JP6499132B2 - FcRnに対する抗体及びその使用 - Google Patents
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Description
本願は、米国特許法第119条(e)に基づいて、2008年4月25日出願の米国特許仮出願第61/048,152号、及び2008年4月28日出願の米国特許仮出願第61/048,500号の利益を請求し、これらは参照することにより本明細書に全文が組み込まれる。
前記重鎖及び軽鎖免疫グロブリン可変ドメイン配列が、ヒトFcRnに結合する抗原結合部位を形成し;前記抗体が以下の特徴のうちの1つ以上を有する単離抗体を提供する:
(a)ヒトCDR又はヒトフレームワーク領域;
(b)LC免疫グロブリン可変ドメイン配列が、 M0171−A03、M0171−A01、M0159−A07、M0161−B04、M0090−F11、又はDX2500のLC可変ドメインのCDRに対して少なくとも85%同一である1つ以上のCDRを含む;
(c)HC免疫グロブリン可変ドメイン配列が、 M0171−A03、M0171−A01、M0159−A07、M0161−B04、M0090−F11、又はDX2500のHC可変ドメインのCDRに対して少なくとも85%同一である1つ以上のCDRを含む;
(d)LC免疫グロブリン可変ドメイン配列が、M0171−A03、M0171−A01、M0159−A07、M0161−B04、M0090−F11、又はDX2500のLC可変ドメインと少なくとも85%同一である;
(e)HC免疫グロブリン可変ドメイン配列が、M0171−A03、M0171−A01、M0159−A07、M0161−B04、M0090−F11、又はDX2500のHC可変ドメインと少なくとも85%同一である;及び
(f)抗体が、M0171−A03、M0171−A01、M0159−A07、M0161−B04、M0090−F11、又はDX2500の結合するエピトープと重複するエピトープに結合する。
(a)LC免疫グロブリン可変ドメイン配列は、3B3.11、31.1、532A−M0090−F09、M0084−B03、M0056−G05、M0084−B11、M0092−D02、M0055−G12、M0057−F02、M0062−C09、M0064−H04、M0073−E10、又はM0090−F11のLC可変ドメイン、又はこれらの1つ以上のCDRと少なくとも85%同一である;
(b)HC免疫グロブリン可変ドメイン配列は、3B3.11、31.1、532A−M0090−F09、M0084−B03、M0056−G05、M0084−B11、M0092−D02、M0055−G12、M0057−F02、M0062−C09、M0064−H04、M0073−E10、又はM0090−F11のHC可変ドメイン、又はこれらの1つ以上のCDRと少なくとも85%同一である;及び
(c)前記抗体は、3B3.11、31.1、532A−M0090−F09、M0084−B03、M0056−G05、M0084−B11、M0092−D02、M0055−G12、M0057−F02、M0062−C09、M0064−H04、M0073−E10、又はM0090−F11の結合するエピトープと重複するエピトープに結合する。
「結合タンパク質」とは、標的分子と相互作用することができるタンパク質を指す。この用語は「リガンド」と互換的に用いられる。「FcRn結合タンパク質」又は「FcRn結合リガンド」とは、FcRnと相互作用することができるタンパク質を指し、特にFcRn(例えば、IgG)と優先的に相互作用するタンパク質を含む。
[結合]=N・[遊離]/((1/Ka)+[遊離])
以下の配列アラインメントは、ヒトFcRnα鎖のアミノ酸配列と、ラットFcRnα鎖のアミノ酸配列とのアラインメントである。例示的なFcRnタンパク質は、これら2つの配列、又はこれらの断片のうちの1つ、例えばシグナル配列を含まない断片を含んでもよい。
FcRnαヌクレオチド配列 Homo sapiens
抗体の構造及び配列
本発明は、少なくとも1つのFcRnエピトープに特異的に結合する抗体であって、前記抗体がFcRnエピトープに結合することにより、FcRnに対するIgGのFc部分の結合が阻害される抗体に関する。したがって本発明は、FcRnブロッキング抗体に関する。ブロッキング抗体は、IgG、IgM、IgA、IgD、又はIgEであり得る。1つの実施形態では、ブロッキング抗体はIgGである。1つの実施形態では、本発明の抗体は、1010M−1の結合親和性を有する。別の実施形態では、本発明の抗体は、1011M−1の結合親和性を有する。
モノクローナル抗体の作製方法は記載されている(Harlow et al.,Antibodies A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor,NY(1988))。場合によっては、第1段階として、げっ歯類、例えばマウスを抗原性ポリペプチドで免疫して、抗体応答を生じさせる。FcRnは遍在的に発現し、種間で高い相同性を示すため、ポリペプチドの免疫は、高親和性FcRn特異的モノクローナル抗体又はFcRnモノクローナルブロッキング抗体の産生は成功していなかった。この問題を解決するために、DNAワクチン接種を実施することができる(Castagliola et al.,J.Immunology 160:1458(1998))。DNAワクチン接種は、げっ歯類、例えばマウスを、FcRn又はその断片をコードするcDNAコンストラクトで免疫することを含む。免疫は、筋肉内、腹腔内、皮下、静脈内、皮内、又はリンパ節に直接投与してもよい。1つの実施形態では、免疫化は筋肉内に投与される。DNAワクチン接種は、アジュバント、例えばフロイント完全アジュバント、又はフロイント不完全アジュバントと共に投与してもよい。DNAワクチン接種は、心臓毒の投与により抗体力価を高めることにより達成され得る。心臓毒の投与は細胞死、及び投与されたDNAワクチンの細胞内取り込みを増加させる細胞の再生を惹起する。心臓毒はまた、よりロバストな免疫応答を生じさせる炎症を増加させる場合もある。
ディスプレイライブラリを用いて、FcRnに結合する抗体を同定することができる。ディスプレイライブラリは、実体の集合であり、各実体は利用可能なポリペプチド構成要素、及び前記ポリペプチド構成要素をコードする又は同定する回収可能な構成要素を含む。ポリペプチド構成要素は多様であるため、異なるアミノ酸配列が提示される。ポリペプチド構成要素は、任意の長さ、例えば3アミノ酸〜300アミノ酸超であってもよい。選択では、ライブラリの各メンバーのポリペプチド構成要素は、FcRnでプロービングされ、ポリペプチド構成要素がFcRnに結合する場合、ディスプレイライブラリのメンバーは、典型的には支持体上に保持されることにより同定される。更に、ディスプレイライブラリの実体は、1より多いポリペプチド構成要素、例えばsFabの2本のポリペプチド鎖を含み得る。
