JPH01114758A - パパインを含まない抗体フラグメント調製物の製造方法 - Google Patents
パパインを含まない抗体フラグメント調製物の製造方法Info
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- JPH01114758A JPH01114758A JP63228924A JP22892488A JPH01114758A JP H01114758 A JPH01114758 A JP H01114758A JP 63228924 A JP63228924 A JP 63228924A JP 22892488 A JP22892488 A JP 22892488A JP H01114758 A JPH01114758 A JP H01114758A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
l」立背月
本発明は、抗体フラグメントを得るための全抗体の蛋白
分解消化に関する。特に、本発明は、パパイン消化全I
gG抗体から誘導されるF(ab’)*抗体フラグメン
トの製造に関する。
分解消化に関する。特に、本発明は、パパイン消化全I
gG抗体から誘導されるF(ab’)*抗体フラグメン
トの製造に関する。
全IgG抗体から誘導される単価[F ab及びFab
’]並びに二価[F fab’L]抗体フラグメントの
使用は良く確立されている6例えば、かかるフラグメン
トは、標識化イムノアッセイ試薬として[Ullman
らのMethods in Enzymology。
’]並びに二価[F fab’L]抗体フラグメントの
使用は良く確立されている6例えば、かかるフラグメン
トは、標識化イムノアッセイ試薬として[Ullman
らのMethods in Enzymology。
vol、 74. p、 28 (19811:イノウ
ニらのAnalyticalLetters、 vol
、 18. p、 1331 (19851;及び西独
国特許出願DE 3430905号]、及び、免疫治
療薬として[Sm1thらのAntibodies i
n HumanDiagnosis and Ther
apy、 Haber and Krause m。
ニらのAnalyticalLetters、 vol
、 18. p、 1331 (19851;及び西独
国特許出願DE 3430905号]、及び、免疫治
療薬として[Sm1thらのAntibodies i
n HumanDiagnosis and Ther
apy、 Haber and Krause m。
Raven Press、 New York、 N、
Y、、 p、 365 (19771]用いられている
。免疫診断の分野では、かかる単価抗体フラグメントは
、例えば、リウマチ様のファクター及び/又は拮抗種I
gG抗体を含む試料による妨害が減少するなどの、未変
性又は全IgG抗体を用いた他の試薬を凌ぐある種の有
利性を示す、抗体分子が分解すると抗体の特性を変化さ
せ、更にイムノアッセイ特性を劣化させる可能性がある
ので、抗体の分子結合性の保持、及び、試薬合成及び精
製中のそれらの結合活性は極めて重要である。かかる未
変性又は全IgG抗体をin vivo免疫治療薬とし
て用いると、血清疾病を起こす可能性がある。
Y、、 p、 365 (19771]用いられている
。免疫診断の分野では、かかる単価抗体フラグメントは
、例えば、リウマチ様のファクター及び/又は拮抗種I
gG抗体を含む試料による妨害が減少するなどの、未変
性又は全IgG抗体を用いた他の試薬を凌ぐある種の有
利性を示す、抗体分子が分解すると抗体の特性を変化さ
せ、更にイムノアッセイ特性を劣化させる可能性がある
ので、抗体の分子結合性の保持、及び、試薬合成及び精
製中のそれらの結合活性は極めて重要である。かかる未
変性又は全IgG抗体をin vivo免疫治療薬とし
て用いると、血清疾病を起こす可能性がある。
当該技術において公知の方法によって、未変性又は全I
gG抗体を蛋白消化し、それからF (ab’)x抗体
フラグメントを得ることは周知である。この目的のため
に、通常、蛋白分解酵素ペプシンが用いられる0例えば
、F(ab’)2抗体フラグメントを、マウスの全Ig
G抗体[LamoyiらのJ、 Immunol、 M
ethods、 vol、 56. p、 235f1
9113) ]又はラットの全IgG抗体[Rouss
eauxらのJ、 Immunol、 Methods
、 vol、 64. p、 141(1983) ]
のペプシン消化によって得ることができる。しかしなが
ら、ある種の抗体、特にモノクローナル抗体は、ペプシ
ンに対して感受性が極度に強く、かかる場合においては
、結合活性が減少しているか又は有さない抗体フラグメ
ントに速やかに分解される。かかる分解を防止するため
に、代わりに、IgG分子を予め活性化されたパパイン
によって消化し、F (ab’)a及びFcフラグメン
トを得ることができる[ ParhamらのJ、 Im
munol。
gG抗体を蛋白消化し、それからF (ab’)x抗体
フラグメントを得ることは周知である。この目的のため
に、通常、蛋白分解酵素ペプシンが用いられる0例えば
、F(ab’)2抗体フラグメントを、マウスの全Ig
G抗体[LamoyiらのJ、 Immunol、 M
ethods、 vol、 56. p、 235f1
9113) ]又はラットの全IgG抗体[Rouss
eauxらのJ、 Immunol、 Methods
、 vol、 64. p、 141(1983) ]
のペプシン消化によって得ることができる。しかしなが
ら、ある種の抗体、特にモノクローナル抗体は、ペプシ
ンに対して感受性が極度に強く、かかる場合においては
、結合活性が減少しているか又は有さない抗体フラグメ
ントに速やかに分解される。かかる分解を防止するため
に、代わりに、IgG分子を予め活性化されたパパイン
によって消化し、F (ab’)a及びFcフラグメン
トを得ることができる[ ParhamらのJ、 Im
munol。
Methods、 vol、 53. p、
133 (19821] 。
133 (19821] 。
上記記載のように、パパインを用いてペプシンに感受性
を有する抗体を消化することができるが、パパインによ
る消化によって、それから誘導される抗体フラグメント
の分子結合性の分解が大きく増加することが観察されて
いる0例えば、かかる分解によって、ヒンジ領域の利用
しつるスルフヒドリル基の数が減少し、場合によっては
スルフヒドリル基が消失してしまう、したがって、上記
記載のような、全IgG分子をパパインによって消化す
ることが望ましい場合においては、従来方法によっては
、パパイン消化によって分解及び不活性化を受けやすい
ので、未変性活性F(ab’)。
を有する抗体を消化することができるが、パパインによ
