JPH04502105A - 酵素安定化 - Google Patents
酵素安定化Info
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- JPH04502105A JPH04502105A JP2500226A JP50022689A JPH04502105A JP H04502105 A JPH04502105 A JP H04502105A JP 2500226 A JP2500226 A JP 2500226A JP 50022689 A JP50022689 A JP 50022689A JP H04502105 A JPH04502105 A JP H04502105A
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/96—Stabilising an enzyme by forming an adduct or a composition; Forming enzyme conjugates
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はたんばく質類の安定化に関し、特に、しかしこれのみに限らない乾燥状
態に8ける酵素類の安定化に関する。
溶液に、本来、安定する酵素類は数少ない。 多くのものは溶液中にあっては変
成する傾向がある。 多くの研究者は当該溶液に糖類又はグリセロールといった
化合物を添加したり、又は冷凍乾燥によって酵素類を安定化することを試みてき
た。 こうした方法はしばしば活性度の喪失の原因となる。他方、別な方法とし
てセルロウス ファイバー又はポリアクリルアミドのごとき固体支持の存在下、
安定剤で酵素類を乾燥するものもある。 [JS4451569はアラビノーゼ
、グルコース、キシリトール及びソルビトールを含む数多くの糖類の1つで酵素
を冷凍することによるグルタチオン ペルオキシダーゼの安定化を開示している
。 冷凍乾燥は大規模での操業では高値な費用がかかり、かつしばしば変成を豐
す。
PCT/GB86100369は、1iII′lRトレハロースの使用による蛋
白質類の安定化について開示している。
本発明の第一の特徴によれば、乾燥に際して蛋白質類をその変成から防ぐ方法は
、蛋白質水溶液を水溶性陽イオン高分子電解質及びサイクリック ポリオールと
混合し、かつ該水溶液から水を除去することからなる。
本発明にもとすく安定化でもって新鮮に乾燥した酵素類及び他の蛋白質類の活性
を増大させる。 貯蔵での安定化もまた増大する。
前期蛋白質類は酵素類、抗体類、抗原類、血清補体、牛痘戊分及び生物活性ペプ
チドを含むものである。
蛋白類、特に酵素類の乾燥は数多くの適用面、例えば使用前に長期間貯蔵される
かもしれない試片のごとき診断又は分析助成での使用の際に重要である。
溶液中での酵素類又は他の蛋白fl類の輸送は不便であるしまた高値でもある。
冷凍乾燥が用いられるかもしれないが、本発明によれば変成を起こすことなく真
空乾燥及び空気乾燥の使用を促進しうる。真空乾燥及び空気乾燥はその操作が簡
単であり極めて安値である。
サイクリック ポリオールは1つ又は複数の脂環リングを含むものでもよく又少
なくとも1つの側鎖を持つものでもよい。 5及至10の水酸基を有する化合物
が好ましい。 非還元ポリ−オル類も好ましい。 三糖及び三糖類は特に有効で
あるが、その他のサイクリックポリオール類、例えば、イノシトールも又使用可
能である。該ポリオールは酵素又は他の蛋白質及び高分子電解質に適ごうするよ
うに選択され得る。 ラクチトール、ラクトーゼ、マルトーゼ及びスフローゼは
数多くの適用に好適であることが判明しているDEAE−デキストランと併用し
て特に好ましい。 ソルビトールはコレステロール オキシタ−ゼ、コレステロ
ール エステラーゼ 及び他の酵素類と併用するのに好適である。 七ロビオー
ゼも又使用可能である。 ポリオールの量は1及至20%の範囲が好ましく、よ
り好ましくは2及至】0%、最も好ましくは5至及10%の範囲である。
陽イオン高分子電解質は分子鎖に沿って分配された陽イオン基を持つポリマーカ