他の種類のタンパク質のコレクション(例えば発現ライブラリ)を用いて、特定の特性(例えばFcRnに結合する能力及び/又はFcRnを調節する能力)を有するタンパク質を同定することができる。かかるコレクションには、例えば抗体のタンパク質アレイ(例えばDe Wildt et al.(2000)Nat.Biotechnol.18:989−994参照)、ラムダgt11ライブラリ、ツーハイブリッドライブラリ等が挙げられる。
1つの実施形態において、ライブラリは、それぞれが、免疫グロブリン領域、例えば免疫グロブリン可変領域を含む、ポリペプチドの多様なプールを提示する。ディスプレイライブラリはとりわけ、例えば、ヒト抗原を認識するヒト又は「ヒト化」抗体を同定するために有用である。そのような抗体は、自己免疫障害のようなヒト障害を治療するために、治療として使用可能である。抗体の定常及びフレームワーク領域がヒトであるので、これらの治療用抗体は、自身を抗原として、認識及び標的化されることが避けられ得る。定常領域をまた、ヒト免疫系のエフェクター機能を動員させるために最適化し得る。インビトロディスプレイ選択プロセスは、自己抗原に対して抗体を産生する正常なヒト免疫系の不全性を克服する。
標的に結合する候補ライブラリメンバーを選択した後に、例えば、標的に対するその結合特性を更に特徴付けするために、それぞれの候補ライブラリメンバーを更に分析することができる。各候補ライブラリメンバーを、1つ又はそれ以上の二次スクリーニングアッセイに供することができる。アッセイは、結合特性、触媒特性、阻害特性、生理学的特性(例えば、細胞毒性、腎臓クリアランス、免疫原性)、構造的特性(例えば、安定性、立体配座、オリゴマー化状態)又は他の機能的特性に関するアッセイであり得る。同様のアッセイを、繰り返し、ただし、条件を変化させて例えばpH、イオン又は温度感受性を決定するために使用可能である。
ディスプレイライブラリの使用に加えて、FcRn結合抗体を得るために他の方法を使用し得る。例えば、FcRnタンパク質又はその領域を、非ヒト動物、例えばげっ歯類における抗原として使用し得る。
IgG仲介性自己免疫疾患を治療するために用いられる抗体は、複数回投与に用いることができる。治療抗体の免疫原性を低下させる予防措置としては、抗体(特にFab)のフレームワーク領域の1つ以上の非生殖細胞系アミノ酸を対応する生殖細胞系アミノ酸(例えば結合特性が実質的に保持されている限り)に戻すことが挙げられる。
標準的な組換え核酸法を使用して、FcRnに結合する抗体を発現し得る。一般的に、抗体をコードする核酸配列を、核酸発現ベクターにクローニングする。無論抗体が複数のポリペプチド鎖を含む場合、各鎖を発現ベクター、例えば同じ又は異なる細胞で発現される同じ又は異なるベクターにクローニングし得る。
FcRn候補抗体は、インビトロ又はインビボにおけるFcRn又はその断片に対する前記抗体の調節活性を測定するアッセイで更に特徴付けることができる。例えば、FcRnは、非特異的IgG又はIgGのFc部分又はアルブミン等の基質と、FcRnと基質との反応を可能にするアッセイ条件下で組み合わせることができる。アッセイは、FcRn候補抗体の非存在下、及び漸増濃度のFcRn候補抗体の存在下で実施される。FcRn活性(基質への結合)の50%が候補抗体により阻害される候補抗体の濃度が、その抗体のIC50値(阻害濃度50%)又はEC50(有効濃度50%)である。一連の候補抗体又は候補抗体群の中で、低いIC50又はEC50値を有する抗体が、高いIC50又はEC50値を有する抗体よりも、FcRnのより強力な阻害剤であるとみなされる。幾つかの実施形態では、抗体は、FcRn活性の阻害に関するインビトロアッセイで測定したとき、800nM、400nM、100nM、25nM、5nM,1nM又はそれ未満のIC50値を有する。
他の態様において、本開示は、組成物、例えば薬学的に許容可能な組成物又は医薬組成物であって、FcRn結合抗体を含む組成物を提供する。FcRn結合抗体は薬学的に許容できる担体と共に配合してもよい。医薬組成物は、治療用組成物と診断用組成物、例えばインビボ画像化のための標識FcRn結合抗体を含む組成物とを含む。
1つの実施形態において、FcRn結合抗体を、循環中、例えば血液、血清、リンパ液又は他の組織中で、その安定化及び/又は保持を例えば少なくとも1.5、2、5、10、又は50倍に向上させる部分と物理的に会合させる。例えば、FcRn結合抗体を、ポリマー、例えば、実質的に非抗原性のポリマー(例えば、ポリオキシアルキレンオキシド又はポリエチレンオキシド)と会合させ得る。適切なポリマーの重量は、大幅に変化する。約200〜約35,000(又は約1,000〜約15,000、及び2,000〜約12,500)の範囲の数平均分子量を有するポリマーを用いることができる。例えば、FcRn結合抗体を、水溶性ポリマー、例えば親水性ポリビニルポリマー、例えばポリビニルアルコール及びポリビニルピロリドンと複合化させ得る。そのようなポリマーの非限定的なリストは、ポリアルキレンオキシドホモポリマー、例えば、ポリエチレングリコール(PEG)又はポリプロピレングリコール、ポリオキシエチレン化ポリオール、その共重合体及びそのブロック共重合体(但し、ブロック共重合体の水溶性は維持されている)を含む。
本明細書に記載されるFcRn結合抗体は、キットで、例えばキットの構成要素として提供されてもよい。例えばキットは、(a)FcRn結合抗体、例えばFcRn結合抗体を含む組成物と、任意的に(b)情報資料と、を含む。情報資料は、本明細書に記載する方法及び/又は本明細書に記載する方法のためのFcRn結合抗体の使用に関する説明的な、指令的な、マーケティング上の、又は他の資料であり得る。
FcRnに結合し、本明細書に記載される、及び/又は本明細書に詳述される方法により同定される抗体は、治療及び予防的有用性を有する。これらの抗体を対象に投与して、自己免疫障害を含む種々の障害を治療、予防、及び/又は診断することができる、又は例えばインビトロ若しくはエキソビボで培養物中の細胞にさえも接種することができる。
多発性硬化症(MS)は、ミエリン鞘の炎症及び欠損によって特徴付けられる中枢神経系の疾患である。
炎症性腸疾患(IBD)は一般的な慢性、再発性胃腸炎を含む。IBDはクローン疾患と潰瘍性大腸炎の二つの特徴的に異なる疾患を指す。IBDの臨床的な症状は間歇的な直腸出血、痙攣性腹痛、体重減少及び下痢を含む。潰瘍性大腸炎の臨床活性指数のような臨床的指標がIBDをモニターするために使用され得る(Walmsley et al.Gut.1998 Jul;43(1):29−32及びJowett et al.,2003,Scand J Gastroenterol.38(2):164−71参照)。FcRn結合抗体を用いて、IBDの少なくとも1つの症状を寛解させる又はIBDの臨床的指標を改善することができる。
関節リウマチは、関節における痛み、腫れ、硬直及び機能喪失を引き起こす自己免疫炎症性疾患である。関節リウマチは対称的なパターンで現れることが多い。この疾患は、手関節、及び、手に最も近い指の関節を冒し得る。この疾患はまた、関節のほかに、身体の他の部分も冒し得る。加えて、関節リウマチに罹患している人々は、疲労、時々の発熱、及び、全身的倦怠を有する場合がある。関節リウマチを診断するための陽性因子には、「リウマチ因子」血中抗体及びシトルリン抗体が含まれる。FcRn結合抗体は、関節リウマチ、或いは、関節リウマチの1つ又は複数の症状を治療、予防又は緩和することにおいて有用であり得る。
