JPH0476579B2 - - Google Patents
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Description
産業上の利用分野
本発明は、酵素免疫測定に好適な、炭水化物を
含有する標識酵素と免疫作用物質とからの接合体
を製法に関する。 従来の技術 免疫学的検出法は、多くの分析の目的、殊に臨
床学的分析の分野で、その優れた感度及び特異性
に基づき、重要性が増しており、純粋に化学的な
方法を凌駕している。この分析法では、一般に、
免疫学的結合成分の1つを標識し、この際、特に
はじめに、放射線標識(RIA)が、後には酵素標
識(EIA)が重要になつた。酵素標識付けの使用
下における免疫学的検出法の分野では、標識付け
の目的にとつては少数の酵素が特に好適であるこ
とが立証されており、この際立証容易性、高安定
性及び免疫反応へのできるだけ少ない影響が、特
にその優遇に決定的な特性である。既に使用され
ているか又は使用可能な標識酵素
(Markierungsenzym)には、グルコースオキシ
ダーゼ(GOD)(E.C.1.1.3.4)、β−フラクトシダ
ーゼ(インベルターゼ)(E.C.3.2.1.26)、アルカ
リホスフアターゼ(AP)(E.C.3.1.3.1)及びペル
オキシダーゼ(POD)(E.C.1.11.1.7)が属し、こ
れらはすべて、分子内に炭水化物分を含有する。
これらはいわゆる酵素接合体
(Enzymkonjugate)の形で使用される。これは、
標識酵素と免疫学的作用反応成分との結合生成物
であり、ここでは、一般に、標識酵素と免疫学的
結合成分(即ち免疫作用物質)(例えば抗原、ハ
プテン、抗体、抗体の誘導体又はフラグメントで
あつてよい)との間の共有結合が起る。 ところで、このような標識酵素、殊に標識酵素
としてのPODの使用下でのEIA−法により、重
要の1成分を測定する充分に圧倒的に多数の血清
においては、相応するRIA−系で得られる結果と
比較する際に正しい結果が得られることが明らか
である。しかしながら、以後問題血清と称される
一定数の血清では、正しい値からの高すぎる正の
結果の形での明らかな偏りが現われた。 発明が解決しようとする問題点 従つて、本発明の課題は、この欠点を除き、酵
素イムノアツセイ(EIA)用の標識酵素の接合体
(これはいわゆる問題血清においても正しい結果
を生じる)を得ることである。 問題点を解決するための手段 この課題は、本発明により、酵素免疫測定に好
適な、炭化水素分を含有する標識酵素例えばペル
オキシダーゼと免疫作用物質とからの接合体を、
標識酵素の蛋白質分に作用する結合法を用いて製
造する方法により解決され、この方法は、標識酵
素を、免疫作用物質との結合の前又は後に、水性
媒体中の過沃素酸又はそのアルカリ金属塩で酸化
し、次いで、この酸化生成物をNaBH4で還元す
ることよりなる。 意外にも、標識酵素分子の過沃素酸酸化に引続
くNaBH4での還元により、その酵素特性は不変
のまま保持するが、いわゆる問題血清でも、RIA
−法で得られる値と一致する正しい値を生じる標
識酵素誘導体が得られることが判明した。 本発明の方法は、PH−値、好適な緩衝剤の選択
及び緩衝剤濃度に関して、当業者に公知の、酵素
活性を保持するための条件下に実施される。
PODの場合に、酸化工程を約4〜8.5のPH値で緩
衝液中で実施するのが有利である。還元は、約
7.5〜9の間のPH値で有効に作用する。この場合、
反応を、冷却下、殊に10℃より低い温度特に0〜
5℃で実施するのが有利である。しかしながら、
原則的には、PODの公知の比較的良好な温度安
定性を考慮して、約37℃までのより高い温度で操
作することもできる。他の本発明の範囲で好適な
酵素には、PH値及び温度に関してその公知の特性
に相応する条件が通用する。 特に、酵素とハプテンが結合した接合体の場合
に前記の欠点が表われるので、標識酵素とその結
合成分との間の極端な寸法関係(即ち、後者が酵
素分子に比べて非常に小さい)である場合、誤ま
つた結果の危険性が特に存在することが想像され
