JPH09210962A - 電気泳動装置 - Google Patents
電気泳動装置Info
- Publication number
- JPH09210962A JPH09210962A JP9047574A JP4757497A JPH09210962A JP H09210962 A JPH09210962 A JP H09210962A JP 9047574 A JP9047574 A JP 9047574A JP 4757497 A JP4757497 A JP 4757497A JP H09210962 A JPH09210962 A JP H09210962A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- nucleic acid
- acid sample
- polyacrylamide gel
- excitation light
- wavelength
- Prior art date
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Abstract
(57)【要約】
【目的】高感度で蛍光標識ＤＮＡを検出する電気泳動装
置を提供する。 【構成】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出する電
気泳動装置において、核酸試料が泳動するポリアクリル
アミドゲルを含む電気泳動部２と、ポリアクリルアミド
ゲルを泳動する核酸試料に照射して蛍光体を励起する励
起光を発するレーザー光源１と、励起光４の照射により
生じた蛍光を検出する光検出手段１０とを具備し、励起
光の波長を５３０ｎｍ以上とする。 【効果】微量蛍光ラベルＤＮＡを検出できる。
置を提供する。 【構成】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出する電
気泳動装置において、核酸試料が泳動するポリアクリル
アミドゲルを含む電気泳動部２と、ポリアクリルアミド
ゲルを泳動する核酸試料に照射して蛍光体を励起する励
起光を発するレーザー光源１と、励起光４の照射により
生じた蛍光を検出する光検出手段１０とを具備し、励起
光の波長を５３０ｎｍ以上とする。 【効果】微量蛍光ラベルＤＮＡを検出できる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本装置はＤＮＡの塩基配列決定あ
るいはＤＮＡプローブなど蛍光標識ＤＡＮを検出する電
気泳動装置に関する。
るいはＤＮＡプローブなど蛍光標識ＤＡＮを検出する電
気泳動装置に関する。
【０００２】
【従来の技術】従来、塩基配列の決定には放射性リン（
32Ｐ）でＤＮＡ断片を標識し、電気泳動分離後のパター
ンをオートラジオグラフィーで写真フィルタに転写する
方式が用いられていた。最近、紫外線励起の蛍光体や蛋
白質の標識に用いられるＦＩＴＣ（フルオレセインイソ
チオシアネート）（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ ｉｓｏｔ
ｈｉｏｃｙａｎａｔｅ）、ＴＲＩＴＣ（テトラメチルロ
ーダミンイソチオシアネート）（ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙ
ｌ ｒｈｏｄａｍｉｎｅ ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔ
ｅ）、Ｔｅｘａｓ Ｒｅｄ （スルフオローダアミン１
０１）（ｓｕｌｆｏｒｈｏｄａｍｉｎｅ １０１）など
の色素で核酸を標識し、紫外レーザーあるいはアルゴン
レーザ（４８８ｎｍ、５１４ｎｍ）で標識ＤＮＡを励起
して発する蛍光を検出する事で核酸断片の検出を行なう
方法が提案された。（Ｎａｔｕｒｅ、３２１、６７４
（１９８６））。
32Ｐ）でＤＮＡ断片を標識し、電気泳動分離後のパター
ンをオートラジオグラフィーで写真フィルタに転写する
