JPH06502226A - セルラーゼによる綿含有織物の処理方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 セルラーゼによる綿含有織物の処理方法発明の背景 １、　産業上の利用分野 本発明は綿含有織物をセルラーゼで処理する改善された方法、並びにこれらの方 法により製造された織物に関するものである。特に本発明の改善方法は、綿含有 織物を、実質的に全てのＣＢＨＩ型のセルラーゼ成分を含まない菌類セルラーゼ 組成物を含有する水溶液と接触せしめることに関する。その締金を織物をそのよ うな溶液で処理する場合、生成した織物は、処理前の織物と比較して、例えば肌 触り、外観、および／または柔らかさ等において期待した高品質なものであり、 その織物はまた、ＣＢＨＩ型のでルラーゼ成分を含有するセルラーゼ組成物で処 理した織物と比較して強度の損失が減少したものである。

２、　従来技術 織物の製造中または直後に、綿含有織物は、その織物に所望の特性を与えるため にセルラーゼで処理することができる。例えば、織物業界において、綿含有織物 の肌触りおよび／または外観を改善するため、綿含有ニットから表面の繊維を除 去するため、そして綿含有デニム等にストーンウオッンユの外観を与えるために セルラーゼが用いられている。

特に、日本の特願昭５８−３Ｂ２１７号および５ｇ−５４０３２号、並びに大量 らの「セルラーゼによる綿織物の再形成」およびＪＴ　Ｎ　１９ｇｇ年１２月の 雑誌の「新たなことｍ−綿織物の感触を軟化せしめる重量損失処理」はそれぞれ 、セルラーゼによる綿含有織物の処理がその織物に改善された肌触りを与えるこ とを開示している。一般的に、このセルラーゼ処理は、綿毛および／または表面 の繊維を除去し、このことは織物の重量を減少させると思われている。これらの 効果の組合せにより、その織物に改善された肌触り、すなわち絹のような織物の 肌触りを与えられる。

加えて従来は、これらの織物に通常である折れた繊維や糸を除去する目的のため に、綿含有編物を、撹拌およびカスケード条件下で、例えばジェットの使用によ りセルラーゼ溶液で処理することが当業者に知られている。そのように処理する 場合、緩衝液は選択した染料で染料濃淡に不利に影響すると思われているので、 緩衝液は通常用いられない。

今までさらに、撹拌およびカスケード条件下で綿含有織物をセルラーゼ溶液によ り処理することが従来技術において知られている。そのように処理した場合、そ の綿含有織物は処理前の織物と比較して改善された肌触りと外観を示す。

最後に、これまで、撹拌およびカスケード条件下、すなわち、回転ドラム洗濯機 における綿８ｇ染めデニムのセルラーゼ溶液による処理はそのデニムに「ストー ンウォ・ノシュ」の外観を与えることが知られている。

そのような綿含有織物のセルラーゼ溶液での処理に関連する通常の問題は、処理 した織物が未処理織物と比較して著しい強度の損失を示すことである。セルラー ゼがセルロース（β−１，４−グルカン結合）を加水分解し、このことが次々に 綿高分子の部分の分断となり得るために、強度の損失が生じる。だんだん綿高分 子か分裂（分断）されるに連れ、織物の引張強さが減少する。

綿織物に亘るセルラーゼ溶液の撹拌およびカスケードを含む方法はより短い反応 時間しか必要としないので、これらの方法は、撹拌およびカスケードを含まない セルラーゼ処理方法と比較して減少した強度損失の綿含有織物を提供するものと 思われている。いずれにせよ、そのような方法ではまだ著しい強度損失となる。

したがって、処理前の織物と比較したセルラーゼによる処理により生成した処理 綿含有織物において、所望の高められた性能を達成するが、減少した強度損失を 提供するためにそのようなセルラーゼ処理方法改良することが特に望ましい。

加えて、セルラーゼの菌類源は、非常に大量のセルラーゼを分泌することが知ら れているため、またさらにそのような菌類源の発酵方法並びにセルラーゼを単離 する単離および精製方法が従来技術において知られているために、そのような菌 類セルラーゼを肌触りおよび／または外観を改善する方法に用いることは特に有 利である。

発明の概要 本発明は、綿含有織物を菌類セルラーゼで処理するこれまでに知られている方法 が、実質的に全てのＣＢＨＩ型成分を含有しない菌類セルラーゼ組成物を用いる ことにより改善できるという発見に基づくものである。驚いたことに、ＥＧ型成 分は、セルラーゼ組成物で処理する前の織物と比較して、肌触り、外観、柔らか さ、色彩、および／またはストーンウォッシュの外観に関する処理織物に高めら れた質を与えられることを発見した。加えて、処理織物における強度損失のかな りの部分の原因どなるのは、ＥＧ型成分と結合したＣＢＨＩ型成分であることが 分かった。

上記点から見たその方法の１つの面において、本発明は、された方法に基づき、 ここでその改善は、実質的に全てのＣＢＨＩ型成分を含有しない菌類セルラーゼ 組成物を利用することを含む。好ましい実施態様において、菌類セルラーゼ組成 物は、全てのＣＢＨＩ型および全てのＣＢＨＩＩ型成分を含有しない。さらに別 の好ましい実施態様において、菌類セルラーゼ組成物は、セルラーゼ組成物のタ ンパク質の総重量に基づいて少なくとも約１０重量パーセント、好ましくは少な くとも約２０重量パーセントのＥＧ型成分からなる。

その方法の別な面において、本発明は、面含有織物の菌類セルラーゼ水溶液での 処理を行なう改善された方法に基づき、その方法は、その織物に亘りセルラーゼ 溶液のカスケード効果を精製するような条件下で撹拌を行ない、ここでその改善 は、実質的に全てのＣＢＨＩ型成分を含有しない菌類セルラーゼ組成物を利用す ることを含む。好ましい実施態様において、菌類セルラーゼ組成物は、全てのＣ ＢＨＩ型および全てのＣＢＨＩＩＩ型成分含有しない。

さらに別の好ましい実施態様において、菌類セルラーゼ組成物は、セルラーゼ組 成物のタンパク質の総重量に基づいて少なくとも約１０重量パーセント、好まし くは少なくとも約２０重量パーセントのＥＧ型成分からなる。

本発明の方法により処理された綿含有織物は、ＣＢＨ■セルラーゼ成分を含有す る菌類セルラーゼ組成物で処理した織物と比較した減少した強度損失を示すが、 処理前の織物と比較して予期した高められた質を有する。減少した強度損失は、 本発明の方法が強度損失抵抗性であることの根拠となる。

その組成物の面において、本発明は、上述した本発明の方法において処理した綿 含有織物に基づく。

図面の簡単な説明 図１は、ｐΔＣＢＨＩｐｙｒ４の構成の概略図である。

図２は、１つのＴ、ｒｅｅｓｅｉ染色体上のｃｂｈｌ座でのｐΔＣＢＨＩ　ｐｙ 　ｒ４からの大きなＥｃｏＲＩ断片の組込みによるＴ、ｒｅｅｓｅｉ遺伝子の削 除を説明する図。

図３は、プローブとして３２ｐ標識ｐΔＣＢＨＩｐｙｒ４を用いたサザン分析後 のＥｃｏＲＩ切断ｐΔＣＢＨＩｐｙ「４で転換したＴ、ｒｅｅｓｅｉ菌株ＧＣ６ ９からのＤＮＡのオートラジオグラフである。分子量マーカーのサイズは、図の 左側にキロベースベアで示す。

図４は、プローブとして１２Ｐｌｙ怠ｐ　Ｅ　ｎ　ｔ　ＣＢ　ＨＩを用いたサザ ン分析後のＥｃｏＲＩ切断ｐΔＣＢＨＩｐｙｒ４で転換したＴ、ｒｅｅｓｅｉ菌 株ＧＣ６９からのＤＮＡのオートラジオグラフである。分子量マーカーのサイズ は、図の左側にキロベースペアで示す。

図５は、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉの野生型により、そして転換菌株により分泌されたタ ンパク質を示す等電点電気泳動ゲルである。特に、図５において、等電点電気泳 動ゲルのレーンＡはＴ、ｒｅｅｓｅｉからの部分的精製ＣＢＩ’ｌｌを用いてい る；レーンＢは野生型Ｔ、ｒｅｅｓｅｉを用いている；レーンＣはｃｂｈｌ遺伝 子が欠失されたＴ、ｒｅｅｓｅｉ菌株からのタンパク質を用いている；そしてレ ーンＤはｃｂｈｌ遺伝子およびｃｂｈ２遺伝子が欠失されたＴ。

ｒｅｅｓｅｉ菌株からのタンパク質を用いている。図５において、図の右側は、 １つ以上の分泌タンパク質に発見された単一のタンパク質の位置を示すように印 を付けたものである。特に、ＢＧはβ−グルコシダーゼを指し、Ｅｌはエンドグ ルカナーゼＩを指し、Ｅ２はエンドグルカナーゼＩＩを指し、Ｅ３はエンドグル カナーゼＩＩＩを指し、Ｃ１はエキソ−セロビオヒドロラーゼＩを指し、モして Ｃ２はエキソ−セロビオヒドロラーゼＩＩを指す。

図６Ａは、ゲノムＤＮＡ上の４．１ｋｂ　ＥｃｏＲＩ断片としてクローンしたＴ 、ｒｅｅｓｅｉ　ｃｂｈ２座を示した図であり、図６Ｂは、ｃｂｈ２遺伝子欠失 ベクターｐＰΔＣＢＨＩＩを示した図である。

図７は、プローブとして３２ｐ標工ｐＰΔＣＢＨＩＩを用いたサザン分析後のＥ ｃｏＲ１切断ｐＰΔＣＢＨＩＩで転換したＴ、ｒｅｅｓｅｉ菌株Ｐ３７ＰΔＣＢ ＨＩＰｙｒ２６からのＤＮＡのオートラジオグラフである。分子量マーカーのサ イズは、図の左側にキロベースベアで示す。

図８は、プラスミドｐＥＧ１ｐｙｒ４のダイヤグラムである。

図９は、４０℃でのｐＨ範囲に亘るＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから 誘導された酸性ＥＧ豊富菌類セルラーゼ組成物（ＣＢＨＩおよびＩＩを欠失した ）のＲＢＢ−ＣＭＣ活性プロフィール、並びに４０℃でのｐＨ範囲に亘るＴｒｉ ｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから誘導された豊富ＥＧＩＩＩセルラーゼ組成 物の活性プロフィールを説明する図である。

図１０は、様々な量のＣＢｆ（成分を有するセルラーゼ組成物で処理した綿含有 織物のランダロメータ（ｌａｕｎｄｅｒｏｍｅｔｅｒ）中の３回の洗濯後の強度 損失の結果を説明する図である。

図１１は、様々なｐＨでの野生型Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉにより 分泌されたセルラーゼで処理した綿含有織物の繊維除去の結果（パネルテストス コアに基づく）を説明する図である。

図１２は、野生型Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉにより分泌された様々 な濃度のセルラーゼ（ｐｐｍ）で処理した綿含有織物、およびＣＢＨＩおよびＣ ＢＨＩＩを分泌できないように遺伝学的に設計したＴｒ　ｉ　ｃｈ。

ｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉの菌株により分泌されたセルラーゼで処理した綿織物 の繊維除去の結果（パネルテストスコアに基づく）を説明する図である。

図１３は、ＣＢＥＩ　ＩおよびＣＢＨＩＩを分泌できないように遺伝学的に変更 したＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉの菌株から誘導した様々な濃度（ｐ ｐｍ）のＥＧ豊富セルラーゼ組成物の柔軟さのパネルテストを説明する図である 。

図１４は、都合のよい制限エンドヌクレアーゼ開裂部位を生成するためにｅｇｌ ｌおよびｃｂｈｌに作られた部位特定交代のダイヤグラムである。それぞれの場 合において、上側のラインは元のＤＮＡ配列を示し、導入された変化を中はどの ラインに示し、新たな配列は下側のラインに示す。

図１５は、ｐｃＥＰｃｌから得られるより大きなＥｃ。

ＲＩ断片のダイヤグラムである。

図１６は、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　ＲｕｔＣ３０の未変換菌株からの、およびＴ、ｒ ｅｅｓｅｉをＥｃｏＲＩ切断ｐＣＥＰＣＩで変換することにより得られた２つの 形質転換株からのＤＮＡのオートラジオグラフである。ＤＮＡをＰｓｔＩで切断 して相補性ＤＮＡ鎖が得られ、３２ｐ標識ｐＵＣ４に：：ｃｂｈｌで雑種形成し た。マーカーＤＮＡ断片のサイズは図の左側にキロベースの組で示す。

図１７は、プラスミドｐＥＧＩ　Ｉ　：　：Ｐ−１のダイヤグラムである。

図１８は、ＨｉｎｄＩ　Ｉ　ＩおよびＢａｍＨＩで切断したｐＥＧＩ　Ｉ　：　 ：Ｐ−１で変換したＴ、ｒｅｅｓｅｉ菌株Ｐ３７ＰΔΔ６７Ｐ１からのＤＮＡの オートラジオグラフである。相補性ＤＮＡ鎖を調製し、ＤＮＡは、ｅｇ１３遺伝 子を含有する放射線標諧Ｔ、ｒｅｅｓｅｉＤＮＡの約４ｋｂ　Ｐｓｔｒ断片で雑 種形成した。ラインＡ、ＣおよびＥは、未変換味からのＤＮＡを含有し、一方Ｂ 、ＤおよびＦは、未変換Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ菌株からのＤＮＡを含有する。

Ｔ、ｒｅｅｓｅｉＤＮＡを、ラインＡ、ＢのＢｇｌｌｌで、ラインＣ，ＤのＥｃ ｏＲＶて、そしてラインＥＳＦのＰｓｌｏで切断した。マーカーＤＮＡ断片のサ イズは図の左側にキロベースベアで示す。

図１９は、プラスミドｐＰΔＥＧＩ−１のダイヤグラムである。

図２０は、Ｈｉｎｄｌ　Ｉ　Ｉ切断ｐΔＥＧＩｐｙｒ−３１：より得られた菌株 ＧＣ６９の形質転換株から単離したＤＮＡの相補性ＤＮＡ鎖のオートラジオグラ フである。未変換味に予期したプローブ、放射線標識ｐΔＥＧＩｐｙｊ−３によ る雑種形成の模様をレーンＣに示す。レーンＡはｅｑ１１遺伝子が分裂した形質 転換株に予期された模様を示し、レーンＢはｐΔＥＧ　Ｉ　ｐ　ｙ　ｒ−３ＤＮ Ａがゲノム中に組込まれたがｅｑｌｌ遺伝子を分裂しない形質転換株を示す。

レーンＤは］（ｉｎｄｌＩＩで切断したｐΔＥＧＩｐｙｒ−３を含有し、適切な サイズのマーカーを提供する。マーカーＤＮＡ断片のサイズは図の左側にキロベ ースベアで示す。

発明の詳細な説明 上述したように、本発明の方法は、綿含有ｌａ物をセルラーゼで処理する従来の 方法における改良である。その改良は、所望の高められた質を織物に与えるが、 その織物の強度の損失を最小限にする特定のセルラーゼ組成物を用いることから なる。しかしながら、本発明を詳細に述べる前に、以下の用語を最初に定義する 。

「綿含有織物」という用語は、純粋な綿または綿織物、綿ニット、綿デニム、綿 より糸等を含む綿ブレンドから作られた縫ったまたは縫わない織物を指す。綿ブ レンドを用いる場合、織物中の綿の量は、少なくとも約４０重量パーセントの綿 、好ましくは約６０重量パーセントの綿、最も好ましくは約７５重量パーセント の綿であるべきである。

ブレンドとして用いられる場合、その織物中に用いられる他の材料は、ポリアミ ド繊維（ｆＰＪえば、ナイロン６およびナイロン６６）、アクリル繊維（例えば 、ポリアクリロニトリル繊維）、およびポリエステル繊維（例えば、ポリエチレ ンテレフタレート）、ポリビニルアルコール繊維（例えば、ビニロン）、ポリ塩 化ビニル繊維、ポリ塩化ビニリデン繊維、ポリウレタン１Ｍ維、ポリ尿素繊維、 およびアラミド繊維のような合成繊維を含む１つ以上の非綿繊維を含んでもよい 。レーヨンのような再生セルロースか本発明の方法の綿に代替として用いること ができると考えらる。

ここに用いられた「仕上げ」という用語は、織物上のセルラーゼのセルロースを 加水分解する活性を実質的に妨げるために十分な量の仕上げ剤を綿含有織物に施 すことを意味する。仕上げ剤は一般的に、例えば、柔軟さ、ドラバビリティ−（ ｄｒａｐａｂｉ　ｌ　ｉ　ｔｙ）等の織物の特性を高める目的のために、織物の 製造工程の最後またはそのあたりで施され、それにより、セルラーゼとの反応か ら織物を保護する。綿含有織物を仕上げるのに便利な仕上げ剤は、従来技術にお いて知られており、メラミン、グリオキサール、または尿素ホルムアルデヒド、 並びにろう、シリコン、蛍光化学種、および４原子（ｑｕａｔｅｒｎａｒｉｅｓ ）のような樹脂製材料を含む。そのように仕上がった場合、綿含有織物は実質的 にセルラーゼに対する反応性が低い。

「菌類セルラーゼＪという用語は、菌類から得られたセルラーゼ遺伝子の全てま たは一部を含有し表現するために遺伝学的に変更された菌類源または微生物から 誘導された酵素組成物を指す。菌類セルラーゼはセルロースとその誘導体に作用 し、セルロースを加水分解し、主生成物、グルコースとセロビオースを与える。

菌類セルラーゼは、放線菌、滑走細菌（粘液細菌）および真性細菌のような微生 物を含む非菌類源から生成したセルラーゼから区別される。

ここに記載したセルラーゼ組成物を調製するのに都合のよいセルラーゼを生成す ることのできる菌類は、英国特許第２．０９４，８２８号に開示されており、そ の開示をここに参照文献として用いる。

最良の菌類セルラーゼは一般的に、酸性または中性のｐＨ範囲において最大の活 性を有するが、いくつかの菌類セルラーゼが、中性およびややアルカリ性の条件 下で著しい活性を有することが知られており、すなわち、例えばＨｕｍｉｃｏｌ ａ　１ｎｓｏｌｅｎｓから誘導されたセルラーゼは中性からややアルカリ性条件 下で著しい活性を有することが知られている。

