JPH01230533A - 抗エイズウイルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤の製造方法 - Google Patents
抗エイズウイルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤の製造方法Info
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Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は抗エイズウィルス抗体陽性静注用免疫グロブリ
ン製剤の製法に関する。
ン製剤の製法に関する。
特定のウィルスに対する抗体を主成分とする静注用免疫
グロブリン製剤としては、各種ウィルス(B型肝炎ウィ
ルス、サイトメガロウィルス、水痘帯状ヘルペスウィル
ス、インフルエンザウィルスなど)に対するものが知ら
れており、各々のウィルスによる感染の予防治療のため
に用いられる。
グロブリン製剤としては、各種ウィルス(B型肝炎ウィ
ルス、サイトメガロウィルス、水痘帯状ヘルペスウィル
ス、インフルエンザウィルスなど)に対するものが知ら
れており、各々のウィルスによる感染の予防治療のため
に用いられる。
ところで、このようなタイプの製剤の一つとして、エイ
ズウィルス〔総称はHI V (1lusanT+sm
unodeficiency Virus )であるが
、またHTLV −m (Human T−cel
l Lymphotropic Virus t
ype■)またはL A V (Lymphadeno
pathy−associatedVirus)ともい
う〕に対する抗体を主成分とする静注用免疫グロブリン
製剤が、最近報告された(特開昭62−192326)
。
ズウィルス〔総称はHI V (1lusanT+sm
unodeficiency Virus )であるが
、またHTLV −m (Human T−cel
l Lymphotropic Virus t
ype■)またはL A V (Lymphadeno
pathy−associatedVirus)ともい
う〕に対する抗体を主成分とする静注用免疫グロブリン
製剤が、最近報告された(特開昭62−192326)
。
この報告では滅菌処理の方法としてβ−プロピオラクト
ン/9外線処理が具体的に開示されている。
ン/9外線処理が具体的に開示されている。
通常の静注用免疫グロブリン製剤において、β−プロピ
オラクトンによる滅菌処理は、化学的な変性をもたらし
ており、グロブリンに様々な影響を与える0例えば、抗
体価の低下、IgG、サブクラスの消失、補体結合能の
低下、新たな抗原性の発現などインタクト(intac
t)なグロブリンとは異なる性質を与えうる(Vox
Sang、、 28.422〜437 (1975)、
同38..147〜155 (1980)、同42.。
オラクトンによる滅菌処理は、化学的な変性をもたらし
ており、グロブリンに様々な影響を与える0例えば、抗
体価の低下、IgG、サブクラスの消失、補体結合能の
低下、新たな抗原性の発現などインタクト(intac
t)なグロブリンとは異なる性質を与えうる(Vox
Sang、、 28.422〜437 (1975)、
同38..147〜155 (1980)、同42.。
62〜73 (1982) ) 、また、β−プロピオ
ラクトン自身の発癌性も問題となりうる。
ラクトン自身の発癌性も問題となりうる。
従って、β−プロピオラクトン処理は必ずしも有用な方
法とは言えない。
法とは言えない。
本発明の目的は、臨床上通用できる製剤、すなわち、安
全性と有効性の高い抗エイズウィルス抗体陽性静注用免
疫グロブリン製剤の製造方法を提供することにある。
全性と有効性の高い抗エイズウィルス抗体陽性静注用免
疫グロブリン製剤の製造方法を提供することにある。
〔問題点を解決するための手段]
本発明者らは、この目的に沿って抗エイズウィルス抗体
陽性外注用免疫グロブリン製剤の工業的な製法について
検討した結果、ポリエチレングリコール(以下、PEG
という)分画処理、加熱処理等を組み合わせ、各工程の
処理条件を設定することによって安全性と有効性の高い
抗エイズウィルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤が
得られることを見出し、さらに研究を重ねて本発明を完
成した。
陽性外注用免疫グロブリン製剤の工業的な製法について
検討した結果、ポリエチレングリコール(以下、PEG
という)分画処理、加熱処理等を組み合わせ、各工程の
処理条件を設定することによって安全性と有効性の高い
抗エイズウィルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤が
得られることを見出し、さらに研究を重ねて本発明を完
成した。
(1)出発原料
本発明の出発原料としては、抗エイズウィルス抗体陽性
免疫グロブリンを含む百分が使用され、これはヒト血漿
由来であって、抗エイズウィルス抗体陽性免疫グロブリ
ン画分を含むものであれば特に限定されない、具体的に
は、抗エイズウィルス抗体陽性血漿からコーンのエタノ
ール分画により得られる画分■十m、百分■、または抗
エイズウィルス抗体陽性免疫グロブリンを含むこれらと
同等の画分のペースト等が挙げられる。また、この出発
原料は、ヒト血液型抗体、カリクレイン、プレカリクレ
イン、IgM、IgG重合体などを含んでいてもよい。
免疫グロブリンを含む百分が使用され、これはヒト血漿
由来であって、抗エイズウィルス抗体陽性免疫グロブリ
ン画分を含むものであれば特に限定されない、具体的に
は、抗エイズウィルス抗体陽性血漿からコーンのエタノ
ール分画により得られる画分■十m、百分■、または抗
エイズウィルス抗体陽性免疫グロブリンを含むこれらと
同等の画分のペースト等が挙げられる。また、この出発
原料は、ヒト血液型抗体、カリクレイン、プレカリクレ
イン、IgM、IgG重合体などを含んでいてもよい。
(2)製法