る消化によって、それから誘導される抗体フラグメント
の分子結合性の分解が大きく増加することが観察されて
いる0例えば、かかる分解によって、ヒンジ領域の利用
しつるスルフヒドリル基の数が減少し、場合によっては
スルフヒドリル基が消失してしまう、したがって、上記
記載のような、全IgG分子をパパインによって消化す
ることが望ましい場合においては、従来方法によっては
、パパイン消化によって分解及び不活性化を受けやすい
ので、未変性活性F(ab’)。
抗体フラグメントをその全IgG抗体がら製造すること
ができなかった。
ができなかった。
したがって、本発明の目的は、パパインによって消化さ
れた全IgG抗体から誘導される、パパインを含まない
F(ab’)2抗体フラグメント調製物を提供すること
である。
れた全IgG抗体から誘導される、パパインを含まない
F(ab’)2抗体フラグメント調製物を提供すること
である。
本発明の他の目的は、ヒンジ領域に、利用しうる遊離ス
ルフヒドリル基を有するFab’抗体フラグメントを得
ることのできるF (ab’)2抗体フラグメント調製
物を提供することである。
ルフヒドリル基を有するFab’抗体フラグメントを得
ることのできるF (ab’)2抗体フラグメント調製
物を提供することである。
l肌坐互I
パパインで消化された全IgG抗体から誘導される抗体
フラグメントの分解の観察される増加の出所を測定する
試みにおいて、かかるフラグメントの分子結合性を、還
元剤の存在下又は不存在下で、ゲル濾過によって精製し
て、5O3−PAGE (ナトリウムドデシルベンゼン
スルホネート−ポリアクリルアミドゲル電気泳動)によ
って評価した。非還元条件下では、Flab’)2調製
物は実質的に純粋であり構造的に未変性であることが分
かった。しかしながら、重質フラグメント及び軽質鎖の
両方を生成する還元剤の存在下においては、調製物は小
さなフラグメント(25,oOoダルトン未満)に分解
された。しかしながら、還元条件下での5O3−PAG
E分析に先立って、Ffab’)a調製物をインドアセ
トアミドで処理すると、この分解の発生が防止された。
フラグメントの分解の観察される増加の出所を測定する
試みにおいて、かかるフラグメントの分子結合性を、還
元剤の存在下又は不存在下で、ゲル濾過によって精製し
て、5O3−PAGE (ナトリウムドデシルベンゼン
スルホネート−ポリアクリルアミドゲル電気泳動)によ
って評価した。非還元条件下では、Flab’)2調製
物は実質的に純粋であり構造的に未変性であることが分
かった。しかしながら、重質フラグメント及び軽質鎖の
両方を生成する還元剤の存在下においては、調製物は小
さなフラグメント(25,oOoダルトン未満)に分解
された。しかしながら、還元条件下での5O3−PAG
E分析に先立って、Ffab’)a調製物をインドアセ
トアミドで処理すると、この分解の発生が防止された。
したがって、パパインがSDSの存在下における還元条
件下で活性であり、その活性をインドアセトアミドによ
って完全に抑止しうることが公知であるので(Parh
amらの上記文献参照)、かかるデータによってFfa
b’l*調製物がパパインを不純物として含んでいるこ
とが示唆される。
件下で活性であり、その活性をインドアセトアミドによ
って完全に抑止しうることが公知であるので(Parh
amらの上記文献参照)、かかるデータによってFfa
b’l*調製物がパパインを不純物として含んでいるこ
とが示唆される。
また、未変性IgG抗体、及び、ゲル濾過によって精製
されたパパイン誘導F (ab’)、抗体フラグメント
調製物を含む混合物を、還元条件下で5DS−PAGE
によって分析すると、インドアセトアミドの非存在下で
は高度の試料分解が観察されるのに対して、インドアセ
トアミドの存在下においては蛋白消化は見られなかった
。したがって、かかるデータによって、更に、還元によ
って活性化し、アルキル化によって不活性化し、SO3
の存在下で活性を保持する、パパイン及びシスティンプ
ロテアーゼをF(ab’l=調製物が不純物として含有
するという仮説が支持される。
されたパパイン誘導F (ab’)、抗体フラグメント
調製物を含む混合物を、還元条件下で5DS−PAGE
によって分析すると、インドアセトアミドの非存在下で
は高度の試料分解が観察されるのに対して、インドアセ
トアミドの存在下においては蛋白消化は見られなかった
。したがって、かかるデータによって、更に、還元によ
って活性化し、アルキル化によって不活性化し、SO3
の存在下で活性を保持する、パパイン及びシスティンプ
ロテアーゼをF(ab’l=調製物が不純物として含有
するという仮説が支持される。
したがって、以上の点から、パパイン不純物は、抗体フ
ラグメント中に混入している微量のパパインの存在によ
ると思われる。かかる混入は、パパインによる全IgG
抗体の蛋白消化及び/又は、引き続く、共有結合による
消化生成物の精製中に、パパイン及びF (ab’lz
分子におけるスルフヒドリル基の間でジスルフィド交換
が起こり、例えば、1以上のFab’−3−5−パパイ
ン及び同様のパパイン会合消化生成物が得られることの
結果である可能性が最も高い。
ラグメント中に混入している微量のパパインの存在によ
ると思われる。かかる混入は、パパインによる全IgG
抗体の蛋白消化及び/又は、引き続く、共有結合による
消化生成物の精製中に、パパイン及びF (ab’lz
分子におけるスルフヒドリル基の間でジスルフィド交換
が起こり、例えば、1以上のFab’−3−5−パパイ
ン及び同様のパパイン会合消化生成物が得られることの
結果である可能性が最も高い。
ジスルフィド交換によるFab’抗体フラグメント中へ
のパパインのかかる導入は、分子結合性の有害効果及び
還元後のかかる抗体フラグメントの結合活性を有しうる
ものであり、ゲル清適又はイオン交換クロマトグラフィ
ーのような当該技術において公知の方法によっては除去
できない。特に、感知されるパパイン会合消化生成物が
、還元剤の不存在下におけるゲル?濾過及び親和クロマ
トグラフィーによってF(ab’1.と共に精製され、
カチオン交換クロマトグラフィーを用いてF(ab’l
*からパパイン会合消化生成物を分離することが試みら
れた。パパイン(pI 9.6)がカチオン交換物質に
よって保持されることを示すことは可能であったが、F
(ab’1.からパパイン−Fab’複合体を分離する
ことには成功しなかった。一方、還元剤の存在下で上記
記載のように精製すると、パパインを含まないFab調
製物が得られた。しかしながら、還元剤の存在下におけ
るパパイン消化によって、Fab抗体フラグメント、即
ちスルフヒドリル基を有さないものが得られることが分
かっているので、かかる抗体フラグメントは、例えば酵
素によって抗体フラグメン、トを標識化するためのヒン
ジ領域における遊離スルフヒドリル基を必要とする、当