菌類セルラーゼは、異なる基質特異性、酵素的作用パターン等を育するいくつか の酵素分類からなることが知られている。加えて、各分類内の酵素成分は、異な る分子量、ことなるグリコジル化度、異なる等電点、異なる基質特異性等を示し 得る。例えば、菌類セルラーゼは、エンドグルカナーゼ（ＥＧ）　、エキソ−セ ロビオヒドロラーゼ＜ＣＢＨ）、β−グルコシダーゼ（ＢＧ）等を含むセルラー ゼ分類を含む。一方、細菌セルラーゼが、はとんどまたは全くＣＢＨ成分を含有 しないと文献に報告されているが、細菌セルラーゼから誘導されたＣＢＨ状成分 がエキソ−セロビオヒドロラーゼ活性を育すると報告されたことはまれである。

自然に発生した菌類源により産生されて１つ以上のＣＢＨおよびＥＧ酸成分らな る菌類セルラーゼ組成物は、これらの成分それぞれが菌類源により産生された比 率で発見され、ここではときどき「完全菌類セルラーゼ系」または「完全菌類セ ルラーゼ組成物」と称され、その組成物を、そこから単離されたセルラーゼの分 類および成分から、細菌とある菌類により産生された不完全セルラーゼ組成物か ら、またはセルラーゼのＣＢＨおよび／またはＥＧ酸成分生産しないように、ま たは産生過料、産生不足となるように遺伝学的に修飾した微生物から得たセルラ ーゼ組成物から区別する。

セルラーゼの産生のための菌類を培養する発酵方法は、従来技術においてそれ自 体が知られている。例えば、セルラーゼ系は、バッチ、フェト−バッチ（ｆｅｄ −ｂａｔｃｈ）および連続流動工程を含む固体または浸水培地のいずれかにより 産生され得る。発酵肉汁（ｂｒｏｔｈ）からのセルラーゼ系の集積および精製は また、従来技術においてそれ自体が知られている方法により達成される。

「エンドグルカナーゼ（ｒＥＧＪ　）型成分」は、それら全ての菌類セルラーゼ 成分またはＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａｒｅｅｓｅｉのエンドグルカナーゼ成分に似 た布地活性特性を示す成分の組合せを示す。この点に関して、Ｔｒｉｃｈｏｄｅ ｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのエンドグルカナーゼ成分（特に、ＥＧ　Ｉ、ＥＧＩＩ、 ＥＧ　ＩＩＩ等を単一または組合せで）は、これらの成分が布地処理媒質中に含 有され、その織物がこの媒質で処理された場合、（処理前の織物と比較して）綿 含有織物に、改良された肌触り、改良された外観、柔軟さ、高められた色彩、お よび／またはストーンウォッシュの外観を与える。加えて、綿含有織物のＴｒｉ ｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのエンドグルカナーゼ成分による処理は、類似 の組成物での処理であるが追加にＣＢＨＩ型成分を含有する処理により生じた強 度の損失と比較してより少ない強度の損失となる。

したがって、エンドグルカナーゼ型成分は、これらの成分が、織物を処理するの に用いられる媒質中に含有される場合に、（処理前の織物と比較して）綿含有織 物に、改良された肌触り、改良された外観、柔軟さ、高められた色彩、および／ またはストーンウォッシュの外観を与え、そして類似のセルラーゼ組成物での処 理であるが追加にＣＢＨＩ型成分を含有する処理により生じた強度の損失と比較 してより少ない強度の損失を与える菌類セルラーゼ成分である。

そのようなエンドグルカナーゼ型成分は、（ａ）カルボキシメチルセルロース（ ＣＭＣ）のような溶性セルロース誘導体を加水分解して、それにより溶液を含有 するＣＭＣの粘度を減少せしめる、（ｂ）リン酸膨潤セルロース（例えば、ワル セスセルロース）のようなセルロースの水和形態を容易に加水分解する、および セルロースのより高度な結晶性形態（例えば、アビセル、ソルカフロク等）を容 易ではないが加水分解する、成分の能力のような活性試験を用いてエンドグルカ ナーゼとして因襲的に分類される成分は含まない。一方で、そのような活性試験 により定義されるような全てのエンドグルカナーゼ成分が、綿含有織物に、１つ 以上の高められた質、並びに減少した強度損失を与えるわけではないと思われて いる。したがって、エンドグルカナーゼ型成分を、７ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒ ｅｅｓｅｉのエンドグルカナーゼ成分により所有されるような類似の布地活性特 性を所有する菌類セルラーゼの成分として定義することが本発明にとってより正 確である。

菌類セルラーゼは１つより多いＥＧ型成分を含有し得る。

異なる成分は一般的に、異なる等電点、異なる分子量、異なるグリコジル化度、 異なる基質特異性、異なる酵素活性パターン等を有する。成分の異なる等重点に より、イオン交換クロマトグラフィー等による゛分離が可能となる。実際、異な る菌類源からの成分の単離は従来技術において知られている。例えば、ボルフら の米国特許出願０７／４２２．８１４、シュラインらの、国際出願Ｗ　Ｏ８９１ ０９２５９、ウッドらのセルロース分解の生化学および遺伝学、３１から５２（ １９８８）　；ウッドらの炭化水素リサーチ、１９０巻、２７９から２９７　（ １９８８）　；シュライン、酵素学における方法、１６０巻、２３４から２４２ （１９８ｇ）等を参照のこと。これらの各参照文献の完全な開示を、ここに引用 する。

一般的に、ＥＧ型成分の組合せは、綿含有織物に高められた質を与え、並びに単 一のＥＧ成分と比較して減少した強度損失を与える際に、相乗応答を示すと考え られている。

一方では、単一のＥＧ型成分はより安定であり、ｐＨ範囲に亘り広いスペクトル の活性を有する。したがって、本発明に用いられるＥＧ型成分は、単一のＥＧＩ ！！！成分または２つ以上のＥＧ型成分の組合せのいずれかである。成分の組合 せが用いられる場合、ＥＧ型成分は同一または異なる菌類源ら誘導される。

ＥＧ型成分は細菌的誘導セルラーゼから誘導され得る。

［エキソ−セロビオヒドロラーゼ型ＣｒＣＢＨ型」）成分」は、Ｔｒｉｃｈｏｄ ｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのＣＢＨＩおよび／またはＣＢＨＩＴセルラーゼに類似 した布地活性特性を示す菌類セルラーゼ成分を指す。この点に関して、ＥＧ型酸 成分セルラーゼ成分不在下で用いられた場合（上記定義したように）、Ｔｒｉｃ ｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩ酸成分みでは、その 処理した綿含有織物に、肌触り、外観、色彩および／またはストーンウォッシュ の外観において著しい増大を与えない。したがって、ＥＧ型成分と組み合わせて 用いた場合、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのＣＢＨＩ成分は、その綿 含有織物に高められた強度の損失を与える。

したがって、ＣＢＨＩ型成分およびＣＢＨＩｌ’ｃ２成分は、それぞれＴｒｉｃ ｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩ酸成分類似した布地 活性特性を示す菌類セルラーゼ成分を指す。上述したように、ＣＢｌ（Ｉ型成分 に関して、このことは、ＥＣ型成分の存在下で用いられる場合、綿含有織物の強 度損失を高める特性を含む。好ましい実施態様においてＥＧ型成分と組み合わせ て持ちいられる場合、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのＣＢＨＩ型成分 は増大した洗浄効果を与える。

したがって、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのＣＢＨＩ型成分は、ＥＧ 型成分と組み合わせてまたは単一で用いられ６場合、増大した柔軟効果を与えら れる。

そのようなエキソ−セロビオヒドロラーゼ型成分はどうしても、Ｔｒｉｃｈｏｄ ｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのＣＢ）ＩＩおよびＣＢＨＩＩを特徴付けるのに用いら れたような活性試験を用いてエキソ−セロビオヒドロラーゼとして因襲的に分類 された成分は含まない。例えば、そのような成分は、（ａ）セルビオースにより 競争的に阻害される（Ｋｉは約１ｍＭ）；　（ｂ）カルボキシメチルセルロース 等のような置換セルロースを著しくは加水分解できない：（ｃ）リン酸膨潤セル ロースを加水分解し、高度な結晶性セルロースはあまり加水分解しない。一方で は、活性試験によりＣＢＨ成分として特徴付けられたある菌類セルラーゼ成分は 、セルラーゼ組成物中で単体で用いられる場合、最小限の強度損失を有する綿含 有織物に、改善された肌触り、外観、柔軟さ、色彩、および／またはストーンウ ォッシュの外観を与える。したがって、エキソ−セロビオヒドロラーゼ成分は、 Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのエンドグルカナーゼ成分により所有さ れるような布地用途の類似の機能特性を所有するので、そのようなエキソ−セロ ビオヒドロラーゼをＥＧ型成分として定義することか本発明に関してより正確で あると思われる。

ＣＢＨＩ不足、ＣＢＨＩ豊冨またはＥＧＩＩＩＧ富であるセルラーゼ組成物を含 有する洗浄剤成分に関して、セルロースから還元糖を生成するのはセルラーゼの 量であり、特定の酵素成分の加水分解の相対比率ではなく、このことが綿含有織 物に所望の洗浄剤特性を与える、例えば、１つ以上の改善された色彩の復元、改 善された柔軟さ、および改善された洗浄力をその洗浄剤組成物に与えることが発 見された。

実質的に全てのＣＢＨＩ型成分を含まない菌類セルラーゼは精製技術により得ら れる。つまり、完全なセルラーゼ系は、適切なｐＨでのイオン交換クロマトグラ フィー、親和力クロマトグラフィー、サイズ排除等を含む、文献によく発表され ている認識された分離技術により実質的に純粋な成分に精製できる。例えば、イ オン交換クロマトグラフィーにおいて（通常は陰イオン交換クロマトグラフィー ）、ｐＨ勾配、または塩勾配、またはｐＨと塩勾配により溶出することによりセ ルラーゼ成分を分離することができる。ここに用いているように、「実質的に全 てのＣＢＨＩ型成分を含まないセルラーゼ」という用語は、タンパク質の重量に 基づくセルラーゼ組成物が１重量パーセント未満のＣＢＨＩ型セルラーゼ成分し か含有しないことを意味する。

また、実質的に全てのＣＢＨＩ型成分を含まないセルラーゼは、単離および成分 の組換え以外の方法で調製できると考えられる。例えば、どのようなＣＢＨＩ型 成分も製造不可能な、またはどのようなＣＢＨ型成分を製造不可能な微生物を調 製するために、組換え技術か用いられる。

上述した点に関して、実質的に全てのＣＢＨＩ型成分を含まないセルラーゼを調 製する好ましい方法は、ＣＢＨＩ型成分の表現が不可能であるように微生物を遺 伝学的に修飾することによるものであり、それらの方法はどのような異種タンパ ク質も表現しない。同様に、１つ以上のＥＧ型成分を加えて過表現するように微 生物を遺伝学的に修飾することもできる。例えば、１９９０年１０月５日に出願 され、ここに全てを参照文献として含む米国特許出願第０７１５９３．９１９号 は、１つ以上のＣＢＨ成分を表現できないようにおよび／または１つ以上のＥＧ 酸成分過表現できないように、Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉを遺伝学 的に精製する方法を開示している。さらに、その用途の方法は、どのような異種 タンパク質をも表現しないＴｒ　ｉ　ｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ菌株を産 生ずる。同様に、ミラーらの、ｒＡｓｐｅｒｑｉｌｌｕｓ　ｎ１ｄｕｌａｎｓ中 の直接および非直接遺伝子置換」分子およびセルラ生物学、１７１４−１７２１ 　（１’１５）は、異種ＤＮＡの線形断片を用いたＤＮＡ媒介転換によりＡｓｐ ｅｒｑｉｌｌｕｓ　ｎ１ｄｕｌａｎｓ中の遺伝子を削除する方法を開示している 。ミラーらの方法は、どのような異種タンパク質を産生ずることなく遺伝子削除 を達成する。

上述した点に関して、ＣＢＨＩ型および／またはＣＢＨＩＩ型セルラーゼ成分を 産生ずる責任のある遺伝子の削除はまた、セルラーゼ組成物中に存在するＥＧ型 成分の量を豊富にする効果を有する。同様に、ＣＢＨＩおよびＩＩＩ型成分産生 ずる責任のあるそれらの遺伝子の削除はＣＢＨ型成分を含まないセルラーゼ組成 物となる。

菌類セルラーゼ組成物は、不完全な菌類セルラーゼ組成物を産生ずる菌類源から ここに用いられると考えられる。

例えば、ある菌類はＣＢＨ成分を含まないセルラーゼ組成物を産生ずることが知 られている。例えば、コーワンらの、セルロース分解の生化学および遺伝学、編 集者オーパートら、１ｌ−３０（アカデミツクプレス、１９８ｇ）には、赤腐れ 菌は明確にＣＢＨ成分を産生じないことが開示されているが、これらの成分の１ つ以上がＣＢＨＩ型成分であることも可能である。

「β−グルコシダーゼ（ＢＧ）成分」は、ＢＧ活性を示すセルラーゼ成分を指し 、すなわちそのような成分はセロビオースの非還元末端および他のセロオリゴ糖 類（「セロビオース」）から作用し、単一産生物としてのグルコースを与える。

ＢＧ酸成分セルロース高分子上に吸着されず、または反応しない。さらに、その ようなりＧ成分は競争的にグルコースにより阻害される（Ｋｉは約１ｍＭ）。厳 密な意味において、ＢＧ酸成分セルロースを分解できないので文字通りにはセル ラーゼではないが、そのようなりＧ成分は、これらの酵素が、ＣＢＨ成分および ＥＧ酸成分結合作用により産生された阻害セルロース分解産生物（特にセロビオ ース）をさらに分解することによりセルロースの全体的な分解を促進させるため 、セルラーゼ系の定義内に含まれる。ＢＧ酸成分存在なくしては、結晶性セルロ ースの加水分解は緩やかにしかまたはほとんど生じない。ＢＧ酸成分しばしば、 ｐ−ニトロフェノールＢ−Ｄ−グルコシド（ＰＮＰＧ）のようなアリル基質に特 徴付けられ、それゆえしばしばアリル−グルコシダーゼと呼ばれる。全てのアリ ルグルコシダーゼがＢＧ酸成分あるわけではなく、あるものはセロビオースを加 水分解しない。

セルラーゼ組成物中のＢＧ酸成分存在または不在は、組成物中のＣＢＨ成分の活 性を調整するのに用いられると考えられる（すなわち、非ＣＢＨＩ型成分）。つ まり、セロビオースはＣＢＨ成分によるセルロース分解中に産生されるので、そ して高濃度のセロビオースがＣＢＨ活性を阻害することが知られているので、さ らにそのようなセロビオースはＢＧ酸成分よりグルコースに加水分解されるので 、セルラーゼ組成物中のＢＧ酸成分不在は、セロビオースの濃度が阻害水準に達 する場合にＣＢＨ活性を「消失」させる。また、１つ以上の添加剤（例えば、セ ロビオース、グルコース等）を、そのセルラーゼ組成物に加えて、直接にまたは 間接的に、ＣＢＨＩ型活性、並びに他のＣＢＨ活性を効果的に「消失」できると 考えられる。そのような添加剤が用いられた場合、添加剤の量が効果的にＣＢＨ Ｊ型活性を失わせるのに十分であれば、精製した組成物は全てのＣＢＨＩ型成分 を含まない組成物であると考えられる。

一方、ＣＢＨ成分により生成されたセロビオースの水準が、添加したＢＧ酸成分 不在下でそのような全体の加水分解の制限となる場合、添加した量のＢＧ酸成分 含有するセルラーゼ組成物は、セルロースの全体の加水分解を増大させる。

セルラーゼ組成物中のＢＧ酸成分量を増加せしめるまたは減少せしめるいずれか の方法が、事務所明細書番号０１００５５−０５６として１９９０年１２月ＩＯ 日に出願され、「クローニングによるセルロースの糖化およびＴＲＩ　ＣＨＯＤ ＥＲＭＡＲＥＥＳＥＩによるβ−グルコシダーゼ遺伝子の増幅」と題された米国 特許出願第０７７Ｂ２５．１４０号に記載されており、ここにその全体を参照文 献として含む。

菌類セルラーゼは１つ以上のＢＧ酸成分含有できる。異なる成分は一般的に、イ オン交換クロマトグラフィー等によりそれらの分離を可能にする異なる等電点を をする。単体ＢＧ酸成分たはＢＧ酸成分組合せのいずれがが用いられる。

布地処理溶液中で用いられる場合、ＢＧ酸成分一般的に、セルラーゼ組成物中に 発見されるどのようなＣＢ）（およびＥＧ酸成分セルラーゼによる阻害を防ぐの に十分な孟で加えられる。加えるＢＧ酸成分量は、当業者により容易に決定され る布地組成物中に産生されるセロビオースの量に依存する。しかしながら、使用 される場合、セルラーゼ組成物中に存在するいかなるＣＢＨ型成分と比較したＢ Ｇ酸成分重量パーセントは、好ましくは約０．　２から約１０重量パーセントで あり、より好ましくは約０，５から約５重量パーセントである。

本発明に用いられる菌類セルラーゼ組成物を調製するのに使用される好ましい菌 類セルラーゼは、Ｔｒ　ｉ　ｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ、Ｔｒｉｃｈｏｄ ｅｒｍａ　ｋ。

ｎｉｎｇｉｉ、Ｐｅｎｃｉｌｌｕｍ　ｓｐ、、Ｈｕｍｉｃｏｌａ　１ｎｓｏｌｅ ｎｓ、等から得られるものである。

ある菌類セルラーゼは市販されている。すなわち、セルキャスト（デンマーク、 コペンハーゲン、ノボインダストリー社から得られる）、ラビダーゼ（オランダ 、デルフト、Ｎ、Ｖ、、ギストブロケイド社から得られる）、サイトラーゼ１２ ３（カリフォルニア州、南すンフランシスコ、ジネンカーインターナショナル社 から得られる）等である。

他の菌類セルラーゼもまた、周知の発酵および単離方法により容易に単離できる 。

「緩衝溶液」という用語は、綿含有織物のセルラーゼ処理中に変動する所望では ないｐＨに対するセルラーゼ溶液を安定化させる周知の酸／塩基試薬を指す。こ の点に関して、セルラーゼ活性はｐＨに依存することが知られている。

