JPH0732708B2 - アルカリ耐性セルラーゼ - Google Patents

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は新規なアルカリ耐性セルラーゼに関する。

〔従来の技術〕

繊維素分解酵素セルラーゼの開発は、従来、バイオマス
資源、特にセルロース資源の有効利用を一大目標として
進められてきた。セルラーゼ生産菌として分離されて来
た菌株は多種類にわたり、アスペルギルス属、ペニシリ
ウム属、トリコデルマ属、フザリウム属、フミコーラ
属、アクレモニウム属等の糸状菌を中心に、シュウドモ
ナス属、セルロモナス属、ルミノコッカス属、バチルス
属等の細菌、更に、ストレプトマイセス属、サーモアク
チノマイセス属等の放線菌でも報告されている。しかし
ながら、現時点では、バイオマス用のセルラーゼの工業
的規模での利用は、多くはない。

一方、セルラーゼの新規な産業的用途として、衣料用洗
浄剤の配合成分としての利用が検討され注目を集めてい
る（特公昭59−49279号公報、特公昭60−23158号公報、
特公昭60−36240号公報）。しかし、自然界において従
来見出されたセルラーゼのほとんどは、中性乃至酸性領
域に於いて最大且つ安定な酵素活性を示す、所謂中性若
しくは酸性セルラーゼに分類されるものであって、衣料
用洗浄剤配合成分としての必要条件である、アルカリ領
域で最大活性を示すか、あるいはアルカリ耐性を有する
セルラーゼ、所謂アルカリセルラーゼ及びアルカリ耐性
セルラーゼの存在は、極めて少ないのが実情である。

ここで言うアルカリセルラーゼとは、至適pHがアルカリ
領域にあるものを言い、アルカリ耐性セルラーゼとは、
至適pHは中性から酸性領域にあるが、アルカリ領域に於
いても至適pHに於ける活性に比較して充分に活性を有し
かつ安定性を保持するものを言う。

また、中性とはpH6〜８の範囲を言い、アルカリ性とは
それ以上のpH範囲をいう。

即ち、従来、衣料用洗浄剤組成物として使用し得るアル
カリセルラーゼ及びアルカリ耐性セルラーゼの生産方法
としては、好アルカリ性バルチス属細菌の培養によりセ
ルラーゼＡを採取する方法（特公昭50−28515号公
報）、セルロモナス属に属する好アルカリ性細菌を培養
してアルカリセルラーゼ301−Ａを生産する方法（特開
昭58−224686号公報）、好アルカリ性バチルスNo.1139
を培養してカルボキシメチセルラーゼを生産する方法
（Fukumori,F.,Kudo,T.and Horikoshi,K.,J.Gen.Microb
iol.,131,3339,（1985））及びストレプトマイセス属の
一種を用いてアルカリセルラーゼを生産する方法（特開
昭61−19483号公報）が報告されているに過ぎず、いず
れも工業的発酵生産に適うものでは無かった。

ところが、最近、本発明者らは好アルカリ性微生物の一
種であるバリルス エスピー（Bacillus sp.）KSM−635
（FERM P−8872）が、衣料用洗浄剤組成物として適した
アルカリセルラーゼＫを効率良く生産すること、及び更
に培養条件を選択することにより、より高収率で、アル
カリセルラーゼＫが得られ、アルカリセルラーゼの工業
的発酵生産が可能となることを見出した。

〔発明が解決しようとする問題点〕

しかしながら、上記バチルス エスピーKSM−635の培養
条件は、必ずしも工業的に有利なものと言えない。すな
わち、好アルカリ性菌株は培養中、pHをアルカリ性に保
ち続ける必要があるが、現在までのところ、好アルカリ
性菌株を用いる所謂アルカリ性発酵法の歴史は浅く、通
常の中性微生物と比較するとこれら好アルカリ性微生物
の生理、生化学についての知見は充分に蓄積されておら
ず、工業的発酵生産を行うにあたっての培地調製、培養
方法が操作上の難点となっていた。

〔問題点を解決するための手段〕

本発明者らはかかる問題点を解決するためにアルカリ領
域に至適pHを有するアルカリセルラーゼ或いは、アルカ
リ領域に於いても、至適pHに於ける最高活性に比較して
も高活性を維持し得るアルカリ耐性セルラーゼを生産す
る中性細菌を得べく、中性領域で生育する菌株を宿主と
して、該当するセルラーゼ遺伝子をクローニングする、
所謂遺伝子組換えの手段と併行し、自然界において該細
菌の探索を続けて来た。