本発明による製造方法は、好ましくは以下の処理よりな
る。
る。
■低濃度ポリエチレングリコール(PEG)処理工程
本工程は出発原料を低4度PEGで処理し、上清を回収
する工程である。
する工程である。
出発原料を適当な水性溶媒に懸濁する。水性溶媒の溶質
として、たとえば塩化ナトリウム、リン酸ナトリウム、
リン酸カリウム、酢酸、酢酸ナトリウム、クエン酸、ク
エン酸ナトリウム等を含ませてもよい。
として、たとえば塩化ナトリウム、リン酸ナトリウム、
リン酸カリウム、酢酸、酢酸ナトリウム、クエン酸、ク
エン酸ナトリウム等を含ませてもよい。
この懸FA液を分子量1,000〜10.000 (好
適には約2,000〜6,000 )のr’ECで処理
する(たとえば、両者を混合する)、処理条件としては
、P IF。
適には約2,000〜6,000 )のr’ECで処理
する(たとえば、両者を混合する)、処理条件としては
、P IF。
Gfi度4〜10 w / v%(特に4〜8 w /
v%)、pH4〜6(特に4.5〜5.5 ) 、イ
オン強度0.0001〜0.1 M (特に、0.00
01〜0.OIM)であることが好ましい。
v%)、pH4〜6(特に4.5〜5.5 ) 、イ
オン強度0.0001〜0.1 M (特に、0.00
01〜0.OIM)であることが好ましい。
この際、蛋白濃度1〜2Q w / v%(特に、5〜
15w/v%)であることが好ましい。
15w/v%)であることが好ましい。
当該処理は、0〜4°C程度で通常30分〜6時間程度
撹拌することによって行われる。
撹拌することによって行われる。
その後、たとえば遠心骨N (6000〜8000 r
p m、10〜30分間)して上清を回収する。
p m、10〜30分間)して上清を回収する。
■高濃度PEG処理工程
本工程は■の工程で得られた上清を高4度PEGで処理
し、沈澱を回収する工程である。
し、沈澱を回収する工程である。
上記上清を分子!ll 、 000〜10.000 (
好適には2.000〜6,000)のPEGにてさらに
処理する(たとえば、両者を混合する)、処理条件とし
ては、PEGiJ度10〜15w/v%(特に、約ll
〜13w/v%)、p116〜9(特に7.5〜8.5
)、イオン強度0.0001〜0.1 M (特に、0
.0001−0.01M)であることが好ましい。
好適には2.000〜6,000)のPEGにてさらに
処理する(たとえば、両者を混合する)、処理条件とし
ては、PEGiJ度10〜15w/v%(特に、約ll
〜13w/v%)、p116〜9(特に7.5〜8.5
)、イオン強度0.0001〜0.1 M (特に、0
.0001−0.01M)であることが好ましい。
この際、蛋白濃度1〜2Q w / v%(特に、5〜
15W/V%)であることが好ましい。
15W/V%)であることが好ましい。
当該処理は、0〜4°C程度で通常30分〜6時間程度
撹拌することによって行われる。
撹拌することによって行われる。
その後、たとえば遠心骨tlilf (6000〜80
00 r p tn 。
00 r p tn 。
10〜30分間)して沈澱を回収する。
■陰イオン交換体処理工程
本工程は■の工程で得られた沈澱画分を水性溶媒に溶解
後、または後記■の工程の処理後陰イオン交換体で接触
処理して非吸着画分を回収する工程である。
後、または後記■の工程の処理後陰イオン交換体で接触
処理して非吸着画分を回収する工程である。
本工程は、IgM、IgAおよびIgG重合体を除くた
めに行われる。
めに行われる。
(i)陰イオン交換体のU8製
陰イオン交換体は陰イオン交換基を不溶性担体に結合し
たものであるが、陰イオン交換基としてはジエチルアミ
ノエチル(DEAE)基、四級アミノエチル(QAE)
基等を、不溶性担体としてはアガロース、セルロース、
デキストラン、ポリアクリルアミド等を用いることがで
きる。
たものであるが、陰イオン交換基としてはジエチルアミ
ノエチル(DEAE)基、四級アミノエチル(QAE)
基等を、不溶性担体としてはアガロース、セルロース、
デキストラン、ポリアクリルアミド等を用いることがで
きる。
その結合は公知の方法で行われる。
(ii)処理方法
■の工程で得られた沈澱画分を適当な水性溶媒に溶解す
る。水性溶媒はpH5〜8(好ましくはpH5,5〜7
.5 ) 、低イオン強度(好ましくは0.01〜0.
2 M )の水溶液であることが好ましい、■の工程と
同様の溶質を含んでいてもよい、蛋白濃度としては1〜
15 w / v%(特に、3〜10w/v%)が好ま
しい。
る。水性溶媒はpH5〜8(好ましくはpH5,5〜7
.5 ) 、低イオン強度(好ましくは0.01〜0.
2 M )の水溶液であることが好ましい、■の工程と
同様の溶質を含んでいてもよい、蛋白濃度としては1〜
15 w / v%(特に、3〜10w/v%)が好ま
しい。
さらに、上記水性溶媒で平衡化した陰イオン交換体と接
触処理する。その処理に際してはバッチ法、カラム法の
どちらを用いてもよい。
触処理する。その処理に際してはバッチ法、カラム法の
どちらを用いてもよい。
たとえば、バッチ法では、陰イオン交換体11に対して
処理対象溶液10〜!001程度と混合させ、0〜4℃
で30分〜2時間程度撹拌した後、遠心骨M (6,0
00〜8.00Or p m、 10〜30分間)し
て上清を回収する。
処理対象溶液10〜!001程度と混合させ、0〜4℃
で30分〜2時間程度撹拌した後、遠心骨M (6,0
00〜8.00Or p m、 10〜30分間)し
て上清を回収する。
カラム法でも、陰イオン交換体1+*lに対して処理対
象溶液10〜100m1程度を接触させ、非吸着画分を
回収する。
象溶液10〜100m1程度を接触させ、非吸着画分を
回収する。
なお、本■の工程は所望により省略することもできる。
また、液状加熱処理を行う場合には■の固定化ヒト血液
型物質処理後に当該陰イオン交換体処理を実施すること
が好ましい。
型物質処理後に当該陰イオン交換体処理を実施すること
が好ましい。
■固定化ヒト血液型物質処理工程
