JPH0466083A - α―グルコシダーゼおよびその製造法 - Google Patents
α―グルコシダーゼおよびその製造法Info
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は、新規な熱に安定なα−グルコシダーゼ及びそ
の製造法に係る、特にオリゴ糖例えばマルトトリオース
やマルトース、シュクロースからのグルコースやフルク
トースの生産に用いる好適な熱に安定なα−グルコシダ
ーゼおよびその製造法に関する。
の製造法に係る、特にオリゴ糖例えばマルトトリオース
やマルトース、シュクロースからのグルコースやフルク
トースの生産に用いる好適な熱に安定なα−グルコシダ
ーゼおよびその製造法に関する。
[従来の技術]
α−グルコシダーゼは、酵母、糸状菌、細菌等が生産す
ることが知られている。現在、主に工業的に利用されて
いるのは真核側胞由来の酵素であるが、熱に安定性の高
いα−グルコシダーゼが求められている。かかる観点か
ら、細菌由来の熱に安定なα−グルコシダーゼの開発が
進められている。その結果、バチルス・サーモグルコシ
デイウス菌(Appl、Environ=Microb
iol 、、31,807(1976))、バチルス・
ステアロサーモフィラス菌(5tarch/5tark
e、39,27H1987))から熱に安定なα−グル
コシダーゼが得られているが、いずれも細胞内に存在す
る酵素である。
ることが知られている。現在、主に工業的に利用されて
いるのは真核側胞由来の酵素であるが、熱に安定性の高
いα−グルコシダーゼが求められている。かかる観点か
ら、細菌由来の熱に安定なα−グルコシダーゼの開発が
進められている。その結果、バチルス・サーモグルコシ
デイウス菌(Appl、Environ=Microb
iol 、、31,807(1976))、バチルス・
ステアロサーモフィラス菌(5tarch/5tark
e、39,27H1987))から熱に安定なα−グル
コシダーゼが得られているが、いずれも細胞内に存在す
る酵素である。
ところで、細菌由来のα−グルコシダーゼはその基質特
異性から次の4グループに分けられている(澱粉科学、
31.87(1984)) 。
異性から次の4グループに分けられている(澱粉科学、
31.87(1984)) 。
1)エキソオリゴ−1,6−グルコシダーゼ、2)エキ
ソ−α−1,4−グルコシダーゼ、3)基質特異性の低
いα−グルコシダーゼ、4)マルトースに特異的なα−
グルコシダーゼ。
ソ−α−1,4−グルコシダーゼ、3)基質特異性の低
いα−グルコシダーゼ、4)マルトースに特異的なα−
グルコシダーゼ。
そのうち、バチルス・コアグランス、バチルス・サーモ
グルコシデイウス、バチルス・ステアロサーモフィラス
等由来の至適温度が比較的高いα−グルコシダーゼは、
1)、2)のグループに属する。これらは、いずれもp
−ニトロフェニル−α−D−グルコピラノシドを加水分
解する。近年、p−ニトロフェニル−α−D−グルコピ
ラノシドを加水分解しない熱に安定なα−グルコシダー
ゼが好熱性のバチルス属菌(Bacillus sp、
)から得られている(Appl、Environ、Mi
crobiol、、32,747(1976))が、可
溶性澱粉は分解できない、 製以上のように、好熱性
細菌を中心に熱に安定なα−グルコシダーゼの生産に関
する報告が知られている。しかしながら、生成する酵素
の基質が限定されるため酵素の適用範囲が限られたり、
細胞内に蓄積される酵素であるため酵素を精製して用い
る際には細胞を破壊したり細胞内に由来する各種夾雑物
を除去するなどの操作を必要とし、酵素の安価供給が難
しくなるなど商業的には必ずしも満足すべき酵素が現在
までは得られていない。
グルコシデイウス、バチルス・ステアロサーモフィラス
等由来の至適温度が比較的高いα−グルコシダーゼは、
1)、2)のグループに属する。これらは、いずれもp
