JP6552636B2 - 血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメイン - Google Patents
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Description
本出願は、欧州特許庁に2015年4月2日出願の欧州特許出願公開第15162502号の利益及び優先権を主張する。本出願はまた、欧州特許庁に2015年4月2日出願の欧州特許出願公開第15162511号の利益及び優先権を主張する。欧州特許出願公開第15162502号及び同第15162511号の内容は、全ての表、図、及び特許請求の範囲を含むその全容が、全て参照により本明細書に組み込まれ、並びに、特許協力条約の規則4.18に従った、本明細書には含まれない、特許協力条約の規則20.5(a)に言及されている明細書、特許請求の範囲若しくは図面の任意の要素又は一部の組み込みも含まれる。
改善された保存安定性特性を呈する、新規の、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインが提供される。血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを少なくとも2つ含む、組み換え結合タンパク質もまた提供され、このタンパク質は、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つのみ含む組み換え結合タンパク質に比べ、改善された薬物動態特性を呈する。特に、肝細胞増殖因子(HGF)に対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを少なくとも1つ含み、血管内皮増殖因子A(VEGF−A)に対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを少なくとも1つ含み、かつ血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを少なくとも2つ含む組み換え結合タンパク質が提供される。更に、このような設計アンキリンリピートドメイン及び/又は組み換え結合タンパク質をコードする核酸、このような設計アンキリンリピートドメイン、組み換え結合タンパク質又は核酸を含む医薬組成物、並びにこのような設計アンキリンリピートドメイン、組み換え結合タンパク質、核酸、又は医薬組成物の疾患の治療における使用が提供される。
化学物質はSigma−Aldrich(Switzerland)より購入した。オリゴヌクレオチドはMicrosynth(Switzerland)より購入した。特に明記しない限り、DNAポリメラーゼ、制限酵素及び緩衝液は、New England Biolabs(USA)又はThermo Fisher Scientific Fermentas(Lithuania)より購入した。クローニング及びタンパク質産生株は、大腸菌XL1−blue(Stratagene(USA))又はBL21(Novagen(USA))であった。組み換えVEGF−A(ヒト、マウス、ラット)、VEGF−C、PDGF−AB、及びHGF(ヒト、カニクイザル、マウス)は、R&D Systems(Biotechne(Minneapolis,USA))、Peprotech(Rocky Hill,USA)、Sino Biological(Beijing,China)、ReliaTech(Wolfenbuettel,Germany)から入手した、又は、標準的な手順に従い、チャイニーズハムスター卵巣細胞若しくはピキアパストリスで産生し、精製した。異なる種の血清アルブミンは、Sigma−Aldrich,Innovative Research(Novi,USA)、CSL Behring(Switzerland)から入手した、又は、標準的な方法を用い、動物から直接採取した。ビオチン化したVEGF−A又はHGFは、標準的なビオチン化試薬及び方法(Thermo Fisher Scientific Inc.(USA))を使用し、ビオチン部分をタンパク質の第一級アミンにカップリングすることにより、化学的に得た。抗体は、Thermo Fisher Scientific若しくはQIAgen(Germany)より入手した、又は、当業者に周知の手順である、標準的な免疫付与及びハイブリドーマ手順をマウス若しくはウサギにおいて使用して産生させた。細胞培養試薬は、Lonza(Switzerland)、Roche(Switzerland)、Thermo Fisher Scientific、及びPromocell(Germany)より購入した。