そして、その結果、栃木県日光市の土壌から分離した菌
株は、アルカリ側においても充分作用を有し、且つ安定
性を保持する、所謂アルカリ耐性セルラーゼを産生する
ことを見出し、本発明を完成した。

本発明において用いられる菌株は、次のような菌学的性
質を有する。なお、以下の分類同定において用いた培地
は次の通りである。

培地 1.肉エキス,1.0;バクトペプトン,1.0;NaCl,0.5:バ
クト寒天,1.5（pH7.2）（表示は、重量％；以下同じ） 培地 2.肉エキス,1.0;バクトペプトン,1.0;NaCl,0.5（p
H7.2） 培地 3.肉エキス,1.0;バクトペプトン,1.0;NaCl,0.5;ゼ
ラチン,1.0（pH7.2） 培地 4.バクトリトマスミルク,10.0 培地 5.バクトペプトン,1.0;KNO₃,0.1 培地 6.バクトペプトン,1.0;NaNO₃,0.1 培地 7.バクトペプトン,0.7;NaCl,0.5;ブドウ糖,0.5（p
H7.0） 培地 8.バクトペプトン,1.0 培地 9.TSI寒天（栄研化学製）；指示量 培地10.肉エキス,1.0;バクトペプトン,1.0;NaCl,0.5;可
溶性澱粉,0.2;寒天,1.5 培地11.NaNH₄HPO₄・4H₂O,0.15;KH₂PO₄,0.1;MgSO₄・7H
₂O,0.02;クエン酸ナトリウム,0.25（pH6.8） 培地12.クリステンセン培地（栄研化学製）；指示量 培地13.ブドウ糖,1.0;KH₂PO₄,0.1;MgSO₄・7H₂O,0.05;KC
l,0.02;窒素源,0.1（窒素源は、硝酸ナトリウム及び硫
酸アンモニウムを用いた）（pH7.2） 培地14.キングＡ培地“栄研”（栄研化学製）；指示量 培地15.キングＢ培地“栄研”（栄研化学製）；指示量 培地16.尿素培地“栄研”（栄研化学製）；指示量 培地17.チトクローム・オキシダーゼ試験用濾紙（日水
製薬製） 培地18.3％過酸化水素水 培地19.OF基礎培地（Difco社製）；指示量 培地20.（NH₄）₂HPO₄,0.1;KCl,0.02;MgSO₄・7H₂O,0.02;
酵母エキス,0.02;バクト寒天,2.0;BCP（0.2％溶液）,0.
4 培地21.バクト・サブロー・デキストロース寒天培地（D
ifco社製）；指示量 培地22.スキムミルク,5.0;バクト寒天,1.5（菌学的性
質） （ａ）顕微鏡的観察結果 菌体の大きさは、0.8〜1.0μｍ×1.0〜5.0μｍの桿菌で
あり、菌体の中央準備に卵円形又は円柱形の内生胞子
（0.8〜1.0μｍ×1.0〜1.5μｍ）を作る。周鞭毛は無
く、運動性は無い。グラム染色は陽性。抗酸性はない。

（ｂ）各種培地に於ける生育状態 肉汁寒天平板培養（培地１） 集落の形状は不規則形であり、表面は粗造、周縁は葉状
で、縮毛状である。又集落の色調は、乳白色〜白黄色の
不透明であり、膜状である。