る。この典型的な例は、チロキシン(T4)及び
トリヨードチロニン(Trijodthyronin)(T3)即
ち結合成分としての低分子量のホルモン作用ハプ
テンである。意外にも、本発明によれば、接合体
中の双方の結合成分の寸法割合は不変のまま残
り、即ち、小さい結合成分に比べて相変らず大き
い酵素分子が立体障害作用を示すにもかかわら
ず、誤つた高すぎる結果を阻止することができ
る。 この酵素の結合は、本発明の方法の範囲で、本
発明による酸化−/還元処理の前又はその後に実
施することができる。接合体の製造後の本発明に
よる酸化−/還元処理の実施は、特に、免疫作用
結合成分(即ち免疫作用物質)自体が蛋白質例え
ばTBG又は抗体又は抗体フラグメントである場
合にも可能である。 本発明による標識酵素−接合体の製造のため
に、それ自体が酸化を維持しないかぎり、慣用の
結合方法が好適である。好適な方法は、例えば、
ジヤーナル・オブ・イムノアツセイ(J.of
Immunoassay)第4(3)巻、209〜327頁(1983
年)に記載されている。二官能性試薬(これはア
ミノ基又はスルフヒドリル基の結合作用をする)
の使用下における結合法が特に好適であることが
立証された。このような二官能性試薬の有利な例
は、N−スクシンイミジル−4−(N−マレイン
イミド−メチル)−シクロヘキサン−1−カルボ
キシレート(ヒンジ法)及びグルタールジアルデ
ヒドである〔Immunochem.8、1175〜1179
(1971)参照〕。カルボジイミドの使用下における
直接縮合(J.Cell.Biol.33、307318(1967))も適
用できる。一般に、標識酵素とリガンド
(Ligand)との結合を得るための二官能性架橋剤
としては、西ドイツ特許(DE−A)第2128743号
及び同第2260185号明細書に記載の化合物並びに
ヒドロキシスクインイミド誘導体が好適である。 免疫学的に活性のリガンド(即ち免疫作用物
質)としては、本発明の範囲で、前記のように、
抗体、そのフラグメント例えば、Fab、Fab2、
Fc−フラグメント、化学的に得られる抗体もし
くはそのフラグメントの誘導体、抗原、及びハプ
テン例えばジゴキシン、ジゴキシゲニン、T3、
T4、エストラジオール、エストリオール、プロ
ゲステロン、フオレート(Folat)、テオフイリ
ン、コルチゾール、フエノバルビタール及び類似
物がこれに該当する。 次の第表は、慣用のT3−POD−接合体(接
合体)、本発明により得られたT3−POD−接合
体(接合体)及び参照法としての放射能標識さ
れたT3(RIA)の使用下におけるT3酵素免疫測定
の結果を示している。 1対照血清を7正常血清(NS)及び4障害血
清(STS:問題血清)と比較した。ヒト血清を
用いた。
含有する標識酵素と免疫作用物質とからの接合体
を製法に関する。 従来の技術 免疫学的検出法は、多くの分析の目的、殊に臨
床学的分析の分野で、その優れた感度及び特異性
に基づき、重要性が増しており、純粋に化学的な
方法を凌駕している。この分析法では、一般に、
免疫学的結合成分の1つを標識し、この際、特に
はじめに、放射線標識(RIA)が、後には酵素標
識(EIA)が重要になつた。酵素標識付けの使用
下における免疫学的検出法の分野では、標識付け
の目的にとつては少数の酵素が特に好適であるこ
とが立証されており、この際立証容易性、高安定
性及び免疫反応へのできるだけ少ない影響が、特
にその優遇に決定的な特性である。既に使用され
ているか又は使用可能な標識酵素
(Markierungsenzym)には、グルコースオキシ
ダーゼ(GOD)(E.C.1.1.3.4)、β−フラクトシダ
ーゼ(インベルターゼ)(E.C.3.2.1.26)、アルカ
リホスフアターゼ(AP)(E.C.3.1.3.1)及びペル
オキシダーゼ(POD)(E.C.1.11.1.7)が属し、こ
れらはすべて、分子内に炭水化物分を含有する。
これらはいわゆる酵素接合体
(Enzymkonjugate)の形で使用される。これは、
標識酵素と免疫学的作用反応成分との結合生成物
であり、ここでは、一般に、標識酵素と免疫学的
