JPH08168389A - 藍藻を用いる有機分泌物の製造方法 - Google Patents
藍藻を用いる有機分泌物の製造方法Info
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- JPH08168389A JPH08168389A JP4268960A JP26896092A JPH08168389A JP H08168389 A JPH08168389 A JP H08168389A JP 4268960 A JP4268960 A JP 4268960A JP 26896092 A JP26896092 A JP 26896092A JP H08168389 A JPH08168389 A JP H08168389A
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- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【構成】 藍藻を光照射下で、炭素源として無機炭素源
を用いて培養し、その培養物をさらに暗嫌気条件下で培
養することにより、有機酸および（または）アルコール
を取得する、藍藻を用いる有機分泌物の製造方法であ
る。 【効果】 光合成を行うため無機物のみを炭素源とし
て、有機炭素源もしくはＨ2 等の還元物質を必要とする
ことなく、藍藻の培養により無機炭素源から有機酸およ
び（または）アルコールを高収率で取得することができ
る。
を用いて培養し、その培養物をさらに暗嫌気条件下で培
養することにより、有機酸および（または）アルコール
を取得する、藍藻を用いる有機分泌物の製造方法であ
る。 【効果】 光合成を行うため無機物のみを炭素源とし
て、有機炭素源もしくはＨ2 等の還元物質を必要とする
ことなく、藍藻の培養により無機炭素源から有機酸およ
び（または）アルコールを高収率で取得することができ
る。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、藍藻の培養液から有機
酸および（または）アルコールを取得する、藍藻を用い
る有機分泌物の製造方法に関する。
酸および（または）アルコールを取得する、藍藻を用い
る有機分泌物の製造方法に関する。
【０００２】
【従来技術および発明の課題】微生物を使用した有機酸
および（または）アルコールの製造方法については、従
来、多数の報告がある。例えば、特開昭６４−６７１８
０および特開昭６３−８７９８５ではエタノールの製造
方法が、また特開昭５９−１７９０８９では酢酸の製造
方法が提案されている。しかし、これらは何れの場合も
炭素源としてグルコース等の有機炭素源を必要としてい
る。
および（または）アルコールの製造方法については、従
来、多数の報告がある。例えば、特開昭６４−６７１８
０および特開昭６３−８７９８５ではエタノールの製造
方法が、また特開昭５９−１７９０８９では酢酸の製造
方法が提案されている。しかし、これらは何れの場合も
炭素源としてグルコース等の有機炭素源を必要としてい
る。
【０００３】また、特殊な微生物を利用して有機炭素源
を必要としないで有機酸およびアルコールを製造する方
法も提案されている。例えば、特開昭５９−１７９０８
８はアセトバクテリウム属に属する新規な細菌を用い
て、二酸化炭素から酢酸を製造する方法を開示してい
る。しかし、この方法では、酢酸生産に二酸化炭素と同
時にＨ2 等の還元物質が必須となっている。
を必要としないで有機酸およびアルコールを製造する方
法も提案されている。例えば、特開昭５９−１７９０８
８はアセトバクテリウム属に属する新規な細菌を用い
て、二酸化炭素から酢酸を製造する方法を開示してい
る。しかし、この方法では、酢酸生産に二酸化炭素と同
時にＨ2 等の還元物質が必須となっている。
【０００４】さらに、例えば、Bioscience, Biotechnol
ogy and Biochemistry,Vol.56, No.5,751-754(1992) で
は、炭素源として無機炭素源のみを用いて緑藻を光照射
下で培養し、さらに暗嫌気条件下で培養することによ
り、酢酸およびエタノールを得る方法が報告されてい
