JP6934722B2 - 中東呼吸器症候群−コロナウイルススパイクタンパク質に対するヒト抗体 - Google Patents
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Description
「MERSコロナウイルス」としても呼ばれる、用語「MERS−CoV」は、2012年にアラビア半島において最初に単離され(Zakiら2012年、NEJM 367:1814〜1820頁)、重篤な急性呼吸器系疾患の大流行の原因として同定された、新たに出現した中東呼吸器症候群−コロナウイルスを指す。それは、ヒトコロナウイルス−EMC(Erasmus Medical Centre;hCoV−EMC)と当初呼ばれた。それは、ベータコロナウイルス系統2cに属し、2002年に中国において出現した、重篤な急性呼吸器系症候群コロナウイルス(SARS−CoV)に類似した、重篤な呼吸器系疾患を引き起こす。MERSコロナウイルスは、コウモリおよびラクダにおいて見出されたコロナウイルスと密接に関連することが見出された。それは、ウイルスのスパイクタンパク質を介してヒト宿主細胞受容体ジペプチジルペプチダーゼ4(DPP4)に結合する。MERS−CoVスパイクタンパク質は、他の種、特に、コウモリおよびラクダのDPP4に結合することが見出された(Rajら2013年、Nature495:251〜254頁)。
感染性疾患の予防または処置のための受動免疫療法は、通常、高タイターの中和抗体を含有する回復期のヒト血清の形態で1世紀より長い間用いられてきた(Goodら1991年;Cancer68:1415〜1421頁)。今日、複数の精製されたモノクローナル抗体が、抗微生物剤としての使用のため前臨床および臨床開発に現在ある(Marascoら2007年;Nature Biotechnology25:1421〜1434頁)。
別段具体的に示されない限り、本明細書において用いられる用語「抗体」は、2つの免疫グロブリン重鎖、および2つの免疫グロブリン軽鎖を含む抗体分子(すなわち、「完全抗体分子」)、ならびにその抗原結合フラグメントを包含することは理解されるだろう。本明細書において用いられる用語、抗体の「抗原結合部分」、抗体の「抗原結合フラグメント」などは、任意の天然に生じる、酵素的に得られる、合成された、または遺伝子操作された、抗原に特異的に結合して複合体を形成するポリペプチドもしくは糖タンパク質を含む。本明細書において用いられる用語、抗体の「抗原結合フラグメント」、または「抗体フラグメント」は、MERS−CoVスパイクタンパク質に特異的に結合する能力を保持する抗体の1つまたはそれ以上のフラグメントを指す。抗体フラグメントは、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメント、dAbフラグメント、CDRを含有するフラグメント、または単離されたCDRを含む。ある種の実施形態において、用語「抗原結合フラグメント」は、多特異性抗原結合分子のポリペプチドフラグメントを指す。抗体の抗原結合フラグメントは、例えば、タンパク質消化、または抗体可変および(場合により)定常ドメインをコードするDNAの操作および発現を伴う組換え遺伝子操作技術のような任意の適切な標準的技術を用いて、完全抗体分子から得ることができる。かかるDNAは公知であり、および/または例えば、市販の供給源、DNAライブラリー(例えば、ファージ−抗体ライブラリーを含む)から容易に入手可能であるか、もしくは合成される。DNAは、配列決定され、化学的に、または分子生物学技術を用いることにより操作されて、例えば、1つもしくはそれ以上の可変および/もしくは定常ドメインが適切な配置に配置されるか、またはコドンが導入されるか、システイン残基が作製されるか、アミノ酸が修飾されるか、付加されるか、もしくは欠損される。
遺伝子導入マウスにおいてヒト抗体を作製する方法は、当該分野で公知である。任意のかかる公知の方法を、本発明の文脈において用いて、MERS−CoVスパイクタンパク質に特異的に結合するヒト抗体が作られる。
本発明の抗MERS−CoV−S抗体および抗体フラグメントは、記載される抗体のものと異なるが、MERS−CoVスパイクタンパク質に結合する能力を保持する、アミノ酸配列を有するタンパク質を包含する。かかる変異体抗体および抗体フラグメントは、親配列と比較された場合、アミノ酸の1つまたはそれ以上の付加、欠失、または置換を含むが、記載される抗体のものと実質的に等価物である生物学的活性を示す。同様に、本発明のDNA配列をコードする抗体は、開示される配列と比較された場合、ヌクレオチドの1つまたはそれ以上の付加、欠失、または置換を含むが、本発明の抗体または抗体フラグメントに実質的な生物学的等価物である抗体または抗体フラグメントをコードする配列を含む。
本発明のある種の実施形態によると、例えば、中性pHと比較して酸性pHにおいて、FcRn受容体への抗体結合を増強するか、もしくは損なう1つまたはそれ以上の変異を含むFcドメインを含む抗MERS−CoV−S抗体が提供される。例えば、本発明は、FcドメインのCH2またはCH3領域における変異を含む抗MERS−CoV−S抗体を含み、ここで、変異は、酸性環境において(例えば、pHが約5.5〜約6.0の範囲にあるエンドソームにおいて)、FcRnに対するFcドメインの親和性を増大させる。かかる変異は、動物に投与される場合、抗体の血清半減期の増大をもたらす。かかるFc修飾の非限定的な例は、例えば、250位(例えば、EもしくはQ);250位および428位(例えば、LもしくはF);252位(例えば、L/Y/F/W、もしくはT)、254位(例えば、S、もしくはT)、ならびに256位(例えば、S/R/Q/E/D、もしくはT)における修飾;または428位および/もしくは433位(例えば、H/L/R/S/P/Q、もしくはK)および/もしくは434位(例えば、A、W、H、F、もしくはY[N434A、N434W、N434H、N434F、もしくはN434Y])における修飾;または250位および/もしくは428位における修飾;または307位もしくは308位(例えば、308F、V308F)、および434位における修飾を含む。1つの実施形態において、修飾は、428L(例えば、M428L)、ならびに434S(例えば、N434S)修飾;428L、259I(例えば、V259I)、ならびに308F(例えば、V308F)修飾;433K(例えば、H433K)、ならびに434(例えば、434Y)修飾;252、254、ならびに256(例えば、252Y、254T、および256E)修飾;250Q、ならびに428L修飾(例えば、T250Q、およびM428L);ならびに307、ならびに/または308修飾(例えば、308F、もしくは308P)を含む。なお別の実施形態において、修飾は、265A(例えば、D265A)、および/または297A(例えば、N297A)修飾を含む。
