JPH0346086B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Description
〔産業上の利用分野〕
本発明は、木本性植物のプロトプラストから植
物体を再生する方法に関するものである。 〔従来の技術〕 植物の細胞壁を分解する酵素を利用して細胞壁
を除去した細胞、すなわちプロトプラストを得る
技術が開発され(COCKING E.C.、Natur、
187、962−963,1960)、最近になつて多くの植物
についてこの方法が適用され、この方法によつて
得られた2種類の植物から得られたプロトプラス
トを人為的に融合させる細胞融合技術が試みられ
るようになつた(CARLSON et al.、Proc.
Natl.Acod.Sci.USA、69, 2292−2294,
1972)。 これまで植物の品種改良の一つの手法として行
われて来た交雑育種は同種間の植物、或いはアカ
マツとクロマツとを交雑して得られるアイグロマ
ツなどのように極めて近縁間の植物に限られてい
た。ところが、この細胞融合技術を用いることに
よつて、種の違いだけでなく属や科を異にする植
物間の交雑が可能となり、これらの雑種が得られ
る可能性が大きくなつた。すなわち、植物の分類
のうえでは極めて遠縁にあたる植物の持つ優れた
性質であつても、細胞融合技術を利用することに
よつて、対象植物にこの性質を付与することが可
能となり、品種改良の可能性の範囲が極めて大き
くなつて来た。 さらに、ポプラをはじめとする木本性植物は、
種子の発芽から開花までに長年月を要するため、
従来行なわれてきた花器を利用する交雑を行なう
ためには長期間を要してきた。 これに対して、細胞融合技術を利用して植物の
品種の改良或いは形質を改良する方法は、この年
数を短縮することが出来る点などからも極めて有
用で重要な方法である。 しかしながら、木本性植物については、融合し
たプロトプラストからだけでなく、単一のプロト
プラストからでも植物体が再生された例はトロビ
タオレンジ(小林省蔵ら、育種学雑誌、34巻(別
2)、32−33、1984)、およびコウゾ(岡成美・大
山勝夫、育種学雑誌、34巻(別2)、26−27、
1984)等極めて少数のものしかない。 従つて、たとえ細胞融合技術が確立されたとし
ても、融合した細胞を培養する方法が開発されな
い限り細胞融合技術を利用することは不可能であ
り、この前段階としてのプロトプラストからの植
物体の再生技術の早急な確立が望まれている。 〔発明の構成〕 本発明は、木本性植物のプロトプラストを、草
本性植物のプロトプラストの存在下に、細胞融合
処理を行なう薬液で処理した後分化させることを
特徴とする木本性プロトプラストから分化した植
物体を再生させる方法である。 本発明者らは、木本性植物のプロトプラストか
ら植物体を再生させる方法について研究を行なつ
ていたところ、木本性植物のプロトプラストを、
草本性植物のプロトプラストの存在下に細胞融合
を行なう薬液で処理した後分化させることによ
り、木本性植物のプロトプラストから分化した植
物体を容易に再生しうることを見いだした。 以下、本発明で用いうる植物、細胞融合剤、プ
ロトプラストの培養培地並びに培養条件について
詳しく説明する。 植 物 本発明を適用しうる植物は特に限定されるもの
ではないが、木本性植物としては、例えばポプ
ラ、ユーカリ、アカシア、パラゴムノキ、ウル
シ、コーヒー等の常縁広葉樹類、ミカン、レモ
ン、桜桃、リンゴ、ナシ、モモ、アボガド、カ
キ、クルミ、ブドウ、イチヂク、アーモンド、マ
ンゴウ等の果樹類、バラ、ツバキ、ウメ、サクラ
等の花木類、マツ、スギ、ヒノキ、モミ、トウヒ
等の針葉樹などをあげることができる。一方、草
本性植物としては、例えばケナフ、タバコ、ペチ
ユニアなどをあげることができる。 用いる材料としては、葉肉組織をはじめとする
植物体の一部、或いは茎、根などから誘導された
培養細胞を例示することができる。更に、茎を環
状剥皮した後栄養培地に挿木することにより得ら
れる苗条、茎頂を培養することにより得られる苗
条原基を用いることも可能である。 細胞融合剤 本発明で使用しうる細胞融合剤としてはポリエ
チレングリコール(以下、PEGと略記する)、ポ
リビニルアルコール、デキストラン等を例示でき
るが、特にPEGが好適である。細胞融合剤を使
用しないで電気的な方法で処理することも可能で