該技術において公知な方法によるイムノアッセイ試薬合
成の目的には望ましくないものである。
のパパインのかかる導入は、分子結合性の有害効果及び
還元後のかかる抗体フラグメントの結合活性を有しうる
ものであり、ゲル清適又はイオン交換クロマトグラフィ
ーのような当該技術において公知の方法によっては除去
できない。特に、感知されるパパイン会合消化生成物が
、還元剤の不存在下におけるゲル?濾過及び親和クロマ
トグラフィーによってF(ab’1.と共に精製され、
カチオン交換クロマトグラフィーを用いてF(ab’l
*からパパイン会合消化生成物を分離することが試みら
れた。パパイン(pI 9.6)がカチオン交換物質に
よって保持されることを示すことは可能であったが、F
(ab’1.からパパイン−Fab’複合体を分離する
ことには成功しなかった。一方、還元剤の存在下で上記
記載のように精製すると、パパインを含まないFab調
製物が得られた。しかしながら、還元剤の存在下におけ
るパパイン消化によって、Fab抗体フラグメント、即
ちスルフヒドリル基を有さないものが得られることが分
かっているので、かかる抗体フラグメントは、例えば酵
素によって抗体フラグメン、トを標識化するためのヒン
ジ領域における遊離スルフヒドリル基を必要とする、当
該技術において公知な方法によるイムノアッセイ試薬合
成の目的には望ましくないものである。
本発明によって得られる溶液によって、パパインに対し
て結合するための抗体を用いてパパイン会合消化生成物
を調製物から分離してパパイン消化全1gG抗体から誘
導される、パパインを含まない抗体フラグメントを得る
方法が提供される。
て結合するための抗体を用いてパパイン会合消化生成物
を調製物から分離してパパイン消化全1gG抗体から誘
導される、パパインを含まない抗体フラグメントを得る
方法が提供される。
特に、全IgG抗体をまずパパインで処理し、好ましく
は還元剤で活性化して、F(ab’12抗体フラグメン
ト、Fc(重質鎖)抗体フラグメント、バルク(bul
klパパイン及び全てのパパインを会合した消化生成物
を含む、その消化抗体調製物を生成する。バルクパパイ
ンを消化抗体調製物から除去し、全てのパパイン会合消
化生成物のパパイン成分に結合させるために混合物に加
えられる、パパインに対する抗体によって調製物を処理
する0次に、F(ab’)2抗体フラグメントを、好ま
しくは、固定化形態の、パパインに対する抗体及びFc
抗体フラグメントに特異な結合物質によって、Fc抗体
フラグメント及び抗体結合パパイン会合消化生成物から
分離して、パパイン会合消化生成不純物を含まないF(
ab’)2抗体フラグメント調−物を得る。
は還元剤で活性化して、F(ab’12抗体フラグメン
ト、Fc(重質鎖)抗体フラグメント、バルク(bul
klパパイン及び全てのパパインを会合した消化生成物
を含む、その消化抗体調製物を生成する。バルクパパイ
ンを消化抗体調製物から除去し、全てのパパイン会合消
化生成物のパパイン成分に結合させるために混合物に加
えられる、パパインに対する抗体によって調製物を処理
する0次に、F(ab’)2抗体フラグメントを、好ま
しくは、固定化形態の、パパインに対する抗体及びFc
抗体フラグメントに特異な結合物質によって、Fc抗体
フラグメント及び抗体結合パパイン会合消化生成物から
分離して、パパイン会合消化生成不純物を含まないF(
ab’)2抗体フラグメント調−物を得る。
したがって、本発明方法は、パパインを含んでいると、
上記記載のようにペプシン消化に感受性を有するように
なってしまう、パパイン消化全IgG抗体から誘導され
るパパインを含まないF (ab’)i抗体フラグメン
ト調製物を得るために特に有用である。特に、本発明に
よる、パパインに対する抗体を用いることによって、存
在していると、それから誘導されるFab’抗体フラグ
メントの分子結合性を分解してしまうパパイン会合消化
生成物が、全て、F(ab’l*抗体フラグメント調製
物から除去される。更に、強還元条件下、又は、ナトリ
ウムドデシルベンゼンスルホネートのような変性剤の存
在下における還元条件下においてかかるパパイン会合消
化生成物が存在しても、得られる抗体フラグメントの結
合活性が減少する。更に、本発明による抗パパイン処理
F(ab’)*抗体調製物から得られるFab’抗体フ
ラグメントは、ヒンジ領域に遊離スルフヒドリル基を有
し、したがって、以下に更に詳細に説明するように、イ
ムノアッセイ試薬合成において用いるのに極めて望まし
いものである。かかる、パパインを含まないF(ab’
)、抗体フラグメント調製物は、また、その中に含まれ
るF(ab’la抗体フラグメントの優れた長期安定性
を示す。
上記記載のようにペプシン消化に感受性を有するように
なってしまう、パパイン消化全IgG抗体から誘導され
るパパインを含まないF (ab’)i抗体フラグメン
ト調製物を得るために特に有用である。特に、本発明に
よる、パパインに対する抗体を用いることによって、存
在していると、それから誘導されるFab’抗体フラグ
メントの分子結合性を分解してしまうパパイン会合消化
生成物が、全て、F(ab’l*抗体フラグメント調製
物から除去される。更に、強還元条件下、又は、ナトリ
ウムドデシルベンゼンスルホネートのような変性剤の存
在下における還元条件下においてかかるパパイン会合消
化生成物が存在しても、得られる抗体フラグメントの結
合活性が減少する。更に、本発明による抗パパイン処理
F(ab’)*抗体調製物から得られるFab’抗体フ
ラグメントは、ヒンジ領域に遊離スルフヒドリル基を有
し、したがって、以下に更に詳細に説明するように、イ
ムノアッセイ試薬合成において用いるのに極めて望まし
いものである。かかる、パパインを含まないF(ab’
)、抗体フラグメント調製物は、また、その中に含まれ
るF(ab’la抗体フラグメントの優れた長期安定性
を示す。
ましい の看日
本発明において用いるための全IgG抗体のための免疫
グロブリン源は、通常の抗血清及びモノクローナル法の
ようないかなる利用しつる方法によって得ることもでき
る0例λば、適当な免疫源によるマウス、ウサギ、モル
モット又はヤギのような動物の免疫をはじめとする良く
確立された技術によって抗血清を得ることができる。ま
た、免疫グロブリンは、適当な免疫源を用いることを含
む、体細胞のハイブリダイゼーション技術によって、通
常、モノクローナル抗体と称されるものを生成すること
によって得ることができる。
グロブリン源は、通常の抗血清及びモノクローナル法の
ようないかなる利用しつる方法によって得ることもでき
る0例λば、適当な免疫源によるマウス、ウサギ、モル
モット又はヤギのような動物の免疫をはじめとする良く
確立された技術によって抗血清を得ることができる。ま
た、免疫グロブリンは、適当な免疫源を用いることを含
む、体細胞のハイブリダイゼーション技術によって、通