一般に、本発明の抗体は、MERS−CoVスパイクタンパク質に結合することにより機能する。ある種の実施形態において、本発明の抗体は、MERS−CoVのスパイクタンパク質の受容体結合ドメイン(RBD)の1つまたはそれ以上のアミノ酸に高い親和性で結合する。例えば、本発明は、例えば、本明細書における実施例4において定義されるアッセイフォーマットを用いて、表面プラズモン共鳴により測定される、(例えば、25℃において、または37℃において)約20nM未満のKDで2量体MERS−CoVスパイクタンパク質RBDに結合する抗体および抗体の抗原結合フラグメントを含む。ある種の実施形態において、抗体またはその抗原結合フラグメントは、例えば、本明細書における実施例4において定義されるアッセイフォーマット、もしくは実質的に類似のアッセイを用いて、表面プラズモン共鳴により測定される、約20nM未満、約10nM未満、約5nM未満、約2nM未満、約1nM未満、約500pM未満、約250pM、もしくは約100pM未満のKDで2量体MERS−CoV−Sに結合する。
本発明は、N末端のS1ドメイン(アミノ酸残基1〜751)およびC末端のS2ドメイン(アミノ酸残基752〜1353)を含む、MERS−CoVスパイクタンパク質分子の1つもしくはそれ以上のドメイン内で見出されたアミノ酸の1つまたはそれ以上と相互作用する抗MERS−CoV−S抗体を含む。抗体が結合するエピトープは、MERS−CoVスパイクタンパク質分子の前述のドメインのいずれかに位置する、3個またはそれ以上(例えば、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個、16個、17個、18個、19個、20個もしくはそれ以上)のアミノ酸の単一の連続配列からなる(例えば、ドメインにおける直線エピトープ)。あるいは、エピトープは、スパイクタンパク質分子の前述のドメインのいずれかまたは両方に位置する、多数の非連続アミノ酸(もしくはアミノ酸配列)からなる(例えば、立体構造エピトープ)。
本発明は、毒素、またはMERS感染を処置するための抗ウイルス薬のような、治療部分に結合したヒト抗MERS−CoV−Sモノクローナル抗体(「免疫複合体」)を包含する。本明細書において用いられる用語「免疫複合体」は、放射性剤、サイトカイン、インターフェロン、標的もしくはレポーター部分、酵素、ペプチドもしくはタンパク質、もしくは治療剤に化学的または生物学的に結合される抗体を指す。抗体は、その標的に結合することができる限り、分子に沿った任意の位置において、放射性剤、サイトカイン、インターフェロン、標的もしくはレポーター部分、酵素、ペプチド、または治療剤に結合される。免疫複合体の例は、抗体薬物複合体、および抗体と毒素の融合タンパク質を含む。1つの実施形態において、剤は、MERS−CoVスパイクタンパク質に対する第2の異なる抗体である。ある種の実施形態において、抗体は、ウイルス性に感染した細胞に特異的な剤に結合される。抗MERS−CoV−S抗体に結合される治療部分のタイプは、処置されるべき条件、および達成されるべき所望の治療効果を考慮する。免疫複合体を形成させるのに適切な剤の例は、当該分野で公知であり、例えば、WO05/103081を参照。
本発明の抗体は、単特異性、二重特異性、または多特異性である。多特異性抗体は、1つの標的ポリペプチドの異なるエピトープに特異的であるか、または1つより多くの標的ポリペプチドに特異的な抗原結合ドメインを含有する。例えば、Tuttら、1991年、J.Immunol.147:60〜69頁;Kuferら、2004年、Trends Biotechnol.22:238〜244頁を参照。
本発明は、本発明の抗MERS−CoV−S抗体またはその抗原結合フラグメントを含む治療組成物を提供する。治療組成物は、本発明に従い、輸送、デリバリー、寛容の好転などをもたらすよう製剤に取り込まれる、適切な担体、賦形剤、および他の剤と共に投与される。多数の適切な製剤は、全ての医薬化学者に公知の処方書:Remington’s Pharmaceutical Sciences、Mack Publishing Company、Easton、PAにおいて見出される。これらの製剤は、例えば、粉末、ペースト、軟膏、ジェル、ワックス、油、脂質、脂質(陽イオンまたは陰イオン)含有ベシクル(例えば、LIPOFECTIN(商標))、DNA結合体、無水吸収ペースト、水中油型および油中水型エマルジョン、エマルジョンカルボワックス(種々の分子量のポリエチレングリコール)、半固体ジェル、ならびにカルボワックスを含有する半固体混合物を含む。Powellら、「Compendium of excipients for parenteral formulations」PDA(1998年)J Pharm Sci Technol52:238〜311頁も参照。
本発明の抗体は、MERS感染症のようなMERSコロナウイルスと関連する疾患、もしくは障害、もしくは状態の処置、および/もしくは予防に、ならびに/またはかかる疾患、障害、もしくは状態と関連する少なくとも1つの症状を改善するのに有用である。1つの実施形態において、本発明の抗体または抗原結合フラグメントは、治療用量にて、MERS感染を有する患者に投与される。