本工程は■の工程の沈澱画分または■の非吸着画分を固
定化ヒト血液型物質で接触処理して、非吸着画分を回収
する工程である。
定化ヒト血液型物質で接触処理して、非吸着画分を回収
する工程である。
本工程はヒト血液型抗体を除くために行われる。
(:)固定化ヒト血液型物質の!li製固足固定化ヒト
血液型物質ト血液型物質を不溶性担体に固定化したもの
である。
血液型物質ト血液型物質を不溶性担体に固定化したもの
である。
ヒト血液型物質の調製は、公知の方法を用いればよい、
たとえば、ヒトA、B、ABまたは0型の赤血球を低張
溶液中で溶血、または超音波処理した後、硫安分画法ま
たはPEG分画法により精製すること等により得られる
。
たとえば、ヒトA、B、ABまたは0型の赤血球を低張
溶液中で溶血、または超音波処理した後、硫安分画法ま
たはPEG分画法により精製すること等により得られる
。
さらにこのヒト血液型物質は生理的食塩液に溶解後、夾
雑するウィルスの不活化に有効とされている、たとえば
、約50〜70°C1好ましくは約60″Cで、7〜1
3時間、好ましくは約10時間、又は約80〜130℃
、好ましくは95℃〜121℃で約1〜40分、好まし
くは約2〜30分間加熱処理する。その後、遠心分離し
て不溶物を除去し、蒸留水に対して透析して、各ヒト血
液型物質を得る。
雑するウィルスの不活化に有効とされている、たとえば
、約50〜70°C1好ましくは約60″Cで、7〜1
3時間、好ましくは約10時間、又は約80〜130℃
、好ましくは95℃〜121℃で約1〜40分、好まし
くは約2〜30分間加熱処理する。その後、遠心分離し
て不溶物を除去し、蒸留水に対して透析して、各ヒト血
液型物質を得る。
一方、不溶性担体としてはアガロース、セルロース、デ
キストラン、シリカゲル、ガラス等が用いられる。
キストラン、シリカゲル、ガラス等が用いられる。
固定化は公知の方法に準じればよい0例えば、アガロー
ス、セルロース等はCNBr活性化法により、シリカゲ
ル、ガラス等はオキシラン法によりヒト血液型物質を固
定化できる。
ス、セルロース等はCNBr活性化法により、シリカゲ
ル、ガラス等はオキシラン法によりヒト血液型物質を固
定化できる。
(ii)処理方法
処理対象物、たとえば■の工程の沈澱画分を水性溶媒に
溶解したもの、あるいは■の工程の非吸着画分をpH5
〜8(特にpH6〜7)、イオン濃度0.01〜0.2
M(特に0.05〜0.15M)の条件下で、上記水性
溶媒で平衡化した固定化ヒト血液型物質と接触処理する
。その際、蛋白濃度1〜15w / v%(特に、3〜
10 w / v%)であることが好ましく、またバッ
チ法、カラム法のどちらを用いてもよい。
溶解したもの、あるいは■の工程の非吸着画分をpH5
〜8(特にpH6〜7)、イオン濃度0.01〜0.2
M(特に0.05〜0.15M)の条件下で、上記水性
溶媒で平衡化した固定化ヒト血液型物質と接触処理する
。その際、蛋白濃度1〜15w / v%(特に、3〜
10 w / v%)であることが好ましく、またバッ
チ法、カラム法のどちらを用いてもよい。
たとえばパンチ法では、固定化ヒト血液型物質11に対
して処理対象溶液10=10O+1程度と混合させ、0
〜10℃、好ましくは0〜4°Cで、30分〜4時間、
好ましくは30分〜2時間程度撹拌した後、遠心分離(
6,000〜8,000 r p m、10〜30分間
)して上清を回収する。
して処理対象溶液10=10O+1程度と混合させ、0
〜10℃、好ましくは0〜4°Cで、30分〜4時間、
好ましくは30分〜2時間程度撹拌した後、遠心分離(
6,000〜8,000 r p m、10〜30分間
)して上清を回収する。
カラム法でも、固定化ヒト血液型物[1+slに対して
処理対象溶液10〜100m1程度を接触させ、非吸着
画分を回収する。
処理対象溶液10〜100m1程度を接触させ、非吸着
画分を回収する。
この■の工程は所望により省略することもできる。
■加熱処理工程
本工程は、所望の段階で安定化剤の存在下に当該免疫グ
ロブリンのエイズウィルスに対する抗体活性の減少は最
小限にとどめるが、夾雑するウィルス、例えばHBウィ
ルス、エイズウィルス等は完全に不活化する条件下で加
熱処理する工程である。加熱処理は、含湿度3%以下の
乾燥状態(即ち、乾熱処理)、または溶液状態、即ち免
疫グロブリンの水溶液状態(即ち、液状加熱処理)で行
う、より好ましくは液状加熱処理が推奨される。
ロブリンのエイズウィルスに対する抗体活性の減少は最
小限にとどめるが、夾雑するウィルス、例えばHBウィ
ルス、エイズウィルス等は完全に不活化する条件下で加
熱処理する工程である。加熱処理は、含湿度3%以下の
乾燥状態(即ち、乾熱処理)、または溶液状態、即ち免
疫グロブリンの水溶液状態(即ち、液状加熱処理)で行
う、より好ましくは液状加熱処理が推奨される。
安定化剤としては、いずれの処理の場合も、二1!頻(
Lサッカロース、マルトース)、F’フルコール(例、
ソルビトール、マンニトール)が好適に例示される。よ
り好ましくはソルビトールである。
Lサッカロース、マルトース)、F’フルコール(例、
ソルビトール、マンニトール)が好適に例示される。よ
り好ましくはソルビトールである。
安定化剤の添加量は、乾熱処理法では、二[1、糖アル
コール等を0.5〜5 w / v%(好ましくは、1
〜3 w / v%)液状加熱処理法では二[1、糖ア
ルコール等を10 w / v%以上(好ましくは20
〜45w/v%またはto〜35w/w%)を用いるこ
とが好適に例示される。
コール等を0.5〜5 w / v%(好ましくは、1
〜3 w / v%)液状加熱処理法では二[1、糖ア
ルコール等を10 w / v%以上(好ましくは20
〜45w/v%またはto〜35w/w%)を用いるこ
とが好適に例示される。
加熱の対象となる免疫グロブリンの量は、乾熱処理では
、蛋白量として1〜IOW/V%(好ましくは3〜7
w / v%)となるように調整することが好適である
。液状加熱処理では、蛋白量として0.1〜30w/v