常、モノクローナル抗体と称されるものを生成すること
によって得ることができる。
通常、全IgG抗体を還元剤の存在下でパパインによっ
て消化すると、消化生成物、即ち、Ffab’lt抗体
フラグメントも、Fab’ (スルフヒドリル基)及
び/又はFab(スルフヒドリル基なし)抗体フラグメ
ントに還元される。還元消化生成物の一部又は全部がF
ab抗体フラグメントを含むか否かは、消化された全I
gG抗体の種類によると理解すべきである。しかしなが
ら、どちらの場合においても、スルフヒドリル基の存在
が例えば酵素及び同様の標識体がそれに結合するために
必要である場合には、Fab抗体フラグメントが存在す
ることは望ましくない。
て消化すると、消化生成物、即ち、Ffab’lt抗体
フラグメントも、Fab’ (スルフヒドリル基)及
び/又はFab(スルフヒドリル基なし)抗体フラグメ
ントに還元される。還元消化生成物の一部又は全部がF
ab抗体フラグメントを含むか否かは、消化された全I
gG抗体の種類によると理解すべきである。しかしなが
ら、どちらの場合においても、スルフヒドリル基の存在
が例えば酵素及び同様の標識体がそれに結合するために
必要である場合には、Fab抗体フラグメントが存在す
ることは望ましくない。
かかる結合反応に必要なスルフヒドリル基を有するFa
b’抗体フラグメントを得るために、パパインを還元剤
で予め活性化した後に、過剰の還元剤から予め活性化し
たパパインを分離することができる( Parhamら
の上記文献参照)、シたがって、かかる方法によって未
変性F(ab’l=及びFc抗体フラグメントが得られ
、これを次に、蛋白A特異結合親和カラムを用いるよう
な当該技術において公知の方法によって分離することが
できる。上記記載の方法によってバルクパパインは全て
除去されるが、Fab’−5−5−パパイン、Fc−3
−5−パパイン及び同様のパパイン会合消化生成物の形
態で存在するパパインは、F(ab’)2抗体フラグメ
ントをそのFab’及びFc抗体フラグメントに還元す
るために用いられる還元剤によって再活性化される。し
たがって、かかる還元条件下においてかかるパパイン会
合消化生酸物が存在すると、所望のFab’抗体フラグ
メントが更に分解し、かつ、かかる再活性化パパインに
よってその活性が結果として低下する可能性がある。
b’抗体フラグメントを得るために、パパインを還元剤
で予め活性化した後に、過剰の還元剤から予め活性化し
たパパインを分離することができる( Parhamら
の上記文献参照)、シたがって、かかる方法によって未
変性F(ab’l=及びFc抗体フラグメントが得られ
、これを次に、蛋白A特異結合親和カラムを用いるよう
な当該技術において公知の方法によって分離することが
できる。上記記載の方法によってバルクパパインは全て
除去されるが、Fab’−5−5−パパイン、Fc−3
−5−パパイン及び同様のパパイン会合消化生成物の形
態で存在するパパインは、F(ab’)2抗体フラグメ
ントをそのFab’及びFc抗体フラグメントに還元す
るために用いられる還元剤によって再活性化される。し
たがって、かかる還元条件下においてかかるパパイン会
合消化生酸物が存在すると、所望のFab’抗体フラグ
メントが更に分解し、かつ、かかる再活性化パパインに
よってその活性が結果として低下する可能性がある。
本発明によれば、全てのパパイン会合消化生成物と結合
し、F(ab’lt抗体フラグメントをFab’抗体フ
ラグメントに還元する前にそれを除去することが可能と
なる、パパインに対する抗体を用いることによって、パ
パイン会合消化生成物が存在し、その結果上記記載のよ
うな問題点が生じることが防止される。パパインに対す
る抗体は、パパインによる動物の免疫をはじめとする良
(確立された方法によって得ることもでき、また、市販
されている。
し、F(ab’lt抗体フラグメントをFab’抗体フ
ラグメントに還元する前にそれを除去することが可能と
なる、パパインに対する抗体を用いることによって、パ
パイン会合消化生成物が存在し、その結果上記記載のよ
うな問題点が生じることが防止される。パパインに対す
る抗体は、パパインによる動物の免疫をはじめとする良
(確立された方法によって得ることもでき、また、市販
されている。
特に、本発明方法によれば、パパインを、好ましくは、
システィン、β−メルカプトエタノール、ジチオトレイ
トール、メルカプトエチルアミン及び同様の還元剤、好
ましくはシスティンのような還元剤によって活性化し、
次に、ゲルを濾過、又は、イオン交換クロマトグラフィ
ー、親和クロマトグラフィー、透析などのような当該技
術において公知の方法によりて精製し、活性化パパイン
を過剰の還元剤から分離する[ParhamらのJ、
Immunol、 Methods、 vat、 53
゜p、 133 (19821参照]、所望の全IgG
抗体を活性化パパインによって消化し、上記記載のよう
な消化抗体調製物を生成する0本発明によれば、消化抗
体調製物をパパインに対する抗体で処理する前に、消化
抗体調製物からバルクパパインを除去することも、又は
、消化抗体調製物を、バルクパパインの存在下において
、パパインに対する抗体で処理することもできると理解
すべきである。後者の場合においては、パパインに対す
る抗体を、全てのバルクパパイン及び全てのパパイン会
合消化生成物と結合させるのに十分な量、消化抗体調製
物に加える。
システィン、β−メルカプトエタノール、ジチオトレイ
トール、メルカプトエチルアミン及び同様の還元剤、好
ましくはシスティンのような還元剤によって活性化し、
次に、ゲルを濾過、又は、イオン交換クロマトグラフィ
ー、親和クロマトグラフィー、透析などのような当該技
術において公知の方法によりて精製し、活性化パパイン
を過剰の還元剤から分離する[ParhamらのJ、
Immunol、 Methods、 vat、 53
゜p、 133 (19821参照]、所望の全IgG
抗体を活性化パパインによって消化し、上記記載のよう
な消化抗体調製物を生成する0本発明によれば、消化抗
体調製物をパパインに対する抗体で処理する前に、消化
抗体調製物からバルクパパインを除去することも、又は
、消化抗体調製物を、バルクパパインの存在下において
、パパインに対する抗体で処理することもできると理解
すべきである。後者の場合においては、パパインに対す
る抗体を、全てのバルクパパイン及び全てのパパイン会
合消化生成物と結合させるのに十分な量、消化抗体調製
物に加える。
したがって、抗体は、バルクパパイン及び全てのパパイ
ン会合消化生成物と結合し、その抗体結合種を生成する
。
ン会合消化生成物と結合し、その抗体結合種を生成する
。
好ましくは、バルクパパインを、ゲル濾過、又は、イオ
ン交換クロマトグラフィー、親和クロマトグラフィーな
どのような当該技術において公知な他の方法を用いて調
製物から除去する0次に、生成された消化抗体調製物を
