JPH0621121B2 - 新規高分子多糖Ｆ―Ａｂ及びその製造法 - Google Patents
新規高分子多糖Ｆ―Ａｂ及びその製造法Info
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- JPH0621121B2 JPH0621121B2 JP63003122A JP312288A JPH0621121B2 JP H0621121 B2 JPH0621121 B2 JP H0621121B2 JP 63003122 A JP63003122 A JP 63003122A JP 312288 A JP312288 A JP 312288A JP H0621121 B2 JPH0621121 B2 JP H0621121B2
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- acidic
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Description
【発明の詳細な説明】 ［産業上の利用分野］ 本発明はツリガネタケ属（Ｆｏｍｅｓ）に属する担子菌
によって生産され、抗植物ウイルス作用を有する新規な
酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂに関する。高分子多糖Ｆ−Ａｂ
は農業あるいは園芸の分野においてウイルス病の防除を
目的として広く利用することができる。
によって生産され、抗植物ウイルス作用を有する新規な
酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂに関する。高分子多糖Ｆ−Ａｂ
は農業あるいは園芸の分野においてウイルス病の防除を
目的として広く利用することができる。
［従来技術］ 畑、水田あるいは各種施設で栽培されるタバコ、ピーマ
ン、トマト、キュウリ、スイカなどはタバコモザイクウ
イルス（以下ＴＭＶという）、キュウリモザイクウイル
ス、キュウリ緑班モザイクウイルス、ジャガイモＹウイ
ルス等に羅病し、著しい被害を受けることが多い。これ
らの病原ウイルスは他作物、雑草、樹木、種苗、土壌中
などに存在し、作業中の接触、昆虫の吸汁等によって伝
染する。作物におけるこれらウイルス病の防除対策とし
て、従来はウイルスの発生源の除去または低減、土壌消
毒あるいは殺虫剤によるウイルス媒介者の殺減など、間
接的防除技術が主として用いられてきた。
ン、トマト、キュウリ、スイカなどはタバコモザイクウ
イルス（以下ＴＭＶという）、キュウリモザイクウイル
ス、キュウリ緑班モザイクウイルス、ジャガイモＹウイ
ルス等に羅病し、著しい被害を受けることが多い。これ
らの病原ウイルスは他作物、雑草、樹木、種苗、土壌中
などに存在し、作業中の接触、昆虫の吸汁等によって伝
染する。作物におけるこれらウイルス病の防除対策とし
て、従来はウイルスの発生源の除去または低減、土壌消
毒あるいは殺虫剤によるウイルス媒介者の殺減など、間
接的防除技術が主として用いられてきた。
植物ウイルスの直節防除剤としてはアルギン酸ナトリウ
ム剤（特許第７１７５９４、農林水産省登録第１３４４
０）及びシイタケ菌糸体培養抽出物（特許第１０１２０
１４、農林水産省登録第１５５８４）があるが、いずれ
も浸透移行性の効果を示さないため、植物体の全面に漏
れなく一様に散布する必要があり、また畑での効果はあ
まり高くない。一方、最近、浸透移行性を有する抗植物
ウイルス性の物質として、オシロイバナに含まれる蛋白
質（特開昭６０−２４３１００）が知られている。しか
し、本物質の生産は農業的手段又は植物組織培養（特開
昭６１−５７９０）によらねばならないことから、その
生産性に関しては自ずと限界を有する。
ム剤（特許第７１７５９４、農林水産省登録第１３４４
０）及びシイタケ菌糸体培養抽出物（特許第１０１２０
１４、農林水産省登録第１５５８４）があるが、いずれ
も浸透移行性の効果を示さないため、植物体の全面に漏
れなく一様に散布する必要があり、また畑での効果はあ
まり高くない。一方、最近、浸透移行性を有する抗植物
ウイルス性の物質として、オシロイバナに含まれる蛋白
質（特開昭６０−２４３１００）が知られている。しか
し、本物質の生産は農業的手段又は植物組織培養（特開
昭６１−５７９０）によらねばならないことから、その
生産性に関しては自ずと限界を有する。
［発明が解決しようとする問題点］ 本発明は、従来の市販の植物ウイルス病防除剤に見られ
ない、浸透移行性の効果を示し、安全で有効な化学物質
を微生物を用いる醗酵工業的手段によって安価に大量に
提供する事を目的とする。
ない、浸透移行性の効果を示し、安全で有効な化学物質
を微生物を用いる醗酵工業的手段によって安価に大量に
提供する事を目的とする。
［問題点を解決するための手段］ 本発明者らは、上記の目的を達成するために、多種の微
生物の代謝産物についてスクリーニングを行った結果、
ツリガネタケ属（Ｆｏｍｅｓ）に属する菌が培養物中に
生産する酸性の高分子多糖Ｆ−Ａｂが顕著な抗ウイルス
活性を示すことを発見した。
生物の代謝産物についてスクリーニングを行った結果、
ツリガネタケ属（Ｆｏｍｅｓ）に属する菌が培養物中に
生産する酸性の高分子多糖Ｆ−Ａｂが顕著な抗ウイルス
活性を示すことを発見した。
本発明に使用するツリガネタケ属に属する菌株として
は、天然のツリガネタケより分離した菌株、あるいは公
知の保存菌株、例えばフォメス・フォメンタリウス（Ｆ
ｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎｔａｒｉｕｓ）ＩＦＯ ８２４
６、ＩＦＯ ３０３７１、ＩＦＯ ３０７７７（ＩＦＯ
は財団法人・醗酵研究所の略）、あるいはフォメス・フ
ォメンタリウス（Ｆｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎｔａｒｉｕ
ｓ）ＡＴＣＣ ２６７０８、ＡＴＣＣ ３４６８７、Ａ