全身性エリテマトーデス(SLE)は、様々な身体組織に対する炎症及び損傷をもたらす自己免疫障害である。SLEは、自身のDNAに向けられた自己抗体によって媒介され得る。狼瘡は、関節、皮膚、腎臓、心臓、肺、血管及び脳をはじめとする身体の多くの部分を冒し得る。様々な症状が現れ得るが、最も一般的な症状のいくつかには、極度の疲労、痛み又は腫脹関節(関節炎)、説明できない発熱、皮膚の発疹、及び、腎臓の問題が含まれる。狼瘡の例示的な症状には、痛み又は腫れのある関節、説明できない発熱、及び、極度の疲労が含まれる。特徴的な赤い皮膚発疹が鼻及び頬の全体に現れる場合がある。発疹はまた、顔及び耳、上腕、肩、胸並びに手にも生じる場合がある。狼瘡の他の症状には、胸の痛み、脱毛、貧血、口内炎、並びに、寒さ及びストレスから生じる蒼白又は紫色の指及びつま先が含まれる。一部の人々はまた、頭痛、めまい、鬱病、錯乱又は発作を経験する。SLE診断のための陽性因子には、循環している抗核抗体、抗DNA抗体及び抗Sm抗体が含まれる。FcRn結合抗体は、SLE、或いは、SLEの1つ又は複数の症状を治療、予防又は軽減することにおいて有用であり得る。本明細書に記載される狼瘡は、皮膚ループス及びループス腎炎を含む。
ITPは、末梢血小板破壊の増加する疾患であり、患者は特定の血小板膜タンパク質に結合する抗体を産生する。抗血小板抗体は血小板をオプソニン化し、マクロファージによる破壊を導く。ITPを治療する試みは一般に、血小板濃度の増加を惹起する免疫系の抑制を含む。FcRn結合抗体は、ITP又はその1種以上の症状の治療、予防、又は軽減に有用であり得る。
強直性脊椎炎は、脊椎を冒すだけでなく、骨及び関節の周りの腱及び靱帯が炎症し、痛み及び硬直をもたらすように、股関節、肩及び膝もまた冒すことがある自己免疫障害である。強直性脊椎炎は後期思春期又は初期青年期の人々を冒す傾向がある。FcRn結合抗体は、強直性脊椎炎、或いは、その1つ又は複数の症状を治療、予防又は緩和することにおいて有用であり得る。
天疱瘡は、粘膜及び皮膚に影響を及ぼす自己免疫障害である。前記障害は、デスモグレインに対する自己抗体の産生を特徴とする。デスモグレインは、カドヘリンファミリーのタンパク質であり、細胞を互いに接合させるデスモソームの形成に関与している。天疱瘡は、3つの種類のうちの1種に分類することができる。尋常性天疱瘡は前記障害の最も一般的な形態であり、自己抗体はデスモグレイン3を標的とする。落葉状天疱瘡では、デスモグレイン1に対する自己抗体が産生される。第3の種類であり、且つ最も少ない障害は腫瘍随伴性天疱瘡であり、自己抗体はデスモプラキンを標的とし、リンパ腫等の癌に関連する。前記障害は一般的に、皮膚の外観によって皮膚専門医により診断され、デスモグレインに対する自己抗体の検出により確認される。治療方法としては、ステロイドの投与、及び/又はRituximab(Rituxan)等のCD20抗体の投与が挙げられる。
本明細書中に使用される「癌」は、体の器官及び系が正常に機能するのを妨害する、細胞の制御されていない成長を指す。それらの本来の位置から移動して、重要器官に種を播く(seed)癌は、冒された器官の機能的悪化を介してついには対象の死をもたらし得る。癌腫は、上皮細胞から生じる悪性癌であり、腺癌及び扁平上皮細胞癌が挙げられる。肉腫は結合組織又は支持組織の癌であり、骨肉腫、軟骨肉腫、及び消化管間質腫瘍が挙げられる。白血病等の造血癌は、対象における正常造血コンパートメントにまさることができ、それによって、最終的に死を引き起こす造血不全(貧血、血小板減少、及び好中球減少の形態で)を導く。当業者は、癌を肉腫、癌腫、又は造血癌に分類することができる。
FcRnは、上皮細胞の障壁を通じる母体のIgGの胎児への輸送を仲介する。本明細書に記載される抗体を用いて、巨大分子薬、例えば抗生物質及び/又は小分子を、子宮内の胎児に送達することができる。胎児は、治療を必要とする状態又は障害(例えば腸管感染症又は代謝障害)に罹患している場合がある。前記状態又は障害を治療するための薬剤又は分子をFcRn結合抗体に共役結合させ、子宮内に治療の必要な胎児のいる妊婦に投与してもよい。共役結合化FcRn結合抗体はFcRnに結合し、それにより胎盤を介して胎児に輸送される。胎児は薬剤又は分子治療を受ける。
幾つかの実施形態では、本発明は、個体から不所望の治療抗体を除去する方法を提供する。幾つかの実施形態では、不所望の治療抗体はIgG抗体である。幾つかの実施形態では、不所望の治療抗体は、ナタリズマブ(Tysabri,Biogen Idec/ Elan)、エファリズマブ(Raptiva,Genetech)、ベバシズマブ(Avastin,Genentech)等の抗VLA4抗体、及びエタネルセプト(Enbrel,Amgen/Wyeth)等のFc融合タンパク質である。ナタリズマブモノクローナル抗体療法は、進行性多巣性白質脳症(PML)に関連している。血流及び/又は体の他の部分から治療抗体を枯渇させると、PMLの進行を変化させることができる。
ヒト白血球抗原(HLA)は、細胞の外側上にペプチド及び抗原を提示し、これは後にT細胞により認識され、T細胞は次いでB細胞を活性化することができる。HLA遺伝子のパネルは、各人で独特である。「非自己」であるHLAを提示する任意の細胞は、免疫反応を誘導する。一般に、自己HLAと「非自己」HLAが異なるほど、免疫反応は強くなる。例えば、臓器移植の場合、免疫反応を最低限に抑えるためには類似のHLA遺伝子を有する対象が好ましい。ドナー特異的HLA抗体は、腎臓、心臓、及び肝臓移植における移植片不全に関連することが見出されている。
FcRnに結合し、本明細書に記載される及び/又は本明細書に詳述される方法により同定された抗体は、インビトロ及びインビボの診断的有用性をもつ。
これらの実施例に用いる完全長FcRn cDNAコンストラクトは、元々プラスミドベクターとしてpcDNA6(Invitrogen,Carlsbad,CA)を用いてSimister lab(Brandeis University,Waltham MA)で構築された(FcRn:pcDNA6)。これらの実施例に用いるヒトβ2m cDNAコンストラクトは、元々プラスミドベクターとしてpcDNA3(Invitrogen)を用いてBlumberg lab(Harvard Medical School,Boston,MA)で構築された(β2M:pcDNA3)。
Balb/cマウスを100μLの10mM心臓毒(Calbiochem,San Diego)で5日間処理し、その後プラスミドDNAを注入した。心臓毒処理を用いて炎症反応を誘発し、注入した領域に抗原提示細胞(例えば樹状細胞)を動員させ、それによりプラスミドにコードされるタンパク質が発現するときの抗原提示を改善する。