る。しかし、この方法では、酢酸およびエタノールの生
産量は極めて低く、実用化は期待できない。
ogy and Biochemistry,Vol.56, No.5,751-754(1992) で
は、炭素源として無機炭素源のみを用いて緑藻を光照射
下で培養し、さらに暗嫌気条件下で培養することによ
り、酢酸およびエタノールを得る方法が報告されてい
る。しかし、この方法では、酢酸およびエタノールの生
産量は極めて低く、実用化は期待できない。
【０００５】本発明の課題は、上記のような実情から、
有機炭素源やＨ2 等の還元物質を用いる必要がなく、藍
藻の培養により無機炭素源から有機酸および（または）
アルコールを高収率で取得する方法を提供する点にあ
る。
有機炭素源やＨ2 等の還元物質を用いる必要がなく、藍
藻の培養により無機炭素源から有機酸および（または）
アルコールを高収率で取得する方法を提供する点にあ
る。
【０００６】
【課題を解決するための手段】本発明者等は、上記課題
を解決すべく鋭意研究の結果、藍藻を光照射下で、炭酸
ガス、重炭酸金属塩などの無機炭素源を用いて培養し、
その培養物を暗嫌気条件下で培養することにより培養液
から有機酸および（または）アルコールを取得できるこ
とを見い出し、本発明を完成するに至った。
を解決すべく鋭意研究の結果、藍藻を光照射下で、炭酸
ガス、重炭酸金属塩などの無機炭素源を用いて培養し、
その培養物を暗嫌気条件下で培養することにより培養液
から有機酸および（または）アルコールを取得できるこ
とを見い出し、本発明を完成するに至った。
【０００７】すなわち、本発明によれば、藍藻を光照射
下で、炭素源として無機炭素源を用いて培養し、その培
養物をさらに暗嫌気条件下で培養することにより、有機
酸および（または）アルコールを取得する、藍藻を用い
る有機分泌物の製造方法が提供せられる。
下で、炭素源として無機炭素源を用いて培養し、その培
養物をさらに暗嫌気条件下で培養することにより、有機
酸および（または）アルコールを取得する、藍藻を用い
る有機分泌物の製造方法が提供せられる。
【０００８】以下、本発明を詳しく説明する。
【０００９】ａ） 藍藻を光照射下で無機炭素源を用い
て培養するに当たり、使用する藍藻は、暗嫌気条件下で
培養液中に有機酸および（または）アルコールを放出す
る藍藻であればいかなるものでもよい。好適に用いられ
る藍藻としては、例えばスピルリナ・プラテンシス（Sp
irulina platensis ）財団法人 地球・人間環境フォー
ラム（以下ＧＥＦと記す）寄託NIES-39 、スピルリナ・
プラテンシス（Spirulina platensis ）ＧＥＦ寄託NIES
-46 、オシラトリア・リムネチカ（Oscillatoria limne
tica）ＧＥＦ寄託NIES-36 、ミクロシスティス・アエル
ギノーサ（Microcystis aeruginosa) ＧＥＦ寄託NIES-4
4 、ミクロシスティス・アエルギノーサ（Microcystis
aeruginosa) ＧＥＦ寄託NIES-87 、ノストック・コミュ
ーン（Nostoc commune）ＧＥＦ寄託NIES-24 およびシネ
ココッカス・エロンガタス（Synechococcus elongatus
）微工研寄託ＦＥＲMP-12393などが例示される。
て培養するに当たり、使用する藍藻は、暗嫌気条件下で
培養液中に有機酸および（または）アルコールを放出す
る藍藻であればいかなるものでもよい。好適に用いられ
る藍藻としては、例えばスピルリナ・プラテンシス（Sp
irulina platensis ）財団法人 地球・人間環境フォー
ラム（以下ＧＥＦと記す）寄託NIES-39 、スピルリナ・
プラテンシス（Spirulina platensis ）ＧＥＦ寄託NIES
-46 、オシラトリア・リムネチカ（Oscillatoria limne
tica）ＧＥＦ寄託NIES-36 、ミクロシスティス・アエル
ギノーサ（Microcystis aeruginosa) ＧＥＦ寄託NIES-4
4 、ミクロシスティス・アエルギノーサ（Microcystis
aeruginosa) ＧＥＦ寄託NIES-87 、ノストック・コミュ
ーン（Nostoc commune）ＧＥＦ寄託NIES-24 およびシネ
