JPH0191793A - ジ‐d‐フラクトシルフラノース2,6′:6,2′ジアンハイドライドの製造法 - Google Patents
ジ‐d‐フラクトシルフラノース2,6′:6,2′ジアンハイドライドの製造法Info
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- JPH0191793A JPH0191793A JP24588787A JP24588787A JPH0191793A JP H0191793 A JPH0191793 A JP H0191793A JP 24588787 A JP24588787 A JP 24588787A JP 24588787 A JP24588787 A JP 24588787A JP H0191793 A JPH0191793 A JP H0191793A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、酵素を利用してレバンまたはフレインよりジ
−ローフラクトシルフラノース 1,2.6’:6,2
’ジアンハイドライドを製造する方法に関するものであ
る。
−ローフラクトシルフラノース 1,2.6’:6,2
’ジアンハイドライドを製造する方法に関するものであ
る。
従来の技術
ジ−ローフラクトシルフラノース 1,2.6’:6,
2’ジアンハイドライド(略称DFAIV、構造式下記
)は、フラクトースに似たされやかな甘味を有し、熱に
安定であり、また微生物により資化されないという特長
があるため、低カロリー且つ難う触性の甘味料としての
利用が期待されている。
2’ジアンハイドライド(略称DFAIV、構造式下記
)は、フラクトースに似たされやかな甘味を有し、熱に
安定であり、また微生物により資化されないという特長
があるため、低カロリー且つ難う触性の甘味料としての
利用が期待されている。
○−
従来、DFAIVを製造する方法としては、アースロバ
フタ−・ウレアファシェンスが生産するレバンフラクト
トランスフェラーゼをレバンに作用させる方法があった
(Csrbohydrate Re5earch、第9
9巻、 197〜204頁、190年)。しかしながら
、アースロバフタ−・ウレアファシェンスのレバンフラ
クトトランスフェラーゼ産生力は弱く、この菌を用いる
方法によってレバンフラクトトランスフェラーゼを経済
的に得ることは困難である。したがって、上記公知方法
でも、アースロバフタ−・ウレアファシェンスを培養す
る培地中に原料のレバンを添加しておき、培地中に生産
される酵素をその場で利用してDFAIVを生成させる
方法を採用しており、菌培養物から採取した酵素をレバ
ンに作用させているわけではない。しかも、アースロバ
フタ−・ウレアファシェンスはレバンフラクトトランス
フェラーゼと共に著量のβ・フラクトースーゼを生産す
るから、粗酵素液を使用するとDFAIVよりもフラク
トースを大量に生成してしまうという問題がある。これ
らにより、あるいはアースロバフタ−・ウレアファシェ
ンスのレバン7ラクトトランスフエラーゼに固有の特性
によるものか、DFAIVの生産性はきわめて低く、し
かも種々の培地成分を含む反応液からDFAIVを単離
するのに多段の精製を必要とするという問題があった。
フタ−・ウレアファシェンスが生産するレバンフラクト
トランスフェラーゼをレバンに作用させる方法があった
(Csrbohydrate Re5earch、第9
9巻、 197〜204頁、190年)。しかしながら
、アースロバフタ−・ウレアファシェンスのレバンフラ
クトトランスフェラーゼ産生力は弱く、この菌を用いる
方法によってレバンフラクトトランスフェラーゼを経済
的に得ることは困難である。したがって、上記公知方法
でも、アースロバフタ−・ウレアファシェンスを培養す
る培地中に原料のレバンを添加しておき、培地中に生産
される酵素をその場で利用してDFAIVを生成させる
方法を採用しており、菌培養物から採取した酵素をレバ
ンに作用させているわけではない。しかも、アースロバ
フタ−・ウレアファシェンスはレバンフラクトトランス
フェラーゼと共に著量のβ・フラクトースーゼを生産す
るから、粗酵素液を使用するとDFAIVよりもフラク
トースを大量に生成してしまうという問題がある。これ
らにより、あるいはアースロバフタ−・ウレアファシェ
