳＱ−２９５４８のアフィニティ結合が大きく、最大結合が２〜３ｐｍｏｌ／ｍｇタンパク質であることも明らかにした。この発現レベルは、血小板膜におけるレベルの少なくとも５〜１０倍以上に相当する。トランスフェクション効率を１０％とみなして細胞当たりのベースで推算すると、約１０⁶結合部位／トランスフェクション細胞となった。これに対し、血小板上に存在する部位は約１３００である（Ｈｏｕｒａｎｉ，Ｓ．Ｍ．Ｏ．ら，（１９９１），Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｒｅｖ．，４３，ｐｐ．２４３）。ノーザンブロット分析で、ＭＥＧ−０１細胞系、胎盤及び肺内の２．８ｋｂバンドの存在が明らかにされた。報告されている長い暴露時間（１２日）及び検出可能シグナルを見るために導入されたポリ（Ａ）＋ＲＮＡの量（２０μｇ）に基づいて推定すると、ｍＲＮＡはおそらくあまり多くない部類に入る。相同スクリーニングによる別のエイコサノイド受容体遺伝子の単離へのアプローチが、これらの受容体が一次構造で相関しているという想定のもとに行われた（Ｓｕｇｉｍｏｔｏ，Ｙ．ら，（１９９２），ＪＢＣ，２６７，ｐｐ．６４６３）。これらの受容体はＧタンパク質型であるため、トランスメンブラン領域及び細胞質ドメインに存在すると考えられる相同領域が存在する。従って、プロスタグランジン受容体と相関している種々の既知のＧタンパク質結合受容体は、相同を有すると思われる所期の受容体タンパク質コーディングＤＮＡの領域、例えばトランスメンブラン領域に対するＤＮＡプローブに利用し得る。この受容体のトランスメンブラン５〜７領域の大部分をコードする０．３ｋｂトロンボキサン受容体ｃＤＮＡフラグメントを用いて、４０２アミノ酸受容体をコードする、以後ＥＰ₁と称する１．４ｋｂｃＤＮＡクローン（ＥＰ₁）を、ヒト赤白血病細胞ｃＤＮＡライブラリーから単離した。このタンパク質は元々未知の「ＰＧＱ受容体」と呼ばれていたものであるが、以後はＥＰ₁受容体と称する。該タンパク質は２個の潜在的Ｎ結合グリコシル化部位（Ａｓｎ−８及びＡｓｎ −２５）を有し、第三の細胞内ループ及びカルボキシ末端と予測される部分には、塩基性残基（主にアルギニン）及びセリン残基の量が極めて多い。他の多くのＧタンパク質受容体と同様に、ＥＰ₁受容体は幾つかの共通の特徴を有する。第一に、推定上の細胞外アミノ末端に２個の潜在的Ｎ結合グリコシル化部位（Ａｓｎ−８及びＡｓｎ−２５）が存在する。第二に、エキソフェイシャル（ｅｘｏｆａｃｉａｌ）ループ１及び２内に保存システイン残基が存在する。第三の細胞質ループは比較的大きく（約７０残基）、塩基性アミノ酸の数が極めて多い（１５Ａｒｇ、３Ｈｉｓ）。実際、該タンパク質の非トランスメンブランセグメント全体を通して、塩基性残基への大きな偏りが見られる。Ｃ末端及び第三の細胞質ループ全体を通して、複数のセリン残基と、タンパク質キナーゼホスホリル化部位となり得る部分とが存在する。ＥＰ₁ 受容体は、カチオンアミノ含有リガンドに結合する受容体の特徴であるトランスメンブラン３内のアスパラギン酸残基を含んでいないが、トランスメンブラン７内の総てのエイコサノイド受容体内に存在する保存アルギニン（位置３３８）を有する。この領域は、エイコサノイド受容体の間で最も高度に保存されている。ＥＰ₁受容体はヒトトロンボキサン受容体及びマウスＥＰ₃受容体に非常に近い。該受容体はまた、同じ大きさ（４０２アミノ酸）を有するβ₃アドレナリン受容体に対してもある程度の相同を有する。本発明の新規のプロスタグランジン受容体は、受容体活性を調節する化合物を選定するためのアッセイ操作で使用するのに適している。本明細書中の受容体活性の調節には受容体の阻害又は活性化が含まれ、また、受容体活性の正常な調整作用をもたらすような、直接的又は間接的作用も含まれる。受容体活性を調節する化合物としては、アゴニスト、アンタゴニスト及び受容体活性の調整に直接又は間接に作用する化合物が挙げられる。本発明のプロスタグランジン受容体は、受容体モジュレーターを選定するためのアッセイ操作で使用すべく、野生供給源及び組換え供給源の両方から得られる。プロスタグランジン受容体モジュレーターを選定するためのアッセイ操作は通常、本発明のプロスタグランジン受容体と、推定上のプロスタグランジン受容体モジュレーターを含む検査化合物又は試料とを含む。検査化合物又は試料は、例えば、野生もしくは組換え型の精製受容体タンパク質、野生もしくは組換え型の受容体産生細胞の継代細胞フラクション、及び／又は野生もしくは組換え型の受容体発現完全細胞上で直接検査し得る。検査化合物又は試料は、既知の標識又は非標識受容体リガンドの存在下又は不在下で受容体に加え得る。検査化合物又は試料の調節活性は、例えば、検査化合物又は試料が受容体に結合する能力、受容体を活性化する能力、受容体活性を阻害する能力、受容体への別の化合物の結合を阻害する又は促進する能力を分析し、受容体の調整を修飾し、又は細胞内活性を修飾することによって測定し得る。ＥＰ₁受容体活性のモジュレーターの選定は、ＥＰ₁受容体活性が関与する疾患状態の治療に有用である。別の化合物が、受容体の活性を刺激又は阻害するために有用であり得る。