ココッカス・エロンガタス（Synechococcus elongatus
）微工研寄託ＦＥＲMP-12393などが例示される。
【００１０】上述した藍藻は独立栄養微生物であるた
め、光照射下で培養する段階で、ＮａＨＣＯ3 、Ｋ2 Ｈ
ＰＯ4 、ＮａＮＯ3 、Ｋ2 ＳＯ4 、ＮａＣｌ、ＭｇＳＯ
4 、ＣａＣｌ2 等の無機塩類のみを含む水溶液培地でよ
く生育し、従属栄養微生物を培養する時のように、グル
コース、ペプトン、酵母エキス等の有機添加物を培地に
加える必要はない。
め、光照射下で培養する段階で、ＮａＨＣＯ3 、Ｋ2 Ｈ
ＰＯ4 、ＮａＮＯ3 、Ｋ2 ＳＯ4 、ＮａＣｌ、ＭｇＳＯ
4 、ＣａＣｌ2 等の無機塩類のみを含む水溶液培地でよ
く生育し、従属栄養微生物を培養する時のように、グル
コース、ペプトン、酵母エキス等の有機添加物を培地に
加える必要はない。
【００１１】炭素源としては、無機炭素源のみを用い
る。無機炭素源の代表例は、二酸化炭素、重炭酸塩等で
ある。
る。無機炭素源の代表例は、二酸化炭素、重炭酸塩等で
ある。
【００１２】培養液としては、使用する菌株に応じて、
例えば、ＳＯＴ培地（表１）、ＭＡ培地（表２）、ＭＤ
Ｍ培地（表３）、ＢＧ−１１培地（表４）等を適宜選ん
で使用することができる。
例えば、ＳＯＴ培地（表１）、ＭＡ培地（表２）、ＭＤ
Ｍ培地（表３）、ＢＧ−１１培地（表４）等を適宜選ん
で使用することができる。
【００１３】藍藻の培養は、光照射下で行ういわゆる明
所培養である。この明所培養の照度は、たとえば、１０
０〜１００００ルックス、好ましくは５００〜３０００
ルックスである。
所培養である。この明所培養の照度は、たとえば、１０
０〜１００００ルックス、好ましくは５００〜３０００
ルックスである。
【００１４】また、光照射下での培養段階では、通気攪
拌培養を行うことも好ましい。培養時間、培養温度、ｐ
Ｈ等の培養条件は、使用する菌株に応じて有機酸および
（または）アルコールの生産量が最大になるように適宜
設定される。一般に、培養時間は３時間以上、培養温度
は２０〜６０℃、好ましくは２５〜５５℃、培養液のｐ
Ｈは６〜１１、好ましくは７〜９が望ましい。
拌培養を行うことも好ましい。培養時間、培養温度、ｐ
Ｈ等の培養条件は、使用する菌株に応じて有機酸および
（または）アルコールの生産量が最大になるように適宜
設定される。一般に、培養時間は３時間以上、培養温度
は２０〜６０℃、好ましくは２５〜５５℃、培養液のｐ
Ｈは６〜１１、好ましくは７〜９が望ましい。
【００１５】ｂ） つぎに、暗嫌気条件下での藍藻の培
養は、例えば下記のような操作で行われる。すなわち、
上述のように光照射下で培養した藍藻菌体を培養液から
分離し、得られた藍藻菌体を別の培養液に接種し、これ
を嫌気状態下で暗所培養する。
養は、例えば下記のような操作で行われる。すなわち、
上述のように光照射下で培養した藍藻菌体を培養液から
分離し、得られた藍藻菌体を別の培養液に接種し、これ
を嫌気状態下で暗所培養する。
【００１６】藍藻菌体を培養液から分離する手段は、濾
過、遠心分離等である。分離した藍藻菌体を接種する別
の培養液は、トリス−塩酸塩緩衝液、塩酸塩緩衝液、リ
ン酸塩緩衝液等である。これらの緩衝液のｐＨは６〜１
１、好ましくは７〜１０である。嫌気状態は、培養容器
内の空気を窒素ガス、ヘリウムガス等の不活性ガスで置
換することにより確保される。振盪培養器等を用いて攪
拌しながら培養を行うことも好ましい。培養時間、培養
温度等の培養条件は、使用する菌株に応じて有機酸およ
びアルコールの生産量が最大になるように適宜設定され
る。一般に、培養時間は５〜２０時間、培養温度は２０
〜６０℃、好ましくは２５〜５５℃であり、光を遮断し
て暗所培養を行う。
過、遠心分離等である。分離した藍藻菌体を接種する別
の培養液は、トリス−塩酸塩緩衝液、塩酸塩緩衝液、リ
ン酸塩緩衝液等である。これらの緩衝液のｐＨは６〜１
１、好ましくは７〜１０である。嫌気状態は、培養容器
内の空気を窒素ガス、ヘリウムガス等の不活性ガスで置
換することにより確保される。振盪培養器等を用いて攪
拌しながら培養を行うことも好ましい。培養時間、培養
温度等の培養条件は、使用する菌株に応じて有機酸およ
びアルコールの生産量が最大になるように適宜設定され