、パパインに対する抗体で処理することにより、抗体を
パパイン会合消化生成物のパパイン成分と結合させ、そ
の抗体結合種を生成せしめる。どちらの場合においても
、次に、所望のF(ab’l*抗体フラグメントを、F
c抗体フラグメント及び不純物である抗体結合種から除
去し、パパインを含まないF(ab’)2抗体フラグメ
ント調製物を生成する。特に、Fc抗体フラグメント及
び不純物である抗体結合種は、当該技術において公知の
方法によって消化抗体生成物から除去することができる
0例えば、Fc抗体フラグメント及び抗体結合種と結合
しつる固定化結合物質をかかる目的に用いることができ
る。また、イオン交換クロマトグラフィーをかかる目的
に用いることができる。好ましくは、Fc抗体フラグメ
ント及び抗体結合種は、Fc抗体フラグメント及び抗体
結合種のパパインに対する抗体のFc部分に結合しつる
、固定化形態の蛋白Aを用いて分離される9例えば、抗
体処理混合物を、当該技術において公知の方法によって
得られる固定化形態の蛋白Aを含む結合親和カラムを通
して溶出させることによって、Fcフラグメント及び抗
体結合種を蛋白Aに結合させ、それにより、蛋白Aによ
って固定化し、F(ab’)2抗体フラグメントをそれ
から補集することができる。
ン交換クロマトグラフィー、親和クロマトグラフィーな
どのような当該技術において公知な他の方法を用いて調
製物から除去する0次に、生成された消化抗体調製物を
、パパインに対する抗体で処理することにより、抗体を
パパイン会合消化生成物のパパイン成分と結合させ、そ
の抗体結合種を生成せしめる。どちらの場合においても
、次に、所望のF(ab’l*抗体フラグメントを、F
c抗体フラグメント及び不純物である抗体結合種から除
去し、パパインを含まないF(ab’)2抗体フラグメ
ント調製物を生成する。特に、Fc抗体フラグメント及
び不純物である抗体結合種は、当該技術において公知の
方法によって消化抗体生成物から除去することができる
0例えば、Fc抗体フラグメント及び抗体結合種と結合
しつる固定化結合物質をかかる目的に用いることができ
る。また、イオン交換クロマトグラフィーをかかる目的
に用いることができる。好ましくは、Fc抗体フラグメ
ント及び抗体結合種は、Fc抗体フラグメント及び抗体
結合種のパパインに対する抗体のFc部分に結合しつる
、固定化形態の蛋白Aを用いて分離される9例えば、抗
体処理混合物を、当該技術において公知の方法によって
得られる固定化形態の蛋白Aを含む結合親和カラムを通
して溶出させることによって、Fcフラグメント及び抗
体結合種を蛋白Aに結合させ、それにより、蛋白Aによ
って固定化し、F(ab’)2抗体フラグメントをそれ
から補集することができる。
本発明によって得られるF(ab’)z抗体フラグメン
トは、特に、イムノアッセイにおけるl1m試薬の使用
に関する当該技術において公知な方法によって、酵素、
蛍光体、燐光物質、化学的発光物質、生物学的発光物質
及び同様の分子;金及び銀ゾル;ラテックス粒子:並び
に同様の標識体のような種々のm量体をそれに結合させ
るのに有用である。好ましくは、F(ab’lz抗体フ
ラグメントを、当該技術において公知の方法によって、
例えば、システィン、ジチオトレイトール、β−メルカ
プトエタノール、メルカプトエチルアミン及び同様の還
元剤、好ましくはメルカプトエチルアミンによって還元
し、最大結合活性、及び、かかる用途のためのヒンジ領
域における遊離スルフヒドリル基を有するFab’抗体
フラグメントを得る。
トは、特に、イムノアッセイにおけるl1m試薬の使用
に関する当該技術において公知な方法によって、酵素、
蛍光体、燐光物質、化学的発光物質、生物学的発光物質
及び同様の分子;金及び銀ゾル;ラテックス粒子:並び
に同様の標識体のような種々のm量体をそれに結合させ
るのに有用である。好ましくは、F(ab’lz抗体フ
ラグメントを、当該技術において公知の方法によって、
例えば、システィン、ジチオトレイトール、β−メルカ
プトエタノール、メルカプトエチルアミン及び同様の還
元剤、好ましくはメルカプトエチルアミンによって還元
し、最大結合活性、及び、かかる用途のためのヒンジ領
域における遊離スルフヒドリル基を有するFab’抗体
フラグメントを得る。
特に、かかるF(ab’)、又はFab’抗体フラグメ
ントを、0−フェニレンジマレイミド、ビス(マレイミ
ド)メチルエステル及び同様の架橋剤のような架橋剤に
よって処理して、Fab’ −又はFfab’)i−マ
レイミド活性化抗体フラグメントを得ることができる0
次に、マレイミド活性化抗体フラグメントを、当該技術
において公知の方法によって、選択された酵素と反応さ
せ、その所望の酵素標識Fab’又はF (ab’)、
複合体を生成することができる。また、所望の酵素成分
がβ−D−ガラクトシダーゼであり、所望の抗体成分が
Fab“である場合には、まず、β−D−ガラクトシダ
ーゼの表面に曝露している(surface−expo
sed)スルフヒドリル基をインドアセトアミドのよう
なアルキル化剤でブロックし1次に、アルキル化−β−
D−ガラクトシダーゼと、スクシンイミジル−4−(N
−マレイミドメチルシクロヘキサン−1−カルボキシル
−1−(SMCC)と反応させて、反応性マレイミド基
を酵素中に導入せしめることによって結合を行なうこと
ができる。
ントを、0−フェニレンジマレイミド、ビス(マレイミ
ド)メチルエステル及び同様の架橋剤のような架橋剤に
よって処理して、Fab’ −又はFfab’)i−マ
レイミド活性化抗体フラグメントを得ることができる0
次に、マレイミド活性化抗体フラグメントを、当該技術
において公知の方法によって、選択された酵素と反応さ
せ、その所望の酵素標識Fab’又はF (ab’)、
複合体を生成することができる。また、所望の酵素成分
がβ−D−ガラクトシダーゼであり、所望の抗体成分が
Fab“である場合には、まず、β−D−ガラクトシダ
ーゼの表面に曝露している(surface−expo
sed)スルフヒドリル基をインドアセトアミドのよう
なアルキル化剤でブロックし1次に、アルキル化−β−
D−ガラクトシダーゼと、スクシンイミジル−4−(N
−マレイミドメチルシクロヘキサン−1−カルボキシル
−1−(SMCC)と反応させて、反応性マレイミド基
を酵素中に導入せしめることによって結合を行なうこと
ができる。
したがって、マレイミド活性化−〇−D−ガラクトシダ
ーゼをFab’抗体フラグメントと反応させると、Fa
b’フラグメントのスルフヒドリル基がβ−D−ガラク
トシダーゼと反応してその間に共有結合を形成し、酵素
−抗体複合体並びに未反応の酵素及び抗体成分を含む複
合反応混合物が得られる1次に、当該技術において公知
の方法によって、好ましくは、通常に壌渡されている1
986年12月9日出願の米国特許出願第939.64