結合成分(即ち免疫作用物質)(例えば抗原、ハ
プテン、抗体、抗体の誘導体又はフラグメントで
あつてよい)との間の共有結合が起る。 ところで、このような標識酵素、殊に標識酵素
としてのPODの使用下でのEIA−法により、重
要の1成分を測定する充分に圧倒的に多数の血清
においては、相応するRIA−系で得られる結果と
比較する際に正しい結果が得られることが明らか
である。しかしながら、以後問題血清と称される
一定数の血清では、正しい値からの高すぎる正の
結果の形での明らかな偏りが現われた。 発明が解決しようとする問題点 従つて、本発明の課題は、この欠点を除き、酵
素イムノアツセイ(EIA)用の標識酵素の接合体
(これはいわゆる問題血清においても正しい結果
を生じる)を得ることである。 問題点を解決するための手段 この課題は、本発明により、酵素免疫測定に好
適な、炭化水素分を含有する標識酵素例えばペル
オキシダーゼと免疫作用物質とからの接合体を、
標識酵素の蛋白質分に作用する結合法を用いて製
造する方法により解決され、この方法は、標識酵
素を、免疫作用物質との結合の前又は後に、水性
媒体中の過沃素酸又はそのアルカリ金属塩で酸化
し、次いで、この酸化生成物をNaBH4で還元す
ることよりなる。 意外にも、標識酵素分子の過沃素酸酸化に引続
くNaBH4での還元により、その酵素特性は不変
のまま保持するが、いわゆる問題血清でも、RIA
−法で得られる値と一致する正しい値を生じる標
識酵素誘導体が得られることが判明した。 本発明の方法は、PH−値、好適な緩衝剤の選択
及び緩衝剤濃度に関して、当業者に公知の、酵素
活性を保持するための条件下に実施される。
PODの場合に、酸化工程を約4〜8.5のPH値で緩
衝液中で実施するのが有利である。還元は、約
7.5〜9の間のPH値で有効に作用する。この場合、
反応を、冷却下、殊に10℃より低い温度特に0〜
5℃で実施するのが有利である。しかしながら、
原則的には、PODの公知の比較的良好な温度安
定性を考慮して、約37℃までのより高い温度で操
作することもできる。他の本発明の範囲で好適な
酵素には、PH値及び温度に関してその公知の特性
に相応する条件が通用する。 特に、酵素とハプテンが結合した接合体の場合
に前記の欠点が表われるので、標識酵素とその結
合成分との間の極端な寸法関係(即ち、後者が酵
素分子に比べて非常に小さい)である場合、誤ま
つた結果の危険性が特に存在することが想像され
る。この典型的な例は、チロキシン(T4)及び
トリヨードチロニン(Trijodthyronin)(T3)即
ち結合成分としての低分子量のホルモン作用ハプ
テンである。意外にも、本発明によれば、接合体
中の双方の結合成分の寸法割合は不変のまま残
り、即ち、小さい結合成分に比べて相変らず大き
い酵素分子が立体障害作用を示すにもかかわら
ず、誤つた高すぎる結果を阻止することができ
る。 この酵素の結合は、本発明の方法の範囲で、本
発明による酸化−/還元処理の前又はその後に実
施することができる。接合体の製造後の本発明に
よる酸化−/還元処理の実施は、特に、免疫作用
結合成分(即ち免疫作用物質)自体が蛋白質例え
ばTBG又は抗体又は抗体フラグメントである場
合にも可能である。 本発明による標識酵素−接合体の製造のため
に、それ自体が酸化を維持しないかぎり、慣用の
結合方法が好適である。好適な方法は、例えば、
ジヤーナル・オブ・イムノアツセイ(J.of
Immunoassay)第4(3)巻、209〜327頁(1983
年)に記載されている。二官能性試薬(これはア
ミノ基又はスルフヒドリル基の結合作用をする)
の使用下における結合法が特に好適であることが
立証された。このような二官能性試薬の有利な例
は、N−スクシンイミジル−4−(N−マレイン
イミド−メチル)−シクロヘキサン−1−カルボ
キシレート(ヒンジ法)及びグルタールジアルデ
ヒドである〔Immunochem.8、1175〜1179
(1971)参照〕。カルボジイミドの使用下における
直接縮合(J.Cell.Biol.33、307318(1967))も適
用できる。一般に、標識酵素とリガンド
