JPH04278084A - 細胞融合によって得られる倍数性細胞の培養方法 - Google Patents

細胞融合によって得られる倍数性細胞の培養方法

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JPH04278084A
JPH04278084A JP3063692A JP6369291A JPH04278084A JP H04278084 A JPH04278084 A JP H04278084A JP 3063692 A JP3063692 A JP 3063692A JP 6369291 A JP6369291 A JP 6369291A JP H04278084 A JPH04278084 A JP H04278084A
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JP
Japan
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cell
plant
protoplasts
polyploidic
cells
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Pending
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JP3063692A
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English (en)
Inventor
Yoshiyasu Tatemichi
立道 良泰
Kazuya Ito
一弥 伊藤
Masaru Shibata
勝 柴田
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New Oji Paper Co Ltd
Original Assignee
Oji Paper Co Ltd
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  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、細胞融合によって得ら
れた倍数性プロトプラストを培養する方法に関し、さら
に詳しくは、これまで行われている通常のプロトプラス
トの培養法では植物体に再生することが困難な、あるい
は不可能な種類の木本性植物であっても、その細胞融合
によって得られた倍数性細胞から苗条原基集塊を誘導す
ることを可能にし、植物の新品種創成に極めて有効な方
法に関するものである。
【0002】
【従来の技術】木本性植物の細胞融合については、その
基礎となるプロトプラストの培養が困難である場合が多
く、カンキツ類(小林、大河原  1990,植物細胞
工学,2巻:45〜49)以外その報告例はほとんどな
い。本発明者らはすでにユーカリをはじめとする木本性
植物のプロトプラストの培養方法について提案した(特
願昭63−286850号)。その方法によれば、ユー
カリ等の木本性植物のプロトプラストから植物体を再生
させることが可能となった。しかし、細胞融合によって
作出される倍数性細胞の培養法については全く知られて
いなかった。そこで細胞融合によって体細胞雑種の作出
の基礎となる倍数性細胞の培養法について、鋭意検討を
行った結果、本発明を完成するに至った。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】本発明は従来技術では
不可能であった細胞融合によって作出された倍数性細胞
の培養方法を提供するものである。
【0004】
【問題点を解決するための手段】本発明は、木本性植物
のプロトプラストの細胞融合によって得られる倍数性細
胞を分裂・増殖活性の旺盛な草本性植物のプロトプラス
トとの共存下に培養し、増殖させ、さらに得られた倍数
性のコロニーを回転培養に移し、苗条原基集塊の誘導を
行うことを特徴とする倍数性細胞の培養方法である。以
下、本発明に用いる草本性植物のカルスおよび木本性植
物の苗条原基集塊の作出方法、プロトプラストの単離、
調整方法、細胞融合法そしてプロトプラストの培養培地
ならびに培養条件等について詳しく説明する。
【0005】草本性植物のカルスの作出方法草本性植物
、例えばケナフの種子をエタノールの70%水溶液およ
び10倍に希釈したアンチホルミン液で殺菌した後、無
菌的に植物の基本培地である例えばガンボーグ( Ga
mborg )のB5培地、あるいはムラシゲ・スクー
グ( Murashige& Skoog )のMS培
地等に寒天,ゲランガムなどの支持体材を加えた培地上
