JP7319349B2 - 細胞培養基材 - Google Patents
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Description
20モル%を超えて100モル%未満の下記式(1)で表されるフルフリル(メタ)アクリレート由来の構成単位(1)および0モル%を超えて80モル%未満の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位(2)を有する共重合体(前記構成単位(1)および前記構成単位(2)の合計は100モル%である)を含む被覆層を有する、細胞培養基材によって達成できる:
で表される基である。
20モル%を超えて100モル%未満の下記式(1)で表されるフルフリル(メタ)アクリレート由来の構成単位(1)および0モル%を超えて80モル%未満の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位(2)を有する共重合体(前記構成単位(1)および前記構成単位(2)の合計は100モル%である)を含む被覆層を有する、細胞培養基材である:
で表される基である。
本発明の細胞培養基材は、高分子基材の少なくとも一方の面に、上記共重合体を含む被覆層が形成されてなる。本発明に係る共重合体を含む被覆層は、ポリテトラヒドロフルフリルアクリレート(PTHFA)によって形成された被覆層に比して良好な細胞接着性を有する。また、本発明に係る共重合体を含む被覆層は、細胞伸展性(細胞増殖性)にも優れる。加えて、被覆層は、共重合体を溶媒に溶解し、この溶液を高分子基材表面に塗布することによって簡便に形成できる。このため、本発明に係る共重合体を使用することにより、細胞培養基材(細胞培養容器)の形状・設計によらず、基材表面に細胞接着性(さらには細胞増殖性)を有する被覆層(細胞接着層)を形成できる。
本発明に係る共重合体は、20モル%を超えて100モル%未満の式(1)で表されるフルフリル(メタ)アクリレート由来の構成単位(1)および0モル%を超えて80モル%未満の水酸基を有するエチレン性不飽和単量体由来の構成単位(2)を有する。ここで、構成単位(1)および構成単位(2)の合計は100モル%である。
本発明では、高分子基材の少なくとも一方の面に、上記共重合体を含む被覆層が形成される。ここで、被覆層は、高分子基材の細胞が接触する(例えば、細胞を含む液を流す、細胞を培養する)側の面に少なくとも形成される。また、被覆層は高分子基材表面全体に形成される必要はない。被覆層は、細胞が接触する(例えば、細胞を含む液を流す、細胞を培養する)高分子基材表面部分(一部)に形成されればよいが、細胞接着性(さらには細胞増殖性)のさらなる向上効果の観点から、被覆層が、細胞が接触する(例えば、細胞を含む液を流す、細胞を培養する)側の高分子基材表面全体に形成されることが好ましい。
本発明の細胞培養基材は、細胞接着性に優れる。また、本発明の細胞培養基材は、細胞増殖性を有する。このため、本発明の細胞培養基材は、バイオリアクターに好適に使用できる。すなわち、本発明は、本発明の細胞培養基材を有するバイオリアクターを提供する。ここで、バイオリアクターは、平面型バイオリアクターであっても中空糸型バイオリアクターであってもよいが、中空糸型バイオリアクターが特に好ましい。このため、以下では、好ましい実施形態として、中空糸型バイオリアクターについて説明するが、本発明のバイオリアクターは平面型バイオリアクターであってもよく、この場合でも下記実施の形態を適宜変更することによって適用できる。また、図面の寸法比率は、説明の都合上誇張されており、実際の比率とは異なる場合がある。
上述したように、本発明のバイオリアクターは、細胞接着性(さらには細胞増殖性)に優れる細胞培養基材を備えている。ここで、本発明のバイオリアクターで培養できる細胞は、接着(足場依存)性細胞、非接着性細胞、またはこれらの任意の組み合わせのいずれであってもよいが、優れた細胞接着性(さらには細胞増殖性)を考慮すると、本発明のバイオリアクターは、接着(足場依存)性細胞の培養に特に好適に使用できる。ここで、接着(足場依存)性細胞としては、間葉系幹細胞(MSC)等の幹細胞、線維芽細胞などの、動物の細胞などがある。上述したように、幹細胞が再生医療や創薬の開発にあたって注目が集めている。このため、本発明のバイオリアクターは、幹細胞の培養に好適に使用できる。すなわち、本発明は、本発明のバイオリアクターを用いて幹細胞を培養する、幹細胞の培養方法を提供する。ここで、幹細胞の培養方法は、特に制限されず、通常の培養方法が同様にしてあるいは適宜修飾して適用できる。
