JPH0712314B2 - γ―リノレン酸及びこれを含有する脂質の製造方法 - Google Patents

γ―リノレン酸及びこれを含有する脂質の製造方法

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JPH0712314B2
JPH0712314B2 JP61158649A JP15864986A JPH0712314B2 JP H0712314 B2 JPH0712314 B2 JP H0712314B2 JP 61158649 A JP61158649 A JP 61158649A JP 15864986 A JP15864986 A JP 15864986A JP H0712314 B2 JPH0712314 B2 JP H0712314B2
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Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は醗酵法によるγ−リノレン酸及びこれを含有す
る脂質の製造方法に関する。
〔従来技術〕
現在までに、γ−リノレン酸を生産するモルティエレラ
(Mortierella)属に属する微生物としては、モルティ
エレラ・イサペリナ、モルティエレラ・ピナセア、モル
ティエレラ・ラマニアナ、モルティエレラ・ラマニアナ
・アングリスポラ、及びモルティエレラ・ナナが報告さ
れている(特開昭60−168391)。
しかしながら、上記方法においては炭素源として、高濃
度の炭水化物が必要であり、また、生成脂質量における
γ−リノレン酸の占める割合は決して高いものではな
い。
〔発明が解決しようとする問題点〕
本発明は、従来γ−リノレン酸を生産する能力を有する
ことが知られていなかったモルティエレラ属微生物モル
ティエレラ・エロンガタ、モルティエレラ・エキシグ
ア、又はモルティエレラ・ヒグロフィラを使用して、安
価な常用の培地を用いて、従来法より高収率で、しかも
単純な工程でγ−リノレン酸、及びこれを含有する脂質
を製造することができる方法を提供しようとするもので
ある。
〔問題点を解決するための手段〕
上記の目的はモルティエレラ属に属するモルティエレラ
・エロンガタ、モルティエレラ・エキシグア、又はエル
ティエレラ・ヒグロフィラを培養してγ−リノレン酸、
又はγ−リノレン酸を含有する脂質を生成せしめ、そし
てγ−リノレン酸を採取することを特徴とするγ−リノ
レン酸の製造方法:及びモルティエレラ属に属するモル
ティエレラ・エロンガタ、モルティエレラ・エキシグ
ア、又はモルティエレラ・ヒグロフィラを培養してγ−
リノレン酸を含有する脂質を採取することを特徴とする
γ−リノレン酸を含有する脂質の製造方法により達成さ
れる。
〔具体的な説明〕
本発明において使用することができる微生物の例とし
て、モルティエレラ・エロンガタ(Mortierella elonga
ta)IFO 8570、モルティエレラ・エキシグア(Mortiere
lla exigua)IFO 8571、モルティエレラ・ヒグロフィラ
(Mortierella hygrophila)IFO 5941等が財団法人醗酵
研究所からなんら制限なく入手することができる。
また、本発明者らが土壌から分離した菌株モルティエレ
ラ・エロンガタSAM 0219(微工研菌寄第8703号)(微工
研条寄第1239号)を使用することもできる。
次に、上記の菌株SAM 0219(微工研菌寄第8703号)(微
工研条寄第1239号)の菌学的性質を記載する。
各培地における生育状態 培養条件:25℃、暗黒下 1. 麦芽エキス寒天培地 コロニーの生育は良好、培養2日目のコロニーは直径28
−31mm、培養5日目のコロニーは直径65−72mm、コロニ
ーは浅裂状を呈する、気菌糸の発達は乏しい、胞子のう
胞子の形成は良好、胞子のう柄は気菌糸より生じる、ニ
ンニクに類似した臭いあり。
2. バレイショ・ブドウ糖寒天培地 コロニーの生育は良好、培養2日目のコロニーは直径27
−31mm、培養5日目のコロニーは直径75−80mm、コロニ
ーはバラの花状を呈する、コロニー中心部で気菌糸が著
しく発達する、コロニーの裏側は黄白色あるいは黄色、
胞子のう胞子の形成は不良、ニンニクに類似した臭いあ
り、臭いはやや強い。
3. ツァベック寒天培地 コロニーの生育は比較的良好、培養2日目のコロニーの