ある。 プロトプラストの培養培地 本発明で使用されるプロトプラストの培養培地
としては、従来から知られている植物の組織培養
培地、例えばガンボルグのB5培地、ムシゲ・ス
クーグのMS培地等を例示できるが、とくに表−
1に示すB5改変培地が好適である。 この培地の植物ホルモン類としては、例えばナ
フタレン酢酸(NAA)、2,4−ジクロロフエ
ノキシ酢酸(2,4−D)、インドール酢酸
(IAA)、インドール酪酸(IBA)等のオーキシン
類、およびベンジルアデニン(BA)、KT−30、
カイネチン、ゼアチン等のサイトカイニン類を例
示できる。
物体を再生する方法に関するものである。 〔従来の技術〕 植物の細胞壁を分解する酵素を利用して細胞壁
を除去した細胞、すなわちプロトプラストを得る
技術が開発され(COCKING E.C.、Natur、
187、962−963,1960)、最近になつて多くの植物
についてこの方法が適用され、この方法によつて
得られた2種類の植物から得られたプロトプラス
トを人為的に融合させる細胞融合技術が試みられ
るようになつた(CARLSON et al.、Proc.
Natl.Acod.Sci.USA、69, 2292−2294,
1972)。 これまで植物の品種改良の一つの手法として行
われて来た交雑育種は同種間の植物、或いはアカ
マツとクロマツとを交雑して得られるアイグロマ
ツなどのように極めて近縁間の植物に限られてい
た。ところが、この細胞融合技術を用いることに
よつて、種の違いだけでなく属や科を異にする植
物間の交雑が可能となり、これらの雑種が得られ
る可能性が大きくなつた。すなわち、植物の分類
のうえでは極めて遠縁にあたる植物の持つ優れた
性質であつても、細胞融合技術を利用することに
よつて、対象植物にこの性質を付与することが可
能となり、品種改良の可能性の範囲が極めて大き
くなつて来た。 さらに、ポプラをはじめとする木本性植物は、
種子の発芽から開花までに長年月を要するため、
従来行なわれてきた花器を利用する交雑を行なう
ためには長期間を要してきた。 これに対して、細胞融合技術を利用して植物の
品種の改良或いは形質を改良する方法は、この年
数を短縮することが出来る点などからも極めて有
用で重要な方法である。 しかしながら、木本性植物については、融合し
たプロトプラストからだけでなく、単一のプロト
プラストからでも植物体が再生された例はトロビ
タオレンジ(小林省蔵ら、育種学雑誌、34巻(別
2)、32−33、1984)、およびコウゾ(岡成美・大
山勝夫、育種学雑誌、34巻(別2)、26−27、
1984)等極めて少数のものしかない。 従つて、たとえ細胞融合技術が確立されたとし
ても、融合した細胞を培養する方法が開発されな
い限り細胞融合技術を利用することは不可能であ
り、この前段階としてのプロトプラストからの植
物体の再生技術の早急な確立が望まれている。 〔発明の構成〕 本発明は、木本性植物のプロトプラストを、草
本性植物のプロトプラストの存在下に、細胞融合
処理を行なう薬液で処理した後分化させることを
特徴とする木本性プロトプラストから分化した植
物体を再生させる方法である。 本発明者らは、木本性植物のプロトプラストか
ら植物体を再生させる方法について研究を行なつ
ていたところ、木本性植物のプロトプラストを、
草本性植物のプロトプラストの存在下に細胞融合
を行なう薬液で処理した後分化させることによ
り、木本性植物のプロトプラストから分化した植
物体を容易に再生しうることを見いだした。 以下、本発明で用いうる植物、細胞融合剤、プ
ロトプラストの培養培地並びに培養条件について
詳しく説明する。 植 物 本発明を適用しうる植物は特に限定されるもの
ではないが、木本性植物としては、例えばポプ
ラ、ユーカリ、アカシア、パラゴムノキ、ウル
シ、コーヒー等の常縁広葉樹類、ミカン、レモ
ン、桜桃、リンゴ、ナシ、モモ、アボガド、カ
キ、クルミ、ブドウ、イチヂク、アーモンド、マ
ンゴウ等の果樹類、バラ、ツバキ、ウメ、サクラ
等の花木類、マツ、スギ、ヒノキ、モミ、トウヒ
等の針葉樹などをあげることができる。一方、草
本性植物としては、例えばケナフ、タバコ、ペチ
ユニアなどをあげることができる。 用いる材料としては、葉肉組織をはじめとする
植物体の一部、或いは茎、根などから誘導された
培養細胞を例示することができる。更に、茎を環
状剥皮した後栄養培地に挿木することにより得ら
れる苗条、茎頂を培養することにより得られる苗
条原基を用いることも可能である。 細胞融合剤 本発明で使用しうる細胞融合剤としてはポリエ
チレングリコール(以下、PEGと略記する)、ポ
リビニルアルコール、デキストラン等を例示でき
るが、特にPEGが好適である。細胞融合剤を使
用しないで電気的な方法で処理することも可能で
ある。 プロトプラストの培養培地 本発明で使用されるプロトプラストの培養培地
としては、従来から知られている植物の組織培養
培地、例えばガンボルグのB5培地、ムシゲ・ス
クーグのMS培地等を例示できるが、とくに表−
1に示すB5改変培地が好適である。 この培地の植物ホルモン類としては、例えばナ
フタレン酢酸(NAA)、2,4−ジクロロフエ
ノキシ酢酸(2,4−D)、インドール酢酸
(IAA)、インドール酪酸(IBA)等のオーキシン
類、およびベンジルアデニン(BA)、KT−30、
カイネチン、ゼアチン等のサイトカイニン類を例
示できる。
【表】
【表】
プロトプラストの培養条件
本発明において、木本性植物のプロトプラスト
を、草本性植物のプロトプラストの存在下に、細
胞融合処理を行なう液で処して得られたプロトプ
ラストの培養初期には光の照射は必要ではなく、
暗所での培養がプロトプラストの生育に望まし
い。また、培養期間中の温度としては20ないし30
℃が好ましいが、特に25ないし28℃の間の温度が
好適である。 暗所にて培養されたプロトプラストを、前記の
培養培地を定期的に交換しながら、培養の途中か
ら拡散光を照射して培養を継続する。 この結果得られた細胞塊を、苗条の再生を促進
する培地に移植する。さらに引き続いて、再生し
た苗条を発根を促進する培地に移植して培養を継
続することによつて、木本性植物のプロトプラス
トから再生された完全な植物体を得ることができ
る。 以下実施例によつて本発明を更に詳しく説明す
るが、本発明はこれらの実施例に限定されるもの
ではない。 実施例 1 (1) 供試ポプラ Populus charkowiensis XP.caudinaのポプ
ラの品種の成木の枝を切り取つて、長さ約2cm
程度に切断し、通常の方法によつて滅菌した
後、形成層が露出する程度に無菌的に樹皮を剥
皮する。これをNAA0.01mg/、BA0.2mg/
、シヨ糖30g/及び寒天を8g/の濃度
で含むガンボルグのB5固型培地に挿木して、
苗条の再生を誘導した。 (2) 供試ケナフ ケナフ(HibiscuCannabinus)の茎、あるい
は葉、さらには根を通常の方法で滅菌して、
2,4−Dを4mg/、BAを0.2mg/、及び
シヨ糖30g/の濃度で含むガンボルグのB5
固型培地に置床してカルスを誘導した。 (3) プロトプラストの単離法 ポプラの挿木した茎から再生した菌条および
ケナフのカルスからプロトプラストを単離する
ために、セルラーゼ(オノズカRS)を1%、
ペクトリアーゼY−23を0.1%及びスンニトー
ルを13%の濃度を含む酵素液をPH5.6に調整し
た。そして、明所において、30℃の温度下でゆ
るやかに振とうしながら6時間酵素処理を行つ
て両種のプロトプラストをそれぞれ単離した。
処理終了後、酵素液を除去して、13%のマンニ
トール液で2回洗浄し、両プロトプラストをそ
れぞれ5×105個/mlの濃度になるように13%
のマンニトール液に懸濁した。 (4) プロトプラストの融合処理液での処理ポプラ
とケナフのそれぞれのプロトプラスト懸濁液を
混合して、該混合物200μを直径6cmのシヤ
ーレの中に置いた直径22mmのカバーグラスのう
えに載せた。次に、この周囲にPEG(分子量
6000)を40重量%、ハイドロキシエチルピペラ
ジンエタンスルフオニツク酸を50mM、及び塩
化カルシウムを100mMの濃度で含むPEG液を
200μ添加してゆつくり混ぜ合わせた。室温
で約30分放置したのち、塩化カルシウムを50m
M、マンニトールを13%を含む洗浄液を0.2ml
添加し、さらに15分後に1ml加えた。さらに、
15分ずつの間隔で1ml及び4mlの洗浄液を添加
した。1000rpmで3分間遠心した後上清を除去
してから、新鮮な洗浄液を4ml添加した。再
度、同様な遠心操作を繰り返した後、表−1に
示すプロトプラスト培養用培地で1回洗浄した
後培養を開始した。 (5) プロトプラストの培養 洗浄を終了したポプラのプロトプラストを暗
条件下、28℃で約1カ月培養した。増殖したコ
ロニーをマンニトールの濃度を6%、3%、0
%と徐々に低くした培地へ順次移植して、プロ
トプラストの培養開始後約4ヶ月後には表−2
に示す苗条再生用の培地に移植した。苗条再生
用培地に移植後約2週間で第1図に示すように
苗条が再生し、これをさらに表−3に示す発根
用培地に移植したところ根が伸長した。このよ
うにして再生した植物体は、第2図に示すよう
に形態的にポプラと同一であつた。
を、草本性植物のプロトプラストの存在下に、細
胞融合処理を行なう液で処して得られたプロトプ
ラストの培養初期には光の照射は必要ではなく、
暗所での培養がプロトプラストの生育に望まし
い。また、培養期間中の温度としては20ないし30
℃が好ましいが、特に25ないし28℃の間の温度が
好適である。 暗所にて培養されたプロトプラストを、前記の
培養培地を定期的に交換しながら、培養の途中か
ら拡散光を照射して培養を継続する。 この結果得られた細胞塊を、苗条の再生を促進
する培地に移植する。さらに引き続いて、再生し
た苗条を発根を促進する培地に移植して培養を継
続することによつて、木本性植物のプロトプラス
トから再生された完全な植物体を得ることができ
る。 以下実施例によつて本発明を更に詳しく説明す
るが、本発明はこれらの実施例に限定されるもの
ではない。 実施例 1 (1) 供試ポプラ Populus charkowiensis XP.caudinaのポプ
ラの品種の成木の枝を切り取つて、長さ約2cm
程度に切断し、通常の方法によつて滅菌した
後、形成層が露出する程度に無菌的に樹皮を剥
皮する。これをNAA0.01mg/、BA0.2mg/
、シヨ糖30g/及び寒天を8g/の濃度
で含むガンボルグのB5固型培地に挿木して、
苗条の再生を誘導した。 (2) 供試ケナフ ケナフ(HibiscuCannabinus)の茎、あるい
は葉、さらには根を通常の方法で滅菌して、
2,4−Dを4mg/、BAを0.2mg/、及び
シヨ糖30g/の濃度で含むガンボルグのB5
固型培地に置床してカルスを誘導した。 (3) プロトプラストの単離法 ポプラの挿木した茎から再生した菌条および
ケナフのカルスからプロトプラストを単離する
ために、セルラーゼ(オノズカRS)を1%、
ペクトリアーゼY−23を0.1%及びスンニトー
ルを13%の濃度を含む酵素液をPH5.6に調整し
た。そして、明所において、30℃の温度下でゆ
るやかに振とうしながら6時間酵素処理を行つ
て両種のプロトプラストをそれぞれ単離した。
処理終了後、酵素液を除去して、13%のマンニ
トール液で2回洗浄し、両プロトプラストをそ
れぞれ5×105個/mlの濃度になるように13%
のマンニトール液に懸濁した。 (4) プロトプラストの融合処理液での処理ポプラ
とケナフのそれぞれのプロトプラスト懸濁液を
混合して、該混合物200μを直径6cmのシヤ
ーレの中に置いた直径22mmのカバーグラスのう
えに載せた。次に、この周囲にPEG(分子量
6000)を40重量%、ハイドロキシエチルピペラ
ジンエタンスルフオニツク酸を50mM、及び塩
化カルシウムを100mMの濃度で含むPEG液を
200μ添加してゆつくり混ぜ合わせた。室温
で約30分放置したのち、塩化カルシウムを50m
M、マンニトールを13%を含む洗浄液を0.2ml
添加し、さらに15分後に1ml加えた。さらに、
15分ずつの間隔で1ml及び4mlの洗浄液を添加
した。1000rpmで3分間遠心した後上清を除去
してから、新鮮な洗浄液を4ml添加した。再
度、同様な遠心操作を繰り返した後、表−1に
示すプロトプラスト培養用培地で1回洗浄した
後培養を開始した。 (5) プロトプラストの培養 洗浄を終了したポプラのプロトプラストを暗
条件下、28℃で約1カ月培養した。増殖したコ
ロニーをマンニトールの濃度を6%、3%、0
%と徐々に低くした培地へ順次移植して、プロ
トプラストの培養開始後約4ヶ月後には表−2
に示す苗条再生用の培地に移植した。苗条再生
用培地に移植後約2週間で第1図に示すように
苗条が再生し、これをさらに表−3に示す発根
用培地に移植したところ根が伸長した。このよ
うにして再生した植物体は、第2図に示すよう
に形態的にポプラと同一であつた。
【表】
以上説明したように、木本性植物と草本性植物
のプロトプラストを融合処理を行なう薬剤による
処理を行なわす単独で培養すると植物体の再生は