(Ligand)との結合を得るための二官能性架橋剤
としては、西ドイツ特許(DE−A)第2128743号
及び同第2260185号明細書に記載の化合物並びに
ヒドロキシスクインイミド誘導体が好適である。 免疫学的に活性のリガンド(即ち免疫作用物
質)としては、本発明の範囲で、前記のように、
抗体、そのフラグメント例えば、Fab、Fab2、
Fc−フラグメント、化学的に得られる抗体もし
くはそのフラグメントの誘導体、抗原、及びハプ
テン例えばジゴキシン、ジゴキシゲニン、T3、
T4、エストラジオール、エストリオール、プロ
ゲステロン、フオレート(Folat)、テオフイリ
ン、コルチゾール、フエノバルビタール及び類似
物がこれに該当する。 次の第表は、慣用のT3−POD−接合体(接
合体)、本発明により得られたT3−POD−接合
体(接合体)及び参照法としての放射能標識さ
れたT3(RIA)の使用下におけるT3酵素免疫測定
の結果を示している。 1対照血清を7正常血清(NS)及び4障害血
清(STS:問題血清)と比較した。ヒト血清を
用いた。
【表】
次の第表には、同様な方法で、1例では天然
PODを用い、他の例では本発明により処理され
たPODを用いて得たジゴキシン−POD−接合体
の使用下におけるジゴキシン測定の結果が示され
ている。比較のために、放射能標識されたジゴキ
シンを用いてRIA=テストを実施した。接合体
は、本発明によるものであり、接合体は非処理
PODを含有する。結果を、1ml当りの結合した
ジゴキシンngで示す。
PODを用い、他の例では本発明により処理され
たPODを用いて得たジゴキシン−POD−接合体
の使用下におけるジゴキシン測定の結果が示され
ている。比較のために、放射能標識されたジゴキ
シンを用いてRIA=テストを実施した。接合体
は、本発明によるものであり、接合体は非処理
PODを含有する。結果を、1ml当りの結合した
ジゴキシンngで示す。
【表】
前記の値は、本発明により製造されたPOD−
接合体で、RIA法で得られた結果に相当する結果
が得られ、本発明により処理されなかつたPOD
との接合体では、部分的に、正しい値から著るし
くはずれることを示している。分子内に炭水化物
分を有する他の標識酵素でも類似の結果が達成さ
れる。 本発明により、炭水化物含有標識酵素の使用下
における酵素免疫測定の精度及び信頼性は明らか
に改良され、酵素標識付けにより、放射能標識付
けによると同様に信頼できる結果が得られ、従つ
て、放射性物質との関係及びこれに結合した安全
処置を不必要にする試薬の提供が可能である。 実施例 次の実施例につき、本発明を更に説明する。 例 1 ジゴキシゲニン−PODの製造 A PODの酸化及び還元 再蒸留水1.5ml中の市販のPOD10mg(PH5.0)
に、0℃で、0.2モル/の過沃素酸ナトリウム
(再蒸留水中42mg/ml)0.2mlを加える。 40分後に、モレキユラーシーブカラム
(Sephadex G−25)を通し、10モル/の酢酸
塩(PH5.0)中で脱塩する。 蛋白質含有フラクシヨンを集め、0℃まで冷却
する。 1モル/の炭酸塩/重炭酸塩(PH9.0)でPH
値を8.0にし、直ちに攪拌下にNaBH4を20mモ
ル/まで添加する(∧=0.756mg/ml)。 30分後にPH値を8.5にする。次いで、更に0℃
で2時間攪拌する。引続き、0.1モル/のKPO4
(PH8.0)に対する透析を行なう。生成物(POD
(ox))を必要に応じて、0.1モル/の燐酸塩緩
衝液(PH8.0)中でセフアクリル(Sephacryl)S
−200のクロマトグラフイにかける。 B Aで得た生成物(POD(ox))200mgを0.2モ
ル/の燐酸カリウム(PH8.0)200ml中で40℃ま
で冷却する。 ジゴキシゲニン−スクシニル−OSu−(OSu=
ヒドロキシスクシンイミド)73mgを無水エタノー
ル5ml中に溶かし、4℃で、少量宛POD−溶液
に加える。次いで、4℃で16時間軽く攪拌する。 その後、このバツチ(殆んど活性損失なし)を
0.1モル/燐酸カリウム(PH8.0)/0.15モル/
NaClに対して透析させる。 バツチの浄化は、フエニルセフアロースカラム