−ニトロフェニル−α−D−グルコピラノシドを加水分
解する。近年、p−ニトロフェニル−α−D−グルコピ
ラノシドを加水分解しない熱に安定なα−グルコシダー
ゼが好熱性のバチルス属菌(Bacillus sp、
)から得られている(Appl、Environ、Mi
crobiol、、32,747(1976))が、可
溶性澱粉は分解できない、 製以上のように、好熱性
細菌を中心に熱に安定なα−グルコシダーゼの生産に関
する報告が知られている。しかしながら、生成する酵素
の基質が限定されるため酵素の適用範囲が限られたり、
細胞内に蓄積される酵素であるため酵素を精製して用い
る際には細胞を破壊したり細胞内に由来する各種夾雑物
を除去するなどの操作を必要とし、酵素の安価供給が難
しくなるなど商業的には必ずしも満足すべき酵素が現在
までは得られていない。
また、高温例えば50℃以上好ましくは60℃以上で酵
素反応が行えられれば、反応液の微生物汚染を防止する
うえからも望ましく、また反応の効率化も図れることが
期待され、がかる@Aがら熱に安定な酵素が望まれる。
素反応が行えられれば、反応液の微生物汚染を防止する
うえからも望ましく、また反応の効率化も図れることが
期待され、がかる@Aがら熱に安定な酵素が望まれる。
そこで、本発明の目的は澱粉、マルトトリオース、マル
トース、イソマルトース、シュクロース。
トース、イソマルトース、シュクロース。
プルランなどに作用し、それらからグルコース、フラク
トースなどを効率的に生産できる熱に安定でかつ菌体外
に分泌される酵素及びその酵素製造法を提供することに
ある。即ち、60℃以上に至適温度を有し、中性付近に
至適pHを有し、澱粉。
トースなどを効率的に生産できる熱に安定でかつ菌体外
に分泌される酵素及びその酵素製造法を提供することに
ある。即ち、60℃以上に至適温度を有し、中性付近に
至適pHを有し、澱粉。
マルトトリオース、マルトース、イソマルトース。
シュクロース、プルランなどの種々の基質を加水分解し
、グルコース、フラクトースなどを生成する産業上有用
な熱に安定でかつ菌体外に分泌されるα−グルコシダー
ゼ及びその製造法を提供することにある。
、グルコース、フラクトースなどを生成する産業上有用
な熱に安定でかつ菌体外に分泌されるα−グルコシダー
ゼ及びその製造法を提供することにある。
[問題点を解決するための手段]
本発明者等は、熱に安定でかつ菌体外に分泌され基質特
異性の広いα−グルコシダーゼを得ることを目的に、酵
素及び酵素生産用微生物の探索を行った。その結果、バ
チルス属に属する細菌バチルス・ステアロサーモフィラ
ス5D802菌株)が、熱に安定で基質特異性が広くか
つ菌体外に分泌される従来のα−グルコシダーゼと全く
異なる新規なα−グルコシダーゼを生成することを見い
出し、本発明に至った。
異性の広いα−グルコシダーゼを得ることを目的に、酵
素及び酵素生産用微生物の探索を行った。その結果、バ
チルス属に属する細菌バチルス・ステアロサーモフィラ
ス5D802菌株)が、熱に安定で基質特異性が広くか
つ菌体外に分泌される従来のα−グルコシダーゼと全く
異なる新規なα−グルコシダーゼを生成することを見い
出し、本発明に至った。
本発明のα−グルコシダーゼを生成するバチルス・ステ
アロサーモフィラス菌株(バチルス5D802)は工業
技術院微生物工業技術研究所に寄託している(微工研菌
寄第11535号)。
アロサーモフィラス菌株(バチルス5D802)は工業
技術院微生物工業技術研究所に寄託している(微工研菌
寄第11535号)。
本菌の菌学的性質は以下の表に示す通りである。
試験項目 試験結果
形 態
ダラム染色
芽 胞
胞子嚢
形
位置
カタラーゼ
桿菌
+
わずかに膨出
楕円形
端室〜亜端立
+
運動性
v−P反応
嫌気下での生育
澱粉分解
ゼラチン液化
卵黄反応
グルコースより酸の産生
グルコースよりガスの産生
pH5,7での生育
30℃での生育
40℃での生育
50℃での生育
55℃での生育