%(好ましくは5〜20w/V%)に調整することが好
ましい。
、蛋白量として1〜IOW/V%(好ましくは3〜7
w / v%)となるように調整することが好適である
。液状加熱処理では、蛋白量として0.1〜30w/v
%(好ましくは5〜20w/V%)に調整することが好
ましい。
加熱処理は、乾熱処理の場合は、安定化剤を添加後、要
すれば除菌濾過し、たとえば凍結乾燥などによって含水
率3%以下、好ましくは1%以下とする。凍結乾燥の条
件としては0.5−8gの真空下、20〜40°Cで2
4〜96時間程度が例示される0次いで、たとえば50
〜70°C(好ましくは60℃程度)、10〜200時
間(好ましくは50〜100時間程度)で処理する。
すれば除菌濾過し、たとえば凍結乾燥などによって含水
率3%以下、好ましくは1%以下とする。凍結乾燥の条
件としては0.5−8gの真空下、20〜40°Cで2
4〜96時間程度が例示される0次いで、たとえば50
〜70°C(好ましくは60℃程度)、10〜200時
間(好ましくは50〜100時間程度)で処理する。
また、本加熱処理工程は不活性ガス雰囲気下で行うこと
により、加熱時の安定性をより高めることができる。不
活性ガスとしては例えば、窒素ガス、アルゴン、ヘリウ
ムなどが挙げられる。
により、加熱時の安定性をより高めることができる。不
活性ガスとしては例えば、窒素ガス、アルゴン、ヘリウ
ムなどが挙げられる。
液状加熱処理の場合は水溶液のpHを4.5〜6.5、
好ましくはpH5〜6に調整し、液状加熱処理法ではた
とえば50〜70℃(好ましくは60°C程度)で10
分〜20時間(好ましくは10時間程度)処理される。
好ましくはpH5〜6に調整し、液状加熱処理法ではた
とえば50〜70℃(好ましくは60°C程度)で10
分〜20時間(好ましくは10時間程度)処理される。
加熱処理の工程は、乾熱処理の場合は最終工程で行うこ
とが好ましい。
とが好ましい。
液状加熱処理の場合は、出発原料に対して、または■の
工程の後に行うのが好適である。
工程の後に行うのが好適である。
なお、■の工程のあとに行う場合は、■および■の処理
を再度行うことが夾雑物除去の点でより好ましい。
を再度行うことが夾雑物除去の点でより好ましい。
また、必要に応じて、他の公知の手段(例えば、固定化
ジアミノ加護による処理など)を行ってもよい。
ジアミノ加護による処理など)を行ってもよい。
全工程終了後、公知の方法、すなわち透析、除菌濾過、
分注などの操作により液状製剤とすることができる。さ
らに、凍結乾燥などの操作により乾燥製剤とすることも
できる。
分注などの操作により液状製剤とすることができる。さ
らに、凍結乾燥などの操作により乾燥製剤とすることも
できる。
液状製剤の場合、グロブリン濃度としては1〜15w/
v%(好ましくは5〜10 w / v%)程度である
。また、安定化剤を添加しておくことが好ましい、安定
化剤としては、糖、塘アルコールなどが例示される。そ
の具体的な例については■の加熱処理において既に開示
したものと同様である。
v%(好ましくは5〜10 w / v%)程度である
。また、安定化剤を添加しておくことが好ましい、安定
化剤としては、糖、塘アルコールなどが例示される。そ
の具体的な例については■の加熱処理において既に開示
したものと同様である。
安定化剤の添加量としては、ゾロ19フ1〜15くは5
w/v%程度が挙げられる。
w/v%程度が挙げられる。
また、液状製剤のpHは5.3〜5.7程度、好ましく
は5.5程度としておくことが例示される。
は5.5程度としておくことが例示される。
乾燥製剤の場合も安定化剤を添加しておくことが好まし
い.安定化剤としては、糖、糖アルコール、アルブミン
、無機塩などが例示される.その具体的な例としては、
糖、糖アルコールについては■の加熱処理において既に
開示したものと同様であり、無機塩としては塩化ナトリ
ウムが例示される。
い.安定化剤としては、糖、糖アルコール、アルブミン
、無機塩などが例示される.その具体的な例としては、
糖、糖アルコールについては■の加熱処理において既に
開示したものと同様であり、無機塩としては塩化ナトリ
ウムが例示される。
安定化剤の添加量としては、グロブリン1−15重量部
当たり、糖または糖アルコールで1〜10重量部(好ま
しくは2重量部)程度、アルブミンで0.5〜5重量部
(好ましくは1重量部)程度、無機塩で0.1−1重置
部(好ましくは0.5重量部)程度が挙げられる。
当たり、糖または糖アルコールで1〜10重量部(好ま
しくは2重量部)程度、アルブミンで0.5〜5重量部
(好ましくは1重量部)程度、無機塩で0.1−1重置
部(好ましくは0.5重量部)程度が挙げられる。
本発明により得られた製剤は免疫グロブリンが殆ど不活
化されておらず、しかも、抗ヒト血液型物質抗体等の夾
雑物は含まれず、加熱処理を施しているので夾雑ウィル
スは不活化され、抗補体活性も充分に低い等の性質を有
し、昭和60年度発行の日本国生物学的製剤基準(以下
、生基準)に適合できる安全な製剤である。
化されておらず、しかも、抗ヒト血液型物質抗体等の夾
雑物は含まれず、加熱処理を施しているので夾雑ウィル
スは不活化され、抗補体活性も充分に低い等の性質を有
し、昭和60年度発行の日本国生物学的製剤基準(以下
、生基準)に適合できる安全な製剤である。
また、乾燥製剤の場合は溶解性もよい。
本発明により得られた製剤は、用時、液状製剤の場合は
そのまま、あるいは適当な溶媒(例えば、注射用蒸留水
、生理食塩液、ブドウ糖液など)で希釈して、また、乾
燥製剤の場合は適当な溶媒(例えば、注射用蒸留水)に
溶解して、静脈内投与、点滴などにより、エイズ(AI
DS)の予防または治療に用いられる.また、公知の他
のエイズ予防治療剤との併用も可能である。
そのまま、あるいは適当な溶媒(例えば、注射用蒸留水
、生理食塩液、ブドウ糖液など)で希釈して、また、乾
燥製剤の場合は適当な溶媒(例えば、注射用蒸留水)に
溶解して、静脈内投与、点滴などにより、エイズ(AI
DS)の予防または治療に用いられる.また、公知の他