特に明記しない限り、方法は、記載の手順(Sambrook J.,Fritsch E.F.及びManiatis T.,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory 1989,New York)に従い、実施する。
設計アンキリンリピートタンパク質ライブラリーを作製する方法、設計アンキリンリピートタンパク質ライブラリーの例、及び設計アンキリンリピートタンパク質を設計アンキリンリピートタンパク質のライブラリーから選択する方法は、記載されている(国際公開第2002/020565号、同第2010/060748号、同第2012/069654号、同第2012/069655号、同第2014/001442号、Binz et al.2004,loc.cit.)。
リボソームディスプレイ(Binz et al.,2004,loc.cit.)を用い、VEGF−A、HGF、又は血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを、コンビナトリアルライブラリーから、VEGF−Aに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインの作製については国際公開第2010/060748号に記載の方法により、また、HGFに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインの作製については同第2014/191574号に記載の方法により、また、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインの作製については同第2012/069654号に記載の方法により、選択した。選択されたクローンの、特異的な標的(それぞれVEGF−A、HGF、又は血清アルブミン)及び非特異的な標的(例えばMBP、大腸菌マルトース結合タンパク質)への結合を粗抽出ELISAによって評価し、それぞれ、VEGF−A、HGF、又は血清アルブミンに対する結合特異性を有する、何百もの設計アンキリンリピートドメインが、それぞれの標的の各選択において、首尾よく選択されたことが示された。例えば、配列番号12〜22の設計アンキリンリピートドメインは、VEGF−Aに対する結合特異性を有するアンキリンリピートドメインのアミノ酸配列を構成し、配列番号23〜37の設計アンキリンリピートドメインは、HGFに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインのアミノ酸配列を構成し、配列番号40〜56の設計アンキリンリピートドメインは、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインのアミノ酸配列を構成する。
SPRは、ProteOn装置(BioRad)を使用して測定し、測定は、当業者に既知の標準的な手順に従って実施した。選択されたタンパク質について測定したKd値を、表1〜3に列挙する。
それぞれVEGF−A、HGF、又は血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインの、競合アッセイによる特徴づけ。このようなアッセイは、当業者に周知である。VEGF−Aに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインについて、製造業者(VEGF−A QuantikineキットDVE00、R&D Systems)に従い、定量的サンドイッチ酵素免疫測定法の手法を使用した。VEGF−Aに特異的なモノクローナル抗体を、マイクロプレート上にプレコートした。VEGF−A標準物質、及びVEGF−A(20pM)と異なる濃度のタンパク質#18、#19、又は#20との混合物をウェルに添加し、存在する全ての遊離のVEGF−A(すなわち、設計アンキリンリピートドメインに結合していない)を、固定化された抗体によって結合させる。全ての非結合の物質を洗い流した後、VEGF−Aに特異的な酵素結合ポリクローナル抗体をウェルに加える。洗浄して全ての非結合の抗体−酵素試薬を除去した後、基質溶液をウェルに加えると、最初の工程で結合されたVEGF−Aの量に比例して発色する。発色を停止し、発色の強度を測定する。このアッセイにおいて、試験した設計アンキリンリピートタンパク質は、高いVEGF−A阻害効力を示した。IC50値は、Graph Pad Prismソフトウェア及び当業者に既知の標準的な手順を使用し、上記のように得られた滴定曲線から算出した。HGFに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインについては、cMet受容体競合アッセイを実施した。そのために、PBS中の5nMのヒトcMet受容体を、Maxisorpプレートに4℃で終夜固定化した。