方式が用いられていた。最近、紫外線励起の蛍光体や蛋
白質の標識に用いられるＦＩＴＣ（フルオレセインイソ
チオシアネート）（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ ｉｓｏｔ
ｈｉｏｃｙａｎａｔｅ）、ＴＲＩＴＣ（テトラメチルロ
ーダミンイソチオシアネート）（ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙ
ｌ ｒｈｏｄａｍｉｎｅ ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔ
ｅ）、Ｔｅｘａｓ Ｒｅｄ （スルフオローダアミン１
０１）（ｓｕｌｆｏｒｈｏｄａｍｉｎｅ １０１）など
の色素で核酸を標識し、紫外レーザーあるいはアルゴン
レーザ（４８８ｎｍ、５１４ｎｍ）で標識ＤＮＡを励起
して発する蛍光を検出する事で核酸断片の検出を行なう
方法が提案された。（Ｎａｔｕｒｅ、３２１、６７４
（１９８６））。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】このような蛍光標識に
よるＤＮＡ検出法の難点は十分な検出感度が得られない
点であった。即ち、蛍光標識ＤＮＡをゲル中に泳動させ
た後、あるいは泳動中に光を照射してＤＮＡを検出しよ
うとする蛍光標識ＤＮＡから出る蛍光に加えて、ゲルか
ら出る散乱光、蛍光が観測されるためＤＮＡから出る微
弱な光を検出できない問題があった。本発明の目的は上
記課題を克服し、高感度で蛍光標識ＤＮＡを検出する電
気泳動装置を提供することにある。
よるＤＮＡ検出法の難点は十分な検出感度が得られない
点であった。即ち、蛍光標識ＤＮＡをゲル中に泳動させ
た後、あるいは泳動中に光を照射してＤＮＡを検出しよ
うとする蛍光標識ＤＮＡから出る蛍光に加えて、ゲルか
ら出る散乱光、蛍光が観測されるためＤＮＡから出る微
弱な光を検出できない問題があった。本発明の目的は上
記課題を克服し、高感度で蛍光標識ＤＮＡを検出する電
気泳動装置を提供することにある。
【０００４】
【課題を解決するための手段】上記目的は測定上防害と
なるゲルからの蛍光の分光特性の検討、原因の探究、及
び励起光源と蛍光色素の注意深い選択により、励起光源
の波長が５３０ｎｍ以上のレーザーとして、ゲル蛍光を
低減し、蛍光色素発光を相対的に高める事により達成さ
れる。
なるゲルからの蛍光の分光特性の検討、原因の探究、及
び励起光源と蛍光色素の注意深い選択により、励起光源
の波長が５３０ｎｍ以上のレーザーとして、ゲル蛍光を
低減し、蛍光色素発光を相対的に高める事により達成さ
れる。
【０００５】
【作用】標識用蛍光体として用いられているエテノアデ
ノシン、ＦＩＴＣ、ＴＲＩＴＣ及びＴｅｘａｓ Ｒｅｄ
の最適励起波長及び極大蛍光発光波長はそれぞれ、（３
００ｎｍ、４１０ｎｍ）、（４９０ｎｍ、５２０ｎ
ｍ）、（５５０ｎｍ、５８０ｎｍ）、及び（５８０ｎ
ｍ、６０５ｎｍ）である。これら色素の励起に都合が良
く、出力の比較的大きなレーザー光源として、ＹＡＧ
（４倍波２６５ｎｍ）やＡｒ（４８８ｎｍ、５１４．５
ｎｍ）レーザーが用いられている。一方、ゲルからの発
光は励起波長及び発光波長によって大きく変化する。図
１はゲル発光強度の励起光依存性を示したもので発光波
長は各色素の発光波長と一致させてある。即ち、１０１
は５２０ｎｍ、１０２は５８０ｎｍ、１０３は６０５ｎ
ｍの発光である。これから励起波長及び発光波長が長く
なるにつれゲルからの発光が小さくなる事がわかる。ゲ
ルからの発光にはゲル素材中の不純物の発するものと、
アクリルアミドが重合した事により生じるものがある。
後者は励起波長が短かいと大きいが、波長が長くなるに
つれて減少し、５３０〜５４０ｎｍ以上の励起波長では
非常に小さくなる。そこで励起光源として５３０〜５４
０ｎｍ以上の波長を持つレーザーを用い、発光波長が６
００ｎｍ前後あるいはそれ以上の発光波長を持つ蛍光色