併用療法は、本発明の抗MERS−CoV−S抗体、および本発明の抗体、または本発明の抗体の生物学的に活性なフラグメントと有利に組み合わされる、任意のさらなる治療剤を含む。本発明の抗体は、MERSを処置するために用いられる薬物もしくは療法の1つまたはそれ以上と相乗的に併用される。ある実施形態において、本発明の抗体を、第2の治療剤と併用して、MERSを有する患者におけるウイルス負荷が低減されるか、または感染の症状の1つもしくはそれ以上が改善される。
ある種の実施形態により、1回用量の本発明の抗MERS−CoV−S抗体(または抗MERS−CoV−S抗体、および本明細書において言及される、さらなる治療上活性な剤のいずれかの併用を含む医薬組成物)が、それを必要とする対象に投与される。本発明のある種の実施形態によると、複数回用量の抗MERS−CoV−S抗体(または抗MERS−CoV−S抗体、および本明細書において言及される、さらなる治療上活性な剤のいずれかの併用を含む医薬組成物)は、定義される時間経過に渡り、対象に投与される。本発明のこの態様による方法は、対象に、複数回用量の本発明の抗MERS−CoV−S抗体を連続して投与することを含む。本明細書において用いられる「連続して投与すること」は、それぞれの用量の抗MERS−CoV−S抗体が、対象に、時間における異なる点において、例えば、予め決定された間隔(例えば、時間、日、週、または月)により隔てられた異なる日において投与されることを意味する。本発明は、患者に、単回開始用量の抗MERS−CoV−S抗体、続いて、1つまたはそれ以上の2次用量の抗MERS−CoV−S抗体、場合により、続いて、1つまたはそれ以上の3次用量の抗MERS−CoV−S抗体を連続して投与することを含む方法を含む。
本発明の抗MERS−CoV−S抗体を用いて、例えば、診断の目的のため、試料中のMERS−CoVが検出され、および/または測定される。ある実施形態は、ウイルス感染症のような疾患もしくは障害を検出するためのアッセイにおいて、1つまたはそれ以上の本発明の抗体の使用を考慮する。MERS−CoVについての典型的な診断アッセイは、例えば、患者から得た試料を、本発明の抗MERS−CoV−S抗体と接触させることを含み、ここで、抗MERS−CoV−S抗体は、検出可能な標識もしくはレポーター分子で標識されるか、または患者試料からMERS−CoVを選択的に単離するための捕捉リガンドとして用いられる。あるいは、未標識の抗MERS−CoV−S抗体は、検出可能に標識されたそれ自体である2次抗体と組み合わせた診断適用において用いられる。検出可能な標識またはレポーター分子は、3H、14C、32P、35S、もしくは125Iのようなラジオアイソトープ;フルオレセインイソチオシアネート、もしくはローダミンのような蛍光もしくは化学発光部分;またはアルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ、もしくはルシフェラーゼのような酵素である。試料中のMERS−CoVを検出または測定するために用いられる特異的な典型的アッセイは、酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)、ラジオイムノアッセイ(RIA)、および蛍光活性化細胞分取(FACS)を含む。
ヒト免疫グロブリン重鎖およびカッパー軽鎖可変領域をコードするDNAを含むVELOCIMMUNE(登録商標)マウスに、MERS−CoVスパイクタンパク質に対するヒト抗体を作製した。全長MERS−CoVスパイクタンパク質をコードするDNA構築物、続いて、GenBank受託AFS88936.1(配列番号457)のアミノ酸367〜606の範囲にある精製したスパイクタンパク質のフラグメントを含むブースター用量で、マウスを免疫した。MERS−CoV Sタンパク質(EMC/2012−GenBank JX869059)をコードするコドン最適化cDNA配列をGeneArtにより合成し、標準的発現ベクターにクローニングした。受容体結合ドメイン(RBD)におけるMERS−CoV Sタンパク質変異体をコードするプラスミドを、製造元の指示に従い、QuikChange II(Agilent Technologies)を使用した変異誘発により生成した。
ELISA結合アッセイを行い、MERS−CoVスパイクタンパク質に結合した(上述のハイブリドーマから得た)抗体上清を同定した。C末端におけるヒトIgG1分子のFc部分(MERS RBD−hFc;配列番号458)と共に発現したMERS−CoV−Sの受容体結合ドメインを含む部分(アミノ酸E367〜Y606)を、2μg/mlにて、96ウェルプレート上、PBSバッファー中、一晩、4℃にてコートした。PBS中の0.5%(w/v)のBSAの溶液を用いて、非特異的結合部位を続いて遮断した。ハイブリドーマ上清を、遮断バッファー中1:50希釈し、MERS RBDでコートしたプレートに1時間、室温にて結合させた。洗浄後、HRP結合抗hFcポリクローナル抗体(Jackson Immunochemical)を用いて、結合した抗体を検出した。試料を3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン溶液(TMB;BD Biosciences)で展開して、比色分析反応を生じさせ、次に、1M硫酸で中和し、その後、Victorプレートリーダー(Perkin Elmer)上で450nmにおける吸光度を測定した。結果を図1において示す。450nmにおけるシグナルの強度を用いて、さらなる特徴決定のため抗体を選択した。
表2には、選択した本発明の抗MERS−CoV−S抗体の重鎖および軽鎖可変領域、ならびにCDRのアミノ酸配列識別名を記載する。