これらの化合物は抗炎症剤及び解熱剤として有用であり得る。この種の化合物は、ＥＰ₁受容体の活性化が細胞増殖、細胞悪性形質転換の誘起又は転移性腫瘍成長を引き起こす疾病の治療に有用であり得、従って結腸癌のような癌の予防及び／又は治療に有用であり得る。ＥＰ₁をコードとするＤＮＡ分子の単離及び精製は、ＥＰ₁受容体の組織分布の確立、並びにＥＰ₁受容体活性を調節する化合物の選定方法の確立に有用であり得る。以下の実施例は本発明を明らかにするためのものであり、本発明の範囲を限定するためのものではない。実施例１トロンボキサン受容体ｃＤＮＡプローブの製造及びＥＰ₁ｃＤＮＡのクローニングヒトトロンボキサン受容体ｃＤＮＡフラグメントをＰＣＲにより逆転写胎盤完全ＤＮＡから単離した。ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒＣｅｔｕｓ反復加熱装置で９８℃−３０秒；６２℃−１分；７２℃−１分を４０回繰り返して増幅するために、２５ｐｍｏｌの上流プライマー５’ＣＴＧＴＣＣＴＴＣＣＴＧＣＴＧＡＡＣＡＣＧＧＴＣＡＧＣＧＴＧ３’（配列番号１）及び下流プライマー５’−ＧＣＧＧＣＧＧＡＡＣＡＧＧＡＴＡＴＡＣＡＣＣ−３’（配列番号２）を、１μｇのｃＤＮＡ、ｄＮＴＰ（２００μＭ）及びＶｅｎｔポリメラーゼ（１単位、ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）と共に、５０μｌ反応量（１０ｍＭＫＣｌ／１０ｍＭ（ＮＨ₄）₂ＳＯ₄／２０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８．８）／２ｍＭＭｇＳＯ₄ ／０．１％（ｖ／ｖ）トリトンＸ−１００／１００μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン）で加えた。３１２塩基対生成物（ヌクレオチド６２８−９３９、Ｈｉｒａｔａら、１９９１、前出）がアガロースゲル電気泳動及びＧｅｎｅＣｌｅａｎ精製（Ｂｉｏｌ０１，ＬａＪｏｌｌａ，ＣＡ）で単離された。 λｇｔ１１ベクター中で構築したヒト赤白血病（ＨＥＬ）細胞ｃＤＮＡライブラリーを、ストリンジェンシーの低い条件下（３０％ホルムアミド／５×ＳＳＰＥ／５×デンハート溶液／０．１％ＳＤＳ／１００μｇ／ｍｌ音波処理サケ精子ＤＮＡ）、４２ ℃で一晩にわたり、³²Ｐ標識トロンボキサン受容体ｃＤＮＡフラグメントでスクリーニングした。フィルターを０．１％ＳＤＳ含有２×ＳＳＣで室温で手短に洗浄し、次いで０．１％ＳＤＳ含有１×ＳＳＣを用いて５５℃で洗浄した（２×３０分）。一つの正相（ｐｏｓｉｔｉｖｅｐｈａｓｅ）クローン（λ−ＴｘＲ１）をプラーク精製し、ＤＮＡをプレート溶解物法で製造した（Ｓａｍｂｒｏｏｋら，１９８９ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，第２版，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．）。ｃＤＮＡのサブクローニング及び配列決定クローンλ−ＴｘＲ１をＥｃｏＲＩで消化した結果、４．０ｋｂ、１．７ｋｂ及び１．４ｋｂの大きさの３個の挿入物を含んでいることが判明した。サザンブロット分析で、１．４ｋｂ挿入物のみがトロンボキサン受容体ｃＤＮＡプローブとハイブリダイズすることが明らかにされた。Ｔａｑポリメラーゼ（ＧｅｎｅＡＴＡＱシステム、Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を用いて７０℃で配列決定すべく、１．４ｋｂＥｃｏＲＩフラグメント（ＥＰ₁）及び種々の制限フラグメントをＭ１３ｍｐ１８及びＭ１３ｍｐ１９ベクター内にサブクローニングした。ＤＮＡは、Ｍ１３普遍プライマー又は既知の配列から形成したプライマーを用いて、少なくとも２回、両方の鎖について別々に完全に配列決定された。ＥＰ₁のヌクレオチド配列を表１に示す。コードされたタンパク質のアミノ酸配列を表２に示す。１．４ｋｂフラグメント（ＥＰ₁；第１図）は、配列決定の結果、ヒトトロンボキサン受容体ｃＤＮＡと大きな配列相同を有することが判明し、Ｇタンパク質結合受容体の特徴と推測されているヘプタヘリカル構造が明らかにされた。予想された相対分子量４１，８５８を有する４０２アミノ酸ポリペプチドを形成するであろう長い読取り枠（１２０６塩基対）が決定された。開始コドンとされるＡＴＧは、翻訳開始のためのＫｏｚａｋ共通配列（Ｋｏｚａｋ，１９８９，Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１０８，ｐｐ２２９−２４１）に適合する。予想された開始コドンの６０塩基対上流に枠内（ｉｎｆｒａｍｅ）ＴＧＡ停止コドンを含む７４塩基対の５’非翻訳配列が存在する。これらの配列には更に一つの枠外ＡＴＧも、予想された開始点の直後に終結する４８塩基対読取り枠として存在する。ＥＰ₁ｃＤＮＡは、１９残基の短いポリ（Ａ）連鎖の１９塩基対上流にポリアデニル化シグナルＡＡＴＡＡＡを含む約１１２塩基対の極めて短い３’非翻訳領域を含む。実施例２発現ベクターの構築１．