ンスのレバン7ラクトトランスフエラーゼに固有の特性
によるものか、DFAIVの生産性はきわめて低く、し
かも種々の培地成分を含む反応液からDFAIVを単離
するのに多段の精製を必要とするという問題があった。
発明が解決しようとする問題点
したがって本発明の目的は、レバンまたはフレインを原
料として従来よりも効率よ<DFA■を製造する方法を
提供し、DFAIVを安価に利用し得るようにすること
にある。
料として従来よりも効率よ<DFA■を製造する方法を
提供し、DFAIVを安価に利用し得るようにすること
にある。
問題点を解決するための手段
上記目的を達成するため、本発明者らは多くの微生物に
ついてレバンフラクトトランスフェラーゼ産生能と酵素
活性の観点からスクリーニングを行い、シュードモナス
属に属する一細菌すなわちシュードモナス・フルオレッ
センスMZ No、949 (微工研菌寄第9235号
)がすぐれた性質を有することを知った。
ついてレバンフラクトトランスフェラーゼ産生能と酵素
活性の観点からスクリーニングを行い、シュードモナス
属に属する一細菌すなわちシュードモナス・フルオレッ
センスMZ No、949 (微工研菌寄第9235号
)がすぐれた性質を有することを知った。
本発明は上記知見に基づくものであって、シュードモナ
ス属細菌が生産するレバンフラクトトランスフェラーゼ
をレバンに作用させることを特徴とするものである。
ス属細菌が生産するレバンフラクトトランスフェラーゼ
をレバンに作用させることを特徴とするものである。
上記MZ No、949株は、広島県尾道市の土壌より
分離されたものであって、その菌学的性質は次のとおり
である。
分離されたものであって、その菌学的性質は次のとおり
である。
(a)形態
■細胞の形および大きさ
0.5〜0.7x2.O〜3.5Qの桿菌■運動性:あ
り。1本以上の極鞭毛を有する。
り。1本以上の極鞭毛を有する。
■胞子;なし
■ダラム染色性:陰性
■抗酸性:なし
くb)生育
■肉汁寒天斜面培養
中程度の発育;透明;やや赤味を帯びる。
■肉汁液体培養:中程度の発育;表面に膜形成。
■肉汁ゼラチン穿刺培養:液化しない。
■リドマスミルク :変化しない。
■BCPミルク −変化しない。
(c)生理的性質
■硝酸塩の還元:する。
■脱窒:しない。
■MRテスト :陰性
■vpテスト:陰性
■インドールの生成:なし
■硫化水素の生成:なしくTSI寒天培地)■デン粉の
加水分解:なし ■クエン酸の利用:あり (クリステンセン培地)■無
機窒素源の利用 硝酸塩およびアンモニウム塩を利用する。
加水分解:なし ■クエン酸の利用:あり (クリステンセン培地)■無
機窒素源の利用 硝酸塩およびアンモニウム塩を利用する。
[相]色素の生成:水溶性、蛍光性の色素を生成する。
■オキシダーゼ:陽性
@カタラーゼ:陽性
[相]生育の範囲:pH4〜10で生育する。
4°0127℃で生育する。37℃で生育しない。
■酸素に対する態度:好気性
@ O−Fテスト ニゲルコースを酸化する。
(Hugh L 5ifson法)
■炭水化物の利用zD−グルコース、L−アラビノース
、トレハロース、イノシトール、L−バリン、p−ヒド
ロキシ安息香酸を利用する。シュクロース、ゲラニオー
ル、アセトアミド、エタノールを利用しない。
、トレハロース、イノシトール、L−バリン、p−ヒド
ロキシ安息香酸を利用する。シュクロース、ゲラニオー
ル、アセトアミド、エタノールを利用しない。
Oアルギニンの脱炭酸:陽性
[相]プロトカテキン酸の分解:オルト型の開裂以上の
諸性状をバー ジエイのマニュアル・オブ・デターミネ
イティブ・バクテリオロジ−、第8版(H74)の記載
と照合することにより、本菌がシュードモナス・フルオ
レッセンス[ミグラ 1895]であることを確認した
。
諸性状をバー ジエイのマニュアル・オブ・デターミネ
イティブ・バクテリオロジ−、第8版(H74)の記載
と照合することにより、本菌がシュードモナス・フルオ
レッセンス[ミグラ 1895]であることを確認した
。
本発明の実施に用いるレバンフラクトトランスフェラー
ゼは、上記MZ No、949株で代表されるシュード
モナス属レバン7ラクトトランスフエラーゼ生産菌を、
β−2,6結合を持つフラクトースポリマー含有培地で
培養することにより得られる。フラクトースのポリマー
を酵素誘導基質として含有させることを除けば、培地と