ＴＣＣ ４６２１３（ＡＴＣＣはアメリカン・タイプ・
カルチャー・コレクションの略）等があるが、酸性高分
子多糖Ｆ−Ａｂ生産量が高いフォメス・フォメンタリウ
ス（Ｆｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎｔａｒｉｕｓ）ＪＴＳ ３
０４６（微工研菌寄第９７０４号）が最も望ましい菌株
である。なお、ＪＴＳ ３０４６菌株は、ＩＦＯ ８２
４６菌株を親株として継代培養し、選抜により得られた
高生産株である。
は、天然のツリガネタケより分離した菌株、あるいは公
知の保存菌株、例えばフォメス・フォメンタリウス（Ｆ
ｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎｔａｒｉｕｓ）ＩＦＯ ８２４
６、ＩＦＯ ３０３７１、ＩＦＯ ３０７７７（ＩＦＯ
は財団法人・醗酵研究所の略）、あるいはフォメス・フ
ォメンタリウス（Ｆｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎｔａｒｉｕ
ｓ）ＡＴＣＣ ２６７０８、ＡＴＣＣ ３４６８７、Ａ
ＴＣＣ ４６２１３（ＡＴＣＣはアメリカン・タイプ・
カルチャー・コレクションの略）等があるが、酸性高分
子多糖Ｆ−Ａｂ生産量が高いフォメス・フォメンタリウ
ス（Ｆｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎｔａｒｉｕｓ）ＪＴＳ ３
０４６（微工研菌寄第９７０４号）が最も望ましい菌株
である。なお、ＪＴＳ ３０４６菌株は、ＩＦＯ ８２
４６菌株を親株として継代培養し、選抜により得られた
高生産株である。
これら菌株の培養物の培養液をそのまま、あるいはそ
の有効成分である多糖Ｆ−Ａｂを水に溶解し、タバコ、
トマト、ピーマンなどの茎葉に散布あるいは地下部から
吸収させることなどによって、ＴＭＶ等の感染発病を効
果的に防除することができる。
の有効成分である多糖Ｆ−Ａｂを水に溶解し、タバコ、
トマト、ピーマンなどの茎葉に散布あるいは地下部から
吸収させることなどによって、ＴＭＶ等の感染発病を効
果的に防除することができる。
特にツリガネタケ属に属する菌体の生産する抗ウイルス
活性物質は従来知られている多糖と異なり、処理植物体
においてシステミック（見掛上、浸透移行的）に発現す
ることから著効を示す。
活性物質は従来知られている多糖と異なり、処理植物体
においてシステミック（見掛上、浸透移行的）に発現す
ることから著効を示す。
本発明において使用する菌株は一般の担子菌培養用培地
に用いて、静置又は攪拌培養でき、その効果は主として
有効成分である酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂの量に依存す
る。
に用いて、静置又は攪拌培養でき、その効果は主として
有効成分である酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂの量に依存す
る。
本発明者らはこれらのことを実験的に確認し本発明を行
った。
った。
以下に、順をおって詳細に説明する。
高分子多糖Ｆ−Ａｂは、高分子多糖Ｆ−Ａｂ生産菌を培
養した後、培養物の液体区分（培養液）および菌体区
分から分離採取することによって得る事ができるが、特
に、培養液から多く得られる。
養した後、培養物の液体区分（培養液）および菌体区
分から分離採取することによって得る事ができるが、特
に、培養液から多く得られる。
培養培置としては菌体がよく育つものであればいかなる
組成の培地でもよいが、一般の糸状菌用培地に酵母エキ
スなどを加えたものが好ましい。
組成の培地でもよいが、一般の糸状菌用培地に酵母エキ
スなどを加えたものが好ましい。
培養条件としては、例えば２０−３０℃の静置培養で十
分であり、また高分子多糖Ｆ−Ａｂ生産菌の生育が可能
で高分子多糖Ｆ−Ａｂを生産する条件であればいかなる
条件でも良いが、振盪培養又は通気攪拌培養が好まし
い。
分であり、また高分子多糖Ｆ−Ａｂ生産菌の生育が可能
で高分子多糖Ｆ−Ａｂを生産する条件であればいかなる
条件でも良いが、振盪培養又は通気攪拌培養が好まし
い。
高分子多糖Ｆ−Ａｂ生産菌の培養物から遠心分離又は
過により液体区分（培養液）及び菌体区分（菌体）を
得、次いで、これらから抗ウイルス活性を有する高分子
多糖Ｆ−Ａｂを採取する。培養液から高分子多糖Ｆ−
Ａｂを採取するには常法によればよく、例として、透
析、限外過、分別沈澱、塩析、溶媒分画、イオン交換
クロマトグラフィー、ゲル過クロマトグラフィー、吸
着クロマトグラフィーなどの操作を単独あるいは適宜併
用すればよい。菌体から高分子多糖Ｆ−Ａｂを採取する
には、例えば熱水抽出を行い、固形分を除き、その後は
液体区分からの採取法に準ずればよい。
過により液体区分（培養液）及び菌体区分（菌体）を
得、次いで、これらから抗ウイルス活性を有する高分子
多糖Ｆ−Ａｂを採取する。培養液から高分子多糖Ｆ−
Ａｂを採取するには常法によればよく、例として、透
析、限外過、分別沈澱、塩析、溶媒分画、イオン交換
クロマトグラフィー、ゲル過クロマトグラフィー、吸
着クロマトグラフィーなどの操作を単独あるいは適宜併
用すればよい。菌体から高分子多糖Ｆ−Ａｂを採取する
には、例えば熱水抽出を行い、固形分を除き、その後は
液体区分からの採取法に準ずればよい。
本発明において、一般的には、グルコース、エビオス
（エビオス製薬商品名；以下同じ）、リン酸−カリウ
ム、硫酸マグネシウム及び水道水からなる培地で高分子
多糖Ｆ−Ａｂ生産菌を振盪培養し、培養終了後、過に
より培養液を得る。
（エビオス製薬商品名；以下同じ）、リン酸−カリウ
ム、硫酸マグネシウム及び水道水からなる培地で高分子
多糖Ｆ−Ａｂ生産菌を振盪培養し、培養終了後、過に
より培養液を得る。
次いで、培養液と菌体熱水抽出液を合せて、これへ２
倍容量のエタノールを加え、生じる沈澱を採取する。こ
の沈澱を水に溶かし、トリクロロ酢酸を加えてタンパク
質等の沈澱を生じさせて遠心分離により除いた後、リン