65℃での生育
クエン酸塩の利用
5%NaC1存在下での生育
7%NaC1存在下での生育
硝lI!塩還元
+
+
+
+
糖
酸の産生
ガスの産生
L−アラビノース
D−キシロース
D−マンノース
D−フルクトース
D−ガラクトース
麦芽糖
ショ糖
乳糖
トレハロース
D−ソルビット
D−マンニット
イノジット
グリセリン
グルコース
澱粉
+
+
+
+
十
糖からの酸及びガスの産生
これらの性質より、
「バージニーズ・マニュア
ル・オブ・デターミネーティブ・バクテリオロジー」第
8版に基づき本菌をバチルス・ステアロサーモフィラス
と同定した。
8版に基づき本菌をバチルス・ステアロサーモフィラス
と同定した。
しかしながら、これまでにバチルス・ステアロサーモフ
ィラスと同定された微生物の中でα−グルコシダーゼを
菌体外に生産するものは知られていない、従って、本発
明に用いる熱に安定なα−グルコシダーゼ生産菌株は新
規なものであると考えた。
ィラスと同定された微生物の中でα−グルコシダーゼを
菌体外に生産するものは知られていない、従って、本発
明に用いる熱に安定なα−グルコシダーゼ生産菌株は新
規なものであると考えた。
次に、本発明なる熱に安定なα−グルコシダーゼの酵素
特性について記す。
特性について記す。
■ バチルス・ステアロサーモフィラス例えば5D80
2菌株を適当な培地に接種し、生育温度40℃〜65℃
にて、10時間〜60時間、好気的に培養したところ、
培地中にα−グルコシダーゼが蓄積し培養が進むに従い
α−グルコシダーゼの培地中への蓄積が増加してきた。
2菌株を適当な培地に接種し、生育温度40℃〜65℃
にて、10時間〜60時間、好気的に培養したところ、
培地中にα−グルコシダーゼが蓄積し培養が進むに従い
α−グルコシダーゼの培地中への蓄積が増加してきた。
培養液〔例えばグルコース2%、硫酸アンモニウム0.
5%、リン酸2カリウム0.1%、硫酸マグネシウム
0゜02%、酵母エキス0.02%を含む培地(pH7
に調!II)2000mlを滅菌後、内容積5000m
lの培養槽に分注し、好気的に55℃でバチルス5D8
02菌株を培養せしめた〕を採取し、6000rpmで
遠心分離し菌体を除去する。この上澄液にα−グルコシ
ダーゼ・活性が顕著に認められ、菌体面分にはわずかの
活性しか認められない。さらにこの上澄液を用い、硫酸
アンモニウム沈澱(20%〜60%飽和画分)さらには
イオン交換クロマトグラフィー、ゲル渡過クロマトグラ
フィー等を適宜利用して酵素を精製取得できる。
5%、リン酸2カリウム0.1%、硫酸マグネシウム
0゜02%、酵母エキス0.02%を含む培地(pH7
に調!II)2000mlを滅菌後、内容積5000m
lの培養槽に分注し、好気的に55℃でバチルス5D8
02菌株を培養せしめた〕を採取し、6000rpmで
遠心分離し菌体を除去する。この上澄液にα−グルコシ
ダーゼ・活性が顕著に認められ、菌体面分にはわずかの
活性しか認められない。さらにこの上澄液を用い、硫酸
アンモニウム沈澱(20%〜60%飽和画分)さらには
イオン交換クロマトグラフィー、ゲル渡過クロマトグラ
フィー等を適宜利用して酵素を精製取得できる。
これらのことより、本発明のα−グルコシダーゼは菌体
外に分泌される酵素であると考えられる。
外に分泌される酵素であると考えられる。
なお、α−グルコシダーゼ活性は以下のように測定した
。酵素溶液0.01m1と0.05Mリン酸緩衝液(p
H6,5)0.4mlと2%可溶性澱粉0.5mlを混
合し、65℃、30分反応後。
。酵素溶液0.01m1と0.05Mリン酸緩衝液(p
H6,5)0.4mlと2%可溶性澱粉0.5mlを混
合し、65℃、30分反応後。
5分間の煮沸によって反応を停止させた。次に、この反
応停止液から0.1mlを採取し、グルコース検査試薬
(グルコースB−テストワコー;和光線薬工業(株))
を3 m l加え、35℃、 30分反応させた後、
505nmでの吸光度を分光光度計を用いて測定した。