る。一般に、培養時間は５〜２０時間、培養温度は２０
〜６０℃、好ましくは２５〜５５℃であり、光を遮断し
て暗所培養を行う。
【００１７】こうして、藍藻の培養によって培養液中
に、蟻酸、酢酸、乳酸等の低級有機酸、またはエタノー
ル等のアルコール、または有機酸とアルコールの両者が
生成される。有機酸および（または）アルコールは培養
液から採取してもよいが、そのまま培養液中の溶液の形
態でつぎの工程に使用してもよい。
に、蟻酸、酢酸、乳酸等の低級有機酸、またはエタノー
ル等のアルコール、または有機酸とアルコールの両者が
生成される。有機酸および（または）アルコールは培養
液から採取してもよいが、そのまま培養液中の溶液の形
態でつぎの工程に使用してもよい。
【００１８】有機酸およびアルコールの同定、培養液中
の濃度の測定は、例えば高速液体クロマトグラフィ、ガ
スクロマトグラフィ等を用いた手法によって行われる。
有機酸および（または）アルコールを培養液から採取
し、精製するには、一般に有機化合物の採取、精製に用
いられる手法を採用することができる。
の濃度の測定は、例えば高速液体クロマトグラフィ、ガ
スクロマトグラフィ等を用いた手法によって行われる。
有機酸および（または）アルコールを培養液から採取
し、精製するには、一般に有機化合物の採取、精製に用
いられる手法を採用することができる。
【００１９】
【実施例】つぎに、本発明の実施例を幾つか挙げ、本発
明を具体的に説明する。
明を具体的に説明する。
【００２０】実施例１ スピルリナ・プラテンシス（Spirulina platensis ）Ｇ
ＥＦ寄託NIES-39 の湿菌体１００ｍｇをＳＯＴ培地（表
１）の培養液に接種し、温度３０℃で１２００ルックス
の光照射下１０日間培養を行った。その際、培養液に空
気を供給し、通気攪拌培養を行った。
ＥＦ寄託NIES-39 の湿菌体１００ｍｇをＳＯＴ培地（表
１）の培養液に接種し、温度３０℃で１２００ルックス
の光照射下１０日間培養を行った。その際、培養液に空
気を供給し、通気攪拌培養を行った。
【００２１】次に、培養液を濾紙を用いて濾過すること
により湿菌体約３ｇを得た。得られた湿菌体を５０ｍＬ
の三角フラスコ中のｐＨ８の２０ｍＭリン酸緩衝液３０
ｍＬに接種した。口にゴム栓を施して三角フラスコを密
閉した後、注射針を用いて窒素ガスを供給しフラスコ内
部を窒素ガスで置換することにより、嫌気状態を確保し
た。その後、振盪培養器を用いて攪拌しながら光を遮断
して１０時間、３０℃で培養を行った。その結果、蟻酸
２．４ｍＭ、酢酸９．７ｍＭ、エタノール６．２ｍＭ、
乳酸０．５ｍＭを含む培養液が得られた。濃度の測定は
ガスクロマトグラフィ法によって行った。
により湿菌体約３ｇを得た。得られた湿菌体を５０ｍＬ
の三角フラスコ中のｐＨ８の２０ｍＭリン酸緩衝液３０
ｍＬに接種した。口にゴム栓を施して三角フラスコを密
閉した後、注射針を用いて窒素ガスを供給しフラスコ内
部を窒素ガスで置換することにより、嫌気状態を確保し
た。その後、振盪培養器を用いて攪拌しながら光を遮断
して１０時間、３０℃で培養を行った。その結果、蟻酸
２．４ｍＭ、酢酸９．７ｍＭ、エタノール６．２ｍＭ、
乳酸０．５ｍＭを含む培養液が得られた。濃度の測定は
ガスクロマトグラフィ法によって行った。
【００２２】実施例２ スピルリナ・プラテンシス（Spirulina platensis ）Ｇ
ＥＦ寄託NIES-39 の代わりにスピルリナ・プラテンシス
（Spirulina platensis ）ＧＥＦ寄託NIES-46を用いた
こと以外は、実施例１と全く同様に操作を行った結果、
蟻酸２．２ｍＭ、酢酸１０．３ｍＭ、エタノール５．２
ｍＭ、乳酸０．３ｍＭを含む培養液が得られた。
ＥＦ寄託NIES-39 の代わりにスピルリナ・プラテンシス
（Spirulina platensis ）ＧＥＦ寄託NIES-46を用いた
こと以外は、実施例１と全く同様に操作を行った結果、
蟻酸２．２ｍＭ、酢酸１０．３ｍＭ、エタノール５．２
ｍＭ、乳酸０．３ｍＭを含む培養液が得られた。
【００２３】実施例３ スピルリナ・プラテンシス（Spirulina platensis ）Ｇ
ＥＦ寄託NIES-39 の代わりにオシラトリア・リムネチカ
