JPH01304895A - N‐末端プロリンで始まるタンパク質の製造法 - Google Patents
N‐末端プロリンで始まるタンパク質の製造法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
N−末端プロリンで始まるタンパク質の遺伝子工学的手
法による調製は、既に開示されている。これは、アスパ
ラギン酸、またはC−末端アスパラギン酸を含む短いア
ミノ酸配列物、がプロリンの前に位置している、より長
いタンパク質を先ず発現させるものであり、これが所望
のタンパク質の始まりに相当する。次いで、この中間体
はタンパク質分解によって切断されて、プロリン開始部
を有する所望のタンパク質を遊離する。このタイプの工
程は、欧州特許出願(EP−A)第0.219,781
号、第0.227,938号および第0.228,01
8号明細書に記載されている。
法による調製は、既に開示されている。これは、アスパ
ラギン酸、またはC−末端アスパラギン酸を含む短いア
ミノ酸配列物、がプロリンの前に位置している、より長
いタンパク質を先ず発現させるものであり、これが所望
のタンパク質の始まりに相当する。次いで、この中間体
はタンパク質分解によって切断されて、プロリン開始部
を有する所望のタンパク質を遊離する。このタイプの工
程は、欧州特許出願(EP−A)第0.219,781
号、第0.227,938号および第0.228,01
8号明細書に記載されている。
もちろん、この既知の工程は、遊離されるタンパク質が
充分に酸安定性である場合にのみ適用される。しかしな
がら、比較的に酸安定性であるタンパク質の場合でさえ
も、副反応が起きるおそれがあり、これは、一方では収
率の直接的な減少をもたらし、他方では望ましくない副
産物からの分離の難しさによる更なる収率の減少をもた
らす。
充分に酸安定性である場合にのみ適用される。しかしな
がら、比較的に酸安定性であるタンパク質の場合でさえ
も、副反応が起きるおそれがあり、これは、一方では収
率の直接的な減少をもたらし、他方では望ましくない副
産物からの分離の難しさによる更なる収率の減少をもた
らす。
上記のような限定がなく、さらに記述されたような欠点
を有しない工程がいま見出された。本発明によるN−末
端プロリンで始まるタンパク質は、短いN−末端伸長部
を有し、かつ遺伝子操作によって得ておいた前駆体を、
アミノペプチダーゼPで酵素的に切断することによって
、調製される。
を有しない工程がいま見出された。本発明によるN−末
端プロリンで始まるタンパク質は、短いN−末端伸長部
を有し、かつ遺伝子操作によって得ておいた前駆体を、
アミノペプチダーゼPで酵素的に切断することによって
、調製される。
前駆体の短いN−末端伸長部は、とくに、!R菌からの
タンパク質の通常の直接的発現において見られるように
、メチオニン残基を含んでなる。しかしながら、好まし
い出発材料は、また、タンパク質混合物であり、直接的
に発現された産生物の場合にみられるように、これらタ
ンパク質はその一部だけがN末端にメチオニン残基を有
するものである。今までに知られている工程を用いて、
そのようなタンパク質混合物はきわめて大きい困難性を
ともなってのみ分画することができる。
タンパク質の通常の直接的発現において見られるように
、メチオニン残基を含んでなる。しかしながら、好まし
い出発材料は、また、タンパク質混合物であり、直接的
に発現された産生物の場合にみられるように、これらタ
ンパク質はその一部だけがN末端にメチオニン残基を有
するものである。今までに知られている工程を用いて、
そのようなタンパク質混合物はきわめて大きい困難性を
ともなってのみ分画することができる。
所望のタンパク質からアミノペプチダーゼPを分離する
ことは、その酵素の大きざの故に困難ではない。ざらに
、切断に用いた酵素を既知の方法、例よば、欧州特許(
EP−B)第0.141,223号および第0.141
