JPH0296569A - 新規生理活性物質ロイヒスチン及びその製造法 - Google Patents
新規生理活性物質ロイヒスチン及びその製造法Info
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- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
理活性物質ロイヒスチン及びその製造法に関するもので
ある。
の生産する生理活性物質の中で、これまでにアクチノニ
ン(Actinonin)、プロベスチン(Probe
stin)およびプロスタチン(Prostatin)
などがアミノペプチダーゼMを阻害することが報告され
ている( rThe Journal of Anti
bioticsJ第38巻1629−1630頁(19
85)、特願昭62−240600号〕。しかし、これ
らの阻害物質はアミノペプチダーゼMを阻害するととも
に、ロイシンアミノペプチダーゼをも阻害するため、こ
れら2種の酵素の分類、同定などをするうえで、アミノ
ペプチダーゼM(AP−M)を阻害するがロイシンアミ
ノペプチダーゼ(Leu−AP)を阻害しない阻害物質
が望まれている。
ーゼMに対し阻害作用を有する物質の探索を続けたとこ
ろ、バチルス属に属する細菌菌株の培養液中にアミノペ
プチダーゼMを強く阻害する物質が生産されていること
を見出した。その有動物質を単離精製することに成功し
、ロイヒスチン([、cuhistin)と命名した。
及び生物学的性状を確定することにより本発明を完成し
た。
を提供するものである。ロイヒスチンの理化学的性質は
下記の通りである。
量: 241 SI−MS m/z(4)融
点: 178−180℃(5)比旋光度: (α
3”−32,0°(cl、メタノール)(6)紫外線吸
収スペクトル: 1mg/+nQメタノール溶液中で2
10〜35Onm間に特異的な吸収を示さない。
。
に示す。
に示す。
薬、パウリ試薬に陽性。
ドに可溶であり、アセトン、酢酸エチル、クロロホルム
、ヘキサンに不溶である。
シリカゲル(メルク社製 Art、 5715)薄層を
用い展開溶媒としてn−ブタノール−酢酸−水 (2:
l:1)を用いた。
イヒスチンとプロベスチン、プロスタチンおよびアクチ
ノニンの抗アミノペプチダーゼ活性(IC,o値)は次
の第1表に示すとおりである。
はアミノペプチダーゼ■3を意味する。
アミノペプチダーゼM活性は同等かもしくは弱いがロイ
シンアミノペプチダーゼには全く阻害作用を示さない。
る物質であると認められた。従って、本発明により得ら
れた化合物は、免疫増強剤として有用である。また抗腫
よう免疫増強剤としての用途も期待される。
チン生産菌を培養し、その培養液からロイヒスチンを採
取することを特徴とする生理活性物質ロイヒスチンの製
造法を提供するものである。
、本発明者らにより東京都文京区の土壌より新たに分離
された細菌であってBMll、56−14Fの菌株番号
を付された菌株がある。8M1156−14F株の菌学
的性状は次の通りである。
.5ミクロンである。
8 X 1.0〜1.6ミクロン、位置は中立(cen
tral)、菌体は膨隆している。芽胞は、その側部に
クリスタルバイオレットでカヌーの形によく染まる部分
(parasporal body)を有し、耐熱性で
ある。
。
規則、色はうす黄(paleyellotm)〜うす茶
(pale brown)を示す。培養後3日目頃より
、コロニーの表面はしわ状を呈する。拡散性色素は認め
られない。
す黄(pale yelloす)からうす茶(pale
brown)を示す。
が濁り、培地表面に菌膜をつくる。3日目には培地表面
を菌膜がおおう。
培養後4日目頃より、液化がはじまった。その型は層状
である。30℃培養の場合は、培地中に全体的に生育を
認め、2日目で表面に菌膜を形成する。ゼラチンの液化
は培養後3日目頃より始まり、144日目ほぼ完了した
。
培養後7日目頃に試験管壁にリング状に生育し、培地表
面に菌膜を形成する。
トン化が始まった。反応は酸性ではなかった。
30℃) (1)硝酸塩の還元:陽性 (2)脱窒反応(駒形らの方法:長谷用武治編著;「微
生物の分類と同定」223頁、東京大学出版会、197