素を用いてＤＮＡを標識する事により高感度でＤＮＡ断
片を検出できる。
ノシン、ＦＩＴＣ、ＴＲＩＴＣ及びＴｅｘａｓ Ｒｅｄ
の最適励起波長及び極大蛍光発光波長はそれぞれ、（３
００ｎｍ、４１０ｎｍ）、（４９０ｎｍ、５２０ｎ
ｍ）、（５５０ｎｍ、５８０ｎｍ）、及び（５８０ｎ
ｍ、６０５ｎｍ）である。これら色素の励起に都合が良
く、出力の比較的大きなレーザー光源として、ＹＡＧ
（４倍波２６５ｎｍ）やＡｒ（４８８ｎｍ、５１４．５
ｎｍ）レーザーが用いられている。一方、ゲルからの発
光は励起波長及び発光波長によって大きく変化する。図
１はゲル発光強度の励起光依存性を示したもので発光波
長は各色素の発光波長と一致させてある。即ち、１０１
は５２０ｎｍ、１０２は５８０ｎｍ、１０３は６０５ｎ
ｍの発光である。これから励起波長及び発光波長が長く
なるにつれゲルからの発光が小さくなる事がわかる。ゲ
ルからの発光にはゲル素材中の不純物の発するものと、
アクリルアミドが重合した事により生じるものがある。
後者は励起波長が短かいと大きいが、波長が長くなるに
つれて減少し、５３０〜５４０ｎｍ以上の励起波長では
非常に小さくなる。そこで励起光源として５３０〜５４
０ｎｍ以上の波長を持つレーザーを用い、発光波長が６
００ｎｍ前後あるいはそれ以上の発光波長を持つ蛍光色
素を用いてＤＮＡを標識する事により高感度でＤＮＡ断
片を検出できる。
【０００６】
【実施例】以上、本発明の一実施例を図２により説明す
る。測定装置は光源１、泳動分離器２、及び検出器１０
からなる。光源には５４３ｎｍ発振のＨｅ−Ｎｅレーザ
ー（１ｍＷ）を用いた。泳動分離はポリアクリルアミド
板を用いた電気泳動で行なった。レーザー光はレンズで
細く絞られた後、泳動板の泳動始点から一定距離にある
部分を照射する。本実施例ではレーザー光はゲル平面に
平行な方向から、即ちゲル側面からゲル中に入射してい
るが、レーザー光を斜め前方あるいは後方から入射させ
スキャンさせることもできる。試料の調整は次のように
行なう。試料ＤＮＡの一端をＴｅｘａｓ Ｒｅｄ ある
いはＴＲＩＴＣ蛍光体で標識し、他端がアデニン塩基
（Ａ）で終る種々の長さの断片群｛Ａ｝を作成する。同
様に他端がＧ、ＣあるいはＴである断片群｛Ｇ｝、
｛Ｃ｝及び｛Ｔ｝を作成する。即ち、塩基配列を決定し
ようとするＤＮＡ１種につき４種の断片群を作成する。
これら断片群を別々のウェル３に注入し、電気泳動を行
なう。ＤＮＡ断片は長いものほどゆっくり、短かいもの
は早く泳動するので図に示したようにバンド状に分離さ
れ短かい断片から順次レーザー照射部に到達し、そこで
蛍光を発する。
る。測定装置は光源１、泳動分離器２、及び検出器１０
からなる。光源には５４３ｎｍ発振のＨｅ−Ｎｅレーザ
ー（１ｍＷ）を用いた。泳動分離はポリアクリルアミド
板を用いた電気泳動で行なった。レーザー光はレンズで
細く絞られた後、泳動板の泳動始点から一定距離にある
部分を照射する。本実施例ではレーザー光はゲル平面に
平行な方向から、即ちゲル側面からゲル中に入射してい
るが、レーザー光を斜め前方あるいは後方から入射させ
スキャンさせることもできる。試料の調整は次のように
行なう。試料ＤＮＡの一端をＴｅｘａｓ Ｒｅｄ ある
いはＴＲＩＴＣ蛍光体で標識し、他端がアデニン塩基
（Ａ）で終る種々の長さの断片群｛Ａ｝を作成する。同
様に他端がＧ、ＣあるいはＴである断片群｛Ｇ｝、
｛Ｃ｝及び｛Ｔ｝を作成する。即ち、塩基配列を決定し
ようとするＤＮＡ１種につき４種の断片群を作成する。
これら断片群を別々のウェル３に注入し、電気泳動を行
なう。ＤＮＡ断片は長いものほどゆっくり、短かいもの
は早く泳動するので図に示したようにバンド状に分離さ
れ短かい断片から順次レーザー照射部に到達し、そこで
蛍光を発する。
【０００７】蛍光はフィルターを通過後、集光レンズを
用いてイメージ増幅器７上に蛍光像として結像され増幅
された後にフォトダイオードアレー８で検出されコンピ
ューター１２で処理される。本実施例ではレーサー照射
部分のａｂ間の領域が検出されるが、この領域をいくつ
もの泳動路が交叉する。１つの泳動路に注目すると蛍光
ラベルＤＮＡが照射ラインを通過する毎に蛍光信号が増
加するので各泳動路毎の信号の時間変化は図中１４に示
したようになる。泳動路毎に注入した断片群の種類
（Ａ、Ｇ、ＣあるいはＴ）は既知なので、時間と共に出
現する信号を順次読む事により塩基配列が決定できる。
用いてイメージ増幅器７上に蛍光像として結像され増幅
された後にフォトダイオードアレー８で検出されコンピ
ューター１２で処理される。本実施例ではレーサー照射
部分のａｂ間の領域が検出されるが、この領域をいくつ
もの泳動路が交叉する。１つの泳動路に注目すると蛍光
ラベルＤＮＡが照射ラインを通過する毎に蛍光信号が増
加するので各泳動路毎の信号の時間変化は図中１４に示
したようになる。泳動路毎に注入した断片群の種類
（Ａ、Ｇ、ＣあるいはＴ）は既知なので、時間と共に出
現する信号を順次読む事により塩基配列が決定できる。
【０００８】図３は蛍光標識に用いられるＦＩＴＣ、Ｔ
ＲＩＴＣ及びＴｅｘａｓ Ｒｅｄの励起スペクトルであ
る。試料濃度は１０ｎｍｏｌｅ／１である。励起光源と
してＦＩＴＣ用には４８８ｎｍアルゴンレーザー、ＴＲ
ＩＴＣ用には５４３ｎｍのＨｅ−Ｎｅレーザー、Ｔｅｘ
ａｓ Ｒｅｄ用には５６７ｎｍのクリプトンレーザーが
最適である。これらを用いた時、発光強度はＴｅｘａｓ
Ｒｅｄ、ＦＩＴＣ、ＴＲＩＴＣの順である。ＦＩＴＣ
は溶媒のｐＨなどによっても強度が変化するがほぼＴｅ
ｘａｓ Ｒｅｄと同等と評価できる。しかし、ゲルから
の背景光強度で規格化した蛍光強度は大きく異なる。図
４はゲル背景光を１とした時の各蛍光体の強徳を示した
ものである。蛍光体の濃度は１ｎｍｏｌｅ／１である。
ＲＩＴＣ及びＴｅｘａｓ Ｒｅｄの励起スペクトルであ
る。試料濃度は１０ｎｍｏｌｅ／１である。励起光源と
してＦＩＴＣ用には４８８ｎｍアルゴンレーザー、ＴＲ
ＩＴＣ用には５４３ｎｍのＨｅ−Ｎｅレーザー、Ｔｅｘ
ａｓ Ｒｅｄ用には５６７ｎｍのクリプトンレーザーが
最適である。これらを用いた時、発光強度はＴｅｘａｓ
Ｒｅｄ、ＦＩＴＣ、ＴＲＩＴＣの順である。ＦＩＴＣ
は溶媒のｐＨなどによっても強度が変化するがほぼＴｅ
ｘａｓ Ｒｅｄと同等と評価できる。しかし、ゲルから
の背景光強度で規格化した蛍光強度は大きく異なる。図
４はゲル背景光を１とした時の各蛍光体の強徳を示した
ものである。蛍光体の濃度は１ｎｍｏｌｅ／１である。
【０００９】５４３ｎｍ励起のＴｅｘａｓ Ｒｅｄから
出る蛍光の絶対量はＦＩＴＣより少ないが、ゲル蛍光の
量が少ない（図１参照）ため相対強度はＦＩＴＣより大
きくなり高い感度が得られる事になる。図４から明らか
なように、発光波長が約５９５ｎｍ以上、約６４０ｎｍ
以下では、蛍光体から発する蛍光の強度のゲルから発す
る蛍光の強度に対する比は、５４３ｎｍによる励起の時
は５以上であり、５８０ｎｍによる励起の時は１３以上
であることは明らかである。Ｈｅ−Ｎｅレーザーはアル
ゴンレーザーに比べて非常に安価であり、安価なレーザ
ーでより高感度が得られる。実際の検出限界は蛍光の絶
対強度にも依存する。蛍光強度が大きいとそのゆらぎも
小さくなり、微量まで検出できる事になる。
出る蛍光の絶対量はＦＩＴＣより少ないが、ゲル蛍光の
量が少ない（図１参照）ため相対強度はＦＩＴＣより大
きくなり高い感度が得られる事になる。図４から明らか
なように、発光波長が約５９５ｎｍ以上、約６４０ｎｍ
以下では、蛍光体から発する蛍光の強度のゲルから発す
る蛍光の強度に対する比は、５４３ｎｍによる励起の時
は５以上であり、５８０ｎｍによる励起の時は１３以上
であることは明らかである。Ｈｅ−Ｎｅレーザーはアル
ゴンレーザーに比べて非常に安価であり、安価なレーザ
ーでより高感度が得られる。実際の検出限界は蛍光の絶
対強度にも依存する。蛍光強度が大きいとそのゆらぎも
小さくなり、微量まで検出できる事になる。
【００１０】通常、蛍光体からの発光信号は干渉フィル