,224号明細書およびそれらに記載の文献に記載され
た方法によって固定化することが可能である。
ことは、その酵素の大きざの故に困難ではない。ざらに
、切断に用いた酵素を既知の方法、例よば、欧州特許(
EP−B)第0.141,223号および第0.141
,224号明細書およびそれらに記載の文献に記載され
た方法によって固定化することが可能である。
アミノペプチダーゼPは、A、 Yaronらによって
Biochemical and Biophysic
al ResearchCommunications
’3:2.658−663.1968に開示されてお
り、これには、末端プロリンに至るまでのペプチドに対
するN−末端攻撃についても記述されている。しかしな
がら、記述されている遊離されるアミノ酸は、中性アミ
ノ酸であるグリシン、アラニン、バリン、イソロイシン
およびプロリン(後者にもうひとつのプロリンが続く)
および塩基性アミノ酸アルギニンのみである。
Biochemical and Biophysic
al ResearchCommunications
’3:2.658−663.1968に開示されてお
り、これには、末端プロリンに至るまでのペプチドに対
するN−末端攻撃についても記述されている。しかしな
がら、記述されている遊離されるアミノ酸は、中性アミ
ノ酸であるグリシン、アラニン、バリン、イソロイシン
およびプロリン(後者にもうひとつのプロリンが続く)
および塩基性アミノ酸アルギニンのみである。
アミノペプチダーゼPは、Yaronらによって記述さ
れた方法によって容易に単離される。その分子量の約2
X105は、固定化をしなくても所望のタンパク質から
分離することが可能な大きさである。
れた方法によって容易に単離される。その分子量の約2
X105は、固定化をしなくても所望のタンパク質から
分離することが可能な大きさである。
このように、この酵素は、メチオニンを迅速にまた定量
的に切除することから、N−末端プロリンで始まるタン
パク質を遺伝子操作によって得られる前駆体から、とく
に細菌からの直接的な発現の産生物から得るために、と
りわけ適している。
的に切除することから、N−末端プロリンで始まるタン
パク質を遺伝子操作によって得られる前駆体から、とく
に細菌からの直接的な発現の産生物から得るために、と
りわけ適している。
本発明は、以下の諸例において詳細に説明される通りで
ある。パーセント表示は重量パーセントを表す。
ある。パーセント表示は重量パーセントを表す。
例」−
アミノペプチダーゼPを、前出のYaronらの方法に
次のような改変を行った方法によって単離精製する。
次のような改変を行った方法によって単離精製する。
大腸菌(E、 coli) Btal胞を50mM燐酸
ナトリウム緩衝液中で破砕してから遠心分離して、粗細
胞抽出物を50℃で15分間インキュベートする。
ナトリウム緩衝液中で破砕してから遠心分離して、粗細
胞抽出物を50℃で15分間インキュベートする。
混合物を再び遠心分離して、45%飽和にて硫酸アンモ
ニウム沈澱を行う。遠心分離の後、酵素は上清液中に見
出される。その後の精製を既知の方法にて行う。
ニウム沈澱を行う。遠心分離の後、酵素は上清液中に見
出される。その後の精製を既知の方法にて行う。
肘2
プラスミド構築に用いる出発材料は、EP−A第0.2
28,018号明細書からのプラスミドps203およ
びpPH160である。
28,018号明細書からのプラスミドps203およ
びpPH160である。
プラスミドps203は、EP−A第
0.228,018号明細書の第10a図において(7
8)として見出されるものである。これは、ヒト顆粒球
マクロファージ・コロニー刺激因子(GM−C5F)の
合成遺伝子を含む。この遺伝子は、複数の制限酵素切断
部位を含んでおり、それらはEP−A第0.228,0
18号明細書の9〜11ページの諸表に示されている。
8)として見出されるものである。これは、ヒト顆粒球
マクロファージ・コロニー刺激因子(GM−C5F)の