すなわち、特定のセルラーゼ組成物が、定義されたｐＨ範囲内にセルロースを加 水分解する活性を示し、その定義された小さな部分内に最適なセルロースを加水 分解する活性が一般的に発見される。セルロースを加水分解する活性の特定なｐ Ｈ範囲は各セルラーゼ組成物により変化する。上述したように、はとんどのセル ラーゼは、酸性から中性ｐＨプロフィール内でセルロースを加水分解する活性を 示すが、アルカリ性のｐＩ（プロフィールにおいてセルロースを加水分解する活 性を示すセルラーゼ組成物もある。

綿含有織物のセルラーゼ処理中に、最初のセルラーゼ溶液のｐＨはセルラーゼ活 性に要求される範囲の外側にあることもあり得る。さらに、綿含有織物の処理中 に、例えば溶液のｐＨを変更する反応生成物の生成により、ｐＨが変化すること も有り得る。いずれの場合にも、干渉していないセルラーゼ溶液のｐＩ（はセル ロースを加水分解する活性に要求される範囲の外側に育り得る。このようなこと が生じた場合、セルラーゼ溶液中で所望でない還元またはセルロースを加水分解 する活性の停止が生じる。例えば、産生活性プロフィールを有するセルラーゼが 中性に緩衝されない水溶液中で用いられる場合、溶液のｐＨは、より低いセルロ ースを加水分解する活性およびおそらくセルロースを加水分解する活性の停止と なる。一方、中性に緩衝していない水溶液中で中性またはアルカリ性のプロフィ ールを有するセルラーゼの使用は、最初に著しいセルロースを加水分解する活性 を提供する。

上述した観点から見て、セルラーゼ溶液のｐＨはセルロースを加水分解する活性 に要求される範囲内に保持されるべきである。このことを達成する１つの手段は 、単にその系のｐＨをモニタして、酸また塩基いずれかの添加により所望のｐＨ を調製することによるものである。しかしながら、好ましい実施態様において、 系のｐＨは好ましくは、セルラーゼ溶液中に緩衝液を使用することにより所望の ｐＨ範囲内に保持される。一般的に、使用したセルラーゼが活性を示す範囲内に 溶液のｐＨを保持するために、十分な量の緩衝液を使用する。異なるセルラーゼ 組成物がセルロースを加水分解する活性を示す異なるｐＩ（範囲を仔する限りは 、使用する特定の緩衝液は、使用する特定のセルラーゼ組成物に関連して選択さ れる。使用するセルラーゼへの使用のために選択する緩衝液は、ｐＨ範囲および 使用するセルラーゼに最適な条件並びにセルラーゼ溶液のｐＩ（を考慮にいれた 当業者により容易に決定できる。好ましくは、使用する緩衝液は、セルラーゼ組 成物と相溶性であり、セルラーゼ溶液のｐＨを最適な活性に要求されるｐＨ範囲 内に保持するものである。適した緩衝液は、クエン酸ナトリウム、酢酸アンモニ ウム、酢酸ナトリウム、リン酸二ナトリウム、および他の従来技術において知ら れている緩衝液を含む。

綿含有織物の引張強さは、互いに直角であるたて方向とよ二方向に関して測定で きる。したがって、ここに用いる「たて引張強さ」という用語は、綿含有織物の 長さ方向に沿って測定された綿含有織物の引張強さを指し、一方「よこ引張強さ Ｊという用語は、綿含有織物の幅方向を横切って測定された綿含有織物の引張強 さを指す。セルラーゼ溶液で処理した締金ａ織物の引張強さを、処理の強さ減少 効果を決定するために、セルラーゼ溶液による処理の前の引張強さと比較する。

その引張強さがあまりにも減少せしめられる場合は、生成した綿含有織物が容易 に裂けるおよび／または孔を形成する。したがって、処理の後に、少なくとも処 理前の引張強さの約５０％である引張強さを保持することが望ましい（たておよ びよ二の両方）。

綿含有織物の引張強さは、ＡＳＴＭ　Ｄ１６８２試験方法論に従って容易に導か れる。そのような織物の引張強さを試験するのに適した装置は、スコツトテスタ ーまたはインストロンテスターを含み、その両方か市販されている。

セルラーゼ溶液で処理した綿含有織物の引張強さを試験する際に、処理後で試験 前の織物の収縮を避けるように注意しなければならない。そのような収縮は、誤 った引張強さのデータの原因となる。

綿含有織物への高められた質はここに用いられている方法により達成される。例 えば、改善された肌触りを有する綿含有織物は、日本国特開昭５８−３８２１７ および５８−５４０３２並びに大量らの「セルラーゼによる綿織物の再形成」お よびＪＴ　Ｎ　１９８８年１２月ジャーナルアーティクル「新たなこと、綿織物 の感触を柔らかくする重ｊｉ損失処理」により達成できる。これらの文献のそれ ぞれの教示をここに参照文献として含む。

同様に、綿含有織物の肌触りと外観の両者を改良する方法は、溶液が撹拌され、 その綿含有織物に亘りセルラーゼ溶液のカスケード効果が達成されるような条件 下でセルラーゼを含有する水溶液にその織物を接触せしめることを含む。そのよ うな方法により、そのように処理された綿含有織物の改善された肌触りと外観が 導かれ、１９９０年１１）月１８日に出願され、ここに全体が参照文献として含 まれる米国特許出願第０７７５９８，５（１８号に記載されている。

綿含有ニットを高める方法が、１９９０年第２期の国際紡績会報の５頁の染色／ 印刷／仕上げにおいて記載されており、ここに参照文献として含まれている。

同様に、ストーンウォッシュの外観を綿含有デニムに与える方法が、米国特許第 ４，８３２．１１６４号に記載されており、ここにその全体が参照文献として含 まれる。

セルラーゼ組成物での処理により綿含有織物を高める他の方法も従来技術におい て知られている。好ましくはそのような方法において、セルラーゼによる綿含有 織物の処理は、綿含有織物を仕上げる前に行なわれる。

上述したように、本発明が、処理織物の強さ損失を最小限にする特定のセルラー ゼ組成物を用いる限りは、本発明は綿含有織物を処理する従来技術の方法より優 れた改善である。ここに用いるセルラーゼ組成物は、実質的にＣＢＨＩ型成分金 成分ない、好ましくは実質的にＣＢＨ型成分成分まない菌類セルラーゼ組成物で ある。

加えて、ここに記載するセルラーゼ組成物の使用により、応力の加えられた綿含 有織物において織物／色彩を高められたものとする。つまり、綿含有織物の製造 中に、その織物には応力が加えられ、そのように応力が加えられた場合、その織 物は、破壊されて乱れた繊維を含有する。そのような繊維は、織物にすり切れて さえない外観を有害に与える。

しかしながら、本発明の方法により処理した場合、そのように応力の加えられた 織物は織物／色彩の高められたちのとなる。このことは、応力の加えられる前に 織物の外観を復元する効果を有する、破壊されて乱れた繊維のいくつかを除去す ることにより生しると思われる。

加えて、顔料型染色織物（例えば、デニム）に関して、ここに記載されたセルラ ーゼ組成物を用いることにより、これらのセルラーゼ組成物は、染料の再析出を より少なく生じさせる。また、これらの抗再析出特性は、他の成分と比較して１ つ以上の特定ＥＧ型成分について高められると考えられる。

上述した菌類セルラーゼ組成物は、セルラーゼおよび、例えば緩衝液、界面活性 剤、ｆ＃練剤等を含む他の必要に応じての成分を含む水溶液中で用いられる。こ の溶液に用いられるセルラーゼの濃度は、一般的にその意図する目的に十分な量 である。すなわち、セルラーゼ組成物は、綿含有織物に所望の高められた質を提 供する量で用いられる。使用されるセルラーゼ組成物の量はまた、用いられる装 置、用いられる方法のパラメータ（セルラーゼ溶液の温度、セルラーゼ溶液への 露出時間、等）、セルラーゼ活性（例えば、セルラーゼ溶液は、少ない活性のセ ルラーゼ組成物と比較してより高い活性のセルラーゼ組成物では低い濃度を要す る）、等に依存する。セルラーゼ組成物の正確な濃度は、上述した要因並びに所 望の効果に基づいて当業者により容易に決定され得る。好ましくは、ここに使用 するセルラーゼ溶液中のセルラーゼ組成物の濃度は、セルラーゼ溶液の０．０１ グラム／リツトルからセルラーゼ溶液の約１０．０グラム／リットル：さらに好 ましくは、セルラーゼ溶液の０．０５グラム／リツトルからセルラーゼ溶液の約 ２グラム／ツブトルである。（上述したセルラーゼ濃度は全タンパク質の重量を 指す）。

セルラーゼ溶液中に緩衝液を用いる場合、セルラーゼ水溶液中の緩衝液の濃度は 、使用するセルラーゼが、使用するセルラーゼの特性に依存する活性を示す範囲 内に溶液のｐＨを保持するのに十分なものである。使用する緩衝液の正確な濃度 は、当業者が容易に考慮できるいくつかの要因に依存する。例えば、好ましい実 施態様において、緩衝液並びに緩衝液の濃度は、最適なセルラーゼ活性に要求さ れるｐＨ範囲内にセルラーゼ溶液のｐＨを保持するように選択される。一般的に 、セルラーゼ溶液中に緩衝液濃度は約０．００５Ｎかそれより大きい。好ましく は、セルラーゼ溶液中の緩衝液の濃度は、約０．０１から約０．５Ｎであり、よ り好ましくは約０．０５から約０．１５Ｎである。

セルラーゼ溶液中の増大した緩衝液濃度が処理した織物の引張強さの損失率を高 めることも可能である。

セルラーゼと緩衝液に加え、セルラーゼ溶液は必要に応じて、少量、すなわち、 約２重量パーセント未満、好ましくは約０．０１から約２重量パーセントの界面 活性剤を含有できる。適した界面活性剤は、例えば、アニオン界面活性剤、非イ オン界面活性剤および両性電解質界面活性剤を含む織物およびセルラーゼに相溶 性であるどのような界面活性剤をも含む。

ここに使用する適したアニオン界面活性剤は、直鎖または枝別れ鎖アルキルベン ゼンスルホン酸塩；直鎖または枝別れ鎖のアルキル基またはアルケニル基を有す るアルキルまたはアルケニルエーテル硫酸塩：アルキルまはアルケニル硫酸塩； オレフィンスルホン酸塩：アルカンスルホン酸塩等を含む。アニオン界面活性剤 に適した対イオンは、ナトリウムおよびカリウムのようなアルカリ金属イオン： カルシウムおよびマグネシウムのようなアルカリ土類金属；アンモニウムイオン ；および炭素数２または３の１から３のアルカノール基を有するアルカノールア ミンを含む。

両性電解質界面活性剤は、第４アンモニウム塩スルホン酸塩、ベタインタイプ両 性電解質界面活性剤等を含む。そのような両性電解質界面活性剤は同一の分子中 に陽に荷電した基と陰に荷電した基の両方を有する。

非イオン性界面活性剤は一般的に、ポリオキシアルキレンエーテル、並びに高級 脂肪酸アルカノールアミドまたはそのアルキレン酸化物付加物、脂肪酸グリセリ ンモノエステル等からなる。

そのような界面活性剤の混合物もまた用いられる。

ここに用いられる溶液比、すなわち、織物に対するセルラーゼ溶液の重量比は一 般的に、綿含有織物に所望の高められた質を達成するのに十分な量であり、使用 される方法および達成される質に依存する。好ましくは、溶液比は一般的に、約 ０．１＋１かそれより大きく、さらに好ましくは約１：１より大きく、さらによ り好ましくは約１０：１より大きい。約５０＝１より大きな溶液比を使用するこ とは、経済的な点から見て通常好ましくはない。

セルラーゼ処理の反応温度は２つの競合因子により決定される。第１に、より高 い温度は一般的に、高められた反応速度論、すなわちより速い反応と対応し、こ のことはより低い温度で要求される反応時間と比較して減少した反応時間となる 。したがって、反応温度は一般的に少なくとも約３０℃かそれより大きい。第２ に、セルラーゼは、所定の反応温度を超えると活性を失うタンパク質であり、そ の温度は、用いられるセルラーゼの特性に依存する。それゆえ、反応温度が非常 に高くなる場合、セルロースを加水分解する活性が、セルラーゼの変性の結果と して失われる。

その結果、ここに用いられる最大反応温度は一般的に約６５℃である。上述点に 関して、反応温度は一般的に、約３０℃から約６５℃であり、好ましくは約３５ ℃から約６０℃であり、さらに好ましくは約３５℃から約５０℃である。

反応時間は一般的に、約０１１時間から約２４時間であり、好ましくは約０．２ ５時間から約５時間である。

そのようなセルラーゼ組成物を用いた上述した方法で処理した綿含有織物は、完 全な菌類セルラーゼ組成物で同様な方法により処理した同一の締金何織物と比較 して減少した強さ損失を有する。

好ましい実施態様において、上述した方法に使用するために、濃縮物を調製する ことかできる。そのようなｄ：ｉ縮物は、好ましくは水ｆｉ液液中、濃縮した量 の、上述したセルラーゼ組成物、緩衝液および界面活性剤を含む。そのように調 合する場合、その濃縮物は、素早くそして正確にこれらの添加物に必須の濃度を 有するセルラーゼ溶液を調製するために水で容易に希釈できる。好ましくは、そ のような濃縮物は、約０．　１から約２０重量パーセントの上述したセルラーゼ 組成物（タンパク質）：約１０から約５０重量パーセントの緩衝液；約１０から 約５０重量パーセントの界面活性剤；および約０から８０重量パーセントの水か らなる。水性濃縮物が配合される場合、これらの濃縮物は、セルラーゼ溶液中の 成分の必須の濃度に達するように約２から約２００に因子により希釈される。容 易に明確であるように、そのような濃縮物により、セルラーゼ溶液の容易な調合 が行なうことができ、並びに用いられる場所まで都合のよい濃縮の移送ができる 。上述したセルラーゼ組成物は、液体希釈物、粒状、エマルジョン、ゲル、ペー スト等のいずれの状態の濃縮物にも加えられる。そのような形態は当業者によく 知られている。

固体のセルラーゼ濃縮物が用いられる場合、そのセルラーゼ組成物は一般的に粒 状、粉末、凝集体、等である。粒状のものが用いられる場合、その粒状物は好ま しくはセルラーゼ保護剤を含むように調合できる。例えば、事務所明細書番号０ １００５５−０７３として１９９１年１月１７日に出願され、「酵素および酵素 保護剤の両者を含有する粒剤、並びにそのような粒剤を含有する洗浄剤組成物」 と称する米国特許出願第０７１６４２．８６９号を参照のこと。この応用はここ にその全体について参照文献として含まれる。同様に、粒剤は、その粒剤の洗浄 媒質への溶解の速度を減少させる物質を含有するように調合できる。そのような 物質は、事務所明細書番号ＧＣ５−１７１−ＵＳＩとして１９９１年１月１７日 に出願され、「粒状組成物」と称する米国特許出願第０７／８４２．５９Ｂ号に 開示されており、その応用はここにその全体について含まれる。

ここに記載されたセルラーゼ組成物は、予備洗浄においても用いられ、そして液 体またはスプレーいずれかのブリソークとして用いられると考えられる。さらに 、ここに記載したセルラーゼ組成物はまた、高められた色彩と織物の外観に適し た１つの組成物として家庭で使用できると考えられる。例えば、米国特許第４． １３８．８８２号を参照のこと。

これはここにその全体について参照文献として含まれる。

以下の実施例は本発明を説明するために提示されたものであり、その視野を限定 するように解釈されるべきではない。

実施例 実施例１−１２および２２−３０は、１つ以上のセルラ−ゼ組成物を産生できな いように、または特定のセルラーゼ組成物を過剰産生ずるように、遺伝学的に設 計したＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉの産生を説明する。

実施例Ｉ Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉのｐｙｒ４誘導体の選択 ｐｙｒ４遺伝子は、ウリジンの生合成に必要とされる酵素である、オロチジン− ５′−モノリン酸塩デカルボキシラーゼをコードする。毒性阻害因子５−フルオ ロオロチン酸（ＦＯＡ）が、野生型細胞によりウリジン中に含まれ、それゆえ細 胞を毒する。しかしながら、ｐｙｒ４遺伝子中に検出される細胞はこの阻害因子 に対する抵抗を有するが、成長のためにウリジンを必要とする。それゆえ、ＦＯ Ａを用いてｐｙｒ４Ｎ導体菌株を選択することか可能である。

実際、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ菌株ＲＬ−Ｐ３７の芽胞（シール一二−ス、Ｇ、および モノテンコート、Ｂ、Ｓ、　、Ａ、ｐｐｌ、Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ、Ｂｉｏｔｅｃ ｈｎｏｌ、２０、ｐ、　４６−５３　（１９８４）　）を、２ｍｇ／ｍｌのウリ ジンおよび１．２ｍｇ／ｍｌのＦＯＡを含有する固体化した媒質の表面上に広げ た。３または４日以内に、自然なＦＯＡ抵抗群体群体れ、その後に、成長のため にウリジンを必要とするそれらのＦＯＡ抵抗誘導体を同定することかできる。特 異的に欠損ｐｙｒ４遺伝子を有したそれらの誘導体を同定するために、プロトプ ラストを産生じ、野生型ｐｙｒ４遺伝子を含有するプラスミドで転換した（実施 例３および４り照）。転換に続いて、プロトプラストを、ウリジンを欠いた媒質 上に展開した。転換解体の続いての成長は、プラスミドボーン（ｂｏｒｎｅ）ｐ ｙｒ４遺伝子による欠損ｐｙｒ４遺伝子の補完を示した。このようにして、菌株 ＧＣ６９を、菌株ＲＬ−Ｐ３７のｐｙｒ４誘導体であると同定した。

実施例２ ＣＢＨＩ欠失ベクターの調製 ＣＢＨＩタンパク質をコードするｃｂｈｌ遺伝子を、既知のプローブ合成方法を 用いた、この遺伝子に関して公表された配列を元にして設計したオリゴヌクレオ チドプローブでの雄型形成により、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ菌株ＲＬ−Ｐ３７のゲノム ＤＮＡからクローンした（シューメーカーら、１９８３ｂ　）　、　ｃｂｈｌ遺 伝子は、６．５ｋｂ　Ｐｓｔｌ断片上に存在し、当業者に知られた技術を用いて このベクターのＫａｎ’遺伝子を置換することによりＰｔ５Ｉ切断ｐＵＣ４Ｋ（ ＮＪ、ビス力タウエイ、ファーマシア社から購入）中に挿入され、この技術はマ ニアチスらにより述べられており（１９８９）　、ここに参照文献として含む。