Biacore 4000またはBiacore T200機器におけるリアルタイム表面プラズモン共鳴バイオセンサーアッセイを用いて、精製した抗MERS−CoV−S抗体またはハイブリドーマ上清への抗原結合について、結合ならびに解離速度定数(それぞれ、kaおよびkd)、平衡解離定数、ならびに解離半減期(それぞれ、KDおよびt1/2)を決定した。Biacoreセンサー表面を、ポリクローナルウサギ抗マウス抗体(GE、番号BR−1008−38)、またはモノクローナルマウス抗ヒトFc抗体(GE、番号BR−1008−39)のいずれかで誘導体化して、それぞれ、マウスFcまたはヒトFcいずれかと共に発現させた、およそ100〜900RUの抗MERS−CoV−Sモノクローナル抗体を捕捉した。抗MERS−CoV−S抗体への結合について試験したMERS−CoV試薬は、C末端のヒトIgG1 Fcと共に発現した組換えMERS−CoV−S受容体結合ドメイン(MERS RBD−hFc;配列番号458)を含んでいた。Biacore 4000における流速30μL/分、またはBiacore T200における流速50μL/分において、抗MERS−CoV−Sモノクローナル抗体捕捉表面に渡り、200nM〜3.7nMの範囲にある異なる濃度のMERS−CoV試薬を注入した。捕捉したモノクローナル抗体へのMERS−CoV試薬の結合を、3〜5分間モニターし、一方、抗体からのそれらの解離を、HBSTランニングバッファー(0.01M HEPES pH7.4、0.15M NaCl、3mM EDTA、0.05%v/v 界面活性剤P20)において7〜10分間モニターした。25℃において実験を行った。データを処理し、Scrubber 2.0c曲線近似ソフトウェアを用いて1:1結合モデルに近似させることにより、動力学的結合(ka)および解離(kd)速度定数を決定した。次に、動力学的速度定数から、KD(M)=kd/ka、およびt1/2(分)=[ln2/(60*kd)]として、結合解離平衡定数(KD)、ならびに解離半減期(t1/2)を計算した。
材料および方法
偽粒子の生成
MERSスパイクタンパク質を発現するプラスミド構築物、HIV gag−pol、およびホタルルシフェラーゼをコードするHIVプロウイルスベクターの混合物を293T細胞に同時トランスフェクションすることにより、MERS偽粒子(MERSpp;ウイルス様粒子−VLPとも呼ばれる)を生成した。トランスフェクションの72時間後に、MERSppを含有する上清を回収し、遠心分離を用いて清澄化し、濃縮し、等分し、−80℃において凍結した。MERS−CoVスパイクタンパク質を発現するプラスミドをVesicular Stomatitis Virus Glycoprotein(VSVg)をコードするプラスミドで置き換えることにより、対照偽粒子を生成した。
抗体の希釈液をMERSppと1時間室温にてインキュベーションした。1%EDTAを用いて、完全DMEM培地中のHuh7細胞を剥離し、洗浄し、抗体/MERSpp混合物と72時間インキュベーションした。BrightGlo(登録商標)ルシフェラーゼアッセイ(Promega、San Luis Obispo、CA、米国)でのルシフェラーゼ検出により、感染有効性を定量し、Victor(登録商標)X3プレートリーダー(Perkin Elmer、Waltham、MA、米国)において光産生について読み取った。
1ウェル当たり1×104ベロE6細胞を、実験の1日前に96ウェルプレートに播種した。500 TCID50のMERS−CoV EMC/2012株を、通常のベロE6成長培地100μl中の所定量の抗体と混合し、室温にて30分間インキュベーションし、次に、混合物をベロE6細胞に加えた。感染の2日後において、製造元の指示に従い、CellTiter−Glo(登録商標)Luminescent Cell Viability Assay (Promega)を用いて、細胞死を評価した。Spectramax Mプレートリーダー(Molecular Devices)にて、発光を読み取った。データを、偽感染対照のパーセントとして表した。
抗MERS−CoV−S抗体によるMERS−CoVの中和
開始実験において、MERS感染性の中和について、別個の独立したハイブリドーマからもたらされた抗MERS−CoV−S抗体を試験した。図1において示す通り、22種のうち12種の細胞の抗MERS−CoV−Sハイブリドーマ抗体は、MERS感染性の90%超を、68.4pM〜3.58nMの範囲にあるIC50で阻害するか、または中和した。
RNAウイルスは、低フィデリティーゲノム複製機構をコードするため、それらの宿主環境に容易に適応することが可能となる(Malpicaら2002年;Genetics 162:1505〜1511頁)。しかしながら、MERS−CoVのようなコロナウイルスは、3’−から−5’のエクソ−リボヌクレアーゼ活性を有する非構造タンパク質をコードし、これは、それらの複製中にプルーフリーディング機能をもたらし、変異性カタストロフを導くことなくゲノムのコード能力を非常に増大する(Cottonら2013年;Lancet doi:10.1016/S0140−6736(13)61887−5)。それにも関わらず、MERS−CoV流行の最初の2年の間に試料採取した複数の臨床上の単離物の配列決定により、ウイルスのMERS−CoV Sタンパク質が、進化することが明らかになった(Cottonら2014年;MBio 5 doi:10.1128/mBio.01062−13)。この研究のため、MERS−CoV臨床上の単離物の38種のNCBI寄託配列を整列させ、第1の単離した株、EMC/2012の配列と比較した。スクリーニングアッセイの設計に基づき、本発明の抗体は、MERS−CoV Sタンパク質のRBD内に結合すると予測し、故に、配列の比較が、アミノ酸367〜606に特異的に焦点を合わせた。配列決定した臨床上の単離物と原型EMC/2012配列、A431P、S457G、S460F、A482V、L506F、D509GおよびV534A間で異なる、7種の異なるアミノ酸を同定した(表8)。