マウス血清中の抗hFcRn及び抗β2Mの力価をELISAにより測定した。ELISAプレートを、ELISAコーティングバッファ(Sigma,St.Louis,MO)中2μg/mのL可溶性FcRn又はhβ2M(Sigma,St.Louis,MO)でコーティングした。プレートを37℃で1時間インキュベートした。プレートをPBS+0.05%Tween(PBST)で2回洗浄した。プレートを、37℃で1時間PBS中の1%アイシングラスでブロッキングした。プレートをPBSTで2回洗浄した。(PBSで)段階希釈したマウス血清を添加し(100μL/ウェル)、37℃で2時間インキュベートした。プレートをPBSTで5回洗浄した。1〜10,000倍希釈したヤギ抗マウスIgG−HRP(Pierce,Rockford,IL)をプレートに添加し、室温で1時間インキュベートした。プレートをPBSTで5回洗浄した。着色のためにテトラメチルベンジジン(TMB)溶液(KPL,Gaithersburg,MD)をプレートに添加した。適切に発色した約5分後基質反応を停止させた。プレートをマイクロプレートリーダー(Bio−rad,Hercules,CA)により450nMで読み取った。56日目に全てのマウスの血清を試験した(図1)。hFcRnと反応する血清を有するマウスを94日目に再度試験し、血清力価を図2に示す。
ハイブリドーマ融合体を作製するために182番のマウス及び187番のマウスを選択した。両マウスの脾臓を切除し、脾臓の一部を掻き裂き、続いて10mLのDMEM培地(Invitrogen,Carlsbad,CA)を用いてピペッティングを繰り返すことにより、脾細胞の単一細胞懸濁液を調製した。脾細胞を500gで5分間遠心分離した。2mL ACK溶解バッファ(8.29g NH4Cl、1g KHCO3、37.2mg Na2EDTA、最終体積1リットルになるようにH2O、pH7.2〜7.4)に脾細胞を再懸濁させることにより赤血球を溶解させた。細胞を細胞を5分間インキュベートした。ACKバッファで処理した細胞をDMEMで3回洗浄した。182番のマウスから得られた脾細胞の総数は216×106個であった。細胞の半数を70×106個のSP2/0骨髄腫細胞と融合させ、もう半数を27×106個のNS−1細胞と融合させた。
ハイブリドーマクローニング培地を以下のように調製した。12.5mLのhepesバッファ溶液(100×/1M)(Invitrogen,Carlsbad,CA)、5mlのピルビン酸ナトリウム(100×/100mM)(Invitrogen,Carlsbad,CA)、5mlのペニシリン/ストレプトマイシン(100×/10,000units)(Invitrogen,Carlsbad,CA)、5mlの非必須アミノ酸(100×/100mM)(Invitrogen,Carlsbad,CA)、5mlのL−グルタミン(100×/200mM)(Invitrogen,Carlsbad,CA)、0.5mlの2−メルカプトエタノール(1000×/5.5×10−2M)(Invitrogen,Carlsbad,CA)、100ml FBS(ハイブリドーマ増殖について予めスクリーニング)(Cambrex,East Rutherford,NJ)、及び50mlのハイブリドーマクローニング因子(ICN,Irvine,CA)を、317mLの高グルコースDMEM(Invitrogen,Carlsbad,CA)に添加した。培地を0.22μmのフィルタを通して濾過し、4℃で保存した。
A.Alexa−Fluor−488によるSynagis(登録商標)の標識
Synagis(登録商標)(ヒト化IgG1、MedImmune,Gaithersburg,MD)を、製造業者の提唱するプロトコルに従ってAlexa Fluor 488 Protein Labeling Kit(Molecular Probes/Invitrogen,Carlsbad,CA)を用いて標識した。簡潔に述べると、50μLの1M重炭酸ナトリウム溶液(pH9.0)を、IgGの2mg/mL PBS溶液500μLに添加した。次いでこのタンパク質溶液を、Alexa Fluor 488スクシンイミジルエステル(乾燥粉末)に添加し、室温で1時間インキュベートした。キットコンポーネントカラム(Bio−Rad BioGel P−30 Fineサイズ排除精製樹脂)を用いてサイズ排除クロマトグラフィーによりタンパク質を精製した。試料をカラムに充填し、PBSで溶出した。最初の着色バンドは標識タンパク質を含有していた。標識の程度は、A280及びA494で溶出されたIgGの吸光度を測定することにより決定された。タンパク質のモル濃度は、以下の式を用いて決定された。
(M)=[A 280 −(A 494 ×0.11)×希釈係数]
203,000
更に、タンパク質1モル当たりの色素のモル数を導くために以下の式を用いた。
(M)= A 494 ×希釈係数
71,000×タンパク質濃度
典型的には、IgG1モル当たり4〜7モルのAlexa−Fluor 488が組み込まれた。
hFcRn及びヒトβ2Mを発現する293 C11細胞を用いて、蛍光標識IgG1を用いる競合アッセイにおいてFcRn mAB上清を試験した。300,000個の293 C11細胞をPBSで洗浄し、25000RPMで5分間卓上型微量遠心機内にてペレット化させた。ペレット化した細胞を、FcRn特異的mABを産生するクローン由来の上清100〜200μLに再懸濁させ、60〜90分間氷上でインキュベートした。細胞を結合バッファ(PBS pH6.0 10mM EDTA)で2回洗浄した。細胞を100μLの結合バッファに再懸濁させた。Alexa fluor 488(Molecular Probes,Eugene,OR)で標識されたhIgG1を、製造業者の説明書に従ってキット(Molecular Probes,Eugene,OR)を用いて調製し、各チューブ(0.6〜1.5μL中100nM)に添加した。細胞を40分間氷上でインキュベートした。細胞を結合バッファで1回洗浄し、EXPO.32ソフトウェア(Beckman Coulter,Inc.,Miami,FL)を用いて蛍光活性化細胞選別(FACS)により分析した。結果は、合計平均蛍光強度(TMFI)として表した。
対照チューブのTMFI−競合物質を含むチューブのTMFI/対照チューブのTMFI
競合物質を含むチューブのTMFI−対照チューブのTMFI/対照チューブのTMFI
hFcRn及びヒトβ2Mを発現する293 C11細胞を用いて、蛍光標識IgG1を用いる競合アッセイにおいてFcRn mAB上清を試験した。細胞を結合バッファ(PBS pH6.0,10mM EDTA)で1回洗浄し、18000RPM、4℃にて卓上型遠心機内でペレット化させた。細胞を微量遠心管(1〜3×105/バイアル/mL結合バッファ)に分注した。細胞を25000RPMで5分間微量遠心機内でペレット化させた。上清を吸引し、細胞ペレットを100μLの結合バッファに再懸濁させた。精製FcRn特異的mABを種々の濃度で添加した。Alexa fluor 488(Molecular Probes,Eugene,OR)で標識したIgGを、100nMの濃度(最終濃度)で各管に添加した。試料を4℃で40分間インキュベートした。試料を結合バッファで1回洗浄し、FACS分析(Beckman Coulter,Inc.,Miami,FL)用に結合バッファに再懸濁させた。試料を分析する前に、FACSを結合バッファで平衡化した。結果は、合計平均蛍光強度(TMFI)として表す。TMFIは、ゲート領域内の細胞の百分率×該領域内の平均蛍光として算出された。結果は、mAB3B3.11、mAB4B4.12、mAB31.1、及びmAB4.13がIgG1の293 C11細胞への結合を著しく阻害することを示した(図5)。