0号において記載されている方法により、複合反応混合
物をポリアクリルアミドゲル電気泳動によって精製する
ことによって複合反応混合物を精製することができる。
ーゼをFab’抗体フラグメントと反応させると、Fa
b’フラグメントのスルフヒドリル基がβ−D−ガラク
トシダーゼと反応してその間に共有結合を形成し、酵素
−抗体複合体並びに未反応の酵素及び抗体成分を含む複
合反応混合物が得られる1次に、当該技術において公知
の方法によって、好ましくは、通常に壌渡されている1
986年12月9日出願の米国特許出願第939.64
0号において記載されている方法により、複合反応混合
物をポリアクリルアミドゲル電気泳動によって精製する
ことによって複合反応混合物を精製することができる。
かかる標識化試薬を、液体試験試料中に存在する分析対
象物の量を測定するためのイムノアッセイにおいて用い
ることができる0通常、かかるイムノアッセイには、分
析対象物と標識化試薬との間の特異結合性相互作用が包
含され、二種類の形態、即ち、結合種及び遊離種の標識
試薬を含む特異結合反応系が生成される。遊離種として
得られる標識化試薬に対する、結合種として得られる標
識化試薬の相対量又は割合は、試験試料中の検出すべき
分析対象物の存在又は量の関数である。
象物の量を測定するためのイムノアッセイにおいて用い
ることができる0通常、かかるイムノアッセイには、分
析対象物と標識化試薬との間の特異結合性相互作用が包
含され、二種類の形態、即ち、結合種及び遊離種の標識
試薬を含む特異結合反応系が生成される。遊離種として
得られる標識化試薬に対する、結合種として得られる標
識化試薬の相対量又は割合は、試験試料中の検出すべき
分析対象物の存在又は量の関数である。
特に、本発明を以下の実施例によって説明するが、これ
らは例示のためのものであり、制限するためのものでは
ない。
らは例示のためのものであり、制限するためのものでは
ない。
次のようにして、全抗体を予め活性化されたパパインで
消化し、その二価抗体フラグメントを得、これをメルカ
プトエチルアミンで還元して所望の単価抗体フラグメン
ト(Fab’)を得ることによって、抗チロキシンモノ
クローナルIgG抗体の単価抗体フラグメント(Fab
’)を調製した− a ニ フラグ ント Fab′2 の暑 F(
ab’lzを、B10−Rad MAPS■蛋白Aカラ
ム(Bio−Rad Laboratories、 R
ichmond、 GA、 USAI上で、腹水液(M
eloy Laboratories、 Inc、、
Spring−field、 VA、 USA、 T
4に対するモノクローナル抗体、 156/7)から単
離した抗チロキシンIgGモノクローナル抗体から調製
し、腹水液1−あたり14.5mgのIgGを得た。パ
パイン(S i gmaChemical Co、、
St、 Louis、 MO,、USA 、タイプ■、
ParhamらのJ、 Immunol、 Meth
ods、 vol、 53゜p、 133 (198
2)に記載された方法によって、0.05M酢酸ナトリ
ウム懸濁液、pH4,5中でパパヤラテックスから2回
晶出させ、システィンでインキュベートし、次にゲル清
適することによって予め活性化して活性酵素を得た)0
.1M酢酸ナトリウム、3.0mM EDTA (
エチレンジアミン四酢酸)、0.62mg/−において
pH5,5(1,02d)中の生成IgG(5,8mt
l、1 、 09 mg/d)に、IgGに対するパパ
インの重量比1:10で加えた。消化を537°Cで4
0分間インキュベートし、生成物を、PBS (リン酸
塩緩衝食塩)/NaN、緩衝剤中、1.0X80.0c
mゲル濾過カラム(AcA44Ultroge1. L
KB、 Swedenl上でりCマドグラフィーにかけ
て、所望のF(ab’la及びFc抗体フラグメント並
びに不純物であるパパイン会合消化生成物を含む第1の
ピーク、及びバルクパパインを含む第2のピークを得た
。
消化し、その二価抗体フラグメントを得、これをメルカ
プトエチルアミンで還元して所望の単価抗体フラグメン
ト(Fab’)を得ることによって、抗チロキシンモノ
クローナルIgG抗体の単価抗体フラグメント(Fab
’)を調製した− a ニ フラグ ント Fab′2 の暑 F(
ab’lzを、B10−Rad MAPS■蛋白Aカラ
ム(Bio−Rad Laboratories、 R
ichmond、 GA、 USAI上で、腹水液(M
eloy Laboratories、 Inc、、
Spring−field、 VA、 USA、 T
4に対するモノクローナル抗体、 156/7)から単
離した抗チロキシンIgGモノクローナル抗体から調製
し、腹水液1−あたり14.5mgのIgGを得た。パ
パイン(S i gmaChemical Co、、
St、 Louis、 MO,、USA 、タイプ■、
ParhamらのJ、 Immunol、 Meth
ods、 vol、 53゜p、 133 (198
2)に記載された方法によって、0.05M酢酸ナトリ
ウム懸濁液、pH4,5中でパパヤラテックスから2回
晶出させ、システィンでインキュベートし、次にゲル清
適することによって予め活性化して活性酵素を得た)0
.1M酢酸ナトリウム、3.0mM EDTA (
エチレンジアミン四酢酸)、0.62mg/−において
pH5,5(1,02d)中の生成IgG(5,8mt
l、1 、 09 mg/d)に、IgGに対するパパ
インの重量比1:10で加えた。消化を537°Cで4
0分間インキュベートし、生成物を、PBS (リン酸
塩緩衝食塩)/NaN、緩衝剤中、1.0X80.0c
mゲル濾過カラム(AcA44Ultroge1. L
KB、 Swedenl上でりCマドグラフィーにかけ
て、所望のF(ab’la及びFc抗体フラグメント並
びに不純物であるパパイン会合消化生成物を含む第1の
ピーク、及びバルクパパインを含む第2のピークを得た
。
b パパインAA:゛′ の7、パパイン不純物
を、錯体形成させ、所望の抗体フラグメント: F (
ab’1.から連続的に単離するために、本実施例の工
程(atの第1のフラクションを、ポリクローナル抗パ
パインI g G (Cappel。
を、錯体形成させ、所望の抗体フラグメント: F (
ab’1.から連続的に単離するために、本実施例の工
程(atの第1のフラクションを、ポリクローナル抗パ
パインI g G (Cappel。
Division of Copper Diagno
stics、 Cochran−ville、 PA、
USA、 Lot No、 23655. Cat、
No。
stics、 Cochran−ville、 PA、
USA、 Lot No、 23655. Cat、
No。
0100−12021で処理した。第1のゲル濾過フラ
クション(4,0yd、2 、52 mg/m)に、P
BS中、抗パパインIgG (1,08+al’、1.