次いで産生じたプラスミド、ｐＵＣ４に：　：　ｃｂｈｌをＨｉｎｄｌｌｆで切 断し、約６ｋｂのより大きな断片を単離して、再結さつしてｐＵＣ４に：　：　 ｃｂｈｌΔＨ／Ｈを与えた（図１参照）。この方法は、完全なｃｂｈｌ暗号配列 および約１゜２ｋｂ上流と１．５ｋｂ下流下流側列配除去する。元来のＰｓｔｌ 断片のいずれかの末端からの、おおよそｌｋｂの側腹ＤＮＡが残る。

Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ４遺伝子を、マニアチスらの方法に従って、ｐＵｃ１ ８中のゲノムＤＮＡの６．５ｋｂＨｉｎｄｌ　Ｉ　Ｉ断片としてクローンし、ｐ Ｔｐｙｒ２（スミスら、１９！１１）を形成した。プラスミドｐＵＣ４に：　： ｃｂｈｌΔＨ／ＨをＨｉｎｄＩＩＩで切断し、その末端を子牛腸アルカリ性ホス ファターゼで脱リンした。この末端脱リンＤＮＡを、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ ４遺伝子を含有する６、５ｋｂ　Ｈｉｎｄｌｌｌ断片と連結し、ｐΔＣＢＨＩｐ ｙｒ４を得た。図１はこのプラスミドの構成を説明している。

実施例３ プロトプラストの単離 ５００ｍ１のフラスコ中の１００ｍ１のＹＥＧ　（０，５％の酵母抽出物、２％ のグルコース）を約５Ｘ１０’のＴ。

ｒｅｅｓｅｉ　ＧＣ６９芽胞Ｃｐｙｒ４誘導体菌株）で接種することにより菌糸 体を得た。次いでそのフラスコを振動させながら３７℃で約１６時間、培養した 。２，７５０ｘｇでの遠心分離により菌糸体を収穫した。収穫した菌糸体をさら に、１．２Ｍソルビット溶液中で洗浄し、５ｍｇ／ｍＩのノボザイム２３４溶ｉ ＆（Ｃｔ、ダンバリー、ノボバイオラボから得られる、１．３−アルファーグル カナーゼ、１．３−ベーターグルカナーゼ、ラミナリナーゼ、キシラーゼ、キチ ナーゼおよびプロテアーゼを含有する多成分酵素系の商標である）；５ｍｇ／ｍ ｌのＭｇＳＯ４・７Ｈ２０；　０．５ｍｇ／ｍ１の牛血清アルブミン；１．２Ｍ ソルビットを含有する４０ｍ１の溶液中に再懸濁せしめた。

プロトプラストを、ミラクロス（ＣＡ、ラジョラ、カルビオケム社）を通じての 濾過により細胞デブリから除去し、２．０００ｇでの遠心分離により集積した。

そのプロトプラストを、１．２Ｍのソルビット中で３回洗浄して、１゜２Ｍのソ ルビット、５０ｍＭのＣａＣ１ｚ中で１回洗浄し、遠心分離し、１．２Ｍソルビ ット、５０　ｍ　ＭのＣａＣｌ□のｍ１当たり約２Ｘ１０８プロトプラストの密 度で再懸濁せしめた。

実施例４ 菌類プロトプラストのｐΔＣＢＨＩｐｙｒ４による転換実施例３において調製し た２００μｌのプロトプラスト懸濁液を、２０ｕ　ＩのＴＥ緩衝液（１０ｍｌ　 トリス、ｐＨ７，４，１ｍＭ　ＥＤＴＡ）中のＥｃｏＲＩ切断ｐΔＣＢＨＩｐＹ ｒ４（実施例２において調製）、および２５％ＰＥＧ　４０００．０．６ＭＫＣ ｌおよび５０ｍＭのＣａｃ１２を含有する５０μｌのポリエチレングリコール（ ＰＥＧ）溶液に加えた。この混合物を２０分間、氷上で培養した。この培養期間 の後に、そこに上述のように同定した２、０ｍｌのＰＥＧを加え、その溶液をさ らに混合し、室温で５分間培養した。この第２の培養後、〕、２Ｍのソルビット および５０ｍＭのＣａＣｌ２を含をする４、０ｍｌの溶液をそれに加え、この溶 液をさらに混合した。次いでそのプロトプラスト溶液を、追加の１０６のグルコ ース、１．２Ｍのソルビットおよび１％のアガロースを含有するボゲルス媒質Ｎ （１リツトル当たり、３グラムのクエン酸ナトリウム、５グラムのＫＨ２ＰＯ４ ，２グラムのＮＨ４Ｎ０．．０．２グラムのＭｇ５Ｏ，・７Ｈ２０，０，１グラ ムのＣａＣ１２・：２Ｈ２０，５％ｇのα−ビオチン、５ｍｇのクエン酸、５ｍ ｇのＺｎＳＯ４・７Ｈ２０，１ｍｇのＦｅ　（ＮＨ４）２　・６Ｈｚ　Ｏｌｏ、 ２５ｍｇのＣｕ５Ｏ１・５Ｈ２０，５０μｇのＭ　ｎ　Ｓ　Ｏ４・４　Ｈ２０） の溶解アリコートに直ちに加えた。次いでプロトプラスト／媒質混合物を、上述 した同一のボゲル媒質を含有する固体媒質上に注いた。その媒質中にはウリジン は全く存在せず、それゆえ、転換群体のみが、ｐΔＣＢＨＩｐｙｒ４中に挿入さ れた野生型ｐｙｒ４遺伝子による菌株ＧＣ６９のｐｙｒ４突然変異の補完の結果 として成長することができた。これらの解体を続いて転移せしめ、添加剤として １％のグルコースを含有する固体ボゲル媒ｉＮ上に精製し、安定な形質転換体を さらなる分析のために選択した。

この段階において、安定な形質転換体を、そのより速い成長速度およびウリジン を欠いた固体培養媒質上のぎざぎざというよりもむしろ滑らかな輪郭を有する円 形の解体の形成により不安定な形質転換体とは区別した。ある場合においては、 固体の非選択性媒質（すなわち、ウリジンを含有する）上に形質転換体を成長さ せ、この媒質から芽胞を収穫Ｉ７、続いて発芽してウリジンを欠いた選択性媒質 上に成長するこれらの芽胞の百分率をめることにより、さらなる安定性の試験を 行なった。

実施例５ 形質転換体の分析 形質転換体が、１％のグルコースを含有する液体水ゲル媒質Ｎ中で成長せしめら れた後に、ＤＮＡを、実施例４で得られた形質転換体から単離した。これらの形 質転換体ＤＮＡ試料をさらにＰｓｔＩ制限酵素で切断し、アガロースゲル電気泳 動を行なった。次いでそのゲルを、ニドラン膜フイルタ上にプロットし、３２ｐ 標記ｐΔＣＢＨＩｐｙｒ４プローブで雑種形成した。プローブを選択して、６． ５ｋｂ　ＰｓｔＩ断片としての天然ｃｂｈｌ遺伝子、転換ＤＮＡ断片から誘導さ れたいかなるＤＮＡ配列および天然ｐｙｒ４遺伝子を同定した。

雑種形成からの放射線活性帯は、オートラジオグラフィーにより顕像化された。

そのオートラジオグラフィーを図３に示す。上述したように５つの試料Ａ、Ｂ、 Ｃ，ＤおよびＥを試験した。Ｅは未転換菌株ＧＣ６９であり、本分析において対 照として用いた。レーンＡからＤは、上述した方法により得られた彩貿転換化体 を示す。オートラジオグラフィーの横倒の数は、分子量マーカーのサイズを示す 。

このオートラジオグラフィーから分かるように、レーンＤは６．５ｋｂ　ＣＢＨ Ｉ帯を含まず、この遺伝子が全体的に、ｃｂｈｌ遺伝子でのＤＮＡ断片の組込み により形質転換体中に欠失されたことを示す。ｃｂｈｌ欠失菌株はＰ３７ＰΔＣ ＢＨＩと呼ばれる。図２は、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ染色体の１つのｃｂｈｌ座でのｐ ΔＣＢＨＩ　ｐｙ　ｒ４からのより大きなＥｃｏＲＩ断片の二重交さの発生を通 じての組込みによるＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ｃｂｈｌ遺伝子の欠失の概略を示す。分 析した他の形質転換体は、未転換対照菌株と同一であると思われる。

実施例６ ｐＩｎｔｃＢＨＩを有する形質転換体の分析使用したプローブが３２ｐ標識ｐｌ ｎｔｃＢＨＩプローブに代わったことを除いては、実施例５と同一の方法を本実 施例において用いた。このプローブは、ｐＵＣ４Ｋ　：　：　ｃｂｈｌΔＨ／Ｈ 中で欠失された領域内のｃｂｈｌ座からの２ｋｂ　ＢｇｌＩＩ断片を含有するｐ ＵＣ−型プラスミドである。この実施例において、対照、未転換菌株ＧＣ６９で ある試料Ａ、形質転換体Ｐ３７ＰΔＣＢＨＩを含む２つの試料を分析した。図４ から分かるように、６．５ｋｂでの帯により示されるように、試料Ａはｃｂｈｌ 遺伝子を含有した。しかしながら、形質転換体、試料Ｂはこの６．５ｋｂでの帯 を含有せず、それゆえｃｂｈｌＪ伝子を含有せず、ｐＵＣプラスミドから誘導さ れたいかなる配列をも含有しない。

実施例７ 菌株Ｐ３７ＰΔＣＢＨＩによるタンパク質分泌産生したＰ３７ＰΔＣＢＨＩ菌株 からの芽胞を、１％のグルコース、０，１４％の（ＮＨ４）２　ＳＯ４，０，２ ％のＫＨ２ＰＯ４，０，０３％のＭｇ　Ｓ　０４．０．　０３％の尿素、０．７ ５％のバクトドリブトン（ｂａｃｔｏｔｒｙｐｔｏｎｅ）、０．０５％のツイー ン（Ｔｗｅｅｎ）８０．０．００００１６％のＣｕ　Ｓ　Ｏ４”　５　Ｈ２０， ０，００１％のＦｅＳＯ４・７Ｈ２０，０，０００１２８％のＺｎＳＯ４−７Ｈ ２０，０，０００００５４％のＮａ２Ｍｏｏ４−２Ｈ２０，および０．００００ ００７９６のＭｎＣ１・４Ｈ２０を含有する５０ｍ１０′）Ｔｒ　ｉ　ｃｈｏｄ ｅ　ｒｍａ基礎基礎媒質液種した。その媒質を振動させながら、２５０ｍ１のフ ラスコ中、３７℃で約４８時間、培養した。産生じた菌糸体わミラクロス（カル バイオケム社）を通過させた濾過により集積し、１７ｍＭのリン酸カリウムで２ または３回洗浄した。その菌糸体は最終的に、１ｍＭのラジオロース（ｓｏｐｈ ｏｒｏｓｅ）を有する１７ｍＭのリン酸カリウム中で懸濁せしめ、さらに振動さ せながら３０℃で２４時間、培養した。次いで上澄みをこれらの培養物から集積 し、菌糸体を捨てた。培養上澄みの試料を、ファーマシアファストゲルシステム および製造者の指示に従ったｐＨ３−９プレキヤストゲルを用いた等電点電気泳 動により分析した。そのゲルは銀染料で染色し、タンパク質帯を顕像化した。ｃ ｂｈｌタンパク質に対応する帯は、図５に示すように、菌株Ｐ３７ＰΔＣＢＨＩ から誘導した試料には存在しなかった。この等電点電気泳動ゲルは、Ｔ、ｒｅｅ ｓｅｉの異なる上澄み培養中の様々なタンパク質を示す。レーンＡは部分的に精 製したＣＢＨＩてあり、レーンＢは未転換Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ培養からの上澄みて あり、レーンＣは本発明の方法により産生された菌株Ｐ３７ＰΔＣＢＨＩからの 上澄みである。様々なセルラーゼ成分の位置を、ＣＢＨＩＳＣＢＨＩ　Ｉ、ＥＧ Ｉ、ＥＧＩＩ、およびＥＧＩｒＩで標識する。ＣＢＨＩは全細胞外タンパク質の ５０％を構成するので、ＣＢＨＩは主な分泌タンパク質であり、それゆえゲル上 で最も暗い帯となる。この等電点電気泳動ゲルは明確に、Ｐ３７ＰΔＣＢＨＩ菌 株中のＣＢＨＩタンパク質の欠失を示す。

実施例８ ｐｐΔＣＢＨＩ　Ｉの調製 ＣＢＨＩＩタンパク質をコードするＴ、ｒｅｅｓｅｉのｃｂｈ２遺伝子は、図６ Ａの図表に示すゲノムＤＮＡの４゜ｌｋｂ　ＥｃｏＲＩ断片としてクローンしで ある（チェノら、１９８７、バイオテクノロジー５　：　２７４−２７８）。こ の４．１ｋｂ断片をｐＵＣ４ＸＬのＥｃｏＲ１部位の間に挿入した。後者のプラ スミドは、ここに示す順番：Ｅｃ。

Ｒ１，ＢａｍＨＩ、Ｓａｃ　Ｉ、Ｓｍａ　Ｉ、ＨｉｎｄｌＩＩ。

ＸｈｏＩ、ＢｇＩｌｌ、Ｃ１ａｌ、Ｂｇｌｌｌ、Ｘｈｏｌ。

Ｈｉｎｄ　Ｉ　Ｉ　Ｉ、Ｓｍａ　ＩＳ　Ｓａｃ　ＩＳ　ＢａｍＨＩＳ　ＥｃｏＲ Ｉ、で配列した制限エンドグルカナーゼ部位の相称的な模様を有する多重クロー ニング部位を含何するｐＵＣ誘導体（ジネンカーインターナショナル社のＲ，Ｍ 、ベーカにより構成された）である。従来技術において知られている方法を用い て、プラスミド、ｐＰΔＣＢＨＩＩ（図６Ｂ）を構成し、ここで（ＣＢＨＩＩ翻 訳開始部位の７４　ｂ　ｐ　３′での）Ｂｉｎｄｌ　Ｉ　１部位と（ＣＢＨＩＩ の最後のコドンの２６５ｂｌ）３’での）ＣｌａＩ部位との間のこの遺伝子の１ ．７ｋｂ中央領域を除去し、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ４遺伝子を含有する１、 ６ｋｂ　Ｈｉｎｄｌｌｌ　−Ｃ１ａｌ　ＤＮＡと置換した。

Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ４遺伝子を１．６ｋｂＮｈｅ　ｌ−５ｐｈ　Ｉ断片上 のｐＴｐｙｒ２　（実施例２参照）から切除し、ｐＵｃ２１９の５ｐｈＩとＸｂ ａ１部位との間に挿入しく実施例２５参照）、ｐ２１９Ｍを産生じた（スミスら 、１９９１、Ｃｕｒｒ、Ｇｅｎｅｔ　１９ｐ、２７−３３）。次いでｐｙｒ４遺 伝子を、一方の末端にＤＮＡの７ｂｐと、他方の末端にＤＮＡの６ｂｐを存し、 ｐＵｃ２１９多重クローニング部位から誘導されたＨｉｎｄｌｌＩ−Ｃｌａｌ断 片として除去し、ｃｂｈ２遺伝子のＨｉ　ｎｄ　ＩＩＩおよびＣｌａｌ部位中に 挿入し、プラスミドｐＰΔＣＢ）（ＩＩを形成した（図６Ｂ膠照）。

このプラスミドのＥｃｏＲｌでの切断は、一方の末端でのｃｂｈ２座からの０１ ７ｋｂの側端ＤＮＡ、他方の末端でのｃｂｈ２座からの１，７ｋｂの側端ＤＮＡ および真中のＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ４遺伝子を有する断片を雌牛ずる。

実施例９ Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ菌株ＧＣ６９中のｃｂｈ２遺伝子の欠失実施例３および４に略 述した方法に従って、菌株のプロトプラストを産生し、ＥｃｏＲＩ切断ｐＰΔＣ ＢＨＩＩで転換する。形質転換体からのＤＮＡを、ＥｃｏＲＩおよびＡｓｐ７１ ８で切断し、アガロースゲル電気泳動を行なう。

ゲルからのＤＮＡを膜フィルタにプロットし、実施例１１の方法に従って３２ｐ 標識ｐＰΔＣＢＨＩＩて雑種形成する。

正確にｃｂｈ２座で組み込まれたｐＰΔＣＢＨＩＩからのＥｃｏＲＩ断片の単一 のコピーを有する形質転換体を同定する。その形質転換体はまた、実施例７にお けるような振動フラスコ中で成長せしめられ、培養上澄み中のタンｌくり質は等 電点電気泳動により試験される。このようにして、ＣＢＨＩＩタンパク質を産生 しないＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ＧＣ６９形質転換体が産生される。

実施例１０ Ｐ３７ＰΔＣＢＨＩのｐｙｒ４Ｘ導体の産生ｃｂｈｌ遺伝子に関して欠失された 形質転換体の芽胞（Ｐ３７ＰＡＣＢＨＩ）を、ＦＯＡ含有含有媒質上聞展開シタ いて、実施例１の方法を用いてこの形質転換体のｐｙｒ４誘導体を得た。このｐ ｙｒ４菌株をＰ３７ＰΔＣＢＨＩＰｙｒ２５と称した。

実施ｆｌＪ１１ ｃｂｈｌに関して事前に欠失した菌株中のｃｂｈ２遺伝子の欠失 菌株Ｐ３７ＰΔＣＢＨＩＰｙｒ２６を産生じ、実施例３および４において概略を 示した方法に従ってＥｃｏＴＩ切断ｐＰΔＣＢＨＩＩで転換した。

精製した安定形質転換体を実施例７のように振動フラスコ中で培養し、その培養 上澄み中のタンパク質を等電点電気泳動により試験した。どのようなＣＢＨＩＩ タンパク質も産生じなかった１つの形質転換体Ｐ３７ＰΔΔＣＢＨ６７と称する ）を同定した。図５のレーンＤは、本発明の方法に従って産生したｃｂｈｌおよ びｃｂｈ２遺伝子の両方を欠失した形質転換体からの上澄みを示す。