0.05% TWEEN 20を含むPBSで洗浄した後、0.05% TWEEN 20及び0.25%カゼインを含むPBSを使用し、室温でプレートを2時間、300rpmで振とうしてブロックした。0.05% TWEEN 20を含むPBS中で、一定濃度5nMのヒトHGFを、1000nM〜1pMのタンパク質#23、#26、#28、及び#29(それぞれ1:4の希釈系列)と、希釈プレート上で30分間室温でプレインキュベートした。ELISAプレートを0.05% TWEENを含むPBSで洗浄した後、プレインキュベートした試料をELISAプレートに移し、プレートを300rpmで振とうし、室温で2時間インキュベートした。0.25% TWEENを含むPBSで洗浄した後、200ng/mLの抗ヒトHGF抗体を、室温で1時間、300rpmで振とうして加えた。0.05% TWEENを含むPBSで洗浄した後、100ng/mLのHRP複合ポリクローナル抗HGF種抗体を、室温で30分間、300rpmで振とうして加えた。検出には、1:3に希釈したBMブルーPOD(Roche)を使用した。呈色反応を15分後、1M H2SO4を加えて停止した。読み取りは、A620を参照波長として使用し、A450で行った。
設計アンキリンリピートドメイン又は組み換え結合タンパク質をコードするDNAは、当業者に周知の遺伝学的方法によって作製した。配列番号58〜133のアミノ酸配列の群から選択され、更に配列番号1若しくはアミノ酸GSをN末端に有する組み換え結合タンパク質、又は配列番号134〜179のアミノ酸配列の群から選択された組み換え結合タンパク質、又は配列番号10〜57のアミノ酸配列の群から選択され、更に配列番号1若しくはアミノ酸GSをN末端に有する設計アンキリンリピートドメインは、Qiagen(Germany)のpQE発現系を使用し、標準的手法を用いて、大腸菌の細胞質中で発現した。アミノ酸GSがN末端にある場合、発現ベクターによって更にコードされたMet残基は、小さなGly残基(すなわち、配列番号134〜179の位置1のアミノ酸)が開始Metに後続するため、大腸菌の細胞質中で、発現されたポリペプチドから、効率的に切断された。フレンチプレスを使用して細胞を溶解し、当業者に周知の標準的なクロマトグラフィーの手法を使用し、タンパク質を粗細胞抽出物からほぼ均質な状態に精製した。
マウス薬物動態試験のため、実施例4に記載のように調製したタンパク質#57、#62、#63、#64、#68、#73、#74、#82、#83、#97、#109、及び#110(配列番号57、62、63、64、68、73、74、82、83、97、109、及び110に対応し、更に配列番号1をN末端に有するタンパク質)を、記載(Zahnd,C.,Kawe,M.,Stumpp,M.T.,de Pasquale,C.,Tamaskovic,R.,Nagy−Davidescu,G.,Dreier,B.,Schibli,R.,Binz,H.K.,Waibel,R.,Plueckthun,A.,Cancer Res.70,1595〜1605,2010)のように放射活性物質で標識し、100μL中10μgで、単回の静脈内ボーラス注入として、メスのBALB/cマウスの尾静脈にそれぞれ投与した。各マウスから血清試料を様々な時点で採取し、蓄積された放射能を、γシンチレーションカウンターを使用して測定した。
カニクイザルの薬物動態試験のため、実施例4に記載のように調製したタンパク質#57、#62、及び#97(配列番号57、62、及び97に対応し、更に配列番号1をN末端に有するタンパク質)及びタンパク質#134(配列番号134に対応するタンパク質)を、静脈内注入により30分間、目標用量濃度0.5〜100mg/kgで、カニクイザルに投与した。血液試料は、投与前と、更に選択された時点、例えば、注入の終了後(すなわち注入後)5分、10分、0.5時間、1時間、2時間、4時間、8時間、12時間、24時間、48時間、72時間、96時間、120時間及び168時間に採取した。血液試料を室温に放置し、遠心分離して血清を生成させた後、分析まで−80℃で保存した。薬物動態パラメータは、当業者に周知の手順を使用して測定した。タンパク質#57、#62、#97及び#134の血清中濃度は、サンドイッチELISAにより、ウサギモノクローナル抗設計アンキリンリピートドメイン抗体を捕捉試薬として、マウスモノクローナル抗設計アンキリンリピートドメイン抗体を検出試薬として使用し、標準曲線を使用して測定した。薬物動態パラメータは、Phoenix WinNonLin(Certara(Princeton,USA))又はGraphPadPrism(GraphPad Software(La Jolla,USA))等の標準的なソフトフェア及び非コンパートメント解析等の標準的な解析を使用して測定した。得られた薬物動態プロファイルを図4に示す。