応停止液から0.1mlを採取し、グルコース検査試薬
(グルコースB−テストワコー;和光線薬工業(株))
を3 m l加え、35℃、 30分反応させた後、
505nmでの吸光度を分光光度計を用いて測定した。
また、可溶性澱粉の代わりにP−ニトロブエニルーα−
D−グルコピラノシドを用いる場合は、反応溶液中に最
終濃度が0゜1%になるように調整し反応させ、400
nmでの吸光度を測定した。そして、1分間当り1μm
O1のp−ニトロフェニル−α−D−グルコピラノシド
を加水分解する酵素量を1単位とした。
D−グルコピラノシドを用いる場合は、反応溶液中に最
終濃度が0゜1%になるように調整し反応させ、400
nmでの吸光度を測定した。そして、1分間当り1μm
O1のp−ニトロフェニル−α−D−グルコピラノシド
を加水分解する酵素量を1単位とした。
■作用
α−グルコシド結合を加水分解してグルコースを生成す
る。
る。
■基質特異性
可溶性澱粉(関東化学(株)I[)、プルラン。
マルトース、マルトトリオース、イソマルトース、シュ
クロース、ツラノース、フェニル−α−D−グルコピラ
ノシド、P−ニトロフェニル−α−D−グルコピラノシ
ド、グリコーゲンを基質として分解活性を調べたところ
、いずれの場合も顕著なグルコースの生成が認められた
。以上より、本酵素は基質特異性の広いα−グルコシダ
ーゼと考えられた。尚、反応生成物は、前述の方法と薄
層クロマトグラフ法と高速液体クロマトグラフ法で調べ
、確かにグルコースが生成されていることが認められた
。
クロース、ツラノース、フェニル−α−D−グルコピラ
ノシド、P−ニトロフェニル−α−D−グルコピラノシ
ド、グリコーゲンを基質として分解活性を調べたところ
、いずれの場合も顕著なグルコースの生成が認められた
。以上より、本酵素は基質特異性の広いα−グルコシダ
ーゼと考えられた。尚、反応生成物は、前述の方法と薄
層クロマトグラフ法と高速液体クロマトグラフ法で調べ
、確かにグルコースが生成されていることが認められた
。
■作用pH
可溶性澱粉を基質として各種pH(リンam衝液;pH
6,1〜7.7)、60℃で測定したところ、至適pH
は6.8付近であった。さらにpH6,3〜7.0の範
囲で最高活性の80%以上の活性が認められた。
6,1〜7.7)、60℃で測定したところ、至適pH
は6.8付近であった。さらにpH6,3〜7.0の範
囲で最高活性の80%以上の活性が認められた。
■作用温度
可溶性澱粉を基質としてpH6,5、各種温度(40℃
〜80℃)で反応させたところ、至適温度は60℃〜6
5℃であった。また、50℃〜70℃の範囲で最高活性
の約60%以上を示した。
〜80℃)で反応させたところ、至適温度は60℃〜6
5℃であった。また、50℃〜70℃の範囲で最高活性
の約60%以上を示した。
■熱安定性
pH6,5,各種温度で30分処理したところ、65℃
までは安定で初期の活性のほぼ80%以上の活性を維持
し、熱に安定であった。その結果は以下の表に示す。
までは安定で初期の活性のほぼ80%以上の活性を維持
し、熱に安定であった。その結果は以下の表に示す。
■分子量
本酵素の分子量は、正確には決定されていないが、セフ
ァデックスG−150を用いたゲル濾過法から4000
0〜5ooooの範囲であった。
ァデックスG−150を用いたゲル濾過法から4000
0〜5ooooの範囲であった。
次に本発明に用いられる培地について説明する。
本発明に用いられる培地には、安価に入手し得る公知の
各種材料を使用することが出来る。例えば、窒素源とし
ては、コーン・ステイープ・リカーポリペプトン、大豆
粉、フスマエキス、肉エキス、酵母エキス、アミノ酸液
などであり、炭素源としては、水飴、マルトース、各種
澱粉、可溶性澱粉、澱粉液化液、デキストリン、プルラ
ン等である。
各種材料を使用することが出来る。例えば、窒素源とし
ては、コーン・ステイープ・リカーポリペプトン、大豆