４ｋｂＥｃｏＲＩ挿入物をｐｃＤＮＡ１（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）のＥｃｏＲＩ部位にサブクローニングし、方向が正しいことをＰｓｔＩ消化によって確認した。５’非翻訳領域並びに上流ＡＴＧを除去するために、ＥＰ₁をＡｐａＩで開裂し、この１．２５ｋｂＡｐａＩフラグメントを精製した。キナーゼ化オリゴヌクレオチド５’−ＣＴＡＧＣＧＧＡＴＣＣＣＧＣＣＡＴＧＡＧＣＣＣＴＴＧＣＧＧＧＣＣ−３（配列番号５）及びオリゴヌクレオチド５’−ＣＧＣＡＡＧＧＧＣＴＣＡＴＧＧＣＧＧＡＴＣＣＧ−３’（配列番号６）をアニーリングし、ＡｐａＩフラグメントに連結した。連結後、試料をＢａｍＨＩでの開裂にかけ、精製１．３ｋｂバンドをＢａｍＨＩ消化ｐｃＤＮＡ１に連結した。末端変更ｃＤＮＡ及び方向をＤＮＡ配列決定によって確認した。実施例３大腸菌発現ベクター内へのＥＰ₁ｃＤＮＡのクローニング非限定的具体例としてｐＥＴシリーズ（Ｎｏｖａｇｅｎ）のような大腸菌発現ベクター内にＥＰ₁発現カセットをトランスファーして、大腸菌内で組換えＥＰ₁ を産生する。ｐＥＴベクターはＥＰ₁を、厳密に調節されたバクテリオファージＴ７プロモーターの制御下におく。誘導ｌａｃプロモーターによって制御されるＴ７ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子の染色体コピーを含む大腸菌宿主内への該構築物のトランスファーに次いで、適当なｌａｃ基質（ＩＰＴＧ）を培養物に加えると、ＥＰ₁の発現が誘発される。発現ＥＰ₁のレベルを前述のアッセイで測定する。ＥＰ₁に関する読取り枠全体をコードするｃＤＮＡを、ｐＥＴ１１ａのＮｄｅＩ部位に挿入する。正の方向の構築物を配列解析によって同定し、発現宿主株ＢＬ２１の形質転換に使用する。次いで、形質転換体を用いて、ＥＰ₁タンパク質を製造するための培養物に接種する。培養物は、当業者に組成が知られているＭ９又はＺＢ培地で増殖させ得る。約ＯＤ₆₀₀＝１．５まで増殖した後、１ｍＭＩＰＴＧを用いて３７℃で３時間にわたりＥＰ₁の発現を誘発する。これらの細胞に由来する不溶性封入体フラクション中に、真のＥＰ₁酵素活性が発見され得る。５０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８）及び１００ｍＭジチオトレイトールを含む緩衝液中の５Ｍグアニジン−ＨＣｌで、封入体フラクションから可溶性ＥＰ₁を抽出する。１００倍容の２５ｍＭＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．５）、５ｍＭジチオトレイトール、１０％スクロースに対する透析後に、前記抽出物から活性ＥＰ₁が得られる。実施例４アフリカツメガエル卵母細胞マイクロインジェクションベクターによるＥＰ₁ｍＲＮＡのｉｎｖｉｔｒｏ翻訳及び哺乳動物細胞内での発現ＥＰ₁ｃＤＮＡ構築物をｉｎｖｉｔｒｏ転写ベクター（ｐＧＥＭシリーズ、Ｐｒｏｍｅｇａ）に連結して、合成ｍＲＮＡを製造する。合成ｍＲＮＡは、ＥＰ₁ｍＲＮＡをコードする二本鎖ＤＮＡをバクテリオファージプロモーター含有プラスミドベクター内にクローニングし、クローン化ＥＰ₁ コーディングＤＮＡを含むプラスミドベクターを線状とし、プラスミドベクター上のバクテリオファージプロモーターを特異的に認識するバクテリオファージからＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼを用いてクローン化ＤＮＡをｉｎｖｉｔｒｏ転写することにより、十分な量で製造される。バクテリオファージＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼによって認識されるバクテリオファージプロモーターを含むプラスミドベクターは様々なものが存在し、非限定的具体例としては、プラスミドｐＳＰ６４、ｐＳＰ６５、ｐＳＰ７０、ｐＳＰ７１、ｐＳＰ７２、ｐＳＰ７３、ｐＧＥＭ−３Ｚ、ｐＧＥＭ−４Ｚ、ｐＧＥＭ−３Ｚｆ、ｐＧＥＭ−５Ｚｆ、ｐＧＥＭ−７Ｚｆ、ｐＧＥＭ−９Ｚｆ及びｐＧＥＭ−１１Ｚｆが挙げられる。これら一連のプラスミドは総てＰｒｏｍｅｇａから市販されている。ＥＰ₁ＤＮＡのクローニングに適している、ベクター上の使用可能な制限エンドヌクレアーゼクローニング部位のうちの一つ以上を使用して、ＥＰ₁をコードする二本鎖ＤＮＡをベクター含有バクテリオファージプロモーター内に正確な向きでクローニングする。連結したＥＰ₁ＤＮＡを有するベクターを用いて細菌を形質転換し、正確な向きのＥＰ₁ＤＮＡを有するベクターの存在についてクローン単離体を分析する。正確な向きのＥＰ₁コーディングＤＮＡを含むベクターが同定され単離されたら、これをＥＰ₁転写単位よりも下流の部位において、該単位を破損しないように制限エンドヌクレアーゼで開裂することにより線状化する。線状化プラスミドを単離し、精製し、ＥＰ₁ｍＲＮＡのｉｎｖｉｔｒｏ転写の鋳型として使用する。次いで鋳型ＤＮＡを、ＥＰ₁ｍＲＮＡ形成ＤＮＡ鋳型の転写を可能にする反応混合物中で、バクテリオファージ特異的ＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼと混合する。