直径は22−24mm、培養5日目のコロニーの直径は50−53
mm、気菌糸の発達は乏しい、気菌糸が密にからまりあう
ことがある。胞子のう胞子の形成は非常に良好、胞子の
う柄は気菌糸より生じる。ニンニクに類似した臭いあ
り。
4. LCA寒天培地(培地の調製方法は、三浦宏一郎、工
藤光代著“水性不完全菌のための一寒天培地”日本菌学
会会報11巻、116−118頁、1970年に従った) コロニーの生育は良好、培養2日目のコロニーの直径は
27−29mm、培養5日目のコロニーは直径64−66mm、コロ
ニーは浅裂状を呈する、気菌糸の発達はコロニーの中心
部を除いて乏しい、胞子のう胞子の形成は良好。胞子の
う柄は気菌糸より生じる。ニンニクに類似した臭いあ
り。
検鏡観察 各培地の検鏡標本およびコロニーの直接検鏡で、胞子の
う柄、胞子のう柄の分岐の仕方、胞子のう、胞子のう胞
子などを観察した。
胞子のう柄は長さ87.5−320μm、幅は基部で3−7.5μ
m、先端に向けて先細り、1.0−2.5μmとなる。胞子の
う柄はしばしば基部で分岐する。胞子のうは球形、直径
15−30μm、内部に多数の胞子のう胞子を含む離脱後や
や不明瞭なカラーを残す。胞子のう胞子は楕円形、希に
腎臓形、表面は平滑、7.5−12.5×5−7.5μm、厚膜胞
子は比較的多数形成される。単独、希に連鎖することが
ある。時に数本の菌糸を周囲に出すことがある。楕円形
また亜球形、12.5−30×7.5−15μm。または直径12.5
−15μm。接合胞子は観察されない。
3. 生理的性質 最適生育条件 pH:6−9 温度:20−30℃ 生育の範囲 pH:4−10 温度:5−40℃ 以上の菌学的諸性質に従い本発明菌株(SAM−0219)の
分類学的位置の検索を、J.A.von Arx,“The Genera of
Fungi sporulating in Pure Culture,"3rd ed.,J.Crame
r,1981、およびK.H.Domsch,W.Gams,& T.H.Anderson,
“Compendium of Soil Fungi,"Academic Press.1980に
準拠して求めると、胞子のう柄の先端に球状の胞子のう
を形成する、柱軸を持たない、胞子のう胞子に付属糸が
ない、培養菌糸がニンニクに類似した臭いを発する、と
いうことから本菌株はMortierella属に属する真菌であ
ると考えられる。
そこで、W.Gams,“A Key to the species of Mortierel
la,"Persoonia ,381−391,1977準拠して既知のMorti
erella属の種類と菌学的諸性質を比較すると、本菌株は
コロニーがビロード状でない、培養菌糸がニンニクに類
似した臭いを発っする、胞子のう柄が長さ87.5−320μ
mで分岐は下部でのみ生じ、葡萄の房状に分岐しない、
胞子のうは内部に多数の胞子のう胞子を含む、というこ
とからMortierella属Mortierella亜属(Sugen.Mortiere
lla)Hygrophila節(Sect.Hygrophila)に含まれると考
えられる。
Hygrophila節には22種が含まれている。本菌株とこれら
22種と菌学的諸性質を比較すると、本菌株部はMortiere
lla zychae,M.elongatulaおよびM.elongataの3種に類
似すると考えられる。そこで、K.H.Dmosch,W.Gams,&
T.−H.Anderson,“Compendium of Soll Fungi,"Academi
c Press,1980、W.Gams,“Some new or noteworthy spec
ies of Mortierella,"Parsoonia,111−140,1977)、
およびG.Linnemann,“Mortierella Coemans 1863."H.Zy
cha & R.Siepmann.“Mucorales Eine Beschreibung Al
ler Gattungen and Arten dieser Pilzgruppe."pp.155
−140,J.Cramer,1969を参考にして、本菌株とこれら3
種と菌学的諸性質を比較した。本菌株は、M.zychaeとは
胞子のう柄の長さと基部の幅、胞子のうの大きさで、明
瞭に異なる。M.elongatulaとは胞子のう胞子の形態と大
きさで、明瞭に異なる。M.elongataとは胞子のう柄がや