粉、フスマエキス、肉エキス、酵母エキス、アミノ酸液
などであり、炭素源としては、水飴、マルトース、各種
澱粉、可溶性澱粉、澱粉液化液、デキストリン、プルラ
ン等である。
また、これらの炭素源や窒素源の他に各種の塩、例えば
マグネシウム塩、カリウム塩、リン酸塩、鉄塩などの無
機塩や各種ビタミンを必要により添加する。
マグネシウム塩、カリウム塩、リン酸塩、鉄塩などの無
機塩や各種ビタミンを必要により添加する。
本発明の上記方法において使用するのに適した培地は、
例えばグルコース2%、硫酸アンモニウム0. 5%、
リン1m2カリウム0.1%、硫酸マグネシウム0.0
2%、W#母エキス0.02%を含有する液体培地であ
る。
例えばグルコース2%、硫酸アンモニウム0. 5%、
リン1m2カリウム0.1%、硫酸マグネシウム0.0
2%、W#母エキス0.02%を含有する液体培地であ
る。
また、本発明の方法で使用する微生物の生育pHは弱酸
性から弱塩基性の範囲であるので、適当なPH調整剤を
用いて培地のPHを調整する必要がある。そのために種
々の緩衝液を用いることが出来ルカ、0.2%〜1%程
度の炭酸カルシウムなどを用いることが特に便利である
。
性から弱塩基性の範囲であるので、適当なPH調整剤を
用いて培地のPHを調整する必要がある。そのために種
々の緩衝液を用いることが出来ルカ、0.2%〜1%程
度の炭酸カルシウムなどを用いることが特に便利である
。
次に、本発明の新規な熱に安定なα−グルコシダーゼの
精製法について説明する。バチルス・ステアロサーモフ
ィラス例えば5D802菌株のような新規な熱に安定な
α−グルコシダーゼ生産菌を適当な培地に摂取し、その
生育温度の観点から約り0℃〜約70℃まで、好ましく
は55℃付近、10時間〜60時間、好気的に培養する
ことにより培養液中に菌体外分泌型酵素としてα−グル
コシダーゼと同定された酵素が蓄積される。培養後、培
養上澄液に蓄積される菌体外に分泌される酵素は、粗酵
素液として遠心分離(6000rpm)により菌体を除
去することにより得られる。この粗酵素液をそのまま用
いることが経済的で有利であるが、これを更にw製して
使用することもできる。精製のために、例えば硫酸アン
モニウム等の塩析、エタノール、アセトン、イソプロパ
ツール等による溶媒沈澱法、限外減退法、イオン交換ク
ロマトグラフ法等による一般的な酵素精製法を用いるこ
とが出来る。
精製法について説明する。バチルス・ステアロサーモフ
ィラス例えば5D802菌株のような新規な熱に安定な
α−グルコシダーゼ生産菌を適当な培地に摂取し、その
生育温度の観点から約り0℃〜約70℃まで、好ましく
は55℃付近、10時間〜60時間、好気的に培養する
ことにより培養液中に菌体外分泌型酵素としてα−グル
コシダーゼと同定された酵素が蓄積される。培養後、培
養上澄液に蓄積される菌体外に分泌される酵素は、粗酵
素液として遠心分離(6000rpm)により菌体を除
去することにより得られる。この粗酵素液をそのまま用
いることが経済的で有利であるが、これを更にw製して
使用することもできる。精製のために、例えば硫酸アン
モニウム等の塩析、エタノール、アセトン、イソプロパ
ツール等による溶媒沈澱法、限外減退法、イオン交換ク
ロマトグラフ法等による一般的な酵素精製法を用いるこ
とが出来る。
[発明の効果]
本発明の方法により製造せる新規な熱に安定なα−グル
コシダーゼを可溶性澱粉の加水分解に用いれば、従来行
ってきたようなpHの調整(現在。
コシダーゼを可溶性澱粉の加水分解に用いれば、従来行
ってきたようなpHの調整(現在。
澱粉の液化は主にpH6〜7で行われているが、糖化工
程では糖化酵素の至適pHが4〜5であるため酸性にp
Hを調整している。)が不用となる。
程では糖化酵素の至適pHが4〜5であるため酸性にp
Hを調整している。)が不用となる。
さらに1本酵素をシュクロース、プルラン、イソマルト
ース、マルトースなど種々の糖類に作用させることで、