にそれぞれ置床し、20〜30℃に調節した室内で無菌
的に発芽生育させる。
【0006】生長した葉、茎、根,胚軸等の組織の一部
を切り取ってB5培地、MS培地に植物ホルモン類、例
えばナフタレン酢酸(NAA)、2,4−ジクロロフェ
ノキシ酢酸(2,4−D)あるいはインドール酢酸(I
AA)等のオーキシン類、およびベンジルアデニン(B
A)、カイネチン、1−(2−クロロ−4−ピリジル)
−3−フェニルウレア(4PU)あるいはゼアチン等の
サイトカイニン類を添加した寒天培地に置床する。この
際どちらか一方の種類の植物ホルモン類のみを添加した
培地を使用することも可能である。これを20〜30℃
の温度、2,000〜5,000ルクスの照度で約30
〜90日間培養を行ってカルスを得る。
【0007】木本性植物の苗条原基集塊の作出方法草本
性植物の場合と同様に、あるいは、樹種によって殺菌方
法を変えて殺菌し、寒天培地上で発芽させる。次に、生
長した苗条の2〜3個の微小な葉原基を含む茎頂部を無
菌的に実体顕微鏡下でピンセットとメスを用いて摘出す
る。摘出した茎頂部を2,000〜20,000ルクス
の連続照明下で0.5〜10rpmの低速で回転する竪
型回転培養装置を使用して培養する。培地としては、B
5培地等に植物ホルモン類、例えばNAA、2,4−D
あるいはIAA等のオーキシン類およびBA、カイネチ
ン、4PUあるいはゼアチン等のサイトカイニン類を添
加した液体培地を用いて、20〜30℃で30〜60日
間培養することによって苗条原基集塊を得る。
【0008】上記説明のとおり、苗条原基は主に茎頂部
から誘導されるが、ほかに、茎、葉、胚軸、未熟あるい
は成熟した胚などから誘導されたカルスおよびこれらの
カルスから誘導された体細胞胚、さらには種子の胚から
も誘導することが可能である。なお、木本性植物として
は、ユーカリ、マングローブ、アカシア、パラゴムノキ
、コーヒー等の常緑広葉樹類、ポプラ、キリ、コナラ、
クヌギ、ウルシ等の落葉広葉樹類、マツ、スギ、ヒノキ
、モミ、トウヒ、カラマツ等の有用針葉樹類、さらにミ
カン、ブドウ、イチジク、アーモンド、マンゴウ等の果
樹類や、バラ、ウメ、ツバキ、サクラ等の花木類等を用
いうる。
【0009】プロトプラストの単離・調整法上記の方法
で得たカルスおよび苗条原基集塊を材料に、0.05〜
0.1%の濃度のペクトリアーゼY−23、1%の濃度
のセルラーゼ・オノズカRSおよび13%マニトールを
含む酵素液を加えて、20〜30℃の温度で6〜24時
間、20〜30rpmの振盪速度で振盪処理してそれぞ
れの植物のプロトプラストを単離する。次に、酵素液を
除いてプロトプラストを洗浄したのち、プロトプラスト
の濃度を調整する。
【0010】木本性植物のプロトプラストの融合方法単
離、調整した木本性植物のプロトプラストを、一般的に
用いられている細胞融合法、例えばポリエチレングリコ
ール(PEG)法、電気刺激法などにより融合処理を行
う。これによって、倍数性プロトプラストが得られる。
【0011】プロトプラストの培養方法融合・調整して
得られた目的とする木本性植物のプロトプラスト(倍数
性細胞)と、これと共存して培養する草本性植物のプロ
トプラストをそれぞれ104 ないし105 コ/ml
の濃度に調整する。次に、両プロトプラストを1:3〜
3:1の割合で混合して、例えばガンボーグのB5培地
、ムラシゲ・スクーグのMS培地等をプロトプラストの
性質に応じて選択し、植物ホルモン類、例えばNAA、
2,4−DあるいはIAA等のオーキシン類およびBA
、カイネチン、4PUあるいはゼアチン等のサイトカイ
ニン類を添加した液体培地あるいは培地固化剤であるゲ
ランガムを添加した培地で培養する。この際どちらか一
方の種類の植物ホルモン類のみを添加した培地を使用す
ることも可能である。培養の初期には暗所で培養し、プ
ロトプラストの分裂、生育に伴って徐々に明るくするの
が好適である。また、培養期間中の温度としては、25
℃ないし28℃の間の温度が好ましい。
【0012】
【実施例】次に、実施例によって、本発明をさらに具体
的に説明する。 実施例−1 供試植物 倍数性細胞の作出を目的とする木本性植物としてユーカ
リ( Eucalyptus saligna、以下E
.saligna と記す)を、またこれと共存培養す
る草本性植物としてケナフ( Hibiscus ca
nnabinus )を用いた。 E.saligna の苗条原基集塊の作出方法E.s
aligna の種子を10倍に希釈したアンチホルミ
ンで1時間殺菌し、さらに、無菌的に70%の濃度のエ
タノールで15秒間および5倍に希釈したアンチホルミ
