JPH09501052A

JPH09501052A - 植物におけるアミロペクチン澱粉の分枝の程度を変更するのに好適な，脱分枝酵素及びそれをコードするｄｎａ配列

Info

Publication number: JPH09501052A
Application number: JP7506224A
Authority: JP
Inventors: コシュマン，イェンス; エメルマン，ミヒャエル; ビルジン，イバー
Original assignee: インスティテュートフュアゲンビオローギシュフォルシュンクベルリンゲゼルシャフトミットベシュレンクテルハフツング
Priority date: 1993-08-09
Filing date: 1994-08-08
Publication date: 1997-02-04
Also published as: IL110583A0; AU693469B2; US6433253B1; HUT73740A; CA2169174A1; DE4327165A1; HU9600285D0; US6001628A; EP0713531A1; AU7535294A

Abstract

(57)【要約】アミロペクチン澱粉の分枝の程度をトランスジェニック植物内で減少さる脱分枝酵素の酵素活性をもつ新規のタンパク質をトランスジェニック植物内で形成されたその転写物がコードするような、そのコード生成ストランド上で植物脱分枝酵素をコードするDNA 配列、及びアミロペクチン澱粉の分枝の程度をそのトランスジェニック植物内で増加させる脱分子酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成をトランスジェニック植物内で形成されたその転写物が妨害するような、そのコード生成ストランド上で植物脱分枝酵素をコードするDNA 配列、並びに植物細胞及び植物内に導入されることができるプラスミドであって上記DNA 配列がその上に局在化されるものについて記載する。また、そのアミロペクチン澱粉が修飾された、遺伝子工学により変更された植物、及びこれらの植物から得られる修飾澱粉の生産についても記載する。

Description

【発明の詳細な説明】植物におけるアミロペクチン澱粉の分枝の程度を変更するのに好適な、脱分枝酵素及びそれをコードするDNA 配列本発明は、トランスジェニック植物においてアミロペクチン澱粉の分枝の程度を減少させる分枝酵素の酵素活性をもつ新規タンパク質をトランスジェニック植物内で形成されたその転写物がコードするような、そのコドン生成 (codogenic) ストランド上で植物脱分枝酵素をコードするDNA 配列、並びにトランスジェニック植物においてアミロペクチン澱粉の分枝の程度を増加させる分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成をトランスジェニック植物内で形成されたその転写物が妨害するような、そのコドン生成ストランド上で植物脱分枝酵素をコードする DNA 配列、そしてまた植物細胞及び植物内に導入されることができる、上記DNA 配列がその上に局在化される組換えプラスミドに関する。本発明は、そのアミロペクチン澱粉が修飾される遺伝子工学により変更された植物の生産方法、及びこれらの植物から得られる修飾澱粉にも関する。多糖類、例えば澱粉は、油脂、脂肪及びタンパク質と同じく、本質的に再生可能 (renewable)な植物由来の原材料である。再生可能な原材料の使用方法において立脚する決定的な要因は、形態、構造、又は他の物理化学的パラメーターに関して化学工学の要求に適正に適合する物質の欠如である。可能な限り多くの使用分野において再生可能な原材料の適用を可能ならしめるために、かなりの材料の多様性を達成することが特に重要である。多糖類に関しては、これは、例えば、澱粉の多くの異なる形態が可能な限り提供されるということを意味する。これは、それらの化学特性における高い表面反応性を特徴とする強い分枝形態、及び高い構造均一性により区別された小分枝タイプの両方を考慮することを必要とする。構造均一性は、化学合成の間の高効率の反応制御のための重要な必要条件である。澱粉は、化学的に均一な基本構成成分、グルコース分子を含んで成るポリマーであるので、それは、それらの重合度及びそのグルコース鎖の分枝の生成に関して異なるひじょうに異なる分子形態の複雑な混合物である。それ故、澱粉は均一な原材料である。特に、アミロース澱粉、α−１，４−グルコシド結合したグルコース分子を含んで成る本質的に非分枝のポリマーと、アミロペクチン澱粉であってその部分について異なる分枝のグルコース鎖の複雑な混合物であるものとの間に区別がなされる。この分枝は、追加のα−１，６グリコシド結合の生成を通して生じる。澱粉製造のための典型的な植物、例えばメイズ (maize)又はポテト（potato）においては、澱粉の上記２形態が大体25部のアミロース対75部のアミロペクチンの比で生じる。その工業分野（sector）におけるその応用のための基本的物質、例えば澱粉の均一性に関しては、例えばアミロペクチン成分だけを含む植物又はアミロース成分だけを含む植物が必要とされる。原材料澱粉の多様性に関しては、異なる指標をもつ分枝をもつアミロペクチンの形態を示す植物が必要である。従って、澱粉分子の分枝の程度を修飾することができる澱粉代謝の酵素、又は植物内で異なる形態の澱粉を合成することができるように植物の遺伝子変更のために使用されることができる遺伝子配列に大きな興味がある。特定の植物種、例えばメイズについて、アミロペクチンだけを含むタイプが、その間にその植物の個々の遺伝子が下活性化されるような突然変異誘発により生産されることができるということが既に知られている。ポテトについては、アミロースを全く作らない遺伝子型が同様に半数体 (hapl oid)系統を用いた化学的突然変異誘発により作出された (Hovenkamp-Hermelink et al.，1987，Theor Appl Genet 75 ：217-221)。それらから開発された、半数体系統、又はそのホモ接合２倍体 (homozygotic diploid)又は４倍体系統（tetr aploid）系統は、しかしながら農業においては使用されることができない。この突然変異誘発技術は、農業的に興味のあるヘテロ接合４倍体系統には適用されることができない。なぜなら、遺伝子の全コピーの不活性化は、４つの異なる遺伝子型のコピーの存在のために不可能であるからである。かなり純粋なアミロペクチン澱粉を形成するタイプがポテトにおける澱粉粒結合澱粉シンセターゼのための遺伝子のアンチセンス阻害により作り出されることができるということがViss er et alから公知である(1991，Mol Gen Genet 225：289)。ポテトの分枝酵素はWO 92/14827 から公知である。この酵素は、ポテト (Sola num tuberosum) のＱ−酵素として知られている。WO 92/14827 中に記載されたポテトの分枝酵素についての情報を含むDNA 配列の助けにより、その澱粉のアミロース／アミロペクチン比が変更されたトランスジェニック植物が生産されることができることも公知である。いくつかのＱ−酵素の発生が他の種、例えばメイズについて公知であるけれども (Singh & Preiss，1985，Plant Physiol 79 ：34-40)，WO 92/14827から公知のポテトの分枝酵素の他に、ポテトにおける分枝澱粉の合成に他の酵素が関与するか否かについては知られていない。