JPH0239895A - ジペプチドの連続製造法 - Google Patents
ジペプチドの連続製造法Info
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- JPH0239895A JPH0239895A JP19016088A JP19016088A JPH0239895A JP H0239895 A JPH0239895 A JP H0239895A JP 19016088 A JP19016088 A JP 19016088A JP 19016088 A JP19016088 A JP 19016088A JP H0239895 A JPH0239895 A JP H0239895A
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Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Devices And Processes Conducted In The Presence Of Fluids And Solid Particles (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、N−置換アスパラギン酸とフェニルアラニン
低級アルキルエステルとを反応させてジペプチドを連続
的に製造する方法、詳しくは固定化金属プロテアーゼを
充填したカラムを利用した上記ジペプチドの連続的製造
方法に関する。
低級アルキルエステルとを反応させてジペプチドを連続
的に製造する方法、詳しくは固定化金属プロテアーゼを
充填したカラムを利用した上記ジペプチドの連続的製造
方法に関する。
従来技術とその問題点
近年、蛋白分解酵素の逆反応を利用して有用ペプチドを
合成しようとする試みが活発になってきている。かかる
蛋白分解酵素を利用する反応では、合成反応と分解反応
とが平衡し、この平衡に関与する化合物を系外に除くこ
とにより平衡を移動させることができ、都合のよいこと
にペプチドの合成反応系(平衡系)においては多くの場
合、合成される縮合物の方が原料とする基質よりも疎水
的で、水に対する溶解度が低く、この事実を利用してペ
プチド合成が行ない得る。また最近、水と2相をなす有
機溶媒を加えて生成物を抽出により糸外に除き、平衡を
合成側に移動させる方法が種々提案されている。
合成しようとする試みが活発になってきている。かかる
蛋白分解酵素を利用する反応では、合成反応と分解反応
とが平衡し、この平衡に関与する化合物を系外に除くこ
とにより平衡を移動させることができ、都合のよいこと
にペプチドの合成反応系(平衡系)においては多くの場
合、合成される縮合物の方が原料とする基質よりも疎水
的で、水に対する溶解度が低く、この事実を利用してペ
プチド合成が行ない得る。また最近、水と2相をなす有
機溶媒を加えて生成物を抽出により糸外に除き、平衡を
合成側に移動させる方法が種々提案されている。
ところで酵素法ペプチド合成において、酵素は繰返し利
用されるのがコスト的に有利であり、この面及び安定性
の面から、該酵素を固定化して利用しようとする研究が
なされてきているが、生成物が沈澱として析出すること
を利用した上記方法では、沈澱生成物と固定化酵素との
分離が困難でおることが実用上大きな障害となっている
。これに対し、系に有@溶媒を加えて生成物を溶解した
り、抽出したりすると固定化酵素の使用が可能になると
考えられ、この着想から例えばクールらは固定化α−キ
モトリプシンを用いて、水−ジクロロメタン2相系にお
いてジペプチドの合成を行なっている(P、Kuhl、
A、Konnecke、 G、Doring、 H。
用されるのがコスト的に有利であり、この面及び安定性
の面から、該酵素を固定化して利用しようとする研究が
なされてきているが、生成物が沈澱として析出すること
を利用した上記方法では、沈澱生成物と固定化酵素との
分離が困難でおることが実用上大きな障害となっている
。これに対し、系に有@溶媒を加えて生成物を溶解した
り、抽出したりすると固定化酵素の使用が可能になると
考えられ、この着想から例えばクールらは固定化α−キ
モトリプシンを用いて、水−ジクロロメタン2相系にお
いてジペプチドの合成を行なっている(P、Kuhl、
A、Konnecke、 G、Doring、 H。
Daumer、 H,−D、Jakubke、 Tet