50mlを用いて行なう。0.1モル/燐酸カリウム
(PH8.0)/0.15モル/NaClでのカラムの平衡
化。保留物の150ml/hでの流出の開始時から、
カラムの流出物を分別する。粗製接合体の流出の
後に、同じ溶剤を有する平衡化緩衝液を用いて更
に溶離させる。約50〜50mlの流過から、カラム溶
離剤を集め、50〜50ml量の接合体プールを形成さ
せる。この接合体プールは、使用したPOD−活
性の約50%を保有している。このプールを超遠心
により接合体約10mg/ml(約10KV/mlに相当)
まで濃縮する。 例 2 T3−PODの製法 0.1モル/の燐酸カリウム緩衝液(PH8.0)中
の例1A)で製造したPOD(ox))100mgに、0℃
でジメチルホルムアミド(DMF)9.4mlを添加す
る。DMF)0.6ml中のBOC*−T3−OSu25mgを0
℃で加える。攪拌下に更に18時間反応させる。す
べての工程を遮光する。 40mモル/トリス/HCl(PH7.5/0.15モル/
NaClに対する透析を4℃で実施。フエニルセ
フアロース(3cm)80mlでの保留物を、40mモ
ル/トリス/HCl(PH7.5)/0.15モル/NaCl
中で平衡化させ、1 SV**/hで装荷。未反応
のPODは貫流する。当初吸収度の達成の後に、
40mモル/トリス/HCl(PH7.5)/0.15NaCl−
緩衝液を、50%エチレングリコール40mモル/
で代える。 トリス(PH7.5)/1モル/NaCl及び接合体
は1SV/hで溶離する。 接合体をプールし、溶液に4℃で、接合体量の
50%の0.5モル/塩酸ヒドロキシルアミン溶液
(PH7.0)を加え、2時間攪拌する。 次いで、40mモル/KPO4(PH6.5)に対する
透析を遮光下、4℃で実施。接合体をC=10mg/
mlまで濃縮し、RSAで、C=5mg/mlまで増量
する。 * BOC=t−ブトキシカルボニル ** SV=カラム容積 例 3 T4−PODの製法 0.1モル/KPO4(PH8.5)1ml中の例1A)で製
造したPOD(ox))10mgに徐々にDMF0.9mlを0
℃で添加する。 DMF60μ中のBOC−T4−OSu2.5mgを氷冷下
に加える。バツチを25℃で6時間攪拌する。その
後40mモル/トリス/HCl(PH7.5)/0.15モ
ル/NaClに対して透析する。 透析物を40mモル/トリスHCl(PH7.5)/
0.15モル/NaCl中のフエニルセフアロースで
精製。 POD10mg当りカラム量4mlを使用する。平衡
化緩衝液1SV/hで溶離。溶離液の当初吸光度に
達したら、接合体を40mモル/トリス/HCl
(PH7.5)/0.15モル/NaCl中の50%エチレング
リコール1SV/hを用いてで溶離させる。 接合体ピークをC=10mg/mlまで濃縮し、40モ
ル/KPO4(PH6.5)に対し、4℃で遮光下に透
析させる。 接合体をRSAでC=5mg/mlまで増量し、4
℃で貯蔵する。 例 4 例1Bの記載と同様であるが、天然のPODを用
いてジゴキシゲニン−POD−接合体を製造する。
この接合体を再蒸留水に対して透析させ、例1A
の記載と同様に酸化−/還元処理をするが、この
際天然のPODの代りに当量のジゴキシゲニン−
POD−接合体を使用する。 得られた接合体のその試験における特性は、例
1で得られた接合体にまつたく一致する。 例 5 T3−テスト 1 インキユベーシヨン:免疫反応 抗−T3−抗体で被覆された市販のテストパツ
キングのプラスチツク小管「エンツマイム・テス
ト T3(Enzymum Test R T3)(製造者:ベ
ーリンガー・マンハイム、整理番号No.204528)」
に、標準溶液(濃度範囲T30〜6ng/ml)もし
くは試料100μ及びT3−POD−接合体溶液各1
mlを加える。 それぞれ、0/12モル/バルビタール緩衝液
(PH8.6)中のPOD約6mU/mlを有する接合体
〜(第表参照)を、ANS(8−アニリノナフ
タリンスルホン酸)0.04%と共に使用する。反応
時間は、室温で2時間である。その後、このイン
キユベーシヨン混合物を吸引濾過し、水と1回混