酸緩衝液に対して透析する。透析膜内液の成分をジエチ
ルアミノエチル基を有するイオン交換体に吸着させ、次
いでＮａＣｌの濃度を直線的に高めながら溶離する。溶
離液を一定量ずつ分取し、その糖含量をフェノール・硫
酸法により定量する。
倍容量のエタノールを加え、生じる沈澱を採取する。こ
の沈澱を水に溶かし、トリクロロ酢酸を加えてタンパク
質等の沈澱を生じさせて遠心分離により除いた後、リン
酸緩衝液に対して透析する。透析膜内液の成分をジエチ
ルアミノエチル基を有するイオン交換体に吸着させ、次
いでＮａＣｌの濃度を直線的に高めながら溶離する。溶
離液を一定量ずつ分取し、その糖含量をフェノール・硫
酸法により定量する。
各分取液の内容成分を各種クロマトグラフィーにより分
析し、糖として高分子多糖Ｆ−Ａｂのみを含む分取液を
合せる。これへ、再度、エタノールを加えて完全にタン
パク質等を沈澱させて除き、イオン交換水に対して透析
後、凍結乾燥し、高分子多糖Ｆ−Ａｂ凍結乾燥品を得
る。
析し、糖として高分子多糖Ｆ−Ａｂのみを含む分取液を
合せる。これへ、再度、エタノールを加えて完全にタン
パク質等を沈澱させて除き、イオン交換水に対して透析
後、凍結乾燥し、高分子多糖Ｆ−Ａｂ凍結乾燥品を得
る。
高分子多糖Ｆ−Ａｂ凍結乾燥品をゲル過クロマトグラ
フィーにより精製し、高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩を得
る。
フィーにより精製し、高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩を得
る。
さらに、高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩からイオン交換樹脂
により陽イオンをできるだけ除き、高分子多糖Ｆ−Ａｂ
標品を得る。
により陽イオンをできるだけ除き、高分子多糖Ｆ−Ａｂ
標品を得る。
高分子多糖Ｆ−Ａｂは、次の理化学的性質を示す。
（１）元素分析 ［高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩］ Ｃ：３６．０％ Ｈ： ６．０％ Ｎ： ０．５％ 灰分：９．０％ ［高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品］ Ｃ：３７．９％ Ｈ： ５．９％ Ｎ： ０．４％ 灰分：３．９％ （２）分子量 ゲル過クロマトグラフィーを行った結果は第１図及び
第２図に示す通りである。
第２図に示す通りである。
ゲル過法による範囲：１００００−２００００。
ゲル過法による平均分子量：１５５００−１６５０
０。
０。
（３）施光度 ［α▲］25 D▼＝−３４゜（ｃ＝０．５２％、水溶液） （４）紫外吸収スペクトル 第３図に示す通りである。
（５）赤外吸収スペクトル 第４図及び第５図に示す通りである。
高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩は１６１２ｃｍ-1に−ＣＯＯ
−の強い吸収があった。イオン交換樹脂により陽イオン
を減少させた高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品では、１６１２ｃ
ｍ-1の吸収が減少して、代わりに１７２５ｃｍ-1の−Ｃ
ＯＯＨの吸収が認められた。
−の強い吸収があった。イオン交換樹脂により陽イオン
を減少させた高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品では、１６１２ｃ
ｍ-1の吸収が減少して、代わりに１７２５ｃｍ-1の−Ｃ
ＯＯＨの吸収が認められた。
（６）溶媒に対する溶解性 水、ジメチルスルホキシドに可溶。
メタノール、エタノール、アセトン、エーテルに不溶。
（７）呈色反応 フェノール・硫酸反応 陽性 カルバゾール・硫酸反応 陽性 ニンヒドリン反応 陰性 （８）塩基性、酸性、中性の別 高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品の０．１％水溶液のｐＨは酸性
である。
である。
（９）物質の色 高分子多糖Ｆ−Ａｂは白色である。
（１０）構成糖とその組成 高分子多糖Ｆ−Ａｂを２Ｎ−トリフルオロ酢酸中、１２
１℃１時間、加水分解後、アゼセルプレートを用いた薄
層クロマトグラフィーによりグルコースとグルクロン酸
が検出された。
１℃１時間、加水分解後、アゼセルプレートを用いた薄
層クロマトグラフィーによりグルコースとグルクロン酸
が検出された。
高分子多糖Ｆ−Ａｂ中のグルクロン酸をカルバゾール硫
酸法（例えば、Ｔ．Ｂｉｔｔｅｒ，Ｈ．Ｍｕｉｒ，Ａｎ
ａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，４，３３０，１９６２）によ
り定量した。また、本多糖を加水分解後、常法（例え
ば、原田篤也、小泉岳夫編：総合多糖科学上、６８頁、
講談社、昭和４８年）により還元してアルジトールアセ
テートに導き、ガスクロマトグラフィーにより分析し
た。これらの結果から、その構成比はグルコース：グル
クロン酸＝９：２．０〜１．８であった。
酸法（例えば、Ｔ．Ｂｉｔｔｅｒ，Ｈ．Ｍｕｉｒ，Ａｎ
ａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，４，３３０，１９６２）によ
り定量した。また、本多糖を加水分解後、常法（例え
ば、原田篤也、小泉岳夫編：総合多糖科学上、６８頁、
講談社、昭和４８年）により還元してアルジトールアセ
テートに導き、ガスクロマトグラフィーにより分析し
た。これらの結果から、その構成比はグルコース：グル
クロン酸＝９：２．０〜１．８であった。
ニンヒドリン試薬に対する反応は陰性であり、アミノ糖
やアミノ酸の存在は認められかった。
やアミノ酸の存在は認められかった。
（１１）タンパク質の存在 高分子多糖Ｆ−Ａｂ２０ｍｇを１ｍｌの水に溶かし、そ
の０．１ｍｌ中のタンパク質をローリイ法により定量し
た。発色は認められず、タンパク質は検出されなかっ
た。
の０．１ｍｌ中のタンパク質をローリイ法により定量し
た。発色は認められず、タンパク質は検出されなかっ
た。
（１２）ピルビン酸の存在 高分子多糖Ｆ−Ａｂの加水分解物をベーリンガー・マン
ハイム社製乳酸測定キットにより測定したが、ピルピン
酸は存在しなかった。
ハイム社製乳酸測定キットにより測定したが、ピルピン
酸は存在しなかった。
（１３）メチル化分析 ａ）高分子多糖Ｆ−Ａｂをメチル化した後、加水分解
し、アルジトールアセテートに導き、ガスクロマトグラ
フィーにより分析して、次の結果を得た。
し、アルジトールアセテートに導き、ガスクロマトグラ
フィーにより分析して、次の結果を得た。
１、５−ジ−０−アセチル−２、３、４、６−テトラ−
０−メチルグルシトール：１、３、５−トリ−０−アセ
チル−２、４、６−トリ−０−メチルグルシトール：
１，５，６−トリ−０−アセチル−２、３、４−トリ−
０−メチルグルシトール１，３，５，６−テトラ−０−
アセチル−２、４−ジ−０−メチルグルシトール＝１：
２：４：２。
０−メチルグルシトール：１、３、５−トリ−０−アセ
チル−２、４、６−トリ−０−メチルグルシトール：
１，５，６−トリ−０−アセチル−２、３、４−トリ−
０−メチルグルシトール１，３，５，６−テトラ−０−
アセチル−２、４−ジ−０−メチルグルシトール＝１：
２：４：２。
ｂ）高分子多糖Ｆ−Ａｂ中のグルクロン酸殘基を常法
（例えば、Ｈ．Ｍｉｎａｋａｍｉ ｅｔａｌ．，Ａｇｒ
ｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，４８，２４０５−２４１
４，１９８４）により還元してグルコース殘基にした
後、メチル化して加水分解し、アルジトールアセテート
に導き、ガスクロマトグラフィーにより分析して、次の
結果を得た。
（例えば、Ｈ．Ｍｉｎａｋａｍｉ ｅｔａｌ．，Ａｇｒ
ｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，４８，２４０５−２４１
４，１９８４）により還元してグルコース殘基にした
後、メチル化して加水分解し、アルジトールアセテート
に導き、ガスクロマトグラフィーにより分析して、次の
結果を得た。
１、５−ジ−０−アセチル−２、３、４、６−テトラ−
０−メチルグルシトール：１，３，５−トリ−０−アセ
チル−２、４、６−トリ−０−メチルグルシトール：
１，５，６−トリ−０−アセチル−２、３、４−トリ−
０−メチルグルシトール：１、３、５、６−テトラ−０
−アセチル−２、４−ジ−０−メチルグルシトール＝
２：３：４：２ 以下に実施例により、本発明を更に詳細に説明する。
０−メチルグルシトール：１，３，５−トリ−０−アセ
チル−２、４、６−トリ−０−メチルグルシトール：
１，５，６−トリ−０−アセチル−２、３、４−トリ−
０−メチルグルシトール：１、３、５、６−テトラ−０
−アセチル−２、４−ジ−０−メチルグルシトール＝
２：３：４：２ 以下に実施例により、本発明を更に詳細に説明する。
実施例１ ［菌の培養］ フォメス・フォメンタリウス（Ｆｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎ
ｔａｒｉｕｓ）ＪＴＳ ３０４６菌株（微工研菌寄第９
７０４号）を、試験管内のバレイショ・ブドウ糖・寒天
培地（斜面、１０ｍｌ）に接種し、２８℃で１０日間培
養し、保存菌株とした。この保存菌株を，下記の培地Ａ
を１００ｍｌ入れた５００ｍｌ容三角フラスコに接種
し、２８℃、２００ｒｐｍで１０日間、回転振盪培養
し、種母とした。種母培養物１００ｍｌをミキサーによ
りホモジナイズし、その６０ｍｌを、１０００ｍｌの培
地Ｂを入れた３リットル容三角フラスコに接種し、２８
℃、２００ｒｐｍで１０日間回転振盪培養し、菌糸培養
物を得た。
ｔａｒｉｕｓ）ＪＴＳ ３０４６菌株（微工研菌寄第９
７０４号）を、試験管内のバレイショ・ブドウ糖・寒天
培地（斜面、１０ｍｌ）に接種し、２８℃で１０日間培
養し、保存菌株とした。この保存菌株を，下記の培地Ａ
を１００ｍｌ入れた５００ｍｌ容三角フラスコに接種
し、２８℃、２００ｒｐｍで１０日間、回転振盪培養
し、種母とした。種母培養物１００ｍｌをミキサーによ
りホモジナイズし、その６０ｍｌを、１０００ｍｌの培
地Ｂを入れた３リットル容三角フラスコに接種し、２８
℃、２００ｒｐｍで１０日間回転振盪培養し、菌糸培養
物を得た。
ほかの菌株、フォメス・フォメンタリウス ＩＦＯ ３
０３７１、ＩＦＯ ８２４６、ＡＴＣＣ ２６７０８な
ども同様に培養し、菌糸培養物を得た。
０３７１、ＩＦＯ ８２４６、ＡＴＣＣ ２６７０８な
ども同様に培養し、菌糸培養物を得た。
培地Ａ：グルコース ５０ｇ ペプトン ２ｇ 酵母エキス ２ｇ 麦芽エキス １０ｇ ＫＨ２ＰＯ４ ５ｇ ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ ２．５ｇ 水道水 １０００ｍｌ 培地Ｂ：グルコース ５０ｇ エビオス ６ｇ ＫＨ２ＰＯ４ ２ｇ ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ １ｇ 水道水 １０００ｍｌ 実施例２ ［高分子多糖Ｆ−Ａｂの精製］ 実施例１において得られたフォメス・フォメンタリウス
（Ｆｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎｔａｒｉｕｓ）ＪＴＳ ３０
４６菌株の菌糸培養物８リットル（３リットル容三角フ
ラスコ８本分）を、東洋紙Ｎｏ５Ｃを用いて過し、
菌体と培養液をえた。菌体に５倍重量の水を加えて６
０℃で１０分間加熱し、抽出液を得た。
（Ｆｏｍｅｓ ｆｏｍｅｎｔａｒｉｕｓ）ＪＴＳ ３０
４６菌株の菌糸培養物８リットル（３リットル容三角フ
ラスコ８本分）を、東洋紙Ｎｏ５Ｃを用いて過し、
菌体と培養液をえた。菌体に５倍重量の水を加えて６
０℃で１０分間加熱し、抽出液を得た。
培養液と抽出液を合せた８０００ｍｌにその２倍容量
のエタノールを加え、１０℃で二日間静置すると沈澱が
生じた。遠心分離により沈澱を回収した。
のエタノールを加え、１０℃で二日間静置すると沈澱が
生じた。遠心分離により沈澱を回収した。
この沈澱に、８００ｍｌの水を加えて溶液とした。この
溶液に、４０％（ｗ／ｖ）トリクロロ酢酸溶液を２４０
ｍｌ加え、攪拌後、１０℃で一夜静置した。生じたタン
パク質などの沈澱を除去するため１２０００ｒｐｍで１
５分間遠心分離し、上澄液を回収した。上澄液を搭析膜
（スペクトロポア３）に入れ、１０ｍＭリン酸緩衝液
（ｐＨ６．０）に対し、繰返し平衡化した。透析膜内液
を、ジエチルアミノエチル基を有する、カートリッジタ
イプのＺｅｔａ−Ｐｒｅｐ １００ ＤＥＡＥ（ＬＫＢ
社製）に負荷し管内に吸着させてから、１０ｍＭリン酸
緩衝液３０００ｍｌで管内を洗浄した。中性高分子多糖
Ｆ−Ｎの大部分は管内に吸着されずに溶出した。
溶液に、４０％（ｗ／ｖ）トリクロロ酢酸溶液を２４０
ｍｌ加え、攪拌後、１０℃で一夜静置した。生じたタン
パク質などの沈澱を除去するため１２０００ｒｐｍで１
５分間遠心分離し、上澄液を回収した。上澄液を搭析膜
（スペクトロポア３）に入れ、１０ｍＭリン酸緩衝液
（ｐＨ６．０）に対し、繰返し平衡化した。透析膜内液
を、ジエチルアミノエチル基を有する、カートリッジタ
イプのＺｅｔａ−Ｐｒｅｐ １００ ＤＥＡＥ（ＬＫＢ
社製）に負荷し管内に吸着させてから、１０ｍＭリン酸
緩衝液３０００ｍｌで管内を洗浄した。中性高分子多糖
Ｆ−Ｎの大部分は管内に吸着されずに溶出した。
次いで、ＮａＣｌ濃度を０から４００ｍＭに直線的に上
げつつ、１５００ｍｌの溶離液を、毎分２５ｍｌの流速
で長した。溶離液はフラクションコレクターを用いて試
験管に各々１０ｍｌずつ分取し、各分取液の糖含量をフ
ェノール・硫酸法により定量した。また、各分取液を東
ソー製ＴＳＫｇｅｌ Ｇ３０００ＰＷカラムを用いる高
速液体クロマトグラフィーにかけ、各受の純度を検定し
た。同一成分のみを含む液を合せ、Ａｓａｈｉｐａｋ
ＧＳ−５１０をもちいてゲル過クロマトグラフィーに
かけ、その分子量分布を測定した。同時に、アビセルプ
レートを用いる薄層クロマトグラフィーにより各成分の
純度を検定した。
げつつ、１５００ｍｌの溶離液を、毎分２５ｍｌの流速
で長した。溶離液はフラクションコレクターを用いて試
験管に各々１０ｍｌずつ分取し、各分取液の糖含量をフ
ェノール・硫酸法により定量した。また、各分取液を東
ソー製ＴＳＫｇｅｌ Ｇ３０００ＰＷカラムを用いる高
速液体クロマトグラフィーにかけ、各受の純度を検定し
た。同一成分のみを含む液を合せ、Ａｓａｈｉｐａｋ
ＧＳ−５１０をもちいてゲル過クロマトグラフィーに
かけ、その分子量分布を測定した。同時に、アビセルプ
レートを用いる薄層クロマトグラフィーにより各成分の
純度を検定した。
各取液のフェノール・硫酸法による定量値をプロットし
て第６図を得た。試験官８〜１１本目の分取液は中性高
分子多糖Ｆ−Ｎを含んでいた。試験官１２〜１９本目の
分取液は中性高分子多糖Ｆ−Ｎ及び酸性高分子多糖Ｆ−
Ａｂを含んでいた。試験官２０〜２７本目の分取液は酸
性高分子多糖Ｆ−Ａｐを含んでいた。試験官２８〜４２
本目の分取液は酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂと酸性高分子多
糖Ｆ−Ｂを含んでいた。試験官４３〜５６本目の分取液
は酸性高分子多糖Ｆ−Ｂを含んでいた。試験官５７〜６
２本目の分取液は酸性高分子多糖Ｆ−Ｂ及び酸性高分子
多糖Ｆ−Ｃを含んでいた。試験官６３〜７６本目の分取
液は酸性高分子多糖Ｆ−Ｃを含んでいた。
て第６図を得た。試験官８〜１１本目の分取液は中性高
分子多糖Ｆ−Ｎを含んでいた。試験官１２〜１９本目の
分取液は中性高分子多糖Ｆ−Ｎ及び酸性高分子多糖Ｆ−
Ａｂを含んでいた。試験官２０〜２７本目の分取液は酸
性高分子多糖Ｆ−Ａｐを含んでいた。試験官２８〜４２
本目の分取液は酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂと酸性高分子多
糖Ｆ−Ｂを含んでいた。試験官４３〜５６本目の分取液
は酸性高分子多糖Ｆ−Ｂを含んでいた。試験官５７〜６
２本目の分取液は酸性高分子多糖Ｆ−Ｂ及び酸性高分子
多糖Ｆ−Ｃを含んでいた。試験官６３〜７６本目の分取
液は酸性高分子多糖Ｆ−Ｃを含んでいた。
試験官２０〜２７本目の分取液を集めて、その０．８倍
容量のエタノールを加え、１０℃で一夜放置し、遠心分
離により上澄液を回収した。この上澄液に，もとの分取
液の０．７倍容量のエタノールを加え、沈澱する多糖を
回収した。この操作により、極微量含まれるタンパク質
等は完全に除かれた。
容量のエタノールを加え、１０℃で一夜放置し、遠心分
離により上澄液を回収した。この上澄液に，もとの分取
液の０．７倍容量のエタノールを加え、沈澱する多糖を
回収した。この操作により、極微量含まれるタンパク質
等は完全に除かれた。
回収多糖を透析チューブに入れ、イオン交換水に対して
２日間透析した。透析終了後、透析内液を凍結乾燥し、
高分子多糖Ｆ−Ａｂ凍結乾燥品６００ｍｇを得た。
２日間透析した。透析終了後、透析内液を凍結乾燥し、
高分子多糖Ｆ−Ａｂ凍結乾燥品６００ｍｇを得た。
高分子多糖Ｆ−Ａｂ凍結乾燥品を、Ａｓａｈｉｐａｋ
ＧＳ−５１０にＧＳ３２０を直列につないだカラムを装
備した日本分析工業製ＬＣ−０９型分取液体クロマトグ
ラフにかけ、高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩５００ｍｇを得
た。本標品塩の赤外吸収スペクトルは第４図に示すよう
に、１６１２ｃｍ-1に−ＣＯＯ−の強い吸収があり、ナ
トリウム等の陽イオンを含んでいた。
ＧＳ−５１０にＧＳ３２０を直列につないだカラムを装
備した日本分析工業製ＬＣ−０９型分取液体クロマトグ
ラフにかけ、高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩５００ｍｇを得
た。本標品塩の赤外吸収スペクトルは第４図に示すよう
に、１６１２ｃｍ-1に−ＣＯＯ−の強い吸収があり、ナ
トリウム等の陽イオンを含んでいた。
高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩を、イオン交換樹脂カラムに
通し通イオンを除くと１６１２ｃｍ-1の吸収は弱まり、
代わりに１７２５ｃｍ-1の−ＣＯＯＨの吸収が現れた。
しかし、赤外吸収スペクトルからみて、完全に陽イオン
を除去することは困難であり、第５図に示す精製品をも
って高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品とした。
通し通イオンを除くと１６１２ｃｍ-1の吸収は弱まり、
代わりに１７２５ｃｍ-1の−ＣＯＯＨの吸収が現れた。
しかし、赤外吸収スペクトルからみて、完全に陽イオン
を除去することは困難であり、第５図に示す精製品をも
って高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品とした。
ここに得られた標品は、上記の各種クロマトグラフィー
の結果、単一物質であることが明らかになった。標品は
白色であり、水に溶かした場合は無色透明であった。
の結果、単一物質であることが明らかになった。標品は
白色であり、水に溶かした場合は無色透明であった。
その他の菌株の培養物からも、同様にして精製を行い、
高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩及び標品を得た。
高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩及び標品を得た。
実施例３ ［元素分析］ 実施例２において、フォメス・フォメンタリウスＪＴＳ
３０４６菌株培養物から得られた高分子多糖Ｆ−Ａｂ
標品塩の分析結果は、Ｃ：３６．０％、Ｈ：６．０％、
Ｎ：０．５％、灰分：９．０％を示した。
３０４６菌株培養物から得られた高分子多糖Ｆ−Ａｂ
標品塩の分析結果は、Ｃ：３６．０％、Ｈ：６．０％、
Ｎ：０．５％、灰分：９．０％を示した。
（しかし、同一試料から出発しても、Ｎ及び灰分の値は
しばしば変動し、その影響を受けてＣ及びＨも細かく変
動した。これは、高分子多糖Ｆ−Ａｂが酸性物質である
ために、塩の形で抱込むアンモニウムイオン及びナトリ
ウムイオン等の灰分の量が精製の都度、異なってくるた
めと考えられる） 高分子多等Ｆ−Ａｂ標品の分析結果は、Ｃ：３７．９
％，Ｈ：５．９％，Ｎ：０．４％，灰分：３．９％を示
した。
しばしば変動し、その影響を受けてＣ及びＨも細かく変
動した。これは、高分子多糖Ｆ−Ａｂが酸性物質である
ために、塩の形で抱込むアンモニウムイオン及びナトリ
ウムイオン等の灰分の量が精製の都度、異なってくるた
めと考えられる） 高分子多等Ｆ−Ａｂ標品の分析結果は、Ｃ：３７．９
％，Ｈ：５．９％，Ｎ：０．４％，灰分：３．９％を示
した。
（イオン交換樹脂による陽イオン除去割合は、実験の都
度異なり、完全にＮと灰分を除去することは出来なかっ
た） 実施例４ ［分子量の測定］ 東ソー製ＴＳＫｇｅｌ Ｇ３０００ＰＷＸＬカラム又は
旭化成工業製Ａｓａｈｉｐａｋ ＧＳ−５１０カラムを
装着した高速液体クロマトグラフ装置（ＲＩ検出器付
き）を用いて、プルラン（昭和電工製、Ｐｕｌｌｕｌａ
ｎ Ｓｈｏｄｅｘ ＳＴＡＮＤＡＲＤ Ｐ−８２）を分
子量標準物質とし、フォメス・フォメンタリウスＪＴＳ
３０４６菌株培養物から得た高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品
の分子量ををゲル過クロマトグラフィーにより測定し
た結果を、第１図及び第２図に示す。
度異なり、完全にＮと灰分を除去することは出来なかっ
た） 実施例４ ［分子量の測定］ 東ソー製ＴＳＫｇｅｌ Ｇ３０００ＰＷＸＬカラム又は
旭化成工業製Ａｓａｈｉｐａｋ ＧＳ−５１０カラムを
装着した高速液体クロマトグラフ装置（ＲＩ検出器付
き）を用いて、プルラン（昭和電工製、Ｐｕｌｌｕｌａ
ｎ Ｓｈｏｄｅｘ ＳＴＡＮＤＡＲＤ Ｐ−８２）を分
子量標準物質とし、フォメス・フォメンタリウスＪＴＳ
３０４６菌株培養物から得た高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品
の分子量ををゲル過クロマトグラフィーにより測定し
た結果を、第１図及び第２図に示す。
ゲル過法による分子量の分布範囲は１００００−２０
０００で、平均分子量は前者のカラムによる場合は１５
５００、後者のカラムによる場合は１６５００であっ
た。
０００で、平均分子量は前者のカラムによる場合は１５
５００、後者のカラムによる場合は１６５００であっ
た。
他の菌株、フォメス・フォメンタリウス ＩＦＯ ３０
３７１、ＩＦＯ ８２４６、ＡＴＣＣ ２６７０８など
の培養物から得た高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品も、分子量の
分布範囲は１００００−２０００であった。
３７１、ＩＦＯ ８２４６、ＡＴＣＣ ２６７０８など
の培養物から得た高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品も、分子量の
分布範囲は１００００−２０００であった。
以下、本発明の効果について植物ウイルス防除試験の実
施例を挙げて説明する。
施例を挙げて説明する。
実施例５ 実施例１において得られたフォメス・フォメンタリウス
ＪＴＳ ３０４６菌株の菌糸培養物を過し培養液と
菌体を得た。この培養液の抗ウイルス活性をＴＭＶに
ついて検定した。
ＪＴＳ ３０４６菌株の菌糸培養物を過し培養液と
菌体を得た。この培養液の抗ウイルス活性をＴＭＶに
ついて検定した。
同時に、実施例２において得られた各種高分子多糖類と
高分子多糖Ｆ−Ａｂを検定した。
高分子多糖Ｆ−Ａｂを検定した。
検定にはウイルスを接種することによって局部病班を生
ずるタバコ品種（キサンチ・エヌシー）を用いた。検定
用のタバコ植物は直径１２ｃｍの鉢で育成し、展開した
葉の表又は裏側の主脈を境とする班葉に被験液を絵筆で
塗布し、片側の半葉には対照として水を塗布した。試料
処理１日後、葉の表面全面にウイルスを塗抹接種した。
ずるタバコ品種（キサンチ・エヌシー）を用いた。検定
用のタバコ植物は直径１２ｃｍの鉢で育成し、展開した
葉の表又は裏側の主脈を境とする班葉に被験液を絵筆で
塗布し、片側の半葉には対照として水を塗布した。試料
処理１日後、葉の表面全面にウイルスを塗抹接種した。
接種ウイルス濃度は、ＴＭＶが０．０５μｇ／ｍｌとし
た。ウイルス接種３−７日後、接種葉に 現われた病班の数を数え、次式によって防除率を算出し
た。
た。ウイルス接種３−７日後、接種葉に 現われた病班の数を数え、次式によって防除率を算出し
た。
防除率（％）＝｛１−（処理半葉の斑点数；対照半葉の斑点数）｝ｘ１００ 表１〜３に示す結果が得られた。
葉表処理した場合は全ての試料が１００％近い防除値を
示した（表１及び２）。
示した（表１及び２）。
一方、酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂ及び培養液で処理した
場合は、いずれも葉裏処理でも効果が防除率に現われる
のみならず、主脈を境にして処理しなかった半葉側にも
その効果が及ぶことが認められた。即ち、葉に全く試料
を塗抹せずにウイルスを接種した場合に比べて、試料を
塗抹した対照半葉の斑点の絶対数が減少する効果が認め
られた。この結果は、酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂがシステ
ミックに効くことを示している（表３）。
場合は、いずれも葉裏処理でも効果が防除率に現われる
のみならず、主脈を境にして処理しなかった半葉側にも
その効果が及ぶことが認められた。即ち、葉に全く試料
を塗抹せずにウイルスを接種した場合に比べて、試料を
塗抹した対照半葉の斑点の絶対数が減少する効果が認め
られた。この結果は、酸性高分子多糖Ｆ−Ａｂがシステ
ミックに効くことを示している（表３）。
実施例６ 播種後６０日、草丈約４５ｃｍのタバコ（キサンチ・エ
ヌシー）の下葉５枚に培養液及び培養液から得られ
る高分子多糖画分を散布し、散布１日後、その直上位の
３枚の葉に０．０５μｇ／ｍｌのＴＭＶを塗抹接種し
た。無処理対照区には蒸溜水散布を行った。ＴＭＶ接種
三日後に、接種葉に現れた斑点を数え、実施例５に準じ
て防除率を算出した。表−４で明らかなように、タバコ
の一部の葉を本活性成分で処理すると、同一個体の無処
理の葉においても斑点数が減少することから、本活性成
分の効果はシステミックであると結論できる。
ヌシー）の下葉５枚に培養液及び培養液から得られ
る高分子多糖画分を散布し、散布１日後、その直上位の
３枚の葉に０．０５μｇ／ｍｌのＴＭＶを塗抹接種し
た。無処理対照区には蒸溜水散布を行った。ＴＭＶ接種
三日後に、接種葉に現れた斑点を数え、実施例５に準じ
て防除率を算出した。表−４で明らかなように、タバコ
の一部の葉を本活性成分で処理すると、同一個体の無処
理の葉においても斑点数が減少することから、本活性成
分の効果はシステミックであると結論できる。
［発明の効果］ 以上の実施例によって示されたように、高分子多糖Ｆ−
Ａｂは、高いウイルス防除効果を示し、その効果はシス
テミックであることが明らかとなった。また、高分子多
糖Ｆ−Ａｂはフォメス・フォメンタリウスを培養するこ
とにより醗酵工業的に容易に生産できることが示され
た。これにより従来にない、新しい抗植物ウイルス剤の
供給が可能となった。
Ａｂは、高いウイルス防除効果を示し、その効果はシス
テミックであることが明らかとなった。また、高分子多
糖Ｆ−Ａｂはフォメス・フォメンタリウスを培養するこ
とにより醗酵工業的に容易に生産できることが示され
た。これにより従来にない、新しい抗植物ウイルス剤の
供給が可能となった。
第１図及び第２図は高分子多糖Ｆ−Ａｂのゲル過クロ
マトグラムである。点線は高分子多糖Ｆ−Ａｂ、実線は
分子量標準物質プルランを示す。 第１図：ＴＳＫｇｅｌ Ｇ３０００ＰＷＸＬカラムを用
いた場合。 第２図：Ａｓａｈｉｐａｋ ＧＳ−５１０カラムを用い
た場合。 第３図は高分子多糖Ｆ−Ａｂの紫外吸収スペクトルを示
す。 第４図は高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩の、第５図は高分子
多糖Ｆ−Ａｂ標品の赤外吸収スペクトルを示す。 第６図はフォメス・フォメンタリウスＪＴＳ ３０４６
菌株の培養物から得られる高分子多糖類を、Ｚｅｔａ−
Ｐｒｅｐ １００ ＤＥＡＥカラムに吸着させ、ＮａＣ
ｌ濃度を０から４００ｍＭまで直線的に上げつつ溶離液
を分取し、分取液の糖含量を定量してプロットした溶離
曲線である。
マトグラムである。点線は高分子多糖Ｆ−Ａｂ、実線は
分子量標準物質プルランを示す。 第１図：ＴＳＫｇｅｌ Ｇ３０００ＰＷＸＬカラムを用
いた場合。 第２図：Ａｓａｈｉｐａｋ ＧＳ−５１０カラムを用い
た場合。 第３図は高分子多糖Ｆ−Ａｂの紫外吸収スペクトルを示
す。 第４図は高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩の、第５図は高分子
多糖Ｆ−Ａｂ標品の赤外吸収スペクトルを示す。 第６図はフォメス・フォメンタリウスＪＴＳ ３０４６
菌株の培養物から得られる高分子多糖類を、Ｚｅｔａ−
Ｐｒｅｐ １００ ＤＥＡＥカラムに吸着させ、ＮａＣ
ｌ濃度を０から４００ｍＭまで直線的に上げつつ溶離液
を分取し、分取液の糖含量を定量してプロットした溶離
曲線である。
フロントページの続き (72)発明者 福嶋 淳 神奈川県横浜市緑区梅が丘６番地２ 日本 たばこ産業株式会社生命科学研究所内 審査官 谷口 博
Claims (1)
- 【請求項１】次の理化学的性質を有する高分子多糖Ｆ−
Ａｂ。 （１）元素分析 ［高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品塩］ Ｃ： ３６．０％ Ｈ： ６．０％ Ｎ： ０．５％ 灰分： ９．０％ ［高分子多糖Ｆ−Ａｂ標品］ Ｃ： ３７．９％ Ｈ： ５．９％ Ｎ： ０．４％ 灰分： ３．９％ （２）分子量 ゲルろ過クロマトグラフィーを行った結果は第１図及び
第２図に示す通りである。 ゲルろ過法による範囲：１００００〜２００００。 ゲルろ過法による平均分子量：１５５００〜１６５０
０。 （３）施光度 ［α］25 Ｄ＝−３４゜（ｃ＝０．５２％、水溶液） （４）紫外吸収スペクトル 第３図に示す通りである。 （５）赤外吸収スペクトル 第４図及び第５図に示す通りである。 （６）溶媒に対する溶解性 水、ジメチルスルホキシドに可溶。メタノール、エタノ
ール、アセトン、エーテルに不溶。 （７）呈色反応 フェノール・硫酸反応 陽性 カルバゾール・硫酸反応 陽性 ニンヒドリン反応 陰性 （８）塩基性、酸性、中性の別 高分子多糖Ｆ−Ａｂの０．１％水溶液のｐＨは酸性であ
る。 （９）物質の色 白色 （１０）構成糖とその組成 グルコース：グルクロン酸の構成比は９：２．０〜１．
８である。
Priority Applications (8)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63003122A JPH0621121B2 (ja) | 1988-01-12 | 1988-01-12 | 新規高分子多糖Ｆ―Ａｂ及びその製造法 |
| EP89901318A EP0396750B1 (en) | 1988-01-12 | 1989-01-11 | Plant virus controlling agent and process for its preparation |
| DE19893990039 DE3990039T1 (de) | 1988-01-12 | 1989-01-11 | Chemikalien fuer pflanzenschutz und fuer pflanzenvirusbeseitigung und herstellungsverfahren derselben |
| AT89901318T ATE111306T1 (de) | 1988-01-12 | 1989-01-11 | Pflanzenvirusbekämpfungsmittel und verfahren zur herstellung. |
| PCT/JP1989/000021 WO1989006493A1 (en) | 1988-01-12 | 1989-01-11 | Plant virus controlling agent and process for its preparation |
| DE68918269T DE68918269T2 (de) | 1988-01-12 | 1989-01-11 | Pflanzenvirusbekämpfungsmittel und verfahren zur herstellung. |
| NL8920011A NL8920011A (nl) | 1988-01-12 | 1989-01-11 | Chemicalien voor de bescherming van planten en verwijdering van plantvirussen, en het vervaardigen voor een methode daarvan. |
| US07/898,164 US5231088A (en) | 1988-01-12 | 1992-06-12 | Chemicals for protection of plant and removal of plant virus, and producing method thereof |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63003122A JPH0621121B2 (ja) | 1988-01-12 | 1988-01-12 | 新規高分子多糖Ｆ―Ａｂ及びその製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01179692A JPH01179692A (ja) | 1989-07-17 |
| JPH0621121B2 true JPH0621121B2 (ja) | 1994-03-23 |
Family
ID=11548553
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63003122A Expired - Lifetime JPH0621121B2 (ja) | 1988-01-12 | 1988-01-12 | 新規高分子多糖Ｆ―Ａｂ及びその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0621121B2 (ja) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS633121A (ja) * | 1986-06-23 | 1988-01-08 | Sanyo Electric Co Ltd | 燃焼器の制御回路 |
-
1988
- 1988-01-12 JP JP63003122A patent/JPH0621121B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS633121A (ja) * | 1986-06-23 | 1988-01-08 | Sanyo Electric Co Ltd | 燃焼器の制御回路 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH01179692A (ja) | 1989-07-17 |
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