rahedron Letters。
rahedron Letters。
Vol、21.ρ、893〜896’(1980))。
更に、N−置換アスパラキン酸とフェニルアラニン低級
アルキルエステルとからジペプチドを製造する方法にお
いて、両者を水と混和しない有機溶媒中、水分を含有す
る固定化金属プロテアーゼ(サーモライシン等)の存在
下で反応させる方法も提案(待聞昭55−135595
)されている。
アルキルエステルとからジペプチドを製造する方法にお
いて、両者を水と混和しない有機溶媒中、水分を含有す
る固定化金属プロテアーゼ(サーモライシン等)の存在
下で反応させる方法も提案(待聞昭55−135595
)されている。
この方法は、酵素が有機溶媒中で活性が極めて低く且つ
不安定でおるため、固定化酵素の細孔内に水を含ませ、
そこで酵素反応を行なわせるものでおる。これは見かけ
上有機溶媒の単一相系反応であるが固定化酵素内部を水
相と考えると、水の容量が有機溶媒容量よりかなり少な
い水−有機溶媒2相系での反応とも考えられる。
不安定でおるため、固定化酵素の細孔内に水を含ませ、
そこで酵素反応を行なわせるものでおる。これは見かけ
上有機溶媒の単一相系反応であるが固定化酵素内部を水
相と考えると、水の容量が有機溶媒容量よりかなり少な
い水−有機溶媒2相系での反応とも考えられる。
本発明者らも上記水−有機溶媒2相系でのペプチド合成
につき鋭意検討を重ねてきたが、かかる合成反応では一
般に酵素の種類は勿論のこと、原料とする基質相互の関
連、2等基質の保護基の種類、用いる有機溶媒の種類と
その濃度乃至使用量(対水比)等の変化により、合成さ
れるペプチドの収率、反応速度等は大きく左右され、ま
た上記各因子の組み合せに依存して使用酵素の失活乃至
活性低下が甚しく、未だに各因子の最適な組み合せは解
明されておらず、従来提案された方法といえども、たま
たま好結果が得られる場合はおっても、再現性に乏しく
、また連続反応を行なう時にはrlpiの失活が著しく
、工業的実施のための連続化は実際上不適当でおること
を確認した。
につき鋭意検討を重ねてきたが、かかる合成反応では一
般に酵素の種類は勿論のこと、原料とする基質相互の関
連、2等基質の保護基の種類、用いる有機溶媒の種類と
その濃度乃至使用量(対水比)等の変化により、合成さ
れるペプチドの収率、反応速度等は大きく左右され、ま
た上記各因子の組み合せに依存して使用酵素の失活乃至
活性低下が甚しく、未だに各因子の最適な組み合せは解
明されておらず、従来提案された方法といえども、たま
たま好結果が得られる場合はおっても、再現性に乏しく
、また連続反応を行なう時にはrlpiの失活が著しく
、工業的実施のための連続化は実際上不適当でおること
を確認した。
本発明者らは引き続く研究の結果、有機相に対する水相
の容積比を1/1前後とし、N−置換フ工二ルアラニン
を有機相に、N−11換アスパラギン酸を水相に添加溶
解させることにより、酵素の失活が抑制(エマルジョン
調製時及び反応の進行を通じて基質の分配による系内D
Hの変動が好ましい範囲に保持される)され、反応系内
基質濃度の向上、反応速度、反応収率の向上等を計り、
しかも固定化酵素を繰返し使用して、非常に効率よく目
的とする所望のジペプチドを収得できるという新しい事
実を発見し、この知見を基礎とする発明を完成した〔特
公昭60−33840号参照〕。
の容積比を1/1前後とし、N−置換フ工二ルアラニン
を有機相に、N−11換アスパラギン酸を水相に添加溶
解させることにより、酵素の失活が抑制(エマルジョン
調製時及び反応の進行を通じて基質の分配による系内D
Hの変動が好ましい範囲に保持される)され、反応系内
基質濃度の向上、反応速度、反応収率の向上等を計り、
しかも固定化酵素を繰返し使用して、非常に効率よく目
的とする所望のジペプチドを収得できるという新しい事
実を発見し、この知見を基礎とする発明を完成した〔特
公昭60−33840号参照〕。
更に本発明者らは上記方法の改良法として、上記と同様
の両基質を水と混和しない有機溶媒に溶解した原料液中
に、固定化金属プロテアーゼを懸濁させ、1宛拌下に上
記原料液を反応系内に供給しつつ反応を行なわせ、反応
液を連続的に回収するジペプチドの連続製造法をも確立
した〔特公昭62−1719@公報参照〕。
の両基質を水と混和しない有機溶媒に溶解した原料液中
に、固定化金属プロテアーゼを懸濁させ、1宛拌下に上