使用可能なバクテリオファージ特異的ＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼは幾つか存在し、非限定的具体例としてＴ３、Ｔ７及びＳＰ６ＲＮＡポリメラーゼが挙げられる。次いで、合成ＥＰ₁ｍＲＮＡを単離し、精製する。ｍＲＮＡの安定性を改善するために、５’末端キャップ構造及び３’ポリＡテールを含むｍＲＮＡを合成すると有利であり得る。キャップ構造、すなわち７− メチルグアノシンは、ＤＮＡ鋳型との反応混合物に７−メチルグアノシンを加えるだけでｍＲＮＡの５’末端に組込み得る。ＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼは、ｍＲＮＡの合成中にキャップ構造を５’末端に組み込む。ポリＡテールは多くのｃＤＮＡ中に天然に存在するが、ポリＡテールをコードするＤＮＡ配列をＤＮＡ鋳型の３’末端に挿入することにより、ｍＲＮＡの３’末端に簡単に付加できる。単離し精製したＥＰ₁ｍＲＮＡは、無細胞系、例えば非限定的具体例としてウサギ網状赤血球溶解物及びコムギ胚芽抽出物（どちらもＰｒｏｍｅｇａ及びＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＮｕｃｌｅａｒから市販されている）を用いて、又は細胞ベースの系、例えば非限定的具体例としてアフリカツメガエル卵母細胞へのマイクロインジェクションを用いて翻訳する。好ましくいのはアフリカツメガエル卵母細胞へのマイクロインジェクションである。アフリカツメガエル卵母細胞に、ＥＰ₁タンパク質の産生に十分な量の合成ＥＰ₁ｍＲＮＡをマイクロインジェクションする。マイクロインジェクションにかけた卵母細胞をインキュベートしてＥＰ₁ｍＲＮＡの翻訳を生起させ、ＥＰ₁タンパク質を産生させる。前記合成ｍＲＮＡは標準的方法［Ｇｕｒｄｏｎ，Ｊ．Ｂ．及びＷｉｃｋｅｎｓ，Ｍ．Ｄ．，ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌ．１０１：３７０−３８６（１９８３）］でアフリカツメガエル卵母細胞（段階５〜６）内に注入する。卵母細胞を採取し、後述のようにＥＰ₁発現について分析する。実施例５アフリカツメガエル卵母細胞内でのｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁発現標準的外科方法を用いてメス成体Ｘｅｎｏｐｕｓｌａｅｖｉｓから卵母細胞を採取した（Ｃｏｌｍａｎ，Ａ．，１９８４，ＴｒａｎｓｒｉｐｔｉｏｎａｎｄＴｒａｎｓｌａｔｉｏｎ − ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＡｐｐｒｏａｃｈ，ＩＲＬＰｒｅｓｓ）。卵胞細胞を除去するために、Ｃａ²⁺無含有ＮＤ９６溶液（ＮａＣｌ９６ｍＭ、ＫＣｌ２ｍＭ、ＭｇＣｌ₂ １ｍＭ、ＨＥＰＥＳ５ｍＭ、ピルビン酸Ｎａ２．５ｍＭ、テオフィリン０．５ｍＭ、ゲンタマイシン５０ｍｇ／ｍｌ、＋１．８ＣａＣｌ₂、ｐＨ７．６）中で新しく調製したコラゲナーゼ（２ｍｇ／ｍｌ，タイプ２，ＷｏｒｔｈｉｎｇｔｏｎＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌＣｏｒｐ．，Ｆｒｅｅｈｏｌｄ，ＮＪ）で卵母細胞を２〜３時間処理した。卵胞除去した段階５〜６の卵母細胞を選択し、ＮＤ９６溶液中に維持した。卵母細胞核に１〜５ｎｇのｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁又はｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁（Ｂａｍ）を注入し、次いで１８℃で４８時間インキュベートし、その後アゴニストを投与した。アゴニスト誘導Ｃａ²⁺依存性Ｃｌ^-流、又はＣａ² ⁺ 特異的発光タンパク質エクオリン（Ｊ．Ｂｌｉｎｋｓ，ＦｒｉｄａｙＨａｒｂｏｒＰｈｏｔｏｐｒｏｔｅｉｎｓ，ＷＡ）注入卵母細胞における発光を測定することにより、機能活性を決定した（Ｇｉｌａｄｉ及びＳｐｉｎｄｅｌ１９９１Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１０，ｐｐ７４４−７４７）。電気生理学的アッセイのために、卵母細胞を０．５ｍｌ潅流チャンバ内に配置し、ＴｕｒｂｏＴＥＣ０１Ｃ増幅器（ＮＰＩＩｎｓｒｕｍｅｎｔｓ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて−６０ｍＶに電圧を固定した（３ＭＣＫｌを充填した抵抗０．５〜２．０ＭΩの微小電極を使用）。リガンド含有溶液を潅流し、電流応答を記録した。光測定アッセイのために、エクオリン導入卵母細胞（１００ｎｇ／卵母細胞）を０．４ｍｌのＮＤ９６を入れたキュベット内に個々に配置し、リガンドの添加によって誘起した発光をＢｉｏ−Ｏｒｂｉｔ１２５１ルミノメーター（ＦｉｓｈｅｒＳｃｉ．Ｌｔｄ．）で記録した。電気生理学的アッセイ及びエクオリン発光アッセイを用いて、ｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁注入卵母細胞内の機能活性を測定した。