澱粉分子に分枝を導入するＱ−酵素の他に、分枝を溶解する酵素が植物内で生じる。脱分枝酵素としても知られるこれらのタンパク質は、基質特異性に従って３群に分割される。プルラン (pullutare)の他にアミロペクチンをも使用するプルラナーゼ（pullulanases）が微生物、例えばクレブシエラ（Kleb siella ）、及び植物中に生じる。植物においては、それらはＲ−酵素ともいわれる。プルランには作用しないがグリコーゲン及びアミロペクチンに作用するイソアミラーゼも同様に、微生物と植物内で生じる。メイズのイソアミラーゼ（isoa mylase）はManners & Rowe（1969，Carbohydr，Res.9 ：107)により記載されており、そしてIshizaki et al．(1983，Agric Biol Chem 47 ：771-779)はポテトのイソアミラーゼについて記載している。アミロ−１，６−グルコシダーゼ（am ylo −１，６−glucosidases）は哺乳類と酵母において記載されており、そして基質として限界デキストリンを使用する。５つのエンド−そして２つのエキソアミラーゼの他に、Li et al．(1992，Pla nt Physiol 98 ：1277-1284)は、砂糖大根中にたった１つのプルラナーゼ型の脱分枝酵素を検出した。約100KDaのサイズ及び 5.5の最適pHをもつこの酵素は葉緑体内に局在化する。 Ludmig et al．(1984，Plant Physiol 74 ：856-861)は、基質としてプルランを使用するがアミロペクチンとの反応の間に３倍低い活性を示すホウレンソウからの脱分枝酵素について記載している。農業的に重要な澱粉保存性栽培植物、ポテトの場合においては、脱分枝酵素の活性はHobson et al．(1951，J Chem Soc 1451) により1951年に調査された。それは、Ｑ−酵素とは異なり、その対応酵素が鎖伸長活性を有せず、そして単にα −１，６−グリコシド結合を加水分解するということを立証した。しかしながら、その酵素をより正確に特徴付けること又は脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質をコードするDNA 配列について記載することのいずれについても成し得なかった。今日まで、アミロペクチン澱粉の分枝の程度が増加され又は減少されるような方法で、植物ゲノム内への導入の間、その植物の代謝を変更する植物由来の脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質をコードするDNA 配列は全く知られていない。本発明の目的は、そのコード生成ストランド上に脱分枝酵素をコードするDNA 配列、それにより上記DNA 配列が植物細胞又は植物内に導入されることができるところのプラスミド、それから植物全体が再生されることができる植物細胞並びに増加した又は減少した程度の分枝をもつアミロペクチン澱粉の生産を可能にする植物を提供することである。これから、脱分枝酵素の同定及び精製そしてまたこれらの酵素のペプチド配列そして脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質をコードする転写物をトランスジェニック植物内で形成し又は脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成を妨害する転写物をトランスジェニック植物内で形成するDNA 配列並びにこれらのトランスジェニック植物の生産のためのプラスミド及び植物細胞の説明のためのそれらの使用について記載する。また、アミロペクチン澱粉の分枝の程度を減少させる脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質をコードするDNA 配列を含むトランスジェニック植物並びにアミロペクチン澱粉の分枝の程度を増加させる脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成を妨害するDNA 配列を含むトランスジェニック植物についても記載する。ａ）最初に、脱分枝酵素の活性をもつタンパク質を同質 (homogeneity)まで精製し（実施例１参照）、ｂ）ペプチド配列を、タンパク質配列決定により上記の精製された酵素から樹立し（実施例２参照）、ｃ）これらのペプチド配列をcDNAライブラリーからのcDNA配列のクローニングのために使用し、免疫学的及び分子遺伝学的方法の両方を使用し（実施例３及び４参照）、そして／又はｄ）これらのペプチド配列を分子生物学的方法の助けをかりて遺伝子ライブラリーからのゲノムDNA 配列のクローニングのために使用し（実施例５）、そしてｅ）ｃ）及び／又はｄ）からのDNA 配列を、植物細胞の形質転換及びトランスジェニック植物の再生を可能ならしめるプラスミド内に導入する（実施例６参照）。アミロペクチン澱粉の分枝の程度が適宜増加され又は減少されるような植物内に天然に含まれるアミロペクチン澱粉の分枝の程度を修飾する植物脱分枝酵素をコードするポテト (Solanum tuberosum)を参照して上記実施例中の例により上記 DNA 配列について記載する。少なくとも１の以下の配列をもつ脱分枝酵素のペプチド配列はそのコード生成DNA 配列からコードされる：増加された又は減少された程度のアミロペクチン澱粉の分枝をもつトランスジェニック植物を以下の段階を特徴とする工程を介して生産することができる：ａ）以下の部分的配列をもつDNA 配列の製造：ｉ）植物内で活性であり、そして提案された標的組織又は標的細胞内でRNA の形成を保証するプロモーター、 ii）脱分枝酵素の酵素活性をもつ新規タンパク質配列をトランスジェニック植物内でコードするRNA の転写を許容し、又は脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成をトランスジェニック植物内で妨害するRNA の転写を許容する構造DN A 配列、 iii）適宜、転写の終止及び上記RNA の３′−末端へのポリ−Ａ基の付加を植物細胞内で導く３′−非翻訳配列、ｂ）好ましくは組換えプラスミドを使用した、植物細胞のゲノム内への上記構造DNA 配列の伝達及び取り込み、及びｃ）上記形質転換植物細胞からの無傷の植物全体の再生。好ましくは、１以上又は全ての上記タンパク質配列配列番号：１〜配列番号： 12がii）の下で命名された脱分枝酵素のタンパク質配列内に含まれる。工程ｂ）に従う組換えプラスミドは、植物脱分枝酵素又はその断片をそのコード生成ストランド上でコードするDNA 配列を含み、それによりそのDNA 配列から誘導される転写物が、トランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度をそのトランスジェニック植物内で減少させ、又はトランスジェニック植物内でそのDNA 配列から誘導された転写物が、脱分枝酵素の酵素活性をもつ内因性タンパク質の合成を妨害し、アミロペクチン澱粉の分枝の程度をトランスジェニック植物内で増加させる脱分枝酵素の酵素活性をもつ新規タンパク質の合成に影響を与える。この後者は、同時抑制を通じて又はアンチセンスRNA により達成されることができる（Inouye，1988，Gene 72 ：25-34 ；Flavell，1994，Proc．N atl．Acad．Sci．USA 91 ：3490-3496）。アミロペクチン澱粉の分枝の増加され又は減少された程度をもつ上記工程を通じて得られるトランスジェニック植物も本発明の対象である。