JP7195067B2 - ロズマリン酸誘導体又はその塩 - Google Patents
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Description
1)下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩。
2)下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とするTRPV4活性抑制剤。
3)下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とする過活動膀胱の予防又は改善剤。
4)下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善剤。
5)下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とするTRPV4活性抑制用食品
6)下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とする過活動膀胱の予防又は改善用食品。
7)下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善用食品。
したがって、式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩は、TRPV4活性抑制剤となり、TRPV4活性抑制のため、或いはTRPV4活性抑制剤を製造するために使用できる。
したがって、式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩は、過活動膀胱の予防又は改善剤、過敏性腸症候群の予防又は改善剤となり、過活動膀胱や過敏性腸症候群の予防又は改善のため、或いは過活動膀胱や過敏性腸症候群の予防又は改善剤を製造するために使用できる。
また、「TRPV4の活性抑制」とは、受容体であるTRPV4の活性を抑制することを指す。具体的には、TRPV4刺激物質がTRPV4に結合することによって発現する活性、例えばイオン流束の調節能(例えば、細胞外から細胞内へのカルシウムイオン、ナトリウムイオンなどの陽イオンの輸送能など)、膜電位の調節能(例えば、電流の発生能など)を抑制又は阻害することを意味する。
また、本発明の食品には、一般飲食品のほか、必要に応じてその旨を表示した食品、機能性食品、病者用食品、特定保健用食品、機能性表示食品、サプリメントが包含される。
種々の形態の食品を調製するには、本発明の式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を単独で、又は他の食品材料や、溶剤、軟化剤、油、乳化剤、防腐剤、香科、安定剤、着色剤、酸化防止剤、保湿剤、増粘剤等を適宜組み合わせて用いることができる。
また、上記製剤は、任意の投与計画に従って投与され得るが、1日1回~数回に分け、数週間~数ヶ月間継続して投与することが好ましい。
<1>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩。
<2>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とするTRPV4活性抑制剤。
<3>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とする過活動膀胱の予防又は改善剤。
<4>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善剤。
<5>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とするTRPV4活性抑制用食品
<6>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とする過活動膀胱の予防又は改善用食品。
<7>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善用食品。
<9>過活動膀胱の予防又は改善剤を製造するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩の使用。
<10>過敏性腸症候群の予防又は改善剤を製造するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩の使用。
<11>TRPV4活性抑制用食品を製造するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩の使用。
<12>過活動膀胱の予防又は改善用食品を製造するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩の使用。
<13>過敏性腸症候群の予防又は改善用食品を製造するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩の使用。
<15>過活動膀胱の予防又は改善に使用するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩。
<16>過敏性腸症候群の予防又は改善に使用するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩。
<18>過活動膀胱を予防又は改善するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩の非治療的使用。
<19>過敏性腸症候群を予防又は改善するための、下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩の非治療的使用。
<21>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を、それらを必要とする対象に有効量で投与又は摂取する過活動膀胱の予防又は改善方法。
<22>下記一般式(I)で表されるロズマリン酸誘導体又はその塩を、それらを必要とする対象に有効量で投与又は摂取する過敏性腸症候群の予防又は改善方法。
製造例1 3,4’-ジ-O-メチル-ロズマリン酸及び4-O-メチル-ロズマリン酸の合成
<試薬>