電気生理学的アッセイでは、１μＭ〜１０ｍＭのＰＧＥ₂の潅流の結果、ｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁注入卵母細胞内に明らかな電流応答が観察された。これは、このクローンが、ホスファチジルイノシトール／Ｃａ²⁺シグナル経路に結合した機能的ＥＰ₁受容体をコードすることを示唆するものである（第４図Ａ）。このような応答は、Ｈ₂Ｏを注入した対照卵母細胞には見られなかった。リガンドに誘発される細胞内Ｃａ²⁺ の増加も、エクオリン導入卵母細胞内の発光によって直接示された（第４図Ｂ）。エクオリン発光アッセイで得られた用量応答依存性は、発現された受容体のアゴニストとしてＰＧＥ₂がＰＧＦ_2αより強力であることを意味するものであった（第４図Ｃ）。実施例６哺乳動物発現ベクター内へのＥＰ₁ｃＤＮＡのクローニングＥＰ₁ｃＤＮＡ発現カセットを、適当な制限エンドヌクレアーゼ部位で、強力な普遍的哺乳動物プロモーターを含む下記のベクターに連結する：ｐＢＣ１２ＢＩ［Ｃｕｌｌｅｎ，Ｂ．Ｒ．，ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌ．１５２：６８４−７０４，１９８８］、並びにｐＥＥ１２（ＣｅｌｌＴｅｃｈＥＰ３３８，８４１号）及びその誘導体ｐＳＺ９０１６−１及びｐ９０１９。９０１９は、ｈＣＭＶＩＥプロモーターと、ポリリンカーと、ＳＶ４０ポリＡエレメントとを含み、ＳＶ４０初期プロモーターによって操作されるジヒドロ葉酸レダクターゼの突然変異遺伝子（ｍＤＨＦＲ）（Ｓｉｍｏｎｓｅｎ，Ｃ．Ｃ．及びＬｅｖｉｎｓｏｎ，Ａ．Ｄ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．ＳｃｉＵＳＡ８０：２４９５−２４９９［１９８３］）からなる選択可能マーカー／増幅システムを有する哺乳動物発現ベクターの構築を表す。ＳＶ４０ポリアデニル化配列を、ｐＤ５（Ｂｅｒｋｅｒ及びＳｈａｒｐ，Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄＲｅｓ．１３：８４１−８５７［１９８５］）を鋳型として用いて、プライマー１３９７８ −１２０及び１３９７７８−１２１により決定されるＰＣＲ反応で形成する。得られた０．２５ＫｂＰＣＲ生成物をＣｌａＩ及びＳｐｅＩで消化し、同様に消化したｐＥＥ１２の６．７Ｋｂフラグメントに連結する。得られたプラスミドをＢｇｌII及びＳｆｉＩで消化して、ＳＶ４０初期プロモーターの３’部分とＧＳｃＤＮＡとをベクターから切り離す。プラスミドｐＦＲ４００（Ｓｉｍｏｎｓｅｎ，Ｃ．Ｃ．及びＬｅｖｉｎｓｏｎ，Ａ．Ｄ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８０：２４９５−２４９９［１９８３］）から分離した０．７３ＫｂＳｆｉＩ−ＸｈｏIIフラグメントを前述の５．６Ｋｂベクターに連結し、ＳＶ４０初期プロモーターを再構築し、ｍｄＨＦＲ遺伝子を挿入する。このプラスミドをｐ９０１９と名付ける。ｐＳＺ９０１６−１は、ＨＩＶＬＴＲがｈｕＣＭＶＩＥプロモーターにとって代わっている以外は、ｐ９０１９と同じである。このベクターは、ｐ９０１９をＸｂａＩ及びＭｌｕＩで消化してｈｕＣＭＶＩＥプロモーターを除去することにより構築される。残基−１１７〜＋８０（ＨＩＶ−１ＬＴＲの部分を含むベクターｐＣＤ２３内に存在する（Ｃｕｌｌｅｎ，Ｃｅｌｌ４６：９７３［１９８６］）のＨＩＶＬＴＲプロモーターを、生成物の末端に５’側のＭｌｕＩ及びＳｐｅＩ制限部位を付加したオリゴヌクレオチドプライマーを用いて、プラスミドｐＣＤ２３からＰＣＲ増幅する。ＨｉｎｄIII及びＸｂａＩ部位は３’側に付加されている。得られた０．２ｋｂＰＣＲ生成物を酵素ＭｌｕＩ及びＸｂａＩで消化した後、フラグメントをアガロースゲルで精製し、プロモーターを含まない４．３ＫｂＤＮＡフラグメントに連結して、ベクターｐＳＺ９０１６−１を形成する。プロモーターに対して正しい向きにあるＥＰ₁ｃＤＮＡを含むカセットをプロモーターの適当な制限部位３’に連結し、制限部位マッピング及び／又は配列決定によって同定する。これらのｃＤＮＡ発現ベクターを種々の宿主細胞、例えば非限定的具体例としての［ＣＯＳ−７（ＡＴＣＣ♯ＣＲＬ１６５１）、ＣＶ−１ｔａｔ［Ｓａｃｋｅｖｉｔｚら，Ｓｃｉｅｎｃｅ２３８：１５７５（１９８７）］，２９３，Ｌ（ＡＴＣＣ♯ＣＲＬ６３６２）］に、標準的方法、例えば非限定的具体例として電気穿孔法又は化学的処理（カチオンリポソーム、ＤＥＡＥデキストラン、リン酸カルシウム）によって導入する。トランスフェクションした細胞及び細胞培養抽出物を回収して、後述のようにＥＰ₁発現について分析し得る。哺乳動物過渡的発現に使用した総てのベクターは、ＥＰ₁を発現する安定な細胞系の確立に使用できる。発現ベクター内にクローニングした変更していないＥＰ₁ｃＤＮＡ構築物は、宿主細胞を細胞内ＥＰ₁タンパク質を作るようにプログラムすると推測される。トランスフェクション宿主細胞の非限定的具体例としては、ＣＶ−１−Ｐ［Ｓａｃｋｅｖｉｔｚら，Ｓｃｉｅｎｃｅ２３８：１５７５（１９８７）］、ｔｋ−Ｌ［Ｗｉｇｌｅｒら，Ｃｅｌｌ１１：２２３（１９７７）］、ＮＳ／０及びｄＨＦｒ−ＣＨＯ［Ｋａｕｆｍａｎ及びＳｈａｒｐ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５９：６０１（１９８２）］が挙げられる。