JPH0317098A - 合成ペプチド及びその塩並びにそれらの製造法 - Google Patents
合成ペプチド及びその塩並びにそれらの製造法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K7/00—Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
- C07K7/04—Linear peptides containing only normal peptide links
- C07K7/22—Tachykinins, e.g. Eledoisins, Substance P; Related peptides
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P11/00—Drugs for disorders of the respiratory system
- A61P11/08—Bronchodilators
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はニュ・一ロキニンA (NK−2レセプター)
に対する競合的拮抗薬としての合或ペプチド及びその医
薬的に許容し得る塩、並びにそれらの製造法に関する。
に対する競合的拮抗薬としての合或ペプチド及びその医
薬的に許容し得る塩、並びにそれらの製造法に関する。
ニューロキニン(neurokin) Aはサブスタン
ス(substance) K ( K物質ともいう)
又はa−:−ユ−ロキニンどしても知られており、サブ
スタンスP(P物質ともいう)及びニューロキニン3と
同様に,次のC一末端アミノ酸配列: Phe−X−Gly−Leu−Met−NH,を右する
ペプチド類からなるタキキニン類(tachykini
ns) (IUPHAR会議、C.JordanとP.
Oehmc、「サブスタンスP;代謝と生物学的作用(
metaboi−ism and biologica
l act.ions); Taylor andFr
ancis(英国ロンドン)発行、1985年、によっ
て提案された命名〕の種類に属する。
ス(substance) K ( K物質ともいう)
又はa−:−ユ−ロキニンどしても知られており、サブ
スタンスP(P物質ともいう)及びニューロキニン3と
同様に,次のC一末端アミノ酸配列: Phe−X−Gly−Leu−Met−NH,を右する
ペプチド類からなるタキキニン類(tachykini
ns) (IUPHAR会議、C.JordanとP.
Oehmc、「サブスタンスP;代謝と生物学的作用(
metaboi−ism and biologica
l act.ions); Taylor andFr
ancis(英国ロンドン)発行、1985年、によっ
て提案された命名〕の種類に属する。
?ミノ酸類の命名法と略記法については、IUPAC(
国際純正および応用化学連合)−HJB(国際生化学連
合)合同生化学命名委員会の勧’9 (rEur. J
.11iochem, J、138. 9(1984)
)が参照される。
国際純正および応用化学連合)−HJB(国際生化学連
合)合同生化学命名委員会の勧’9 (rEur. J
.11iochem, J、138. 9(1984)
)が参照される。
ニューロキニンAは1983年に豚の脊髄から単離され
(S.Kimuraらの論文rProc. Jap.
Acad. Ser.B」、59. 1of(1983
)及びK . Kanagawaらの論文rBio−c
hem. Biophys. Res. GOH,J、
月4,533 (1 983))、次のアミノ酸配列: H−Hys1−L,ys2−Thr1−Asp’−Se
r’−Ph♂−Val’−Gly″−Lea9−Met
10−NH,を有するC一末端デカペプチドアミドとし
て特定された。このアミノ酸配列1よ、サブスタンスP
のアミノ酸配列とは位置7のアミノ酸及びN一末端アミ
ノ酸配列(位置1〜5〉が異なっており,またニューロ
キニンBのアミノ酸配列とはN一末端帯域において、常
に位置1〜3及び5のアミノ酸が異なっている。サブス
タンスPとニューロキニンBの構造はそれぞれ次に示す
通りである。
(S.Kimuraらの論文rProc. Jap.
Acad. Ser.B」、59. 1of(1983
)及びK . Kanagawaらの論文rBio−c
hem. Biophys. Res. GOH,J、
月4,533 (1 983))、次のアミノ酸配列: H−Hys1−L,ys2−Thr1−Asp’−Se
r’−Ph♂−Val’−Gly″−Lea9−Met
10−NH,を有するC一末端デカペプチドアミドとし
て特定された。このアミノ酸配列1よ、サブスタンスP
のアミノ酸配列とは位置7のアミノ酸及びN一末端アミ
ノ酸配列(位置1〜5〉が異なっており,またニューロ
キニンBのアミノ酸配列とはN一末端帯域において、常
に位置1〜3及び5のアミノ酸が異なっている。サブス
タンスPとニューロキニンBの構造はそれぞれ次に示す
通りである。
サブスタンスP : tl−Arg−Pro−Lys−
Pro−Gln−Gln−Phe−Phe−Gly−L
eu−Met−NH■ ?ューロキニンB : lI−Asp−Met−11i
s−Asp−Phe−1’he−Val−Gly−Le
u−Met−NH2 サブスタンスPのペブチド桔抗薬及びニューロキニンB
のペプチド拮抗薬は既知であり、それらは米国特許第4
,481,139号明細書及び同第4,665,157
号明細書にそれぞれ記載されている6しかしながら、ニ
ューロキニンAの拮抗薬は知られていない。ニューロキ
ニンAのC一末端ヘプタペプチド1折片が,完全なペプ
チド(すなわちニューロキニンA)と同一の生物学的活
性を保持していることもまた同様に知られている(D.
Regoliらの論文rLjfeSci.J、40、1
09(1987))。
Pro−Gln−Gln−Phe−Phe−Gly−L
eu−Met−NH■ ?ューロキニンB : lI−Asp−Met−11i
s−Asp−Phe−1’he−Val−Gly−Le
u−Met−NH2 サブスタンスPのペブチド桔抗薬及びニューロキニンB
のペプチド拮抗薬は既知であり、それらは米国特許第4
,481,139号明細書及び同第4,665,157
号明細書にそれぞれ記載されている6しかしながら、ニ
ューロキニンAの拮抗薬は知られていない。ニューロキ
ニンAのC一末端ヘプタペプチド1折片が,完全なペプ
チド(すなわちニューロキニンA)と同一の生物学的活
性を保持していることもまた同様に知られている(D.