合成遺伝子を含む。この遺伝子は、複数の制限酵素切断
部位を含んでおり、それらはEP−A第0.228,0
18号明細書の9〜11ページの諸表に示されている。
次の構築に非常に重要なpS203の切断部位は、本明
細書の第1図に示される通りである。
細書の第1図に示される通りである。
プラスミドpS203をSmalおよび部分的に5al
lで消化して、大きさが約380 bpであって、アミ
ノ酸9/10からのGM−〇SFのための合成遺伝子を
含むフラグメントを酢離する。
lで消化して、大きさが約380 bpであって、アミ
ノ酸9/10からのGM−〇SFのための合成遺伝子を
含むフラグメントを酢離する。
このフラグメントを、5ailおよびSmaIで開裂し
ておいた市販のベクターpUc18に挿入する。コンピ
テントにした大腸菌79102細胞をライゲーション混
合物とインキュベートして、形質転換混合物を20μg
/mlのアンピシリンを含むIPTC;−Xga lプ
レートに画線する。−晩インキユベートした後に、白色
コロニーを単離して、プラスミドDNAを得る。プラス
ミドDNAを制限酵素分析によって特徴づけする。期待
された制限酵素パターンを有するプラスミドをpS49
9と称する。
ておいた市販のベクターpUc18に挿入する。コンピ
テントにした大腸菌79102細胞をライゲーション混
合物とインキュベートして、形質転換混合物を20μg
/mlのアンピシリンを含むIPTC;−Xga lプ
レートに画線する。−晩インキユベートした後に、白色
コロニーを単離して、プラスミドDNAを得る。プラス
ミドDNAを制限酵素分析によって特徴づけする。期待
された制限酵素パターンを有するプラスミドをpS49
9と称する。
プラスミドpS499をEcoRIおよび部分的に5a
lIで消化して、合成CM−CSF遺伝子を含むフラグ
メントを単離する。このフラグメントをここで発現プラ
スミドpPH160に挿入する。この目的のためζこ、
オリゴヌクレオチドMet Pro ALa P
ro ALa Arg Ser Pro S
er Pr。
lIで消化して、合成CM−CSF遺伝子を含むフラグ
メントを単離する。このフラグメントをここで発現プラ
スミドpPH160に挿入する。この目的のためζこ、
オリゴヌクレオチドMet Pro ALa P
ro ALa Arg Ser Pro S
er Pr。
5’ −CATG CCG GCG CCG
GCCCGA TCG CCG TCT C
CG −3’GGCCGCGGCCGG
GCT AGCGG(AGA GGCAGCT(
SaLI) を合成して、単離したフラグメントおよび酵素NcoI
およびEcoRIで開裂しておいたプラスミドpPH1
60と連結させる。これによってNco1部位は破壊さ
れる(第2図中のNcol )。ライゲーション混合
物を用いて、コンピテントにした大腸菌MM294細胞
を形質転換させて、プラスミドを制限酵素およびDNA
配列分析によって同定する。期待された制限酵素パター
ンを有するプラスミドをps500と称する(第2図)
。このプラスミドは、N−末端Met−Pro伸長部を
有するGM−C3F誘導体をコードする。
GCCCGA TCG CCG TCT C
CG −3’GGCCGCGGCCGG
GCT AGCGG(AGA GGCAGCT(
SaLI) を合成して、単離したフラグメントおよび酵素NcoI
およびEcoRIで開裂しておいたプラスミドpPH1
60と連結させる。これによってNco1部位は破壊さ
れる(第2図中のNcol )。ライゲーション混合
物を用いて、コンピテントにした大腸菌MM294細胞
を形質転換させて、プラスミドを制限酵素およびDNA
配列分析によって同定する。期待された制限酵素パター
ンを有するプラスミドをps500と称する(第2図)
。このプラスミドは、N−末端Met−Pro伸長部を
有するGM−C3F誘導体をコードする。
涯ユ
EP−A第0.228,018号明細書に開示されたC