血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを2つ含むタンパク質は、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つのみ含む比較用の構造体に比べ、改善された薬物動態特性を一貫して呈した。例えば、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメイン(配列番号51)を1つ含むタンパク質#57(0.5mg/kg、27.7nmol/kg)を、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを2つ(PTリッチポリペプチドリンカーによって結合された2回分の配列番号51)含むタンパク質であるタンパク質#62(1.04mg/kg、34.5nmol/kg)と比較することにより、結果は、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインをタンパク質中に2つ有することにより、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つのみ含むタンパク質に比べ、曝露が上昇し(2138d・nmol/L対4676d・nmol/L、すなわち7日目までの計算で+119%)、クリアランスが低下し(0.0108L/(d・kg)対0.0031L/(d・kg)、すなわち−71%)、終末相半減期が改善する(4.57d対9.00d、すなわち1日目〜7日目の計算で+97%)ことを示す(図4a)。更に、注入後10分の測定濃度に規準化した注入量の割合は、タンパク質#57をタンパク質#62と比較すると、4日目(23.39%対57.72%、+148%)、5日目(19.00%対48.41%、+155%)、及び6日目(18.5%対51.94%、+175%)に増加する。カニクイザルにおける更なる例として、タンパク質#134(実施例4に記載のように作製された、配列番号134に対応するタンパク質)を異なる投与量で、それぞれ10頭(各投与量につきオス5頭、メス5頭)において試験し、終末相半減期を、WinNonLinを使用し、7日目までの濃度値を考慮して評価した。タンパク質#134は、カニクイザルに1mg/kgで投与したとき、平均終末相半減期4.0日(95時間)(1mg/kgで終末相半減期2.7日(65時間)を呈したタンパク質#97に比べ、+46%)、10mg/kgで投与したとき5.3日(127時間)、また、100mg/kgで投与したとき5.8日(139時間)を呈した。タンパク質#134のカニクイザルにおける薬物動態プロファイルを、タンパク質#97と比較して図4bに示す。実施例5と同様に、これらの結果は、驚くべきことに、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを、1つではなく2つ、組み換え結合タンパク質中に使用することにより、薬物動態特性が改善することを示している。これらの結果は、以下のように考察される。
タンパク質#134(配列番号134からなり、更にN末端にGSを有する組み換え結合タンパク質)を、実施例4に記載のように調製した。タンパク質#134、精製ヒト血清アルブミン(HSA)、及びタンパク質#134/HSA混合物(1:2の化学量論比)を、多角度静的光散乱に連結したサイズ排除クロマトグラフィー(SEC−MALS)によって分析した。SEC−MALSは、表6のタンパク質を30μM(タンパク質#134)又は60μM(HSA)の濃度で使用し、Wyatt(USA)MALS及び屈折率検出器に連結したAgilent 1200システム(Life Technologies,USA)において実施した(流量:0.6mL/分;注入量:100μL;カラム:GE Healthcare(USA)Superdex200 10/300 GL)。タンパク質#134/HSA混合物は、注入前に20℃で3時間プレインキュベートした。クロマトグラムを図5に示す。溶出物の分子量を測定し、表6に示した理論的分子量と比較した。この実験のために、HSA 100mg(CSL Behring 20%溶液)を、Superdex 200_26.60カラムをAEKTA prime system(GE Healthcare;2.0mL/分、PBS、アイソクラティックフロー、注入量はPBS中で1:20に希釈したHSAの10mL、分画4mLを採取する)で使用して精製した。主ピークのピーク分画を、SEC−MALS実験の実施に使用した。
タンパク質ドメインを結合させるポリペプチドリンカーは、当業者に周知である。Gly−Serリッチリンカーは、単鎖Fv抗体フラグメントから周知であり、ここで、Gly−Serリッチリンカーは、2つのFvポリペプチド鎖を結合させるために使用されている。各種の他のポリペプチドリンカーが存在し、例えば、抗体ヒンジ領域、又は非構造性ポリペプチド、例えば、主にアミノ酸Ala、Glu、Lys、Pro、Ser、Thr(国際公開第2007/103515号)若しくはAla、Pro、及びSer(同第2008/155134号)を含む配列が挙げられる。更に、Pro−Thrリッチリンカーが開示されている(同第2014/191574号)。このようなリンカーによって結合されたタンパク質ドメインの特性に対するこのようなリンカーの効果を、全てのリンカー/ドメインの組み合わせについて評価する必要がある。ポリペプチドリンカーの性質に次いで、発明者らは、驚くべきことに、血清アルブミン結合ドメインの数が、タンパク質の機能性に影響を及ぼし得ることを見出した。本発明の組み換え結合タンパク質の標的結合活性を最大化するために、Gly−Serリッチ及びPro−Thrリッチポリペプチドリンカーを含む組み換え結合タンパク質、並びに血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つ又は2つ含む組み換え結合タンパク質を比較した。そのために、それぞれ配列番号1をN末端に更に有し、実施例4に記載のように調製された、タンパク質#69、#71、及び#107を、VEGF−A及びHGFへの結合について、それぞれ、ELISA(方法については実施例4を参照)によって分析した。結果を表7に示す。タンパク質#69とタンパク質#71とのEC50値の比較により、Pro−Thrリッチリンカーを有する組み換え結合タンパク質は、VEGF−A(因子2)及びHGF(因子1.3)の結合に関し、それぞれ、Gly−Serリッチリンカーを有する組み換え結合タンパク質に比べ、より強力であることが示される。タンパク質#69とタンパク質#107とのEC50値の比較により、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを2つ含む組み換え結合タンパク質は、VEGF−A(因子1.4)及びHGF(因子1.1)の結合に関し、それぞれ、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つのみ含む組み換え結合タンパク質に比べ、より強力であることが示される。これは、構造体中に2つのアルブミン結合ドメインが存在すると、分子の機能性に対して負の効果を有するという、以前の結果(Hopp et al.,2010)を考慮すると驚くべきことである。この結果は、組み換え結合タンパク質が、Pro−Thrリッチリンカーと、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメイン2つとを、Gly−Serリッチリンカーと、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメイン1つとよりも優先的に含むことを示している。
タンパク質#48、#49、及び#51を、これらの変性温度の中点(すなわち、温度上昇に伴う協調的アンフォールディングの中点)について、本質的には、Niesen et al.2007(Niesen,F.H.,Berglund,H.,Vedadi,M.,Nature Protocols 2,2212〜2221,2007)による記載のように、タンパク質(25μL、PBS中に100μM)を蛍光染料(PBS中で1/2500に希釈したSyproオレンジ(Life Technologies)25μL)と混合し、蛍光リーダーを備えるサーマルサイクラー(CFX96 Real−Time PCR Detection System;Biorad;0.5℃ごとに25秒間の保持時間の後、蛍光を読み取る)で融解曲線を測定することにより、更に特徴づけした。PBS中で、タンパク質#48は変性の中点83.5℃を呈し、タンパク質#49は変性の中点84.5℃を呈したのに対し、タンパク質#51は変性の中点79.5℃を呈した。
実施例4に記載のように調製した、配列番号134のアミノ酸配列からなる精製組み換え結合タンパク質を、ELISAで分析した。ウェル当たりPBS中20nMの標的(VEGF−A、HGF、又は血清アルブミン)の100μL又は50μLを、Maxisorpプレート(Nunc,Denmark)中で終夜4℃で固定化した。PBST(0.1% Tween 20を補充したPBS)300μLで5回洗浄した後、ウェルをPBST−C(0.25%カゼインを補充したPBST)300μLにより、Titramax 1000振とう器(Heidolph,Germany)において450rpmで室温で2時間振とうしてブロックした。上記のように5回洗浄した後、PBST−C中のタンパク質#134を1ウェル当たり100μL又は50μL(100nM〜0.01pMの範囲の濃度)加え、室温で1時間〜2時間、450rpmで振とうしてインキュベートした。