好ましい。好ましくは機能を誘導された4つのアンモニウム基が好適な前記陽イ
オン基は鎖からぶら下がった側鎖基に配置されるか、又はその中に組み込まれ得
る。 天然又は合成ポリマーは使用可能である。多糖類のごとき天然ポリマーは
好適である。何故ならば多くの合成ポリマーは無機重合触媒の残余トレースを含
むからである。
ジエチルアミノエチル デキストラン(DEAE−デキストラン)及びキトサン
は好適であるが、ポリエチレンイミンも又好適である。 MW5000及至50
0000を有する多糖類、好ましくは5000及至20000、より好ましくは
5000及至10000である。 0.1及至lO%の量が好適であり、特に0
,5及至2%がより好適である。
本発明による酵素類が乾燥されるPHは乾燥の際及びその後の貯蔵に関して活性
を最大限活用するために重要である。特定の酵素の最適のPHは簡単な実験によ
って決定しうる。
アルコール オキシダーゼはPH7及至8の間、好ましくはPH7−8で活性を
保持するよう形成されている。
前記ソース(source)にもとず〈コレステロールオキシダーゼはPH5又
は9で最も好ましく乾燥する。
ウリカーゼはF’H9で乾燥されうる。
前記ソースにもとずくコレステロールエストラーゼはPH7又は9で乾燥されう
る。
乾燥は、好ましくは湿潤剤の存在下でなされるのが好ましい。 4度及至50度
の間、好ましくは25度から35度の温度である。
本発明の第2の特徴は蛋白質、サイクリック ポリオール及び陽イオン高分子電
解質を含む乾燥生成物を提供することにある。
前記乾燥生成物はフリーランニング粉末であり、又は試片、その他の分析用又は
診療用装置の1部分からなる。
以下、本発明を実施例にもとすいて述べるが、該実施例のものに限定されるもの
ではない。
実験手法
当該明細書で使用するパーセンテージは特に記載されない限り重量比である。
安定化システムはすべて安定なPH条件を維持するため緩衝液を使用するN a
HyP 042 H2O(6,084g)及びNa、Hpo、2HzO(10
゜855 g)を含む緩衝液をリッターにつき100ミリモルの濃度でPH7,
0の溶液を作るため1.0リツターの蒸留水中に溶解させた。
他の緩衝液としてはMOPS (4−モルホリン プロパン硫酸)で52゜25
/2.51蒸留水、4.0M、NaOHの7.87までのPHである。
湿潤剤は酵素システムがポリスチレン キュベツト(cuvette)内で安定
化されているかどうかによって使用されうる。 好適な湿潤剤はパイ;(Byc
o)Aと呼ばれるゼラチンからの蛋白加水分解物である。これらはりン酸塩緩衝
液中において1%w / vまで作り得る。 必要に際して100mmo1.1
−’、PH7−0までなし得る。
酵素溶液は使用の前に新鮮なものを用意した。 硫酸アンモニラ溶液中の貯蔵酵
素溶液はすべての塩類を除去するI;め、例えばmmol、1’−リン酸緩衝液
PH7,0について透析された。
貯蔵酵素濃度は溶液ミリリッタについて活性単位10がら1000である。 蛋
白濃度については0.5及至200mgcm−”である。 代表的には最終蛋白
濃度は1.0mgcm”であっI;。
可溶解性高分子電解質、ポリオール、酵素、緩衝塩及び湿潤剤(使われるならば
)一定温度で混合され、デシカン((dessicant)例えば、シリカゲル
0.1mm/Hg、30KCで4及至10時間、真空オープンで乾燥された。
オキシダーゼ酵素群は酵素の活性により生成されt;過酸化水素の比色検出によ
って検定されされうる。 ペルオキシダーゼは芳香族アルコール又はアミン及び
複素環式化合物4−アミノアンティビリンの存在下で生成された過酸化水素に作
用し、キノンイミン染料を作り出す。 その他の標準的検定システムとしては、
例えばu、v、分光計を使用することである。
下記のシステムが用いられた。
システム l
フェノール スルホン厳 25 mmol、l−14−アミノアンティビリン
0.4mmo1.l−’ペルオキシダーゼ 1000 ユニット/1生成染料は
500nmで測定された。
システム 2
3.5ジクロロ 2−石炭酸