ＤＮＡを、ＥｃｏＲＩとＡｓｐ７１８で切断した菌株Ｐ３７ＰΔΔＣＢＨ６７か ら抽出し、アガロースゲル電気泳動を行なった。このゲルからのＤＮＡを膜フィ ルターにプロットし、３２ｐ標識ｐＰΔＣＢＨＩＩで雑種形成した（図７）。図 ７のレーンＡは、未転換Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ菌株からのＤＮＡに関して観察された 雑種形成パターンを示す。

野生型ｃｂｈ２遺伝子を含有する４、ｌｋｂ　ＥｃｏＲＩ断片が観察された。レ ーンＢは、菌株Ｐ３７ＰΔΔＣＢＨ６７に関して観察された雑種形成パターンを 示す。１つの４、ｌｋｂ帯が除去され、約０．９および３．１ｋｂの２つの帯に より置換された。これは、ｐＰΔＣＢＨＩＩからのＥｃｏＲＩ断片の１つのコピ ーが正確にｃｂｈ２座で組み込まれた場合に予期されるパターンである。

同一のＤＮＡ試料をまたＥｃｏＲＩで切断し、サザン分析を上述したように行な った。この実施例において、プローブは”Ｐ＠３ｐＩｎｔＣＢＨＩＩ’？：あツ タ。コノフラスミドは、プラスミドｐＰΔＣＢＨＩＩ中で欠失されたｃｂｈ２遺 伝子のその断片内からのｃｂｈ２遺伝子暗号配列の一部を含む。どの雑種形成も 菌株Ｐ３７ＰΔΔＣＢＨ６７からのＤＮＡに関して見られず、このことはｃｂｈ ２遺伝子が欠失されたこと、およびｐＵＣプラスミドから誘導されたどの配列も この菌株中に存在しなかったことを示す。

実施例１２ ｐＥＧＩｐｙｒ４の構成 ＥＧＩをコードするＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ｅｑｌｌ遺伝子は、公表された配列に従 って合成されたオリゴヌクレオチドでの雑種形成による菌株ＲＬ−Ｐ３７からの ゲノムＤＮＡの４．２ｋｂ　ＨｉｎｄＩＩＩ断片としてクローンされた（ペンチ ラら、１９８６、遺伝子４５　：　２５３−２６３　、パンアースデルら、１９ ８７、バイオ／テクノロジー５　：　６Ｏ−６４）、３．６ｋｂ　ＨｉｎｄｌＩ Ｉ−ＢａｍＨＩ断片をこのクローンから取り出して、ＨｉｎｄｌＩＩで切断した ｐＵｃ２１８　（ｐＵｃ２１９と同一であるが、反対の配向において多重クロー ニング部位を育する、実施例２５参照）およびｐＴｐｙｒ２から得たＴ、ｒｅｅ ｓｅｉ　ｐｙｒ４遺伝子（実施例２膠照）を含有する１、６ｋｂ　ＨｉｎｄＩＩ Ｉ−ＢａｍＨＩ断片と連結し、プラスミドｐＥＧＩｐｙｒ４を得た（図８）　ｏ 　Ｉ）　ＥＧ　Ｉ　ｐ　ｙ　ｒ４のＨｉｎｄｌｒＩでの切断は、Ｔ、ｒｅｅｓｅ ｉゲノムＤＮＡ（ｅｇｌｌおよびｐｙｒ４遺伝子）のみを含有し、２つの遺伝子 の間の２４ｂｐ配列合成りＮＡおよび一方の末端での６ｂｐ配列合成りＮＡを除 ＜ＤＮＡの断片を雌牛ずる（図８）。

実施例１３ サイトラーゼ１２３セルラーゼのセルラーゼ成分への精製サイトラーゼ１２３セ ルラーゼを以下のように分画した。

このセルラーゼ系のセルラーゼ成分の通常の分配は以下のとおりである： ＣＢＨＩ　４５−５５重量パーセント ＣＢＨＩＩ　１３−１５重量パーセントＥＧ　Ｉ　１１−１３重量パーセント ＥＧ　ＩＩ　８−１０重量パーセント ＥＧ　ＩＩＩ　１−４　重量パーセントＢＧ　０．５−１重量パーセント その分画は以下の樹脂を含有するカラムを用いて行なった：シグマケミカル社（ ＭＯ，セントルイス）からのセファデックスＧ−２５ゲル濾過樹脂、ＩＢＦバイ オテクニクス（ＭＤ、サバジ）からのＳＰトリサクリルＭ陽イオン交換樹脂およ びＱＡ）リサクリルＭ陰イオン交換樹脂。ｐＨ６，８の１０ｍＭリン酸ナトリウ ム緩衝液とセファデックスＧ−２５ゲル濾過樹脂で満たした３リツトルのカラム を用いてサイトラーゼ１２３セルラーゼ、０．５ｇを脱塩した。次いで脱塩溶液 をＱＡＩ−リサクリルＭ陰イオン交換樹脂の２０ｍ１のカラムに装填した。この カラムに結合した分画はＣＢＨＩおよびＥＧ　Ｉを含有した。これらの成分を、 Ｏから約５００ｍＭの塩化ナトリウムを含有する水性勾配を用いて勾配溶出によ り分離した。このカラムに結合しなかった分画はＣＢＨＩＩおよびＥＧＩＩを含 有した。これらの分画を、ｐＨ３，３の１０ｍＭのクエン酸ナトリウムで均衡化 したセファデックスＧ−２５ゲル濾過樹脂のカラムを用いて脱塩した。次いでこ の溶液、２００ｍ１を、ＳＰトリサクリルＭ陽イオン交換樹脂の２０ｍ１のカラ ムに装填した。ＣＢＨＩＩおよびＥＧＩＩを、０から約２００　ｍ　Ｍの塩化ナ トリウムを含有する水性勾配を用いて別々に溶出した。

上述した実施例１３の方法と類似した方法に従って、それらの成分中に分離でき る他のセルラーゼ系は、セルキャスト（デンマーク、コペンハーゲン、ノボイン ダストリーから得られる）、ラビダーゼ（オランダ、デルフト、Ｎ。

■１、ギストブロケイドから得られる）、およびＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｋｏ ｎｉｎｇｉｉ、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｕｍｓｐ、等から誘導したセルラーゼ系を含む 。

実施例１４ サイトラーゼ１２３セルラーゼからのＥＧ　ＩＩＩの精製上述した実施例１３は 、サイトラーゼ１２３セルラーゼからのいくつかの成分の単離を示した。しかし ながら、ＥＧ　ＩＩＩはサイトラーゼ１２３セルラーゼ中に非常に少量した存在 しないので、この成分を単離するのに以下の方法が用いられた。

Ａ、’ＥＧ　ＩＩＩセルラーゼ酵素の大規模な抽出１００リツトルの細胞不含有 セルラーゼ濾液を約３０℃まで加熱した。加熱した物質は、約り％重量／容積Ｐ ＥＧ３０００　（約５ｏｏｏの分子量、ポリエチレングリコール）および約１０ 亢 された。その混合物は２相液体混合物を形成した。この相を、５Ａ−１ディスク スタック遠心分離機を用いて分離した。その相を、銀染色等電点電気泳動ゲルを 用いて分析した。分離によりＥＧ　ＩＩＩおよびキシラナーゼを得た。

取り出した組成物は、約２０から５０重量パーセントのＥＧ　ＩＩＩを含有した 。

上述した方法に関して、約８０００未満の分子量を有するポリエチレングリコー ルの使用は分離に不適切であり、一方約８０００より大きい分子量を有するポリ エチレングリコールの使用は取り出した組成物中の所望の酵素を排除することと なる、、ＦｉＬ酸ナトリウムの量に関して、１０％重ｊｌ／容積より大きな硫酸 ナトリウムの水準は沈殿問題を引き起こし、一方１０％重量／容積未満の硫酸ナ トリウムの水準では不十分な分離または１つの相中に残留する溶液となった。

Ｂ０分画によるＥＧ　ＩＩＩの精製 ＥＧ　ＩＩＩの精製は、野生型Ｔｒｉｃｈｉｄｅｒｍａｒｅｅｓｅｉにより産生 される完全な菌類セルラーゼ組成物（ＣＡ、南すンフランシスコ、ジネンカーイ ンターナショナルから市販されている、サイトラーセ１２３でルラーゼ）からの 分画により行なわれる。つまり、分画は、以下の樹脂：シグマケミカル社（Ｍｏ 、マントルイス）から得られるセファデックスＧ−２５ゲル濾過樹脂、ＩＢＦハ イオテクニクス（、Ｍ　Ｄ　、サバジ）からのＳＰトリサクリルＭ陽イオン交換 樹脂およびＱＡトリサクリルＮ１陰イオン交換樹脂を含有するカラムを用いて行 なわれる。ｐＨ６，８の１０ｍＭリン酸ナトリウム瑳衝液とセフアゾ７クスＧ− ２５ゲル濾過樹脂で満たした３リンドルのカラムを用いてサイトラーゼ１２３セ ルラーゼ、０．５ｇを脱塩した。次いで脱塩溶液をＱＡトリサクリルＭ陰イオン 交換樹脂の２０ｍ１のカラムに装填した。このカラムに結合した分画はＣＢＨＩ およびＥＧ　Ｉを含有した。このカラムに結合しない分画は、ＣＢＨＩＩ、ＥＧ ＩＩおよびＥＧ　Ｉｌｌを含む。これらの分画を、ｐＨ４，５の１０ｍ〜１のク エン酸ナトリウムで均衡化したセファデックスＧ−２５ゲル濾過樹脂のカラムを 用いて脱塩した。次いでこの溶液、２００ｍ１を、ＳＰトリサクリルＭ陽イオン 交換樹脂の２０ｍ１のカラムに装填した。ＥＧ　ＩＩＩを、２００ｍＭの塩化ナ トリウム１００ｍ１で溶出した。

ＥＧ　ＩＩＩの単離能率を高めるために、１つ以上のＥＧ　Ｉ、ＥＧ　ＩＩ、Ｃ ＢＥ（Ｔおよび／またはＣＢＨＩＩを産生できないように遺伝学的に修飾された Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉを使用することが望ましい。

１つ以上のそのような成分の不在は、ＥＧＩＩＩのより能率的な単離を必ず導く 。

同様に、上述したＥＧＩＩＩ組成物をさらに精製して、実質的に純粋なＥＧ　Ｉ ＩＩ組成物、すなわち、タンパク質の約８０重量パーセントより多いＥＧ　ＩＩ Ｉを含有する組成物を提供することが望ましい。例えば、そのような実質的に純 粋なＥＧ　ＩＩＩタンパク質は、方法Ｂの方法Ａから得られた物質を用いること により得られる。さらにＥＧ　ＩＩＩを精製する１つの特定の方法は、二の実施 例１４のパートｂ）で得られたＥＧ　ＩＩＩ試料のさらなる分画によるものであ る。さらなる分画は、モノ−５−ＨＲ５１５カラム（ＮＪ、ビス力タウエイ、フ ァーマシアＬＫＢバイオテクノロジーから得られる）を用いたＦＰＬＣシステム により行なわれる。ＦＰＬＣシステムは、液体クロマトグラフィーコントローラ 、２つのポンプ、二重通路モニター、分画集積装置およびチャートレコーダー（ 全てＮＪ、ビス力タウエイ、ファーマシアＬＫＢバイオテクノロジーから得られ る）からなる。分画は、実施例１４のパートｂ）で調製したＥＧ　ＩＩＩ試料、 ５ｍｌを、以前にｐＩ（４の１０ｍＭクエン酸ナトリウムで均衡化した２０ｍ１ セファデックスＧ−２５カラムで脱塩することにより行なわれた。次いでカラム を、１ｍｌの分画に集積した試料Ｉ関して、０．５ｍｌ／分の速度でのＮａＣ１ の０−２００ｍＭ水性勾配により溶出させた。ＥＧ　ＩＩＩは、分画１０および １１において取り出され、ＳＤＳゲル電気泳動により９０％より純粋であると測 定された。この純粋なＥＧ　ＩＩＩは、既知の技術によるＮ末端アミノ酸配列の 測定に適している。

上述した実施例１３において精製した実質的に純粋なＥＧ　ＩＩＩ並びにＥＧ　 ＩおよびＥＧＩＩ成分は、本発明の方法に単一または混合物で用いられる。こら のＥＣ成分は以下の特性を有する： ＦｗＩＷ　ｐｒ　最適ｐＨＩ ＥＧ　Ｉ　〜４７−４９ｋＤ　４．７　〜５ＥＧＩＩ　〜３５ｋＤ５．５　〜５ ＥＧＩＩＩ　〜２５−２１１ｋ　Ｄ　７．４　〜５．５−６．０１、以下の実施 例１５によるＲＢＢ−ＣＭＣ活性により計１定された最適ｐＨ０ 本発明の実施にこれらの混合物を使用すると、単一の成分と比較して、柔らかさ 、感触、外観等を改善する相乗応答が得られる。一方で、本発明の実施に単一の 成分を使用すると、より安定であるか、またはｐＨ範囲に亘り広い活性のスペク トルを有することとなる。例えば、以下の実施例１５は、ＥＧ　ＩＩＩがアルカ リ性条件下のＲＢＢ−ＣＭＣに対して著しい活性を有することを示す。

実施例１５ ｐＨ範囲に亘るセルラーゼ組成物の活性２つの異なるセルラーゼ組成物のｐＨプ ロフィールを測定するために以下の方法を用いた。第１のセルラーゼ組成物は、 ＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩ酸成分産生ずる二とができないように上述した方法と 類似の方法で遺伝学的に修飾したＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉからｊ ＃製したＣＢＨＩおよびＩＩ欠失セルラーゼ組成物であった。

このセルラーゼ組成物が、一般的にＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから 誘導されたセルラーゼ組成物、約５８から７０パーセントからなるＣＢＨＩおよ びＣＢＨＩＩを含有しない限り、このセルラーゼ組成物は、必ず実質的にＣＢＨ Ｉ型およびＣＢＨＩＩ型セルラーゼ成分を含まず、したがってＥＣ成分、すなわ ち、ＥＧＩＳＥＧ　ＩＩ、ＥＧ　ＩＩＩ等が豊富である。

第２のセルラーゼ組成物は、実施例１４のパートｂ）と類似の精製方法によりＴ ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから誘導されたセルラーゼ組成物から単離 したＥＧＩＩＩの純粋な分画、約２０から４０％であった。

これらのセルラーゼ組成物の活性を、４０℃でＭｊ定し、その測定は以下の方法 を用いて行なわれた。

最終溶液中に必要な量の酵素を提供するのに十分な濃度で、適切な酵素溶液、５ から２０μｌを加える。ｐＨ４，５，５，５，６，６，５，７，７，５および８ の、０．０５Ｍクエン酸塩／リン酸塩緩衝液中で２重量パーセントのＲＢＢ−Ｃ ＭＣ（オーストラリア、Ｎ、Ｓ、Ｗ、２１５１、ノースロック、６アルトナブレ イス、メガザイムから市販されているレマゾルブリリアントブルーＲ−カルボキ シメメチルセルロース）、２５０μｌを加える。

撹拌し、４０℃で３０分培養する。水浴中で５から１０分間、冷却する。０．３ Ｍの酢酸ナトリウムおよび０．０２Ｍの酢酸亜鉛を含有するメチルセロソルブ、 １０００μｌを加える。撹拌し、５−１０分間、放置する。遠心分離し、上澄み をキュベツト中に注ぐ。各キュベツト中の溶液の５９０ｎｍでの光学濃度（ＯＤ ）を測定する。より高い水準の光学濃度が、より高い水準の酵素活性に対応する 。

この分析の結果を図９に述べるが、これは、ＥＧＩＩＩセルラーゼ組成物と比較 したＣＢＨＩおよびＩＩ欠失セルラーゼ組成物の相対活性を説明している。この 図から、ＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩの欠失したセルラ−ゼ組成物は、ｐＨ５，５ あたりでＲＢＢ−ＣＭＣに対する最適なセルロースを加水分解する活性ををし、 アルカリ性ｐＨ１すなわち、７より上で８のｐＨである程度の活性を有する。

一方で、ＥＧＩＩＩの豊富なセルラーゼ組成物は、ｐＨ５，５−６で最適なセル ロースを加水分解する活性を有し、アルカリ性ｐＨて相当な活性を有する。

上述実施例から、当業者は、セルラーゼ組成物が活性で、好ましくは最適な活性 を有するように、水性布組成物のｐＨを調整し、保持することのみが必要である 。上述したように、そのような調整および保持は、適切な緩衝液の使用を含む。

実施例１６ セルラーゼ組成物のランダロメーター強度損失検定この実施例は、セルラーゼ組 成物の、綿含有織物の強さを減少せしめる能力を試験するものである。Ｔｒｉｃ ｈ。

ｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから誘導されたほとんどのセルラーゼ組成物の活性は ｐＨ５またはそのあたりで最大であり、したがって、強度損失はその検定がこの ｐＨあたりて行なわれるときに最も明確となるので、この実施例は、ｐＨ５で保 持された水性セルラーゼ溶液を用いる。

つまり、この実施例において、分析した第１のセルラーゼ組成物は、野生型のＴ ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから産生された完全菌類セルラーゼ系（Ｃ Ａ、南すンフランシスコ、ジネンカーインターナショナルから市販されているサ イトラーゼ１２３セルラーゼ）であり、ＧＣｏｌｏと同定される。

分析した第２のセルラーゼ組成物は、ＣＢＨＩＩを表現できないように、上述し た１から１２および以下の２２から３０の実施例と類似した方法で遺伝学的に修 飾したＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから調製したＣＢＨＩＩ欠失セル ラーゼ組成物であり、ＣＢＨＩＩｄと同定される。ＣＢＨＩＩがセルラーゼ組成 物の約１５パーセントまでからなる限りは、この成分の欠失は、ＣＢＨＩ、およ び全てのＥＣ成分の豊富な水準となる。

分析した第３のセルラーゼ組成物は、ＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩを表現できない ように、上述した方法と類似した方法で遺伝学的に修飾したＴｒｉｃｈｏｄｅｒ ｍａｒｅｅｓｅｉから調製したＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩ欠失セルラーゼ組成物 であり、ＣＢＨＩ／Ｉ　Ｉ　ｄと同定される。ＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩがこの 改良微生物により産生されない限り、そのセルラーゼは必ず、全てのＣＢＨＩ型 成分、並びにＣＢＨ成分を含まない。