5年):陰性 (3) Mrlテスト(ブドウ糖ペプトン培地;ブドウ
糖5g、ペプトン10g、精製水1000ff+u、
pH7,6):陰性 (4) V−Pテスト(ブドウ糖ペプトン培地;ブドウ
糖5g、ペプトン10g、精製水10100O,pH7
,6) :陰性 (5)インドールの生成:培養後1〜3日の観察で陰性
、その後4〜10日の観察では判定困難のため、疑わし
い。
ず、Christensenの培地では生育するが斜面
部の赤変を認めず陰性であった。
生成せず、硫酸アンモニウムの場合は生育する。
かに黄色味を帯び、Uv下できわめてわずかに蛍光色を
発する。
2)オキシダーゼ:陽性 (13)カタラーゼ:陽性 (14)生育の範囲: p+15.7〜pH9,0の範
囲で生育を認め最適pHは6.0〜8.0である。また
、20℃〜45℃の範囲で生育を認め、最適温度は、3
0℃〜37℃である。
Fテスト(Hugh−Leifson法による。ただし
、培地に酵母エキス0.1%添加)二発酵型である。
塩化カリウム0.2g、塩化マグネシウム0.2g、酵
母エキス0.2g、寒天20g、精製水10100O、
ブロムクレゾールパープル0.2%溶液4mQを基礎培
地とし、糖を最終濃度が1%となるように加え、斜面と
する)を使用の場合: 〈ガスの生成〉 uBh−Le、1fson培地を使用し、上記15種の
糖類で試験: いずれの糖においても生成しない。
15g、精製水10100O,pH7,0)にリゾチー
ムを0.001%加え、本菌株を接種し、ロータリー・
シェーカー(180ppm)で30℃24時間振どう培
養を行い、菌の増殖を認めた。
は、通性嫌気性の有芽胞桿菌で、ダラム染色は不定であ
る。又1周鞭毛を有し、運動性を示す。芽胞は卵円形で
中立(central)、側部にクリスタルバイオレッ
トでカヌーの形によく染まる部分を有し、耐熱性である
。菌体は膨隆し、非抗酸性である。
表面はしわ状を呈する。ゼラチンを液化し、ミルクを凝
固、ペプトン化する。硝酸塩を還化し、脱窒反応は陰性
、MRテストは陰性、v−Pテストは陰性である。イン
ドールは検出されず、硫化水素を生成しない。デンプン
を分離せず、クエン酸を利用しない。又、ウレアーゼ反
応は陰性、オキシダーゼ反応は陽性、カタラーゼ反応は
、陽性であった。pH5,7〜9.0の範囲で生育し、
最適pl+は6.0〜8.0である。又、20℃〜45
℃の範囲で生育を認め、最適温度は:30℃〜37℃で
ある。ブドウ糖を発酵的に分解して酸を生成するが、ガ
スは生成しない。なお、D−マンノース、D〜フラクト
ース、マルトース、トレハロース、D−マンニトール、
グリセリンからも、それぞれ酸を生成し、ガスを生成し
ない。リゾチームには、抵抗性であり、カゼインを分解
する。
llergey’ sManual of Det
erminative Bacterj、ol、og
y 8thedjtionJ (It、 E、 1
luchanan & N、 E、 Gibbons著
。
S Company、 llaltjmore。
(Racj l Lu5)属にノ1すζすると考えられ
る。更に、種を検索すると、芽胞形成時の菌体の膨隆を
認め、グルコースから酸を生成しアセトインを生成せず
、カタラーゼ陽性を示す種、すなわちBacillus
與町ヨ二忠馴およびBacjllus brcうvis
が近縁の種としてあげられる。8M1156−14F1
株の性状を上記2種の性状と比較すると、次の第2表の
ようになる。
は芽胞側部にカヌーの形によく染色される部分(par
asporal body)を有し、クエン酸を利用せ
ず。
brevisと区別され、一方、Bacillus 1
aterosporusときわめて類似した性状を示し
ている。
テロスボルス(Bacillus 1ateros o
rus)8M1156−14F1と同定した。
業技術研究所に寄託申請し、昭和63年8月12日に微
工研菌寄第10193号として受託された。
ようにその性状が変化しやすい。たとえばBMI156
−14F株の、またはこの株に由来する突然変異株(自
然発生または誘発性)、形質融合体または遺伝子組換え
体であっても、ロイヒスチンの生産能を有するバチルス
属の菌はすべて本発明の方法に使用することが出来る。