イソフェルラ酸、3-(4-ヒドロキシ-3-メトキシフェニル)乳酸ナトリウム、イソバニリン、カフェ酸、N-アセチルグリシンは東京化成工業より、フェルラ酸、酢酸ナトリウムはSigma Aldrichより、臭化アリル、N,N’-ジシクロヘキシルカルボジイミド(DCC)、N,N-ジメチルアミノピリジン(DMAP)、モルホリン、超脱水アセトン、超脱水N,N-ジメチルホルムアミド(DMF)、超脱水テトラヒドロフラン、超脱水1,4-ジオキサン、超脱水ジクロロメタン、55%水素化ナトリウム、テトラブチルアンモニウムヨージド(TBAI)、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩(EDCI)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)錯体[Pd(PPh3)4]、8N水酸化ナトリウム水溶液、無水硫酸ナトリウム、tert-ブチルメチルエーテルは富士フィルム和光純薬より、炭酸カリウム、ジクロロメタン、n-ヘキサン、酢酸エチル、メタノール、クロロホルム、アセトン、濃塩酸、ギ酸、酢酸、水素化ホウ素ナトリウムは関東化学より、それぞれ購入して用いた。
(1)試薬
ヒト十二指腸由来細胞(Hutu-80細胞)、ヒト子宮頸癌由来細胞株(HeLa細胞)はAmerican Type Culture Collectionより、High Pure PCR Product Purification Kitはロッシュより、pcDNA3.1 Directional TOPO Expression Kit、DMEM/F12培地はインビトロジェンより、TransIT-HeLaMONSTER Transfection KitはMirusより、DetachinはGenlantisより、96well Optical bottom plateはNuncより、Calcium Kit II - fluo 4はDOJINDOより、Hanks’balanced salt solution、牛胎児血清はGibcoより、GSK1016790aはSigma Aldrichより、5x PrimeSTAR GXL Buffer、dNTPs mixture、PrimeSTAR GXL DNA Polymeraseはタカラバイオより、Dimethyl sulfoxideは富士フィルム和光純薬よりそれぞれ購入して用いた。
Hutu-80細胞から抽出したtotalRNAを逆転写して得られたcDNAを鋳型にして、公開されているヒトTRPV4遺伝子配列を参考に合成した、下記に示す塩基配列で表されるオリゴヌクレオチドからなるプライマーセットを用いて、下記の条件下でポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を行った。
フォワードプライマー;5’-CACCATGGCGGATTCCAGCGAAGGCCC-3’(配列番号1)
リバースプライマー;5’-CTAGAGCGGGGCGTCATCAGTCC-3’(配列番号2)
a)PCR溶液組成
cDNA(Template) 15μL
5x PrimeSTAR GXL Buffer 10μL
dNTPs mixture(2.5mM) 4μL
PrimeSTAR GXL DNA Polymerase 1μL
Forward Primer(10μM) 1μL
Reverse Primer(10μM) 1μL
Water 18μL
b)温度とサイクル条件
95℃ 2min
↓
98℃ 10sec, 70℃ 2min, 33cycles
10%牛胎児血清を含むDMEM/F12培地を用いて、HeLa細胞の培養を行った。HeLa細胞をT-75細胞培養用フラスコに5×105cells/Flaskで播種した。培養3日後、前記(2)で作製したヒトTRPV4遺伝子発現用ベクター(8μg)をTransIT-HeLaMONSTER Transfection Kitを用いて細胞にトランスフェクションし、1日培養した。
Detachinで細胞をはがし96well Optical bottom plateに10%牛胎児血清を含むDMEM/F12培地で1.5×104cells/90μL/wellの細胞密度で播き、さらに1日培養した。
細胞内カルシウムイオン流入率の測定は、Calcium Kit II - fluo 4を用いて行った。Fluo4-AMを含有したLoading buffer及びHanks’balanced salt solutionを1:1で混合した後、前記(3)で作製したヒトTRPV4発現細胞に180μL/well添加し、37℃で1時間インキュベートした。その後、37℃で蛍光プレートリーダーFDSS3000(浜松ホトニクス)を用いて蛍光強度(励起波長:488nm、蛍光波長:524nm)を2秒毎に測定した。測定開始30秒後にTRPV4作動薬であるGSK1016790aと検体として前記製造例で調製した4-O-メチル-ロズマリン酸または3,4’-ジ-O-メチル-ロズマリン酸溶液をそれぞれHanks’balanced salt solutionで希釈し、それらの混合溶液(添加直前に混合)を20μL/well添加し、300秒まで2秒毎に蛍光強度変化を測定した。なお、GSK1016790aは終濃度3nMとなるように添加した。
また、TRPV4活性抑制の陽性対照として、TRPV4の拮抗薬であるHC067047を終濃度10μMで添加した。4-O-メチル-ロズマリン酸、3,4’-ジ-O-メチル-ロズマリン酸、GSK1016790a、HC067047は、いずれもDimethyl sulfoxide(DMSO)に溶解して使用した。
検体のTRPV4活性は、TRPV4作動薬であるGSK1016790aの処理による細胞内カルシウムイオン流入率を100%として、次式により算出した。
細胞内カルシウムイオン流入率(%)=[(Fmax/F0)-(FmaxC2/F0C2)]/[(FmaxC1/F0C1)-(FmaxC2/F0C2)]×100
FmaxC1:測定開始0~300秒のGSK1016790aと溶媒を添加したウェルの最高蛍光強度
FmaxC2:測定開始0~300秒の溶媒のみを添加したウェルの最高蛍光強度
F0:測定開始直後のFmaxと同じウェルの蛍光強度
F0C1:測定開始直後のFmaxC1と同じウェルの蛍光強度
F0C2:測定開始直後の溶媒のみを添加したウェルの蛍光強度
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