M−C9F誘導体を直接的に発現させる類似プラスミド
構築を以下に記述する。
M−C9F誘導体を直接的に発現させる類似プラスミド
構築を以下に記述する。
これらの構築には、プラスミドps203またはpS4
99のHpaI切断部位を用いる。
99のHpaI切断部位を用いる。
例2と同様にして、pS499をEcoRIおよびHI
) a Iで消化して、合成GM−CSF遺伝子を有す
るフラグメントな単離する。しかしながら、オリゴヌク
レオチド(1)の代わりにオリゴヌクレオチド(2) Met Pro ALa Arg Ser Pro S
er Pro Ser Thr GLn5’ −CAT
G CCG GCCCGA TCG CCG TCT
CCG TCG ACCCAG −GGCCGG G
CT AGCGGCAGA GGCAGCTGG
GTCPro Trp GLu His VaL
(2)CCC丁GG GAA CACG
TT −3’GGG ACCCTT GTG
CAA(Hpal) を挿入する。このようにしてプラスミドps502を得
る。
) a Iで消化して、合成GM−CSF遺伝子を有す
るフラグメントな単離する。しかしながら、オリゴヌク
レオチド(1)の代わりにオリゴヌクレオチド(2) Met Pro ALa Arg Ser Pro S
er Pro Ser Thr GLn5’ −CAT
G CCG GCCCGA TCG CCG TCT
CCG TCG ACCCAG −GGCCGG G
CT AGCGGCAGA GGCAGCTGG
GTCPro Trp GLu His VaL
(2)CCC丁GG GAA CACG
TT −3’GGG ACCCTT GTG
CAA(Hpal) を挿入する。このようにしてプラスミドps502を得
る。
オリゴヌクレオチド(2)をオリゴヌクレオチド (
3) Met Pro Ser P、ro Ser
Thr GLn ’Pro 工rp GLu
Has VaL5’ −CATG CCG
TC了 CCCTCG ACCCAG CCCT
GG GAA CACCTT −31GGCAGA
GGG AGCTGG (ITc GGG ACC
CTT GTG (AA(HpaL) で置換して、プラスミドps503を得る。
3) Met Pro Ser P、ro Ser
Thr GLn ’Pro 工rp GLu
Has VaL5’ −CATG CCG
TC了 CCCTCG ACCCAG CCCT
GG GAA CACCTT −31GGCAGA
GGG AGCTGG (ITc GGG ACC
CTT GTG (AA(HpaL) で置換して、プラスミドps503を得る。
同様にして、オリゴヌクレオチド(4)Met Pr
o Ser Thr GLn Pro 丁r
p GLu His VaL5’ −CATG
C(G TCG A(C(AG CCC丁G
G GAA (ACGTT −3’ (4)
GG(AGCTGG GTCGGG Ace (
TT GTG CAA(Hpal) の挿入によって、ps504を得る。
o Ser Thr GLn Pro 丁r
p GLu His VaL5’ −CATG
C(G TCG A(C(AG CCC丁G
G GAA (ACGTT −3’ (4)
GG(AGCTGG GTCGGG Ace (
TT GTG CAA(Hpal) の挿入によって、ps504を得る。
同様に、オリゴヌクレオチド(5)
Met Pro Trp GLu旧s VaL51 −
CATG CCG TGG GAA (A
CGTT −3’ (5)G
GCACCCTT GTG CAA(Hpall の挿入によって、プラスミドps505を得る。
CATG CCG TGG GAA (A
CGTT −3’ (5)G
GCACCCTT GTG CAA(Hpall の挿入によって、プラスミドps505を得る。
明確にするために、GM−CSFのアミノ酸番号をオリ
ゴヌクレオチドに付した。
ゴヌクレオチドに付した。
すべてのGM−C5F誘導体の発現を、EP−A第0.