記原料液を反応系内に供給しつつ反応を行なわせ、反応
液を連続的に回収するジペプチドの連続製造法をも確立
した〔特公昭62−1719@公報参照〕。
本発明者らが開発した上記連続法は工業的実施に適当な
ものではめったが、カラムを利用するものではなく、尚
理想的な連続合成法とはいえず、しかも該方法はこれを
単にカラムを利用する方法に応用したところで、酵素の
失活が著しく、経時的に目的ペプチドの収量が低下し、
工業化は不適なものであった。
ものではめったが、カラムを利用するものではなく、尚
理想的な連続合成法とはいえず、しかも該方法はこれを
単にカラムを利用する方法に応用したところで、酵素の
失活が著しく、経時的に目的ペプチドの収量が低下し、
工業化は不適なものであった。
問題点を解決するための手段
本発明は、本発明者らによる先の発明に引き続き開発さ
れたものでおり、カラム利用による理想的ジペプチド連
続製造法を提供するものである。
れたものでおり、カラム利用による理想的ジペプチド連
続製造法を提供するものである。
即ち本発明はN−置換アスパラギン酸とフェニルアラニ
ン低級アルキルエステルとを反応させてジペプチドを製
造するに当り、水と混和しない有機溶媒中にカルシウム
イオンを含む緩衝液と上記両基質とを溶解させて基質溶
液を調製し、該基質溶液を固定化金属プロテアーゼを充
填したカラムに連続的に供給して温度30℃以下で反応
を行なわせ、上記反応の間カラムを間歇的に洗浄してチ
ャシネ1ノングを防止することを特徴とするジペプチド
の連続製造法に係る。
ン低級アルキルエステルとを反応させてジペプチドを製
造するに当り、水と混和しない有機溶媒中にカルシウム
イオンを含む緩衝液と上記両基質とを溶解させて基質溶
液を調製し、該基質溶液を固定化金属プロテアーゼを充
填したカラムに連続的に供給して温度30℃以下で反応
を行なわせ、上記反応の間カラムを間歇的に洗浄してチ
ャシネ1ノングを防止することを特徴とするジペプチド
の連続製造法に係る。
本発明方法において一方の基質とするN−置換アスパラ
ギン酸におけるN−置換基は、ペプチド合成反応に開用
されるアミン基保護基でおり、その例としては代表的に
はベンジルオキシカルボニル基を例示できる。他の代表
的保護基としては例えばp−メトキシベンジルオキシカ
ルボニル基、t−ブトキシカルボニル基等を例示できる
。他方の基質とするフェニルアラニン低級アルキルエス
テルの低級アルキル基も亦憤用されるアミノ酸のカルボ
キシル保護基であり、その具体例としては炭素数1〜4
のアルキル基、特にメチル基を好ましく例示できる。2
等原料基質は通常り体であるが、DL体であってもよく
、この場合り体のみが反応に関与する。
ギン酸におけるN−置換基は、ペプチド合成反応に開用
されるアミン基保護基でおり、その例としては代表的に
はベンジルオキシカルボニル基を例示できる。他の代表
的保護基としては例えばp−メトキシベンジルオキシカ
ルボニル基、t−ブトキシカルボニル基等を例示できる
。他方の基質とするフェニルアラニン低級アルキルエス
テルの低級アルキル基も亦憤用されるアミノ酸のカルボ
キシル保護基であり、その具体例としては炭素数1〜4
のアルキル基、特にメチル基を好ましく例示できる。2
等原料基質は通常り体であるが、DL体であってもよく
、この場合り体のみが反応に関与する。
本発明方法では、まず上記両原料基質をカルシウムイオ
ンを含むII液と共に、水と混和しない有機溶媒に溶解
して基質溶液を調製する。ここでカルシウムイオンを含
む緩衝液としては、例えば代表的にはCaC92を含む
MES[(2−シアノモルホリノ)エタンスルホン[−
NaO+−11衝液を例示できる。これは約20〜50
mMの範囲のCaCQ2を含有するのがよく、そのpH
は特に限定されないが通常約6前後でおるのが適当でお
る。該緩衝液は水と混和しない有機溶媒中に、一般に飽
和濃度まで、好ましくは約2.5%前後の濃度で溶解さ
れて用いられる。また上記水と混和しない有機溶媒とし
ては、代表的には酢酸エチルを例示できる。
ンを含むII液と共に、水と混和しない有機溶媒に溶解
して基質溶液を調製する。ここでカルシウムイオンを含
む緩衝液としては、例えば代表的にはCaC92を含む
MES[(2−シアノモルホリノ)エタンスルホン[−
NaO+−11衝液を例示できる。これは約20〜50
mMの範囲のCaCQ2を含有するのがよく、そのpH
は特に限定されないが通常約6前後でおるのが適当でお