分析した最後のセルラーゼ組成物は、ＣＢＨＩを表現できないように、上述した 方法と類似した方法で遺伝学的に修飾したＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅ ｉから調製したＣＢＨＩ欠失セルラーゼ組成物であり、ＣＢＨ１ｄと同定される 。この改良微生物かＣＢＨＩを産生じない限り、このそのセルラーゼ組成物は必 ず、全てのＣＢＨＩ型成分金成分ない。

ランゾロメーター中で締金釘織物の強度損失の効果について、上述したセルラー ゼ組成物を試験した。その組成物を、等量のＥＣ成分か用いられるように、最初 に標準化した。各セルラーゼ組成物を加えて、ｐＨ５に滴定し、０゜５ｍｌの非 イオン界面活性剤を３釘する２０ｍＭクエン酸塩／リン酸塩緩衝液、４００ｍ１ の溶液を分離した。精製した各溶液を分離ランダロメーターキャニスターに加え た。

これらのキャニスタ−中に、強度損失を促進させるある量の大理石、並びに１６ インチＸ２０インチの綿織物（Ｎ７０８８４６、ミドルセックス、ブラックフォ ード通り２００、テストファブリック社からのスタイル４６７番として得られる ）を加えた。次いでそのキャニスタ−を閉して、４３℃に保持されたランゾロメ ーター中に降ろした。次いでそのキャニスタ−を約１時間に亘り、１分間に少な くとも４０回転（ｒｐｍ）の速度で浴中で回転せしめた。その後、衣類を取り出 してよく濯ぎ、標準乾燥機中で乾燥せしめた。

強度損失結果を最大限度にするために、上述した方法をさらに２回繰り返し、３ 回目の処理後、綿織物を取り出し、強度損失の分析を行なった。強度損失は、イ ンストロンテスターを用いた横方向の引張り強度（ｒＦＴｓＪ　）を測定するこ とによりめ、その結果を、セルラーゼを加えなかったことを除いては同一の溶液 で処理した織物のＦＴＳと比較した。二の分析の結果を、以下の式によりめた強 度損失パーセントとして報吉する： この分析の結果を図１０に示すが、これは、ＣＢＨＩ、すなわち全セルラーゼ（ ＧＣＯＩＯ）およびＣＢＨＩＩ欠失セルラーゼを含有する組成物が最大の強度損 失を有し、一方、ＣＢＨＩを含有しない組成物が、全セルラーゼおよびＣＢＨＩ Ｉ欠失セルラーゼと比較して著しく減少した強度損失を有することを示す。これ らの結果から、セルラーゼ組成物中のＣＢＨＩ型成分の存在は、ＣＢＨＩ型成分 を含有しない類似の組成物と比較して、その組成物に増大した強度損失を与える ことが分かった。

同様に、これらの結果は、ＣＢＨＩＩか強度損失においである役割を果たすこと を示す。

したがって、これらの結果から見て、強度損失抵抗セルラーゼ組成物は、全ての ＣＢＨＩ型セルラーゼ成分および、好ましくは全てのＣＢＨ型セ小セルラーゼ成 分まない組成物である。この点に関して、そのようなセルラーゼ組成物は、図１ ０に示すｐＨ５で観察されたそれらの結果よりもｐＨ≧７でのより低い強度損失 となると考えられる。

綿含有織物の製造中に、その織物は応力が加えられることがあり、そのように応 力が加えられた場合、その織物は破壊され乱れた繊維を含有する。そのような繊 維は、織物にすり切れてさえない外観を与える。しかしながら、本発明の方法は 織物／色の高まりとなることか分かった。これは、応力が加えられる前に織物の 外観を復元する効果を何する、破壊され乱れた繊維の除去により行なわれると思 われている。

以下の実施例１７および１８は、本発明のこの利点を説明する。これらの実施例 には、すり切れた綿のＴシャツにット）並びに新しい綿ニットを用いたことを述 べておく。すり切れた綿含有織物の色褪せた外観は、これまでの期間の破壊され た繊維および目の粗い表面の繊維が織物上に蓄積したことにより生じる。これら の繊維は織物に色褪せて纏れた外観を与え、したがって、これらの繊維の除去は 、その織物に元来の鮮明な色彩を復元するのに必要な必要条件である。加えて、 破壊された表面繊維の新しい綿ニット上の蓄積は、そのような織物にさえない外 観を与える。

したがって、これらの実験は、その両者が織物から表面繊維の除去を含むので、 応力の加えられた綿含有織物の色彩を高めることに必然的に適用できる。

実施例１７ 色彩を高めること 綿含有織物中で色彩を高めるＥＧ酸成分能力を以下の実験において分析した。つ まり、！＆初の実験は、様々なｐＨに亘る綿含有織物から表面繊維を除去する、 野生型Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉにより産生きれた完全セルラーゼ 系（ＣＡ、南すンフランシスコ、ジ不ンカーインターナショナルから市販されて いる、サイトラーゼ１２３）の能力を測定する。ランプロメーター中で表面繊維 を除去する能力に関して、このセルラーゼを試験した。最終組成物中で２５ｐｐ ｍまたは１１００ｐｐいずれかのセルラーゼを提供する適切な量のセルラーゼを 、０．５ｍｇの非イオン界面活性剤を含有する２０ｍＭのクエン酸塩／リン酸塩 緩衝液４００ｍ１の分離溶液に加えた。ｐＨ５、ｐ！（６、ｐＨ７およびｐＨ７ ，５の試料を提供するために、試料を調製し滴定した。次いで作成した各溶液を 、分離ランダロメーターキャニスターに加えた。これらのキャニスタ−中に、繊 維の除去を促進させるある量の大理石、並びにフインチ×５インチの綿織物（Ｎ Ｊ０８８４６、ミドルセノクス、ブランクフォード通り２００、テストファブリ ック社からのスタイル４３９Ｗ番として得られる、１００９６ｍ綿）を加えた。

次いでそのキャニスタ−を閉して、４３℃に保持されたランプロメーター中に降 ろした。次いでキャニスタ−を、１分当たり少なくとも約４０回転（ｒｐｍ）の 速度で１時間、浴中て回転せしめた。その後に衣類を取り出して、よく濯ぎ、標 準乾燥機中で乾燥せしめる。

次いでそのように処理した織物を、パネル試験の評価により繊維除去について分 析した。特に、織物（マークせず）を６つの個々により繊維の水準に関して評価 した。織物を、表面繊維に関して視覚的に評価し、０から６のスケールで評価し た。このスケールは意義のある比較を行なうために６つの標準を有する。その標 準は： 評価　標準“ ０　セルラーゼで処理してない織物 １　８ｐｐｍのセルラーゼで処理したｈ織物２　１６ｐｐｍのセルラーゼで処理 した織物３　２０ｐｐｍのセルラーゼで処理した織物４　４０ｐｐｍのセルラー ゼで処理した織物５　５０ｐｐｍのセルラーゼで処理した織物６　１ｏｏｐｐｍ のセルラーゼで処理した織物ａ）　全ての標準において、織物は、ＮＪＯ８８４ ６、ミドルセックス、ブラックフォード通り２００、テストファブリック社から 得た１００％綿シート標準化試験織物（スタイル４３９Ｗ番）であった。

ｂ）　全ての試料は同一のセルラーゼ組成物で処理した。

セルラーゼ濃縮物は合計のタンパク質であった。ランダロメーター処理条件は、 上述した実施例１６中に示す。

評価する織物に、その標準の最も厳密に適合した評価を与えた。織物の完全な分 析の後に、個々の全てにより各織物に与えられた値を加え、平均値を出した。

この分析の結果を図１１に示す。つまり、図１１は、同一のｐＨにおいて、用量 依存応答が除去された繊維の量として見られることを示す。すなわち、同一のｐ Ｈにおいて、より多いセルラーゼで処理した繊維は、より少ないセルラーゼで処 理した繊維と比較して繊維除去のより高い水準を提供した。さらに、この形の結 果は、より高いｐＨにおいて、繊維の除去はまだ、単により高濃度のセルラーゼ を用いることにより影響を受けることを示す。

第２に実験において、２つの異なるセルラーゼ組成物を繊維を除去する能力につ いて比較した。つまり、分析した第１のセルラーゼは、野生型Ｔｒｉｃｈｏｄｅ ｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉにより産生された完全セルラーゼ系（ＣＡ、南すンフラン シスコ、ジネンカーインターナショナルがら市販されている、サイトラーゼ１２ ３）であり、ＧＣＯＩＯと称される。

分析した第２のセルラーゼ組成物は、その組成をＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩを表 現できないように上述した方法と類似の方法で遺伝学的に修飾したＴｒｉｃｈｏ ｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉにより調製された全てのＣＢＨ型成分（ＣＢＨＩ型成 分を含む）を実質的に含まないセルラーゼ組成物であり、ＣＢＨ型成分　Ｉ欠失 として同定される。

ＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩがセルラーゼ組成物の約７０パーセントまでを構成す る限りは、この成分の欠失は、全てのＥＧ酸成分豊富な水準となる。

これらの組成物を、ランプロメーター中の表面繊維を除去する能力について試験 した。最終組成物中にＥＧ酸成分必要な濃度を提供するのに適切な量のセルラー ゼを、０゜５ｍｇの非イオン界面活性剤を含有する２０ｍＭのクエン酸塩／リン 酸塩緩衝液４００ｍ１の分離溶液に加えた。試料を調製し、ｐＨ５に滴定した。

次いで作成した各溶液を１　ランプロメーターキャニスタ−中に加えた。これら のキャニスタ−中に、繊維の除去を促進させるある量の大理石、並びにフインチ ×５インチの綿織物（ＮＪＯ８８４６、ミドルセックス、ブラックフォード通り ２００．テストファブリック社からのスタイル４３９Ｗ番として得られる、１０ ０％織綿）を加えた。次いでそのキャニスタ−を閉じて、４３℃に保持されたラ ンプロメーター中に降ろした。次いでキャニスタ−を、１９当たり少なくとも約 ４０回転（ｒｐｍ）の速度で１時間、浴中で回転せしめた。その後に衣類を取り 出して、よく濯ぎ、標準乾燥機中で乾燥せしめる。

次いでそのように処理した織物を上述したパネル試験の評価により繊維除去の分 析を行なった。この分析の結果を、推測のＥＧ濃度に基づいてプロットした図１ ２に示す。つまり、図１２は、ＧＣＯＩＯおよびＣＢＨ１／ＩＩ欠失セルラ一ゼ 組成物が、実質的に等しいＥＧ濃度で、実質的に同一の繊維除去結果を与えた。

この形の結果は、繊維除去を提供するのはＥＧ酸成分あることを示唆している。

図１１の結果と関連したこれらの結果は、ＥＧ酸成分表面繊維を除去することを 示す。

実施例１８ テルゴトメーター（Ｔｅｒｇｏｔｏｍｅｔｅｒ）色彩の向上 この実施例はさらに実施例１７に関するものであり、ＣＢＨ型成分か色彩の向上 に必ｔのないことを実証するものであり、本実施例の目的は、ＣＢＨｕ成分の欠 失したセルラーゼ組成物の締金白゛織物に対して色彩を高める能力を調査するこ とにある。

つまり、本実施例に用いたセルラーゼ組成物が、ＣＢＨＩおよびＣＢＨＩＩを表 現することのできないように上述した方法と類似の方法で遺伝学的に修飾したＴ ｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから調製した限りは、この組成物は、実質 的に全てのＣＢ）（型成分ＣＣＢＨＩ型成分を含有する）を含まない。ＣＢＨＩ およびＣＢＨＩＩがセルラーゼ組成物の約７０パーセントまでを構成する限りは 、この成分の欠失は、全てのＥＧ酸成分豊富な水準となる。

検定は、十分な濃度のこのセルラーゼ組成物を５０ｍＭのクエン酸塩／リン酸塩 緩衝液に加え、５００ｐｐｍのセルラーゼを提供することにより行なった。その 溶液をｐＨ５に滴定し、０．１重量パーセントの非イオン界面活性剤（ＮＣ２７ ３６０、トーマスピル、グレスコＮｆｇ、、がら市販されている、グレスコター クＧＬ１００）を含有した。１０インチ×１０インチの色褪せた綿含有織物、並 びに緩んで破壊された表面繊維を有する１０インチＸＩＯインチの新しいニット 織物を、この緩衝液の１リツトルの中に配し、ｌｌ０Ｆ’で３０分間放置し、次 いで３０分間、１９当たり少なくとも１００回転で撹拌した。次いて織物を緩衝 液から取り出し、洗浄し、乾燥せしめた。生じた織物を次いで、処理前のｍ物と 比較した。この分析の結果を以下に示す： 綿含有材料　結果 すり切れた綿Ｔシャツ　利益が見られた新しい綿ニット　利益が見られた テルゴトメーターを用いた結果として生成した破壊された表面繊維を含有する破 壊された表面繊維の除去を含む、「利益が見られた」という言葉は、処理織物が 、非処理織物と比較して色彩の復元（すなわち、色褪せて見えない）を示す。こ れらの結果は、ＣＢＨ型成分の存在か色褪せた綿含有織物の色彩復元をもたらす のに必要ないという実施例１７の結果を実証する。

そのようなセルラーゼ組成物は、織物へのＨ害な強度損失なくして、加工中に生 成される破壊された／緩んだ繊維を除去するので、その組成物の使用は繊維加工 中に利益をもたらすと考えられる。

実施例１つ 柔軟さ 本実施例は、ＣＢＨ型成分の存在が締金１￥織物に改善された柔軟さを与えるの に必要ないことを示す。つまり、この実施例は、その組成物が、ＣＢＨＩおよび ＣＢＨ１■成分を産生ずる二とができないように上述した方法にょり遺伝学的に 製造したＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから誘導したものである、全て のＣＢＨ型成分を含まないセルラーゼ組成物を用いる。

このセルラーゼ組成物を、テリー織りの洗浄布を柔らかくする能力に関して試験 した。つまり、１４インチＸ１５インチの、柔軟化されていない８．５オンスの 綿テリー織り布（ＮＪＯ８８４６、ミドルセンクス、ブラックフォード通り２０ ０、テストファブリ１り社からのスタイル４２ＯＮＳ番として得られる）を、フ インチ×７，５インチの切れ端に切断した。

上述したセルラーゼ組成物を、ランプロメーター中でこれらの切れ端を柔らかく する能力について試験した。つまり、最終セルラーゼ組成物中に５００ｐｐｍ、 ２５０ｐｐｍ、１１００ｐｐ、５０ｐｐｍ、および１１０１）ｌ）のセルラーゼ を提供するように、適切な量のセルラーゼを、０゜０２５重量パーセントの非イ オン界面活性剤（トリトンＸ１１４）を含有する２０ｍＭクエン酸塩／リン酸塩 緩衝液４００ｒｎ］の分離溶液に加えた。加えて、同一の溶液を含有するが、セ ルラーゼの加えられていないブランクを作成した。そのように調製した試料を、 ｐＨ５に滴定した。次いで作成した各溶液を分離ランダロメーターキャニスター に加えた。これらのキャニスタ−中に、柔軟さを促進させる量の大理石、並びに 上述した綿の切れ端を加えた。全ての条件は、キャニスタ−ごとに２つの切れ端 で３重に行なった。次いでそのキャニスタ−を閉じて、３７℃に保持されたラン プロメーター中に降ろした。次いでキャニスタ−を、１分当たり少なくとも約４ ０回転（ｒｐｍ；＋の速度で１時間、浴中で回転せしめた。その後に衣類を取り 出して、よく濯ぎ、標準乾燥機中で乾燥せしめた。

次いでその切れ端を、選択試験における評価により柔軟さについて試験した。つ まり、６人のパネリストに、各自の一連の切れ端を与え、全体の織物の柔軟性の ような柔軟の判定基準に基づいた柔軟さに関してその切れ端を評価するように指 示した。５つの異なる酵素濃度での処理により得られた切れ端とブランクをスク リーンの背後に配し、パネリストは最も柔らかくないものから最も柔らかいもの まで順番に並べるように指示した。他の切れ端に対するその順番に基づいて各切 れ端にスコアを付けた：５が最も柔らかく、０が最も柔らかくない。各パネリス トからのスコアを累積して、平均した。

この平均の結果を図１３に示す。つまり、これらの結果は、濃度が高ければ高い ほど、改善された柔軟さが得られることを示す。この改善された柔軟化は、セル ラーゼ組成物中にＣＢＨＩまたはＩＩのいずれかの存在なくして達成されること が分かる。

実施例２０ 感触および外観 本実施例は、ＣＢＨ型成分の存在が、綿含有織物に改善された感触と外観を与え るのに必須ではないことを説明する。つまり、この実施例は、いかなるＣＢＨ型 成分も産生ずることができない（すなわち、ＣＢＨＩおよびＩＩ酸成分産生ずる ことかできない）ように上述したような方法で遺伝学的に作られたＴｒｉｃｈｏ ｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから誘導されたセルラーゼ組成物を用いる。

このセルラーゼ組成物を、その締金ａ織物の外観を改善する能力について試験し た。つまり、二の実施例の外観面において、適当な大きさの１００％縞シート（ ＮＪＯ８８４６、ミドルセックス、ブラックフォード通り２００、テストファブ リック社からのスタイル４３９Ｗ番として得られる）を用いた。

上述したセルラーゼ組成物を、ランプロメーター中のこれらの試料の外観を改善 する能力について試験した。つまり、最終セルラーゼ溶液中で２５ｐｐｍ、５０ ｐｐｍ、および１１００ｐｐのセルラーゼを提供する適量のＣＢＨ■およびＩＩ 欠失セルラーゼを、０．０２５重量パーセントの非イオン性界面活性剤（トリト ンＸ１１４）を含有する２０ｍＭクエン酸／リン酸緩衝液４００ｍ１の分離溶液 に加えた。加えて、同一の溶液を含むがどのでルラーゼも含まないブランクも作 成した。そのように調製した試料をｐＨ５に滴定した。次いで作成した各溶液を 、分離ランプロメーターキャニスタ−中に加えた。次いでそのキャニスタ−を閉 じて、３７℃に保持されたランプロメーター中に降ろした。次いでキャニスタ− を、１分当たり少なくとも約４０回転（ｒｐｍ）の速度で１時間、浴中で回転せ しめた。その後に衣類を取り出して、よく濯ぎ、標準乾燥機中で乾燥せしめた。