スルホン酸 10mmo1.l−’
4−アミノアンティビリン 0.4mmo1.I−’ペルオキシダーゼ 100
0 ユニット/1生成染料は520nmで測定された。
探準温度、例えば25度C及び温置時間、例えば5分を採用した。 試薬生成品
(blanks)は基体を除いて総ての成分を含むものであった。 キュベツト
(cuvettes)内での乾燥調整は直接システム1又は2によって再構成さ
れた。
乾燥粉末調合されたものはリン酸塩緩衝液で再構成され、適当なアリコツトがシ
ステムl又は2に加えられた。
安定化目的から、貯蔵温度は37度Cであり、酵素の残存活性を調べるために定
期的にサンプルを摘出した。 この手法はテストされたすべての酵素j;ついて
標準的なものであった。
可溶解性高分子電解質及び糖アルコール又は糖類可溶解性高分子電解質
可溶解性高分子電解質は、通常lO%w/vであるが、20%までの濃度の蒸留
水中に溶解された。 これらの溶液4度Cで貯蔵され調合後4週間以内に使用さ
れた。
実施例 l
溶液 I DEAE−デキストラン10% 100uJラクチトール 20%
500ul
バイコA 1% 100ul
溶液 2 アルコール オキシダーゼ7ユニツト 35u 1(1,7mg 蛋
白質
リン酸塩緩衝液 100mmo1.l−’ 265ulPH7,0
溶液lは4度Cで溶液2をゆっくりと添加しながら絶えず撹拌した。 該混合物
は完全に混合するように5分間撹拌された。 キュベツト内で0.1°m1の量
が上述のごとく乾燥され、37度Cで貯蔵され、かつ上述したごとく活性を検定
した。、(表 1)
実施例 2
ffJHl アルコール オキシダーゼ 2411ユニツト 2.7cm3(=
422mg蛋白質)リン酸塩緩衝液中300mmo1.l−’
溶液 2 ラクチド・−ル20%w/v 3.0cm3DEAE−デキストラン
lO% w/v O,27crr、”溶液2は撹拌しながら溶液lにゆっくり添
加した。 該混合液はペトリ皿にピペットで移され、8時間、30度Cでシリカ
ゲル上で真空乾燥されることで薄いガラス状の膜の乾燥酵素及び安定剤が生成し
た。 該安定剤は除去されガラスの乳棒と乳鉢とで微細粉末にした。
安定化テスト目的で、酵素粉末10mgを無菌ポリスチレン管内に置きシリカゲ
ル上密封容器内で37度Cで装置した。 サンプルを定期的に取り出し蒸留水中
で再構成した。 再構成しl;酵素溶液60u1をベルオキシダーゼ及び色試薬
を含む各検定キュベツト上述のごとく添加した。(表 2)実施例 3
溶液 I DEAE−デキストラン lO%w/v 100ulラクチトール
20%w / v 500 u 1バイコA 1%w/v 100ul
溶液 2 コリン オキシダーゼ 10ユニツト(Q、794mg蛋白質)リン
酸塩中、PH7,O100cm300u l
溶液2を撹拌下、溶液1に添加し4度Cで完全に混合した。0.1cm3の量を
上述のごとくキュベツト内で真空乾燥し37度Cで貯蔵して上述のごとく活性を
検定した。(表3)
実施例 4
グリセロール 3 リン酸塩オキシダーゼ溶液 l DEAE−デキストラン
10%w / v I 00 u 1ラクヂl−−ル 20%w/v 500u
lバイコA 1%w/v 100ul
iWe2 グリセロール 3 リン酸塩オキ/ターゼlOユニット(0,526
mg蛋白質)PH7,0、リン酸塩緩衝液中 300u 1
溶液2を4度Cで溶液lに撹拌下添加し、完全に混合した。 0.1cm3の量
を上述のごとくキュベツト内で真空乾燥しI;。(表4)実施例 5
溶液 I DEAE−デキストラン 10% l00ulラクトース 20%
500u l
バイコA 1% 1ooui
溶液 2 アルコール オキシダーゼ 5ユニツト(PH7,0、リン酸塩10
0mmo1.I−’中1.0mg蛋白質00u I
溶液lを4度Cで溶液2にゆっくりと添加しながら絶えず撹拌した。 完全に混
合したO、1cm”の量が上述したごとくキュベツト内で乾燥されたことを確認
するため5分間前記混合物を撹拌した。 (表5)可溶性多糖類
可溶性多糖類を、通常10%w / vの濃度であるが、30%w / vの濃