肉汁寒天斜面培養（培地１） 生育は普通で、その状態は拡布状で乳白色不透明であ
る。

肉汁液体培養（培地２） 生育する。

肉汁ゼラチン穿刺培養（培地３） 上層部に生育し、ゼラチンの液化が認められる。

リトマスミルク培地（培地４） ミルクの液化は認められ、深部においてリトマス色素の
脱色が得られる。

（ｃ）生理学的性質 硝酸塩の還元及び脱窒反応（培地5,培地６） 硝酸塩還元は陽性。脱窒反応は、陰性。

MRテスト（培地７） 陽性。

VPテスト（培地７） 陽性。

インドールの生成（培地８） 陰性。

硫化水素の生成（培地９） 陰性。

澱粉の加水分解（培地10） 陽性。

クエン酸の利用（培地11,培地12） クリステンセン培地で、陽性、コーサ培地では陰性か陽
性か特定できない。

無機窒素源の利用（培地13） 硝酸塩、アンモニウム塩ともに利用する。

色素の生成（培地14,培地15） キングＢ培地で、水溶性の黄色色素を生成する。

ウレアーゼ（培地16） 陽性。

オキシダーゼ（培地17） 陽性。

カタラーゼ（培地18） 陽性。

生育の範囲（培地２） 生育の温度範囲は、10〜50℃、生育最適温度範囲は20〜
40℃ 生育のpH範囲はpH5〜９、生育最適pH範囲はpH6〜８であ
った。

酸素に対する態度 好気性。

Ｏ−Ｆテスト（培地19） 酸化。

糖からの酸及びガスの生成（培地20） （＋：生成する、−：生成しない） 酸生成 ガス生成 1. L−アラビノース ＋ − 2. D−キシロース ＋ − 3. D−グルコース ＋ − 4. D−マンノース ＋ − 5. D−フラクトース ＋ − 6. D−ガラクトース ＋ − 7. 麦芽糖 ＋ − 8. ショ糖 ＋ − 9. 乳糖 ＋ − 10. トレハロース ＋ − 11. D−ソルビット ＋ − 12. D−マンニット ＋ − 13. イノシット ＋ − 14. グリセリン ＋ − 15. デンプン ＋ − VP培地に於けるpH（培地７） pH5.4 食塩含有培地に於ける生育（培地１改変） ５％で生育する。

７％で生育する。

10％で生育する。

pH5.7に於ける生育（培地21） 生育する。

カゼインの分解（培地22） 陽性。

以上の菌学的性質について、バージーズ・マニュアル・
オブ・ディタミネイティブ・バクテリオロジー（Berge
y′s Mannual of Determinative Bacteriology）第８版
及びザ・ジーナス・バチルス（“The Genus Bacillus",
Ruth,E.Gordon著Agriculture Handbook No.427,Agricul
tural Research Servise,U.S.Department of Agricultu
re,Washington D.C.（1973））を参照し比較、検索した
結果、本発明で用いる菌株は、有胞子桿菌であるバチル
ス（Bacillus）属の一種であると認められる。そして本
菌株は、細菌、堀越と秋葉（“Alkalophilic Microorga
nisms",Japan Scientific Society Press（Tokyo）,198
2年刊）の主張している、所謂好アルカリ（Alkalophili
c）微生物がpH8以上のアルカリ培地に於いて生育し、こ
れ以下の中性pH領域では生育出来ないのに対し、弱酸性
領域からアルカリ領域（pH5〜９）に於いて生育が可能
である事から、この好アルカリ性微生物とは明らかに異
なるものであり、一般的な中性で生育可能なバチルス属
微生物と判断できる。

更に本菌株を他の公知のバチルス属の菌株と比較する
と、類縁の種としてバチルス・メガテリュウム（Bacill
us megaterium）及びバチルス・セレウス（Bacillus ce
reus）が挙げられる。しかしながら、公知のバチルス・
メガテリュウムに属する菌株と本菌株とを比較すると、
MR及びVPテストにおいて相異する。また、公知のバチル
ス・セレウスに属する菌株と比較すると、嫌気的発育、
糖の資化性において相異する。更に上記バチルス・メガ
テリュウム及びバチルス・セレウスに属する菌株は少な
くともアルカリ耐性のセルラーゼを産生しないので本発
明者らは本菌株を新菌株と判断し、バチルスエスピー
KSM−588と命名して工業技術院微生物工業技術研究所に
寄託した（FERM P−9371）。

この菌株を用いてアルカリ耐性セルラーゼ、セルラーゼ
Ｋ−588を得るには、培地に該菌株を接種し、常法に従
って培養すれば良い。培地中には、資化し得る炭素源及
び窒素源を適当量含有せしめておくことが好ましい。こ
の炭素源及び窒素源については特に制限はないが、その
例としては、窒素源として無機態の硝安、硫安、塩安、
リン酸アンモニウム、硝酸ソーダや、コーングルテンミ
ール、大豆粉、コーンスチープリカー、カザミノ酸、酵
母エキス、ファーマメディア、イワシミール、肉エキ
ス、ペプトン、ハイプロ、アジパワー、コーンソイビー
ンミール、コーヒー粕、綿実油粕、カルチベータ、アミ
フレックス及びアジプロン、ゼスト、アジックスなどが
挙げられる。