228,018号明細書の例1のようにして行う。
228,018号明細書の例1のようにして行う。
培養条件によって、GM−CSF誘導体は細胞中で溶解
した状態でまたは不溶性の封入体(1nclusion
body)として存在する。
した状態でまたは不溶性の封入体(1nclusion
body)として存在する。
後者の場合には、細胞破砕の後に、遠心分離によってタ
ンパク質を沈澱物中に濃厚富化することができる。沈澱
物を水で洗浄し、次いでデオキシコレート溶液に再懸濁
させる。懸濁液を遠心分離して沈澱物を再び水で洗浄し
て、6M尿素を含む50mトリス緩衝液(pH8)に溶
解させる(水4ml当りタンパク質50mg)。
ンパク質を沈澱物中に濃厚富化することができる。沈澱
物を水で洗浄し、次いでデオキシコレート溶液に再懸濁
させる。懸濁液を遠心分離して沈澱物を再び水で洗浄し
て、6M尿素を含む50mトリス緩衝液(pH8)に溶
解させる(水4ml当りタンパク質50mg)。
タンパク質のスルフォン化物(sulfonate)を
形成するために、約15m8の亜硫酸ナトリウムを上清
液または溶液に加えて、混合物を室温にて約120分間
放置する。10+nlに希釈の後、p)Iを4.7に調
整して、混合物を一晩放置する。沈澱物を遠心分離して
、沈澱物を水で洗浄してから緩衝ff (5M尿素、5
0mM NaCl、50mM)リス)に再溶解させる。
形成するために、約15m8の亜硫酸ナトリウムを上清
液または溶液に加えて、混合物を室温にて約120分間
放置する。10+nlに希釈の後、p)Iを4.7に調
整して、混合物を一晩放置する。沈澱物を遠心分離して
、沈澱物を水で洗浄してから緩衝ff (5M尿素、5
0mM NaCl、50mM)リス)に再溶解させる。
この溶液をRFRACTOGEL DEAETSK物質
(45〜90μm、メルク社製)を充填してから6M尿
素、50mM)リス、50mMNaC1゜0.1%(w
/v)界面活性剤(RTWEEN)、2mMエチレンジ
アミン(pH8,7)で平衡にしておいた陰イオン交換
カラムにかける。GM−C5F S−スルフォン化物
は、140〜210mM N aClの範囲に溶出され
る。
(45〜90μm、メルク社製)を充填してから6M尿
素、50mM)リス、50mMNaC1゜0.1%(w
/v)界面活性剤(RTWEEN)、2mMエチレンジ
アミン(pH8,7)で平衡にしておいた陰イオン交換
カラムにかける。GM−C5F S−スルフォン化物
は、140〜210mM N aClの範囲に溶出され
る。
CM−C5F S−スルフォン化物を含む分画を合わ
せてからタンパク質濃度を10−5Mに調整して、次い
で、クエン酸マンガン反応緩衝液(pH8,6、M n
2+濃度3 X 10−5M)に対して透析する。次
いで、GM−C5F S−スルフォン化物を10−5
Mの濃度に調製して、0.5〜lμg/mlのアミノペ
プチダーゼPと37〜40℃で1時間反応させる。次い
で、ゲルクロマトグラフィー(R5EPHADEX G
75 カラム、ファルマシア社製)によって反応生成
物をそれぞれに分離する。次いで、GM−C5Fを、5
0mMグリシン緩衝液中で酸素の存在下で希釈によって
復元(renature)させる。
せてからタンパク質濃度を10−5Mに調整して、次い
で、クエン酸マンガン反応緩衝液(pH8,6、M n
2+濃度3 X 10−5M)に対して透析する。次
いで、GM−C5F S−スルフォン化物を10−5
Mの濃度に調製して、0.5〜lμg/mlのアミノペ
プチダーゼPと37〜40℃で1時間反応させる。次い
で、ゲルクロマトグラフィー(R5EPHADEX G
75 カラム、ファルマシア社製)によって反応生成
物をそれぞれに分離する。次いで、GM−C5Fを、5
0mMグリシン緩衝液中で酸素の存在下で希釈によって
復元(renature)させる。
復元させた産物を濃縮して、タンパク質配列分析のため
にHPLCによって精製する(カラム:Waters
C、、,250X4.6mm、緩衝液A:0.1%トリ
フルオロ酢酸、緩衝液B:80%アセトニトリル、0.