ンに20分間浸漬して殺菌後、滅菌水で3回洗浄した。 次に、無菌的に表1に示すガンボーグB5培地に3%の
ショ糖および0.6%の寒天を含む培地上に植え付けた
【0013】培養は、28℃の温度、4,000ルクス
の照度、16時間の明条件下で行った。植え付け後約2
0日間生育させた幼植物から、0.1%ポリビニルピロ
リドン(PVP)を加えた液中で約0.5mmの大きさ
の2〜3個の微小な葉原基を含む茎頂部を摘出する。こ
れをB5培地に植物ホルモンとして0〜0.05mg/
lのNAA、0.2〜0.5mg/lの4PUおよびシ
ョ糖3%を添加し、pH5.6に調整した液体培地に入
れ竪型回転培養装置で培養する。培養条件としては、2
8℃の温度、最高照度15,000ルクス、2rpmの
回転速度を用いた。約4カ月で苗条原基集塊が誘導され
る。これをプロトプラストの単離および細胞融合の材料
とした。なお、この苗条原基集塊は、新鮮な培地に継代
をすることにより、維持することができる。
【0014】
【表1】
【0015】ケナフ(Hibiscus cannab
inus)のカルスの誘導 ケナフの種子をエタノール70%および10倍に希釈し
たアンチホルミン液で殺菌した後、無菌的に植物の組織
培養培地であるガンボーグのB5培地にショ糖3%を加
えた寒天培地上で発芽、生育させた。これから茎頂を含
む茎を長さ約1cmに切断し、これをB5培地に植物ホ
ルモンとして2mg/lの2,4−Dと0.01mg/
lのBAを添加した寒天培地上に置床した。これを28
℃の温度、3,000ルクスの照度で培養した。培養開
始後、約40日で黄白色のカルスを得た。これをプロト
プラストの単離・調整用の材料とした。
【0016】プロトプラストの単離・調整上記の方法で
得られたE.saligna の苗条原基集塊約1gに
対して20mlの酵素液(1%セルラーゼオノズカRS
、0.05%ペクトリアーゼY−23、1%PVP、1
3%マニトール、pH5.6)を加えて28℃の温度、
振盪回数30rpmで16時間の酵素処理を行ってプロ
トプラストを単離した。一方、ケナフのカルスについて
も同様にしてプロトプラストを単離した。
【0017】得られたE.saligna のプロトプ
ラストの懸濁液をナイロンメッシュ(250メッシュ)
でろ過して未消化の細胞塊等を除き、さらに遠心分離処
理して酵素液とプロトプラストを分離し、13%マニト
ールで2回洗浄した後、106 コ/mlのプロトプラ
ストの濃度に調整し融合に供試した。また、ケナフのプ
ロトプラストは5×104 コ/mlの濃度に調整して
、共存培養に供試した。
【0018】プロトプラストの融合と培養方法上記の方
法より調整したE.saligna のプロトプラスト
を、分子量1,540〜6,000の40%ポリエチレ
ングリコール液(40%PEG,60mM  N−2−
ヒドロキシエチルピペラジン−N′−2−エタンスルホ
ン酸,60mM塩化カルシウム)で融合処理を行う。そ
の後、0.5Mマニトール、50mM  CaCl2 
液(洗い液)でプロトプラストを洗浄することにより細
胞融合したプロトプラストを得た。
【0019】次に、融合したE.saligna のプ
ロトプラストを5×104 コ/mlの濃度に調整し、
これにケナフのプロトプラストを3:1(ユーカリ3:
ケナフ1)の割合で混合する。これを表1に示したガン
ボーグのB5培地にNAA5mg/l、BA0.5mg
/l、ショ糖1%、マニトール9%およびGelrit
e 0.05%を含む培地2mlに懸濁して直径6cm
のシャーレにプレートした。 プレートしたプロトプラストを最初は暗条件で培養し、
プロトプラストの分裂に合わせてマニトール濃度を培養
開始後40日で6%、60日で3%、さらに90日目に
0%の順に下げた。温度は28℃で培養した。
【0020】培養後約40日目から明条件として、60
日目からは、表1に示すガンボーグのB5培地にNAA
を0.02mg/l、4PUを0.2mg/l、ショ糖
1%を加えたものに寒天を0.6%加えて固めたコロニ
ー増殖用培地に、赤色化したE.saligna のコ
ロニーのみを移植して増殖させた。そして、コロニーが
約15mmの大きさに増殖した時に、次に示す方法で染
色体数を調査して倍数性コロニーを選抜した。
【0021】倍数性細胞の選抜 (1)融合して得られたコロニーを前処理として4℃の
温度に24時間置いた。 (2)つぎに、細胞を固定するために、70%エタノー
ル:酢酸(3:1)液に浸漬した。 (3)直径1〜1.5mmの大きさの試料を取り、スラ
イドガラスの上で5回純水で洗浄して固定液を除去した
。 (4)60℃のIN  HClを加え10分間加水分解
した。 (5)純水で5回洗浄し、その後ろ紙で水分を十分に除