る栄養物を含有する培地で培養する。栄養源としては、
グルコース、水あめ、デキス1へリン、シュクロース、
でんぷん、糖蜜、動・植物油等を使用できる。また窒素
源として、大豆粉、小麦はい芽、コーンステイープ・リ
カー、綿実かす、肉エキス、ペプトン、ISF母エキス
、硫酸アンモニウム、硝酸ソーダ、尿素等を利用できる
。その他、必要に応じ、ナトリウム、コバルト、塩素、
燐酸、硫酸、及びその他のイオンを生成することの出来
る無機塩類を添加することは有効である。また菌の生育
を助け、生理活性物質ロイヒスチンの生産を促進するよ
うな有機及び無機物を適当に添加することができる。
法が適している。培養に適当な温度は15〜37℃であ
るが、多くの場合、26〜:(0℃付近で培養する。生
理活性物質ロイヒスチンの生産は培地や培養条件により
異なるが、振どう培養、タンク培養とも通常1〜10日
の間でその??積が最高に達する。培養物中の生理活性
物質ロイヒスチンの蓄積置が最話になったときに培養を
停止し、培養液から目的物質を単離精製する。
取にあたっては、その性状を利用した通常の分離手段を
適宜組み合わせて抽出して精製することができる。即ち
培養濾液を吸着樹脂5P−206(三菱化成株式会社製
)のカラムに通し、水で洗浄し、メタノールなどの有機
溶媒で溶離する。溶離液から有機溶媒を留去したのち、
陽イオン交換樹脂JRC−50(オルガノ社製)のカラ
ムに通し、水で洗浄し、アンモニア水などで溶離する。
ことができる。
ロマトグラフィーなどを適宜組み合わせあるいは繰り返
すことによってロイヒスチンを単離する。
抗アミノペプチダーゼM活性の41す定に基づいて行っ
た(rJournal of Antibiotics
J第38巻。
ミド0.25n+lil、0.1Mのトリス−塩酸緩衝
液(pl!7.0)0.5mfl、検体を含む水溶液0
.2+nQを加えた混合溶液を37℃、3分間加温した
後、4 U/mgのアミノペプチダーゼM(ベーリンガ
ー・マンハイム社製)の溶液の0.05rIIQを加え
、37℃で30分間反応したのち、ツイーン(T讐ee
n 20)を10%、ファーストガーネットGBC塩を
0.1%含むIM酢酸ナトリウム緩wB液(pf14
、2) 1mQを加え、室温に15分放置後に、525
nmにおける吸光度(a)を測定した。同時にロイヒ
スチンを含まない緩衝液のみを用いた盲検反応液の吸光
度(b)を8111定し、アミノペプチダーゼM 11
+1害率を((b−a)/b) X100の式により計
算した。
す。
酸カルシウム0.2%を含む培地を用いた。なお殺菌前
の培地pHはp+!7.4に調整して使用した。
種培地を120℃で20分間殺菌し、これにバチルス・
エスピー・+3Ml1.56−14P1株(FERM
P−10193)の斜面培養の1〜2白金耳を接種し、
27℃で2日間振どう培養し種培養とした。ついで生産
培地としてグリセリン3.0%、魚粉2.0%、炭酸カ
ルシウム0.2%、L−ロイシン0.5%、!、−ヒス
チジン塩酸塩0.5%を含む培地(ρ117.4) を
500mQ容三角フラスコに110mQずつ分注し12
0℃で20分間殺菌し、前記種培養液:3mflずつを
接種し、27℃で4日間振どう培養した。培養終了後、
濾過助剤として珪藻土を加え濾過し、固体を含む固形物
および培養濾液を得た。
イオン5P−206の1Qのカラムにかけ、水で洗浄し
、30%、メタノール(4Q)で溶離した。活性画分を
含む溶離液を減圧濃縮して容積をIQとした。
(I!1型) 500m12のカラムにかけ、水で洗浄
し、INのアンモニア水で溶離した。活性画分を含む溶
離液を減圧濃縮して容積を’7mQとした。
CI GIEL CIIP−20P(三菱化成株式会社
″?)500mQのカラムにかけ、水で展開し、l−0
gずつ分画した。活性分画Nα10−15を減圧濃縮し
、黄色粉末450mgを得た。
したセファデックスG−10(ファルマシアファインケ
ミカル社製)IRのカラムにかけ、水を展開溶媒とする
クロマトグラフィーを行い、8にずつ分画した。活性分
画No21〜26を減圧濃縮すると、ロイヒスチンの白
色粉末240mgが得られた。
ペプチダーゼMを50%阻害した。
るものである。