グルコースやフルクトースを容易に生産できるなど、広
範な原料からのグルコースヤフルクトースなどの単糖製
造に用いることができる。さらに、至適温度が60℃〜
65℃であるため、通常中性領域かつ50℃以下で澱粉
糖のような単糖生産反応を実施した場合には、微生物汚
染に伴う様々な障害が知られているが、本酵素を用いる
ことで高温条件下で生産反応を行えるため、このような
障害から逃れることができ、また反応効率のアップが図
れると考えられる。
ース、マルトースなど種々の糖類に作用させることで、
グルコースやフルクトースを容易に生産できるなど、広
範な原料からのグルコースヤフルクトースなどの単糖製
造に用いることができる。さらに、至適温度が60℃〜
65℃であるため、通常中性領域かつ50℃以下で澱粉
糖のような単糖生産反応を実施した場合には、微生物汚
染に伴う様々な障害が知られているが、本酵素を用いる
ことで高温条件下で生産反応を行えるため、このような
障害から逃れることができ、また反応効率のアップが図
れると考えられる。
かくして1本発明によって経済的に有利に単糖の生産等
に用いる酵素ならびにその酵素の製造法が提供される。
に用いる酵素ならびにその酵素の製造法が提供される。
[発明の実施例]
以下、実施例に従って本発明の新規な熱に安定な単糖の
製造等に用いるα−グルコシダーゼ及びその製造法につ
き具体的に説明する。しかしながら1本発明の範囲は以
下の実施例によって何等制限されるものでない。
製造等に用いるα−グルコシダーゼ及びその製造法につ
き具体的に説明する。しかしながら1本発明の範囲は以
下の実施例によって何等制限されるものでない。
実施例1
バチルス5D802菌株を500 m l容の三角フラ
スコのグルコース2%、硫酸アンモニウム0゜5%、リ
ン酸2カリウム0.1%、硫酸マグネシウム0.02%
、酵母エキス0.02%を含む培地(p H7) 10
0 m lに植菌し、55℃、20時間、18Qrpm
で回転振とう培養した。次に、培養液を6000rpm
、4℃で30分間遠心分離して菌体を除去し、粗酵素液
87 m lを得た。
スコのグルコース2%、硫酸アンモニウム0゜5%、リ
ン酸2カリウム0.1%、硫酸マグネシウム0.02%
、酵母エキス0.02%を含む培地(p H7) 10
0 m lに植菌し、55℃、20時間、18Qrpm
で回転振とう培養した。次に、培養液を6000rpm
、4℃で30分間遠心分離して菌体を除去し、粗酵素液
87 m lを得た。
尚、上澄液の活性はマルトースを基質として1分間に1
m gのグルコースを生成する酵素量を1単位とした
とき、0.1単位/mlであった。
m gのグルコースを生成する酵素量を1単位とした
とき、0.1単位/mlであった。
実施例2
実施例1に示した培養上澄液に、硫酸アンモニウムを2
0〜60%飽和となるように添加し、生成した粗酵素沈
澱を20 m Mのリン酸カリウム緩衝液に溶解後、透
析した。該サンプルをイオン交換クロマトグラフィー(
DEAE−セファデックスA−50、ファルマシアII
)を行い、0〜0゜5Mの塩化ナトリウム500 m
lで溶出を行った。
0〜60%飽和となるように添加し、生成した粗酵素沈
澱を20 m Mのリン酸カリウム緩衝液に溶解後、透
析した。該サンプルをイオン交換クロマトグラフィー(
DEAE−セファデックスA−50、ファルマシアII
)を行い、0〜0゜5Mの塩化ナトリウム500 m
lで溶出を行った。
このイオン交換クロマトグラフィーでグルコシダーゼ活
性が認められる部位を限外減退濃縮後、ゲル減退クロマ
トグラフィー(セファデックスG−150、ファルマシ
ア製)を行った。ゲル濾過におけるグルコシダーゼ活性
を有するピークの比活性は上澄液の比活性に比べ約30
倍に向上した。
性が認められる部位を限外減退濃縮後、ゲル減退クロマ
トグラフィー(セファデックスG−150、ファルマシ
ア製)を行った。ゲル濾過におけるグルコシダーゼ活性