合し、遅くても5分後に再び吸引濾過する。 2 インキユベーシヨン:酵素指示薬反応 引続く光度測定の時間サイクル(例えば全て15
秒)で、各管にPOD−基質溶液(0.1モル/燐
酸塩/クエン酸塩緩衝液(PH5.9)、ABTS 9.1
mモル/、H2O21.6mモル/)各1mlをピペ
ツト導入し、室温で1時間インキユベートする。
引続き、Hg405nmでの吸光度を測定し、試料濃
度をセツトとして不随している標準曲線から読み
とる。
接合体で、RIA法で得られた結果に相当する結果
が得られ、本発明により処理されなかつたPOD
との接合体では、部分的に、正しい値から著るし
くはずれることを示している。分子内に炭水化物
分を有する他の標識酵素でも類似の結果が達成さ
れる。 本発明により、炭水化物含有標識酵素の使用下
における酵素免疫測定の精度及び信頼性は明らか
に改良され、酵素標識付けにより、放射能標識付
けによると同様に信頼できる結果が得られ、従つ
て、放射性物質との関係及びこれに結合した安全
処置を不必要にする試薬の提供が可能である。 実施例 次の実施例につき、本発明を更に説明する。 例 1 ジゴキシゲニン−PODの製造 A PODの酸化及び還元 再蒸留水1.5ml中の市販のPOD10mg(PH5.0)
に、0℃で、0.2モル/の過沃素酸ナトリウム
(再蒸留水中42mg/ml)0.2mlを加える。 40分後に、モレキユラーシーブカラム
(Sephadex G−25)を通し、10モル/の酢酸
塩(PH5.0)中で脱塩する。 蛋白質含有フラクシヨンを集め、0℃まで冷却
する。 1モル/の炭酸塩/重炭酸塩(PH9.0)でPH
値を8.0にし、直ちに攪拌下にNaBH4を20mモ
ル/まで添加する(∧=0.756mg/ml)。 30分後にPH値を8.5にする。次いで、更に0℃
で2時間攪拌する。引続き、0.1モル/のKPO4
(PH8.0)に対する透析を行なう。生成物(POD
(ox))を必要に応じて、0.1モル/の燐酸塩緩
衝液(PH8.0)中でセフアクリル(Sephacryl)S
−200のクロマトグラフイにかける。 B Aで得た生成物(POD(ox))200mgを0.2モ
ル/の燐酸カリウム(PH8.0)200ml中で40℃ま
で冷却する。 ジゴキシゲニン−スクシニル−OSu−(OSu=
ヒドロキシスクシンイミド)73mgを無水エタノー
ル5ml中に溶かし、4℃で、少量宛POD−溶液
に加える。次いで、4℃で16時間軽く攪拌する。 その後、このバツチ(殆んど活性損失なし)を
0.1モル/燐酸カリウム(PH8.0)/0.15モル/
NaClに対して透析させる。 バツチの浄化は、フエニルセフアロースカラム
50mlを用いて行なう。0.1モル/燐酸カリウム
(PH8.0)/0.15モル/NaClでのカラムの平衡
化。保留物の150ml/hでの流出の開始時から、
カラムの流出物を分別する。粗製接合体の流出の
後に、同じ溶剤を有する平衡化緩衝液を用いて更
に溶離させる。約50〜50mlの流過から、カラム溶
離剤を集め、50〜50ml量の接合体プールを形成さ
せる。この接合体プールは、使用したPOD−活
性の約50%を保有している。このプールを超遠心
により接合体約10mg/ml(約10KV/mlに相当)
まで濃縮する。 例 2 T3−PODの製法 0.1モル/の燐酸カリウム緩衝液(PH8.0)中
の例1A)で製造したPOD(ox))100mgに、0℃
でジメチルホルムアミド(DMF)9.4mlを添加す
る。DMF)0.6ml中のBOC*−T3−OSu25mgを0
℃で加える。攪拌下に更に18時間反応させる。す
べての工程を遮光する。 40mモル/トリス/HCl(PH7.5/0.15モル/
NaClに対する透析を4℃で実施。フエニルセ
フアロース(3cm)80mlでの保留物を、40mモ
ル/トリス/HCl(PH7.5)/0.15モル/NaCl
中で平衡化させ、1 SV**/hで装荷。未反応
のPODは貫流する。当初吸収度の達成の後に、
40mモル/トリス/HCl(PH7.5)/0.15NaCl−
緩衝液を、50%エチレングリコール40mモル/