のエイズ予防治療剤との併用も可能である。
すなわち、本発明は抗エイズウィルス抗体陽性静注用免
疫グロブリン製剤の工業的製法として有用である。
疫グロブリン製剤の工業的製法として有用である。
本発明をより詳細に説明するために実施例および実験例
を挙げるが、本発明はこれらによって何ら限定されるも
のではない。
を挙げるが、本発明はこれらによって何ら限定されるも
のではない。
実施例1
抗HIV抗体陽性血漿を56℃で30分間加熱処理した
後、冷エタノール法により得られたコーン画分111k
gに0.OOIMの塩化ナトリウム溶液1(lを加え、
pHを5.0に調整した後、PEG#4000を終濃度
が8%になるように添加し、2℃で遠心分離を行った。
後、冷エタノール法により得られたコーン画分111k
gに0.OOIMの塩化ナトリウム溶液1(lを加え、
pHを5.0に調整した後、PEG#4000を終濃度
が8%になるように添加し、2℃で遠心分離を行った。
得られた上清をIN−水酸化ナトリウムを用いてPH8
.0とした後、P E G #4000を終濃度が12
%になるように加え、2°Cで遠心分離を行い、IgG
画分を集めた。
.0とした後、P E G #4000を終濃度が12
%になるように加え、2°Cで遠心分離を行い、IgG
画分を集めた。
このIgG画分を0.6%塩化ナトリウム溶液を用いI
gG濃度が7%になるように溶解せしめ、pHを6.5
に調整した。
gG濃度が7%になるように溶解せしめ、pHを6.5
に調整した。
このIgG溶液100請lを別途調整したヒト血i1型
物’ffフォルミルセルロファイン力ラム3mlを通過
させヒト血液型抗体を吸着除去した.この工程での吸着
により血液型抗体は(1:32)から(1:2)に低下
した。
物’ffフォルミルセルロファイン力ラム3mlを通過
させヒト血液型抗体を吸着除去した.この工程での吸着
により血液型抗体は(1:32)から(1:2)に低下
した。
さらに、この溶液にDEAE−セファデックスを添加(
50麟l熔液当たり11)し、0〜4°Cの条件下、約
1時間接触処理し、処理後遠心分#(7000 rpm
,約20分間)して上vff(IgG溶液)を回収した
。
50麟l熔液当たり11)し、0〜4°Cの条件下、約
1時間接触処理し、処理後遠心分#(7000 rpm
,約20分間)して上vff(IgG溶液)を回収した
。
この未吸着画分にIgG5w/v%溶液当たりヒトアル
ブミンを1w/v%、サッカロースを2w / v%添
加し、除菌濾過後、凍結乾燥した。
ブミンを1w/v%、サッカロースを2w / v%添
加し、除菌濾過後、凍結乾燥した。
凍結乾燥後、60℃で72時間加熱処理を行い、静注用
免疫グロブリン製剤を得た。
免疫グロブリン製剤を得た。
本製剤は、実質的にIgG単量体のみを含み、ヒト血液
型抗体量も充分少なく、抗補体価も10〜15CH,。
型抗体量も充分少なく、抗補体価も10〜15CH,。
程度であった。
また、溶解性も高く、静注用免疫グロブリンとしての生
基準にも合格した。
基準にも合格した。
また、この免疫グロブリンはin vitroの試験で
AIDSウィルスの増殖を抑制した。
AIDSウィルスの増殖を抑制した。
実施例2
抗HIV抗体陽性血漿から冷エタノール法により得られ
たコーン画分■+[11kgに水10ffiを加え、さ
らに1ocllll当たりソルビトールを50g添加し
、PHを5.5に調整した後、60°Cで10時間加熱
処理を行った。
たコーン画分■+[11kgに水10ffiを加え、さ
らに1ocllll当たりソルビトールを50g添加し
、PHを5.5に調整した後、60°Cで10時間加熱
処理を行った。
加熱処理後、pHを5.5に調整した後、PEG#40
00を終濃度が6%になるように添加し、2°C3時間
抽出を行った後、2 ”Cで遠心分離を行った。
00を終濃度が6%になるように添加し、2°C3時間
抽出を行った後、2 ”Cで遠心分離を行った。
得られた上清をIN−水酸化ナトリウムを用いpH8,
8とした後、P E G #4000を終濃度が12%
になるように加え、2℃で遠心分離を行い、沈澱画分に
IgG画分を得た。この沈澱を蒸溜水に溶解し、このI
gG溶液100m1を蒸溜水で平衡化したヒト血液型物
質フォルミルセルロファイン力ラム3mlを通過させヒ
ト血液型抗体を吸着除去した。この工程での吸着により
血液型抗体は(l:32)から(1: 2)に低下した
。この沈澱に0.4%食塩水で平衡化したDEAE−セ
ファデックスを添加(50ml溶液当り2m1) L、
O〜4 ”Cの条件下、約1時間接触処理し、処理後濾
過にてDEAE−セファデックスを除き濾過液(IgG
溶液)を回収した。
8とした後、P E G #4000を終濃度が12%
になるように加え、2℃で遠心分離を行い、沈澱画分に
IgG画分を得た。この沈澱を蒸溜水に溶解し、このI
gG溶液100m1を蒸溜水で平衡化したヒト血液型物
質フォルミルセルロファイン力ラム3mlを通過させヒ
ト血液型抗体を吸着除去した。この工程での吸着により
血液型抗体は(l:32)から(1: 2)に低下した
。この沈澱に0.4%食塩水で平衡化したDEAE−セ
ファデックスを添加(50ml溶液当り2m1) L、
O〜4 ”Cの条件下、約1時間接触処理し、処理後濾
過にてDEAE−セファデックスを除き濾過液(IgG
溶液)を回収した。
180画分に2%ソルビトール、0.5%NaC1およ
び1%アルブミンを添加溶解し、pH6,8とした後、
除菌濾過し、凍結乾燥して静注用免疫グロブリン製剤を
得た。
び1%アルブミンを添加溶解し、pH6,8とした後、
除菌濾過し、凍結乾燥して静注用免疫グロブリン製剤を
得た。
本製剤は、実質的にIgG単量体のみを含み、ヒト血液
型抗体量も充分少なく、抗補体価もl。
型抗体量も充分少なく、抗補体価もl。
〜15CH,,程度であった。
また、溶解性も高く、静注用免疫グロブリンとしての生
基準にも合格した。
基準にも合格した。
実施例3
実施例2において、DEAE−セファデックスによる処