や短い、厚膜胞子の形態が楕円形または亜球形でときに
連鎖することがあり、さらに厚膜胞子がときに数本の菌
糸を周囲に出す、という点で異なるが、本発明者らはこ
のような差異は本菌株をMortierella elongataと別種で
あるとするには十分でないと判断した。そこで本発明者
らは本菌株をMortierella elongata SAM 0219と同定し
た。SAM 0219株は昭和61年3月19日に通商産業省工業技
術院微生物工業技術研究所(FRI)に受託番号FERM P−8
703として寄託され、FERM BP−1239として国際寄託に移
管された。
本発明に使用される菌株を培養する為には、その菌株の
胞子、菌糸又は予め培養して得られた前培養液を、液体
培地又は固体培地に接種し培養する。液体培地の場合
に、炭素源としてはグルコース、フラクトース、キシロ
ース、サッカロース、マルトース、可溶性デンプン、糖
蜜、グリセロール、マンニトール等の一般的に使用され
ているものがいずれも使用できるが、これに限られるも
のではない。窒素源としてはペプトン、酵母エキス、麦
芽エキス、肉エキス、カザミノ酸、コーンステイプリカ
ー等の天然窒素源の他に、尿素等の有機窒素源、ならび
に硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウ
ム等の無機窒素源を用いることができる。この他必要に
応じリン酸塩、硫酸マグネシウム、硫酸鉄、硫酸銅等の
無機塩及びビタミン等も微量栄養源として使用される。
これらの培地成分は微生物の生育を害しない濃度であれ
ば特に制限はない。実用上一般に、炭素源は0.1〜30重
量%、好ましくは1〜10重量%、窒素源は0.01〜5重量
%、好ましくは0.1〜2重量%の濃度とし、さらに好ま
しくは、炭素水素、脂肪酸、脂肪酸塩、または油脂を添
加するのが良い。又、培養温度は5〜40℃好ましくは20
〜30℃とし、培地のpHは4〜10、好ましくは6〜9とし
て、通気撹拌培養、振盪培養、又は静置培養を行なう。
培養は通常2〜10日間行う。
固体培地で培養する場合は、固形物重量に対して50〜10
0重量%の水を加えたふすま、もみがら、米ぬか等を用
い、5〜40℃、好ましくは20〜30℃の温度において、3
〜14日間培養を行う。この場合に必要に応じて培地中に
窒素源、無機塩類、微量栄養源および、添加物として、
炭化水素、脂肪酸、脂肪酸塩、または油脂を加えること
ができる。
このように培養して、菌体内に、γ−リノレン酸を含有
する脂質が生成蓄積される。液体培地を使用した場合に
は、培養菌体から、次のようにしてγ−リノレン酸の採
取を行なう。
培養終了後、培養液より遠心分離及び濾過等の常用の固
液分離手段により培養菌体を得る。菌体は十分水洗し、
好ましくは乾燥する。乾燥は凍結乾燥、風乾等によって
行うことができる。乾燥菌体は、好ましくは窒素気流下
で有機溶媒によって抽出処理する。有機溶媒としてはエ
ーテル、ヘキサン、メタノール、エタノール、クロロホ
ルム、ジクロロメタン、石油エーテル等を用いることが
でき、またメタノールと石油エーテルの交互抽出や、ク
ロロホルム−メタノール−水の一層系の溶媒を用いた抽
出によっても良好な結果を得ることができる。抽出物か
ら減圧下で有機溶媒を留去することにより、高濃度のγ
−リノレン酸を含有した脂質が得られる。
また、上記の方法に代えて湿菌体を用いて抽出を行うこ
とができる。この場合にはメタノール、エタノール等の
水に対して相溶性の溶媒、又はこれらと水及び/又は他
の溶媒とから成る水に対して相溶性の混合溶媒を使用す
る。その他の手順は上記と同様である。
上記のようにして得られた脂質中には、γ−リノレン酸
が脂質化合物、例えば脂肪の構成成分として含まれてい
る。これらを、直接分離することもできるが、低級アル
コールとのエステル、例えばγ−リノレン酸メチルとし
て分離するのが好ましい。このようなエステルにするこ
とにより、他の脂質成分から容易に分離することがで
き、また、培養中に生成する他の脂肪酸、例えばパルミ
チン酸、オレイン酸、アラキドン酸等(これらも、γ−
リノレン酸のエステル化に際してエステル化される)か
ら容易に分離することができる。例えば、γ−リノレン
酸のメチルエステルを得るには、前記の抽出脂質を無水
メタノール−塩酸5%〜10%、BF3−メタノール10%〜5
0%等により、室温にて1〜24時間処理するのが好まし