る。該緩衝液は水と混和しない有機溶媒中に、一般に飽
和濃度まで、好ましくは約2.5%前後の濃度で溶解さ
れて用いられる。また上記水と混和しない有機溶媒とし
ては、代表的には酢酸エチルを例示できる。
上記基質溶液における両原料基質の使用量、即ち基質溶
液中の各基質濃度は、適宜に決定され、反応速度の面か
らはできるだけ高濃度とするのが好ましいが、通常フェ
ニルアラニン低級アルキルエステルでは約40〜200
mM濃度、好ましくは約100mM濃度前後となる範囲
とするのがよく、これと反応させるべきN−置換アスパ
ラギン酸では上記フェニルアラニン低級アルキルエステ
ル濃度の約1/3〜1/2倍濃度となる範囲とするのが
適当でおる。
液中の各基質濃度は、適宜に決定され、反応速度の面か
らはできるだけ高濃度とするのが好ましいが、通常フェ
ニルアラニン低級アルキルエステルでは約40〜200
mM濃度、好ましくは約100mM濃度前後となる範囲
とするのがよく、これと反応させるべきN−置換アスパ
ラギン酸では上記フェニルアラニン低級アルキルエステ
ル濃度の約1/3〜1/2倍濃度となる範囲とするのが
適当でおる。
本発明方法では、次いで上記の如くして調製される基質
溶液を、固定化金属プロテアーゼを充填したカラムに供
給して、該カラム内で咳液中の両基質と固定化酵素とを
接触反応させる。ここで用いられる固定化酵素としては
、例えば代表的にはサーモライシン等の金属プロテアー
ゼを常法に従い適当な支持体に固定した各種のものをい
ずれも使用できる。上記支持体としてはメルコーゲル[
Herckogel SI 1000人、メルク()
tel”ck)社製]、アンバーライトIRC50[ロ
ーム アンド ハース(Rohm and )laas
Co、)社製]、タウエックスMWA [ダウケミカ
ル(Dow Chemical Co、 )社製]、ダ
ウエックスMSC[同上社製]、アンバーライトXAD
2[ロームアンドハース社製]、アンバーライ1−XA
D7[同上社製]、アンバーライトXAD8 [同上社
製]等の多孔性イオン交換樹脂担体を例示できる。これ
らの内ではアンバーライトXAD7が最も好ましい。上
記支持体へのサーモライシン等の固定は、当分野でよく
知られている各種方法に従うことができ、特にグルタル
アルデヒド架橋法によるのが好ましい。該グルタルアル
デヒド架橋法におけるグルタルアルデヒド濃度は、従来
一般に採用されている2〜3%に比して約4〜6倍の高
濃度、特に約12.5%前後とするのがよく、サーモラ
イシン等は例えばNaBr等の適当な溶液に溶解して支
持体に吸着後固定ざぜるのが好ましい。この方法によれ
ば同酵素を水溶液として支持体に吸着させる場合に比し
溶液濃度を約50倍高くでき、支持体単位当りの酵素吸
着量を増加でき、通常の方法に比べ活性、安定性の高い
固定化サーモライシンを得ることができる。
溶液を、固定化金属プロテアーゼを充填したカラムに供
給して、該カラム内で咳液中の両基質と固定化酵素とを
接触反応させる。ここで用いられる固定化酵素としては
、例えば代表的にはサーモライシン等の金属プロテアー
ゼを常法に従い適当な支持体に固定した各種のものをい
ずれも使用できる。上記支持体としてはメルコーゲル[
Herckogel SI 1000人、メルク()
tel”ck)社製]、アンバーライトIRC50[ロ
ーム アンド ハース(Rohm and )laas
Co、)社製]、タウエックスMWA [ダウケミカ
ル(Dow Chemical Co、 )社製]、ダ
ウエックスMSC[同上社製]、アンバーライトXAD
2[ロームアンドハース社製]、アンバーライ1−XA
D7[同上社製]、アンバーライトXAD8 [同上社
製]等の多孔性イオン交換樹脂担体を例示できる。これ
らの内ではアンバーライトXAD7が最も好ましい。上
記支持体へのサーモライシン等の固定は、当分野でよく
知られている各種方法に従うことができ、特にグルタル
アルデヒド架橋法によるのが好ましい。該グルタルアル
デヒド架橋法におけるグルタルアルデヒド濃度は、従来
一般に採用されている2〜3%に比して約4〜6倍の高
濃度、特に約12.5%前後とするのがよく、サーモラ
イシン等は例えばNaBr等の適当な溶液に溶解して支
持体に吸着後固定ざぜるのが好ましい。この方法によれ
ば同酵素を水溶液として支持体に吸着させる場合に比し
溶液濃度を約50倍高くでき、支持体単位当りの酵素吸
着量を増加でき、通常の方法に比べ活性、安定性の高い