度までの蒸留水中で溶解した。 これら溶液は調合後4週間以内に使用され、4
度Cで貯蔵した。
実施例 6
溶液 l デキストラン(分子wt、10000) l 00u llO%w/
v
バイコA 1%w / v l 00 u 1蒸留水 500u l
溶液 2 アルコール オキシダーゼ7ユニット(1,32mg蛋白質)PH7
,0での100mmo1.l−’りく酸塩中 300u l
溶液2を4)度Cで、撹拌子溶液1に添加し、完全な混合を確認するため5分間
該撹拌を継続した。 O,1cm3の量をキュベツト内で真空乾燥し37度Cで
貯蔵して上述のごとく活性を検定した。
異なる分子重量のデキストランが使用された場合は安定化の変化が注目さJ’1
.lこ。(表6)
実施例 7
溶液 l デキストラン分子wi ]、oooo 500u 110%w /
v溶液
リン酸塩緩衛液10mmo1.l−’
PH7,0300ul
溶液 2 ガラクトース オキシダーゼ 0.52ユニツト(0,8mg蛋白j
!j)PH7,0でのIOmmol、l−’リン酸塩緩衝液中
溶液2を4度Cで、撹拌子溶液lに添加し、完全な混合を確認するため5分間該
撹拌を継続した。 アリコート1mlを真空乾燥した。37度Cで貯蔵し上述の
ごとく活性を検定した。(表7)サイクリック ポリアルコール
サイクリ・り ポリアルコールを10%W/Vの濃度まで蒸留水中で溶解した。
該溶液を4度Cで貯蔵し調合後4週間以内に使用した。
実施例 8
溶液 l イノ/1−−ル10%w/v 500ul蒸留水 200u l
溶液 2 アルコール オキソダーゼ4.フユニットリン酸塩緩衝液100mm
o1.I−’中、91.15mg/蛋白質00u I
溶液2を4度Cで、撹拌子溶液1に添加し、完全な混合を確認するため5分間該
撹拌を継続した。 アリコート0.1cm’を真空乾燥した。37度で貯蔵し上
述のごとく活性を検定した。(表8)実施例 9
溶液 l イノントール lO%w/v 500ulリン酸塩緩衝液100mm
o1.l−’PH7,0300ul
溶液 2 ガラクトース オキシダーゼ0.52ユニツト(0,8mg蛋白質)
リン酸塩10mmo1.1−’PH7,000u l
溶液2を4度Cで、撹拌子溶液lに添加し、完全な混合を確認するため5分間該
撹拌を継続した。 アリコー)[,1cm’を上述のごとく真空乾燥し、37度
Cで貯蔵し、上述のごとく活性を検定した。(表9)実施例 10
下記の結果はアルコール オキシダーゼ(Hansenula polymor
pha)の安定化を示す。
非安定化酵素は7日間の37度Cでの@直後26%の活性を保持しtこ。
上記キトサンの添加で9日間後48.9%活性緩化を保持した。 新鮮1こ乾燥
された酵素に関する活性化は37度Cでの@直後測定された。
16 86.1
ラクチトール5% 1 87.4
キトサン0.01% 6 87.2
ポリエチレンイミン0.1% 6 77、5ラクチト一ル5% 1 91.1
ポリエチレンイミン0.01% 6 84.4ラクチト一ル5% 1 94.9
DEAE−デキストラン 0.1% 6 85.1ラクチト一ル5% 1 98
.3
DEAE−デキストラ 6 88.8
実施例 II
下記の結果はアルコール オキシダーゼ(Pichia pastoriS)の
安定化を示す。 非安定化酵素は37度Cで2日後及び13日後活性度をそれぞ
れ49.8%及び36.1%を示した。 乾燥に際して増大されI;活性度は(
即ちl−%より大である)阻害不純物の選択的劣化に起因する。
ラクチトール5% 1 102.5
DEAE−デキストラン 4 116.6実施例 12
下記の結果はコレステロール オキシダーゼ(Neocardia eryth
opolis)の安定化を示す。 非安定化酵素は37度Cでの14日後活性度
34.3%を保持した。
ラクチトール5% 3 96.2
DEAE−デキストラン1% 5 IO2,61091,7
実施例 13
下記の結果は冷凍乾燥ウリカーゼの安定化を示す。
ラクチトール5% 109.9
DEAE−デキストラン1% 5 114.3実施例 14
下記の結果は非乾燥酵素の活性化と比較した乾燥中においてラクチトール(15