上記のように5回洗浄した後、タンパク質#134の結合を、PBST−C中のウサギ抗設計アンキリンリピートドメインモノクローナル抗体を1ウェル当たり100μL又は50μL使用し、室温で1時間、450rpmで振とうして検出した。上記のように5回洗浄した後、結合した抗設計アンキリンリピートドメイン抗体を、PBST−C中のヤギ抗ウサギIgG−HRP複合体を1ウェル当たり100μL又は50μL使用し、室温で1時間、450rpmで振とうして検出した。上記のように5回洗浄した後、水中1:4で希釈したBM可溶性ブルーPOD基質(Roche,Switzerland)100μLを使用し、ELISAを実施した。反応は、5分後に1M H2SO4 100μLを使用して停止した。続いて、OD(OD450nm〜OD620nm)を記録した。
実施例4に記載のように調製した、配列番号134のアミノ酸配列からなる精製組み換え結合タンパク質を、競合ELISA及びFRETで分析した。このような競合FRET及びELISAアッセイは、当業者に周知である。タンパク質#134を、VEGF−A/VEGFR−2競合FRETアッセイにおいて測定した。そのために、タンパク質#134及びビオチン化VEGF−A165(Reliatech、#300−076Bi−L)を、0.2%BSA及び0.01%Tweenを含むPBS(PBST−BSA)中の8倍濃度の保存液として調製した。8倍濃度のタンパク質#134の5μLと8倍濃度のビオチン化VEGF−A165の5μLとの競合混合液を、室温で1時間プレインキュベートした(競合混合液)。並行して、ストレプトアビジン−Tb(ストレプトアビジン−ルミ4−テルビウムクリプテートドナー、Cisbio #610SATLB)5μL及びPAb抗hIgG−de(D2抱合型ヤギ抗ヒトIgG、Cisbio #61HFCDAA)5μLを、PBST−BSA緩衝液500μLに加え、20分間インキュベートした(2倍試薬)。1ウェル当たり2倍試薬10μLを384ウェルのHTRF白色プレート(Thermo Fisher Scientific Inc.)に分注し、4倍濃度のhVEGF−R2−Fc融合物(Reliatech #SFC−008)を1ウェル当たり5μL加えた。続いて、プレインキュベートした競合混合液5μLをウェルに加えた。蛍光リーダーを使用した蛍光の読み取り前に、完全な反応混合物を暗所、室温で1時間インキュベートした。最終混合液は、10nM可溶性VEGF−R2−Fc融合物、10nMビオチン化VEGF−A、及び各種濃度のタンパク質#134を含んでいた。読み取りは、A665nm及びA595nmの波長について行った(励起340nm)。アッセイの結果を図7aに示す。このアッセイにおいて、タンパク質#134は、VEGF−A/VEGFR−2の相互作用をIC50値0.6nMで阻害する。タンパク質#134を、実施例3に記載のように、HGF/cMet競合ELISA実験によって更に測定した。アッセイの結果を図7bに示す。このアッセイにおいて、タンパク質#134は、HGF/cMetの相互作用をIC50値0.92nMで阻害する。タンパク質#134を、実施例3に記載のように、VEGF−A競合ELISA実験によって更に測定した。結果を図7cに示す。このアッセイにおいて、タンパク質#134は、VEGFの結合を、1桁のpMの範囲のIC50値(IC50 4.5pM)で阻害する。
SPRを、実施例2の記載と同様に、以下の設定で測定した。2700RUのヒトHGFを、センサーチップ上に固定化した。続いて、100nMのタンパク質#134又はPBSTを180秒間注入した後、PBSTで360秒間洗浄した。これに続き、100nMのヒトVEGF−A又はPBSTを180秒間注入し(飽和に達する)、続いてPBSTで360秒間洗浄した。最後に、100nMのヒト血清アルブミン又はPBSTを180秒間注入した後、PBSTで600秒間洗浄した。得られたシグナルを図8に示す。結果は、タンパク質#134が、HGF、VEGF−A、及び血清アルブミンを結合できることを示している。更に、結果は、タンパク質#134が、HGF及びVEGF−A、並びにHGF、VEGF−A、及び血清アルブミンを同時に結合できることを示している。
実施例4に記載のように調製した、配列番号134のアミノ酸配列からなる精製組み換え結合タンパク質を、更に当業者に周知の細胞アッセイ、例えばHUVEC増殖アッセイによってVEGF−Aの阻害を評価し、また、A549細胞遊走アッセイ及びcMetリン酸化アッセイの両方によってHGFの阻害を評価した。