固定化サーモライシンを得ることができる。
かくして調製される固定化サーモライシンは、通常支持
体1C](湿潤重量)当り、サーモライシン0.02〜
0.5Qを固定されており、そのQ当りの力価(合成活
性〉は約0.15〜3.0単位/湿潤qである。尚この
合成活性は、後記実施例1と同一操作により酵素反応さ
せて生成するジペプチド量を高速液体クロマトグラフィ
ーにより測定して求められるものであり、その1単位と
は40°C下に1分間に1μモルのジペプチドを生成す
る固定化酵素量(湿潤重量)をいう。
体1C](湿潤重量)当り、サーモライシン0.02〜
0.5Qを固定されており、そのQ当りの力価(合成活
性〉は約0.15〜3.0単位/湿潤qである。尚この
合成活性は、後記実施例1と同一操作により酵素反応さ
せて生成するジペプチド量を高速液体クロマトグラフィ
ーにより測定して求められるものであり、その1単位と
は40°C下に1分間に1μモルのジペプチドを生成す
る固定化酵素量(湿潤重量)をいう。
本発明では特に上記固定化サーモライシン等の固定化金
属プロテアーゼを充填したカラム内での基質反応を、温
度30℃以下、好ましくは約25℃前後で行なうことを
必須の要件とし、この温度条件の採用及びこの温度下で
のカラム反応に引続くカラムの間歇的洗浄操作の採用に
より、カラム内基質、反応生成物及び固定化酵素、該固
定化酵素内pHが、それぞれカラム内で実質的に均−乃
至一定となり、酵素の失活が確実に防止され、迅速且つ
高収率で目的とするジペプチドを連続的に合成、収得で
きるのである。
属プロテアーゼを充填したカラム内での基質反応を、温
度30℃以下、好ましくは約25℃前後で行なうことを
必須の要件とし、この温度条件の採用及びこの温度下で
のカラム反応に引続くカラムの間歇的洗浄操作の採用に
より、カラム内基質、反応生成物及び固定化酵素、該固
定化酵素内pHが、それぞれカラム内で実質的に均−乃
至一定となり、酵素の失活が確実に防止され、迅速且つ
高収率で目的とするジペプチドを連続的に合成、収得で
きるのである。
上記カラムの間歇的洗浄操作は、前記反応の間にチャン
ネリングが起こらないものとすることを前提として、適
宜実施することができる。この洗浄操作に用いられる洗
浄液としては水、緩衝液例えばMES−NaOH緩衝液
等、水と混和しない有機溶媒例えば酢酸エチル等のいず
れをも利用できるが、基質溶液の調製に利用される例え
ば20m M Ca CQ 2を含む0.01M−M
ESNaOH緩衝液が好ましく、特に上記緩衝液で飽和
された酢酸エチル等の有機溶媒と該有機溶媒で飽和され
た上記緩衝液との併用が最も好ましい。
ネリングが起こらないものとすることを前提として、適
宜実施することができる。この洗浄操作に用いられる洗
浄液としては水、緩衝液例えばMES−NaOH緩衝液
等、水と混和しない有機溶媒例えば酢酸エチル等のいず
れをも利用できるが、基質溶液の調製に利用される例え
ば20m M Ca CQ 2を含む0.01M−M
ESNaOH緩衝液が好ましく、特に上記緩衝液で飽和
された酢酸エチル等の有機溶媒と該有機溶媒で飽和され
た上記緩衝液との併用が最も好ましい。
また上記洗浄操作は前記連続反応による白濁沈澱物の生
成が認められる以前の適当な時期に行なわれるのが望ま
しく、これは通常連続反応3日位までに少なくとも1回
、好ましくは約1日に1回の間隔で行なわれるのがよい
。洗浄操作はカラムに上記洗浄液を通じることにより実
施でき、その際の温度条件は30℃以下、好ましくは2
5℃前後とされるのがよく、また通液のための空間速度
(SV)は約5〜20/時間程度、通液時間は約10〜
60分程度とすることかできる。
成が認められる以前の適当な時期に行なわれるのが望ま
しく、これは通常連続反応3日位までに少なくとも1回
、好ましくは約1日に1回の間隔で行なわれるのがよい
。洗浄操作はカラムに上記洗浄液を通じることにより実
施でき、その際の温度条件は30℃以下、好ましくは2
5℃前後とされるのがよく、また通液のための空間速度
(SV)は約5〜20/時間程度、通液時間は約10〜
60分程度とすることかできる。
本発明の好ましい一実施態様によれば、まず酢酸エチル
中にフェニルアラニンメチルエステルを100mM濃度
で、N−ベンジルオキシカルボニル−アスパラギン酸を
40mM11度で、20mMCaCG!2を含む0.0
1M MES−NaOH緩衝液(pH6,0>を2.