20ml容量のガラス製耐圧試験管に、テトラヒドロフルフリルアクリレート(THFA)0.90g(0.0058mol)、ヒドロキシエチルメタクリレート(HEMA)1.1g(0.0085mol)、およびメタノール3gを加えた後、窒素ガスを10秒間バブリングして、モノマー溶液(1)を調製した。このモノマー溶液(1)に、重合開始剤として、2,2’-アゾビス(4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル)(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))0.004g(0.013mmol)を加えた後、45℃に設定したヒートブロックで6時間加熱して、重合反応を行い、重合液(1)を得た。この重合液(1)をn-ヘキサン50mlに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、テトラヒドロフルフリルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体(THFA:HEMA=40:60(モル比))(共重合体(1))を得た。この共重合体(1)の重量平均分子量(Mw)を測定したところ、210,000であった。
20ml容量のガラス製耐圧試験管に、テトラヒドロフルフリルアクリレート(THFA)1.10g(0.007mol)、ヒドロキシエチルメタクリレート(HEMA)0.90g(0.007mol)、およびメタノール3gを加えた後、窒素ガスを10秒間バブリングして、モノマー溶液(2)を調製した。このモノマー溶液(2)に、重合開始剤として、2,2’-アゾビス(4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル)(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))0.004g(0.013mmol)を加えた後、45℃に設定したヒートブロックで6時間加熱して、重合反応を行い、重合液(2)を得た。この重合液(2)をn-ヘキサン50mlに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、テトラヒドロフルフリルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体(THFA:HEMA=50:50(モル比))(共重合体(2))を得た。この共重合体(2)の重量平均分子量(Mw)を測定したところ、230,000であった。
20ml容量のガラス製耐圧試験管に、テトラヒドロフルフリルアクリレート(THFA)1.3g(0.0083mol)、ヒドロキシエチルメタクリレート(HEMA)0.70g(0.0054mol)、およびメタノール3gを加えた後、窒素ガスを10秒間バブリングして、モノマー溶液(3)を調製した。このモノマー溶液(3)に、重合開始剤として、2,2’-アゾビス(4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル)(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))0.004g(0.013mmol)を加えた後、45℃に設定したヒートブロックで6時間加熱して、重合反応を行い、重合液(3)を得た。この重合液(3)をn-ヘキサン50mlに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、テトラヒドロフルフリルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体(THFA:HEMA=60:40(モル比))(共重合体(3))を得た。この共重合体(3)の重量平均分子量(Mw)を測定したところ、240,000であった。
20ml容量のガラス製耐圧試験管に、テトラヒドロフルフリルアクリレート(THFA)1.65g(0.0106mol)、ヒドロキシエチルメタクリレート(HEMA)0.35g(0.0027mol)、およびメタノール3gを加えた後、窒素ガスを10秒間バブリングして、モノマー溶液(4)を調製した。このモノマー溶液(4)に、重合開始剤として、2,2’-アゾビス(4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル)(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))0.004g(0.013mmol)を加えた後、45℃に設定したヒートブロックで6時間加熱して、重合反応を行い、重合液(4)を得た。この重合液(4)をn-ヘキサン50mlに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、テトラヒドロフルフリルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体(THFA:HEMA=80:20(モル比))(共重合体(4))を得た。この共重合体(4)の重量平均分子量(Mw)を測定したところ、260,000であった。