ターを通して受光される。干渉フィルターは透過波長帯
域が狭く、透過率も低い。本実施例のようにＡｒレーザ
ー（通常１０〜２０ｍＷを使用）より出力の小さい５４
３ｎｍＨｅ−Ｎｅ（最高出力１ｍＷ）レーザーを用いる
場合には受光系を工夫し受光量をふやすことやフィルタ
ー設計を最適にして蛍光の損失を防ぐ必要がある。本実
施例では透過波長帯域が広く、透過率も高いバンドパス
フィルターを用いている。バンドパスフィルターの透過
帯の立ち上がりは急なほど良いが、通常、透過率が０％
となる波長と透過率が７０〜８０％以上の透過帯の波長
領域との波長差は２０〜３０ｎｍ以上である。図４を用
いてフィルターの設計をし、５９５ｎｍ〜６２０ｎｍの
領域を高透過率にし、これより短及び長波長側で急激に
透過率が減衰するフィルターを用いた。このフィルター
では５７０ｎｍでの透過率はほとんど０％である。
ターを通して受光される。干渉フィルターは透過波長帯
域が狭く、透過率も低い。本実施例のようにＡｒレーザ
ー（通常１０〜２０ｍＷを使用）より出力の小さい５４
３ｎｍＨｅ−Ｎｅ（最高出力１ｍＷ）レーザーを用いる
場合には受光系を工夫し受光量をふやすことやフィルタ
ー設計を最適にして蛍光の損失を防ぐ必要がある。本実
施例では透過波長帯域が広く、透過率も高いバンドパス
フィルターを用いている。バンドパスフィルターの透過
帯の立ち上がりは急なほど良いが、通常、透過率が０％
となる波長と透過率が７０〜８０％以上の透過帯の波長
領域との波長差は２０〜３０ｎｍ以上である。図４を用
いてフィルターの設計をし、５９５ｎｍ〜６２０ｎｍの
領域を高透過率にし、これより短及び長波長側で急激に
透過率が減衰するフィルターを用いた。このフィルター
では５７０ｎｍでの透過率はほとんど０％である。
【００１１】光源にクリプトンレーザー（５６８ｎｍ）
を用いると更に高感度が得られるが、受光系に入る散乱
光を除去するため、色ガラスフィルターをバンドパスフ
ィルターと合わせて用いる必要がある。光源として５７
０〜５８０ｎｍに波長をセットした色素レーザーや銅蒸
気レーザーあるいは半導体レーザーなどを使用すること
もできる。
を用いると更に高感度が得られるが、受光系に入る散乱
光を除去するため、色ガラスフィルターをバンドパスフ
ィルターと合わせて用いる必要がある。光源として５７
０〜５８０ｎｍに波長をセットした色素レーザーや銅蒸
気レーザーあるいは半導体レーザーなどを使用すること
もできる。
【００１２】
【発明の効果】本発明の電気泳動装置によれば、ゲル発
光の小さい波長領域での蛍光発光を利用するので微量の
蛍光ラベルＤＮＡを高感度で検出する事ができる。
光の小さい波長領域での蛍光発光を利用するので微量の
蛍光ラベルＤＮＡを高感度で検出する事ができる。
【図１】ゲルからできる蛍光強度の励起光依存性を示す
特性図。
特性図。
【図２】計測装置の概念図。
【図３】各種色素の励起スペクトル。
【図４】ゲル蛍光で規格化した色素蛍光強度の発光波長
依存性を示す特性図。
依存性を示す特性図。
１…レーザー、２…電気泳動ゲル、３…試料注入ウェ
ル、４…レーザー光路、５…ミラー、６…レンズ、７…
イメージ増幅器、８…ダイオードアレー、９…フィルタ
ー、１０…蛍光受光系、１１…泳動電源、１２…コンピ
ューター、１３…出力器機、１４…データチャート。
ル、４…レーザー光路、５…ミラー、６…レンズ、７…
イメージ増幅器、８…ダイオードアレー、９…フィルタ
ー、１０…蛍光受光系、１１…泳動電源、１２…コンピ
ューター、１３…出力器機、１４…データチャート。
Claims (7)
- 【請求項１】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出す
る電気泳動装置において、前記核酸試料が泳動するポリ
アクリルアミドゲルを含む電気泳動部と、前記ポリアク
リルアミドゲルを泳動する前記核酸試料に照射して前記
蛍光体を励起する励起光を発するレーザー光源と、前記