理後遠心分離(7000rpm、約20分間)して上清
(+gc溶液)を回収した。
理後遠心分離(7000rpm、約20分間)して上清
(+gc溶液)を回収した。
このIgG溶液を蒸留水で5%IgG溶液に調整し、酢
酸ナトリウムで溶液のplを約5.5にし、さらにソル
ビトールを終濃度5%まで添加した。
酸ナトリウムで溶液のplを約5.5にし、さらにソル
ビトールを終濃度5%まで添加した。
この水溶液(電導度約15sho)を除菌濾過し静注用
免疫グロブリン液状製剤を得た。
免疫グロブリン液状製剤を得た。
本製剤は、実質的にIgG単量体のみを含み、ヒト血液
型抗体量も充分少なく、抗補体価も10〜15CHse
程度であり、静注用免疫グロブリンとしての生基準にも
合格した。
型抗体量も充分少なく、抗補体価も10〜15CHse
程度であり、静注用免疫グロブリンとしての生基準にも
合格した。
またin vitroの試験で、AIDSウィルスの増
殖を抑制した。
殖を抑制した。
実施例4
抗HI V抗体陽性血漿を56℃で30分間加温後以下
のような冷エタノール法によりコーン画分■を回収した
。
のような冷エタノール法によりコーン画分■を回収した
。
■エタノール濃度8%、pH7,2、−3℃、16時間
で処理して上清を採取 ■エタノール濃度21%、pH6,8、−5℃、24時
間で処理して沈澱(コーン画分+1+l11)を採取 ■沈澱を溶解し、エタノール濃度20%、PH6,6、
−5℃、16時間で処理して沈澱を採取■沈澱を溶解し
、エタノール濃度17%、pH5,2、−6℃、8時間
で処理して上清を採取 ■エタノール濃度25%、pH7,4、−5℃、16時
間で処理して沈W1(コーン百分「)を採取このコーン
画分[ペースト1kgを蒸留水102にて懸濁し、pH
を5.5に調整した後、遠心分離を行い、上清を回収し
て、上清100m1当たりソルビトールを50g添加し
、60℃で10時間加熱処理した。
で処理して上清を採取 ■エタノール濃度21%、pH6,8、−5℃、24時
間で処理して沈澱(コーン画分+1+l11)を採取 ■沈澱を溶解し、エタノール濃度20%、PH6,6、
−5℃、16時間で処理して沈澱を採取■沈澱を溶解し
、エタノール濃度17%、pH5,2、−6℃、8時間
で処理して上清を採取 ■エタノール濃度25%、pH7,4、−5℃、16時
間で処理して沈W1(コーン百分「)を採取このコーン
画分[ペースト1kgを蒸留水102にて懸濁し、pH
を5.5に調整した後、遠心分離を行い、上清を回収し
て、上清100m1当たりソルビトールを50g添加し
、60℃で10時間加熱処理した。
加熱処理後、pHを5.5に調整した後、PEG#40
00を終濃度が6%になるように添加し、2℃で遠心分
離を行った。
00を終濃度が6%になるように添加し、2℃で遠心分
離を行った。
得られた上清をIN−水酸化ナトリウムを用いPH8,
0とした後、P E G #4000を終濃度が12%
になるように加え、2℃で遠心分離を行い、沈澱画分に
IgGWi分を得た。
0とした後、P E G #4000を終濃度が12%
になるように加え、2℃で遠心分離を行い、沈澱画分に
IgGWi分を得た。
実験例1:抗体価の測定
〔材料と方法〕
(1)細胞株およびウィルス株
皇凶珪
三種のCD4陽性ヒトT細胞株を用いた。
1、HTLV−1陽性T細胞株:
MT−4(Miyoshi、 1. et al、:J
pn、 J、 Cancer Res、、28+219
−228.1982) 2、HIV産生T細胞株: MOLT−4/[IIV (にoyanagi、 y、 et al、:J
pn、J、 Cancer Res、+76+799−
802.1985) 3、 HI V非産生T細胞株: MOLT−4 (Minowada、 J、 et al、:J、 N
at、 Cancer In5t、+49、891−8
95.1972) いずれの細胞株も、10%濃度の非動化したウシ胎児血
清(Fe2)と抗生物質を含むRPMI−1640培地
で培養した。細胞の生存率はトリパンブルー染色によっ
て調べた。
pn、 J、 Cancer Res、、28+219
−228.1982) 2、HIV産生T細胞株: MOLT−4/[IIV (にoyanagi、 y、 et al、:J
pn、J、 Cancer Res、+76+799−
802.1985) 3、 HI V非産生T細胞株: MOLT−4 (Minowada、 J、 et al、:J、 N
at、 Cancer In5t、+49、891−8
95.1972) いずれの細胞株も、10%濃度の非動化したウシ胎児血
清(Fe2)と抗生物質を含むRPMI−1640培地
で培養した。細胞の生存率はトリパンブルー染色によっ
て調べた。
ウィルス株
HTLV−1111株を用いた。
ウィルス液は、MOLT−4/HTLV−111゜の培
養−F清より調製した。即ち、低速遠心で細胞を除いた
後、ウィルスを含む培養上清を0.45μ。
養−F清より調製した。即ち、低速遠心で細胞を除いた
後、ウィルスを含む培養上清を0.45μ。
のミリポアフィルタ−で濾過し、用時まで、−80°C
で凍結保存した。このウィルス液の感染価は、MT−4
を使ったプラーク形成法で測定したところ、2X10’
ρfu/剛lであった。
で凍結保存した。このウィルス液の感染価は、MT−4
を使ったプラーク形成法で測定したところ、2X10’
ρfu/剛lであった。
(2)HI V抗体陽性血漿と抗体陽性免疫グロブリン
の調製と抗体価測定法 週盟広 抗体陽性血漿についてはアメリカの無症候のトIIV抗
体陽性キャリアより、陰性血漿については日本及びアメ
リカの正常人より集めた。これらの血漿から実施例4の
方法により静注用免疫グロブリンを得た。この百分のI
gG含量は免疫拡散法(MBL Co、、名古屋)に
より、抗体価は下記の免疫蛍光法により求めた(第1表
)。
の調製と抗体価測定法 週盟広 抗体陽性血漿についてはアメリカの無症候のトIIV抗
体陽性キャリアより、陰性血漿については日本及びアメ
リカの正常人より集めた。これらの血漿から実施例4の