本発明の選択した抗体の力価を、従前に単離したモノクローナル抗体と比較した。3つの群を、in vitro抗体単離方法、すなわち、ファージディスプレイ(Tangら2014年、PNAS doi:10.1073/pnas.1402074111;およびYingら2014年、J. Virol. doi:10.1128/JVI.00912−14)、ならびに酵母ディスプレイ(Jiangら2014年、Sci.Transl.Med. doi:10.1126/scitranslmed.3008140)を用いて、MERS−CoV Sタンパク質に結合し、ウイルス侵入を遮断する抗体を選択した。この研究のため、MERS−CoVを中和し、多様なエピトープに結合することを報告した、公開した可変ドメイン配列を有する3種の抗体のパネルを選択した。抗体3B12(Tangら2014年、PNAS doi:10.1073/pnas.1402074111)、MERS−4およびMERS−27(Jiangら2014年、Sci. Transl. Med. doi:10.1126/scitranslmed.3008140)についての配列を、ヒトIgG1定常ドメインにクローニングし、次に、選択した本発明の抗体と同様に発現させ、精製した。原型EMC/2012配列、および上述の全ての臨床上の単離物で生成した偽粒子を用いて、全ての抗体の中和有効性を試験した。
vitro生化学特性に専ら基づき単離したいくつかの抗体と比較して、改良された力価で中和することができることを示唆する。
Octet(登録商標)RED96 biosensor(Pall ForteBio Corp)上でのリアルタイム、ラベルフリーバイオレイヤーインターフェロメトリーアッセイを用いて、MERS−CoV S抗体間の結合競合を決定した。25℃にて、HBS−P Octetバッファー(10mM HEPES、150mM NaCl、および0.05%v/v 界面活性剤Tween−20、pH7.4、1mg/mL BSA)中、速度1000rpmでプレート振盪しながら、全実験を行った。抗体が、ヒトFcタグに融合した組換え発現させたMERSスパイクタンパク質受容体結合ドメイン(MERS RBD−hFc;配列番号458)上のそれらのそれぞれのエピトープへの結合について互いに競合することができるかどうかを評価するために、プレミックスアッセイフォーマットを採用し、50nM MERS−CoV−RBD−mFcを500nM 異なる抗MERSモノクローナル抗体(以後、mAb−2として言及する)と少なくとも2時間プレインキュベーション後、結合競合アッセイを行った。非特異的なモノクローナル抗体を、アイソタイプ対照としてMERS−RBS.mFcとインキュベーションした。抗hFcポリクローナル抗体(Pall ForteBio Corp.、カタログ番号18−5060)でコートしたOctetバイオセンサーを、50μg/mL溶液を含有するウェルに4分間まず浸し、およそ2nm 抗MERS抗体(以後、mAb−1と呼ぶ)を捕捉した。捕捉工程後、次に、Octetバイオセンサーを100μg/mL非特異的完全ヒトモノクローナル抗体を含有するウェルに浸すことにより、未結合の抗hFcポリクローナル抗体を飽和させた。最後に、バイオセンサーを、50nM MERS−RBD−mFcおよび500nM mAb−2のプレミックス試料を含有するウェルに4分間浸漬した。実験の全工程間で、バイオセンサーをHBS−P Octetバッファーにおいて洗浄した。実験の経過中、リアルタイム結合応答をモニターし、結合応答を、全工程の終わりに測定した。MERS−RBD−mFcおよびmAb−2のプレコンプレックスへのmAb−1結合の応答を比較し、異なる抗体MERSモノクローナル抗体の競合的/非競合的挙動を決定した。
材料および方法
ヒトDPP4ノックインマウスの作製
MERSスパイクタンパク質は、マウスDPP4と相互作用しないので、VelociGene(登録商標)テクノロジー(Valenzuelaら2003年、Nat. Biotechnol.21:652〜659頁)を用いて、MERS−CoV感染症のヒト化モデルを作製した。簡単に言うと、79kbマウスDpp4対応物配列を置き換えるための3’UTRを含むエクソン2〜26由来の82kbヒトDPP4ゲノムDNAを含有する、巨大な標的ベクター(LTVEC)を構築した。Blastを用いて、Dpp4遺伝子を含有するヒトBAC RP11−68L22およびマウスBAC RP23−362N15を同定し、イルミナベンチトップシーケンサーMiSeqを用いて、配列を確認した。LTVECを、F1ハイブリッド(129S6SvEvTac/C57BL6NTac)ES細胞にエレクトロポレーションした。エレクトロポレーションの10日後に、G418耐性コロニーを拾い、アレルの消失アッセイにより、正しいターゲッティングについてスクリーニングした。VelociMouse(登録商標)方法を用い(Poueymirouら2007年;Nature Biotechnology25:91〜99頁)、ここで、ターゲッティングされたES細胞を、非緻密8細胞期Swiss Webster胚に注入し、ヒトDPP4遺伝子アレルを有するES細胞からもたらされたF0世代のマウスを作製した。NIHのCare and Use of Laboratory Animalsにおける推奨に厳密に従い、全ての動物の手法を行った。Regeneron Pharmaceuticals Institutional Animal Care and Use Committee(IACUC)により、プロトコールは承認された。この方法は、2014年9月17日付けで出願された米国特許出願第62/051,626号において詳細に記載され、全体として本明細書に組み入れられる。遺伝子導入マウスは、マウスゲノムにおけるhDPP4遺伝子の無作為挿入によっても作製した。