を有するピークの比活性は上澄液の比活性に比べ約30
倍に向上した。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、バチルス属細菌が生産する菌体外に分泌する以下の
性質を有する熱に安定なα−グルコシダーゼ; [1]作用 α−グルコシド結合を加水分解してグルコースを生成す
る。 [2]作用pH 至適pHは6.8付近で、pH6.3〜7.0の範囲で
最高活性の約80%以上を示す。[3]作用温度 至適温度は60℃〜65℃付近で、50℃〜70℃の範
囲で最高活性の約60%以上を示す。 [4]基質特異性 可溶性澱粉、マルトース、イソマルトース、マルトトリ
オース、プルラン、シユクロース、ツラノースなどに作
用しグルコースを遊離する。 [5]安定性 pH6.5において65℃、30分間保持したとき、当
初における活性の少なくともほぼ80%を保持すること
ができる。 2、バチルスSD802、またはその変異株からなる菌
株を培養し、培養物から特許請求の範囲第1項記載のα
−グルコシダーゼを回収することを特徴とする熱に安定
なα−グルコシダーゼの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17716890A JPH0466083A (ja) | 1990-07-04 | 1990-07-04 | α―グルコシダーゼおよびその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17716890A JPH0466083A (ja) | 1990-07-04 | 1990-07-04 | α―グルコシダーゼおよびその製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0466083A true JPH0466083A (ja) | 1992-03-02 |
Family
ID=16026379
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP17716890A Pending JPH0466083A (ja) | 1990-07-04 | 1990-07-04 | α―グルコシダーゼおよびその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0466083A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0670795A (ja) * | 1992-06-30 | 1994-03-15 | Nitto Boseki Co Ltd | 1,5−アンヒドログルシトールの定量法 |
JPH0716099A (ja) * | 1992-05-04 | 1995-01-20 | Modrovich Ivan E | 改良された安定な単一液体アルファ−アミラーゼ用試薬 |
-
1990
- 1990-07-04 JP JP17716890A patent/JPH0466083A/ja active Pending
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0716099A (ja) * | 1992-05-04 | 1995-01-20 | Modrovich Ivan E | 改良された安定な単一液体アルファ−アミラーゼ用試薬 |
JPH0670795A (ja) * | 1992-06-30 | 1994-03-15 | Nitto Boseki Co Ltd | 1,5−アンヒドログルシトールの定量法 |
JPH0767395B2 (ja) * | 1992-06-30 | 1995-07-26 | 日東紡績株式会社 | 1,5−アンヒドログルシトールの定量法 |
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