方法により静注用免疫グロブリンを得た。この百分のI
gG含量は免疫拡散法(MBL Co、、名古屋)に
より、抗体価は下記の免疫蛍光法により求めた(第1表
)。
抗潜J11【汰
■免疫蛍光(IFA)法
細胞に於けるH I V特異抗原の出現と血漿や免疫グ
ロブリンのHIVに対する結合抗体価は、免疫蛍光法に
よって決めた。以下にその手順の概略を述べる。
ロブリンのHIVに対する結合抗体価は、免疫蛍光法に
よって決めた。以下にその手順の概略を述べる。
1、 メタノール固定細胞に、抗原の検出の為には10
00倍に希釈した抗体陽性血清(IF法による抗体価1
: 4096)を、抗体価測定の為には連続希釈した
グロブリン溶液を滴下した。
00倍に希釈した抗体陽性血清(IF法による抗体価1
: 4096)を、抗体価測定の為には連続希釈した
グロブリン溶液を滴下した。
2、37°Cで30分間静置後、リン酸緩衝液(PBS
)で15分間洗浄。
)で15分間洗浄。
3、 抗ヒトI g G −F L T C(Fluo
rescein l5o−thioyanaLe)標識
ウサギ抗体溶液を滴下し、37°Cで30分間静置後、
PBSで洗浄。
rescein l5o−thioyanaLe)標識
ウサギ抗体溶液を滴下し、37°Cで30分間静置後、
PBSで洗浄。
4、 蛍光顕微鏡で300個以上の細胞を観察し、蛍光
陽性細胞の割合を求めた。
陽性細胞の割合を求めた。
■中和抗体(NA)法
HIVに対する中和抗体価測定の為に、プラーク形成阻
止法を用いた。
止法を用いた。
1、 非動化血漿と免疫グロブリン溶液を除菌濾過し、
l/20から1 /2560まで倍々希釈した。この希
釈溶液11を等量の5X IO”pfu/mlのウィル
ス溶液と混合した。この混合液を4゛Cで2時間振盪し
た。
l/20から1 /2560まで倍々希釈した。この希
釈溶液11を等量の5X IO”pfu/mlのウィル
ス溶液と混合した。この混合液を4゛Cで2時間振盪し
た。
2゜ 各混合液0.51をシャーレ中のMT−4細胞上
(2,4X10’細胞/シヤーレ)に滴下後、ウィルス
の細胞への吸着の為、室温で1時間静置した。
(2,4X10’細胞/シヤーレ)に滴下後、ウィルス
の細胞への吸着の為、室温で1時間静置した。
3.0.6%アガロース(Sea Plaque Ag
arose。
arose。
Marine Co11oids、 Rockland
、 ME)を含有する血清培地1.5mlを各シャーレ
に注いだ。
、 ME)を含有する血清培地1.5mlを各シャーレ
に注いだ。
4、 シャーレを37℃の炭酸ガス培養器で3日間培養
後、中性赤及びアガロース含有血清培地1.5mlを重
層する。
後、中性赤及びアガロース含有血清培地1.5mlを重
層する。
5、 更に3日間培養後、肉眼でプラークを数える。
なお、実、験は3連で行った。血漿あるいはHIV−1
gの中和抗体価は、陰性対照のプラーク数の50%以下
となる検体の希釈倍数で表した。
gの中和抗体価は、陰性対照のプラーク数の50%以下
となる検体の希釈倍数で表した。
第1表
実験例2
(1)MT−4系でのHIVigのI(I V感染阻害
■HI V感染細胞の1+ 1 V−1gによる処理H
I V −1gh<MT −4ヲII [Vg3染J’
う守ルことができるかどうかを調べるために、I F法
による抗体価が1:1280〜2560のH[V −1
g調製品を終濃度30%(V/V)となるようにHIV
感染MT−4培養系の中に入れた。
■HI V感染細胞の1+ 1 V−1gによる処理H
I V −1gh<MT −4ヲII [Vg3染J’
う守ルことができるかどうかを調べるために、I F法
による抗体価が1:1280〜2560のH[V −1
g調製品を終濃度30%(V/V)となるようにHIV
感染MT−4培養系の中に入れた。
HIVのMT−4への感染条件は細胞1個あたりの接種
ウィルス数CM、0.1. ) 0.001で行った。
ウィルス数CM、0.1. ) 0.001で行った。
37°Cで1時間、細胞につ・Cルスを吸着させた後、
!S染細胞を培地で1回洗浄した。2XIO’cell
s/mlになるように血清培地で細胞密度を調整後、2
4穴組織培養用プレートの各人に1mlずつ分注し、3
7°C15%炭酸ガス濃度、湿潤状態で培養した。HI
M−1gの希釈は血清培地で行い、細胞播種時に細胞培
養液中に加えた。陰性対照としては、抗HI V抗体陰
性血漿を用いた。
!S染細胞を培地で1回洗浄した。2XIO’cell
s/mlになるように血清培地で細胞密度を調整後、2
4穴組織培養用プレートの各人に1mlずつ分注し、3
7°C15%炭酸ガス濃度、湿潤状態で培養した。HI
M−1gの希釈は血清培地で行い、細胞播種時に細胞培
養液中に加えた。陰性対照としては、抗HI V抗体陰
性血漿を用いた。
HIV感染M 1” −4の生存率はトリパンブルー染
色法(Kruse、 p、 F、+ Jr、 and
Patterson、 M、に、。
色法(Kruse、 p、 F、+ Jr、 and
Patterson、 M、に、。
Jr、、 Bds−+ 1973: Ti5sue C
u1ture; Methods andApplic
ation Academic Press、 New
York、)により、また、陽性率(感染率)はIF
法により測定した。
u1ture; Methods andApplic
ation Academic Press、 New
York、)により、また、陽性率(感染率)はIF
法により測定した。
■結果
陰性対照を添加した系では、感染MT−4の生存率は、
感染15日日月は20%以下にまで急速に落ちた。HI
V抗原陽性細胞の割合は、感染3臼目には80%以上に
なった。一方、t(II−1gを添加した系では、HI
V複製阻害とウィルスによる細胞死の阻害効果がはっき
りと見られた。
感染15日日月は20%以下にまで急速に落ちた。HI
V抗原陽性細胞の割合は、感染3臼目には80%以上に
なった。一方、t(II−1gを添加した系では、HI