次いで試料を、選択試験の評価による改溌された外観について分析した。つまり 、６人のパネリストに４つの試料（識別を示さない）を与え、外観に関して評価 するようめた。パネリストには、「外観」という用語は、目に対する綿含有織物 の物理的外観を指し、織物の表面上の、けば、表面繊維等の存在または不在によ る、並びに織物の構成（織り）を見分ける能力または無能により部分的に決定さ れることを指示した。はとんどけばおよび表面繊維を有さず、その構造（織り） が明確に見分けられる織物は、けばおよび／または緩い繊維および／または識別 できない織りを有する織物と比較して改善された外観を有する。

次いでパネリストは、他の試料と比較しながら、その順番に基づいて各試料にス コアをつけた：４は最良の外観であり、１は最低の外観である。各パネリストか らのスコアを集計して平均化した。この試験の結果を以下に示す：セルラーゼの 量　平均外観 １１００ｐｐ　４ 次いでＣＢＨＩおよびＩＩ欠失セルラーゼ組成物を、綿含有織物の感触を改善す る能力について試験した。つまり、この実施例の外観面において、適当な大きさ の１００％綿シート（ＮＪＯ８８４６、ミドルセックス、ブラックフォード通り ２００、テストファブリック社からのスタイル４３９Ｗ番として得られる）を用 いた。

上述したセルラーゼ組成物を、ランゾロメーター中のこれらの試料の外観を改善 する能力について試験した。つまり、最終セルラーゼ溶液中で５００ｐｐｍ、１ ０１０００ｐｐおよび２０００ｐｐｍのセルラーゼを提供する適量のセルラーゼ を、２０ｍＭクエン酸／リン酸緩衝液２４Ｌの分離溶液に加えた。加えて、同一 の溶液を含むがどのセルラーゼも含まないブランクも作成した。全ての試験を、 ｐＨ５，８で行ない、工業用洗濯機中で行なった。その洗濯機は５０℃、全容積 ２４Ｌ、５０　：　１　（重量対重量）の布に対する液体の比率において操作さ れ、その洗濯機を３０分間操作させた。その後、試料を除去し、工業乾燥機中で 乾燥せしめた。

次いで試料を、選択試験の評価による改善された感触について分析した。つまり 、５人のパネリストに４つの試料（識別を示さない）を与え、感触に関して評価 するようめた。パネリストに、改善された感触を何する織物は他の織物より肌触 りか滑らかで、絹のよってあり、その感触を、柔らかさくその感触というよりち 織物の柔軟性を指す）、厚さ、色彩、または織物の滑らかさに含まれない他の物 理的な特性のように質とは区別することを支持した。

次いてパネリストは、他の試料と比較しながら、その順番に基づいて各試料にス コアをつけた。４は最良の感触であり、１は最低の感触である。各パネリストか らのスコアを集計して平均化した。この試験の結果を以下に示す：セルラーゼの 量　平均外観 無し　１，５±０．５ ５００ｐｐｍ　１．７±０．４ １０００ｐｐｍ　３．２±０．４ ２０００ｐｐｍ　３．８±０．４ 上述した結果は、感触および外観における改善が全てのＣＢＨ型成分を含まない セルラーゼ組成物により達成できることを示す。

実施例２１ ストーンウォッシュの外観 この実施例は、ＣＢＨ型成分の存在が綿含有織物にストーンウォッシュの外観を 与えるのに必須ではないことを示すものである。つまり、この実施例は、いかな るＣＢＨ型成分も産生ずることができない（すなわち、ＣＢＨＩおよびＩＩ酸成 分産生ずることができない）ように上述したような方法で遺伝学的に作られたＴ ｒ　ｉ　ｃｈｏｄｅ　ｒｍａｒｅｅｓｅｉから誘導されたセルラーゼ組成物、並 びにＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉから誘導され、カリフォルニア、南 すンフランシスコ、ジネンカーインターナショナルからのサイトラーゼ１２３と して得られる完全セルラーゼ組成物を用いる。

これらのセルラーゼ組成物を、染色綿含有デニムパンツにストーンウォッシュの 外観を与える能力について試験した。つまり、以下の条件下で工業洗濯機および 乾燥機を用いて試料を調製した： ｐＨ５の１０ｍＭクエン酸／リン酸緩衝液合計容積４０Ｌ １１０Ｆ″ ４組のデニムパンツ １時間の操作 ５０ｐｐｍのＣＢＨＩおよびＩＩ欠失セルラーゼまたは１１００ｐｐの完全セル ラーゼ（すなわち、はぼＥＧａｔ度と等しい） ８人のパネリストにより、試料をそのストーンウォッシュの外観について評価し た。８入金てのパネリストが、良好なストーンウォッシュの外観を有するものと して、非酵素処理パンツよりも１１００ｐｐ全セルラーゼを選択する。

８人のパネリストのうち４人か、良好なストーンウォッシュの外観ををするもの として、全セルラーゼよりもＣＢＨＩおよびＩＩ欠失セルラーセ処理パンツを選 択し、一方では他のパネリストは、良好なストーンウォッシュの４観を存するも のとして、全セルラーゼ処理ベレンを選択する。

これらの結果は、ＣＢＨＩおよびＩＩ欠失セルラーゼ処理パンツは、全セルラー ゼ処理パンツとは区別できず、ＣＢＨＩおよび／またはＣＢＨＩＩは、綿含有織 物にストーンウォッシュの外観を与えるのに必須ではないことを示す。

実施例１６から２１に関して、ＣＢＨＩ型成分を含まず、ＴｒＬｃｈｏｄｅｒｍ ａ　ｒｅｅｓｅｉ以外の微生物から誘導されたセルラーゼ組成物は、これらの実 施例に記載されたセルラーゼ組成物と置き換えて用いることができた。特に、Ｅ Ｇ型成分を含有するセルラーゼ組成物の供給源は、本発明にとって重要ではなく 、１つ以上のＥＧ型成分を含有し、実質的に全てのＣＢＨＩ型成分を含まな（１ いかなる菌類セルラーゼ組成物がここに用いられる。例えば、本発明に用いられ る菌類セルラーゼ組成物を調製するのに用いられる菌類セルラーゼは、Ｔｒｉｃ ｈｏｄｅｒｍａ　ｋｏｎｉｎｇｉｉ、Ｐｅｎｃｉｌｌｕｍ　ｓｐ、等力）ら得ら れ、または市販されているセルラーゼが用いられる、すなわち、セルキャスト（ デンマーク、コベン１１−ゲン、ノボインダストリーから得られる）、ラピダー ゼ（オランダ、デルフト、ギストブロケードから得られる）等である。

実施例２２ プラスミドｐＥＧ［ｐｙｒ４を含有するＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ の転換 実施例１に概略を示した方法により、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ菌株Ｒｕ　ｔ　Ｃ３０の ｐｙｒ４欠損誘導体（シールニースおよびモノテンコート、（１９８４）　、Ａ ｐｐ　１．　Ｍｉ　ｃ　ｒｏｂｉｏｌ、　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ、　２０：　： ４６−５３）を得た。この菌株のプロトプラストを、未切断ｐＥＧＩｐＹｒ４で 転換し、安定形質転換体を精製した。

これらの形質転換体の５つ（ＥＰ２、ＥＰ４、ＥＰ５、ＥＰ６、ＥＰｌｌと称す る）、奈良具備に未転換ＲｕｔＣ３０を、２５０ｍ１の振動フラスコ中の５０ｍ １のＹＥＧ媒質に接種し、２日間、２８℃で振動させながら培養した。

生成した菌糸体を無菌水で洗浄し、５０ｍ１のＴＳＦ媒質（０，０５Ｍのクエン 酸−リン酸緩衝液、ｐＨ５，ｏ；アビセルミクロ結晶性セルロース、１０　ｇ／ 　ｌ　；　ＫＨ２Ｐ　０４．２．０ｇ／ｌ　；　（ＮＨ４）２５０４．１．４ｇ ／ｌ　；ブロテオースベブトン、１．Ｏｇ／ｌ；尿素、０．３ｇ／ｌ　；Ｍｇ５ ｏ４　＊　７Ｈ２０，０，３ｇ／ｌ　；ＣａＣ１２，０，３ｇ／ｌ　；　Ｆｅ　 ５０４　・７Ｈ２０，５，０ｍｇ／ｌ；Ｍｎ５Ｏ４−Ｈ２Ｏ，１，６ｍｇ／ｌ　 ；　Ｚｎ　Ｓ０４．１゜４ｍｇ／Ｉ；ＣｏＣＩｚ、２．０ｍｇ／ｌ；０．１％ツ イーン８０）に加えた。これらの培養物はさらに２８℃で４日間、振動させなが ら培養した。これらの培養物から上澄み試料を採取し、タンパク質およびエンド グルカナーゼ活性の合計量を測定するための検定を以下に記載するようにして行 なった。

エンドグルカナーセ検定は、レマゾールブリリアンドブ特表千６−５０２２２６ 　（２１３ ルーカルボキシメチルセルロース（オーストラリア、ＮＳＷ、ノースロック、メ ガザイムから得られる、ＲＢＢ−ＣＭＣ）からの溶性染色オリゴ糖類の解放によ り行なわれる。

２ｇの乾燥ＲＢＢ−ＣＭＣを８０ｍ１の激しく撹拌し誂騰したでの脱イオン水に 加えることにより媒質を調製した。

室温まで冷却したときに、５ｍｌの２Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４，８）を 加え、ｐＨを４．５に調整した。脱イオン水により、その容積を最終的に１００ ｍ１に調節し、０．０２％の最終濃度までナトリウムアジ化物を加えた。

Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ対照培養物、ｐＥＧＩｐｙｒ４形質転換体培養物上澄みまたは ブランクとしての０．１Ｍ酢酸ナトリウム（１０−２０μｌ）のアリコートを、 管中に配し、２５０μｌの媒質を加え、その管を３７℃で３０分間培養した。そ の管を氷上に１０分間配し、１ｍｌの冷たい沈殿剤（３，３％の酢酸ナトリウム 、０．４％の酢酸亜鉛、ＨＣｌによるｐＨ５，７６％エタノール）を加えた。そ の管に渦を生じさせ、約１３，０００Ｘｇでの３分間の遠心分離の前に、５分間 放置した。光学濃度を、５９０−６００ｎｍの波長で分光測光的に測定した。

使用したタンパク質検定は、米国イリンイ州、ロックフォード、ピアースから得 られた試薬を用いたＢＣＡ　（ビシンクロ二ンク酸）検定であった。標準は、子 牛血清アルブミン（Ｂ　Ｓ　Ａ）であった。ＢＣＡ試薬は、１部の試薬Ｂと５０ 部の試薬Ａとの混合により調製した。１ｍｌのＢＣＡ試茎を５０μｍの適切に希 釈したＢＳＡまたは試験培養上澄みと混合した。培養は３７℃で３０分間行ない 、光学密度は最終的に５６２ｎｍの波長で光学測光的に測定した。

上述した検定結果を表１に示す。産生じた形質転換体のいくつかは、未転換菌株 ＲｕｔＣ３０と比較してエンドグルカナーゼ活性の量を増加せしめたことが明確 である。未転換Ｔ、ｒｅｅｓｅｉにより産生されたエキソ−セロビオヒドロラー ゼおよびエンドグルカナーゼは、分泌されたタンパク質の合計量のそれぞれ７０ および２０パーセントを構成すると思われる。それゆえ、菌株ＲｕｔＣ３０より もほぼ４倍のエンドグルカナーゼを産生ずるＥＰ５のような形質転換体は、はぼ 等量のエンドグルカナーゼ型およびエキソ−セロビオヒドロラーゼ型タンパク質 を分泌すると予期される。

本実施例に記載した形質転換体は、完全なｐＥＧＩｐｙｒ４を用いて得られ、ｐ ＵＣプラスミドから誘導されたゲノム中に組み込まれるＤＮＡ配列を含有する。

転換の前に、ＨｉｎｄｌｌｌでｐＥＧＩｐｙｒ４を切断し、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　 ＤＮＡのみを含有するより大きなりＮＡ断片を単離することが可能である。Ｔ、 ｒｅｅｓｅｉの、ＤＮＡのこの単離断片による転換により、ＥＧＩを過剰産生じ 、図８に示す合成りＮＡの２つの短片を除いた異種Ｄ　Ｎ　Ａ配列をまったく含 まない形質転換体の単離ができる。また、ｐＥＧｌｐｙｒ４を用いて、ｃｂｈｌ 遺伝子、またはｃｂｈ２遺伝子、または両方の遺伝子か欠失した菌株を転換する ことも可能である。このようにして、ＥＧＩを過剰産生じ、制限範囲のエキソ− セロビオヒドロラーゼを産生じ、またはエキソ−セロビオヒドロラーゼを全く産 生じない菌株が構成される。

実施例２２の方法は、他のセルラーゼ組成物、キシラナーゼ成分またはＴ、ｒｅ ｅｓｅｉにより通常産生される他のタンパク質のいずれかを過剰に産生ずるＴ、 ｒｅｅｓｅｌ菌株を産生ずるのに用いられる。

表　１ ７、ｒｅｅｓｅｉ形質転換の分泌エンドグルカナーゼ活性Ａ　Ｂ エンドグルカナーゼの活性　タ　ンパク質菌株　（５９０ｎｓ　での人！！Ｌ　 （ａ＋ｇ／ｍｌ）　Ａ／ＢＲｕｔＣ３００，３２４，１０，０７８ＥＰ２　０． ７０　３．７　０．１８９ＥＰ４　０．７６　３．ｆｉ５　０．２０８ＥＰ５　 １．２４　４．１　０ＪＯ２ ＥＰ８　０，５２　２．９３　０．１７７ＥＰＩＩ　０．９９　４，１１　０． ２４１上述した結果は、合計タンパク質に対するＥＧＩ成分の産生過剰を示す目 的にために提示した訃のであって、産生過剰の度合いを示す目的のためてはない 。この点に関して、産生過剰は各実施例に関して変わるものと巴われる。

実施例２３ ｐｃＥＰｃｌの構成 プラスミド、ｐｃＥＰｃｌを構成した。ここでＥＧＩの暗号配列は、ｃｂｈｌ遺 伝子からのプロモーターに機能的に融合された。これは、それぞれの翻訳開始部 位の５′（上流）の都合のよい制限エンドヌクレアーゼ開裂部位を生成するため にｃｂｈｌおよびｅｇｌｌ遺伝子のＤ　Ｎ　Ａ配列を変更する、生体外の部位特 異性突然誘発を用いて行なわれる。ＤＮＡ配列分析を行なって、２つのＤＮＡ断 片の間の接合部での予期した配列を確認した。行なわれた特異的な変更を図１４ に示す。

ｐｃＥＰｃｌを形成するように結合されたＤＮＡ断片は、ｐＵＣ４にのＥｃｏＲ １部位の間に挿入され、これは以下のようであった： Ａ）　ｃｂｈｌ座の５′側腹領域からの２．１ｋｂ断片。

これはプロモーター領域を含み、製造したＢｃ１１部位に延び、ｃｂｈｌ暗号配 列を含まない。

Ｂ）　製造したＢａｍＨｆ部位をＨする５′末端で開始し、翻訳停止コードンの 向こうに約０，５ｋｂを含むｅｇｌｌ座からのゲノムＤＮＡの１．９ｋｂ断片。

その断片の３′末端にはｐＵｃ２１８多重クローニング部位から誘導された１８ ｂｐがあり、１５ｂｐ合成オリゴヌクレオチドがこの断片を以下の断片と連結さ せるのに用いられる。

Ｃ）　ｃｂｈｌ翻訳停止コードンの約１ｋｂ下流の位置から約２．　５ｋｂ下流 に延びる、ｃｂｈｌ座の３′側腹領域からのＤＮＡの断片。Ｄ）ｐＴｐｙ「２か ら得られたＴ。

ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ４遺伝子（実施例２）を含有し、ｐＵＣ１８多重クローニ ング部位から誘導された１末端でのＤＮＡの２４ｂｐを有するＤＮＡの３．１ｋ ｂ　ＮｈｅＯ−ｓｐｈ　！断片を、断片ＣＣ）のＮｈｅ１部位中に挿入しプラス ミド、ｐｃＥＰｃｌを、ＥＧＩ暗号配列がｃｂｈｌ座で組み込まれ、いかなる異 種ＤＮＡをも宿主菌株中に導入せずにＣＢＩ（Ｉの暗号配列を置換するように設 計した。

このプラスミドのＥｃｏＲＩによる切断は、ｃｂｈｌプロモーター領域、ｅｇｌ ｌ暗号配列および転写終止領域を含む断片、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ４遺伝子 およびｃｂｈｌ座の３′　（下流）側腹領域からのＤＮＡ断片を雌牛ずる（図１ ５参照）。

実施例２４ ｐｃＥＰｃＩ　ＤＮＡを含有する形質転換体Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　ＲｕｔＣ３０の ｐｙｒ４欠損菌株（ンールーニース、前述）を、実施例１に概略を説明した方法 により得た。この菌株は、ＥｃｏＲＩで切断されたｐＣＥＰＣＩにより転換され た。安定な形質転換体を選択し、続いて実施例２２に記載したようにセルラーゼ 産生のために振動フラスコ中で培養した。セルラーゼタンパク質を視覚化するた めに、実施例７に記載した５法を用いてこれらの培養物からの試料上に等電点電 気泳動ゲルの電気泳動を行なった。この方法により分析した合計２３の形質転換 体のうち１２か、ＣＢＨＩタンパク質を全く産生しないことが分かり、これはｃ ｂｈｌ座でのｐｃＥＰｃＩ　ＤＮＡの組込みの予期した結果である。サザン法分 析を用いて、統合が二らの形質転換体のうちのいくつかのｃｂｈｌ座で完全に生 じたこと、および細菌プラスミドベクター（ｐ　ＵＣ４Ｋ）から誘導された配列 か全く存在しないこと（図１６参照）を確証した。この分析に関して、形質転換 体からのＤＮＡを、電気泳動を行ない、膜フィルターにプロットする前に、Ｐｓ ｔｌて切断した。生成したサザンプロットは、放射性１１！識プラスミドｐＵＣ ４に：　：　ｃｂｈｌでプローブした（実施例２）。そのプローブは、未転換対 照培養物からのＤＮＡの６，５ｋｂ断片上のｃｂｈｌ遺伝子に雑種形成した（図 １６、レーンＡ）。ｃｂｈｌ座でのＤＮＡのｐＣＥＰＣＩ断片の組込みは、二の ６．５ｋｂ帯の損失およびほぼ１．Ｏｋｂ、２．０ｋｂおよび３．０ｋｂのＤＮ Ａ断片と対応する３つの他の帯の外観となると思われる。これは、図１６、レー ンＣに示した形質転換体に観察される正確な模様である。また図１６に示すよう に、レーンＢは、ｐｃＥＰｃｌの多重コピーがｃｂｈｌ座以外のゲノム中の部位 で組み込まれた形質転換体の実施例である。