（Oscillatoria limnetica）ＧＥＦ寄託NIES-36 を用
い、ＳＯＴ培地の代わりにＭＤＭ培地（表３）を用いた
こと以外は、実施例１と全く同様に操作を行った。その
結果、蟻酸０．３ｍＭ、酢酸３．２ｍＭ、エタノール
１．０ｍＭ、乳酸１．４ｍＭを含む培養液が得られた。
ＥＦ寄託NIES-39 の代わりにオシラトリア・リムネチカ
（Oscillatoria limnetica）ＧＥＦ寄託NIES-36 を用
い、ＳＯＴ培地の代わりにＭＤＭ培地（表３）を用いた
こと以外は、実施例１と全く同様に操作を行った。その
結果、蟻酸０．３ｍＭ、酢酸３．２ｍＭ、エタノール
１．０ｍＭ、乳酸１．４ｍＭを含む培養液が得られた。
【００２４】実施例４ スピルリナ・プラテンシス（Spirulina platensis ）Ｇ
ＥＦ寄託NIES-39 の代わりにシネココッカス・エロンガ
タス（Synechococcus elongatus ）微工研寄託FERM P-1
2393を用い、ＳＯＴ培地の代わりにＢＧ−１１（表４）
培地を用いたこと以外は、実施例１と全く同様に操作を
行った。その結果、蟻酸３．４ｍＭ、酢酸５．６ｍＭ、
エタノール２．８ｍＭ、乳酸４．６ｍＭを含む培養液が
得られた 。実施例５ スピルリナ・プラテンシス（Spirulina platensis ）Ｇ
ＥＦ寄託NIES-39 の代わりにノストック・コミューン
（Nostoc commune）ＧＥＦ寄託ＧＥＦ寄託NIES-24 を用
い、ＳＯＴ培地の代わりにＭＤＭ培地（表３）を用いた
こと以外は、実施例１と全く同様に操作を行った。その
結果、蟻酸０．２ｍＭ、酢酸２．５ｍＭ、乳酸１．５ｍ
Ｍを含む培養液が得られた。
ＥＦ寄託NIES-39 の代わりにシネココッカス・エロンガ
タス（Synechococcus elongatus ）微工研寄託FERM P-1
2393を用い、ＳＯＴ培地の代わりにＢＧ−１１（表４）
培地を用いたこと以外は、実施例１と全く同様に操作を
行った。その結果、蟻酸３．４ｍＭ、酢酸５．６ｍＭ、
エタノール２．８ｍＭ、乳酸４．６ｍＭを含む培養液が
得られた 。実施例５ スピルリナ・プラテンシス（Spirulina platensis ）Ｇ
ＥＦ寄託NIES-39 の代わりにノストック・コミューン
（Nostoc commune）ＧＥＦ寄託ＧＥＦ寄託NIES-24 を用
い、ＳＯＴ培地の代わりにＭＤＭ培地（表３）を用いた
こと以外は、実施例１と全く同様に操作を行った。その
結果、蟻酸０．２ｍＭ、酢酸２．５ｍＭ、乳酸１．５ｍ
Ｍを含む培養液が得られた。
【００２５】比較例１ 振盪培養器を用いて攪拌しながら光を遮断して培養を行
う代わりに、１２００Ｌｕｘの光照射下、振盪培養器を
用いて攪拌しながら培養を行ったこと以外は、実施例１
と全く同様に操作を行った。その結果、蟻酸１．０ｍ
Ｍ、酢酸３．７ｍＭ、エタノール３．４ｍＭ、乳酸０．
１ｍＭを含む培養液が得られた。
う代わりに、１２００Ｌｕｘの光照射下、振盪培養器を
用いて攪拌しながら培養を行ったこと以外は、実施例１
と全く同様に操作を行った。その結果、蟻酸１．０ｍ
Ｍ、酢酸３．７ｍＭ、エタノール３．４ｍＭ、乳酸０．
１ｍＭを含む培養液が得られた。
【００２６】比較例２ 三角フラスコの口にゴム栓を施してフラスコを密閉した
後、注射針を用いて窒素ガスを供給しフラスコ内部を窒
素ガスで置換することにより、嫌気状態を確保する代わ
りに、三角フラスコの口に綿栓を施し好気条件下で培養
を行ったこと以外は、実施例１と全く同様に操作を行っ
た。その結果、蟻酸０．８ｍＭ、酢酸０．５ｍＭ、エタ
ノール０．５ｍＭを含む培養液が得られた。
後、注射針を用いて窒素ガスを供給しフラスコ内部を窒
素ガスで置換することにより、嫌気状態を確保する代わ
りに、三角フラスコの口に綿栓を施し好気条件下で培養
を行ったこと以外は、実施例１と全く同様に操作を行っ
た。その結果、蟻酸０．８ｍＭ、酢酸０．５ｍＭ、エタ
ノール０．５ｍＭを含む培養液が得られた。
【００２７】比較例３ 三角フラスコの口にゴム栓を施してフラスコを密閉した
後、注射針を用いて窒素ガスを供給しフラスコ内部を窒
素ガスで置換することにより、嫌気状態を確保し、その
後、振盪培養器を用いて攪拌しながら光を照射して培養