去した。 (6)シッフ染色液(10%修正石炭酸フクシン液; 
Gamborg&Wetter 1975,Plant
 Tissue Culture Methods, 
P60−61)をコロニーに滴下して、乾燥を防ぐため
に加湿チャンバーに入れて20分間染色する。次に、カ
バーガラスをのせ横方向へ動かさない様に親指で細胞を
押しつぶす。 (7)顕微鏡で染色体数を調査して倍数性コロニーを選
抜した。なお、ユーカリの染色体数は2n=22である
【0022】倍数性細胞からの苗条原基集塊の作出方法
上記の方法により倍数性が確認されたコロニーを、無菌
的にB5培地に植物ホルモンとして0.02mg/1の
NAA,0.5mg/1の4PUおよび1%のショ糖,
3%のマニトール(培養後約1ケ月間のみ添加、その後
は0%)を添加し、pHを5.8に調整した液体培地に
入れ竪型回転培養装置で培養した。培養条件としては2
8℃の温度、最高照明度15,000ルクス、2rpm
の回転速度を用いた。約4ケ月で苗条原基集塊が誘導さ
れた。 なお、この苗条原基集塊は新鮮な培地に継代することに
より、維持、増殖が可能である。
【0023】実施例−2 供試植物 倍数性細胞の作出を目的とする木本性植物としてEuc
alyptus salignaおよびEucalyp
tus camaldulensisの2種のユーカリ
を、またこれと共存培養する草本性植物としてケナフを
用いた。実施例−1と同様の方法によりプロトプラスト
を単離・融合することにより倍数性細胞を得た。さらに
、得られた倍数性細胞を回転培養装置で約4ケ月回転培
養することにより苗条原基集塊を得た。
【0024】実施例−3 供試植物 細胞融合して、倍数性および異数性細胞の作出を目的と
する木本性植物としてEucalyptus sali
gnaおよび  Eucalyptus deglup
ta の2種のユーカリを、またこれと共存培養する草
本性植物としてケナフを用いた。実施例−1と同様の方
法によりプロトプラストを単離・融合することにより倍
数性細胞を得た。さらに、得られた倍数性細胞を回転培
養装置で約4ケ月回転培養することにより苗条原基集塊
を得た。
【0025】実施例−4 供試植物 細胞融合して、倍数性細胞の作出を目的とする木本性植
物としてEucalyptussaligna および
 Eucalyptus grandisの2種のユー
カリを、またこれと共存培養する草本性植物としてケナ
フを用いた。実施例−1と同様の方法によりプロトプラ
ストを単離・融合することにより倍数性細胞を得た。さ
らに、得られた倍数性細胞を回転培養装置で約4ケ月回
転培養することにより苗条原基集塊を得た。
【0026】
【発明の効果】以上説明したようにこれまでは植物、特
にユーカリなどの木本性植物の組織から単離・調整した
プロトプラストの細胞融合によって得られた倍数性細胞
を培養することは困難であった。しかし、細胞融合後、
分裂活性の高い草本性植物のプロトプラスト、あるいは
植物体再生をする能力のある草本性植物のプロトプラス
トと混合して培養することによって、容易に倍数性細胞
の培養・増殖が可能となり、植物の新品種創成に極めて
有力な方法を提供する。

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】  木本性植物のプロトプラストの細胞融
    合によって得られる倍数性細胞を、分裂・増殖の旺盛な
    草本性植物のプロトプラストとの共存培養下で培養し、
    増殖させ、さらに得られた倍数性のコロニーを回転培養
    に移し、苗条原基集塊の誘導を行うことを特徴とする倍
    数性細胞の培養方法。
JP3063692A 1991-03-06 1991-03-06 細胞融合によって得られる倍数性細胞の培養方法 Pending JPH04278084A (ja)

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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2016063785A (ja) * 2014-09-25 2016-04-28 公立大学法人首都大学東京 植物配偶子の電気融合による同質および異質倍数性植物の作出

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2016063785A (ja) * 2014-09-25 2016-04-28 公立大学法人首都大学東京 植物配偶子の電気融合による同質および異質倍数性植物の作出

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