して特殊なものは必要としない。シュードモナス属細菌
の培養に通常使用される培地、すなわちグルコース等の
炭素源および酵母エキス、ペプトン等の有機窒素源、そ
の他硝酸ナトリウム、硫酸マグネシウム、塩化マンガン
などの無機塩類等を基本成分として適宜組合せたpH5
〜8程度の培地を用いることができる。
ゼは、上記MZ No、949株で代表されるシュード
モナス属レバン7ラクトトランスフエラーゼ生産菌を、
β−2,6結合を持つフラクトースポリマー含有培地で
培養することにより得られる。フラクトースのポリマー
を酵素誘導基質として含有させることを除けば、培地と
して特殊なものは必要としない。シュードモナス属細菌
の培養に通常使用される培地、すなわちグルコース等の
炭素源および酵母エキス、ペプトン等の有機窒素源、そ
の他硝酸ナトリウム、硫酸マグネシウム、塩化マンガン
などの無機塩類等を基本成分として適宜組合せたpH5
〜8程度の培地を用いることができる。
培地に含有させる上記フラクトースのポリマーとしては
、レバン、フレイン等を用いることができ、その好適濃
度は0.01〜30%、特に好ましくは1〜5%である
。培養は、シュードモナス属細菌培養の常法に従って行
うことができる。目的とする酵素は菌体外に生産される
。生産は菌の対数増殖期に始まり、定常期にほぼ最大生
産量に達するので、通常は定常期に達したあと適当な時
期に培養を打切る。培養終了後は直ちに遠心分離して菌
体を除去する。菌体を除いただけの培養液でも粗レバン
フラクトトランスフェラーゼ液として利用できるが、こ
れを、硫安塩析、限外ろ過、ゲルろ過等の精製手段を用
いる酵素精製の常法に従って精製すれば、より活性が強
く、利用し易いレバンフラクトトランスフェラーゼを得
ることができる。得られるレバン7ラクトトランス7エ
ラーゼは安定で、冷蔵庫で数カ月間保存可能であり、冷
凍庫中ならば、さらに長期間保存することができる。
、レバン、フレイン等を用いることができ、その好適濃
度は0.01〜30%、特に好ましくは1〜5%である
。培養は、シュードモナス属細菌培養の常法に従って行
うことができる。目的とする酵素は菌体外に生産される
。生産は菌の対数増殖期に始まり、定常期にほぼ最大生
産量に達するので、通常は定常期に達したあと適当な時
期に培養を打切る。培養終了後は直ちに遠心分離して菌
体を除去する。菌体を除いただけの培養液でも粗レバン
フラクトトランスフェラーゼ液として利用できるが、こ
れを、硫安塩析、限外ろ過、ゲルろ過等の精製手段を用
いる酵素精製の常法に従って精製すれば、より活性が強
く、利用し易いレバンフラクトトランスフェラーゼを得
ることができる。得られるレバン7ラクトトランス7エ
ラーゼは安定で、冷蔵庫で数カ月間保存可能であり、冷
凍庫中ならば、さらに長期間保存することができる。
上述のようにして得られたレバンフラクトトランスフェ
ラーゼの粗酵素液または精製品をレバンまたはフレイン
に作用させる場合、好適反応条件は、レバンまたは7レ
イン濃度1〜20%、反応液pH5〜8 (特に好まし
くは5.5〜6.5)、反応温度20〜60℃(特に好
ましくは40〜50℃)である。
ラーゼの粗酵素液または精製品をレバンまたはフレイン
に作用させる場合、好適反応条件は、レバンまたは7レ
イン濃度1〜20%、反応液pH5〜8 (特に好まし
くは5.5〜6.5)、反応温度20〜60℃(特に好
ましくは40〜50℃)である。
反応終了後、100℃に約10分間加熱して酵素を失活
させ、生じる沈殿を除去した反応液から、たとえば活性
炭カラムクロマトグラフィー等により、DFA■を得る
ことができる。さらに高純度のものとする必要がある場
合は、たとえば95%エタノールから結晶化させる。
させ、生じる沈殿を除去した反応液から、たとえば活性
炭カラムクロマトグラフィー等により、DFA■を得る
ことができる。さらに高純度のものとする必要がある場
合は、たとえば95%エタノールから結晶化させる。
発明の効果
本発明の製法は、アースロバフタ−属細菌培養液中でレ
バンを分解させる従来の製法と違って酵素液とレバンま
たはフレインを反応させるものであること、用いるレバ
ンフラクトトランスフェラーゼが分離困難なβ−フラク
トシダーゼを含有しないこと、などにより、従来法と比
べて生産性および反応収率が著しく高く、反応生成物か
らDFAIVを分離するための精製も容易である。