を行う代わりに、三角フラスコの口に綿栓を施し好気条
件下、１２００Ｌｕｘの光照射下、振盪培養器を用いて
攪拌培養を行ったこと以外は、実施例１と全く同様に操
作を行った。その結果、蟻酸０．５ｍＭ、酢酸０．４ｍ
Ｍ、エタノール０．６ｍＭを含む培養液が得られた。
後、注射針を用いて窒素ガスを供給しフラスコ内部を窒
素ガスで置換することにより、嫌気状態を確保し、その
後、振盪培養器を用いて攪拌しながら光を照射して培養
を行う代わりに、三角フラスコの口に綿栓を施し好気条
件下、１２００Ｌｕｘの光照射下、振盪培養器を用いて
攪拌培養を行ったこと以外は、実施例１と全く同様に操
作を行った。その結果、蟻酸０．５ｍＭ、酢酸０．４ｍ
Ｍ、エタノール０．６ｍＭを含む培養液が得られた。
【００２８】
【表１】
【表２】
【表３】
【表４】
【表５】
【００２９】
【発明の効果】本発明により、光合成を行うため無機物
のみを炭素源として、有機炭素源もしくはＨ2 等の還元
物質を必要とすることなく、藍藻の培養により無機炭素
源から有機酸および（または）アルコールを高収率で取
得することができる。
のみを炭素源として、有機炭素源もしくはＨ2 等の還元
物質を必要とすることなく、藍藻の培養により無機炭素
源から有機酸および（または）アルコールを高収率で取
得することができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:89） (Ｃ１２Ｐ 7/06 Ｃ１２Ｒ 1:89） (Ｃ１２Ｐ 7/54 Ｃ１２Ｒ 1:89） (Ｃ１２Ｐ 7/56 Ｃ１２Ｒ 1:89） (72)発明者 鈴木 太郎 茨城県つくば市並木４丁目15番１号 (72)発明者 浅田 泰男 茨城県つくば市春日１丁目102番506号 (72)発明者 常盤 豊 茨城県土浦市桜ケ丘46−12
Claims (1)
- 【請求項１】 藍藻を光照射下で、炭素源として無機炭
素源を用いて培養し、その培養物をさらに暗嫌気条件下
で培養することにより、有機酸および（または）アルコ
ールを取得する、藍藻を用いる有機分泌物の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4268960A JP2729883B2 (ja) | 1992-10-07 | 1992-10-07 | 藍藻を用いる有機分泌物の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4268960A JP2729883B2 (ja) | 1992-10-07 | 1992-10-07 | 藍藻を用いる有機分泌物の製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH08168389A true JPH08168389A (ja) | 1996-07-02 |
| JP2729883B2 JP2729883B2 (ja) | 1998-03-18 |
Family
ID=17465693
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4268960A Expired - Lifetime JP2729883B2 (ja) | 1992-10-07 | 1992-10-07 | 藍藻を用いる有機分泌物の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2729883B2 (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2001354407A (ja) * | 2000-06-08 | 2001-12-25 | Rikogaku Shinkokai | 藍色細菌による二酸化炭素の除去・回収方法 |
| JP2006230287A (ja) * | 2005-02-24 | 2006-09-07 | Tokyo Univ Of Agriculture | 乳酸の生産方法 |
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1992
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