試料中のタンパク質濃度が約０．０３と０．０７ｍｇ／ｍｌの間にあるように、 エンドグルカナーゼ活性検定を、未転換培養物、および試料が検定の前に５０倍 に希釈されたことを除いて実施例２２に記載したように形質転換体、からの培養 上澄みの試料に行なった。未転換対照培養物および４つの異なる形質転換体（Ｃ ＥＰＣＩ−１０１゜ＣＥＰＣＩ−１０３、ＣＥＰＣＩ−１０５およびＣＥＰＣＩ −１１２と称する）に行なった検定の結果を表２に示す。形質転換体ＣＥＰＣＩ −１０３およびＣＥＰＣＩ−１１２は、ＣＥＰＣＩ断片の統合がＣＢＨＩ産生の 損失となった実施例である。

表　２ Ｔ、　ｒｅｅｓｅＩ形質転換体の分泌エンドグルカナーゼ活性Ａ　Ｂ ；／トグルカナ−でのａ　タンパク質 菌株　（５９０ｎｍ　での光学ｊ［）　（ｉｇ／ｍｌ）　Ａ　／　ＢＲｕｔＣ３ ０００，０３７２，３ｇ　０．０１８ＣＥＰＣＩ−１０ｔ　Ｏ，０ｇ２　２．７ ２　０．０３０ＣＥＰＣＩ−１０３０，０９９１，９３０，０５ＩＣＥＰＣＩ− １０５０，０３３２，０７０，０１６ＣＥＰＣＩ−１１２０，０９３１，７２０ ，０５４上述した結果は、合計タンパク質に対するＥＧＩ成分の産生過剰を示す 目的にために提示したものであって、産生過剰の度合いを示す目的のためではな い。この点に関して、産生過剰は各実施例に関して変わるものと思われる。

ｐｃＥＰｃｌに類似するが、ｅｇｌ　１遺伝子を置換する他のＴ、ｒｅｅｓｅｉ 遺伝子を有するプラスミドを構成することが可能である。このようにして、他の 遺伝子の表現過剰およびｃｂｈｌ遺伝子の同時の欠失を達成できた。

また、事前に他の遺伝子、例えばｃｂｈ２が欠失したＴ。

ｒｅｅｓｅｉのｐｙｒ４誘導体菌株をｐｃＥＰｃｌで転換し、例えば全くエキソ −セロビオヒドロラーゼを産生ぜず、エンドグルカナーゼを過剰表現する形質転 換体を構成することも可能である。

ｐｃＥＰｃｌに類但の構成物を用いるが、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉの別の座からのＤＮ Ａをｃｂｈｌ座からのＤＮＡと置換する場合、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉゲノム中の別の 座での別のプロモーターの制御下で遺伝子を挿入することも可能である。

実施例２５ ｐＥＧＩＩ：：Ｐ−１の構成 ＥＧ［をコードする（以前に他者によりＥＧＩＩＩと称された）ｅｇ１３遺伝子 が、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉからクローンされ、そのＤＮＡ配列が公表された（サロヘ イモら、１９８８、遺伝子６３　：１ｌ−２１）。菌株ＲＬ−Ｐ３７から、ｐＵ ｃ２１９のＰｓｔ１部位およびＸｈｏ１部位の間に挿入されたゲノムＤＮＡの約 ４ｋｂ　Ｐｓｔｌ−Ｘｈｏｌ断片として遺伝子を得た。ヘクターｐＵｃ２１９は 、ＢｇｌＩＩ、Ｃ１ａｌおよびＸｈｏｌの制限部位を含むように多重クローニン グ部位を広げることによりｐＵｃ２１９から誘導される（ウィルソンらにより１ ９８９年に記載された、遺伝子７７　：　６９−７８）。従来技術において知ら れている方法を用いて、ゲノムＤＮＡの２．７ｋｂ　５ａｌＩ断片上に存在する Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ４遺伝子を、ＥＧ１１暗号配列内の５ａｌ１部位中に 挿入し、プラスミドｐＥＧＩ　Ｉ　：　：Ｐ−１を産生じた（図１７）。これは 、どの配列を欠失することがないがＥＧＩＩ暗号配列の分断となった。プラスミ ド、ｐＥＧＩ　Ｉ　：　：Ｐ−１は、ＨｉｎｄｌＩＩおよびＢａｍＨＩで切断で き、その両者がｐＵｃ２１９の多重クローニング部位から誘導された、一方の末 端の５ｂｐ上、および他方の末端の１６ｂｐを除いたＴ、ｒｅｅｓｅｉから排他 的に誘導されたＤＮＡの線形断片を産生できる。

実施例２６ ＥＧＩＩを産生できない菌株を産生ずるためのＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ＧＣ６９のｐ ＥＧＩ　Ｉ　：　：　Ｐ−１による転換Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ菌株ＧＣ６９は、以前 にＨｉｎｄｌ［ＩおよびＢａｍＨＩで切断されたｐＥＧＩ　Ｉ　：　：　Ｐ−１ で転換され、安定な形質転換体が選択される。全ＤＮＡはそれらの形質転換体か ら単離され、サザン法分析が、これらの形質転換体を同定するのに用いられ、こ こてｐｙｒ４およびｅｇ１３遺伝子を含有するＤＮＡの断片がｅｇｌＢ座で組み 込まれ、その結果としてＥＧＩＩ暗号配列を分断した。その形質転換体はＥＧＩ Ｉを産生ずることができない。

また、ｐＥＧＩ　Ｉ　：　：Ｐ−１を用いて、ｃｂｈｌ遺伝子、Ｃｂｈ２遺伝子 、またはｅｇｌｌ遺伝子のいずれか、または全てか欠失された菌株を転換するこ ともできる。このようにして、あるセルラーゼ成分を産生じ、ＥＧＩＩ成分を全 く産生じない菌株を構成できた。

実施例２７ ＣＢＨＩ、ＣＢＨＩ　１．およびＥＧＩＩを産生ずることのできない菌株を産生 ずるためのＴ、ｒｅｅｓｅｉのｐＥＧＩＩ：：Ｐ−１による転換 実施例１に概略を示した方法により、菌株Ｐ３７ＰΔΔＣＢＨ６７のｐｙｒ４欠 損誘導体（実施例１１から）を得た。この菌株Ｐ３７ΔΔ６７Ｐ１は、以前にＨ ｉｎｄｌ　ｌ■およびＢａｍＨＩで切断したｐＥＧＩ　Ｉ　：　：　Ｐ−Ｉて転 換され、安定な形質転換体が選択された。全ＤＮＡはそれらの形質転換体から単 離され、サザン法分析か、これらの形質転換体を同定するのに用いられ、ここで ｐｙｒ４およびｅｇ１３遺伝子を含有するＤＮＡの断片がｅｇｌＢ座で組み込ま れ、その結果としてＥＧＩＩ暗号配列を分断した。

図１８に説明したサザンプロットを、ｐＵｃ１８のＰｓｔ１部位中にクローンさ れ、続いて再単離されたｅｇ１３遺伝子を含有するＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ＤＮＡの 約４ｋｂ　ＰｓｔＩ断片でプローブした。菌株Ｐ３７ΔΔ６７Ｐ１から単離した ＤＮＡを、サザン法分析のためにＰｓｔｌて切断した場合、ｅｇＩ３座は続いて オートラジオグラフ上の単一４ｋｂ帯として視覚化された（図１８、レーンＥ） 。しかしながら、ｅｇ１３遺伝子が分断された形質転換体に関して、この帯は失 われ、予期したように２つの新たな帯により置換された（図１８、レーンＦ）。

ＤＮＡがＥｃｏＲＶまたはＢｇｌｌｌで切断された場合、ｅｇ１３遺伝子に対応 する帯のサイズは、未転換Ｐ３７ΔΔ６７Ｐ１菌株（レーンＡおよびＣ）とｅｇ １３が分断した形質転換体（図１８、レーンＢおよびＤ）との間の約２．　７ｋ ｂ　（挿入ｐｙｒ４断片のサイズ）により増加した。図１８に示した分断ｅｇ１ ３遺伝子を含有する形質転換体（レーンＢ１ＤおよびＦ）は、Ａ２２と称した。

図１８において同定した形質転換体は、ＣＢＨＩ、ＣＢＨＩＩまたはＥＧＩＩを 産生できない。

実施例２８ ｐＰΔＥＧＩ−１の構成 実施例１２に記載したように、Ｔ、ｒｅｅｓｅｉ菌株ＲＬ−Ｐ３７のｅｇｌｌ遺 伝子を、ゲノムＤＮＡのＨ２ｎｄＩＩＩ断片として得た。この断片をｐＵｃｌｏ ｏのＨｉｎｄＩＩＩ部位に挿入した（ｐＵｃ１８の誘導体、ヤニンユーベロンら 、１９８５、遺伝子３３：ＢｇｌｌＩ、Ｃ１ａｌおよびＸｈｏｌの制限部位を加 える多重クローニング部位中に挿入されたオリゴヌクレオチドを有する１０３− １１９）。従来技術Ｉこおいて知られている方法論を用いて、ＥＧＩ暗号配列の 中央に近い位置からその暗号配列の３′末端を超えた位置に広がる約１ｋｂ　Ｅ ｃｏＲＶ断片を除去し、ｐｙｒ４遺伝子を含有するＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ＤＮＡの ３゜５ｋｂ　５ｃａｌ断片により置換した。作成したプラスミドをｐＰΔＥＧＩ −１と称した（図１９）照）。

プラスミドｐＰΔＥＧＩ−１は、Ｈｉｎｄｌ　Ｉ　１で切断され、いずれの末端 にもｅｇｌｌ遺伝子の断片およびその中央でＥＧＩ暗号配列の一部を置換するｐ ｙｒ４遺伝子を有するＴ、ｒｅｅｓｅｉゲノムＤＮＡのみからなるＤＮＡ断片を 放出できる。

適切なＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ４欠損菌株のＨｉｎｄＩＩＩで切断したｐｐΔ ＥＧＩ−１による転換は、形質転換体のある割合においてｅｇｌｌ座にこのＤＮ Ａを組み込むことを導く。このようにして、ＥＧＩを産生できない菌株が得られ る。

実施例２９ ｐΔＥＧｒｐｙｒ−３の構成およびＴ、ｒｅｅｓｅｉのｐｙｒ４欠７ｊｉ菌株の 転換 ＥＧＩ遺伝子を、実施例２８に概説した方法を用いて不活化できるという予想が 本実験により増強される。この場合、プラスミド、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ　ｎ ｉｇｅｒｐｙｒ４遺伝子が選択可能マーカーとしてのＴ、ｒｅｅｓｅｉ　ｐｙｒ ４遺伝子をｌｔ供することを除いてｐｐΔＥＧ１−１に類似であるｐΔＥ　Ｇ　 Ｉ　ｐ　ｙ　ｒ　−３を構成した。この場合、ｅｇｌｌ道伝ｆは、ｐＵｃｌｏＬ ｌのＨｉｎｄｌｌ■部位に挿入された４、２ｋｂ　ＨｉｎｄＩＩＩ断片として再 度存在した。ｐＰΔＥＧＩ−１の構成中に（実施例２８参照）、同一の内部１ｋ ｂ　ＥｃｏＲＶ断片を除去したが、この場合、その断片はクローンされたＡ、ｎ ｉｇｅｒｐｙｒＧ遺伝子を含有する２、２ｋｂ断片により置換された（ウィルソ ンら、１９８８、Ｎｕｃｌ、Ａｃ１ｄｓ　Ｒｅｓ、１６ｐ、２３３９）、ｌ）Δ ＥＧＩｐｙｒ−３を有するＴ、ｒｅｅｓｅｉのｐｙｒ４欠損菌株（菌株ＧＣ６９ ）の転換は、その菌株がＨｉｎｄｌｌｌで切断されていずれの末端のｅｇｌｌ座 から側腹領域を有するｐｙｒＧ遺伝子を含有する断片を放出した後に、ｅｇｌｌ 遺伝子が分断された形質転換体に導かれた。これらの形質転換体は、Ｈｉｎｄｌ ＩＩで切断され、放射線機１ｐΔＥＧＩｐｙｒ−３でプローブされた形質転換体 ＤＮＡのサチン法分析により認識された。Ｔ、ｒｅｅｓｅｉの未転換菌株におい て、ｅｇ１１遺伝子は、ＤＮＡの４．２ｋｂ　Ｈｉｎｄｌｌｌ断片上に存在し、 この雑種形成のパターンは、図２０、レーンＣとして表される。しかしながら、 ｐΔＥＧＩｐｙｒ−３からの所望の断片の組込みによるｅｇｌｌ遺伝子の欠失に 従って、この４．２ｋｂ断片は消失し、より大きなサイズの約１．２ｋｂ、図２ ０、レーンへの断片により置換された。また図２０に示すように、レーンＢは、 ｐΔＥＧＩｐｙｒ−３の単一コピーの組込みがｅｇｌｌ座以外のゲノム中の部位 で生じた形質転換体の実施例である。

実施例３０ ＣＢＨＩ、ＣＢＨＩ　Ｉ、ＥＧＩおよびＥＧＩＩを産生できない菌株を産生ずる Ｔ、ｒｅｅｓｅｉのｐＰΔＥＧＩ−１による転換 実施例１に概説した方法により、菌株Ａ２２（実施例２７から）のｐｙｒ４欠偵 菌株を得る。二の菌株は、以前にＨｉｎｄｌ　Ｉ　Ｉで切断され、ｐｙｒ４遺伝 子により置換されたＥＧＩ暗号配列の一部を有するいずれかの末端でｅｇ１１遺 伝子の断片を有するＴ、ｒｅｅｓｅｉゲノムＤＮＡのみからなるＤＮＡ断片を放 出するｐＰΔＥＧＩ−１により転換される。

安定なｐｙｒＪ＋形質転換体を選択し、全Ｄ　Ｎ　Ａをその形質転換体から単離 される。ＤＮＡは、形質転換体を同定するためにサザン法分析後に１２ｐ標識ｐ ＰΔＥＧＩ−１でプローブされる。ここで、ｐｙｒ４遺伝子およびｅｇｌｌ配列 を含有するＤＮＡの断片は、ｅｇｌｌ座で組み込まれ、結果としてＥＧＩ暗号配 列を分断する。同定された形質転換体は、ＣＢＨＩ、ＣＢＨＩ　Ｉ、ＥＧＩおよ びＥＧＩＩを産生ずることができない。

ＦＩＧ、−２ ２４ｂｐ膚八へＮＡ ＦＩＧ、８ ＥｃｏＲ工ｔＴＩ訪叫・）　ｐｃＥＰｃｌり９１ζＪ−，１ＤＮＡ２株（４鴨蛤 北Ｂ ＦＩＧ、　１４ −■ ０１＾ＧＲＡＭ　ＯＦ　ｐＥＱｌｇ：二Ｐ−１ＦＩＧ、１９ ＦＩＧ、　２０ 国際調査報告 フロントページの続き Ｄ　０６　Ｍ　１０１：０６ （７２）発明者　ワイス、ジエフリー　エルアメリカ合衆国　カリフォルニア州 ９４１１７　サンフランシスコ　ブエナ　ヴイスタ　アヴエニュ−４５７ Ｉ （７２）発明者　レアナス、エドマシド　エイアメリカ合衆国　カリフォルニア 州 ９４０３８　モス　ビーチ　ネヴアダ　３０１

Claims (11)

【特許請求の範囲】
1. １．菌類セルラーゼ組成物での処理により綿含有織物を処理する改良方法であっ て、前記改良が、実質的に全てのＣＢＨＩ型セルラーゼ成分を含まない菌類セル ラーゼ組成物を使用することからなることを特徴とする方法。
2. ２．前記菌類セルラーゼ組成物が全てのＣＢＨ型成分を含まないことを特徴とす る請求の範囲第１項記載の方法。
3. ３．前記菌類セルラーゼ組成物が、該セルラーゼ組成物中のタンパク質の合計重 量に基づいて少なくとも約２０重量パーセントのＥＧ型成分からなることを特徴 とする請求の範囲第１項記載の方法。
4. ４．綿含有織物を水性菌類セルラーゼ溶液で処理する改良方法であって、核方法 が、前記織物に亘り前記セルラーゼ溶液のカスケード効果を達成する条件下で撹 拌により行なわれ、前記改善が、実質的に全てのＣＢＨ　Ｉ型成分を含まない菌 類セルラーゼ組成物を使用することからなることを特徴とする方法。
5. ５．前記菌類セルラーゼ組成物が全てのＣＢＨ型成分を含まないことを特徴とす る請求の範囲第４項記載の方法。
6. ６．前記菌類セルラーゼ組成物が、該セルラーゼ組成物中のタンパク質の合計重 量に基づいて少なくとも約２０重量パーセントのＥＧ型成分からなることを特徴 とする請求の範囲第４項記載の方法。
7. ７．改良された感触および／または外観を有する綿含有織物であって、該織物が 請求の範囲第１項に定義された方法により調製されることを特徴とする織物。
8. ８．改良された感触および／または外観を有する綿含有織物であって、該織物が 請求の範囲第４項に定義された方法により調製されることを特徴とする織物。
9. ９．実質的に全てのＣＢＨ　Ｉ型成分を含まず、約１０から約５０重量パーセン トの緩衝液、約１０から約５０重量パーセントの界面活性剤、および約０から約 ８０重量パーセントの水よりなる菌類セルラーゼ組成物の約０．５から約２０重 量パーセントからなる濃縮物。
10. １０．前記菌類セルラーゼ組成物が、全てのＣＢＨ型成分を含まないことを特徴 とする請求の範囲第９項記載の濃縮物。
11. １１．前記菌類セルラーゼ組成物が、該セルラーゼ組成物中のタンパク質の合計 重量に基づいて少なくとも約２０重量パーセントのＥＧ型成分からなることを特 徴とする請求の範囲第９項記載の濃縮物。