mABを用いたFcRnの表面発現をFACSにより検出した。ラットの線維芽細胞(ラットFcRn/ラットβ2Mを発現)、293 C11細胞(hFcRn/ヒトβ2Mを発現)、3T3 FcRn細胞(マウスFcRn/マウスβ2Mを発現)及びサルFcRn/β2MをコードするプラスミドpCDNA6をトランスフェクトしたCOS細胞について研究した。微量遠心機を用いて、1〜3×105個の各細胞種をペレット化させた。上清を除去し、最終体積100μLのPBS/1%ウシ血清アルブミン(pH7.4)中のAlexa 488(Molecular Probes,Eugene,OR)で標識された1μgのmABに細胞を再懸濁させた。FcRnに対して特異的な精製mABは、製造業者の説明書に従ってAlexa Fluor Protein Labeling Kit(Molecular Probes,Eugene,OR)を用いてAlexa Fluor 488(Molecular Probes,Eugene,OR)で既に標識されていた。細胞を氷上で45分間インキュベートし、次いでPBS/1%ウシ血清アルブミン(pH7.2)で1回洗浄した。Beckman Coulter,Inc.FACS(Beckman Coulter,Inc.,Miami FL)を用いてFACS分析を実施した。結果を図6、7、及び8に示す。図6は、mAB3B3.11、31.1、4.13、4B.12、及び15B6.1が全て、293C11細胞の細胞表面上で発現するhFcRnを認識することを示す。図7は、mABs4.13及び4B4.12が、ラットFcRnを発現する細胞上で発現するラットFcRnも認識し、一方mAB3B3.11、及び31.1はラットFcRnと交差反応しないことを示す。図8は、mAB3B3.11、4B4.12、及び4.13がマウス3T3細胞の細胞表面上で発現するマウスFcRnを認識し、一方15B6.1、及び31.1は交差反応しないことを示す。
187番のマウスのハイブリドーマをサブクローニングのために選択した。ハイブリドーマ6A4,6A1、5A4,7D2、4B4、3C5、3B3、10B4、1C1、及び11A5をサブクローニングのために選択した。サブクローニングは、限界希釈により実施した。3B5クローンは抗hβ2Mを分泌する。20〜30個のサブクローンを増殖させ、培養物の上清を実施例3に記載されたようにELISAにより試験した。2〜10個の陽性クローンの培養物をT150フラスコに拡大した(1クローン当たり4つのフラスコ)。合計350〜400mLの上清をmAB精製のために回収した。各クローンから3〜20mgの範囲のmABが得られた。精製mABを、実施例7に記載されたように293C11細胞の競合アッセイを用いてFcRnブロッキングについて試験した。mABは、競合アッセイで1000nMから16nMに2倍に滴定された。187番のサブクローン及び182番のクローン空得られた結果の要約を表3に示す。
THP−1細胞(ヒト単球細胞株)及びCaco−2細胞(ヒト腸上皮細胞株)を、FcRnに特異的な精製モノクローナル抗体(mAB)を用いてFcRnの細胞内染色について研究した。THP−1細胞又はCaco−2細胞の300,000細胞/チューブのアリコートをペレット化させ、250μLのBD Cytofix/Cytoperm(BD Biosciences Pharmingen,San Diego,CA)に再懸濁させた。細胞を1mLのBD Perm/洗浄溶液(BD Biosciences Pharmingen,San Diego,CA)で2回洗浄し、同溶液に再懸濁させた。Alexa fluor488(Molecular Probes,Eugene,OR)で標識されたmAB(1μg/チューブ)を細胞に添加し、細胞を45分間氷上でインキュベートした。細胞をBD Perm/洗浄溶液(BD Biosciences Pharmingen,San Diego,CA)で2回洗浄し、PBS/1%ウシ血清アルブミンに再懸濁させた。細胞をFACS(Beckman Coulter,Inc.,Miami FL)により分析した。結果を図9及び図10に示し、この結果はmAB3B3.11、31.1、4B4.12、及び15B6.1が全てTHP−1細胞内の細胞内FcRnに効率よく結合し(図9)、一方4.13mABはそうではないことを示す。同様の結果がCaco−2でも得られた(図10)。
鉗子を用いて、マウスの脾臓から細胞を分離した。細胞をペレット化させ、ACK溶解バッファ(8.29g NH4Cl、1g KHCO3、37.2mg Na2EDTA、最終体積が1LになるまでH20、pH7.2〜7.4)に再懸濁させ、室温で5分間インキュベートした。細胞をDMEM/5%FBS(Invitrogen,Carlsbad,CA)で3回洗浄した。1×106個の細胞を微量遠心管に移し、卓上型微量遠心機内でペレット化させた。細胞内染色のために、実施例10に記載されたように固定及び透過処理工程を実施した。細胞を20μg/mLのマウスアイソタイプ対照抗体を含有する洗浄バッファ(PBS/1% BSA)に再懸濁させ、氷上で20分間インキュベートした。細胞をペレット化させ、1μg/mLのアイソタイプ対照抗体を含有する100μLの洗浄バッファ中のAlexa488(Molecular Probes,Eugene,OR)で標識されたmAB(1μg/管)を細胞に添加した。細胞を氷上で40分間インキュベートし、次いで洗浄バッファで2回洗浄した。EXPO.32ソフトウェアを用いて、マクロファージ/単球を多く含む集団として散乱をゲートした。。前方散乱及びサイズ散乱を調整することにより、マクロファージ/単球(サイズが大きく粒度が高い独特な集団)を多く含む集団を分析した。細胞をFACS(Beckman Coulter,Inc.,Miami FL)により分析した。結果を図11に示し、この結果はmAB4B4.12が、脾細胞と脾細胞集団から得られたマクロファージ/単球との両方において表面上及び細胞内のマウスFcRnを検出したことを示す。
6〜8週齢の雌のBalb/cマウスを、オボアルブミンと1:1で混合したフロイント完全アジュバントのエマルション50μLで免疫した。マウスは、0日目に横腹の各側に1回皮下免疫し、10日目に100μgのオボアルブミン/マウスで追加免疫した。FcRn特異的4B4.12mAB、又はアイソタイプ対照(1813;ATCC1813)抗体(PBS中1mg/mL/マウス)、又はPBSのいずれかを腹腔内注入することにより、マウスを処理した。−1日目、0日目柄、1日目、及びその後隔日、処理物を投与した。マウスを9日目に採血して血清試料を採取し、16日目に安楽死させた。安楽死後に最も多く血清が採取された。プロトコルを以下の表4に要約する。