実験に依存して、感染の1日前または感染の1日後に、指定量の抗体または対照として無菌食塩水を、6〜8週齢のヒト化DPP4マウスに腹腔内(i.p.)注射した。鼻腔内接種に先立ち、キシラジン(0.38mg/マウス;Lloyd laboratories)およびケタミン(1.3mg/マウス;Henry Schein animal health)の混合物を用い、腹腔内注射によりマウスを麻酔し、PBS中に希釈して、マウス1匹当たり総量50μlを作製した。麻酔したら、総接種量50μlについてPBSまたはPBSに希釈した2×105pfu MERS−CoV(Jordan)のいずれかをマウスに鼻腔内接種した。実験中、感染前および実験の毎日、マウスの体重を測定し、MERS−CoVにより誘導される体重減少を評価した。致死用量のイソフルラン(Butler Animal Health Supply)を用いて、感染の2または4日後において、マウスを安楽死させた。MERS−CoV複製物のさらなる分析および病理のため、肺を回収した。
製造元の指示に従い、Magnalyzer(Roche)を用いて、Trizol(登録商標)(Life Technologies Inc)1mlにおけるホモジネートにより、マウスの肺からRNAを抽出した。エンベロープ遺伝子(UpE)のゲノム上流の領域;ヌクレオカプシドメッセンジャーRNAのリーダー配列(リーダープライマー)を標的とするLife Technologiesから得た2本鎖のプライマーを用いて、製造元の指示に従い、Taqman(登録商標)Fast virus one−step master mix(Applied Biosystems)を用いて、MERS−CoV RNAのレベルを評価し、マウス18S rRNA(内在性対照)と比較した。Microamp(登録商標)fast optical reaction plates(Applied Biosystems)におけるqPCR反応物を、7500 fast DX real−time PCR instrument(Applied Biosystems)上で読み取り、未感染の対照を1に設定した、デルタCt方法を用いて、データを分析した。アイソタイプ一致対照抗体で処置した感染マウスにおいて検出したRNAのレベルに対する、検出したパーセントMERS−CoV RNAを表した。
Magnalyzer(Roche)を用いて、PBS1ml中、ガラスビーズで60秒間6000rpmにて、マウス肺をホモジネートした。次に、10分間、10,000rpmにてホモジネートを遠心分離し、ベロE6細胞上でのプラークアッセイにより、上清を分析して、処置後に残存するウイルスのレベルを定量した。プラークを出現させるため、3日間プレートをそのままにしたことを除き、従前に記載された通り、プラークアッセイを行った。
固定し、パラフィン包埋した組織の5μmの切片から、組織学スライドを調製し、ヘマトキシリンおよびエオジンで染色した。光顕微鏡により視野を調べ、分析した。間質性、細気管支周囲および血管周囲の炎症の程度を、0〜5にスコア化した。それぞれの実験群について、スライドを盲検化し、0〜5にスコア化し、表にして、株、時間ポイント、および処置を比較した。細気管支上皮および肺胞損傷の存在、胸膜の変化、ならびに気管支血管周囲の炎症の程度のような他の組織学的特性も、テキストにおけるそれぞれの群について述べた。それぞれのマウスについての全体的な炎症スコアを、それぞれの群について平均化し、それぞれの群および時間ポイントにおける全てのマウスの平均スコアとして提示した。
MERS−CoV感染症に感受性である、DPP4についてのヒト化マウス
抗ウイルス分子のIn vivo試験は、MERS−CoV感染症に感受性である、小動物モデルを必要とする。マウスはMERS−CoV感染症に感受性でない。マウスおよびヒトDPP4の配列の配列比較は、MERS−CoV Sタンパク質とその受容体の間の接触部位として従前に同定したアミノ酸が、2つの種の間で異なることを明らかにした。加えて、マウス細胞におけるヒトDPP4の発現は、MERSpp侵入およびMERS−CoV伝播を可能にするが、これは、ウイルスの侵入が、マウス細胞の感染における律速段階であることを示しており、マウスDPP4およびMERS−CoV糖タンパク質間での相互作用の欠如が、種についてのトロピズムをin vitroで定義する。
ヒト化DPP4マウスが、MERS−CoVに感受性であったことを確認し、このモデルを用いて、2つのモノクローナル抗体の活性をin vivoで評価した。1×105pfu MERS−CoV(Jordan株)での鼻腔内感染の24時間前に、H1H15211PもしくはH1H15277Nのいずれか200μg、20μgもしくは2μg、またはhIgG1アイソタイプ対照抗体200μgをマウスにi.p.注射した。図7および8において示す通り、抗体の両方が、アイソタイプ対照抗体と比較して、1回のマウス用量当たり200μgにて2logを越えて、肺におけるMERS−CoV特異的RNAレベルを有意に低減することができた。H1H15211Pは用量20μgにおいて、MERS−CoV RNAレベルを低減する上で、同一用量におけるH1H15277Nと比較してより有効であった。いずれの抗体も投薬量2μgは、ウイルスRNAレベルを低減する上で、アイソタイプ対照で処置したマウスと比較して無効であった。MERS−CoVタイターを肺において分析したら(図9)、H1H15211Pの用量200μgおよび20μgの両方が、ウイルスレベルを低減して、アッセイにおける検出のレベルまで近づける(2×103pfu/ml)ことが見出された。H1H15277Nは、H1H15211Pと、用量200μgにおいて同等に効率的であり、一方、20μgおよび2μgは、ウイルスの阻害の用量依存的阻害を示す。これらのデータは、H1H15211PおよびH1H15277Nが、MERS−CoV感染症をin vivoで有効に遮断することを示唆する。
感染後にMERS−CoV複製および肺病理を阻害する能力が、可能性のある治療剤における所望の形質である。H1H15211Pが,効果を治療上有するかどうかを評価するために、huDPP4マウスをMERS−CoVで感染させ、次に24時間後に、hIgGアイソタイプ対照500μg、またはH1H15211P500μgもしくは200μgをi.p.注射した。感染の4日後に、マウスを安楽死させ、ウイルスRNA、ウイルスタイター、および肺病理について、マウスの肺を分析した。H1H15211Pの用量500μgおよび200μgの両方がマウスの肺においてウイルスRNAレベルを、対照抗体で処置したマウスと比較して約10倍低減することができた(図11および12)。同一マウスの肺タイターは肺におけるウイルスレベルの有意な低減を示し、感染の4日後において2log超低減していた(図13)。これらのデータは、H1H15211Pが、ウイルス接種の24時間後に投与したときでさえ、ウイルス複製を優位に阻害することを示す。
Claims (25)
- 中東呼吸器症候群コロナウイルス(MERS−CoV)スパイクタンパク質に特異的に結合する、単離された組換え抗体またはその抗原結合フラグメントであって、前記抗体またはその抗原結合フラグメントは、
配列番号66/74と少なくとも90%の配列同一性を有する重鎖可変領域(HCVR)/軽鎖可変領域(LCVR)アミノ酸配列対を含み、ここで、前記HCVR/LCVRアミノ酸配列対は、配列番号66/74のHCVR/LCVRアミノ酸配列対に含有される3つの重鎖相補性決定領域(CDR)(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)ならびに3つの軽鎖CDR(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)を含む、
前記抗体またはその抗原結合フラグメント。 - (a)完全ヒトモノクローナル抗体であるか;
(b)配列番号457のアミノ酸残基367〜606から選択される、MERS−CoVスパイクタンパク質の受容体結合ドメインにおける1個またはそれ以上のアミノ酸残基と相互作用するか;
(c)表面プラズモン共鳴アッセイにおいて測定される、18.5nM未満の解離定数(KD)を有するMERS−CoVスパイクタンパク質に結合するか;
(d)遮断ELISAアッセイにおいて測定される、ジペプチジルペプチダーゼ4(DPP4)へのMERS−CoVスパイクタンパク質の結合を90%超遮断するか;
(e)ウイルス様粒子(VLP)中和アッセイにおいて測定される、ヒト宿主細胞のMERS−CoV感染性を、4nM未満のIC50で90%超中和するか;または
(f)MERS−CoV感染性を中和し、ここで、該MERS−CoVは、EMC/2012、Jordan−N3/2012、England−Qatar/2012、Al−Hasa_1_2013、Al−Hasa_2_2013、Al−Hasa_3_2013、Al−Hasa_4_2013、Al−Hasa_12、Al−Hasa_15、Al−Hasa_16、Al−Hasa_17、Al−Hasa_18、Al−Hasa_19、Al−Hasa_21、Al−hasa_25、Bisha_1、Buraidah_1、England1、Hafr−Al−batin_1、Hafr−Al−Ba
tin_2、Hafr−Al−Batin_6、Jeddah_1、KFU−HKU1、KFU−HKU13、Munich、Qatar3、Qatar4、Riyadh_1、Riyadh_2、Riyadh_3、Riyadh_4、Riyadh_5、Riyadh_9、Riyadh_14、Taif_1、UAE、およびWadi−Ad−Dawasirからなる群より選択されるウイルスの単離物を含む、
請求項1に記載の抗体またはその抗原結合フラグメント。 - 配列番号68−70−72−76−78−80の6つのCDRのセット(HCDR1−HCDR2−HCDR3−LCDR1−LCDR2−LCDR3)を含む、請求項1または2に記載の抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 配列番号66のアミノ酸配列を含むHCVRを含む、請求項3に記載の抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 配列番号74のアミノ酸配列を含むLCVRを含む、請求項3または4に記載の抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 配列番号66/74のHCVR/LCVRアミノ酸配列対を含む、請求項1〜5のいずれか1項に記載の抗体または抗原結合フラグメント。
- 請求項1〜6のいずれか1項に記載の単離された抗体またはその抗原結合フラグメントであって、DPP4へのMERS−CoV−S結合を遮断する前記抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 請求項7に記載の単離された完全ヒトモノクローナル抗体またはその抗原結合フラグメントであって、配列番号457のアミノ酸残基367〜606を含むアミノ酸配列と相互作用する前記完全ヒトモノクローナル抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 請求項1〜8のいずれか1項に記載の単離された組換えヒトモノクローナル抗体またはその抗原結合フラグメントであって、MERS−CoVスパイクタンパク質に特異的に結合し、EMC/2012、Jordan−N3/2012、England−Qatar/2012、Al−Hasa_1_2013、Al−Hasa_2_2013、Al−Hasa_3_2013、Al−Hasa_4_2013、Al−Hasa_12、Al−Hasa_15、Al−Hasa_16、Al−Hasa_17、Al−Hasa_18、Al−Hasa_19、Al−Hasa_21、Al−hasa_25、Bisha_1、Buraidah_1、England1、Hafr−Al−batin_1、Hafr−Al−Batin_2、Hafr−Al−Batin_6、Jeddah_1、KFU−HKU1、KFU−HKU13、Munich、Qatar3、Qatar4、Riyadh_1、Riyadh_2、Riyadh_3、Riyadh_4、Riyadh_5、Riyadh_9、Riyadh_14、Taif_1、UAE、およびWadi−Ad−Dawasirからなる群より選択されるMERS−CoV単離物の該スパイクタンパク質と相互作用する前記組換えヒトモノクローナル抗体またはその抗原結合フラグメント。