85mg/d)を加え、4℃で一晩インキユベートした
。次に、溶液をBio−Rad■蛋白Aカラム上でクロ
マトグラフィーにかけ、消化物からの元のFcフラグメ
ント及びパパイン会合消化生成物とコンプレックス形成
している抗パパインIgGの両方を保持した。生成され
たF(ab’)aを、適用緩衝剤中のカラムを通過させ
た。5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動分析によ
って、この方法で生成されたF (ab’)xが、パパ
イン不純物を含まず、高純度のものであることが示され
た。’1.48(cm−mg/Mll−’の吸光係数及
び92.000ダルトンの分子量を用いて、280nm
における吸光度からF(ab’)gの濃度を測定すると
0.44mg/J(8,611dl、3.77B)であ
った。Ffab’lzをP B S / N a N
*緩衝剤中において、4℃で保存した。
クション(4,0yd、2 、52 mg/m)に、P
BS中、抗パパインIgG (1,08+al’、1.
85mg/d)を加え、4℃で一晩インキユベートした
。次に、溶液をBio−Rad■蛋白Aカラム上でクロ
マトグラフィーにかけ、消化物からの元のFcフラグメ
ント及びパパイン会合消化生成物とコンプレックス形成
している抗パパインIgGの両方を保持した。生成され
たF(ab’)aを、適用緩衝剤中のカラムを通過させ
た。5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動分析によ
って、この方法で生成されたF (ab’)xが、パパ
イン不純物を含まず、高純度のものであることが示され
た。’1.48(cm−mg/Mll−’の吸光係数及
び92.000ダルトンの分子量を用いて、280nm
における吸光度からF(ab’)gの濃度を測定すると
0.44mg/J(8,611dl、3.77B)であ
った。Ffab’lzをP B S / N a N
*緩衝剤中において、4℃で保存した。
c Fab°2のFab’への還−
本実施例の工程(blによって得られたF(ab’)z
溶液(8,2mt’、0.44mg/J)を、0.1M
リン酸ナトリウム、5.0mM EDTA緩衝剤(p
H6,0)中に入れ、0.67mg/d(5,1d)の
濃度にした0次に、メルカプトエチルアミンを10mM
の濃度になるまで加え、37℃で60分間インキュベー
トした。撹拌されている限外濾過セル(Amion C
orp、、 Danvers。
溶液(8,2mt’、0.44mg/J)を、0.1M
リン酸ナトリウム、5.0mM EDTA緩衝剤(p
H6,0)中に入れ、0.67mg/d(5,1d)の
濃度にした0次に、メルカプトエチルアミンを10mM
の濃度になるまで加え、37℃で60分間インキュベー
トした。撹拌されている限外濾過セル(Amion C
orp、、 Danvers。
MA、 USAI中において、5.0mM E D
T Aを用いてPBSに対して透析した。1.4
8(cm−mg/ dl−’の吸光係数及び46,00
0ダルトンの分子量を用いて、280nmにおける吸光
度からFab’の濃度を測定した(0.63mg/NJ
l、5、 .3nAl) 、 Fab’のスルフヒドリ
ル含有量を4.4°−ジチオピリジンを用いて測定する
と[GrassettiらのArch、 Bioche
m、 Biophys、。
T Aを用いてPBSに対して透析した。1.4
8(cm−mg/ dl−’の吸光係数及び46,00
0ダルトンの分子量を用いて、280nmにおける吸光
度からFab’の濃度を測定した(0.63mg/NJ
l、5、 .3nAl) 、 Fab’のスルフヒドリ
ル含有量を4.4°−ジチオピリジンを用いて測定する
と[GrassettiらのArch、 Bioche
m、 Biophys、。
vol、 119. p、 41 (1967) ]
、 Fab’あたり3個のスルフヒドリル基があること
が測定された。
、 Fab’あたり3個のスルフヒドリル基があること
が測定された。
E、 coli−β−D−ガラクトシダーゼを、濃度1
4mg/−の、0.02%N a N sを有する(N
H,)2 So、懸濁液として保存した。このβ−D−
ガラクトシダーゼ懸濁液(1,8M1)を遠心分離して
ペレットを形成し、これを、PBS中に溶解して、11
.8mg/−又は54ナノモル(2、43(cm−mg
/ dl−’の吸光係数及び465,000ダルトンの
分子量を用いて280nmにおける吸光度から測定した
)を有する2、 1yd (25mg) (酵素活
性100%)の容量にした。暗所において、20モル倍
過剰のインドアセトアミドと、室温で30分間反応させ
ることによってβ−D−ガラクトシダーゼにおける全て
のスルフヒドリル基(通常はスルフヒドリル基3個以下
である)をアルキル化した0反応混合物を、PBS緩衝
液中、1.0x40.0cm脱塩カラム(BioGel
■P−6DG、 Bio−Rad Laborator
ies。
4mg/−の、0.02%N a N sを有する(N
H,)2 So、懸濁液として保存した。このβ−D−
ガラクトシダーゼ懸濁液(1,8M1)を遠心分離して
ペレットを形成し、これを、PBS中に溶解して、11
.8mg/−又は54ナノモル(2、43(cm−mg
/ dl−’の吸光係数及び465,000ダルトンの
分子量を用いて280nmにおける吸光度から測定した
)を有する2、 1yd (25mg) (酵素活
性100%)の容量にした。暗所において、20モル倍
過剰のインドアセトアミドと、室温で30分間反応させ
ることによってβ−D−ガラクトシダーゼにおける全て
のスルフヒドリル基(通常はスルフヒドリル基3個以下
である)をアルキル化した0反応混合物を、PBS緩衝
液中、1.0x40.0cm脱塩カラム(BioGel
■P−6DG、 Bio−Rad Laborator
ies。
Richmond、 CA、 USAI上でクロマトグ
ラフィーにかけた。β−D−ガラクトシダーゼのピーク
を、撹拌されている限外濾過セル+AMIC:ON)で
3.1mg/xi’ (7,2M1.22mg、酵素活
性105%)に濃縮し、20モル倍量のスクシンイミジ
ル−4−(N−マレイミド−メチル)シクロヘキサン−
1−カルボキシレート(SMCC,Pierce Ch
emi−cal (:o、、 Rockford、 I
L、 USAI を加え、反応を、穏やかに撹拌しなが
ら室温で1.0時間行なった。SMCC反応混合物を、
3.0mg/yd (酵素活性92%)において7.2
−の容量において、1.0mM EDTAを含むPB
S中、1.0×40.0cm脱塩カラム(BioGel
■P−6DGl上で脱塩した。カラムから溶出した活性
化β−D−ガラクトシダーゼのマレイミド含有量を、活
性化β−D−ガラクトシダーゼの不存在下及び存在下に
おける還元されたグルタチオンのスルフヒドリル含有量
(4,4’ −ジチオピリジンとして測定)の差から計
算すると、β−D−ガラクトシダーゼ1モルあたりマレ
イミド5.4個と測定された。
ラフィーにかけた。β−D−ガラクトシダーゼのピーク
を、撹拌されている限外濾過セル+AMIC:ON)で
3.1mg/xi’ (7,2M1.22mg、酵素活
性105%)に濃縮し、20モル倍量のスクシンイミジ
ル−4−(N−マレイミド−メチル)シクロヘキサン−
1−カルボキシレート(SMCC,Pierce Ch
emi−cal (:o、、 Rockford、 I
L、 USAI を加え、反応を、穏やかに撹拌しなが
ら室温で1.0時間行なった。SMCC反応混合物を、
3.0mg/yd (酵素活性92%)において7.2
−の容量において、1.0mM EDTAを含むPB