CD1マウス(n=4)(Charles River Laboratories)にシナジス 1mg/kgを腹腔内注入した。72時間後、4B4.12、MIgG1又はPBSを腹腔内注入した(20mg/kg)。4、6、及び10日後、マウス血清を得、シナジス濃度をELISAにより測定した。37℃で1時間、ELISAコーティングバッファ(Sigma)中10μg/mLの濃度の抗ヒトIgG(FAB’)2抗体でELISAプレートをコーティングした。PBSTで2回洗浄した後、37℃で1時間プレートをPBS/2% BSAでブロッキングした。2回洗浄した後、血清試料を1から始めて50まで2倍ずつ希釈し、2重でプレートに添加した(100μL/ウェル)。プレートを37℃で2時間インキュベートした。PBSTで3回洗浄した後、ヤギ抗ヒトIgG FcのHRPコンジュゲートをプレートに添加し、40分間室温でインキュベートした。PBSTで4回洗浄した後、TMB基質(KPL)をプレートに添加し、室温で5分間インキュベートした。停止溶液(KPL)で呈色反応を停止させ、プレートをマイクロプレートリーダー(Molecular Devices)で読み取った。
実験的自己免疫疾患、重症筋無力症(EAMG)は、抗AchR mAB35の受動伝達によりラットにおいて誘導され得る(Socrates et al.Journal of Neuroimmunology.15:185−194,1987,)。ラットFcRnと交差反応するモノクローナル抗体4B4.12を、EAMGラットモデルにおける疾患状態に影響を及ぼす能力について評価した。
t=0時間(T0)に、成体Tg32Bマウスに5mg/kgのビオチン−hIgG及び495mg/kgのヒトIgG(MP Biomedicals,Irvine,CA)を静脈内注入した。次いで24、48、72、96、及び120時間目に、マウスに50mg/kgの本発明の抗体を静脈内注入した。対照注入をPBSを用いて各時点で実施した。全ての時点、及び168時間目に、注入前に血液試料を採取した。血清を調製し、ビオチン−hIgGを測定するELISAを実施するまで−20℃で保存した。
MAB4B4.12、3B3.11、31.1、4.13及び3B5.4を、種間でのFcRnの反応性について、FACS結合アッセイ及びFACSブロッキングアッセイで研究した。ヒトFcRn発現細胞(293C11)及びサルFcRn発現細胞を産生した。ラット及びマウスFcRn発現細胞をNeil Simister of Brandeis Universityから得た。ブロッキング実験では、FcRn発現細胞を、pH6のPBSバッファ中のAlexa−A488標識hIgG1(100nM)及び種々の濃度のmAB(4B4.12、3B3.11、31.1、4.13及び3B5.4、又はIgG1、IgG2a等のアイソタイプ対照)と共にインキュベートした。45分後、細胞を蛍光染色により分析し、TMFIを算出した(詳細な方法については実施例6参照)。mABがそれぞれのFcRn発現細胞に対するhIgG1の結合を30%超阻害する場合、このmABはこの種においてmABをブロックするとみなされる。結合実験では、FcRn発現細胞を、pH7.4のPBSバッファ中のAlexa−A488標識mABs(4B4.12、3B3.11、31.1、4.13及び3B5.4、又はIgG1、IgG2a等のアイソタイプ対照)と共に60分間インキュベートした。PBSバッファで1回洗浄した後、細胞を蛍光染色についてCoulterフローサイトメトリーで評価した。特定のmABの細胞への結合が、アイソタイプ対照の結合より有意に多い場合(TMFIが50%高い)、このmABはかかる種のFcRnに結合することができるとみなされる。表8及び図20は、結果の要約を示す。
Cos1細胞にサルFcRn重鎖(pCDNA6中)及びβ2M(pED.dc)をGene Jammerトランスフェクション試薬(Strategene)と共にトランスフェクトした。48時間後、細胞を回収し、0.5%のBSAを含有するPBSで1回洗浄した。5×105個の細胞をmABと共に45分間氷上でインキュベートした。次いで細胞を0.5%のBSAを含有するPBSで1回洗浄した。次いで細胞をAlexa 488標識ヤギ抗マウスIgG(1:2500希釈)と共に45分間氷上でインキュベートした。1回洗浄した後、細胞をCoulterフローサイトメータで蛍光染色について分析した。結果をTMFIとして表す。
3μgの可溶性ヒトFcRn(重鎖及びβ2Mの細胞外ドメイン)を、4〜20%のトリス−グリシンゲル(Invitrogen)の各レーンに充填し、200Vで60分間流した。次いでゲルをPVDFメンブレン(Amersham)を備えるゲルブロッティング装置(Xcell II,Invitrogen)に充填し、55Vで1時間室温にて流した。次いでメンブレンをPBST(PBS+0.05%のTween20)中の5%ミルクで1時間ブロッキングした。その後、メンブレンを10μg/mLの種々のmABと共に4℃で一晩インキュベートした。PBSTで2回洗浄した後、メンブレンを1:10,000に希釈したヤギ抗ヒトIgG HRP(Southern Biotech Associates)と共に90分間インキュベートした。更に2回洗浄した後、メンブレンをECLキット(Amersham)で現像した。結果は、mAB3B3.11、3B3.16、3B3.21、3B3.35、4.13、15B6.1及び31.1はヒトFcRn重鎖を認識したが、一方3B5.4及び5A4.9はβ2Mを認識したことを示す(図21)。
標準的なアミンカップリングを用いて、CM5チップ(Biacore)を約500RUの可溶性ヒトFcRn又は可溶性サルFcRn(pH4.5の酢酸で100倍希釈)でコーティングした。10μg/mLの初期濃度から5種の5倍段階希釈抗体を作製した。各希釈液を50μL/分で1分間、二重でチップに通した。データは、1:1結合相互作用について解析した。pH6及びpH7.4で両方の結合を評価した(図22及び表9)。
可溶性ヒトFcRn及びマウスモノクローナル抗体は社内で規定どおりに調製される。全ての試薬、バッファ、及び化学物質は、特に明示しない限りBiacore AB(Uppsala,Sweden)から購入した。
Syn 558: Ac-SCPHRLREHLERGRGNLEWK-CONH2 -----mAB 4B4.12,4.13(配列番号24)
Syn 559: Ac-ERGRGNLEWKEPPSMRLKAR-CONH2------mAB 4B4.12,4.13(配列番号25)
Syn 562: Ac-CSAFSFYPPELQLRFLRNGL-CONH2------mAB 3B3.11,4.13(配列番号26)
Syn 544: Ac-APGTPAFWVSGWLGPQQYLS-CONH2------mAB 31.1(配列番号27)
A.選択プロトコル