又、炭素源としては、籾殻、麩、瀘紙、一般紙類、おが
屑などの植物繊維質、廃糖蜜、転化糖、カルボキシメチ
ルセルロース（CMC）、キシラン、ペクチンに加え、資
化し得る炭素源、例えば、アラビノース、キシロース、
グルコース、マンノース、フラクトース、ガラクトー
ス、麦芽糖、庶糖、乳糖、トレハロース、ソルビトー
ル、マンニトール、イノシトール、グリセリン、可溶性
デンプンや資化し得る有機酸、例えば酢酸、クエン酸等
が挙げられる。また、その他、リン酸、Mg²⁺,Ca²⁺,M
n²⁺,Zn²⁺,Co²⁺,Na⁺,K⁺なの無機塩や、必要であれば、無
機、有機微量栄養源を培地中に適宜添加することもでき
る。

斯くして得られた培養物中からの目的物質であるセルラ
ーゼＫ−588の採取及び精製は、一般の酵素の採取及び
精製の手段に準じて行なうことが出来る。即ち、遠心分
離又は過等の通常の固液分離手段により菌体を培養液
から除去して粗酵素液を得ることが出来る。この粗酵素
液は、そのまま使用することも出来るが、必要に応じ
て、塩析法、沈澱法、限外過法等の分離手段により粗
酵素を得、更に公知の方法により精製結晶化して、精製
酵素として使用することも可能である。

斯くして得られた本発明のアルカリセルラーゼＫ−588
は、以下に示す酵素学的性質を有する。なお、酵素活性
の測定は、以下の方法に従って行ない、また用いた緩衝
液は次の通りである。

pH3〜８ マクルベイン緩衝液 pH8〜11 グリシン−水酸化ナトリウム緩衝液 pH12〜13 塩化カリウム−水酸化ナトリウム緩衝液 酵素活性測定法： （１）CMCアーゼ活性 10mgCMC（Ａ−01L,山陽国策パルプ社）、100μmol各種
緩衝液（マクルベイン、リン酸、グリシン−NaOH等）を
含む基質溶液0.9mlに0.1mlの酵素溶液を加え、30℃、20
分反応した。反応後、3,5−ジニトロ−サリチル酸（3,5
−dinitrc−salicylicacid（DNS））法にて還元糖の定
量を行った。すなわち、反応液1.0mlにDNS試薬1.0mlを
加え、５分間、100℃で加熱発色させ、冷却後、4.0mlの
脱イオン水を加えて希釈した。これを波長535nmで比色
定量した。酵素力価は、上記の条件下で１分間に１μmo
lのグルコースに相当する還元糖を生成する酵素量を１
単位とした。

（２）ｐ−ニトロフェニルセロビオシド分解活性 0.1μmol p−ニトロフェニルセロビオシド（シグマ
社）、50μmolリン酸緩衝液（pH7.0）を含む反応液1.0m
l中に適当量の酵素液を30℃で作用させた後、1MNa₂CO₃
を0.3ml、脱イオン水を1.7ml順次加え、遊離するｐ−ニ
トロフェノールを400nmで比色定量した。酵素力価は、
上記の条件下で１分間に１μmolのｐ−ニトロフエノー
ルを遊離させる酵素量を１単位とした。

（３）アビセル、セルロース粉末、リン酸膨潤セルソー
ス、アルカリ膨潤セルロース及び濾紙分解活性 15mgアビセル（メルク社）、150μmolリン酸緩衝液（pH
7.0）を含む反応液1.5ml中に適当量の酵素液を加え、30
℃、280rpmで振とうしながら作用させた。反応後、冷却
遠心分離（５℃、3000rpm、20分）を行い、その上清1.0
mlを3,5−ジニトロ−サリチル酸（3,5−dinitro−salic
ylic acid（DNS））法にて還元糖の定量を行った。セル
ロース粉末分解活性はセルロース粉末（東洋濾紙社）
を、リン酸膨潤セルロース及びアルカリ膨潤セルロース
分解活性はトミタらの方法（Tomita,Y.et al.:J.Fermen
t.Technol.,52,235,1974）により処理したセルロース
を、濾紙分解活性は濾紙（セルラーゼ活性検定用濾紙、
東洋No.51−特）をそれぞれ用い、アビセラーゼ特性の
時と同様に行った。酵素力価は、上記の条件下で１分間
に１μmolのグルコースに相当する還元糖を生成する酵
素量を１単位とした。

（４）セロビアーゼ性 10mgセロビオース（関東化学社）、50μmolリン酸緩衝
液（pH7.0）を含む反応液1.0ml中に適当量の酵素液を30
℃で作用させた後、100℃、５分処理し酵素を失活させ
た後、生成グルコース量をムタロターゼ・GOD法（Gluco
se C−Test、和光純薬工業社）で測定した。酵素力価
は、上記の条件下で１分間に２μmolのグルコースを生
成する酵素量を１単位とした。

（酵素学的性質） （１）作 用 紙、CMC等の繊維素によく作用し、これらを溶解せし
め、グルコース等の還元糖を生成する。

（２）基質特異性 本酵素はCMCの他にも、リン酸膨潤セルロース、濾紙及
びｐ−ニトロフェニルセロビオシドに対する活性を有す
る。

（３）作用pH及び最適pH 作用pH範囲は、３〜13と極めて広範囲にわたる。最適pH
は、７であり、4.5〜10.5の範囲に於いても至適pHに於
ける活性の50％以上の相対活性を有しており、過去に研
究されたセルラーゼの中でも最もアルカリ側で作用pH範
囲が広い酵素と言える（第１図）。

（４）pH安定性 各々のpHで30℃、１時間保持した後の残存活性を測定
し、pH安定性を調べた。その結果、pH5〜11.5で極めて
安定で失活せず、pH4.5〜12.5に於いても、約50％以上
の活性を維持していた。本酵素は、このように高アルカ
リ領域に於いても充分に安定である（第２図）。

（５）最適温度 作用温度は、15〜80℃の広範囲にわたり、その至適温度
は60℃であった。又、45〜65℃の範囲に於いても、至適
温度での活性の50％以上を有していた（第３図）。

（６）温度安定性 至適pHに於いて、30分間各温度で処理した後、残存活性
を測定した結果、40℃では安定しており、55℃に於いて
も約50％の残存活性を有していた。（第４図）。

（７）分子量 本酵素をバイオゲルｐ−150（“Bio−Gel P−150",バイ
オラットラボラトリー社製）によるゲル濾過法に基づき
分子量を測定したところ、約2.7万と約3.0万に主たるピ
ークが観察された。

（８）金属イオンの影響 本酵素について、各種金属イオン（Al³⁺,Fe³⁺,Ba²⁺,Ca
²⁺,Cd²⁺,Co²⁺,Cu²⁺,Fe²⁺,Hg²⁺,Mg²⁺,Mn²⁺,Ni²⁺,Pb²⁺,Zn
²⁺,K⁺,Na⁺）を活性測定時に共存させて、その影響を検
討した（各種金属塩濃度は1mM,K⁺,Na⁺は50mMである）。

その結果、Hg²⁺で阻害が、Fe²⁺,Mn²⁺により活性化が認
められた。

（９）界面活性剤の影響 各種界面活性剤（例えば、LAS、AS、ES、AOS、α−SF
E、SAS、石鹸、ポリオキシエチレンセカンダリーアルキ
ルエーテル）の酵素活性に及ぼす影響を調べた。界面活
性剤0.05％を活性測定時に共存させ、その影響を検討し
た。

その結果、何れの界面活性剤によってもほとんど阻害を
受けなかった。強力なデタージエントであるソディウム
・ドデシルサルフエートによっても活性の阻害は認めら
れなかった。

（10）プロテアーゼ耐性 洗剤用プロテアーゼ、例えばAPI−21（昭和電工）、マ
クサターゼ（ギスト社）及びアルカラーゼ（ノボ社）
を、活性測定時に共存（0.1mg/ml）させてその影響を調
べたところ、何れのプロテアーゼに対しても強い耐性を
有することがわかった。

（11）キレート剤の影響 キレート剤であるEDTA、EGTA、クエン酸、ゼオライト、
トリポリリン酸ソーダを活性測定時に共存させ、その影
響を検討したが、活性の阻害は認められなかった。

〔発明の効果〕

本発明のセルラーゼＫ−588は、至適pHを７に有するに
もかかわらず高アルカリのpHにおいても最適pHの70％以
上、pH10に於いても50％以上の相対活性を有し、pH5〜1
1.5に於て極めて安定である。また、界面活性剤、プロ
テアーゼ、キレート剤糖の洗浄剤配合成分によってもほ
とんど阻害を受けない。したがって、本酵素は洗浄剤組
成物の配合成分として有利に使用することができるもの
である。