い。
前記の処理液からγ−リノレン酸メチルエステルを回収
するにはヘキサン、エーテル、酢酸エチル等の有機溶剤
で抽出するのが好ましい。次に、この抽出液を無水酢酸
ナトリウム等により乾燥し、有機溶媒を好ましくは減圧
下で留去することにより主として脂肪酸エステルから成
る混合物が得られる。この混合物中には、目的とするγ
−リノレン酸メチルエステルの他に、パルミチン酸メチ
ルエステル、ステアリン酸メチルエステル、オレイン酸
メチルエステル等が含まれている。これらの脂肪酸メチ
ルエステル混合物からγ−リノレン酸メチルエステルを
単離するには、カラムクロマトグラフィー、低温結晶化
法、尿素包接体法等を、単独で、又は組み合わせて使用
することができる。
こうして単離されたγ−リノレン酸メチルからγ−リノ
レン酸を得るには、アルカリで加水分解した後、エーテ
ル、酢酸エチル等の有機溶媒で抽出すればよい。
また、γ−リノレン酸をそのメチルエステルを経ないで
採取するには、前記の抽出脂質をアルカリ分解(例えば
5%水酸化ナトリウムにより室温にて2〜3時間)した
後、この分解液から、脂肪酸の抽出・精製に常用されて
いる方法により抽出・精製することができる。
次に、実施例により、この発明をさらに具体的に説明す
る。
実施例1 グルコース5%、ペプトン0.5%、酵母エキス0.3%及び
麦芽エキス0.3%を含む培地(pH6.0)50mlを500ml容坂
口フラスコに入れ、120℃で20分間殺菌した。モルティ
エレラ・エロンガタSAM 0219(FERM P−8703)(FERM B
P−1239)1白金耳を接種し、レシプロシェーカー(110
rpm)により28℃で5日間振盪培養した。培養後、濾過
にて菌体を回収し、十分水洗した後、凍結乾燥した。こ
れにより、1.4gの乾燥菌体を得た。この菌体より、クロ
ロホルム−メタノール−水の一層系の溶媒を用いるBlig
h & Dyerの抽出法によって総脂質を抽出したところ、3
40mgの脂質が得られた。この脂質を無水メタノール−塩
酸(95:5)を用いて20℃にて3時間処理することによっ
てメチルエステル化し、エーテルで抽出して210mgの脂
肪酸メチルを得た。これをさらにカラムクロマトグラフ
ィーによって分離し、γ−リノレン酸メチル画分を分取
し、ロータリーエバポレーターによって溶媒を留去した
結果、13mgの精製されたγ−リノレン酸メチルを得た。
本標品と市販のγ−リノレン酸メチル標準サンプルにつ
いて、ガスクロマトグラフィー分析、高速液体クロマト
グラフィー分析、質量分析及びNMR分析によって比較を
行なったところ、両者は、いずれの分析においても一致
した。精製前及び精製後のγ−リノレン酸メチルの量は
培地当りそれぞれ0.42mg/ml及び0.26mg/ml、乾燥菌体当
りそれぞれ15mg/g及び9.3mg/gであった。
実施例2 実施例1と同じ組成の培地5を15ジャーファーメン
ターに仕込み、120℃で40分間殺菌後、モルティエレラ
・エロンガタSAM 0219(FERM P−8703)(FERM BP−123
9)の前培養液200mlを接種した。30℃、通気量0.5v.v.m
で3日間通気撹拌培養を行ない、得られた湿菌体320g
(乾燥重量95g)について、実施例1と同様に抽出、加
水分解、及びメチルエステル化を行なったところ、総脂
質25g、及び混合脂肪酸メチル15gを得た。このもののγ
−リノレン酸メチル含量は11%、生成量は培地当り0.33
g/、乾燥菌体当り17mg/gであった。
又、培養終了後、濾過によって得られた培養濾液4,400m
lを乾燥後、実施例1と同様に抽出、加水分解、及びメ
チルエステル化を行なったところ、12%のγ−リノレン
酸メチルを含む混合脂肪酸メチル161mgを得た。
実施例3 モルティエレラ・エキシグア(Mortierella exigua,IFO
8571)、及びモルティエレラ・ヒグロフィラ(Mortier
ella hygrophila,IFO 5941)について実施例1と同様な
操作を行なったところ、それぞれ68mg,102mgの脂肪酸メ
チルが得られた。
これらの脂肪酸メチル中に含まれるγ−リノレン酸メチ
ルを単離・精製したところ、それぞれの菌株につき8m
g、及び7mgが得られた。
実施例4 グルコース2%、酵母エキス1%、Tween 20 0.2%及
び、種々の炭化水素、脂肪酸ナトリウム又は油脂0.5%
を含む培地(pH6.0)20mlを100ml容マイヤーに入れ、12