%)及びDEAE−デキストラン(1%)を有する各種の酵素の安定化を示す。
(Pichia)
コリンオキシダーゼ 63.3 97.7乳酸塩 77.1 90.0
アルコール オキシダーゼ
(Hensenula polymorpha)68.2 119.6
コレステロール オキシダーゼ
(IL空乾燥) 80.6 92.5
(イノシトール5%)
(冷凍乾燥) 79.0 91.0
調合 装置37度C新鮮に乾燥した酵素の活性度と対比した残余活性
ラクチトール10% 7日 120
DEAE−デキストラン1% 14日 114非活性酵素は7日後26%の活性
度を保持した。
表 2
半製品(bulk)調合 装置37度C新鮮に乾燥した酵素と対比した保持活性
度%
アルコール オキシダーゼ 12日 121非活性酵素は4日後34%の活性度
を保持した。
表 3
調合 装置37度 新鮮に乾燥した酵素の活性度と対比した残余活性
DEAE−デキストラン1% 5日 84ラクチト一ル10% 10日 81
表 4
調合 偏置37度C新鮮に乾燥した酵素の活性度と対比した残余活性
度%
グリセロール3 リン酸塩
オクンダーゼ 1日 104
5日 120
DEAE−デキストラン1% 10日 117非活性酵素は1日後94%の活性
度を示し、15日後は54%であった。
表 5
調合 偏置37度C新鮮に乾燥した酵素の活性度と対比した残余活性
DEAE−デキストラ〉・1%v【/voi 6日 103乳糖lO%wt/v
ol l 0日 108調合 (新鮮に乾燥した酵素と対比した)残余活性度M
WL。
T2O400008275−’ 61 64T7070000 84 86 6
5 60T500 500000 83 86 62 49非活性酵素は6日後
30%の活性度を示した。
デキストラン 濃度5%(M、Wloooo)偏置37度C新鮮に乾燥した酵素
の活性度と対比した残余調合 偏置37度C新鮮に乾燥した酵素の活性度と対比
した残余活性
度%
アルコール
非活性酵素は7日後26%の活性度を示した。
表 9
調合 偏置37度C 新鮮に乾燥した酵素の活性度と対比しt;残余活性
国際調査報告
国際調査報告
GB 8901346
S^ 32768
Claims (12)
- 1.蛋白質の水溶液と可溶性陽イオン高分子電解質及びサイクリックポリオール とを混合し、該溶液から水を除去する工程からなる乾燥に際して変性から蛋白質 を保護する方法。
- 2.前記高分子電解質は4つのアンモニウム基官能化多糖類からなる請求項1に 記載の方法。
- 3.前記高分子電解質はジエチルアミノエチル−デキストラン又はキトサンから なる前記請求項2に記載の方法。
- 4.前記高分子電解質はポリエチレンイミンからなる前記請求項1に記載の方法 。
- 5.前記ポリオールは二糖又は三糖である前記各請求項に記載の方法。
- 6.前記ポリオールはラクチトール、ラクトース、マルトーススクロース及びゼ オビオースからなる群から選ばれたものである前記請求項5に記載の方法。
- 7.水は4度Cと50度Cの間の温度で除去される前記各請求項に記載の方法。
- 8.前記温度が25度Cと35度Cの間の温度である前記請求項7に記載の方法 。
- 9.蛋白質、サイクリックポリオール及び陽イオン高分子電解質を含有すること を特徴とする乾燥生成物。
- 10.酵素、サイクリックポリオール及び4つのアンモニウ基官能化多糖類を含 有する前記請求項9に記載の乾燥生成物。
- 11.酵素、サイクリックポリオール及びポリエチレンイミンを含有する前記請 求項10に記載の方法。
- 12.前記ポリオールは二糖又は三糖である前記請求項9及至11に記載の方法 。
Applications Claiming Priority (2)
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GB888826429A GB8826429D0 (en) | 1988-11-11 | 1988-11-11 | Enzyme stabilisation systems |
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