ＥＰ₁ｃＤＮＡを含む任意のベクターと、薬剤選択性プラスミド、例えば非限定的具体例としてＧ４１８、アミノグリコシドホスホトランスフェラーゼ、ｐＬＮＣＸ［Ｍｉｌｌｅｒ，Ａ．Ｄ．及びＲｏｓｍａｎ，Ｇ．Ｊ．，ＢｉｏｔｅｃｈＮｅｗｓ７：９８０−９９０（１９８９）］；ハイグロマイシン、ハイグロマイシン−Ｂホスホトランスフェラーゼ，ｐＬＧ９０［Ｇｒｉｔｚ，Ｌ．及びＤａｖｉｅｓ，Ｊ．，ＧＥＮＥ２５：１７９（１９８３）］、ＡＰＲＴ、キサンチン−グアニン、ホスホリボシル−トランスフェラーゼ、ｐＭＡＭ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）［Ｍｕｒｒａｙら，Ｇｅｎｅ３１：２３３（１９８４）］との同時トランスフェクションは、安定にトランスフェクションしたクローンの選択を可能にする。ＥＰ₁レベルは前述のアッセイによって定量する。可能な限り高いレベルのＥＰ₁を合成する哺乳動物細胞クローンを製造するために、増幅可能薬剤耐性マーカーを含むベクター内にＥＰ₁ｃＤＮＡ構築物を連結する。これらの構築物を細胞内に導入した後、プラスミドを含むクローンを適当な物質を用いて選択し、プラスミドのコピー数が多い過剰発現クローンの単離を、前記物質の用量増加の選択によって実施する。下記のシステムを使用する：突然変異ＤＨＦＲ遺伝子を含む９０１６又は９０１９プラスミド［Ｓｉｍｏｎｓｅｎら，前出］、ＤＨＦＲ−ＣＨＯ細胞内にトランスフェクションし、メトトレキサート中で選択；グルタミンシンセターゼ遺伝子を含むｐＥＥ１２プラスミド、ＮＳ／Ｏ細胞内にトランスフェクションし、メチオニンスルホキシミン中で選択（ＣｅｌｌＴｅｃｈ国際特許出願第２０８９／１０４０４号）；及びＡＰＲＴ及びＴＫ欠失Ｌ細胞内のチミジンキナーゼ遺伝子［Ｃｏｌｂｅｒｅ及びＧａｒｏｐｉｎ，Ｆ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．７６：３７５５（１９７９）］を含むｐＤＬＡＴ−３と同時トランスフェクションした９０１６又は他のＣＭＶプロモーターベクター、ＡＰＲＴ（０．０５ｍＭアザセリン、０．１ｍＭアデニン、４μｇ／ｍｌアデノシン）中で選択し、ＨＡＴ（１００μＭヒポキサンチン、０．４μＭアミノプテリン、１６μＭチミジン）で増幅。実施例７ＣＯＳ−Ｍ６細胞内でのｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁発現及び［³Ｈ］ＰＧＥ₂結合アッセイＤＥＡＥ−デキストラン方法を用いて、ｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁プラスミドをＣＯＳ−Ｍ６細胞内にトランスフェクションした。細胞を７２時間培地に維持し、次いで回収し、窒素キャビテーション（Ｆｒｅｙら，１９９３）による細胞溶解後に、示差的遠心分離（１０００×ｇで１０分間、次いで１００，０００×ｇで３０分間）にかけて膜を製造した。１ｍＭＥＤＴＡ、０．５ｎＭ［³Ｈ］ＰＧＥ₂ （１５４Ｃｉ／ｍｍｏｌ；ＤｕＰｏｎｔ−ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＮｕｃｌｅａｒ）及び１００，０００×ｇ膜フラクション由来タンパク質６０〜１００μｇを含む１０ｍＭリン酸カリウム（ｐＨ６．０）中で、［³Ｈ］プロスタグランジンＥ２（［³Ｈ］ＰＧＥ₂）結合アッセイを行った。前述のように高速濾過で結合及び遊離放射性リガンドを分離する前に、室温で１時間インキュベーションを実施した（Ｆｒｅｙら，１９９３Ｅｕｒ．Ｊ．Ｍｏｌ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，２４４，ｐｐ２３９−２５０）。フィルターに結合している残りの［³ Ｈ］ＰＧＥ₂を液体シンチレーション計数で定量した。特異的結合は、１μＭＰＧＥ₂の存在下で測定した総ての結合と非特異的結合との間の差として定義した。ＰＧＥ₂を投与したｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁注入卵母細胞の細胞内カルシウムの用量依存性増加を示すデータは、この受容体が、サブタイピングされたプロスタグランジンＥ受容体ＥＰ₁であることを示唆するものであった。これを確認するために、ｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁及びｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁（Ｂａｍ）トランスフェクションＣＯＳ−Ｍ６細胞から製造した膜を用いて［³Ｈ］ＰＧＥ₂結合アッセイを実施した。［³Ｈ］ＰＧＥ₂はこれらの細胞膜に特異的に結合したが、ｐｃＤＮＡのみでトランスフェクションしたＣＯＳＭ６細胞から製造した膜には結合しなかった。分散分析は、ｐｃＤＮＡ−ＥＰ₁トランスフェクションＣＯＳ−Ｍ６細胞膜への［³Ｈ］ＰＧＥ₂の特異的結合が大きな親和性を有し、飽和可能であることを明らかにした。