0℃で20分間殺菌した。モルティエテラ・エロンガタSAM
0219(FERM P−8703)(FERM BP−1239)1白金耳を接
種し、ロータリーシェーカー(200rpm)により28℃で5
日間培養した。得られた菌体について、実施例1と同様
に抽出、加水分解、及びメチルエステル化を行なった。
培地に添加した種々の炭化水素、脂肪酸ナトリウム、及
び油脂それぞれについて、得られた乾燥菌体重量、総脂
質量、総脂肪酸メチル量、γ−リノレン酸メチル含量、
及び培地当りのγ−リノレン酸メチル生成量は下表のよ
うになった。
標準培地に炭化水素、脂肪酸、油脂類などを添加するこ
とにより、対照無添加区よりも、γ−リノレン酸生成量
は10〜60%上昇した。
実施例5 グルコース2%、酵母エキス1%を含む培地(pH6.0)2
0mlを100ml容マイヤーに入れ、120℃で20分間殺菌し
た。モルティエレラ・エロンガタSAM 0219(FERM P−87
03)(FEMP BP−1239)1白金耳を接種し、ロータリー
シェーカー(200rpm)により28℃で4日間培養後、種々
の脂肪酸ナトリウム又は油脂100mgを120℃で15分間殺菌
後、添加し、さらに同様にして2日間培養した。得られ
た菌体について、実施例1と同様に抽出、加水分解、及
びメチルエステル化を行なった。培地に添加した種々の
脂肪酸ナトリウム、及び油脂それぞれについて、得られ
た乾燥菌体当り、及び培地当りのγ−リノレン酸メチル
生成量は下表のようになった。
培養途中(培養4日後)に、脂肪酸、油脂類などを添加
することより、対照無添加区よりも、γ−リノレン酸生
成量は5〜120%上昇した。

Claims (10)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】モルティエレラ(Mortierella)属に属す
    るモルティエレラ・エロンガタ(Mortierella elongat
    a)、モルティエレラ・エキシグア(Mortierella exigu
    a)、又はモルティエレラ・ヒグロフィラ(Mortierella
    hygrophila)を培養して、γ−リノレン酸、又はγ−
    リノレン酸を含有する脂質を生成せしめ、そしてγ−リ
    ノレン酸を採取することを特徴とするγ−リノレン酸の
    製造方法。
  2. 【請求項2】培地へ炭化水素、脂肪酸、脂肪酸塩または
    油脂を添加することを特徴とする特許請求の範囲第1項
    記載の方法。
  3. 【請求項3】培養中の培養液へ脂肪酸、脂肪酸塩または
    油脂を添加することを特徴とする特許請求の範囲第1項
    記載の方法。
  4. 【請求項4】モルティエレラ・エロンガタを培養するこ
    とを特徴とする特許請求の範囲第1項記載の方法。
  5. 【請求項5】モルティエレラ・エロンガタSAM 0219(FE
    RMP−8703)(FERM BP−1239)を培養することを特徴と
    する特許請求の範囲第1項記載の方法。
  6. 【請求項6】モルティエレラ(Mortierella)属に属す
    るモルティエレラ・エロンガタ(Mortierella elongat
    a)、モルティエレラ・エキシグア(Mortierella exigu
    a)、又はモルティエレラ・ヒグロフィラ(Mortierella
    hygrophila)を培養してγ−リノレン酸を含有する脂
    質を採取することを特徴とするγ−リノレン酸を含有す
    る脂質の製造方法。
  7. 【請求項7】培地へ炭化水素、脂肪酸、脂肪酸塩または
    油脂を添加することを特徴とする特許請求の範囲第6項
    記載の方法。
  8. 【請求項8】培養中の培養液へ脂肪酸、脂肪酸塩または
    油脂を添加することを特徴とする特許請求の範囲第6項
    記載の方法。
  9. 【請求項9】モルティエレラ・エロンガタを培養するこ
    とを特徴とする特許請求の範囲第6項記載の方法。
  10. 【請求項10】モルティエレラ・エロンガタSAM 0219
    (FERM P−8703)(FERM BP−1239)を培養することを
    特徴とする特許請求の範囲第6項記載の方法。
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