バンを分解させる従来の製法と違って酵素液とレバンま
たはフレインを反応させるものであること、用いるレバ
ンフラクトトランスフェラーゼが分離困難なβ−フラク
トシダーゼを含有しないこと、などにより、従来法と比
べて生産性および反応収率が著しく高く、反応生成物か
らDFAIVを分離するための精製も容易である。
したがって本発明によれば、高品質のDFAIVを従来
よりもはるかに安価に提供することが可能になる。
よりもはるかに安価に提供することが可能になる。
実施例
以下、実施例を示して本発明を説明する。
実施例 ル
レバン 1%、ペプトン 1%、K2HPO40,1%
、NaN0,0.5%、Mg5O,−7H!O0,05
%、MIICI!・4H,OO,02%を含むpH7,
0の培地100m1を500m1容坂ロコルベンに入れ
、シュードモナス・フルオレッセンスMZ No、94
9を植菌して、28℃で4日間振とう培養した。培養終
了後、遠心分離して培養液から菌体を除き、粗酵素液を
得た。
、NaN0,0.5%、Mg5O,−7H!O0,05
%、MIICI!・4H,OO,02%を含むpH7,
0の培地100m1を500m1容坂ロコルベンに入れ
、シュードモナス・フルオレッセンスMZ No、94
9を植菌して、28℃で4日間振とう培養した。培養終
了後、遠心分離して培養液から菌体を除き、粗酵素液を
得た。
一方、レバンlogを10+alの温湯に溶解し、今後
pi(を6.0に調整した。この溶液に上記粗酵素液を
加え、37℃で5時間反応させた。次いで100℃に加
熱して酵素を失活させた後、減圧下にlO+1まで濃縮
した。濃縮液は活性炭カラム(直径5 cm、高さ50
cm;粒状活性炭150gとハイクロス−パーセル15
0gとの混合物を充填)に吸着させ、蒸留水2aを流し
た後、5%エタノール水溶液で溶出しt;。溶出液は、
TLCにてDFAIVを検出しながら20m1ごとに集
め、DFA■溶出フ溶出シラクシジン、10〜50)を
集めて濃縮乾燥し、粗DFAIV 3.0gを得た。
pi(を6.0に調整した。この溶液に上記粗酵素液を
加え、37℃で5時間反応させた。次いで100℃に加
熱して酵素を失活させた後、減圧下にlO+1まで濃縮
した。濃縮液は活性炭カラム(直径5 cm、高さ50
cm;粒状活性炭150gとハイクロス−パーセル15
0gとの混合物を充填)に吸着させ、蒸留水2aを流し
た後、5%エタノール水溶液で溶出しt;。溶出液は、
TLCにてDFAIVを検出しながら20m1ごとに集
め、DFA■溶出フ溶出シラクシジン、10〜50)を
集めて濃縮乾燥し、粗DFAIV 3.0gを得た。
次いでこれを95%エタノールから結晶化させることに
より、M’JADFAN O,5gをmfニー。ソ(7
)[αlFバー 326、融点は177°Cで、標品と
よく一致した。
より、M’JADFAN O,5gをmfニー。ソ(7
)[αlFバー 326、融点は177°Cで、標品と
よく一致した。
なお、上記カラム溶出液から7ラクトースは全く検出さ
れなかった。
れなかった。
実施例 2
レバンにかえて同量のフレインを含有させた培地を用い
たほかは実施例1と同様にして、粗酵素液を得た。
たほかは実施例1と同様にして、粗酵素液を得た。
次いでこれに硫安を60%飽和になるよう加え、生じた
沈殿を遠心分離して集め、pH6,0の0.01M酢酸
緩衝液に溶解し、同緩衝液で2日間透析し、部分精製酵
素液15m1を得た。
沈殿を遠心分離して集め、pH6,0の0.01M酢酸
緩衝液に溶解し、同緩衝液で2日間透析し、部分精製酵
素液15m1を得た。
一方、風乾したフレラム・プラテウスの根茎の粉砕物5
0gに250m1の水を加え、60〜70℃に加温して
1時間攪拌することにより、フレインを抽出した。
0gに250m1の水を加え、60〜70℃に加温して
1時間攪拌することにより、フレインを抽出した。
得られた抽出液に水酸化カルシウム1gを加え、生じた
沈殿をろ別した。得られたろ液240+alを、そのD
Hを6.0に調整してから上記酵素液と混合し、200
Cで10時間反応させた。以下、実施例1と同様に処理
して、結晶化DFAIV 1.0gを得た。その[α
]rは一32°、融点は177℃で、標品とよく一致し
た。
沈殿をろ別した。得られたろ液240+alを、そのD
Hを6.0に調整してから上記酵素液と混合し、200