20ml容量のガラス製耐圧試験管に、テトラヒドロフルフリルアクリレート(THFA)1.83g(0.0117mol)、ヒドロキシエチルメタクリレート(HEMA)0.17g(0.0013mol)、およびメタノール3gを加えた後、窒素ガスを10秒間バブリングして、モノマー溶液(5)を調製した。このモノマー溶液(5)に、重合開始剤として、2,2’-アゾビス(4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル)(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))0.004g(0.013mmol)を加えた後、45℃に設定したヒートブロックで6時間加熱して、重合反応を行い、重合液(5)を得た。この重合液(5)をn-ヘキサン50mlに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、テトラヒドロフルフリルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体(THFA:HEMA=90:10(モル比))(共重合体(5))を得た。この共重合体(5)の重量平均分子量(Mw)を測定したところ、250,000であった。
20ml容量のガラス製耐圧試験管に、テトラヒドロフルフリルアクリレート(THFA)0.46g(0.0029mol)、ヒドロキシエチルメタクリレート(HEMA1.54g(0.0118mol)、およびメタノール3gを加えた後、窒素ガスを10秒間バブリングして、モノマー溶液(6)を調製した。このモノマー溶液(6)に、重合開始剤として、2,2’-アゾビス(4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル)(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))0.004g(0.013mmol)を加えた後、45℃に設定したヒートブロックで6時間加熱して、重合反応を行い、重合液(6)を得た。この重合液(6)をn-ヘキサン50mlに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、テトラヒドロフルフリルアクリレートとヒドロキシエチルメタクリレートとの共重合体(THFA:HEMA=20:80(モル比))(共重合体(6))を得た。この共重合体(6)の重量平均分子量(Mw)を測定したところ、230,000であった。
20ml容量のガラス製耐圧試験管に、テトラヒドロフルフリルアクリレート(THFA)2.0g(0.0128mol)、およびメタノール3gを加えた後、窒素ガスを10秒間バブリングして、モノマー溶液(7)を調製した。このモノマー溶液(7)に、重合開始剤として、2,2’-アゾビス(4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル)(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))0.004g(0.013mmol)を加えた後、45℃に設定したヒートブロックで6時間加熱して、重合反応を行い、重合液(7)を得た。この重合液(7)をヘキサン50mlに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、テトラヒドロフルフリルアクリレートのホモポリマー(THFA重合体(7))を得た。このTHFA重合体(7)の重量平均分子量(Mw)を測定したところ、290,000であった。
20ml容量のガラス製耐圧試験管に、ヒドロキシエチルメタクリレート(HEMA)2.0g(0.0154mol)、およびメタノール3gを加えた後、窒素ガスを10秒間バブリングして、モノマー溶液(8)を調製した。このモノマー溶液(8)に、重合開始剤として、2,2’-アゾビス(4-メトキシ-2,4-ジメチルバレロニトリル)(2,2'-Azobis(4-methoxy-2,4-dimethylvaleronitrile))0.004g(0.013mmol)を加えた後、45℃に設定したヒートブロックで6時間加熱して、重合反応を行い、重合液(8)を得た。この重合液(8)をn-ヘキサン50mlに加え、析出したポリマー成分を回収、減圧乾燥し、ヒドロキシエチルメタクリレートのホモポリマー(HEMA重合体(8))を得た。
上記製造例1で得られた共重合体(1)を水およびエタノールの混合溶媒(水:エタノール=1:9(体積比))に0.05重量%濃度となるように溶解して、コーティング液(1)を作製した。このコーティング液(1)25μLを、市販の96穴組織培養用ポリスチレンディッシュ(プラズマ処理無し、FALCON社製、商品名:Non-Tissue Culture Treated Plate, 96Well, Flat Bottom with Low Evaporation Lid)の各ウェルに添加し、20℃で300分間乾燥し、ウェル表面にポリマー被膜(乾燥時の厚み:0.3μm)を作製して、細胞培養皿(1)を得た。
実施例1において、共重合体(1)の代わりに、共重合体(2)~(5)をそれぞれ使用する以外は、実施例1と同様の方法に従って、ウェル表面にポリマー被膜を作製して、細胞培養皿(2)~(5)を得た。
実施例1において、共重合体(1)の代わりに、共重合体(6)、THFA重合体(7)およびHEMA重合体(8)をそれぞれ使用する以外は、実施例1と同様の方法に従って、ウェル表面にポリマー被膜を作製して、比較細胞培養皿(1)~(3)を得た。
市販の96穴組織培養用ポリスチレンディッシュ(プラズマ処理およびポリマー被膜無し、FALCON社製、商品名:Non-Tissue Culture Treated Plate, 96Well, Flat Bottom with Low Evaporation Lid)を未処理の細胞培養皿として準備した。
上記実施例1~5および比較例1~3で得られた細胞培養皿(1)~(5)、および比較細胞培養皿(1)~(3)ならびに参考例1としての未処理の細胞培養皿を用いて、下記に従って、細胞を培養し、細胞接着活性(細胞接着性)を評価した。なお、細胞は、ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞(ロンザ、ウォーカーズビル、メリーランド州、アメリカ合衆国)を使用した。ドナーは22歳男性で、CD13、CD29、CD44、CD73、CD90、CD105、CD166≧90%、CD14、CD31、CD45≦5%であった。
2…細胞培養基材、
3…細胞培養チャンバー、
4,8…入口ポート、
6,10…出口ポート。
Claims (5)
- 高分子基材の少なくとも一方の面に、
40モル%以上90%以下の下記式(1)で表されるフルフリル(メタ)アクリレート由来の構成単位(1)および10モル%以上60モル%以下の下記式(2)で表されるヒドロキシアルキル(メタ)アクリレート由来の構成単位(2)から構成される共重合体(前記構成単位(1)および前記構成単位(2)の合計は100モル%である)を含む被覆層を有する、細胞培養基材:
ただし、R1は、水素原子またはメチル基であり、R2は、下記式(1-1)または下記式(1-2):
ただし、R3は、炭素原子数1~3のアルキレン基である;
で表される基である;
ただし、R 4 は、水素原子またはメチル基であり、R 5 は、炭素原子数2~3のアルキレン基である。 - 高分子基材の少なくとも一方の面に、
40モル%以上90%以下の下記式(1)で表されるフルフリル(メタ)アクリレート由来の構成単位(1)および10モル%以上60モル%以下の下記式(2)で表されるヒドロキシアルキル(メタ)アクリレート由来の構成単位(2)から構成される共重合体(前記構成単位(1)および前記構成単位(2)の合計は100モル%である)を含む被覆層を有し、
前記高分子基材が多孔質膜である、細胞培養基材:
ただし、R 1 は、水素原子またはメチル基であり、R 2 は、下記式(1-1)または下記式(1-2):
ただし、R 3 は、炭素原子数1~3のアルキレン基である;
で表される基である;
ただし、R 4 は、水素原子またはメチル基であり、R 5 は、炭素原子数2~3のアルキレン基である。 - 前記共重合体が、60~90モル%の前記構成単位(1)および10~40モル%の前記構成単位(2)を有する共重合体(前記構成単位(1)および前記構成単位(2)の合計は100モル%である)である、請求項1または2に記載の細胞培養基材。
- 請求項1~3のいずれか1項に記載の細胞培養基材を有する、バイオリアクター。
- 請求項4に記載のバイオリアクターを用いて幹細胞を培養する、幹細胞の培養方法。
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Hutcheon, G. A. et al.,"Water absorption and surface properties of novel poly(ethylmethacrylate) polymer systems for use in bone and cartilage repair",Biomaterials,2001年,Vol. 22,pp. 667-676 |
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