上記工程が適用される植物は有用な植物、例えば、メイズ、水素及びポテトである。本発明は、脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質、１以上の配列番号：１〜配列番号：12及び50kdと150kd の間、特に70kdと130kd の間のとりわけ90kdと11 0kd の間の分子量のものにも関する。これらのタンパク質は植物、例えばポテト (Solanum tuberosum)由来である。脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成のための又は脱分枝酵素の内因活性の形成を抑制するための情報を含む新規構造DNA 配列の同定のために、タンパク質抽出物を実施例によりポテト植物から得た。実施例１中に記載したように、脱分枝酵素の酵素活性の検出のために、呈色テストを使用した。ポテト植物のタンパク質抽出物を、非変性アミロペクチン含有ポリアクリルアミド・ゲル（PA AG）中で分離するとき、澱粉修飾活性をもつタンパク質をその後のヨウ素染色により検出することができる。非分枝アミロースがヨウ素と青色の複合体を形成するとき、アミロペクチンは赤紫色を作り出す。ヨウ素により赤紫に変化するアミロペクチン含有PAAGs 中では、脱分枝活性が局在化される場所において、そのゲルの青色への色シフトが生じる。なぜなら紫色のアミロペクチンの分枝が上記酵素により分解されるからである。漸新的硫酸アンモニウム沈降及びその後の固定化β−シクロデキストリンにおけるアフィニティー・クロマトグラフィーの助けをかりて上記タンパク質を他のものから分離することにより、そのタンパク質を本発明に従って同質まで精製する。ペプチド配列を純粋タンパク質から決定する（実施例２参照）。結果として、植物脱分枝酵素のペプチド配列に最初にアクセス可能である。脱分枝酵素のペプチド配列は個々の領域内に、微生物の脱分枝酵素に対する一定の相同性を示すが、これは、そのタンパク質の全てのドメインについて真実ではない。従ってSolanum tuberosum からの新規の脱分枝酵素は、先に未知のタイプの脱分枝酵素を提示する。この脱分枝酵素のペプチド配列は本発明に従って、脱分枝酵素の活性をもつペプチドをコードする植物内のDNA 配列を同定するのに役立つ。免疫学的方法を適用することもでき（実施例３参照）又は分子遺伝学的方法をも使用する（実施例４と５参照）。新規の脱分枝酵素をコードするDNA 配列を同定した後、それらをベクター・プラスミドへのクローニングによりバクテリア内で増幅することができる。ベクターの例は、pBR322, pUC−シリーズ、13mp−シリーズ、等である。新規の脱分枝酵素をコードするDNA 配列に、他のプラスミド内への簡単な再クローニングを許容するリンカーを提供することができる。植物内への導入の目的のために（実施例６参照）、例えば、大腸菌（Escherichia coli）及びアグロバクテリウム・チュームファシエンス (Agrobacterium tumefaciens)についての複製シグナルを含むバイナリー・プラスミドを独占的ではないが好ましくは使用することができる。これらのバイナリー・プラスミドがＴ−DNA 要素を含む場合、双子葉植物のゲノム内への新規脱分枝酵素のDNA 配列の伝達は特に簡単である。しかしながら、他の方法、例えば、単子葉植物の形質転換のために使用される弾道方法 (ballis tic processes)の助けをかりる形質転換を利用することができる（Potrykus，19 91，Ann Rev Plant Mol Biol Plant Physiol 42 ：205-225 参照）。遺伝子変更植物における伝達されたトランスジーンの発現を保証するために、新規脱分枝酵素のcDNA配列をプロモーター配列に融合する。植物内で活性であるプロモーターの全てが原則として考慮される。形質転換されるべき植物の澱粉保存器官内で活性であるプロモーターを好ましくは使用する。従ってメイズの場合には、それはメイズの穀粒であり、一方、ポテトの場合には、それは塊茎である。塊茎特異的Ｂ33プロモーター (Rocha-Sosa et al.，1989，EMBO J 8 ：23-29) をポテトの形質転換のために独占的ではないが特に使用することができる。トランスジーンにより形成されたRNA の安定化のために、終止及びポリアデニレーション・シグナルをも、適宜脱分枝酵素をコードするDNA 配列に付加する。これは、例えば、アグロバクテリウム・チュームファシエンス (Agrobacterium tumefa ciens) からのオクトピン・シンターゼ遺伝子の終止シグナルであることができる。プロモーター、構造DNA 配列及び適宜終止シグナルの融合を通して、植物の形質転換に好適なプラスミドに組み込まれる構築物が形成される。これらの組換えプラスミドも本発明の対象である。この組換えプラスミドを、植物全体がそれから再生される植物細胞の形質転換のために使用する。本発明に係るDNA 配列を含む上記植物細胞も本発明の対象である。これらの組換えプラスミドを脱分枝酵素をコードする拡散配列の同定のために使用することもできる。プロモーター、新規脱分枝酵素のコード領域及び終止／ポリアデニレーション・シグナルから成るDNA 配列の伝達の結果として、新規脱分枝酵素の合成のためのマトリックスとして役立つことができ、又は脱分枝酵素の内因性mRNAとの相互作用を通じて、その合成を抑制するRNA の形成が、そのトランスジェニック植物内で結果として生じる。このトランスジーンにより転写されるRNA のタイプは、プロモーターに対するその新規脱分枝酵素のDNA 配列の方向に依存する。新規脱分枝酵素のDNA 配列の５′末端がプロモーターの３′−末端に融合される場合、翻訳可能なmRNAであって新規脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成のためのマトリックスとして役立つものが形成される。他方において、新規脱分枝酵素のDNA 配列の３′末端がプロモーターの３′−末端に融合される場合、その脱分枝酵素の内因性mRNAの翻訳可能性を抑制するアンチセンスRNA が形成する。第１のケースにおいては、その植物内に脱分枝酵素の追加の酵素活性が存在する。この結果は、そのトランスジェニック植物により形成されたアミロペクチンの分枝の程度が減少されるということである。これにより澱粉であって、その天然型と比して、より顕著に秩序ある空間構造及び増加された均一性により区別され、特にフィルム−形成特性の好ましい結果をもつものが入手可能になる。第２のケースにおいては、脱分枝酵素の内因性酵素活性が抑制される。これは、トランスジェニック植物内に顕著に分枝された澱粉の形成を導く。顕著に分枝されたアミロペクチンは特に大きな表面をもち、そしてそれ故、特別な程度までコポリマーとして好適である。顕著な程度の分枝は、水中でのそのアミロペクチンの溶解度における改善をも導く。この特性は、特定の技術用途にひじょうに好ましい。ポテトは特に、新規脱分枝酵素の本発明に係るDNA 配列を利用しながら顕著に分枝されたアミロペクチンを製造するために特に好適であるが、本発明の応用はポテトに限定されない。トランスジェニック植物内で形成された修飾澱粉は、食品及び工業製品の製造のために、一般的に使用される方法を用いて植物又は植物細胞から単離され、そして精製後に加工されることができる。脱分枝酵素をコードするDNA 配列を、標準的な方法を使用して、他の植物種からのゲノム配列又は相同cDNAの単離のために使用することもできる。