U87MG異種移植マウスモデルを使用し、VEGF−Aに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを、HGFに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインと合わせて有する効果を、これらを別個に有する場合と比較して評価した。配列番号134(それぞれ配列番号50のアミノ酸からなる、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを2つ含み、配列番号18からなる、VEGF−Aに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つ含み、かつ配列番号26のアミノ酸からなる、HGFに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つ含む)からなるタンパク質#134、配列番号61(配列番号50のアミノ酸からなる、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つ含み、かつ配列番号18のアミノ酸からなる、VEGF−Aに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つ含む)からなり、更に配列番号1をN末端に有するタンパク質#61、又は配列番号60(配列番号50のアミノ酸からなる、血清アルブミンに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つ含み、かつ配列番号26のアミノ酸からなる、HGFに対する結合特異性を有する設計アンキリンリピートドメインを1つ含む)からなり、更に配列番号1をN末端に有するタンパク質#60を、実施例4に記載のように調製した。in vivoの分析のために、マウス1匹当たり2×106個のU87MG細胞を、メスのNMRI nu/nuマウス(Harlan)の右側腹部に皮下移植し、マウスを、それぞれ同等の腫瘍体積を有する群に分類した。29日目及び32日目に、マウスをPBS又は4mg/kgのタンパク質の静注で処置した。35日目に腫瘍を採取し、低温凍結した。処置の当日ごとに、以下の式を使用して各腫瘍の腫瘍体積を測定した:体積=(幅)2×長さ/2。体重測定によると、4つの処置群の間に有意差は認められなかった。続いて腫瘍断面を、Ki67に対する抗体(ab66155、Abcam(U.K.))を使用して染色し、標準的なIHCの方法を使用して増殖を定量し、又は、CD−31に対する抗体(BD550274、BD Biosciences(USA))を使用して染色し、標準的なIHCの方法を使用して血管新生を定量した。増殖細胞のパーセンテージ及び平均血管面積のパーセンテージを、ソフトウェアImage Jを使用して測定した。結果を図10aに示す。予想どおり、PBSに比べ、タンパク質#60及びタンパク質#61は増殖を阻害し、また、タンパク質#60(わずかに)及びタンパク質#61は血管新生を阻害する。しかしながら、タンパク質#134をもたらす2つの組み合わせは、増殖と血管新生の両方の阻害が向上する。これは、抗VEGF−A活性と抗HGF活性との組み合わせが、良好な有効性の鍵となることを示している。
Claims (15)
- 第1、第2、第3、及び第4の設計アンキリンリピートドメインを含む、組換え結合タンパク質であって、
前記第1の設計アンキリンリピートドメインが血管内皮増殖因子(VEGF−A)に対する結合特異性を有し、かつ配列番号18のアミノ酸配列に対して少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、
前記第2の設計アンキリンリピートドメインが肝細胞増殖因子(HGF)に対する結合特異性を有し、かつ配列番号26のアミノ酸配列に対して少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、並びに
前記第3及び第4の設計アンキリンリピートドメインがそれぞれ血清アルブミンに対する結合特異性を有し、かつ配列番号50のアミノ酸配列に対して少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、
前記第1、第2、第3及び第4のアンキリンリピートドメインが、N末端からC末端に向かって第3−第2−第1−第4の順であり、
前記組換え結合タンパク質が、HGF、VEGF−A及び血清アルブミンに同時に結合可能である、組換え結合タンパク質。 - 前記第1の設計アンキリンリピートドメインが、配列番号18のアミノ酸配列に対して少なくとも95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、
前記第2の設計アンキリンリピートドメインが、配列番号26のアミノ酸配列に対して少なくとも95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、並びに