また、バチルス エスピーKSM−588は中性で生育する菌
株であるので、好アルカリ性細菌と比べ容易にアルカリ
耐性セルラーゼを工業的に生産することができる。

〔実施例〕

以下、実施例を挙げ、本発明を更に詳しく説明する。

参考例１ 栃木県日光市の土壌を薬匙一杯（約0.5g）を滅菌生理食
塩水に懸濁し、80℃で10分間熱処理した。この熱処理液
の上清を適当に希釈して、分離用寒天培地（培地１）に
塗布した。次いで、これを30℃にて３日間培養し、集落
を形成させた。集落の周囲にCMCの溶解に基づく透明帯
を形成するものを選出し、CMCアーゼ生産菌を取得し
た。更に、取得菌を培地２の液体培地に接種し、30℃で
３日間振盪培養した。培養後、遠心分離した上清液につ
いてCMCアーゼ活性を、pH3〜13にて測定し、アルカリ耐
性セルラーゼ生産菌をスクリーニングした。

上述の方法により本発明で用いるバチルス エスピー
KSM−588株（FERM P−9371）を取得することが出来た。

培地1.CMC ２％ ポリペプトン 0.5％ 酵母エキス 0.05％ KH₂PO₄ 0.1％ Na₂HPO₄・12H₂O 0.25％ MgSO₄・7H₂O 0.02％ 寒天 0.75％ pH6.8 培地2.CMC １％ ポリペプトン １％ 酵母エキス 0.5％ KH₂PO₄ 0.1％ Na₂HPO₄・12H₂O 0.25％ MgSO₄・7H₂O 0.02％ pH6.8 実施例１ 参考例１で得たバチルス エスピー KSM−588を参考例
１の液体培地２に接種し、30℃で３日間振盪培養した。
培養後、菌体を遠心分離して除き粗酵素液を得た。この
粗酵素液１に対して、ドライアイス−エタノール中で
３のエタノールを加え、生じた沈澱を遠心分離し更に
凍結乾燥を行ない乾燥粉末としてセルラーゼＫ−588 8g
（比活性５単位/g;pH9における測定値以下同じ）を得
た。

実施例２ 液体培地２においてCMCを１％庶糖に、ポリペプトンを
７％CSL（コーン・スチープ・リカー）に代えた培地を
用い、実施例１に準じて30℃で３日間振盪培養した。得
られた培養液の遠心分離上清につてそのCMCアーゼ活性
を測定したところ160単位／であった。

【図面の簡単な説明】

第１図は、酵素反応pHと相対活性の関係を示す図面であ
る。第２図は、酵素処理pHと相対活性の関係を示す図面
である。第３図は、酵素反応温度と相対活性の関係を示
す図面である。第４図は、酵素処理温度と相対活性の関
係を示す図面である。

Claims (1)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】次の酵素学的性質を有するアルカリ耐性の
   セルラーゼＫ−588。 （１）作用 カルボキシメチルセルロース、濾紙等の繊維素によく作
   用し、これらを溶解せしめ、グルコース等の還元糖を生
   成する。 （２）基質特異性 カルボキシメチルセルロースの他にも、リン酸膨潤セル
   ロース、濾紙及びｐ−ニトロフェニルセロビオシドに対
   する活性を有する。 （３）作用pH及び最適pH 作用pH範囲は、３〜13である。最適pHは、７であり、4.
   5〜10.5の範囲に於いても至適pHに於ける活性の50％以
   上の相対活性を有する。 （４）pH安定性 pH5〜11.5で極めて安定で失活せず、pH4.5〜12.5に於い
   ても、約50％以上の活性を維持する。 （５）最適温度 作用温度は、15〜80℃の広範囲にわたり、その至適温度
   は60℃である。また、45〜65℃の範囲に於いても、至適
   温度での活性の50％以上を有している。 （６）分子量 約2.7万と3.0万に分子量のピークを有する（バイオゲル
   Ｐ−150を用いたゲル濾過法による）。 （７）金属イオンの影響 Hg²⁺で阻害される。 （８）界面活性剤の影響 LAS、AS、ES、AOS、α−SFE、SAS、石鹸、ポリオキシエ
   チレンセカンダリーアルキルエーテルは、活性をほとん
   ど阻害しない。 （９）プロテアーゼ耐性 プロテアーゼに対して耐性を有する。 （10）キレート剤の影響 EDTA、EGTA、トリポリリン酸ソーダ、ゼオライト、クエ
   ン酸は活性を阻害しない。