図面の説明図１は、Solanum tuberosum からの脱分枝酵素の精製を示す。図中：Ｏ＝Solanum tuberosum からの塊茎組織のホモジェネートのタンパク質抽出物パッセージ＝固定化β−シクロデキストリンにおけるタンパク質抽出物のアフィニティー・クロマトグラフィーを通してのパッセージ β−シクロデキストリン＝それぞれ、１mg／mlと10mg／mlの濃度において溶解されたβ−シクロデキストリンによるアフィニティー・クロマトグラフィーの溶出 DBE ＝Solanum tuberosum 由来の脱分枝酵素 DE ＝Solanum tuberosum からの不均化酵素。図２は、プラスミドpBIN 19 (Bevan，M.，1984，Nucl Acids Res 12：8711-87 21)の誘導体であるプラスミドpB33−Ｒを示す。図中：Ａ＝Solanum tuberosum のＢ33遺伝子のプロモーター領域の DraＩ/DraＩ断片（位置−1512〜＋14）（Rocha-Sosa et al.，EMBO J 8 ：23-29)、Ｂ＝Frcgment Aに対してセンス方向においてSolanum tuberosumの脱分枝酵素のコード領域をもつCDNAの NotＩ/NotＩ断片、Ｃ＝プラスミドpTiACH5（Gielen et al.，EMBO J 3 ：835-846）のＴ−DNA の遺伝子３のポリアデニレーション・シグナル、ヌクレオチド 11749〜11939 であって、プラスミドpAGV40 (Herrera-Estrella et al.，1983，Nature 303 ：209- 213)から PvuII／HindIII断片として単離され、そしてpBIN 19 のポリリンカーの SphＩとHindIII切断点の間の PvuII切断点への SphＩリンカーの付加の後にクローン化されたもの。図３は、プラスミドpBIN 19 (Bevan，M.，1984，Nucl Acids Res 12：8711-87 21)の誘導体であるプラスミドpB33−Ｒ−アンチを示す。図中：Ａ＝Solanum tuberosum のＢ33遺伝子のプロモーター領域の DraＩ/DraＩ断片（位置−1512〜＋14）（Rocha-Sosa et al.，EMBO J 8 ：23-29)、Ｂ＝Frcgment Aに対してアンチ−センス方向においてSolanum tuberosum の脱分枝酵素のコード領域をもつcDNAの NotＩ/NotＩ断片、Ｃ＝プラスミドpTiACH5（Gielen et al.，EMBO J 3 ：835-846）のＴ−DNA の遺伝子３のポリアデニレーション・シグナル、ヌクレオチド 11749〜11939 であって、プラスミドpAGV40 (Herrera-Estrella et al.，1983，Nature 303 ：209- 213)から PvuII／HindIII断片として単離され、そしてpBIN 19 のポリリンカーの SphＩとHindIII切断点の間の PvuII切断点への SphＩリンカーの付加の後にクローン化されたもの。実施例１Solanum tuberosum における新規脱分枝酵素の同定 Solanum tuberosum 種の植物のタンパク質抽出物を、塊茎組織から得た。このために、 820ｇの塊茎組織を、50mM酢酸ナトリウムpH6.0 ；2.5mM １，４−ジチオ−DL−トレイトール；1.5mM メルカプトエタノール；0.4mM PMSF及び重亜硫酸ナトリウム−亜硫酸ナトリウム及びアスコルビン酸（各ケースにおいてスパチュラの先端）を含んで成るバッファー1500ml中でホモジェナイズする。50μｌをPA AG中、上記ホモジェネートから分離する（図１中のトレース１参照）。このゲルは 7.5％アクリルアミドpH8.6 を含み、これは１：75 の程度までのメチレン・ビスアクリルアミド、プラス１％アミロペクチンと架橋される。この電気泳動のための緩衝系は、トリス／グリシンpH8.9 を含む。このゲルを走らせた後、そのゲルを４時間22℃において50mMトリス／クエン酸塩pH7. 0 ；２mM アスコルビン酸中で平衡とするこのゲルの着色は、15分間のLugol 溶液により引き起こされる。着色の結果を図１、トレース１に示す。架橋導入酵素（分枝酵素又は不均化酵素）の活性にさかのぼる赤色バンドの他に、強い青色バンドが認められるはずである。この青色は、その赤又は紫色の原因であるアミロペクチンのα−１，６グリコシド分枝の酵素分解を通して現われる。実施例２Solanum tuberosum からの脱分枝酵素の精製及びペプチド配列の決定硫酸アンモニウムを連続的に４℃においてその飽和濃度の40％の濃度まで撹拌しながら、実施例１に従って得たSolanum tuberosumの塊茎組織からのタンパク質抽出物に添加した。沈澱するタンパク質の部分的沈澱を撹拌しながら２時間続け、次に沈澱したタンパク質を遠心分離により沈澱させた。硫酸アンモニウムをその飽和濃度の50％の値まで上述のようにその上清に添加し、タンパク質を再び沈澱させる。このタンパク質画分を遠心分離により分別し、そしてさらに分画した。20mlアセテート・バッファー中での沈澱物の溶解（実施例１参照）及び２回蒸留水に対する12時間の透析の後、このタンパク質溶液をクロマトグラフィーに供する。分画された硫酸アンモニウム沈澱物からの500mg タンパク質を30mlのベッド・ボリューム当りにSepharose 6Bカラム上に適用し、これにβ−シクロデキストリンを結合させた。アセテート・バッファーによる洗浄を、溶出液が280nm における吸収を全く示さなくなるまで続ける。その定常期に対し低いアフィニティーをもつタンパク質画分を次に１mg／mlのアセテート・バッファーのβ−シクロデキストリン溶液により溶出し、そして廃棄する。 10mg／mlのアセテート・バッファーのシクロデキストリン濃度において、ポテトの脱分枝酵素を溶出させる（図１参照、トレース^* ）。脱分枝酵素が高く濃縮された溶出液の画分を、Laemmli's instructions（1970，Nature 227 ：680-685）に従って変性PAAG中の電気泳動に供する。この変性タンパクを上記ゲルから切り出す。ペプチド配列を標準的な手順により決定する。Solanum tuberosum からの脱分枝酵素のペプチド配列を配列番号：１〜配列番号：12において再生する。実施例３免疫学的方法の助けをかりての、Solanum tuberosum の脱分枝酵素をコードする cDNA配列の単離実施例２に従って精製したタンパク質をウサギの免疫感作のために使用する。免疫感作されたウサギの血清の助けをかりて、Solanum tuberosum の塊茎組織の転写物を代表するcDNAライブラリーをSolanum tuberosum の脱分枝酵素をコードする配列を含むcDNAクローンについてスクリーニングする。このために、全RNA をLogemann et al．(1987，Anal Biochem 163 ：16-20)に従ってSolanum tubero sum の塊茎組織から調製する。標準的な方法によりポリアデニル化されたmRNAをこの全RNA から調製し、そしてcDNAの合成のためにGubler & Hoffmann（1983，G ene 25 ：263）により記載された手順に従って使用する。このcDNAを商業的なEc oRＩ/NotＩアダプターとライゲートし、そして次に発現系ラムダ ZAPIIのEcoRＩ切断点にライゲートする。ファージの頭にラムダ・ファージDNA を充填した後、 XL１−Blue株の大腸菌 (E．coli)細胞を感染させ、そして約75cm²当り25,000の密度においてペトリ皿内の培地上にプレートする。約３時間のインキュベーション後、10mM IPTG 溶液中に浸漬したニトロセルロース・フィルターを溶解バクテリア・カルチャー上に横たえ、そしてさらに３時間後に取り出す。このフィルターを実施例５に記載するウェスタン・ブロット技術による免疫学的調査のために使用する。pBluescript プラスミドを、Solanum tube rosum の脱分枝酵素のcDNA配列を含む３回の調査サイクル後に得たファージ種からのインビボにおける切除により得る。このcDNAの配列を、Sanger et al．(197 7，Proc Natl Acad Sci USA 74 ：5463-5467) の方法を使用して決定する。この挿入物を、Solanum tuberosum の脱分枝酵素の配列を含むpBlueseript プラスミドからの対応制限酵素による切断により単離し、そして植物を形質転換する目的をもつバイナリー・プラスミド中に標準的な手順によりクローン化することができる（実施例６参照）。実施例４分子遺伝学的方法の助けをかりてのSolanum tuberosum の脱分枝酵素をコードするcDNA配列の単離実施例２に従って得られたペプチド配列を、その遺伝子コードの縮重を考慮しながら、Solanum tuberosum の脱分枝酵素のDNA 配列の抽出物を再生するオリゴヌクレオチド配列の誘導のために使用する。この誘導オリゴヌクレオチド配列に従って、合成オリゴヌクレオチドを標準的な方法により合成する。これらを、So lanum tuberosum の塊茎組織の転写物を代表するcDNAライブラリーの精査のために使用する。最初に、cDNAライブラリーを、Logemann et al．(1987，Anal Bioc hem 163 ：16-20)に従ってSolanum tuberosum の塊茎組織から全RNA を調製することにより作り出す。標準的な方法によりポリアデニル化されたmRNAを全RNA から調製し、そしてcDNAの合成のためにGobler & H．ffmann (1983，Gene 25 ：26 3)により記載された手順に従って使用する。このcDNAを商業的なEcoRＩ/NotＩアダプターとライゲートし、そして次にファージ・ラムダ ZAPIIのDNA のEcoRＩ切断点にライゲートする。ファージ頭へのラムダ・ファージDNA の充填後、株XL１−Blueの大腸菌 (E．coli)細胞を感染させ、そして約75cm² 当り25,000の密度においてペトリ皿内の培地上にプレーティングする。約９時間のインキュベーション後、ナイロン膜を、溶解したバクテリア・カルチャー上に横たえ、そして１分後に取り出す。このフィルターを250mM HCl 中１分間、 0.5Ｍ NaOH ； 1.5Ｍ NaCl 中５分間、次に１Ｍトリス／HCl pH7.5 中５分間、インキュベートする。１時間80℃において乾燥及び固定後、フィルターを、放射末端標識されたオリゴヌクレオチドを添加する前に、以下のものを含んで成るバッファー中で４時間インキュベートする：２倍 SSC（塩化ナトリウム／クエン酸ナトリウム） 10倍 Denhardt'ｓ溶液 0.１％ SDS（ドデシル硫酸ナトリウム）５mM EDTA（エチレン・ジアミン・テトラ酢酸） 50mM リン酸２ナトリウム 250 μｇ／ml ニシン精子DNA 50μｇ／ml tRNA。 12時間のハイブリダイゼーション後、フィルターを２倍SSC/0.5％SDS中で洗浄し、そして次にオートラジオグラフにかける。フィルターのハイブリダイゼーションと洗浄のための温度を以下のように計算する：Ｔ＋15＝16.6×〔Na＋〕＋0.41×％GC_{OLIGONUCLEOTIDE} ＋81.5 −675/length_{OLIGONUCLEOTIDE} 好適なオリゴヌクレオチド配列をSolanum tuberosum の脱分枝酵素の配列番号：１又は配列番号：２中に再生したペプチド配列から計算することができる。ハイブリッド形成の適当な特異性を作り出すハイブリダイゼーション温度をできるだけ高く得るために、最も長い可能性のあるオリゴヌクレオチドを使用すべきである。しかしながら、その長さが増加するとき、縮重の程度、すなわち、異なる配列の組合せをもつオリゴヌクレオチドの数が増加する。6000までの縮重の程度が許容されることができる。配列番号１に与えるペプチドについては、長さ26塩基対のオリゴヌクレオチド・プローブのための配列が得られた。このオリゴヌクレオチドは、最大61％の、そして最小38％のGC含量において3072の縮重の程度をもつ。これは、56℃の最大ハイブリダイゼーション温度を与える。このプローブの合成のための塩基配列は、以下のように書いてある：３回のプロービング・サイクルにおいて、Solanum tuberosum の脱分枝酵素の cDNA配列を含むファージ種を単離し、そして標準的な方法によるpBluescript プラスミドのインビボにおける切除のために使用する。pBluescript プラスミドの挿入のとき、このcDNAの配列をSanger et al．(1977，Proc Natl Acad Sci 74 ：5463-5467)の方法に従って決定する。このcDNAを、標準的な方法（Sambrook e t al.，1989，Molecular cloning ：a laboratory manual，2nd Ed.，Cold Spri ng Harbor Laboratory Press，NY USA)によりそのpBluescript 誘導体からEcoR Ｉ又は NotＩによる消化後に単離し、そして植物の形質転換の目的をもったバイナリー・プラスミド内に標準的な方法によりクローン化することができる（実施例６参照）。実施例５分子遺伝学的方法の助けをかりての、Solanum tuberosum の脱分枝酵素をコードするゲノムDNA 配列の単離実施例２に従って得たペプチド配列を、その遺伝子コードの縮重を考慮しながら、Solanum tuberosum の脱分枝酵素のDNA 配列の抽出物を再生するオリゴヌクレオチド配列の誘導のために使用する。この誘導オリゴヌクレオチド配列に従って、合成オリゴヌクレオチドを標準的な方法により合成する。これらをSolanum tuberosum のゲノムを提示するゲノムDNA ライブラリーの精査のために使用する。最初に、ゲノムDNA ライブラリーをLiu et al．(1991，Plant Mol Biol 17 ： 1139-1154)に従って作り出す。ｐ2392株の大腸菌（E. coli)細胞を次にそのゲノムDNA 断片を含むファージにより感染させ、そして１cm² 当り30,000の密度でペトリ皿内の培地上にプレーティングする。約８時間のインキュベーション後、ニトロセルロース膜を溶解したバクテリア芝上に横たえ、それを１分後に取り出す。このフィルターを２分間、 0.2Ｍ NaOH，1.5Ｍ NaCl 中で２分間； 0.4Ｍトリス／HCl pH7.5 中で２分間、次に２倍 SCC中で２分間インキュベートする。乾燥後、DNA の固定をUV架橋形成を介して引き起こす。このフィルターを、次に放射末端標識されたオリゴヌクレオチドを添加する前に、以下のものを含んで成るバッファー中で３時間インキュベートする：２倍 SSC（塩化ナトリウム／クエン酸ナトリウム） 10倍 Denhardt'ｓ溶液 0.15％ SDS（ドデシル硫酸ナトリウム）５mM EDTA（エチレン・ジアミン・テトラ酢酸） 50mM リン酸２ナトリウム 250 μｇ／ml ニシン精子DNA。 