Regoliらの論文rLjfeSci.J、40、1
09(1987))。
本発明の要旨によれば,次の一般式(【):X−Asp
−Y−DTrp−Val−DTrp−Z−K−NH■(
1 )(式中、Xは■Iを表わすかあるいはH及びア
ミノ酸残基Arg, DArg, Lys. DLys
. Thr又はDThrを表わし、Yはアミノ酸残基T
yr.Trp, DTrp. Scr又はMetを表わ
し、Zはアミノ酸残基Trp又はDTrpを表わし、K
はアミノ酸残基Arc. Phe.DTrp、Tyr又
はMstを表わす)で示される合或ペプチド並び?その
有機及び無機酸との医薬的に許容し得る塩が提供される
。上記ベプチド類はニューロキニンAに対して競合的拮
抗薬としての生物学的活性を有することを示すが、作動
薬作用は有しない。
−Y−DTrp−Val−DTrp−Z−K−NH■(
1 )(式中、Xは■Iを表わすかあるいはH及びア
ミノ酸残基Arg, DArg, Lys. DLys
. Thr又はDThrを表わし、Yはアミノ酸残基T
yr.Trp, DTrp. Scr又はMetを表わ
し、Zはアミノ酸残基Trp又はDTrpを表わし、K
はアミノ酸残基Arc. Phe.DTrp、Tyr又
はMstを表わす)で示される合或ペプチド並び?その
有機及び無機酸との医薬的に許容し得る塩が提供される
。上記ベプチド類はニューロキニンAに対して競合的拮
抗薬としての生物学的活性を有することを示すが、作動
薬作用は有しない。
更に詳しくは本発明の要旨によれば、次の式:X−As
p−Y−DTrp−Val−DTrp−Z−K−NH■
(式中、XはHを表わすかあるいはH及びアミノ酸残基
Arg. Lys又はThrを表わし、Yはアミノ酸残
基Tyrを表わし、2はアミノ酸残.3J DTrpを
表わし、Kはアミノ酸残J.% Arg. Phe.
DTrp. Tyr又はNetを表わす)で示される合
成ペブチド並びにその有機及び焦機酸との医薬的に許容
し得る塩が提供される。
p−Y−DTrp−Val−DTrp−Z−K−NH■
(式中、XはHを表わすかあるいはH及びアミノ酸残基
Arg. Lys又はThrを表わし、Yはアミノ酸残
基Tyrを表わし、2はアミノ酸残.3J DTrpを
表わし、Kはアミノ酸残J.% Arg. Phe.
DTrp. Tyr又はNetを表わす)で示される合
成ペブチド並びにその有機及び焦機酸との医薬的に許容
し得る塩が提供される。
本発明のペプチドの例としては次のペプチドが挙げられ
る。すなわち 一次の構造: 11 − Arg − Asp − Tyr− DTr
p − Val−DTrp−DTrp − Arg −
N++2を有するオクタペプチド。
る。すなわち 一次の構造: 11 − Arg − Asp − Tyr− DTr
p − Val−DTrp−DTrp − Arg −
N++2を有するオクタペプチド。
一次の構造:
H−Asp−Tyr−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−Arg−NH,を有するヘプタペプチド。
Trp−Arg−NH,を有するヘプタペプチド。
一次の構造:
fl−Arg−Asp−Tyr−DTrp−Val−D
Trp−DTrp−Phe−NH2を有するオクタペプ
チドゥ 一次の構造: H−Asp−Tyr−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−DTrp−Nil2を有するヘプタペプチド。
Trp−DTrp−Phe−NH2を有するオクタペプ
チドゥ 一次の構造: H−Asp−Tyr−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−DTrp−Nil2を有するヘプタペプチド。
一次の構造:
H−Asp−Trp−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−Arg−NH2を有するヘプタペプチド9 前記の合或ペプチド類はニューロキニンA (NK2レ
セプター)に対する競合的拮抗薬である。
Trp−Arg−NH2を有するヘプタペプチド9 前記の合或ペプチド類はニューロキニンA (NK2レ
セプター)に対する競合的拮抗薬である。
本発明の別の要旨によれば、前記合成ペプチド類の製造
法であって、不溶性の重合体支持体上で前記ペプチド鎖
をC一末端からN一末端方向に同相合或法で組み立てる
工程と、次後のフッ化水素酸中で加水分解することによ
って前記重合体状支持体から前記ペプチド鎖を切り離す
工程とからなる前記合或ペプチド類の製造法が提供され
る。
法であって、不溶性の重合体支持体上で前記ペプチド鎖
をC一末端からN一末端方向に同相合或法で組み立てる
工程と、次後のフッ化水素酸中で加水分解することによ
って前記重合体状支持体から前記ペプチド鎖を切り離す
工程とからなる前記合或ペプチド類の製造法が提供され
る。
本発明の新規ペプチド類は、動物や人間において、過剰
のニューロキニンAによる病理的効果例えば気管支狭窄
あるいは腸管又は膀胱の痙肇を低減させるか又は拮抗す
るのに有用である。
のニューロキニンAによる病理的効果例えば気管支狭窄
あるいは腸管又は膀胱の痙肇を低減させるか又は拮抗す
るのに有用である。
本発明の要旨のペプチド類は、ペプチド合或において公
知の方法、例えばM.BodanszkyとA.Bon
danszkyの著作「ペプチド合或の実15(The
practice of Peptide Synth
esis)J(Splinger−VerLag発行、
ベルリンハイデルベルグ、1984年)に2己載されて
いるような方法を利用することにより製造できる。非限
定的な例として、Merrifieldによる固相中で
のペプチド合成の方広(R,B.Merriefiel
dの論文rJ.Am.CI+ea+.Soc.J, 8
5. 2149(1963))が報告されている。
知の方法、例えばM.BodanszkyとA.Bon
danszkyの著作「ペプチド合或の実15(The
practice of Peptide Synth
esis)J(Splinger−VerLag発行、
ベルリンハイデルベルグ、1984年)に2己載されて
いるような方法を利用することにより製造できる。非限
定的な例として、Merrifieldによる固相中で
のペプチド合成の方広(R,B.Merriefiel
dの論文rJ.Am.CI+ea+.Soc.J, 8
5. 2149(1963))が報告されている。
アミノ酸類のα−アミノ基(function)をt−
ブ1〜キシ力ルボニル(BoCと略記する)基で保護し
た場合には、C一末端アミドを製造するための固体支持
体として4−メチルベンズヒトリルアミン樹脂(MB+
1A4−]脂と略記する;アミノ基;0.4〜0.6ミ
ルモル/樹脂1g)を使用できる。3官能アミノ酸類の
渚側鎖は、上記文献に記載の公知の方法で保護した。
ブ1〜キシ力ルボニル(BoCと略記する)基で保護し
た場合には、C一末端アミドを製造するための固体支持
体として4−メチルベンズヒトリルアミン樹脂(MB+
1A4−]脂と略記する;アミノ基;0.4〜0.6ミ
ルモル/樹脂1g)を使用できる。3官能アミノ酸類の
渚側鎖は、上記文献に記載の公知の方法で保護した。
本発明のペプチド類は、対称無水物法を使用して半自動
合戊装a (synthesizer)を用いて組立て
た。
合戊装a (synthesizer)を用いて組立て
た。
すなわち.前記反応器に樹脂1〜2gを入れ、トリエチ
ルアミンの10%クロロホルム溶液で中和し、次いで塩
化メチレン/ジメチルホルムアミドの1/工溶液中の製
造したばかりの、アミノ酸の対称無水物2当量を上記反
応器に加える。60分間のアミノ酸連結反応工程(co
uρling cycie)及び塩化メチレンとインプ
ロパノールで前記樹脂を洗滌する工程(cycle)を
実施した後に、Kaiserらの論文rAna1、 B
ioche+++.J, 34, 595(1970)
に記載のニンヒドリン呈色試験により連結反応の完結を
確認する。前記と同じ方法で実施される次の連結反応に
用意する上?!il!樹脂を収得するために、連結され
たアミノ酸のアミノ基からの保護基の除去は、トリフル
オロ酢酸の40%塩化メチレン溶液で処理し,次いでジ
イソプ口ピルエチルアミンの5%塩化メチレン溶液で処
理すること(すなわち,自助的な保護基除去及び中和工
程)によって行なわれる。
ルアミンの10%クロロホルム溶液で中和し、次いで塩
化メチレン/ジメチルホルムアミドの1/工溶液中の製
造したばかりの、アミノ酸の対称無水物2当量を上記反
応器に加える。60分間のアミノ酸連結反応工程(co
uρling cycie)及び塩化メチレンとインプ
ロパノールで前記樹脂を洗滌する工程(cycle)を
実施した後に、Kaiserらの論文rAna1、 B
ioche+++.J, 34, 595(1970)
に記載のニンヒドリン呈色試験により連結反応の完結を
確認する。前記と同じ方法で実施される次の連結反応に
用意する上?!il!樹脂を収得するために、連結され
たアミノ酸のアミノ基からの保護基の除去は、トリフル
オロ酢酸の40%塩化メチレン溶液で処理し,次いでジ
イソプ口ピルエチルアミンの5%塩化メチレン溶液で処
理すること(すなわち,自助的な保護基除去及び中和工
程)によって行なわれる。
最後のアミノ酸(N一末端)の添加とBoc基の脱離(
トリフルオ口酢酸による保護基除去工程)を行なった後
に、前記樹脂を反応器から取り出し、真空中で1夜乾燥
する。上記樹脂からペプチドをC一末端アミドの形で分
離し、同時にアミノ酸類の諸側鎖の全部から保護基を除
去するのには、上記樹脂を′゛テフロン″製反応器中で
フッ化水素rli/アニソール/ジメチルスルフィドの
95/5/0.5混合物でO℃で1時間処理する。窒素
気流中で上記フッ化水素酸を除去した後に、上記樹脂を
減圧乾燥し、次いでエチルエーテルで洗滌し、その後に
得られた粗製ベブチドを50%酢酸で抽出する。得られ
た酢酸溶液を減圧濃縮して小容量とし、次いで最初の精
製工程用の立体障害除外(steric 6xclus
ion)樹脂のカラムに直接に装填する。ペブチド(H
PLC分析法により特定される)を含有する両分を一緒
にし、真空中で蒸発させ、次いで凍結乾燥する。
トリフルオ口酢酸による保護基除去工程)を行なった後
に、前記樹脂を反応器から取り出し、真空中で1夜乾燥
する。上記樹脂からペプチドをC一末端アミドの形で分
離し、同時にアミノ酸類の諸側鎖の全部から保護基を除
去するのには、上記樹脂を′゛テフロン″製反応器中で
フッ化水素rli/アニソール/ジメチルスルフィドの
95/5/0.5混合物でO℃で1時間処理する。窒素
気流中で上記フッ化水素酸を除去した後に、上記樹脂を
減圧乾燥し、次いでエチルエーテルで洗滌し、その後に
得られた粗製ベブチドを50%酢酸で抽出する。得られ
た酢酸溶液を減圧濃縮して小容量とし、次いで最初の精
製工程用の立体障害除外(steric 6xclus
ion)樹脂のカラムに直接に装填する。ペブチド(H
PLC分析法により特定される)を含有する両分を一緒
にし、真空中で蒸発させ、次いで凍結乾燥する。
最後に,ペプチドを98%以上の純度で得ろために、分
離用逆相高圧クロマトグラフ法で精製する。
離用逆相高圧クロマトグラフ法で精製する。
本発明を以下の実施例により更に詳しく説明する。
実施例1
0.45ミリ当量/樹脂1gのアミノ基を有するM B
11 A樹脂[Novabiochem社(スイス国
)製] 2.0gを半自動合成装ii7Laborte
c SP640(商品名)の反応器に装入した。前記樹
脂をトリエチルアミンの10%クロロホルム溶液(2
X i5ml)で2回(5分+15分)手動で洗j條し
、次いで塩化メチレン(3 X 15ml2)で3回(
3×1分)手動で洗滌することにより中和した。α−ア
ミノ基をt−ブトキシ力ルボニル([locと略記する
)基で保護し且つ側鎖のグアニジン基をp−1−ルエン
スルホニル基(トシル基ともいう; Tocと略記する
)で保護してあるアルギニンを用いて、慣用の対称酸無
水物縮合方法でアルギニンを樹脂に連結した。
11 A樹脂[Novabiochem社(スイス国
)製] 2.0gを半自動合成装ii7Laborte
c SP640(商品名)の反応器に装入した。前記樹
脂をトリエチルアミンの10%クロロホルム溶液(2
X i5ml)で2回(5分+15分)手動で洗j條し
、次いで塩化メチレン(3 X 15ml2)で3回(
3×1分)手動で洗滌することにより中和した。α−ア
ミノ基をt−ブトキシ力ルボニル([locと略記する
)基で保護し且つ側鎖のグアニジン基をp−1−ルエン
スルホニル基(トシル基ともいう; Tocと略記する
)で保護してあるアルギニンを用いて、慣用の対称酸無
水物縮合方法でアルギニンを樹脂に連結した。
すなわち、Boa−Arg(Toc)−011 1.5
4g(3.6ミリ当+1)を塩化メチレン3mRに溶解
し、その溶液へ次いで塩化メチレンにジシクロへキシル
力ルポジイミド(DCC)を溶解してなるジシクロへキ
シル力ルポジイミドの8%(重量/容量)溶液4.64
mU(1.8ミリ当量に相当する)を水浴中で連続的に
電磁攪拌しながら加えた。生成されたアミノ酸活性魚水
物を含む1!}られた混合液をグーチ(Gooch)濾
過器で濾過して生成したジシクロヘキシル尿素を除去し
、得られた濾液を前記の樹脂を含む反応器に加え、更に
ジメチルホルムアミド5mflで希釈し,次いで自動的
アミノ酸連結反応のサイクル(第1表参照)を開始させ
た。
4g(3.6ミリ当+1)を塩化メチレン3mRに溶解
し、その溶液へ次いで塩化メチレンにジシクロへキシル
力ルポジイミド(DCC)を溶解してなるジシクロへキ
シル力ルポジイミドの8%(重量/容量)溶液4.64
mU(1.8ミリ当量に相当する)を水浴中で連続的に
電磁攪拌しながら加えた。生成されたアミノ酸活性魚水
物を含む1!}られた混合液をグーチ(Gooch)濾
過器で濾過して生成したジシクロヘキシル尿素を除去し
、得られた濾液を前記の樹脂を含む反応器に加え、更に
ジメチルホルムアミド5mflで希釈し,次いで自動的
アミノ酸連結反応のサイクル(第1表参照)を開始させ
た。
』 1 聚一
自動的アミノ酸連結サイクル手順
1.洗 滌:塩化メチレン 1回×
1分3.上記と同じ 4.洗 滌;塩化メチレン 1回XlS分 3回×{分 6。洗 滌;塩化メチレン 3回X1分 ミノ酸無水物を使用 3回X60分8.洗
滌;塩化メチレン 2回×1分9.洗
滌;イソプロパノール 2回X2分10
. 洗 滌;塩化メチレン 3回
×1分前記第1表に記載のアミノ酸連結サイクルの終了
時に、前記樹脂から一部分を試料として取出し、この試
料についてKaiser試験(すなわちニンヒドリン呈
色試験)を実施した。アミノ酸の組み込み率が99%よ
りも高い場合には、アミノ基からの保護基の自動的除去
工程を開始させるが、左もなくばアミノ酸連結工程を反
復する。次後に複数のアミノ酸を順次に連結するに当っ
ては常に第1表に手順に従い、下記のアミノ酸を以下に
示した量で使用した。すなわち、Boc−DTrρ(3
回の連結の各々について1.09g)、Boa−Val
(0.78g). Boc−(0−2’−ブロモベンジ
ノレオキシ力ルボニル)−Tyr(1.78 g ).
Boa−アスパラギン酸シクロヘキシルエステル(1.
I.2E)及びBoc−tosyl−アルギニン(1.
54 K )である。
1分3.上記と同じ 4.洗 滌;塩化メチレン 1回XlS分 3回×{分 6。洗 滌;塩化メチレン 3回X1分 ミノ酸無水物を使用 3回X60分8.洗
滌;塩化メチレン 2回×1分9.洗
滌;イソプロパノール 2回X2分10
. 洗 滌;塩化メチレン 3回
×1分前記第1表に記載のアミノ酸連結サイクルの終了
時に、前記樹脂から一部分を試料として取出し、この試
料についてKaiser試験(すなわちニンヒドリン呈
色試験)を実施した。アミノ酸の組み込み率が99%よ
りも高い場合には、アミノ基からの保護基の自動的除去
工程を開始させるが、左もなくばアミノ酸連結工程を反
復する。次後に複数のアミノ酸を順次に連結するに当っ
ては常に第1表に手順に従い、下記のアミノ酸を以下に
示した量で使用した。すなわち、Boc−DTrρ(3
回の連結の各々について1.09g)、Boa−Val
(0.78g). Boc−(0−2’−ブロモベンジ
ノレオキシ力ルボニル)−Tyr(1.78 g ).
Boa−アスパラギン酸シクロヘキシルエステル(1.
I.2E)及びBoc−tosyl−アルギニン(1.
54 K )である。
最後のアミノ酸連結を行なった後に、前記の保護基除去
工程を反復し、樹脂を反応器から取り出し、次いで炭酸
カリウム上で減圧乾燥して生或物3.60 gを得た。
工程を反復し、樹脂を反応器から取り出し、次いで炭酸
カリウム上で減圧乾燥して生或物3.60 gを得た。
次いで,フッ化水素酸を用いて樹脂からのペプチドの分
離及び同時に側鎖からの保護基の除去を行なった。得ら
れたべプチドー樹脂2gをアニソール2+nQ及びジメ
チルスルフィド0.2ml2と共にテフロン製反応器に
入れ、混合物を一50℃に冷却し、その後に濃フッ化水
i酸20一を蒸留して生じた蒸気を吹込み、次いで電磁
撹拌を水浴中で60分間続けた。窒素を吹き込むことに
よって、フッ化水素を除去し、得られた粗生成物を減圧
下で2時間乾燥し、エチルエーテル(2Xl5l+2)
で洗滌し、次いで50%酢酸(3Xl5m塁)中に抽出
し、その後にグーチ濾過器を通して濾過して使用済み樹
脂を除去した。このようにして得られた粗生成物溶液を
ロータリーエバボレーター中でぬ縮して小容量にしLH
20カラム(2.5 x 100cn+)に直接に装填
し、0.2M酢酸/アセトニトリルのl/1混合液(2
Q)を用いて重力で溶出し、10mllずつの画分を採
集した。ペプチド含有画分を流出液のUVプロット(2
45r+m)により同定し、一緒にし,ロータリエバボ
レーター中で濃縮して小容量にし,次いで凍結乾燥し、
粗生成物450mgを得た。高圧液体クロマjヘグラフ
ィーによる生成物の最終精製については、上記粗生成物
100Hlgを0.05%トリフルオロ酢酸水溶液/ア
セ1・ニトリルの8:2の混合液4H劃に溶解し、この
ようにして得られた透明l8液をRPl8カラム(1.
.5X15cI+1)に装填し、254nmでUV検出
しながら0.05%トリフルオ口酢酸を含むアセトニト
リルの20%から80%までの0.05%1−リフルオ
口酢酸に対する濃度勾配でlomff/分の流量で12
0分lidで溶出した.約25分で生成物が溶出し、均
質な両分を一緒にし、濃縮し、次いで凍結乾燥して生成
物26■を得た。HPLc(高圧液体クロマトグラフィ
ー)特性決定: 3.9X150nn C18 Wat
ers Delta−Pak力ラム、0.05% トリ
フルオロ酢酸に対するアセトニトリルの濃度勾配20分
で20〜80%、流m1mQ/分, 210nmでのU
V検出:RT(保持時間=8.3分、HPLC純度=9
8.0%。
離及び同時に側鎖からの保護基の除去を行なった。得ら
れたべプチドー樹脂2gをアニソール2+nQ及びジメ
チルスルフィド0.2ml2と共にテフロン製反応器に
入れ、混合物を一50℃に冷却し、その後に濃フッ化水
i酸20一を蒸留して生じた蒸気を吹込み、次いで電磁
撹拌を水浴中で60分間続けた。窒素を吹き込むことに
よって、フッ化水素を除去し、得られた粗生成物を減圧
下で2時間乾燥し、エチルエーテル(2Xl5l+2)
で洗滌し、次いで50%酢酸(3Xl5m塁)中に抽出
し、その後にグーチ濾過器を通して濾過して使用済み樹
脂を除去した。このようにして得られた粗生成物溶液を
ロータリーエバボレーター中でぬ縮して小容量にしLH
20カラム(2.5 x 100cn+)に直接に装填
し、0.2M酢酸/アセトニトリルのl/1混合液(2
Q)を用いて重力で溶出し、10mllずつの画分を採
集した。ペプチド含有画分を流出液のUVプロット(2
45r+m)により同定し、一緒にし,ロータリエバボ
レーター中で濃縮して小容量にし,次いで凍結乾燥し、
粗生成物450mgを得た。高圧液体クロマjヘグラフ
ィーによる生成物の最終精製については、上記粗生成物
100Hlgを0.05%トリフルオロ酢酸水溶液/ア
セ1・ニトリルの8:2の混合液4H劃に溶解し、この
ようにして得られた透明l8液をRPl8カラム(1.
.5X15cI+1)に装填し、254nmでUV検出
しながら0.05%トリフルオ口酢酸を含むアセトニト
リルの20%から80%までの0.05%1−リフルオ
口酢酸に対する濃度勾配でlomff/分の流量で12
0分lidで溶出した.約25分で生成物が溶出し、均
質な両分を一緒にし、濃縮し、次いで凍結乾燥して生成
物26■を得た。HPLc(高圧液体クロマトグラフィ
ー)特性決定: 3.9X150nn C18 Wat
ers Delta−Pak力ラム、0.05% トリ
フルオロ酢酸に対するアセトニトリルの濃度勾配20分
で20〜80%、流m1mQ/分, 210nmでのU
V検出:RT(保持時間=8.3分、HPLC純度=9
8.0%。
失笈旌茎
のアミノ 1:
H−Asp−’Tyr−DTrp−Val−DTrp−
DTrp−DTrp−NH2を するヘプタペプチドの
八 0.5ミリ当量/樹脂1gのアミノ基を有する゛’Fm
oc(フルオレニルメトキシカルボニル)化方法(st
ra−tegy)によって:AfAしたアミドペプチド
用樹脂″(CIl,O−Ph(1. 4)−Cll(N
H−Fmoc)−Ph(1. 4)−0−(CI,)3
−CONH−CH (Cll3)−CONIi−CH,
−Ph一重合体; [1 a c h e m社(ス
イス国)tJ] 1、Ogを半自動合成装i! L a
b o r t e cSP640の反応器に装入し
た。フルオレニルメトキシ力ルボニル(Fmocと鴫記
する)基の加水分解をジメチルホルムアミド(DMFと
略記する)に溶解した20%ピペリジンを用いて、第2
表に示した手順のサイクル1〜7に従って自動的に行な
った。
DTrp−DTrp−NH2を するヘプタペプチドの
八 0.5ミリ当量/樹脂1gのアミノ基を有する゛’Fm
oc(フルオレニルメトキシカルボニル)化方法(st
ra−tegy)によって:AfAしたアミドペプチド
用樹脂″(CIl,O−Ph(1. 4)−Cll(N
H−Fmoc)−Ph(1. 4)−0−(CI,)3
−CONH−CH (Cll3)−CONIi−CH,
−Ph一重合体; [1 a c h e m社(ス
イス国)tJ] 1、Ogを半自動合成装i! L a
b o r t e cSP640の反応器に装入し
た。フルオレニルメトキシ力ルボニル(Fmocと鴫記
する)基の加水分解をジメチルホルムアミド(DMFと
略記する)に溶解した20%ピペリジンを用いて、第2
表に示した手順のサイクル1〜7に従って自動的に行な
った。
一第−2一表一
′″F m o c ”方法による自動的アミノ酸連結
サイクル手順1.保護基除去:20%ピペリジンDMF
溶液 1回×3分2.上記と同じ
工回×7分3。洗 滌;塩化メ
チレン(DCMと略記する) 2回×1分4.洗 1
11;DMF 2回X1分5
.洗 滌;イソプロパノール 2回×
1分6.洗 滌: DMF
2回×工分7.洗 滌; DCM
2回×1分lO.洗 滌;イソプロバノール
1回×1分比洗 滌; DMF
1回×1分12.洗 滌; DCM
1回×工分13.洗 滌;上記
10以降を2回以上反復次いで、ジンクロへキシル力ル
ポジイミド(DCCと略記する)によって“その場で(
in siju)″′製造したヒドロキシベンゾトリア
ゾール(llOBtと略記する)を用いる活性エステル
法により最初のD一トリブトファンの連結を行なった。
サイクル手順1.保護基除去:20%ピペリジンDMF
溶液 1回×3分2.上記と同じ
工回×7分3。洗 滌;塩化メ
チレン(DCMと略記する) 2回×1分4.洗 1
11;DMF 2回X1分5
.洗 滌;イソプロパノール 2回×
1分6.洗 滌: DMF
2回×工分7.洗 滌; DCM
2回×1分lO.洗 滌;イソプロバノール
1回×1分比洗 滌; DMF
1回×1分12.洗 滌; DCM
1回×工分13.洗 滌;上記
10以降を2回以上反復次いで、ジンクロへキシル力ル
ポジイミド(DCCと略記する)によって“その場で(
in siju)″′製造したヒドロキシベンゾトリア
ゾール(llOBtと略記する)を用いる活性エステル
法により最初のD一トリブトファンの連結を行なった。
Fmoc − D− トリプトファン1.5ミリ当量(
欄脂のアミノ基に対して3倍過剰量)(0.639g)
とlIOBt2ミリ当量(0.310 g )をD(.
1 / D朴の2;1混合液12mffに溶解し、前記
合或装置の反応器に移し、次いで撹拌しながら2分間予
備平衡化した後にDCM / DMFの2=1混合液に
1容解したIM DCC 1、5mf2(1.5ミリ当
量に相当する)を加え、このようにして前記の自動的ア
ミノ酸連結工程(第2表の9行目の操作)を開始させた
。第2表に記載の連結工程の終了時に、樹脂から一部分
を試料として取出し,この試料についてKaiser試
験を実施した。アミノ酸の組み込み率が99%以上であ
る場合には同様に前記の連結工程を反復した。連続的ア
ミノ酸連結を各々行なうに当っては、常に第2表の手順
に従い、下記の各アミノ酸を以下に示した量で使用した
。すなわち、Fmoc−DTrp(3回の連結の各々に
ついて0.639 g )、Fmoc−バリン(0.5
09 g ). Fmoc−チロシンt−ブチルエーテ
ル(0.689g)及びFmoc−アスパラギン酸t−
ブチルエステル(0.617 g )である。最後のア
ミノ酸連結を行なった後に、保護基除去工程を反復し、
樹脂を反応器から取り出し、次いで炭酸カリウム上で真
空乾燥して生成物1.650gを得た。次いで、樹脂か
らのペプチドの分離とトリフルオロ酢m(TFAと略記
する)による各側鎖からの保護基の除去とを同時に行な
った。すなわち. TFA/エタンジチオール/ρ−ク
レゾールの27 : 1.5 : [5(容量/容量比
)の混合物からなる溶液30−を入れた小さなフラスコ
にペプチドー樹脂1.5gを入れ、電磁撹拌しながら3
5℃の水浴中で2時間保持した。粗生成物を沈澱させる
ために、O℃に冷却したエチルエーテル10容量とO℃
に冷却した石浦エーテル5容量とを加えた。得られた混
合物を−78゜Cで1夜保持し、次いで多孔質のロート
状濾過器上で濾過して粗結品質生成物350■を得た。
欄脂のアミノ基に対して3倍過剰量)(0.639g)
とlIOBt2ミリ当量(0.310 g )をD(.
1 / D朴の2;1混合液12mffに溶解し、前記
合或装置の反応器に移し、次いで撹拌しながら2分間予
備平衡化した後にDCM / DMFの2=1混合液に
1容解したIM DCC 1、5mf2(1.5ミリ当
量に相当する)を加え、このようにして前記の自動的ア
ミノ酸連結工程(第2表の9行目の操作)を開始させた
。第2表に記載の連結工程の終了時に、樹脂から一部分
を試料として取出し,この試料についてKaiser試
験を実施した。アミノ酸の組み込み率が99%以上であ
る場合には同様に前記の連結工程を反復した。連続的ア
ミノ酸連結を各々行なうに当っては、常に第2表の手順
に従い、下記の各アミノ酸を以下に示した量で使用した
。すなわち、Fmoc−DTrp(3回の連結の各々に
ついて0.639 g )、Fmoc−バリン(0.5
09 g ). Fmoc−チロシンt−ブチルエーテ
ル(0.689g)及びFmoc−アスパラギン酸t−
ブチルエステル(0.617 g )である。最後のア
ミノ酸連結を行なった後に、保護基除去工程を反復し、
樹脂を反応器から取り出し、次いで炭酸カリウム上で真
空乾燥して生成物1.650gを得た。次いで、樹脂か
らのペプチドの分離とトリフルオロ酢m(TFAと略記
する)による各側鎖からの保護基の除去とを同時に行な
った。すなわち. TFA/エタンジチオール/ρ−ク
レゾールの27 : 1.5 : [5(容量/容量比
)の混合物からなる溶液30−を入れた小さなフラスコ
にペプチドー樹脂1.5gを入れ、電磁撹拌しながら3
5℃の水浴中で2時間保持した。粗生成物を沈澱させる
ために、O℃に冷却したエチルエーテル10容量とO℃
に冷却した石浦エーテル5容量とを加えた。得られた混
合物を−78゜Cで1夜保持し、次いで多孔質のロート
状濾過器上で濾過して粗結品質生成物350■を得た。
高圧液体グロマトグラフィーによるm製については、実
施例1の方法を行ない生或物12■を得た。HPLC分
析(分析条件1土実施例1に記載の条件と同一である)
による特性決定: Rt(保持時間) =12.6分、
HPLC純度=98%。
施例1の方法を行ない生或物12■を得た。HPLC分
析(分析条件1土実施例1に記載の条件と同一である)
による特性決定: Rt(保持時間) =12.6分、
HPLC純度=98%。
本発明に包含される前記一般式(1)の化合物の?の非
限定的な例は次の通りである。
限定的な例は次の通りである。
F1−Δsp−Tyr−DTrp−Val−DTrp−
DTrp−Tyr−NH.LRt == 11 .7A
sp−Tyr−DTrp−Val−DTrp−DTrp
−Ar(;−NH■Rt= 9,9If−Thr−As
p−Tyr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−
Arg−NH, Rt= 9.6Arg−Asp−T
yr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−Met
−NH2 Rt=11.011−Lys−Asp−T
yr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−Arg
一〜H2 Rt= 8.8l1−八rg−Asp
−Tyr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−P
he−NH, llt=11.7H−.Arg−
Asp−Ser−DTrp−Val−DTrp−DTr
p−Met−NJI, l1t=10,5H−As
p−Scr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−
Mct−Nt{, Rt = 1 1.3H−Ly
s−Asp−Met−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−Arg−Nil2 Rj= 8.7−A
rg−Asp−Ser−DTrp−Val−DTrp−
DTrp−Arg−NH2Rt= 8.2I1−Asp
−Tyr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−M
et、−NH2 Rt=12.3H−As
p−Tyr−DTrp−Val−DTrp−’rrp−
Arg−Nil2Rt= 9.4H− Asp−Trp
− DTrp−Va l−DTrp−DTrp−Arg
−Nl l, R t. = ] 0 . 91
1−Asp−DTrp−DTrp−Val−DTrp−
DTrp−Arg−NH■ Rt= 9.
4上記のliPLc保持時間(Rt)は実施例1に記載
のようにして測定した。
DTrp−Tyr−NH.LRt == 11 .7A
sp−Tyr−DTrp−Val−DTrp−DTrp
−Ar(;−NH■Rt= 9,9If−Thr−As
p−Tyr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−
Arg−NH, Rt= 9.6Arg−Asp−T
yr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−Met
−NH2 Rt=11.011−Lys−Asp−T
yr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−Arg
一〜H2 Rt= 8.8l1−八rg−Asp
−Tyr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−P
he−NH, llt=11.7H−.Arg−
Asp−Ser−DTrp−Val−DTrp−DTr
p−Met−NJI, l1t=10,5H−As
p−Scr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−
Mct−Nt{, Rt = 1 1.3H−Ly
s−Asp−Met−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−Arg−Nil2 Rj= 8.7−A
rg−Asp−Ser−DTrp−Val−DTrp−
DTrp−Arg−NH2Rt= 8.2I1−Asp
−Tyr−DTrp−Val−DTrp−DTrp−M
et、−NH2 Rt=12.3H−As
p−Tyr−DTrp−Val−DTrp−’rrp−
Arg−Nil2Rt= 9.4H− Asp−Trp
− DTrp−Va l−DTrp−DTrp−Arg
−Nl l, R t. = ] 0 . 91
1−Asp−DTrp−DTrp−Val−DTrp−
DTrp−Arg−NH■ Rt= 9.
4上記のliPLc保持時間(Rt)は実施例1に記載
のようにして測定した。
在U’4’l鈎一括一性〜
作動薬又は桔抗薬としてニューロキニンAレセプターに
作用する本発明のペプチトの活性は試験標本を使用する
試験管内(in vitro)効力検定によって評価し
た。該効力検定においては、タキキニン及び関連ペプチ
ドによって生じる生物学的応答が専らニューロキニンA
レセプター(NK−2レセプター)に対する作用に基づ
いて測定される。用いる試験標本は単離したラットの輸
精管であり、これにタキキニン類が作用すると、電気的
刺激を伴なう輸精管の壁内神経によって生起された収縮
の増強作用(ρotentiation) を生みだす
。この試験標本におけるペプチド類の活性の測定はRo
veroらの論文(rNeuropeptides J
、10, 355(1987))に記載のようにして行
なった。評価したペプチドの作動薬活性はPD2として
表わした。このPD2は最大効果の50%を生じる作動
薬のモル請度の逆対数を表わす。拮抗薬活性はρA2と
して示される。PA2は作動薬の2倍〜2倍に等しい有
効投与量に等しい投与量を生じる拮抗薬のモル濃度の逆
対数を表わす。
作用する本発明のペプチトの活性は試験標本を使用する
試験管内(in vitro)効力検定によって評価し
た。該効力検定においては、タキキニン及び関連ペプチ
ドによって生じる生物学的応答が専らニューロキニンA
レセプター(NK−2レセプター)に対する作用に基づ
いて測定される。用いる試験標本は単離したラットの輸
精管であり、これにタキキニン類が作用すると、電気的
刺激を伴なう輸精管の壁内神経によって生起された収縮
の増強作用(ρotentiation) を生みだす
。この試験標本におけるペプチド類の活性の測定はRo
veroらの論文(rNeuropeptides J
、10, 355(1987))に記載のようにして行
なった。評価したペプチドの作動薬活性はPD2として
表わした。このPD2は最大効果の50%を生じる作動
薬のモル請度の逆対数を表わす。拮抗薬活性はρA2と
して示される。PA2は作動薬の2倍〜2倍に等しい有
効投与量に等しい投与量を生じる拮抗薬のモル濃度の逆
対数を表わす。
PDzはVan Rossumの論文(rArch.I
nt.Phermacodyn.J,ν巳、249 (
1963))に従って算出し、ρ八2はSchildプ
ロツh [0.Arunlakshanaとt1、o.
schildの論文「8r.J,E’harmaco1
.J、14、48(1959)〕の分析から算出した。
nt.Phermacodyn.J,ν巳、249 (
1963))に従って算出し、ρ八2はSchildプ
ロツh [0.Arunlakshanaとt1、o.
schildの論文「8r.J,E’harmaco1
.J、14、48(1959)〕の分析から算出した。
得られた結果は以下の通りである。
」44一表−
拮抗薬活性は接触時間15分後のニューロキニンAの濃
度/応答曲線の右方向に平行移動(para1、lel
displacc+++enL)を生じる生成物の活性
として評価される。上記の表中のNKAはニューロキニ
ンAを表わし、NKA(4−10)はニューロキニンA
のC一末端ヘプタペプチド断片である。
度/応答曲線の右方向に平行移動(para1、lel
displacc+++enL)を生じる生成物の活性
として評価される。上記の表中のNKAはニューロキニ
ンAを表わし、NKA(4−10)はニューロキニンA
のC一末端ヘプタペプチド断片である。
記載した方法は本発明の実際的な例証としてのみ示した
単なる例示であり,本発明は本発明の基礎である概念の
範囲から免脱することなくその形及び配列におい゛C変
化し得る。
単なる例示であり,本発明は本発明の基礎である概念の
範囲から免脱することなくその形及び配列におい゛C変
化し得る。
注)表中のn.a.は活性がないことを示す。
上記桔抗薬類は、単離したラットの輸精管の神経によっ
て生起された収縮の増強作用を生じる。
て生起された収縮の増強作用を生じる。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、次の式( I ): X−Asp−Y−DTrp−Val−DTrp−Z−K
−NH_2(I)(式中、XはHを表わすかあるいはH
及びアミノ酸残基Arg、DArg、Lys、DLys
、Thr又はDThrを表わし、Yはアミノ酸残基Ty
r、Trp、DTrp、Ser又はMetを表わし、Z
はアミノ酸残基Trp又はDTrpを表わし、Kはアミ
ノ酸残基Arg、Phe、DTrp、Tyr又はMet
を表わす)で示される合成ペプチド並びにその有機及び
無機酸との医薬的に許容し得る塩。 2、次の式: X−Asp−Y−DTrp−Val−DTrp−Z−K
−NH_2(式中、XはHを表わすかあるいはH及びア
ミノ酸残基Arg、Lys又はThrを表わし、Yはア
ミノ酸残基Tyrを表わし、Zはアミノ酸残基DTrp
を表わし、Kはアミノ酸残基Arg、Phe、DTrp
、Tyr又はMetを表わす)で示される請求項1記載
の合成ペプチド並びにその有機及び無機酸との医薬的に
許容し得る塩。 3、次の構造: H−Arg−Asp−Tyr−DTrp−Val−DT
rp−DTrp−Arg−NH_2を有する請求項1又
は2記載のオクタペプチド。 4、次の構造: H−Asp−Tyr−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−Arg−NH_2を有する請求項1又は2記載
のヘプタペプチド。 5、次の構造: H−Arg−Asp−Tyr−DTrp−Val−DT
rp−DTrp−Phe−NH_2を有する請求項1又
は2記載のオクタペプチド。 6、次の構造: H−Asp−Tyr−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−DTrp−NH_2を有する請求項1又は2記
載のヘプタペプチド。 7、次の構造: H−Asp−Trp−DTrp−Val−DTrp−D
Trp−Arg−NH_2を有する請求項1又は請求項
2記載のヘプタペプチド。 8、請求項1又は請求項2記載の合成ペプチド類を有効
成分とすることを特徴とするニューロキニンA(NK−
2レセプター)に対する競合的拮抗薬。 9、請求項1又は請求項2記載の合成ペプチドの製造法
であって、不溶性の重合体状支持体上で前記ペプチド鎖
をC−末端からN−末端方向に固相合成法で組み立てる
工程と、次後のフッ化水素酸中で加水分解することによ
って前記重合体状支持体から前記ペプチド鎖を切り離す
工程とからなる前記合成ペプチドの製造法。 10、請求項1又は請求項2記載の合成ペプチドの製造
法であって、不溶性の重合体状支持体上で前記ペプチド
類をC−末端からN−末端方向に組み立てる固相合成反
応を行うに当って、適当に保護された側鎖基を有するア
ミノ酸であって且つ前記重合体状支持体にカルボキシル
官能基によって係留されているC−末端アミノ酸に対し
て適当に保護されたα−アミノ基と適当に保護された側
鎖とを有する活性型の第2のアミノ酸を有機溶媒中で反
応させる工程;次後に、適当に保護された活性型の所定
の複数のアミノ酸を上記と同じ要領で順次に連結する工
程;次いで前記重合体状支持体から、組み立てた前記ペ
プチドを切り離す工程及び適当な酸又は塩基中で加水分
解を行なうことによって、保護基を合成されたペプチド
から除去する工程からなる前記合成ペプチドの製造法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IT8909432A IT1233696B (it) | 1989-05-29 | 1989-05-29 | Peptidi di sintesi antagonisti della neurochinina a. loro sali e relativi procedimenti di fabbricazione |
IT9432A/89 | 1989-05-29 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0317098A true JPH0317098A (ja) | 1991-01-25 |
Family
ID=11130065
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2137315A Pending JPH0317098A (ja) | 1989-05-29 | 1990-05-29 | 合成ペプチド及びその塩並びにそれらの製造法 |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5128447A (ja) |
EP (1) | EP0401177B1 (ja) |
JP (1) | JPH0317098A (ja) |
AT (1) | ATE94169T1 (ja) |
DE (1) | DE69003172T2 (ja) |
ES (1) | ES2058873T3 (ja) |
IT (1) | IT1233696B (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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