5%濃度でそれぞれ溶解させて原料液を調製し、次いで
この原料液を、予め酢酸エチル飽和の0.01M M
ES−NaOH緩衝液(20mM CaCQ2含有、
pH6,0>で平衡化した固定化サーモライシン約5g
を充填したガラスカラムに、約7.5mQ/時間の一定
流量(固定化酵素容積基準のSV:約1.75/時間)
で供給し、約25°Cの温度で連続反応を行ない、この
反応巾約24時間毎に1回30分の割合で、0.01M
MES−NaOH緩衝液(20mMCaCQ2含有
、DH6,0>で飽和された酢酸エチル及び酢酸エチル
で飽和された同緩衝液でそれぞれカラムを洗浄(流速=
50mQ/時間、5V=15/時間)シテチャンネリン
グを防止する。
中にフェニルアラニンメチルエステルを100mM濃度
で、N−ベンジルオキシカルボニル−アスパラギン酸を
40mM11度で、20mMCaCG!2を含む0.0
1M MES−NaOH緩衝液(pH6,0>を2.
5%濃度でそれぞれ溶解させて原料液を調製し、次いで
この原料液を、予め酢酸エチル飽和の0.01M M
ES−NaOH緩衝液(20mM CaCQ2含有、
pH6,0>で平衡化した固定化サーモライシン約5g
を充填したガラスカラムに、約7.5mQ/時間の一定
流量(固定化酵素容積基準のSV:約1.75/時間)
で供給し、約25°Cの温度で連続反応を行ない、この
反応巾約24時間毎に1回30分の割合で、0.01M
MES−NaOH緩衝液(20mMCaCQ2含有
、DH6,0>で飽和された酢酸エチル及び酢酸エチル
で飽和された同緩衝液でそれぞれカラムを洗浄(流速=
50mQ/時間、5V=15/時間)シテチャンネリン
グを防止する。
上記により約500時間以上に亘って常に安定して95
%を越える高収率で効率よく目的とするジペプチドを得
ることができる。
%を越える高収率で効率よく目的とするジペプチドを得
ることができる。
上記によりカラム出口から流出する反応液は、目的とす
るジペプチド、即ちN−置換アスパラギン醒−フェニル
アラニン低級アルキルエステルを有機溶媒溶液として含
有しており、該反応液からの目的ジペプチドの分離は、
例えば上記有機溶媒溶液を分取し、濃縮晶析させるか又
は抽出等の操作を行なうことにより容易に実施できる。
るジペプチド、即ちN−置換アスパラギン醒−フェニル
アラニン低級アルキルエステルを有機溶媒溶液として含
有しており、該反応液からの目的ジペプチドの分離は、
例えば上記有機溶媒溶液を分取し、濃縮晶析させるか又
は抽出等の操作を行なうことにより容易に実施できる。
かくしてjqられるジペプチドは更に通常の単離精製手
段により精製することができる。
段により精製することができる。
かくして本発明に従い得られるジペプチドは、生理活性
を有するペプチド類の合成反応試薬として、また砂糖の
約200倍の甘さを持つ合成甘味剤であるL−アスパル
チル−L−フェニルアラニンメチルエステル(アスパル
テーム)の前駆体として有用でおる。
を有するペプチド類の合成反応試薬として、また砂糖の
約200倍の甘さを持つ合成甘味剤であるL−アスパル
チル−L−フェニルアラニンメチルエステル(アスパル
テーム)の前駆体として有用でおる。
実 施 例
以下、本発明を更に詳しく説明するため実施例を挙げる
。尚実施例においては、以下の方法により調製した固定
化サーモライシンを用いた。
。尚実施例においては、以下の方法により調製した固定
化サーモライシンを用いた。
〈固定化サーモライシンの調製〉
サーモライシン(大和化成株式会社製、力価9470P
tJ/mg)7.5CIを、5M−NaBr及び16.
6mM CaCG!2を含む1 /40Mトリス塩酸
塩緩衝液(1)H7,5>120m12に水冷下に溶解
し、この液に固定化担体であるアンバーライ1〜XAD
−7(ローム・アンド・ハース社製)30g(湿潤重量
)を加え、4℃で17時間静かに撮盪を行ないながら酵
素を担体に吸着させた。上澄液の残存酵素蛋白遣をビュ
ーレット法で定量した所、初発酵素量の約70%の酵素
が担体に吸着されていた。
tJ/mg)7.5CIを、5M−NaBr及び16.