12時間のハイブリダイゼーション後、フィルターを 0.2倍 SSC/0.1％ SDS中で洗浄し、そして次にオートラジオグラフにかける。フィルターのハイブリダイゼーションと洗浄のための温度を以下のように計算する： 16.6× 〔Na⁺ 〕＋ 0.41× 〔％GC_{oligonucleotide}〕＋81.5−675/length_{oligonucleotide} −15＝Ｔ好適なオリゴヌクレオチド配列をSolanum tuberosum の脱分枝酵素の配列番号：１又は配列番号：６中に再生したペプチド配列から計算することができる。ハイブリダイゼーションの適当な特異性を保証するハイブリダイゼーション温度をできるだけ高く得るために、最も長い可能性のあるオリゴヌクレオチドを使用すべきである。しかしながら、その長さが増加するとき、縮重の程度、すなわち、異なる配列の組合せをもつオリゴヌクレオチドの数が増加する。10,000までの縮重の程度が許容されることができる。タンパク質からのいくつかのペプチド配列が知られている場合、オリゴヌクレオチドはこれに従って計算され、そしてハイブリッド形成のためのオリゴヌクレオチド混合において一緒に使用されることができる。これはそのハイブリッド形成の効率を増加させることができる。配列番号１に与えるペプチドについては、長さ26塩基対のオリゴヌクレオチド・プローブのための配列が得られた。このオリゴヌクレオチドは、最大61％の、そして最小38％のGC含量において3072の縮重の程度をもつ。これは、56℃の最大ハイブリダイゼーション温度を与える。配列番号６に与えるペプチドについては、長さ20 塩基対のオリゴヌクレオチド・プローブのための配列が得られた。このオリゴヌクレオチドは、最大55％の、そして最小50％のGC含量において384 の縮重の程度をもつ。これから計算されるであろう最大ハイブリダイゼーション温度は60℃である。両オリゴヌクレオチド・プローブをハイブリダイゼーションのための54℃の温度において混合物として使用する。このプローブの合成のための塩基配列は、以下のように書いてある：３回のプロービング・サイクルにおいて、Solanum tuberosum の脱分枝酵素のゲノムDNA 配列を含むファージ種を単離する。このゲノムDNA ライブラリーを好適な制限酵素により陽性クローンから単離し、そしてゲル電気泳動により分離する。ラムダDNA をゲノムDNA 配列から分離し、そして次に標準的な方法 (Sambro ok et al.，1989，Molecular cloning：a laboratory manual，2nd Edition，Co ld Spring Harbor Laboratory Press，NY USA)により単離し、そしてpBluescrip t プラスミドにクローン化し、そしてDH5-α株の大腸菌 (E．coli)細胞に形質転換する。実施例５に従って作られたゲノムDNA は平均８kb〜15kbの長さをもっているので、 500塩基対〜3.5kb の長さをもつサブフラグメントを好適な制限酵素により標準的な方法を使用して作り出し、そしてpBluescript プラスミドにサブクローン化する。異なるpBluescript プラスミドの挿入DNA の配列をSanger et al．(1977，Proc Natl Acad Sci USA ，74 ：5463-5467)の方法を使用して決定する。 Solanum tuberosum の脱分枝酵素をコードする配列を好適な酵素による制限酵素消化の後に単離し、そして植物の形質転換の目的をもつバイナリー・プラスミドに標準的な方法によりクローン化することができる（実施例６参照）。実施例６Agrobacterium tumefaciens の形質転換のための及びアグロバクテリウムの助けをかりての植物の遺伝子修飾のためのバイナリー・プラスミドの構築植物形質転換のために、pBluescript 内の挿入物として実施例３又は４に従って得られたcDNAをpBIN 19 (Bevan（1984）Nucl Acids Res 12 ：8711-8720)から得られるバイナリー・ベクター内に再クローン化した。２つの構造物：一方において、プラスミドpB33−Ｒ、及び他方において、プラスミドpB33−Ｒ−アンチ、が作られた（図２と図３参照）。この２つの構築物は、植物内のトランスジーンの発現のためのプロモーターとして、Solanum tuberosum のＢ33プロモーターを含む (Rocha-Sosa et al.，EMBO J 8 ：23-29)。pB33−Ｒはセンス方向においてcDNAを含む、すなわち、トランスジェニック植物内で翻訳可能なRNA の形成を導びくけれども、pB33−Ｒ−アンチは、その内因性遺伝子の発現の阻害のためのアンチセンス構造を提示する。これらの構造を以下のように作った： pB33−Ｒ：Solanum tuberosum のＢ33遺伝子のプロモーターを、プラスミドpUC 19の SacＩ切断点内へのポリメラーゼIIによる突き出し端の分解の後に DraＩ断片（Rocha-Sosa et al.，EMBO J 8 ：23-29 に従う位置−1512〜＋14）としてクローン化した。EcoRＩ/SmaＩ断片として、このプロモーター領域を、Ｍ13 mp19 を含んで成るポリリンカーに対し直近にあるアグロバクテリウム（Agrobacterium tumefaciens)からのオクトピン・シンターゼ遺伝子の終結シグナルを含むバイナリー・ベクターpBIN 19 内にクローン化した。pB33はこの方法で作られた。実施例３又は４に従って単離されたcDNAのフィル・イン NotＩ断片を、そのプロモーターに対してセンス方向（そのプロモーターの３′−末端に対するそのcDNAの５′−末端）においてpB33の SmaＩ切断点内にクローン化した。 pB33−Ｒはこの方法で作られた。 pB33−Ｒ−アンチ：実施例３又は４に従うcDNAのフィル・イン NotＩ断片を、そのプロモーターに対してアンチセンス方向（そのプロモーターの３′−末端に対するそのcDNAの３′−末端）においてバイナリー・ベクターpB33にクローン化した。pB33−Ｒ−アンチはこの方法で作られた。構築物pB33−ＲとpB33−Ｒ−アンチに対応して、cDNAの代わりに、Solanum tu berosum からの脱分枝酵素をコードするゲノムDNA 配列を含むプラスミドを構築した。このために、このコーディングDNA 配列を、好適な制限エンドヌクレアーゼの助けをかりて実施例５に従って得られたpBluescript プラスミドから単離し、その突き出し端をフィル・インし、そして得られたDNA 断片を、センス又はアンチセンス方向でpB33の SmaＩ切断点内にクローン化した。 Agrobacterium tumefaciens の形質転換のために、上記バイナリー・プラスミドをHofgen & Willmitzer 法（1988，Nucl Acids Res 16 ：9877）に従う直接的形質転換によりそれらの細胞に導入する。形質転換されたアグロバクテリアのプラスミドDNA をBirnboim et al．(1979) Nucl Acids Res７：1513-1523 の方法に従って単離し、そして好適な制限酵素解裂後ゲル電気泳動により分析した。例えば、ポテト植物の形質転換のために、無菌培養の、メスにより乱切した（scarified）10 の小葉を例えば、選択下増殖させた30〜50μｌのAgrobacterium tumefaciens の一夜培養物を含む２％スクロースを含む10ml MS 培地中に横たえる。