1%トリフルオロ酢酸)。35%Bから75%Bまでの
勾配を30分間で流速1.5ml/分になるように設定
する。CM−C5Fを含む画分を自動タンパク質配列分
析に供する。メチオニンが実際に定量的に切除されてい
たことが明らかになる。これに対して、アミノペプチダ
ーゼPで処理しなかった産生物は、〉50%のメチオニ
ンをN−末端アミノ酸として含んでいた。
にHPLCによって精製する(カラム:Waters
C、、,250X4.6mm、緩衝液A:0.1%トリ
フルオロ酢酸、緩衝液B:80%アセトニトリル、0.
1%トリフルオロ酢酸)。35%Bから75%Bまでの
勾配を30分間で流速1.5ml/分になるように設定
する。CM−C5Fを含む画分を自動タンパク質配列分
析に供する。メチオニンが実際に定量的に切除されてい
たことが明らかになる。これに対して、アミノペプチダ
ーゼPで処理しなかった産生物は、〉50%のメチオニ
ンをN−末端アミノ酸として含んでいた。
前記の公開された欧州特許出願は、次の公開されたオー
ストラリア特許出願に対応する。
ストラリア特許出願に対応する。
EP−A AU−A
O,219,78163979/86
0.227.938 65693/860.22
8.018 66756/86欧州特許第0
.141,223号は、オーストラリア特許第565
、703号に対応する。
8.018 66756/86欧州特許第0
.141,223号は、オーストラリア特許第565
、703号に対応する。
第1図は、本発明に非常に重要なps203の切断部位
を示す、説明図である。 第2図は、本発明に係るプラスミドps500の、説明
図である。
を示す、説明図である。 第2図は、本発明に係るプラスミドps500の、説明
図である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、短いN−末端伸長部(extention)を有し
、かつ遺伝子操作によって得ておいた前駆体を、アミノ
ペプチダーゼPによる酵素的切断に供することからなる
、N−末端プロリンで始まるタンパク質の製造法。 2、短いN−末端伸長部がメチオニン残基を含んでなる
、請求項1に記載の製造法。 3、用いられる出発材料が、タンパク質の混合物であっ
て、それらの一部のみがN−末端にメチオニン残基を有
するタンパク質の混合物である、請求項1に記載の製造
法。 4、用いられる出発材料が、タンパク質の混合物であっ
て、それらの一部のみがN−末端にメチオニン残基を有
するタンパク質の混合物である、請求項2に記載の製造
法。 5、プロリンで始まり、かつN−末端伸長部を有するヒ
ト顆粒球マクロファージ・コロニー刺激因子誘導体を用
いることを特徴とする、請求項1に記載の製造法。 6、プロリンで始まり、かつN−末端伸長部を有するヒ
ト顆粒球マクロファージ・コロニー刺激因子誘導体を用
いることを特徴とする、請求項2に記載の製造法。 7、プロリンで始まり、かつN−末端伸長部を有するヒ
ト顆粒球マクロファージ・コロニー刺激因子誘導体を用
いることを特徴とする、請求項3に記載の製造法。 8、プロリンで始まり、かつN−末端伸長部を有するヒ
ト顆粒球マクロファージ・コロニー刺激因子誘導体を用
いることを特徴とする、請求項4に記載の製造法。 9、プロリンで始まり、かつN−末端伸長部を有するヒ
ト顆粒球マクロファージ・コロニー刺激因子誘導体を用
いることを特徴とする、請求項5に記載の製造法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3811921A DE3811921A1 (de) | 1988-04-09 | 1988-04-09 | Verfahren zur herstellung von proteinen, die n-terminal mit prolin beginnen |
DE3811921.8 | 1988-04-09 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01304895A true JPH01304895A (ja) | 1989-12-08 |
Family
ID=6351689
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1089576A Pending JPH01304895A (ja) | 1988-04-09 | 1989-04-07 | N‐末端プロリンで始まるタンパク質の製造法 |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0337264A3 (ja) |
JP (1) | JPH01304895A (ja) |
KR (1) | KR890016171A (ja) |
AU (1) | AU3253689A (ja) |
DE (1) | DE3811921A1 (ja) |
DK (1) | DK169889A (ja) |
FI (1) | FI891652A (ja) |
HU (1) | HUT51676A (ja) |
IL (1) | IL89877A0 (ja) |
NO (1) | NO891451L (ja) |
PT (1) | PT90225A (ja) |