平衡解離係数（Ｋ_D）は１ｎＭ、特異的結合部位の最大数（Ｂ_max）は約３６０ｆｍｏｌ／ｍｇタンパク質である。また、プロスタグランジンは、ＥＰ₁サブタイプで競合に予想される活性順序、ＰＧＥ₂＞ＰＧＥ₁＞ＰＧＦ_2α＞＞ＰＧＤ₂で、［³Ｈ］ＰＧＥ₂の特異的結合に関して競合した（第４図）。更に、選択性ＥＰ₁アンタゴニストＡＨ６８０９及びＳＣ１９２２０は、約０．５μＭ及び６．７μＭのＩＣ₅₀値で［³Ｈ］ＰＧＥ₂特異的結合に関して競合した。これは、平滑筋収縮アッセイ（Ｃｏｌｅｍａｎら，１９８５Ｂｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，８５，ｐｐ．２８６Ｐ）で測定されたこれらの化合物の能力と合致している。また、強力なＥＰ₂アゴニストであるブタプロストは特異的結合部位で比較的不活性であり、ＩＣ₅₀値が５０μＭであった。第４図参照。これらの放射性リガンド結合データは、ＥＰ₁受容体が、サブタイピングされたＥＰ₁の特性を有することを示す。実施例８昆虫細胞内発現のためのバキュロウイルス発現ベクター内へのＥＰ₁ｃＤＮＡのクローニングＡｃＮＰＶウイルスのゲノムに由来するバキュロウイルスベクターを、Ｓｆ９系昆虫細胞（ＡＴＣＣＣＲＬ♯１７１１）内でｃＤＮＡを高レベル発現させるように設計する。ＥＰ₁ｃＤＮＡを発現する組換えバキュロウイルスを以下の標準的方法で製造する（ＩｎＶｉｔｒｏｇｅｎＭａｘｂａｃＭａｎｕａｌ）：ＥＰ₁ｃＤＮＡ構築物を種々のバキュロウイルストランスファーベクター、例えばｐＡＣ３６０及びＢｌｕｅＢａｃベクター（ＩｎＶｉｔｒｏｇｅｎ）内のポリヘドリンプロモーターの下流に連結する。バキュロウイルストランスファーベクター及び線状化ＡｃＮＰＶゲノムＤＮＡ［Ｋｉｔｔｓ，Ｐ．Ａ．，Ｎｕｃ．ＡｃｉｄＲｅｓ．１８：５６６７（１９９０）］のＳｆ９細胞内への同時トランスフェクションに次ぐ相同組換えによって、組換えバキュロウイルスを形成する。組換えｐＡＣ３６０ウイルスは感染細胞内の封入体の不在によって同定され（Ｓｕｍｍｅｒｓ，Ｍ．Ｄ．及びＳｍｉｔｈ，Ｇ．Ｅ．，ＴｅｘａｓＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅＥｘｐ．ＳｔａｔｉｏｎＢｕｌｌｅｔｉｎＮｏ．１５５５）、組換えｐＢｌｕｅＢａｃウイルスはβ−ガラクトシダーゼ発現に基づいて同定される（Ｖｉａｌａｒｄら，１９９０，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６４，ｐｐ３７−５０）。プラーク精製及びＥＰ₁組換えバキュロウイルスでのｓｆ９細胞の感染後に、前述のアッセイでＥＰ₁発現を測定する。ＥＰ₁に関する読取り枠全体をコードするｃＤＮＡをｐＢｌｕｅＢａｃIIのＢａｍＨＩ部位に挿入する。ポリヘドリンプロモーターに対して正の向きにある構築物を配列決定によって同定し、線状ＡｃＮＰＶマイルドタイプＤＮＡの存在下でＳｆ９細胞をトランスフェクションするために使用する。真正の活性ＥＰ₁は、感染細胞の膜に結合している。膜調製物を標準的方法で感染細胞から製造する。実施例９酵母発現ベクター内へのＥＰ₁ｃＤＮＡのクローニング外来性タンパク質の細胞内発現を制御するように設計した発現ベクター内に最適ＥＰ₁ｃＤＮＡ構築物を挿入した後、酵母Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ内で組換えＥＰ₁を産生する。細胞内発現のために、ＥｍＢＬｙｅｘ４等のようなベクターをＥＰ₁シストロンに連結する［Ｒｉｎａｓ，Ｕ．ら，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ８：５４３−５４５（１９９０）；ＨｏｒｏｗｉｔｚＢ．ら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：４１８９−４１９２（１９８９）］。発現されたＥＰ₁のレベルは前述のアッセイで測定する。実施例１０組換えＥＰ₁の精製組換え技術によって製造したＥＰ₁は、抗体アフィニティクロマトグラフィーによって精製し得る。抗体がアガロースゲルビーズ支持体との間で共有結合を形成するようにＮ−ヒドロキシスクシンイミドエステルで予め活性化したゲル支持体であるＡｆｆｉｇｅｌ−１０（Ｂｉｏｒａｄ）に抗ＥＰ₁抗体を加えることによって、ＥＰ₁抗体アフィニティカラムを形成する。抗体はスペーサーアームとのアミド結合を介してゲルに結合する。次いで、残りの活性化エステルを１ＭエタノールアミンＨＣｌ（ｐＨ８）で失活する。カラムを水及び０．２３ＭグリシンＨＣｌ（ｐＨ２．６）で順次洗浄して、非結合抗体又は外来タンパク質を除去する。次いでカラムを、適当な膜可溶化剤、例えば洗剤と共にリン酸塩緩衝食塩水（ｐＨ７．３）中で平衡化し、可溶化ＥＰ₁もしくはＥＰ₁サブユニットを含む細胞培養上清又は細胞抽出物をカラムにゆっくり通す。次いでカラムを光学密度（Ａ₂₈₀）がバックグラウンドに低下するまでリン酸塩緩衝食塩水及び洗剤で洗浄し、その後タンパク質を０．２３Ｍグリシン−ＨＣｌ（ｐＨ２．６）及び洗剤で溶離する。次いで、精製したＥＰ₁タンパク質をリン酸塩緩衝食塩水に対して透析する。