6mM CaCG!2を含む1 /40Mトリス塩酸
塩緩衝液(1)H7,5>120m12に水冷下に溶解
し、この液に固定化担体であるアンバーライ1〜XAD
−7(ローム・アンド・ハース社製)30g(湿潤重量
)を加え、4℃で17時間静かに撮盪を行ないながら酵
素を担体に吸着させた。上澄液の残存酵素蛋白遣をビュ
ーレット法で定量した所、初発酵素量の約70%の酵素
が担体に吸着されていた。
上記上澄液75鵬を除去した残りの固定酵素懸濁液に2
5%グルタールアルデビド溶液75回を加え、4°Cで
約3時間1辰盪して架橋反応を行なった後、冷却した0
、1Mトリス塩酸塩緩衝液(pH7,5,5m M
Ca CQ 2含有)約12及び1M−NaCQを含む
同緩漬液約1Qで交互に2回洗浄して、固定化サーモラ
イシンを得た。
5%グルタールアルデビド溶液75回を加え、4°Cで
約3時間1辰盪して架橋反応を行なった後、冷却した0
、1Mトリス塩酸塩緩衝液(pH7,5,5m M
Ca CQ 2含有)約12及び1M−NaCQを含む
同緩漬液約1Qで交互に2回洗浄して、固定化サーモラ
イシンを得た。
得られた固定化酵素は4°Cで保存した。
実施例 1
モレキュラーシーブ3A1/10(和光紬薬工業社製)
で脱水された酢酸エチル200m12に、20mM−C
aCQ2を含む0.OIM−YES[2−シアノモルホ
リノエタンスルホン酸、同仁化学研究所製]−NaOH
緩衝液(pH6,0)5+nQと、L−フェニルアラニ
ンメチルエステル(L−PheOMe 、シグマ社1u
>3.58q(100mM>及びN−ベンジルオキシカ
ルボニル−し−アスパラギン酸(Z−Asp) 2.1
40(40mM>とを溶解して基質溶液を調製した。
で脱水された酢酸エチル200m12に、20mM−C
aCQ2を含む0.OIM−YES[2−シアノモルホ
リノエタンスルホン酸、同仁化学研究所製]−NaOH
緩衝液(pH6,0)5+nQと、L−フェニルアラニ
ンメチルエステル(L−PheOMe 、シグマ社1u
>3.58q(100mM>及びN−ベンジルオキシカ
ルボニル−し−アスパラギン酸(Z−Asp) 2.1
40(40mM>とを溶解して基質溶液を調製した。
一方、予め固定化酵素(湿重量5g)を酢酸エチル飽和
の20mM−CaCQ2を含む0.01M−MES−N
aOl−1緩衝液(pH6,0>で平衡化し、これをガ
ラスカラム(11mm直径×150mm、山善株式会社
〉に充填した。
の20mM−CaCQ2を含む0.01M−MES−N
aOl−1緩衝液(pH6,0>で平衡化し、これをガ
ラスカラム(11mm直径×150mm、山善株式会社
〉に充填した。
上記固定化酵素を充填したガラスカラムに、前記基質溶
液を約7.5鴨/時間(固定化酵素容積基準の5V=1
.75/時間〉の一定流法で供給し、25°C下に連続
反応を開始した。
液を約7.5鴨/時間(固定化酵素容積基準の5V=1
.75/時間〉の一定流法で供給し、25°C下に連続
反応を開始した。
上記連続反応中、23.5時間毎に1回、20mM
CaCQ2を含む0.01M−MESNaOH緩衝液(
pH6,0>で飽和された酢酸エチルで15分間、次い
で同緩衝液で15分間それぞれカラムを洗浄する操作(
流速:各5QmQ/時間、温度=25°C)を行なった
。
CaCQ2を含む0.01M−MESNaOH緩衝液(
pH6,0>で飽和された酢酸エチルで15分間、次い
で同緩衝液で15分間それぞれカラムを洗浄する操作(
流速:各5QmQ/時間、温度=25°C)を行なった
。
上記連続反応中、適当な時間間隔てカラム出口の反応液
をサンプリングし、下記に示す条件で高速液体クロマト
グラフィーを行ない、生成物量を定量した。
をサンプリングし、下記に示す条件で高速液体クロマト
グラフィーを行ない、生成物量を定量した。
〈高速液体クロマトグラフィー〉
試 料二カラム出口でサンプリングした基質溶液を真空
乾燥後、アセトニトリル−水 混合溶媒(70:30、リン酸でpH 2,5に調整)に溶解して調製した。
乾燥後、アセトニトリル−水 混合溶媒(70:30、リン酸でpH 2,5に調整)に溶解して調製した。
装 置:高速流体クロマトグラフ
(島津製作所製 LC−3A型)
カラム;内径4.6mmx長ざ150mm充填剤:コス
モシル(Cosmosil) 5CIB−P(ODS−
シリカゲル) 溶 媒ニアセトニ]〜リルー水(60: 40、リン酸
でpHを2,5に調整) 検 出二紫外吸収(2541m) 溶出溶媒流速:0.8誰/分 結果を第1図に示す。第1図において横軸は連続反応時
間(時間)を、@XINIは生成物収率(%)を示す。
モシル(Cosmosil) 5CIB−P(ODS−
シリカゲル) 溶 媒ニアセトニ]〜リルー水(60: 40、リン酸
でpHを2,5に調整) 検 出二紫外吸収(2541m) 溶出溶媒流速:0.8誰/分 結果を第1図に示す。第1図において横軸は連続反応時
間(時間)を、@XINIは生成物収率(%)を示す。
第1図より明らかな通り、本発明方法によれば500時
間以上に亘って、95%以上の収率が維持された。
間以上に亘って、95%以上の収率が維持された。
比較例 1