ZA (1) | ZA892551B (ja) |
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---|---|---|---|---|
DE3822045A1 (de) * | 1988-06-30 | 1990-01-11 | Hoechst Ag | Verfahren zur herstellung von proteinen |
GB9017008D0 (en) * | 1990-08-02 | 1990-09-19 | Erba Carlo Spa | Process for the enzymatic preparation of basic fibroblast growth factor |
US7504372B2 (en) | 2004-09-08 | 2009-03-17 | Clariant Produkte (Deutschland) Gmbh | Mixtures of bleaching agents |
DE102004043360A1 (de) | 2004-09-08 | 2006-03-09 | Clariant Gmbh | Bleichaktivator-Mischungen |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
IL60184A (en) * | 1979-05-31 | 1984-05-31 | Schering Ag | Process for the specific cleavage of protein sequences from proteins |
JPS60500043A (ja) * | 1982-12-10 | 1985-01-17 | ノルデイスク・インスリンラボラトリウム | 原核細胞又は真核細胞中で合成される融合蛋白質から成熟蛋白質を作る方法 |
DE3586773T2 (de) * | 1984-08-16 | 1993-03-18 | Bio Technology General Corp | Verfahren zur beseitigung von n-endaminosaeureresten aus eukaryotpolypeptidanlagen und so erzeugte polypeptide. |
WO1986007380A1 (en) * | 1985-06-04 | 1986-12-18 | Takeda Chemical Industries, Ltd. | Process for preparing polypeptide |
US4865974A (en) * | 1985-09-20 | 1989-09-12 | Cetus Corporation | Bacterial methionine N-terminal peptidase |
DE3822045A1 (de) * | 1988-06-30 | 1990-01-11 | Hoechst Ag | Verfahren zur herstellung von proteinen |
-
1988
- 1988-04-09 DE DE3811921A patent/DE3811921A1/de not_active Withdrawn
-
1989
- 1989-04-05 EP EP89105927A patent/EP0337264A3/de not_active Withdrawn
- 1989-04-06 FI FI891652A patent/FI891652A/fi not_active Application Discontinuation
- 1989-04-06 HU HU891661A patent/HUT51676A/hu unknown
- 1989-04-07 IL IL89877A patent/IL89877A0/xx unknown
- 1989-04-07 PT PT90225A patent/PT90225A/pt not_active Application Discontinuation
- 1989-04-07 DK DK169889A patent/DK169889A/da not_active IP Right Cessation
- 1989-04-07 AU AU32536/89A patent/AU3253689A/en not_active Abandoned
- 1989-04-07 ZA ZA892551A patent/ZA892551B/xx unknown
- 1989-04-07 JP JP1089576A patent/JPH01304895A/ja active Pending
- 1989-04-07 NO NO89891451A patent/NO891451L/no unknown
- 1989-04-08 KR KR1019890004645A patent/KR890016171A/ko not_active Application Discontinuation
Also Published As
Publication number | Publication date |
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