her系)の肺臓から常法で単離された肺細胞の浮遊液
を調製する。−回洗滌後に、10%FC5添加のRPM
I1640培地に憩濁し、ナイロンウール塔にかける。
た後に、ナイロンウールに付着しなかった肺細胞を回収
する。回収した肺細胞にコンカナバリンA (Con
A )を加えて5%CO□条件下で炭酸ガス培養器内で
37℃で4時間反応させ、更にメチル・α−O−マンノ
ピラノシドを加えて反応を終了させた。
胞にロイヒスチンを種々の投与社で加えて、37°Cで
5%C02条件下に72時間反応させた。
え、細胞への311−チミジン取込み率を液体シンチレ
ーション・カウンターで1分間当りのカウント数(cp
m)として測定する。評価は、ロイヒスチンを加えない
群のカウントを100%とした基窄でT/C(%)を算
出し、ロイヒスチンによる肺細胞のチミジン取込み増加
率を評価した。有意差検定(P)はスチューデントし一
検定法で行った。
され、細胞の分裂の程度はDNAの合成の強弱を81と
して評価できる。マイトゲン(mitogen)の一種
であるCan Aで刺激された肺細胞がロイヒスチン無
添加の場合に比べてロイヒスチン添加群で311−チミ
ジンの取込み率を増加させたことは、肺細胞の細胞分裂
の頻度、すなわち増殖速度がロイヒスチンにより増加し
たことを示す。そして、牌細胞数の増加は免疫力が増強
したことを意味する。 第3表の結果から、6.25〜
100μg/mQのロイヒスチンの添加はCan A処
理による活性化b1.asts細胞の3II−チミジン
取込みを増加させたことが認められ、この細胞の細胞分
裂の頻度を増加させたものと認められる。
収スペクトルを示し、第2図はロイヒスチンの重メタノ
ール中で81’l定した400MHz水素核核磁気共鳴
スペクトルを示す。第3図はロイヒスチンの重メタノー
ル中で測定した100M)Iz炭素核核磁気共鳴スペク
トルを示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、下記の一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼ で表される化合物であることを特徴とする生理活性物質
ロイヒスチンまたはその塩。 2、バチルス属に属するロイヒスチン生産菌を培養し、
その培養物からロイヒスチンを採取することを特徴とす
る、生理活性物質ロイヒスチンの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63249130A JP2799176B2 (ja) | 1988-10-04 | 1988-10-04 | 新規生理活性物質ロイヒスチン及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63249130A JP2799176B2 (ja) | 1988-10-04 | 1988-10-04 | 新規生理活性物質ロイヒスチン及びその製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0296569A true JPH0296569A (ja) | 1990-04-09 |
JP2799176B2 JP2799176B2 (ja) | 1998-09-17 |
Family
ID=17188376
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63249130A Expired - Lifetime JP2799176B2 (ja) | 1988-10-04 | 1988-10-04 | 新規生理活性物質ロイヒスチン及びその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2799176B2 (ja) |
-
1988
- 1988-10-04 JP JP63249130A patent/JP2799176B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2799176B2 (ja) | 1998-09-17 |
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