３〜５分間の軽い振とう後、ペトリ皿を暗所で25℃においてインキュベートする。２日後、これらの葉を、 1.6％グルコース、２mg／ｌゼアチン・リボース、0.02mg／ｌナフチル酢酸、0.02mg／ｌジベレリン酸、 500mg／ｌ Claforan，50mg／ｌカナマイシン及び 0.8％バクト−寒天を含むMS培地上に横たえる。25℃及び3000ルクスにおいて１週間のインキュベーション後、培地中のClaforan濃度は半分程減少する。さらなる培養をRocha-So sa et al，(1989) EMBO J I 8 ：29により記載されたように行った。この植物の遺伝子修飾の成功のテストは、（pB33−Ｒによる形質転換の場合においては）脱分枝酵素をコードするmRNAの発生に関して、又はpB33−Ｒ−アンチによる形質転換の場合においては内因性mRNAの消失に関して、全RNA の分析を通じて可能である。植物の全RNA の単離は、Logemann et al．(1987) Anal Bioche m 163 ：16-20 に従って行われる。この分析のために、50μｇの各全RNA を、転写物の存在又は非存在について、ノーザン・ブロットの助けをかりて、チェックする。トランスジェニック植物中の脱分枝酵素の存在をテストするために、植物組織からの全タンパク質の抽出、そして次に実施例３に記載したウサギからの抗血清によるウェスタン・ブロット分析を行う。このために、タンパク質抽出物を、分子量に従ってSDS-PAAG中のゲル電気泳動により分離する。SDS PAAG電気泳動（PAGE）の後、タンパク質ゲルを、グラファイト電極のための転移バッファー（48ｇ／ｌトリス、39ｇ／ｌグリシン、0.0375％ SDS，20％メタノール）中で15〜30分間平衡にし、そして次に１〜２時間 1.3mA／cm² を用いてニトロセルロース・フィルター上に４℃において転移する。このフィルターを、TBS バッファー（20mMトリス／HCl pH7.5 ；500m M NaCl）中３％ゼラチンにより30分間飽和させる。このフィルターを次に、TBS ，TTBS（0.1％ポリオキシエチレン−（20）−ソルビタン・モノラウレートを含むTBS バッファー）及びTBS バッファーの各々で15分間洗浄する。洗浄後、このフィルターを、室温において１時間アルカリ性ホスファターゼ−結合ヤギ−抗− ウサギ(GAR) 抗体(TBS中１：7,500)とインキュベートする。このフィルターを次に上述のように洗浄し、そしてAPバッファー（100mM トリス／HCl pH9.5，100mM NaCl,５mM MgCl₂）中で平衡にする。このアルカリ性ホスファターゼ反応を、50 ml AP バッファー中、70μｌ４−ニトロテトラゾリウム(NBT) 溶液（70％ジメチルホルムアミド中50mg／ml NBT）及び35μｌ５−ブロモ−４−クロロ−３− インドールイル・ホスフェート（BCIP） (ジメチルホルムアミド中50mg／ml BCI P)の基質添加により開始させる。５分後、第１シグナルが規定どおりに観察されることができる。トランスジェニック・ポテト植物の澱粉中のアミロース／アミロペクチン含量の測定のために、10mmの直径をもつ小葉片を６％スクロース溶液上連続光下14時間浮かべる。この小葉片中の顕著に増加されたデンプン形成をこの光インキュベーションにより誘導する。このインキュベーション後、アミロースとアミロペクチン濃度をHovenkamp-Hermelink et al.（1988，Potato Researc h 31 ：241-246）に従って測定する。分枝（α−１，６グリコシル結合）の程度、その鎖長及びその澱粉粒のサイズの測定をMorrison et al．(1990，Methods in Plant Biochemistry Academic Press Lm td．２：323-352)に従って行う。

【手続補正書】特許法第１８４条の８【提出日】１９９５年９月５日【補正内容】請求の範囲１．コード生成ストランド上に植物脱分枝酵素をコードするポテト、小麦又はメイズ由来のDNA 配列であって、トランスジェニック植物内でその配列により形成される転写物がトランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度を減少させる脱分枝酵素の酵素活性をもつ新規のタンパク質をコードすることを特徴とするDNA 配列。２．コード生成ストランド上に植物脱分枝酵素をコードするポテト、小麦又はメイズ由来のDNA 配列であって、トランスジェニック植物内でその配列により形成された転写物がそのトランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度を増加させる脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成を妨害することを特徴とするDNA 配列。３．以下のペプチド配列（配列番号：１〜配列番号：12）の中の少なくとも１をもつ脱分枝酵素のタンパク質配列がそれらのコード生成ストランドによりコードされる、請求項１又は２に記載のDNA 配列。４．コード生成ストランド上に植物脱分枝酵素をコードするポテト、小麦又はメイズ由来のDNA 配列又はその断片を有する組換えプラスミドであって、トランスジェニック植物内でそのDNA 配列から誘導される転写物がトランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度を減少させる脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成に影響を及ぼすことを特徴とする組換えプラスミド。５．コード生成ストランド上に植物脱分枝酵素をコードするポテト、小麦又はメイズ由来のDNA 配列又はその断片を有する組換えプラスミドであって、トランスジェニック植物内でそのDNA 配列から誘導される転写物がトランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度を増加させる脱分枝酵素の酵素活性をもつ内因性タンパク質の合成を妨害することを特徴とする組換えプラスミド。６．以下のタンパク質配列（配列番号：１〜配列番号：12）の中の少なくとも１がそのコード生成ストランドによりコードされる、請求項４又は５に記載の組換えプラスミド。７．アミロペクチン澱粉の、増加された又は減少された分枝の程度をもつトランスジェニック植物の生産方法であって、以下の段階：ａ）以下の部分的配列をもつポテト、小麦又はメイズ由来のDNA 配列の製造：ｉ）植物内で活性であり、そして提案された標的組織又は標的細胞内でRNA の形成を保証するプロモーター、 ii）脱分枝酵素の酵素活性をもつ新規タンパク質配列をトランスジェニック植物内でコードするRNA の転写を許容し、又は脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成をトランスジェニック植物内で妨害するRNA の転写を許容する構造DN A 配列、 iii）適宜、転写の終結及び上記RNA の３′−末端へのポリ−Ａ基の付加を植物細胞内で導く３′−非翻訳配列、ｂ）好ましくは組換えプラスミドを使用した、植物細胞のゲノム内への上記構造DNA 配列の伝達及び取り込み、及びｃ）上記の形質転換された植物細胞からの無傷の全植物の再生、を含んで成る方法。８．ii）の下で命名された脱分枝酵素のタンパク質配列内に、タンパク質配列、配列番号：１〜配列番号：12の中の少なくとも１が含まれる、請求項７に記載の方法。