前記第3及び第4の設計アンキリンリピートドメインがそれぞれ配列番号50のアミノ酸配列に対して少なくとも95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項1に記載の結合タンパク質。 - 前記第1の設計アンキリンリピートドメインが、配列番号18のアミノ酸配列に対して少なくとも98%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、
前記第2の設計アンキリンリピートドメインが、配列番号26のアミノ酸配列に対して少なくとも98%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、並びに
前記第3及び第4の設計アンキリンリピートドメインがそれぞれ配列番号50のアミノ酸配列に対して少なくとも98%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項1に記載の結合タンパク質。 - 第1、第2、第3、及び第4のアンキリンリピートドメインを含む、結合タンパク質であって、
前記第1のアンキリンリピートドメインがヒトVEGF−Aに対する結合特異性を有し、かつ配列番号18のアミノ酸配列に対して少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、
前記第2のアンキリンリピートドメインがヒトHGFに対する結合特異性を有し、かつ配列番号26のアミノ酸配列に対して少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、並びに
前記第3及び第4のアンキリンリピートドメインがそれぞれヒト血清アルブミンに対する結合特異性を有し、かつ配列番号50のアミノ酸配列に対して少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、
前記第1、第2、第3及び第4のアンキリンリピートドメインが、N末端からC末端に向かって第3−第2−第1−第4の順であり、
前記結合タンパク質が、HGF、VEGF−A及び血清アルブミンに同時に結合可能である、結合タンパク質。 - 前記第1のアンキリンリピートドメインが、配列番号18のアミノ酸配列に対して少なくとも95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、
前記第2のアンキリンリピートドメインが、配列番号26のアミノ酸配列に対して少なくとも95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、並びに
前記第3及び第4のアンキリンリピートドメインがそれぞれ配列番号50のアミノ酸配列に対して少なくとも95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項4に記載の結合タンパク質。 - 前記第1のアンキリンリピートドメインが配列番号18のアミノ酸配列を含み、
前記第2のアンキリンリピートドメインが配列番号26のアミノ酸配列を含み、及び/又は
前記第3又は第4のアンキリンリピートドメインが配列番号50のアミノ酸配列を含む、請求項4に記載の結合タンパク質。 - 前記結合タンパク質はVEGF−AとVEGFR−2との間の結合相互作用を阻害するか、及び/又はHGFとcMetとの間の結合相互作用を阻害する、請求項4に記載の結合タンパク質。
- 前記結合タンパク質が配列番号134のアミノ酸配列に対して少なくとも95%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項5に記載の結合タンパク質。
- 前記結合タンパク質が配列番号134のアミノ酸配列を含む、請求項5に記載の結合タンパク質。
- 配列番号134のアミノ酸配列に対して少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む結合タンパク質であって、HGF、VEGF−A及び血清アルブミンに対して結合特異性を有する、結合タンパク質。
- 請求項1から10の何れか一項に記載の結合タンパク質をコードする核酸。
- 請求項1から10の何れか一項に記載の結合タンパク質並びに薬学的に許容される担体及び/若しくは賦形剤を含む、医薬組成物。
- 請求項1から10の何れか一項に記載の結合タンパク質を含む、患者の医学的状態を治療するための医薬であって、前記医学的状態が腫瘍性疾患、病的血管新生、及び/又は炎症性疾患である、医薬。
- 前記医学的状態が腎癌、胃癌及び/又は多発性骨髄腫である、請求項13に記載の医薬。
- 前記医学的状態が癌である、請求項13に記載の医薬。
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