Fab断片を提示するファージディスプレイライブラリから可溶性Fab(sFab)を同定した。可溶性ヒト(shFcRn)又はラットFcRnタンパク質、及びヒトFcRnタンパク質を発現する293C11細胞を用いて4つの異なる選択を行った。また以下に概説するのと同じ溶出ストラテジを用いて、細胞及びタンパク質標的の組み合わせを用いて更なる選択を実施した。
1)ビオチン化shFcRnに対する選択:ストレプトアビジンビーズ上からの消失を用いて、ビオチン化shFcRnに対する選択を3ラウンド実施した。ファージミドを酸性結合バッファ(pH6)中で標的に結合させ、次いで酸性バッファ中の非特異的市販ヒトIgG(Calbiochem,401114 http://www.emdbiosciences.com/product/401114)及びモノクローナルマウス抗ヒトFcRn mAb(3B3)で溶出した。競合溶出後、残りの結合ファージを全て、細胞の直接ビーズ感染(direct bead infection)により溶出した。溶出したファージのアウトプットを選択の次のラウンドのインプットとして用いた。
2)非ビオチン化shFcRnに対する選択:BSAでコーティングされたウェル上からの消失を用いて96ウェルELISAプレート上に受動的に固定化された非ビオチン化hFcRnに対する選択を3ラウンド実施した。ファージミドを酸性結合バッファ(pH6)中で標的に結合させ、次いで同酸性バッファ中の非特異的市販ヒトIgG及び抗ヒトFcRn mAb(3B3)で溶出した。競合溶出後、残りの結合ファージを全て、細胞の直接ビーズ感染(direct bead infection)により同様にpH7.4のバッファを用いることにより溶出した。溶出したファージのアウトプットを選択の次のラウンドのインプットとして用いた。
3)抗ヒトFcRn抗体(17D3)固定化非ビオチン化shFcRnに対する選択:ストレプトアビジンビーズ上のビオチン化17D3を用いて捕捉されたhFcRnに対する選択を3ラウンド実施した。FcRnの非存在下にてストレプトアビジンビーズ上でビオチン化17D3を用いる消失工程も含まれていた。ファージミドを酸性結合バッファ(pH6)中で標的に結合させ、次いで同酸性バッファ中の非特異的市販ヒトIgG及び抗ヒトFcRn mAb(3B3)で溶出した。競合溶出後、残りの結合ファージを全て、細胞の直接ビーズ感染(direct bead infection)により同様にpH7.4のバッファを用いることにより溶出した。溶出したファージのアウトプットを選択の次のラウンドのインプットとして用いた。
4)hFcRn発現細胞に対する選択:トランスフェクトされていない親細胞上からの消失を用いてhFcRnでトランスフェクトされた細胞に対する選択を3ラウンド実施した。ファージミドを酸性結合バッファ(pH6)中で細胞に結合させ、次いで同酸性バッファ中の非特異的市販ヒトIgG及び抗ヒトFcRn mAbで溶出した。競合溶出後、残りの結合ファージを全て、磁気ストレプトアビジンビーズによる細胞溶解とその後の細菌感染により溶出した。溶出したファージのアウトプットを選択の次のラウンドのインプットとして用いた。可溶性ヒトFcRnタンパク質(shFcRn)及びhFcRn発現細胞の両方に対する選択:
ファージディスプレイライブラリ選択で同定された代表的な抗FcRn FabのCDR配列を表10に示す。
Fab及びそのそれぞれのIgG1を更に特徴付けするために、SPR8500/BIACORE(商標)分析を、FcRn結合が陽性であった11個の代表的な拮抗性抗FcRn抗体クローンに対して実施し、KDを決定した。代表的なSPR8500/BIACORE(商標)データを表2及び表3に示す。sFab及び抗体(IgG)を、pH6及び7.5でヒトFcRn(hFcRn)又はラットFcRn(ラットFcRn)に結合する能力について試験した。結合はSPR8500及びBIACORE(商標)により測定され、KD値(nM)で表される。8クローンの結合はpH非依存性であり、3クローンの結合はpH依存性であることが観察された。
表11A〜E:FcRn結合sFabのインビトロSPR8500結合データ(KD(nM))の要約;On及びOff Rate分析
FcRn結合について陽性であった11個の代表的な拮抗性抗FcRnクローンのsFab及びIgG抗体を、インビトロモデルにおいて、非特異的ヒトIgG−FcのFcRnに対する結合をブロックする能力について試験した。ヒトFcRn(hFcRn)又はラットFcRn(ラットFcRn)を発現している293C11細胞の培養物を、結合陽性クローン、陽性対照抗ラットFcRn抗体(1G3)、陽性対照抗ヒトFcRn抗体(3B3)、又はSA−A2陰性対照のsFab又はIgG1で処理した。細胞培養物をAlexafluor(登録商標)標識非特異的IgG−Fcで処理し、pH6のバッファ条件下で4℃にてインキュベートした。IgG−Fc−FcRn結合量を測定した。代表的なsFab及び/又はそれぞれのIgGの結果を表13に示す。IC50値はフローサイトメトリー(即ちFACS)により決定され、nMで表される。
ヒトFcRnノックインTg32Bトランスジェニックマウスを用いた実験は、M90−F11(M090−F11及びM0090−F11とも称される)IgGの4回連続毎日静脈内投与が、試験した全ての用量(50、20、10、及び5mg/kg)でヒトIgGトレーサ(ビオチン化hIgG)の血清半減期を著しく短縮させることを示した(図23及び図24)。50mg/kgでは、M55−G12の4回iv注入がトレーサhIgGの血清半減期を中程度にのみ短縮させたが、一方M84−B11は有効ではなかった(図23)。M90−F11の単回投与(20mg/kg及び5mg/kg)実験は、Tg32Bマウスの血清におけるビオチン−hIgG1トレーサの中程度の低下を示した(図25)。
1)0時間で500mg/kgのトレーサhIgGを静脈内投与(約1%は定量の目的のためにビオチン化)
2)24、48、72、96、及び120時間に50、20、10、及び5mg/kgの抗FcRn抗体を静脈内投与、
3)24、48、72、96、及び120時間に血液試料を採取、
4)ELISAにより血清中のhIgGを定量。
CONST核酸(配列番号108)
GRMLN核酸(配列番号110)
GRMLNアミノ酸(配列番号109)
HEAVYアミノ酸(配列番号111)
HEAVY核酸(配列番号112)
GRMLN核酸(配列番号114)
GRMLN アミノ酸(配列番号113)
IgGのアロタイプ変異を図30に示し、AZからFアロタイプへの3つのアミノ酸変化(太字で強調)を導入し、軽鎖における生殖系列化の一部として既に10個のアミノ酸変化を有する生殖系列化M90−F11 IgGに導入した。
可溶性Fab(sFab)を、Fab断片をディスプレイする親和性成熟したM90−F11ファージミドディスプレイライブラリから同定した。3つの異なる親和性成熟したライブラリを用いて、可溶性ヒト(shFcRn)細胞及びヒトFcRnタンパク質を発現する293C11細胞を用いて2つの異なる選択を実施した。また以下に概説するのと同じ溶出ストラテジを用いて、細胞及びタンパク質標的の組み合わせを用いて更なる選択を実施した。