V複製阻害とウィルスによる細胞死の阻害効果がはっき
りと見られた。
即ち、感染2週間後には、陰性対照処理系では殆ど全て
の感染細胞が死滅したのに対し、HIV−1g処理培養
系に於いては抗原陽性細胞が1%以下しかなく細胞は生
きていた。
の感染細胞が死滅したのに対し、HIV−1g処理培養
系に於いては抗原陽性細胞が1%以下しかなく細胞は生
きていた。
第2表
〔以下余白]
第3表
実験例3
次に、H[V−1gの感染阻止に関する濃度の影響を見
た。HIV−1gをいろいろな濃度で感染培養系に加え
たところ、阻害の程度は明らかにIgG濃度依存性であ
った(第4表)。10日日間実験期間中、HI V感染
拡大の完全な阻止は、IgGの終濃度が5.3+1g/
mlの時に見られた。2.7mg/ml以下の濃度では
、HI V感染を初期に僅かに阻害したのみであった。
た。HIV−1gをいろいろな濃度で感染培養系に加え
たところ、阻害の程度は明らかにIgG濃度依存性であ
った(第4表)。10日日間実験期間中、HI V感染
拡大の完全な阻止は、IgGの終濃度が5.3+1g/
mlの時に見られた。2.7mg/ml以下の濃度では
、HI V感染を初期に僅かに阻害したのみであった。
第4表
実験例4
f2) 1B胞接触を通じてのHIV惑染拡大の11I
■−Igによる阻害効果:MOLT−4系 次に、MOLT−4とMOLT−4/HTLV−■、共
培養系に於いて、HIV−1gが多核巨細胞の形成を阻
害するかどうかを調べた。
■−Igによる阻害効果:MOLT−4系 次に、MOLT−4とMOLT−4/HTLV−■、共
培養系に於いて、HIV−1gが多核巨細胞の形成を阻
害するかどうかを調べた。
■HI V感染細胞のHIV−1gによる処理MOLT
−4とMOLT−4/HTLV−I[1mについては9
対10割合で混ぜ、3X10’cells/mlに調整
後、各人にlslずつ分注した。この細胞混合溶液にH
IV−1g検体を加えて培養した。その培養液は3日毎
に交換し、HI ’l−1gもその凌毎に添加した。
−4とMOLT−4/HTLV−I[1mについては9
対10割合で混ぜ、3X10’cells/mlに調整
後、各人にlslずつ分注した。この細胞混合溶液にH
IV−1g検体を加えて培養した。その培養液は3日毎
に交換し、HI ’l−1gもその凌毎に添加した。
■結果
111V−1gを添加しない場合には、共培養開始2日
以内に多核巨細胞が出現し、5日後にはシャーレ全体を
占めた。HIV−1[を添加した場合には、多核巨細胞
は実験期間中出現しなかった。
以内に多核巨細胞が出現し、5日後にはシャーレ全体を
占めた。HIV−1[を添加した場合には、多核巨細胞
は実験期間中出現しなかった。
また、蛍光(I(IV抗涼)陽性細胞の割合は、24日
間の実験期間中、約10%のままだった。これは、最初
のHI V産生細胞の混合比率とほぼ同じだった。対照
的にlI[V−1gを添加しない場合には、10日以内
に蛍光陽性細胞の割合が90%以上になった。ところが
、実験途中で培養液からHI V −1gを抜くと、抗
原陽性の多核巨細胞が象、速に出現した。このことは、
HIV−1gが常に培養液中に含まれていることが、H
I Vの複製を阻止するのに必要であることを示唆して
いる。
間の実験期間中、約10%のままだった。これは、最初
のHI V産生細胞の混合比率とほぼ同じだった。対照
的にlI[V−1gを添加しない場合には、10日以内
に蛍光陽性細胞の割合が90%以上になった。ところが
、実験途中で培養液からHI V −1gを抜くと、抗
原陽性の多核巨細胞が象、速に出現した。このことは、
HIV−1gが常に培養液中に含まれていることが、H
I Vの複製を阻止するのに必要であることを示唆して
いる。
特許出願人 株式会社 ミドリ十字
手続補正書(自発)
Claims (3)
- (1)抗エイズウィルス抗体陽性免疫グロブリンを含む
画分を出発原料とする、以下の処理からなる抗エイズウ
ィルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤の製造方法: (a)pH4〜6、イオン強度0.0001〜0.1M
、温度0〜4℃の条件下、分子量1,000〜10,0
00のポリエチレングリコール4〜10w/v%で処理
して上清を回収する。 (b)(a)の上清をpH6〜9、イオン強度0.00
01〜0.1M、温度0〜4℃の条件下、分子量1,0
00〜10,000のポリエチレングリコール10〜1
5w/v%で処理して沈澱を回収する。 (c)所望の工程で夾雑するウィルスが不活化するのに
充分な条件下、安定化剤の存在下で加熱処理する。 - (2)(b)の工程の後に、pH5〜8、イオン強度0
.01〜0.2Mの条件下、固定化ヒト血液型物質で処
理して非吸着画分を回収する工程を含むことを特徴とす
る特許請求の範囲第(1)項記載の製造方法。 - (3)(b)の沈澱を水性溶媒に溶解し、pH5〜8、
イオン強度0.01〜0.2Mの条件下、陰イオン交換
体で処理して非吸着画分を回収する工程を含んでなる特
許請求の範囲第(1)項記載の製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62335488A JP2613409B2 (ja) | 1987-11-20 | 1987-12-29 | 抗エイズウイルス抗体陽性静注用免疫グロブリン製剤の製造方法 |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP29487987 | 1987-11-20 | ||
JP62-294879 | 1987-11-20 | ||
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- 1987-12-29 JP JP62335488A patent/JP2613409B2/ja not_active Expired - Lifetime
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