実施例1において反応の温度を40℃とする以外は同様
にして、連続反応を実施した。
にして、連続反応を実施した。
カラム出口で反応液をサンプリングし、実施例1と同一
条件で高速液体クロマトグラフィーを行ない、生成物量
を定量した。その結果、目的ジペプチドの収率は、反応
時間の経過と共に低下し、150時間後には約80%に
低下した。
条件で高速液体クロマトグラフィーを行ない、生成物量
を定量した。その結果、目的ジペプチドの収率は、反応
時間の経過と共に低下し、150時間後には約80%に
低下した。
比較例 2
実施例1においてカラム洗浄操作を実施しない以外は同
様にして、連続反応を行なった。
様にして、連続反応を行なった。
その結果を第1図と同様にして第2図に示す。
第2図より、反応初期においては約97%の収率が認め
られたが、80時間経過後より収率低下の見られること
か判る。また160時間後にはカラム内自沈の蓄積によ
るチャンネリングが著しくなり、液の流れが著しく遅延
され、連続反応困難となった。
られたが、80時間経過後より収率低下の見られること
か判る。また160時間後にはカラム内自沈の蓄積によ
るチャンネリングが著しくなり、液の流れが著しく遅延
され、連続反応困難となった。
第1図は実施例1に示す方法における連続反応時間と収
率の関係を示ずグラフであり、第2図は比較例2に示す
方法にあける同グラフでおる。 (以 上)
率の関係を示ずグラフであり、第2図は比較例2に示す
方法にあける同グラフでおる。 (以 上)
Claims (1)
- (1)N−置換アスパラギン酸とフェニルアラニン低級
アルキルエステルとを反応させてジペプチドを製造する
に当り、水と混和しない有機溶媒中にカルシウムイオン
を含む緩衝液と上記両基質とを溶解させて基質溶液を調
製し、該基質溶液を固定化金属プロテアーゼを充填した
カラムに連続的に供給して温度30℃以下で反応を行な
わせ、上記反応の間カラムを間歇的に洗浄してチヤンネ
リングを防止することを特徴とするジペプチドの連続製
造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP19016088A JPH0239895A (ja) | 1988-07-28 | 1988-07-28 | ジペプチドの連続製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP19016088A JPH0239895A (ja) | 1988-07-28 | 1988-07-28 | ジペプチドの連続製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0239895A true JPH0239895A (ja) | 1990-02-08 |
JPH0530439B2 JPH0530439B2 (ja) | 1993-05-10 |
Family
ID=16253424
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP19016088A Granted JPH0239895A (ja) | 1988-07-28 | 1988-07-28 | ジペプチドの連続製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0239895A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20020015742A (ko) * | 2000-08-23 | 2002-03-02 | 신철수 | 단백질 가수분해효소를 이용한 아스파탐 전구체의 제조방법 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6229996A (ja) * | 1985-07-30 | 1987-02-07 | Hiroshi Ooshima | N−保護l−アスパルチル−l−フエニルアラニン低級アルキルエステルの製造方法 |
-
1988
- 1988-07-28 JP JP19016088A patent/JPH0239895A/ja active Granted
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6229996A (ja) * | 1985-07-30 | 1987-02-07 | Hiroshi Ooshima | N−保護l−アスパルチル−l−フエニルアラニン低級アルキルエステルの製造方法 |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20020015742A (ko) * | 2000-08-23 | 2002-03-02 | 신철수 | 단백질 가수분해효소를 이용한 아스파탐 전구체의 제조방법 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0530439B2 (ja) | 1993-05-10 |
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