９．請求項１〜３の中のいずれか１項に記載のポテト、小麦又はメイズ由来の DNA 配列を含む植物細胞。 10．アミロペクチン澱粉の、増加され又は減少された分枝の程度をもつポテト、小麦又はメイズの生産のための、請求項９に記載の植物細胞の使用。 11．請求項７又は８に記載の方法により得られる、アミロペクチン澱粉の、増加され又は減少された分枝の程度をもつトランスジェニックなポテト、小麦又はメイズ植物。 12．アミロペクチン澱粉の、増加され又は減少された分枝の程度をもつポテト、小麦又はメイズ植物の生産のための、請求項１〜３の中のいずれか１項に記載のDNA 配列の使用。 13．細胞内で、アミロペクチン澱粉の分枝の程度を増加させ又は減少させる目的をもつ植物細胞の形質転換のための、請求項４〜６の中のいずれか１項に記載の組換えプラスミドの使用。 14．脱分枝酵素をコードする核酸配列の同定のための、請求項１〜３の中のいずれか１項に記載のDNA 配列の使用。 15．請求項11に記載の植物から単離することができる、修飾された分枝の程度をもつアミロペクチン澱粉。 16．請求項９に記載の植物細胞から単離することができる、修飾された分枝の程度をもつアミロペクチン澱粉。 17．食品及び工業製品の製造のための、請求項15又は16に記載の澱粉の使用。 18．脱分子酵素の酵素活性、ペプチド配列、配列番号：１〜配列番号：12の中の１以上及び50kdと150kd の間の分子量をもつ、タンパク質。 19．分子量が70kdと130kd の間にある、請求項18に記載のタンパク質。 20．分子量が90kdと110kd の間にある、請求項18又は19に記載のタンパク質。 21．それらがポテト、小麦又はメイズ植物由来であることを特徴とする、請求項18〜20の中のいずれか１項に記載のタンパク質。 22．それらがSolanum tuberosum 由来であることを特徴とする、請求項18〜20 の中のいずれか１項に記載のタンパク質。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者エメルマン，ミヒャエルドイツ連邦共和国，デー―13351 ベルリン，アフリカニーシェシュトラーセ 144 ツェー. (72)発明者ビルジン，イバースェーデン国，エス―115 34 ストックホルム，エルカレオベーゲン 19

Claims

【特許請求の範囲】１．コード生成ストランド上に植物脱分枝酵素をコードするDNA 配列であって、トランスジェニック植物内でその配列により形成される転写物がトランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度を減少させる脱分枝酵素の酵素活性をもつ新規のタンパク質をコードすることを特徴とするDNA 配列。２．コード生成ストランド上に植物脱分枝酵素をコードするDNA 配列であって、トランスジェニック植物内でその配列により形成された転写物がそのトランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度を増加させる脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成を妨害することを特徴とするDNA 配列。３．以下のペプチド配列（配列番号：１〜配列番号：12）の中の少なくとも１をもつ脱分枝酵素のタンパク質配列がそれらのコード生成ストランドによりコードされる、請求項１又は２に記載のDNA 配列。４．コード生成ストランド上に植物脱分枝酵素をコードするDNA 配列又はその断片を有する組換えプラスミドであって、トランスジェニック植物内でそのDNA 配列から誘導される転写物がトランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度を減少させる脱分枝酵素の酵素活性をもつ新規のタンパク質の合成に影響を及ぼすことを特徴とする組換えプラスミド。５．コード生成ストランド上に植物脱分枝酵素をコードするDNA 配列又はその断片を有する組換えプラスミドであって、トランスジェニック植物内でそのDNA 配列から誘導される転写物がトランスジェニック植物内でアミロペクチン澱粉の分枝の程度を増加させる脱分枝酵素の酵素活性をもつ内因性タンパク質の合成を妨害することを特徴とする組換えプラスミド。６．以下のタンパク質配列（配列番号：１〜配列番号：12）の中の少なくとも１がそのコード生成ストランドによりコードされる、請求項４又は５に記載の組換えプラスミド。７．アミロペクチン澱粉の、増加された又は減少された分枝の程度をもつトランスジェニック植物の生産方法であって、以下の段階：ａ）以下の部分的配列をもつDNA 配列の製造：ｉ）植物内で活性であり、そして提案された標的組織又は標的細胞内でRNA の形成を保証するプロモーター、 ii）脱分枝酵素の酵素活性をもつ新規タンパク質配列をトランスジェニック植物内でコードするRNA の転写を許容し、又は脱分枝酵素の酵素活性をもつタンパク質の合成をトランスジェニック植物内で妨害するRNA の転写を許容する構造DNA 配列、 iii）適宜、転写の終結及び上記RNA の３′−末端へのポリ−Ａ基の付加を植物細胞内で導く３′−非翻訳配列、ｂ）好ましくは組換えプラスミドを使用した、植物細胞のゲノム内への上記構造DNA 配列の伝達及び取り込み、及びｃ）上記の形質転換された植物細胞からの無傷の全植物の再生、を含んで成る方法。８．ii）の下で命名された脱分枝酵素のタンパク質配列内に、タンパク質配列、配列番号：１〜配列番号：12の中の少なくとも１が含まれる、請求項７に記載の方法。９．請求項１〜３の中のいずれか１項に記載のDNA 配列を含む植物細胞。 10．アミロペクチン澱粉の、増加され又は減少された分枝の程度をもつ植物の生産のための、請求項９に記載の植物細胞の使用。 11．請求項７又は８に記載の方法により得られる、アミロペクチン澱粉の、増加され又は減少された分枝の程度をもつトランスジェニック植物。 12．それらが有用植物ポテト、メイズ及び小麦である、請求項11に記載の植物。 13．アミロペクチン澱粉の、増加され又は減少された分枝の程度をもつ植物の生産のための、請求項１〜３の中のいずれかＩ項に記載のDNA 配列の使用。 14．細胞内で、アミロペクチン澱粉の分枝の程度を増加させ又は減少させる目的をもつ植物細胞の形質転換のための、請求項４〜６の中のいずれか１項に記載の組換えプラスミドの使用。 15．脱分枝酵素をコードする核酸配列の同定のための、請求項１〜３の中のいずれか１項に記載のDNA 配列の使用。 16．請求項11又は12に記載の植物から単離することができる、修飾された分枝の程度をもつアミロペクチン澱粉。 17．請求項９に記載の植物細胞から単離することができる、修飾された分枝の程度をもつアミロペクチン澱粉。 18．食品及び工業製品の製造のための、請求項16又は17に記載の澱粉の使用。 19．脱分子酵素の酵素活性、ペプチド配列、配列番号：１〜配列番号：12の中の１以上及び50kdと150kd の間の分子量をもつ、タンパク質。 20．分子量が70kdと130kd の間にある、請求項19に記載のタンパク質。 21．分子量が90kdと110kd の間にある、請求項19又は20に記載のタンパク質。 22．それらが植物由来であることを特徴とする、請求項19〜21の中のいずれか１項に記載のタンパク質。 23．それらがSolanum tuberosum 由来であることを特徴とする、請求項19〜22 の中のいずれか１項に記載のタンパク質。