で代える。 トリス(PH7.5)/1モル/NaCl及び接合体
は1SV/hで溶離する。 接合体をプールし、溶液に4℃で、接合体量の
50%の0.5モル/塩酸ヒドロキシルアミン溶液
(PH7.0)を加え、2時間攪拌する。 次いで、40mモル/KPO4(PH6.5)に対する
透析を遮光下、4℃で実施。接合体をC=10mg/
mlまで濃縮し、RSAで、C=5mg/mlまで増量
する。 * BOC=t−ブトキシカルボニル ** SV=カラム容積 例 3 T4−PODの製法 0.1モル/KPO4(PH8.5)1ml中の例1A)で製
造したPOD(ox))10mgに徐々にDMF0.9mlを0
℃で添加する。 DMF60μ中のBOC−T4−OSu2.5mgを氷冷下
に加える。バツチを25℃で6時間攪拌する。その
後40mモル/トリス/HCl(PH7.5)/0.15モ
ル/NaClに対して透析する。 透析物を40mモル/トリスHCl(PH7.5)/
0.15モル/NaCl中のフエニルセフアロースで
精製。 POD10mg当りカラム量4mlを使用する。平衡
化緩衝液1SV/hで溶離。溶離液の当初吸光度に
達したら、接合体を40mモル/トリス/HCl
(PH7.5)/0.15モル/NaCl中の50%エチレング
リコール1SV/hを用いてで溶離させる。 接合体ピークをC=10mg/mlまで濃縮し、40モ
ル/KPO4(PH6.5)に対し、4℃で遮光下に透
析させる。 接合体をRSAでC=5mg/mlまで増量し、4
℃で貯蔵する。 例 4 例1Bの記載と同様であるが、天然のPODを用
いてジゴキシゲニン−POD−接合体を製造する。
この接合体を再蒸留水に対して透析させ、例1A
の記載と同様に酸化−/還元処理をするが、この
際天然のPODの代りに当量のジゴキシゲニン−
POD−接合体を使用する。 得られた接合体のその試験における特性は、例
1で得られた接合体にまつたく一致する。 例 5 T3−テスト 1 インキユベーシヨン:免疫反応 抗−T3−抗体で被覆された市販のテストパツ
キングのプラスチツク小管「エンツマイム・テス
ト T3(Enzymum Test R T3)(製造者:ベ
ーリンガー・マンハイム、整理番号No.204528)」
に、標準溶液(濃度範囲T30〜6ng/ml)もし
くは試料100μ及びT3−POD−接合体溶液各1
mlを加える。 それぞれ、0/12モル/バルビタール緩衝液
(PH8.6)中のPOD約6mU/mlを有する接合体
〜(第表参照)を、ANS(8−アニリノナフ
タリンスルホン酸)0.04%と共に使用する。反応
時間は、室温で2時間である。その後、このイン
キユベーシヨン混合物を吸引濾過し、水と1回混
合し、遅くても5分後に再び吸引濾過する。 2 インキユベーシヨン:酵素指示薬反応 引続く光度測定の時間サイクル(例えば全て15
秒)で、各管にPOD−基質溶液(0.1モル/燐
酸塩/クエン酸塩緩衝液(PH5.9)、ABTS 9.1
mモル/、H2O21.6mモル/)各1mlをピペ
ツト導入し、室温で1時間インキユベートする。
引続き、Hg405nmでの吸光度を測定し、試料濃
度をセツトとして不随している標準曲線から読み
とる。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 標識酵素の蛋白質分に作用する結合法の使用
下に、炭水化物分を含有する標識酵素と免疫作用
物質とからの酵素免疫測定に好適な接合体を製造
する方法において、標識酵素を、免疫作用物質と
の結合の前又は後に、水性媒体中の過沃素酸又は
そのアルカリ金属塩で酸化し、次いでこの酸化生
成物をNaBH4で還元することを特徴とする、酵
素免疫測定に好適な接合体の製法。 2 酸化を、PH4〜8.5で、緩衝液中で、冷却下
に実施する、特許請求の範囲第1項記載の方法。 3 還元を、PH7.5〜9で、冷却下にNaBH4を用
いて実施する、特許請求の範囲第2項記載の方
法。
Applications Claiming Priority (2)
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