励起光の照射により生じた蛍光を検出する光検出手段と
を具備し、前記励起光の波長が５３０ｎｍ以上であるこ
とを特徴とする電気泳動装置。 - 【請求項２】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出す
る電気泳動装置において、前記核酸試料が泳動するポリ
アクリルアミドゲルを含む電気泳動部と、前記ポリアク
リルアミドゲルを泳動する前記核酸試料に照射して前記
蛍光体を励起する励起光を発するレーザー光源と、前記
励起光の照射により生じた蛍光を検出する光検出手段と
を具備し、前記レーザー光源が、Ｈｅ−Ｎｅレーザー、
クリプトンレーザー、半導体レーザー、色素レーザーの
いずれかであり、前記レーザー光の波長が５３０ｎｍ以
上であることを特徴とする電気泳動装置。 - 【請求項３】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出す
る電気泳動装置において、前記核酸試料が泳動するポリ
アクリルアミドゲルを含む電気泳動部と、前記ポリアク
リルアミドゲルを泳動する前記核酸試料に照射して前記
蛍光体を励起する励起光を発するレーザー光源と、前記
励起光の照射により生じた蛍光を検出する光検出手段と
を具備し、前記レーザー光の波長が５３０ｎｍ以上であ
り、前記蛍光体の極大蛍光発光波長が、６００ｎｍ近
傍、もしくは６００ｎｍ以上であることを特徴とする電
気泳動装置。 - 【請求項４】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出す
る電気泳動装置において、前記核酸試料が泳動するポリ
アクリルアミドゲルを含む電気泳動部と、前記ポリアク
リルアミドゲルを泳動する前記核酸試料に照射して前記
蛍光体を励起する励起光を発するレーザー光源と、前記
励起光の照射により生じた蛍光を検出する光検出手段と
を具備し、前記レーザー光の波長が５３０ｎｍ以上であ
り、前記光検出手段は、透過率が０％となる波長と、透
過率が７０％以上となる波長の差が約２０ｎｍ以上であ
るフイルタを備えることを特徴とする電気泳動装置。 - 【請求項５】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出す
る電気泳動装置において、前記核酸試料が泳動するポリ
アクリルアミドゲルを含む電気泳動部と、前記ポリアク
リルアミドゲルを泳動する前記核酸試料に照射して前記
蛍光体を励起する励起光を発するレーザー光源と、前記
励起光の照射により生じた蛍光を検出する光検出手段と
を具備し、前記励起光の波長が５３０ｎｍ以上であり、
前記蛍光の強度の前記ポリアクリルアミドゲルから発す
る蛍光の強度に対する比が５以上であることを特徴とす
る電気泳動装置。 - 【請求項６】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出す
る電気泳動装置において、前記核酸試料が泳動するポリ
アクリルアミドゲルを含む電気泳動部と、前記ポリアク
リルアミドゲルを泳動する前記核酸試料に照射して前記
蛍光体を励起する励起光を発するレーザー光源と、前記
励起光の照射により生じた蛍光を検出する光検出手段と
を具備し、前記励起光の波長が５３０ｎｍ以上であり、
前記蛍光の強度の前記ポリアクリルアミドゲルから発す
る蛍光の強度に対する比が１０以上であることを特徴と
する電気泳動装置。 - 【請求項７】蛍光体が標識された核酸試料を分離検出す
る電気泳動装置において、前記核酸試料が泳動するポリ
アクリルアミドゲルを含む電気泳動部と、前記ポリアク
リルアミドゲルを泳動する前記核酸試料に照射して前記
蛍光体を励起する励起光を発するレーザー光源と、前記
励起光の照射により生じた蛍光を検出する光検出手段と
を具備し、前記光検出手段は前記蛍光を、前記蛍光の強
度が前記ポリアクリルアミドゲルからの発する蛍光の強
度がより大きい波長領域で検出することを特徴とする電