i)ビオチン化shFcRnに対する選択:ストレプトアビジンビーズ上での消失を用いて、ビオチン化shFcRnに対する選択を2ラウンド実施した。ファージミドを酸性結合バッファ(pH6)中で標的に結合させ、次いでpH7.4のバッファ中の親M90−F11 IgGで溶出した。競合溶出/洗浄後、残りの結合ファージを全て、細胞の直接ビーズ感染(direct bead infection)により溶出した。溶出したファージのアウトプットを選択の次のラウンドのインプットとして用いた。ラウンド2のアウトプットを、hFcRnでトランスフェクトされた細胞に対する交互ラウンド3選択で用い、つづいで同じ溶出ストラテジを用いるビオチン化shFcRnを用いる第4ラウンド選択で用いた。
ii)hFcRn発現細胞に対する選択:hFcRnでトランスフェクトされた細胞に対する選択を2ラウンド実施した。ファージミドを4℃で酸性結合バッファ(pH6)中で細胞に結合させ、次いでpH7.4のバッファ中の親M90−F11で溶出した。競合溶出/洗浄後、残りの結合ファージを全て、磁気ストレプトアビジンビーズによる細胞溶解とその後の細菌感染により溶出した。溶出したファージのアウトプットを選択の次のラウンドのインプットとして用いた。(i)に記載したようにビオチン化shFcRnに対する選択を更に2ラウンド実施した。
hFcRn結合剤を同定するために、ファージELISAにおけるビオチン化shFcRnに対する各選択肢(ライブラリ当たり4)からのラウンド3及びラウンド4のアウトプットの一次スクリーニングをpH6及び7.4で実施した。約1152の、ファージミド上の一次ELISA陽性Fabをスクリーニングし、DNAの配列を決定した。
・6群(1群プラセボ、4群IgG、1群Fab、4匹のマウス/群)
・t=0時間において495mg/kg fIgG+5mg/kg ビオチン−hIgGを静脈内投与
・t=24時間において5又は20mg/kgのAb(1.67又は6.67mg/kgのFab)を静脈内投与
・M171−A01−IgG、
・M171−A03−IgG、
・M159−A07−IgG、
・M161−B04−IgG、又は
・32A−M171−A01−Fab
・24(投与前)、30、48、72、96、120、及び168時間で血液試料採取
・ストレプトアビジン捕捉/Fc検出ELISAを用いてビオチン−hIgG血清濃度を定量、及びFab捕捉/Fc検出ELISAを用いて総IgGを定量
抗FcRn抗体を用いたインビボ研究は、循環IgGの枯渇において有効性を示した。用量依存的枯渇は、マウス及びサルの2種、並びに静脈内及び皮下の2つの投与経路で示された。サルでは、循環IgA、IgM、又は血清アルブミンにおけるいかなる変化も、IgGの低下を伴わなかった。
Tg32Bマウス(マウスFcRn及びマウスβ2マイクログロブリンノックアウト)/ノックイン(ヒトFcRn及びヒトβ2マイクログロブリンノックイン)に、0日目にヒトIgGを投与した。1日目及び7日目に、マウスに異なる用量の抗FcRn抗体M161−B04(DX−2504)及びM171−A01を静脈内投与した。マウスの血清中のヒトIgGの濃度を14日間にわたって測定した。図31に示すように、ヒトIgGの濃度は各抗体を投与した14日間にわたって著しく低下した。IgGの減少は、投与された抗FcRn抗体の濃度に依存していた。
Tg32Bマウス(マウスFcRn及びマウスβ2マイクログロブリンノックアウト)/ノックイン(ヒトFcRn及びヒトβ2マイクログロブリンノックイン)に、0日目にヒトIgGを投与した。1日目及び7日目に、マウスに異なる用量の抗FcRn抗体M161−B04(DX−2504)を皮下投与した。マウスの血清中のヒトIgGの濃度を14日間にわたって測定した。図32に示すように、ヒトIgGの濃度は各抗体を投与した14日間にわたって著しく低下した。IgGの減少は、投与された抗FcRn抗体の濃度に依存していた。皮下投与の有効性は静脈内投与に類似している。
カニクイザルに異なる用量の抗FcRn抗体M161−B04(DX−2504)及びビヒクル対照を投与した。図33は、投与の時間(図33A)及び対照の結果(図33B)を示す。サルの血清中のIgG濃度を14日間にわたって測定した。図34〜35(個々のサル)及び図36(群の平均データ)に示すように、IgGの濃度は各抗体を投与した14日間にわたって著しく低下した。IgGの低下は投与された抗FcRn抗体の濃度に依存していた。皮下投与の有効性は静脈内投与に類似している。図37A〜図37Cは、IgA、IgM、及び血清アルブミンの血清濃度が抗FcRn抗体の投与に影響を受けないことを示す。
Claims (13)
- SCPHRLREHLERGRGNLEWK (配列番号24), ERGRGNLEWKEPPSMRLKAR (配列番号25), CSAFSFYPPELQLRFLRNGL (配列番号26), または APGTPAFWVSGWLGPQQYLS (配列番号27)のアミノ酸配列を有するFcRnエピトープに結合し、IgGのFcRnへの結合を少なくとも90%阻害する単離モノクローナル抗体。
- IgG1抗体である請求項1の単離モノクローナル抗体。
- ヒト抗体またはヒト化抗体である請求項1または2の単離モノクローナル抗体。
- 生殖系列化抗体である請求項1から3のいずれか1項に記載の単離モノクローナル抗体。
- 以下の工程を含むインビトロでFcRn活性を調節する方法:
FcRnを含む生体試料を準備する;そして
前記生体試料を請求項1から4のいずれか1項に記載の単離モノクローナル抗体と接触させる。 - 請求項1から4のいずれか1項に記載の単離モノクローナル抗体を含む、対象の自己免疫障害を治療する及び/又は自己免疫障害の症状を調節するための薬剤。
- 自己免疫障害が、関節リウマチ(RA)、全身性エリテマトーデス(SLE)、重症筋無力症(MG)、グレーブス病、特発性血小板減少性紫斑病(ITP)、ギランバレー症候群、自己免疫性心筋炎、膜型糸球体腎炎、真性糖尿病、I型又はII型糖尿病、多発性硬化症、レイノー症候群、自己免疫性甲状腺炎、胃炎、セリアック病、白斑、肝炎、原発性胆汁性肝硬変、炎症性腸疾患、脊椎関節症、実験的自己免疫性脳脊髄炎、免疫性好中球減少症、若年発症糖尿病、サイトカイン仲介性遅延型過敏症に関連する免疫反応、結核、サルコイドーシス、及び多発性筋炎、多発性動脈炎、皮膚血管炎、天疱瘡、類天疱瘡、グッドパスチャー症候群、川崎病、全身性硬化症、抗リン脂質症候群、及びシェーグレン症候群から成る群から選択される、請求項6に記載の薬剤。
- 前記対象がヒト患者である請求項6の薬剤。
- 前記対象がナタリズマブで治療されていることを特徴とする請求項8の薬剤。
- 請求項1から4のいずれか1項に記載の単離モノクローナル抗体を含む、対象の臓器移植における移植片不全のリスクを減少するための薬剤。
- 前記対象がヒト患者である請求項10の薬剤。
- 前記ヒト患者が非自己ヒト白血球抗原に結合する抗体をもつことを特徴とする請求項11の薬剤。
- 請求項1から4のいずれか一項に記載の単離モノクローナル抗体と、薬学的に許容できる担体とを含む医薬組成物。
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