S中、1.0×40.0cm脱塩カラム(BioGel
■P−6DGl上で脱塩した。カラムから溶出した活性
化β−D−ガラクトシダーゼのマレイミド含有量を、活
性化β−D−ガラクトシダーゼの不存在下及び存在下に
おける還元されたグルタチオンのスルフヒドリル含有量
(4,4’ −ジチオピリジンとして測定)の差から計
算すると、β−D−ガラクトシダーゼ1モルあたりマレ
イミド5.4個と測定された。
PH33,5mj’中の活性化β−D−ガラクトシダー
ゼ(23,6ナノモル)を、PH10,3−15mM
EDTA中の抗チロキシンFab’ (実施例1と
同様に調製)59.0ナノモルと配合した。反応溶液を
5℃で20時間インキュベートした。得られたFab’
−β−D−ガラクトシダーゼ複合体調製物を、PBS/
NaN。
ゼ(23,6ナノモル)を、PH10,3−15mM
EDTA中の抗チロキシンFab’ (実施例1と
同様に調製)59.0ナノモルと配合した。反応溶液を
5℃で20時間インキュベートした。得られたFab’
−β−D−ガラクトシダーゼ複合体調製物を、PBS/
NaN。
緩衝剤中に移し、4℃で保存した。
Claims (11)
- (1)パパインで消化された全IgG抗体から誘導され
るパパインを含まないF(ab’)_2抗体フラグメン
ト調製物の製造方法であって、 (a)該全IgG抗体をパパインで消化して、F(ab
’)_2抗体フラグメント、Fc抗体フラグメント、パ
パイン会合消化生成物、及びバルク(bulk)パパイ
ンを含む、その消化抗体調製物を製造し; (b)該消化抗体調製物からバルクパパインを除去し、
かつ、これを、パパインに対する抗体で処理して、該抗
体を該パパイン会合消化生成物と結合せしめてその抗体
結合種を生成させ; (c)該F(ab’)_2抗体フラグメントを、該Fc
抗体フラグメント及び該抗体結合種から分離する工程を
含むことを特徴とする方法。 - (2)該バルクパパインをパパインに対する該抗体に結
合させ、その抗体結合種を生成させることによって除去
する請求項1記載の方法。 - (3)該バルクパパインを、該消化抗体調製物をパパイ
ンに対する該抗体によって処理する前に除去する請求項
1記載の方法。 - (4)該バルクパパインをゲルろ過によって除去する請
求項3記載の方法。 - (5)該パパインを、システイン、β−メルカプトエタ
ノール、ジチオトレイトール及びメルカプトエチルアミ
ンからなる群より選択される還元剤によって活性化する
請求項1記載の方法。 - (6)更に、該F(ab’)_2抗体フラグメントをそ
のFab’抗体フラグメントに還元する工程を含む請求
項1記載の方法。 - (7)還元剤が、システイン、ジチオトレイトール、β
−メルカプトエタノール及びメルカプトエチルアミンか
らなる群より選択される請求項6記載の方法。 - (8)工程(b)の該抗体結合種及び該Fc抗体フラグ
メントを、該パパイン抗体及び該Fc抗体フラグメント
に特異な固定化形態の結合物質によって分離することに
よって、該抗体結合種及び該Fcフラグメントをそれに
固定化する請求項1記載の方法。 - (9)パパインに対する該抗体及び該Fc抗体フラグメ
ントに特異な固定化形態の結合物質が蛋白Aである請求
項8記載の方法。 - (10)該全IgG抗体がモノクローナルIgG抗体で
ある請求項1記載の方法。 - (11)請求項1記載の方法によって得られる、パパイ
ンを含まないF(ab’)_2二価抗体フラグメント調
製物。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US097115 | 1987-09-16 | ||
US07/097,115 US4814433A (en) | 1987-09-16 | 1987-09-16 | Method for obtaining a papain-free antibody fragment preparation |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01114758A true JPH01114758A (ja) | 1989-05-08 |
Family
ID=22261199
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63228924A Pending JPH01114758A (ja) | 1987-09-16 | 1988-09-14 | パパインを含まない抗体フラグメント調製物の製造方法 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4814433A (ja) |
EP (1) | EP0307754A3 (ja) |
JP (1) | JPH01114758A (ja) |
AU (1) | AU600386B2 (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN102286609A (zh) * | 2011-06-22 | 2011-12-21 | 北京工商大学 | 一种利用木瓜蛋白酶检测重金属污染的方法 |
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US5081030A (en) * | 1989-04-25 | 1992-01-14 | The Johns Hopkins University | Release of cells from affinity matrices |
US5328834A (en) * | 1989-09-08 | 1994-07-12 | Unisyn Technologies, Inc. | Method for preparing immunoglobulin fragments |
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DE4020204A1 (de) * | 1990-06-25 | 1992-01-02 | Boehringer Mannheim Gmbh | Durchfuehrung eines homogenen immunoassays nach dem agglutinationsprinzip |
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US7060450B1 (en) * | 1993-12-30 | 2006-06-13 | President And Fellows Of Harvard College | Screening assays for agonists and antagonists of the hedgehog signaling pathway |
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US20050069962A1 (en) | 2001-10-12 | 2005-03-31 | Archer Robert M | Antibody complexes and methods for immunolabeling |
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WO2005009464A1 (en) * | 2003-07-25 | 2005-02-03 | Lopez De Silanes Juan | Administration of anti-cytokine f(ab')2 antibody fragments |
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