気泳動装置。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9047574A JPH09210962A (ja) | 1997-03-03 | 1997-03-03 | 電気泳動装置 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9047574A JPH09210962A (ja) | 1997-03-03 | 1997-03-03 | 電気泳動装置 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP8170883A Division JP2661606B2 (ja) | 1996-07-01 | 1996-07-01 | 電気泳動装置 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9289480A Division JP2809228B2 (ja) | 1997-10-22 | 1997-10-22 | 電気泳動装置 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH09210962A true JPH09210962A (ja) | 1997-08-15 |
Family
ID=12779024
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9047574A Pending JPH09210962A (ja) | 1997-03-03 | 1997-03-03 | 電気泳動装置 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH09210962A (ja) |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS59126246A (ja) * | 1983-01-08 | 1984-07-20 | Fuji Photo Film Co Ltd | Ｄｎａもしくはｄｎａ部分分解物の塩基配列決定方法 |
| JPS60220860A (ja) * | 1984-01-16 | 1985-11-05 | カリフオルニア・インステイテユ−ト・オブ・テクノロジ− | オリゴヌクレオチドの分析法 |
| JPS6162843A (ja) * | 1984-08-13 | 1986-03-31 | Hitachi Ltd | 螢光検出型電気泳動装置 |
| JPS61173158A (ja) * | 1985-01-02 | 1986-08-04 | カリフオルニア・インステイテユ−ト・オブ・テクノロジ− | Ｄｎａ配列決定法 |
-
1997
- 1997-03-03 JP JP9047574A patent/JPH09210962A/ja active Pending
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS59126246A (ja) * | 1983-01-08 | 1984-07-20 | Fuji Photo Film Co Ltd | Ｄｎａもしくはｄｎａ部分分解物の塩基配列決定方法 |
| JPS60220860A (ja) * | 1984-01-16 | 1985-11-05 | カリフオルニア・インステイテユ−ト・オブ・テクノロジ− | オリゴヌクレオチドの分析法 |
| JPS6162843A (ja) * | 1984-08-13 | 1986-03-31 | Hitachi Ltd | 螢光検出型電気泳動装置 |
| JPS61173158A (ja) * | 1985-01-02 | 1986-08-04 | カリフオルニア・インステイテユ−ト・オブ・テクノロジ− | Ｄｎａ配列決定法 |
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