【手続補正書】特許法第１８４条の８【提出日】１９９５年３月３０日【補正内容】請求の範囲１．プロスタグランジンに特異的に結合する、単離し精製されたプロスタグランジンＥＰ₁受容体タンパク質であって、下記のアミノ酸配列：を有することを特徴とする、前記タンパク質。２．プロスタグランジン受容体タンパク質をコードする単離し精製されたＤＮＡ分子であって、前記タンパク質が請求項１に記載のアミノ酸配列を有することを特徴とする前記ＤＮＡ分子。３．プロスタグランジン受容体タンパク質をコードする単離し精製されたＤＮＡ分子であって、下記のヌクレオチド配列：を有することを特徴とする前記ＤＮＡ分子。４．組換え宿主細胞内でプロスタグランジン受容体タンパク質を発現させるための発現ベクターであって、請求項３に記載のＤＮＡ分子を含む前記発現ベクター。５．組換えプロスタグランジン受容体タンパク質を発現する宿主細胞であって、請求項４に記載の発現ベクターを含む前記宿主細胞。６．組換え宿主細胞内でプロスタグランジン受容体タンパク質を発現させる方法であって、（ａ）請求項４に記載の発現ベクターを適当な宿主細胞内にトランスファーし、（ｂ）ステップ（ａ）の宿主細胞を発現ベクターからのプロスタグランジン受容体タンパク質の発現を可能にする条件下で培養する操作を含む前記方法。７．プロスタグランジン受容体活性のモジュレーターを選定する方法であって、（ａ）プロスタグランジン受容体活性のモジュレーターを、請求項１に記載のアミノ酸配列の全体又は部分を有することを特徴とするプロスタグランジン受容体と混合し、（ｂ）プロスタグランジン受容体に対するモジュレーターの作用を測定する操作を含む前記方法。８．プロスタグランジン受容体タンパク質に特異的に結合する抗体であって、前記タンパク質が請求項１に記載のアミノ酸配列を有することを特徴とする前記抗体。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩＣ１２Ｎ 15/02 9358−4ＢＣ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｐ 21/02 0276−2ＪＧ０１Ｎ 33/566 21/08 9281−4ＢＣ１２Ｎ 5/00 ＢＧ０１Ｎ 33/566 9162−4Ｂ 15/00 Ｃ //(Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｒ 1:91） (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＮ，ＣＺ，ＦＩ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＧ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ， (72)発明者フアンク，コリンアメリカ合衆国、テネシー・37203、ナツシユビル、ウエスト・エンド・サークル・ 3110、アパートメント・16 (72)発明者グリジヨルジイク，リシヤールカナダ国、ケベツク・アシユ・９・アー・１・ペー・８、ドラール・デ・オルモー、ブレントウツド・27 (72)発明者ミーターズ，キヤスリーンカナダ国、ケベツク・アシユ・２・イクス・１・ドウブルベー・４、モントリオール、ミルトン・570、アパートメント・18

Claims

【特許請求の範囲】１．プロスタグランジンに特異的に結合する、単離し精製されたプロスタグランジンＥＰ₁受容体タンパク質。２．前記タンパク質が下記のアミノ酸配列：を有することを特徴とする請求項１に記載の単離し精製されたプロスタグランジン受容体タンパク質。３．プロスタグランジン受容体タンパク質をコードする単離し精製されたＤＮＡ分子であって、前記タンパク質が請求項２に記載のアミノ酸配列を有することを特徴とする前記ＤＮＡ分子。４．プロスタグランジン受容体タンパク質をコードする単離し精製されたＤＮＡ分子であって、下記のヌクレオチド配列：を有することを特徴とする前記ＤＮＡ分子。５．組換え宿主細胞内でプロスタグランジン受容体タンパク質を発現させるための発現ベクターであって、請求項４に記載のＤＮＡ分子を含む前記発現ベクター。６．組換えプロスタグランジン受容体タンパク質を発現する宿主細胞であって、請求項５に記載の発現ベクターを含む前記宿主細胞。７．組換え宿主細胞内でプロスタグランジン受容体タンパク質を発現させる方法であって、（ａ）請求項５に記載の発現ベクターを適当な宿主細胞内にトランスファーし、（ｂ）ステップ（ａ）の宿主細胞を発現ベクターからのプロスタグランジン受容体タンパク質の発現を可能にする条件下で培養する操作を含む前記方法。８．プロスタグランジン受容体活性のモジュレーターを選定する方法であって、（ａ）プロスタグランジン受容体活性のモジュレーターを、請求項２に記載のアミノ酸配列の全体又は部分を有することを特徴とするプロスタグランジン受容体と混合し、（ｂ）プロスタグランジン受容体に対するモジュレーターの作用を測定する操作を含む前記方法。９．プロスタグランジン受容体タンパク質に特異的に結合する抗体であって、前記タンパク質が請求項１に記載のアミノ酸配列を有することを特徴とする前記抗体。