見られない。ところが、融合処理を行なう薬剤に
よる処理を行なつた後培養を行なうことによつ
て、プロトプラストから分化した木本性植物の完
全な植物体を再生することが可能となつた。
のプロトプラストを融合処理を行なう薬剤による
処理を行なわす単独で培養すると植物体の再生は
見られない。ところが、融合処理を行なう薬剤に
よる処理を行なつた後培養を行なうことによつ
て、プロトプラストから分化した木本性植物の完
全な植物体を再生することが可能となつた。
第1図は、ポプラのプロトプラストをケナフの
プロトプラストの存在下に、細胞融合処理を行う
薬液で処理したプロトプラストから再生されたポ
プラの苗条の形態を示す写真、第2図は、第1図
に示す苗条から得られたポプラの形態を示す写真
である。
プロトプラストの存在下に、細胞融合処理を行う
薬液で処理したプロトプラストから再生されたポ
プラの苗条の形態を示す写真、第2図は、第1図
に示す苗条から得られたポプラの形態を示す写真
である。
Claims (1)
- 1 木本性植物のプロトプラストを、草本性植物
のプロトプラストの存在下に、細胞融合処理を行
なう薬液で処理した後分化させることを特徴とす
る木本性植物のプロトプラストからなる分化した
植物体を再生する方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61064800A JPS62224224A (ja) | 1986-03-25 | 1986-03-25 | 木本性植物のプロトプラストから植物体を再生する方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61064800A JPS62224224A (ja) | 1986-03-25 | 1986-03-25 | 木本性植物のプロトプラストから植物体を再生する方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62224224A JPS62224224A (ja) | 1987-10-02 |
JPH0346086B2 true JPH0346086B2 (ja) | 1991-07-15 |
Family
ID=13268678
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61064800A Granted JPS62224224A (ja) | 1986-03-25 | 1986-03-25 | 木本性植物のプロトプラストから植物体を再生する方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS62224224A (ja) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN100334203C (zh) * | 2005-06-17 | 2007-08-29 | 谢响明 | 农杆菌介导的相思树高效转化系统的建立 |
CN102668979B (zh) * | 2012-01-10 | 2014-05-21 | 河南科技大学 | 一种杨树组培苗生根培养方法 |
CN103229723B (zh) * | 2013-05-23 | 2014-07-30 | 广西壮族自治区林业科学研究院 | 一种杉木试管苗生根诱导方法 |
CN103918714B (zh) * | 2014-01-25 | 2016-04-13 | 漳州美利德生物工程有限公司 | 一种金线莲组培的培养基抗菌剂及其制备方法 |
CN104145814B (zh) * | 2014-07-24 | 2017-02-22 | 四川农业大学 | 一种高盆樱桃(原变种)茎段组织培养获得再生植株的方法 |
CN114774347B (zh) * | 2022-03-14 | 2023-07-04 | 南京农业大学 | 一种梨茎原生质体的分离方法 |
-
1986
- 1986-03-25 JP JP61064800A patent/JPS62224224A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS62224224A (ja) | 1987-10-02 |
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