- ヒト細胞上のDPP4へのMERS−CoVの結合を遮断する、請求項9に記載の抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 宿主細胞へのMERS−CoVの侵入を防ぐ、請求項1〜10のいずれか1項に記載の抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 多特異性抗原結合分子である、請求項1〜11のいずれか1項に記載の抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 請求項1〜12のいずれか1項に記載の単離された抗体またはその抗原結合フラグメント、および薬学的に許容し得る担体もしくは希釈剤を含む医薬組成物。
- 請求項13に記載の医薬組成物であって、
(a)請求項1〜12のいずれか1項に記載の第1の抗体またはその抗原結合フラグメント;
(b)第2のエピトープにおいてMERS−CoVスパイクタンパク質に結合する第2の抗体またはその抗原結合フラグメント;および
(c)薬学的に許容し得る担体または希釈剤
を含み、
ここで、第1の抗体またはその抗原結合フラグメントは、MERS−CoVスパイクタンパク質への結合について第2の抗体またはその抗原結合フラグメントと交差競合しない、前記医薬組成物。 - 少なくとも第1の抗体もしくはその抗原結合フラグメント、または第2の抗体もしくはその抗原結合フラグメントは、DPP4へのMERS−CoV−S結合を遮断する、請求項14に記載の医薬組成物。
- 第1および第2のエピトープは、MERS−CoVスパイクタンパク質の受容体結合ドメインに存在し、かつ別個であり、オーバーラップしない、請求項14または15に記載の医薬組成物。
- (a)第1の抗体またはその抗原結合フラグメントは、
(i)配列番号68−70−72−76−78−80の6つのCDR(HCDR1−HCDR2−HCDR3−LCDR1−LCDR2−LCDR3);または
(ii)配列番号66/74のHCVR/LCVRアミノ酸配列対またはそれと少なくとも90%の配列同一性を有するHCVR/LCVRアミノ酸配列対;を含み、そして、
(b)第2の抗体またはその抗原結合フラグメントは、
(i)配列番号220−222−224−228−230−232の6つのCDR(HCDR1−HCDR2−HCDR3−LCDR1−LCDR2−LCDR3);または
(ii)配列番号218/226のHCVR/LCVRアミノ酸配列対またはそれと少なくとも90%の配列同一性を有するHCVR/LCVRアミノ酸配列対;を含む、請求項14〜16のいずれか1項に記載の医薬組成物。 - MERS−CoV感染症の少なくとも1つの症状または徴候を予防するか、処置するか、または改善する方法において使用するための請求項1〜12のいずれか1項に記載の抗体もしくはその抗原結合フラグメント、もしくは請求項13〜17のいずれか1項に記載の医薬組成物であって、前記方法は、前記医薬組成物または前記抗体もしくはその抗原結合フラグメントを、それを必要とする対象に投与することを含む、前記医薬組成物または前記抗体もしくはその抗原結合フラグメント。
- 少なくとも1つの症状または徴候は、肺における炎症、肺胞の損傷、ウイルス負荷、発熱、咳、息切れ、肺炎、下痢、臓器不全、敗血性ショックおよび死からなる群より選択される、請求項18に記載の医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメント。
- 医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメントは、それを必要とする対象に予防的もしくは治療的に投与される、請求項18または19に記載の医薬組成物または抗
体もしくはその抗原結合フラグメント。 - 医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメントは、免疫不全状態の個人、年齢が65歳より高い者、中東にあるエリアへの旅行者、医療労働者、医学的問題の既往歴を有する人、ラクダもしくはコウモリと職業上もしくは娯楽上接触する人、ならびにMERS感染症を有することが確認されたもしくは疑われる人と接触する人からなる群より選択される対象に予防的に投与される、請求項20に記載の医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメント。
- 医学的問題の既往歴が、心臓の問題または糖尿病の既往歴である、請求項21に記載の医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメント。
- 医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメントは、第2の治療剤と併用して投与される、請求項18〜22のいずれか1項に記載の医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメント。
- 第2の治療剤は、抗炎症薬(コルチコステロイド、および非ステロイド系抗炎症薬のような)、抗ウイルス薬、MERS−CoVスパイクタンパク質に対する異なる抗体、MERS−CoVのためのワクチン、抗生物質、抗酸化剤のような栄養補助剤、ならびにMERS感染症を処置するための任意の他の対症療法からなる群より選択される、請求項23に記載の医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメント。
- 医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメントは、皮下、静脈内、皮内、腹腔内、経口、筋肉内もしくは頭蓋内投与される、請求項18〜24のいずれか1項に記載の医薬組成物または抗体もしくはその抗原結合フラグメント。
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