Cで10時間反応させた。以下、実施例1と同様に処理
して、結晶化DFAIV 1.0gを得た。その[α
]rは一32°、融点は177℃で、標品とよく一致し
た。
Claims (2)
- (1)シュードモナス属細菌が生産するレバンフラクト
トランスフェラーゼをレバンまたはフレインに作用させ
ることを特徴とするジ−D−フラクトシルフラノース1
,2,6′:6,2′ジアンハイドライドの製造法。 - (2)シュードモナス・フルオレッセンスMZNo.9
49(微工研菌寄第9235号)が生産するレバンフラ
クトトランスフェラーゼを用いる特許請求の範囲第1項
記載の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP24588787A JP2614460B2 (ja) | 1987-10-01 | 1987-10-01 | ジ‐d‐フラクトシルフラノース2,6′:6,2′ジアンハイドライドの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP24588787A JP2614460B2 (ja) | 1987-10-01 | 1987-10-01 | ジ‐d‐フラクトシルフラノース2,6′:6,2′ジアンハイドライドの製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0191793A true JPH0191793A (ja) | 1989-04-11 |
JP2614460B2 JP2614460B2 (ja) | 1997-05-28 |
Family
ID=17140285
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP24588787A Expired - Fee Related JP2614460B2 (ja) | 1987-10-01 | 1987-10-01 | ジ‐d‐フラクトシルフラノース2,6′:6,2′ジアンハイドライドの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2614460B2 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2001029185A1 (en) * | 1999-10-19 | 2001-04-26 | Korea Research Institute Of Bioscience And Biotechnology | Enzymatic production of difructose dianhydride iv from sucrose and relevant enzymes and genes coding for them |
-
1987
- 1987-10-01 JP JP24588787A patent/JP2614460B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2001029185A1 (en) * | 1999-10-19 | 2001-04-26 | Korea Research Institute Of Bioscience And Biotechnology | Enzymatic production of difructose dianhydride iv from sucrose and relevant enzymes and genes coding for them |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2614460B2 (ja) | 1997-05-28 |
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Legal Events
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---|---|---|---|
R250 | Receipt of annual fees |
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LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |