JP6375091B2 - 腫瘍性疾患であって特に高her2タンパク質レベルの腫瘍性疾患を治療するためのタモキシフェン誘導体 - Google Patents
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Description
この出願の発明に関連する先行技術文献情報としては、以下のものがある(国際出願日以降国際段階で引用された文献及び他国に国内移行した際に引用された文献を含む)。
(先行技術文献)
(特許文献)
(特許文献1) 国際公開第92/06068号
(非特許文献)
(非特許文献1) MOREIRA PI ET AL.:"Tamoxifen and estradiol interact with the flavin mononucleotide site of complex I leading to mitochondrial failure",J BIOL CHEM,vol.281,2006,pages 10143−10152
(非特許文献2) SMITH R A J ET AL:"DELIVERY OF BIOACTIVE MOLECULES TO MITOCHONDRIA IN VIVO",PROCEEDINGS OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES,NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES,US,vol.100,no.9,29 April 2003(2003−04−29),pages 5487−5412
タモキシフェンのアルケニルトリフェニルホスホニウム誘導体は一般化学式IAを有し、
XはI、Br、Cl、又はメシルである、前記ホスホニウムから、テトラヒドロフラン(THF)中、アルゴン気体下、−78℃下における有機塩基(好ましくはブチルリチウム)の処理下においてイリドを生成する反応と、その後化学式IIIのアルデヒドと縮合して、
これは、触媒存在下の水素気体中において、一般化学式VIのアルコールに還元され、
一般化学式VIのアルコールは、一般化学式VIIの適切な誘導体に置換され、
XはI、Br,Cl、又はメシルであり、
これは、トリフェニルホスフィンとともに加熱することによって、一般化学式Iのミトコンドリア標的型のタモキシフェンのアルキルトリフェニルホスホニウム誘導体へと変換される。
XはI、Br、Cl、又はメシル又はこれらの組合せである、前記ホスホニウムから、室温下、アルゴン気体下、テトラヒドロフラン(THF)及びジメチルスルホキシド(DMSO)の混合物中の有機塩基(好ましくはヘキサメチルジシラザンリチウム)の処理下においてイリドを生成する反応と、その後の化学式IIIのアルデヒドとの縮合とに基づくものである。一般化学式VIIIのアルキルビス(トリフェニルホスホニウム)は、高温において対応するアルキルとトリフェニルホスホニウムを反応させることによって調製される。
DCM ジクロロメタン(dichloromethane)
DMSO ジメチルスルホキシド(dimethyl sulphoxide)
ERα エストロゲン受容体α(oestrogen receptor−α)
ESI MS エレクトロスプレーイオン化質量分析(Electrospray ionization mass spectrometry)
HER2 ヒト上皮成長因子受容体2(human epidermal growth factor receptor 2)
IBX 2−ヨードキシ安息香酸(2−iodoxybenzoic acid)
LiHMDS ヘキサメチルジシラザンリチウム(lithium hexamethyldisilazan)
MitoTAX ミトコンドリア標的型タモキシフェン(mitochondrially targeted tamoxifen)
MitoVES ミトコンドリア標的型ビタミンEコハク酸エステル(mitochondrially targeted vitamin E succinate)
NMR 核磁気共鳴(nuclear magnetic resonance)
TAX タモキシフェン(tamoxifen)
TBAF フッ化テトラブチルアンモニウム(tetrabutylammonium fluoride)
THF テトラヒドロフラン(tetrahydrofuran)
TLC 薄層クロマトグラフィー(thin layer chromatography)
臭化(9−((tert−ブチルジメチルシリル)オキシ)ノニル)トリフェニルホスホニウム(634mg、1.057mmol)を、乾燥したテトラヒドロフラン(THF)に溶解し、アルゴン気体で包み−78℃まで冷却した。この反応混合物に対して、アルゴン気体下でブチルリチウム(1.2ml、THF中0.9M溶液)をゆっくりと滴加した。この溶液を0℃まで温めると色が暗赤色に変化し、もう一度−78℃まで冷却し、乾燥THFに溶解した化学式IIIのアルデヒド(160mg、0.430mmol)を滴加した。次いで、この反応混合物を研究室室温まで温め、アルゴン気体下で16時間撹拌した。反応の進行をクロロホルム−メタノール(10:1)混合物の薄層クロマトグラフィー(TLC)で監視した。次いで、塩化アンモニウムと水の飽和溶液をこの反応混合物に加え、サクセアンエチルで再抽出した。この酢酸エチル層を食ブラインで洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。この溶液をろ過し、減圧下で濃縮した。ジクロロメタン(DCM)/メタノール(メタノールの勾配0%〜10%)のシステムのシリカゲルカラム上でこの濃縮物のクロマトグラフィーを行い、化学式4の生成物147mg(56%収率)を生成した。
臭化(9−((tert−ブチルジメチルシリル)オキシ)ノニル)トリフェニルホスホニウムは、文献で公開された手順にしたがって調製された(Tetrahedron Letters,2010,51,49,6426−6428)。
化学式4のシリル化誘導体をTHF(5ml)に溶解し、次いでアルゴン気体で包み、フッ化テトラブチルアンモニウム(TBAF)(260μl、THF中1M溶液)を0℃撹拌下において滴加した。この反応混合物を次いで研究室室温まで温め、もう6時間撹拌した。反応の進行をクロロホルム−メタノール(10:1)の混合物中の薄層クロマトグラフィー(TLC)で監視した。次いで水を加え、この混合物を酢酸エチルで抽出した。この酢酸エチル層を、ソーダ及びブラインの飽和溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。この乾燥剤をろ過して除き、この溶液を減圧下で濃縮した。この濃縮物をクロロホルム/メタノール(メタノールの勾配0%〜10%)のシステムのシリカゲル上でのカラムクロマトグラフィーによって精製し、115mg(96%収率)の必要な化学式5のアルケノールを生成した。
化学式5のアルケノール誘導体(115mg、0.231mmol)を、無水エタノール(6ml)に溶解し、アルゴン気体で包んだ。この混合物に10%Pd/C(10mg)を加え、反応懸濁物のフラスコを排気し水素気体で包むことを数回繰り返した。次いで、この反応混合物を研究室室温において水素気体下で24時間撹拌した。反応の進行をクロロホルム−メタノール(10:1)の混合物中の薄層クロマトグラフィー(TLC)で監視した。この混合物をセライト層でろ過し、エタノールで数回洗浄した。エタノールを蒸発させ、101mg(87%収率)の必要な化学式6のアルコールを生成した。これは合成の次の段階のためにこれ以上精製することなく使用される。
化学式6のアルコール(230mg、0.460mmol)を、DCM(10ml)に溶解した。この混合物にCBr4(480mg、1.447mmol)を、研究室室温アルゴン気体下において加えた。次いで、DCM(3ml)に溶解したトリフェニルホスフィン(400mg、1.525mmol)を滴加した。この混合物を研究室室温において2時間撹拌し、次いで減圧下で濃縮した。反応の進行をクロロホルム−メタノール(10:1)の混合物中の薄層クロマトグラフィー(TLC)で監視した。DCM/メタノール(勾配0%〜10%)のシステムのシリカゲルカラム上でこの濃縮物のクロマトグラフィーを行い、必要な化学式7の臭化物273mg(92%収率)を生成した。臭化物は長期保管すること無く、次の反応にかけられた。
化学式6のアルコール(102mg、0.204mmol)をDCM(6ml)に溶解した。この混合物にトリフェニルホスフィン(83mg、0.316mmol)及びイミダゾール(27mg、0.397mmol)を室温において加え、この反応混合物を氷浴中で4℃まで冷却した。この冷却した反応混合物にヨウ素(76mg、0.302)を加え、研究室室温において4時間撹拌した。反応の進行をクロロホルム−メタノール(10:1)の混合物中の薄層クロマトグラフィー(TLC)で監視した。この反応混合物をジクロロメタンに溶解し、チオ硫酸塩で抽出した。さらにこの有機層をソーダ及びブラインの飽和溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した。DCM/メタノール(勾配0%〜10%)のシステムのシリカゲルカラム上でこの濃縮物のクロマトグラフィーを行い、必要な化学式8のヨウ化物100mg(80%収率)を生成した。ヨウ化物は長期保管すること無く、次の反応にかけられた。
トリフェニルホスフィン(300mg、1.444mmol)を化学式7の臭化物(273mg、0.425mmol)に加え、この混合物を85℃アルゴン気体下において12時間撹拌した。反応の進行をクロロホルム−メタノール(10:1)の混合物中の薄層クロマトグラフィー(TLC)で監視した。この反応混合物を研究室室温まで冷却して最小量のDCMに溶解し、0℃において常時撹拌の状態でヘキサン溶液(50ml)に滴加した。生成した沈殿物をろ過して最小量のDCMに再度溶解し、0℃において常時撹拌の状態でジエチルエーテル溶液(50ml)に滴加した。この沈殿物をろ過して減圧下で乾燥し、黄色粉末の形で281mg(73%収率)の必要な化学式9の化合物を生成した。
実施例6において始まる手順と同様の手順を適用することで、化学式8のヨウ化物から化学式10の化合物を得ることが出来る。
化学式5の化合物は、化学式IIIのアルデヒドから直接的に、臭化(9−((tert−ブチルジメチルシリル)オキシ)ノニル)トリフェニルホスホニウムの代わりに、臭化(9−ヒドロキシノニル)トリフェニルホスホニウムと反応させることで得ることができる。こうした合成はより短く、より経済的である。主な違いは溶解性を挙げるためのTHF及びDMSOの混合物の使用であり、臭化(9−ヒドロキシノニル)トリフェニルホスホニウムとの反応を直接的に実行できる。これは実質THFでは不可能であったこの手順は−78℃の代わりに室温で実行される。この手順はまた、必要な化合物の調製にかかる総時間をかなり減少させることに繋がる。
化学式6の化合物から化合物9a(第3級アミン塩酸塩)を、化合物7を単離する必要なしに調製することができる。調製時間は短縮され、収量はより高い。
ジエチルエーテル(6ml)中に溶解した化学式6のアルコール(300mg、0.6mmol)に、HCl(6ml)の飽和エーテル溶液を加えた。この混合物を減圧下で濃縮し、DCM(6ml)に溶解した。この反応混合物にCBr4(298mg、0.901mmol)を加え完全に溶解させた後、トリフェニルホスフィン(252mg、960mmol)を加えた。この反応を5分後にメタノール(1ml)及びHClの飽和エタノール溶液(3ml)の添加によって停止させた。この溶液を減圧下で濃縮し、トリフェニルホスフィン(2.000g、7.625mmol)を加えた。この反応混合物を100℃の温度においてオーバーナイトで混合した。この混合物を室温まで冷却し、次いでDCM(10ml)中に溶解した。この混合物を次いで室温まで冷却し、DCM(10mL)中に溶解し、冷却し強く撹拌しているジエチルエーテル(100mL)に滴加した。この沈殿物をろ過して減圧下で乾燥し、白色のやや油っぽい固体の形で334mg(74%)の公式9aの生産物を生成した。この生産物 を、DCM(2ml)への溶解とその後のジエチルエーテル(20ml)中への沈殿とを繰り返すことで再精製してもよい。
化学式11の化合物の調製−タモキシフェンのアルケニルトリフェニルホスホニウム異性体の誘導体
臭化ノナン−1,9−ジイルビス(トリフェニルホスホニウム)を、1,9−ジブロモノナン及びトリフェニルホスフィンの混合物をジメチルホルムアミド溶液中で100℃において16時間撹拌しその後酢酸エチルで結晶化させることによって調製した。
臭化ノナン−1,9−ジイルビス(トリフェニルホスホニウム)(545mg、674mmol)をDMSO(1ml)に溶解し、次いでTHF(3ml)を加えた。この反応混合物にLiHMDS溶液(670μl、THF中1M)を3分間かけて滴加した。この反応混合物の色が明橙色に変化した。次いで、この反応混合物にTHF(1ml)中の化学式IIIのアルデヒド(100mg、0.269mmol)を滴加し、この反応物を室温においてもう10分間撹拌した。反応の進行をクロロホルム−メタノール(10:1)の混合物中の薄層クロマトグラフィー(TLC)で監視した。この反応混合物を、冷却した塩化アンモニウム(10ml)の飽和溶液に注ぎ、ジエチルエーテル(5x20ml)で抽出した。合わせた有機層を乾燥し、硫酸マグネシウムで乾燥した。この乾燥剤をろ過して除き、この生成物を減圧下で濃縮した。クロロホルム/メタノール(勾配0%〜10%)のシステムのシリカゲルカラム上でこの濃縮物のクロマトグラフィーを行い、必要な化学式11の生産物56mg(30%)を生成した。
実施例6にしたがって調製したMitoTAXについて、乳癌細胞株への影響の試験を行った。異なるレベルのHER2タンパク質発現及びエストロゲン受容体(ERα)を示す細胞株を用いた。細胞株MCF7は、比較的低いHER2タンパク質の発現を特徴とする。異なるHER2タンパク質レベルの乳癌細胞のMitoTAXによる死滅試験のために、我々はHER2−及びHER+のMCF7細胞を準備した。MCF7細胞に対して「サイレンシング無し(non−silencing)」(NS)配列を持つベクター、HER2発現を減衰させる「ショートヘアピン(short hairpin)」(sh)配列を持つベクター、及びHER2遺伝子を持つベクターによって遺伝子導入した。図2は、ウェスタンブロッティング法による前記異なる亜株中のHER2タンパク質の発現を示している。その後の試験においては、前記亜株のNS、Sh1 26(クローン26)、及び+11(クローン11)を用いた。
我々は、様々な乳癌細胞株においてTAX及びMitoTAXのIC50値を評価した。それぞれの値について、クリスタルバイオレット法を用いて両物質の様々な濃度における細胞の生存曲線から決定した。我々は様々なレベルのHER2及びERαタンパク質の細胞株、ERα+/HER2low(MCF7par)、ERα+/HER2+(MCF7HER2+、BT474、NeuTL−乳腺癌のネズミの細胞株)、ERα+/HER2−(MCF7HER2−、T47D、ZR75−1)、ERα−/HER2+(SK−BR−3)、ERα−/HER−(MDA−MB−231、MDA−MB−453、MDA−MB−436)を用いた。表Iから、IC50値がMitoTAXにおいて、ほぼ1オーダーの規模で著しく低くなっているのは明らかである。最も感受性が高いものは、ERα+/HER2+の遺伝子型を持つMCF7HER2+亜株である。対応するERα+/HER2−(MCF7HER2−)及びERα+/HER2low(MCF7par)の遺伝子型を持つ細胞株は、約2倍高いIC50値を特徴としており、これは高いHER2タンパク質レベルがMitoTAXへの感受性の上昇に繋がることを示している。一方でMitoTAXとは逆に、高HER2細胞のTAXへの感受性は減少している。このことは、(我々の知る限りにおいて)他のいかなる抗癌物質においても報告されていないMitoTAXの特性を示している。
我々はMitoTAXが腫瘍の成長を抑制するかどうかについても同様に調べた。MitoTAXの抗癌効果についてはFVB/N c−neuトランスジェニックマウス系列を用いて試験した。このマウス系列は、腫瘍無しで産まれ、成体時にはエストロゲンの作用によるHER2タンパク質発現の上昇を特徴としている(Guy CT et al.Expression of the neu proto−oncogene in the mammary epithelium of transgenic mice induces metastatic disease. Proc Natl Acad Sci USA 1992;89:10578−10582.)。これらのマウスは乳腺の部位において、生後3から4ヶ月に異形成及び次いで過形成をきたし、生後6ヶ月に明白な腫瘍を形成する。重要なことには、これは免疫システムが機能している状況において発生する。この乳(乳腺)癌モデルは「非浸潤性乳管癌(ductal in situ)」タイプの高HER2タンパク質ヒト乳癌についての非常に優れた近似となる。我々の結果(図3)は、これらの腫瘍の成長に対するMitoTAXの非常に優れた効果を示している。一用量3μmolのTAX及び0.5μmolのMitoTAXを週2回2週間かけてマウスに投与した。高精度非侵襲で深部を含めて腫瘍を可視化できる超音波撮像を用いて、腫瘍体積を定量化した。MitoTAXがTAXに対して約20倍から30倍効果的であることが明らかであり、両物質間の差異は非常に大きいものである。(*)の記号は処理した動物とコントロールの動物との間で有意な差があることを示しており、(**)の記号はTAXで処理した動物とMitoTAXで処理した動物との間で有意な差があることを示している。これらの実験動物において明らかな毒性は観察されなかった。図の下の写真は、各動物グループにおける代表的な腫瘍を示している。
MitoTAXの重要な側面は、HER2癌遺伝子の発現が上昇した系に対してより高い成長抑制活性を示すことである。このことは図4に示されており、ここではまた、HER2癌遺伝子の発現が減少した系(クローン26)が、MitoTAXにより低い応答性を示し、対してTAXについては完全にこれと逆であることが示されている。これらの実験のために、我々はまた親株のMCF7細胞を高用量のTAXに長期間曝すことによりTAXに耐性を持ったMCF7亜株を準備した。これらのTAX耐性を持つ細胞が、MitoTAXに感受性を示すことがわかる(図4)。図4の結果は、様々な遺伝子型のMCF7細胞に由来する乳癌亜株の生存率を図示している(ERα+/HER2low、MCF7par;ERα+/HER2+、MCF7HER2+−クローン26;ERα+/HER2−、MCF7HER2−−クローン11;ERα+/HER2low、MCF7TAX−R)。この結果は、様々な濃度のMitoTAX及びTAX存在下において、生細胞と死細胞を識別することを可能にするクリスタルバイオレット法を用いて得られた。
癌細胞に細胞死をもたらす抗がん物質において細胞死の機序は重要な特徴である。この理由から、我々はMitoTAXがアポトーシスを引き起こすかどうかを試験した。アポトーシスは言い換えればプログラム細胞死であり、細胞が死ぬときに制御されており、そのアポトーシスの残骸の細胞体は組織から炎症反応無しで食細胞により取り除かれる。図5は、この物質が実際にアポトーシスを引き起こしていることを示している。アポトーシスの評価は、フローサイトメトリーの方法により、細胞膜の外側の部分においてアネキシンVを持つ細胞の割合を見積もることによって行われた。もう一度見ると、この結果は、MitoTAXは高HER2タンパク質細胞への高い効果を持ち、一方で低HER2タンパク質細胞はMitoTAXにより高い耐性を示す(アポトーシスは行われつつも)ことを示している。
過去の発表(Moreira PI et al.Tamoxifen and estradiol interact with the flavin mononucleotide site of complex I leading to mitochondrial failure.J Biol Chem 2006;281:10143−10152.)は、TAXが高濃度においてミトコンドリア内の標的を複合体Iとすることを示唆している。我々はこれがMitoTAXにおいても同じであることを明らかにし、図6において示している。この図はまた、TAX(左)及びMitoTAX(右)の複合体I及びIIを介した呼吸に対する抑制効果を示している。TAXが20μM超の濃度において、複合体IIよりも複合体Iを好んで抑制することがわかる。MitoTAXも同様に複合体IIよりも複合体Iを好んで抑制するが、約1〜2μMというより大幅に低い濃度において抑制している。これらのアッセイのために、MCF7細胞をOxygraf装置の容器内に置き、高用量のTAX(左)及びMitoTAX(右)における呼吸量を決定した。呼吸量(ATP産生に繋がる酸素消費)は106細胞において関連付けられ、最初の呼吸レベルを1とした相対値として示されている。
多くのミトカンと一般的に関連する特性は、癌細胞選択的な酸化ストレスの上昇(活性酸素種(ROS)の形成)能力であり、特にその作用は酸化的リン酸化に関与するミトコンドリア複合体に関連するものである。これは通常ミトコンドリア電位の低下と関係している(Neuzil J et al.Classification of mitocans,anti−cancer drugs acting on mitochondria.Mitochondrion 2013;13:199−208. Kluckova K et al.Mitochondrial complex II,a novel intriguing target for anti−cancer agents.Biochim Biophys Acta 2013; 1827:552−564.)。我々はROSの形成についてMitoTAXにおいても試験した。図7は、HER2レベルの異なるMCF7亜株において、TAX又はMitoTAX(両者とも5μM)への暴露1時間後のROS産生を示している。TAXは同濃度のMitoTAXに比べて明らかに効果がより低いことがわかる。別の重要な知見は、MitoTAXが高HER2レベルの細胞において、より高いROS産生を誘導し、それに対して低HER2細胞においてはより低いROS産生を誘導することである。TAXはこの傾向にはしたがわない。全ての場合において、ミトコンドリア呼吸の脱共役剤(CCCP)は、ミトコンドリア電位を基礎値まで低下させる。図8は、MitoTAXが既に5μMで1時間以内にミトコンドリア電位を低下させる(TAXは低下させない)ことを示している。
高HER2タンパク質レベルの乳癌細胞において、当該タンパク質はミトコンドリア中に好んで局在化している。これは図9に示されており、図9ではオリジナルのMCF7株、HER2+MCF7(クローン11)、及びHER2−MCF7(クローン26)のウェスタンブロットが示されており、またここでは現存の亜株(クローンTAM−R)はTAXに耐性を示していると見られる。クローン11はミトコンドリア、細胞質、及び核内分画においてHER2タンパク質(矢印でマークされている)の発現上昇を特徴としていることがわかる。下の図は細胞膜がより長い時間暴露されたときのミトコンドリア分画を示しており、この結果ミトコンドリア中においては、かなり低いレベルではあるものの、HER2タンパク質は親株のMCF7細胞及びTAX耐性の細胞において存在しているが、低HER2の細胞(クローン26)においては存在していない。この驚くべき結果は、最近発表された研究と一致している(Ding Y et al.Receptor tyrosine kinase ErbB2 translocates into mitochondria and regulates cellular metabolism.Nat Commun 2012;3:1271)。この発表においてまた、HER2タンパク質を高発現しミトコンドリア中に大部分局在化する乳癌細胞がトラスツズマブに耐性を持つことが示されている。トラスツズマブの癌細胞への適用の間、より多くのHER2タンパク質がミトコンドリアに移動した(Ding Y et al.Receptor tyrosine kinase ErbB2 translocates into mitochondria and regulates cellular metabolism.Nat Commun 2012;3:1271.)。乳癌細胞がHER2タンパク質をその表面(細胞膜)から遠ざけて移動させ、その結果当該タンパク質はトラスツズマブによる影響を受けられなくなる。HER2抑制の結果の一つは、細胞周期の抑制因子であるp27タンパク質の活性化であり、細胞の悪性性質を減少させることである(Yang HY, Shao R,Hung MC, Lee MH.p27 Kip1 inhibits HER2/neu−mediated cell growth and tumorigenesis.Oncogene 2001;20:3695−3702.)。これは、癌細胞が高い増殖状態を維持するよう進化的にプログラムされているため高HER2タンパク質レベルの癌細胞に負の影響を持つ(Hanahan D,Weinberg RA.The hallmarks of cancer. Cell 2000;100:57−70)。したがって我々は、トラスツズマブの標的であるHER2タンパク質が巨視的に見て細胞膜に存在しないため、細胞はトラスツズマブへの耐性を獲得するのであろうと推測することが出来る。にもかかわらず、このプロセスの間にもミトコンドリア中への浸透を可能にしたMitoTAXへの感受性は上昇し、このことはMitoTAXの特別な性質をさらに際立たせる。
高HER2タンパク質の乳癌細胞における感受性上昇の理由の一つは、癌細胞のミトコンドリアにおける生体エネルギー学と形態学の変化である。ミトコンドリア中でのHER2タンパク質の高レベルは、ミトコンドリアの機能と同様に形態学も変化させる。図10は、HER2+細胞(クローン11)のミトコンドリアがHER2−細胞(クローン26)のミトコンドリアに比べて約2倍短くなっていることを示している。これらのミトコンドリア全長を、ミトコンドリア標的性のGFPタンパク質(緑色蛍光によってミトコンドリアを可視化する)を遺伝子導入した細胞株の共焦点顕微鏡観察により見積もった。Fuji Freehand Lines Measurement Toolのソフトウェアを用いて、ランダムに選択した50細胞のミトコンドリアを解析することによって全長を決定した。これは、ミトコンドリア呼吸の減少と関係しており、ミトコンドリア電位の低下及び乳酸塩の高産生(有酸素解糖系代謝への転換の兆候)に関連している。この場合において、高HER2タンパク質レベルの細胞は、親株細胞及び低HER2タンパク質レベルの細胞に比べて約2倍多い乳酸塩を産生することが示されている。呼吸の場合は、状況は全く逆となっている。高HER2タンパク質レベルの細胞は呼吸がより少なくなる(ATP産生量がより低い酸素消費と関連している)。高HER2タンパク質レベルを特徴とする細胞のATP産生における解糖系の割合がより高くなることは、グルコースの取込量が上昇することにもまた関連している(図12)。
高HER2タンパク質レベルのHER2+細胞がMitoTAXに対して高い感受性を示すもう一つの理由は、この物質のエストロゲン受容体に対する効果であり、抗アポトーシス効果を持つことである(Thomas C,Gustaffson J.The different roles of ER subtypes in cancer biology and therapy.Nat Rev Cancer 2011 ;11:597−608. Deblois D,Giguere V.Oestrogen−related receptors in breast cancer:control of cellular metabolism and beyond.Nat Rev Cancer 2013;13:27−36.)。これは図13に示されており、MitoTAXが既に1μMにおいてERαの発現を約3倍低下させ、一方でTAXは効果が無いことがわかる。これらの結果はリアルタイムPCR法を用いて得られた。
上述のFVB/N c−neuマウス系列におけるMitoTAのHER2タンパク質高発現腫瘍に対する高い効果は非常に重要である。HER2タンパク質高発現のヒト腫瘍に対応するこの腫瘍について、HER2タンパク質及びその他の幾つかの遺伝子の発現を分析した。図14は、腫瘍を持つ代表的なFVB/N c−neuマウス(左上図)と、同様に摘出した腫瘍(左下図)とを示している。腫瘍のウェスタンブロッティングによる分析の結果は、腫瘍が高いレベルのHER2タンパク質を含み、乳腺の正常組織においては殆ど検知不能であることを示している。この図はまた、ミトコンドリア分画(Mito)及び細胞質ゾル分画(Cyto)の分析結果を示している。ある特定のタンパク質に対する抗体がミトコンドリア分画のマーカーとして使用されている。HER2タンパク質の絶対多数がミトコンドリア中に局在化していることが明らかである。これらの実験的な腫瘍から得られた結果は、HER2高発現乳癌細胞から得られた結果に対応している。
腎臓癌において同一の腫瘍が突然変異プロファイルの異なる領域を含むことが最近示されている(Gerlinger M et al.Intratumor heterogeneity and branched evolution revealed by multiregion sequencing.N Engl J Med 2012;366:883−892.)。腫瘍の不均一性(Stingl J,Caldas C.Molecular heterogeneity of breast carcinomas and the cancer stem cell hypothesis.Nat Rev Cancer 2007;7:791−799.)及びこの現象は、乳癌腫の場合においても同様に確認された。この知見は興味深いことにFVB/N c−neuトランスジェニックマウスにおける自然発生腫瘍が幾つかの重要な遺伝子の発現がmRNAのレベルで異なる領域を含むという知見と相関しており、これは乳がん治療に大いに影響する可能性がある。この知見は、ERα、HER2、Ki67(高HER2レベルの場合において高くなる増殖マーカー)、及びGATA3(HER2発現に正の影響を与える転写活性化因子)に関係している。これは図15に示されている。この実験において、二つの腫瘍を幾つかの部分に分け、これらの部分をリアルタイムPCRを用いて上述の遺伝子の発現について分析した。この結果は、腫瘍の核領域において前記遺伝子の発現が非常に異なっており、最大で5倍まで変化していることを示している。実験のFVB/N c−neuマウスにおける腫瘍の各部分のHER2遺伝子の発現が異なるもう一つの証拠が、以下の図において示されており、そこにおいては、ヘマトキシリン・エオジン染色に基づく腫瘍の形態学と(図16)、HER2タンパク質発現の免疫組織化学分析とを見ることができる(図17)。これらの明らかな違いは、腫瘍の各部分におけるmRNAレベルでのHER2発現の差異と対応しており、腫瘍間の不均一性についての公表データと一致している(Gerlinger M et al.Intratumor heterogeneity and branched evolution revealed by multiregion sequencing.N Engl J Med 2012;366:883−892. Stingl J,Caldas C.Molecular heterogeneity of breast carcinomas and the cancer stem cell hypothesis.Nat Rev Cancer 2007;7:791−799.)。図17は、腫瘍の外側部位、外部領域(部分1a)、中間領域(部分1b)、及び内部領域(部分1c)の間でHER2タンパク質発現が非常に大きく異ることを示している。このことは、腫瘍のある領域がTAX治療に耐性を持ち(高HER2タンパク質発現の領域)、ある別の領域がトラスツズマブ治療に耐性を持つ(低HER2タンパク質発現の領域)であろうことを意味している。さらに、トラスツズマブの作用がHER2タンパク質のミトコンドリアへの移動増加を伴うものであり、それによって高HER2タンパク質発現の腫瘍領域がこの種の治療に耐性を獲得することは予期されうることである。一方で、MitoTAXは、ミトコンドリアにおいて作用し、高HER2タンパク質発現を特徴とする細胞を、当該タンパク質が低発現の細胞よりも効果的に死滅させるものであり、トラスツズマブに耐性を持つ腫瘍領域にも対処することが可能である。
乳癌細胞を効果的に死滅させるMitoTAXは、その他の種類の癌細胞に対しても効果的である。このことは表2に示されており、癌腫、肉腫、及び白血病を含む様々な種類の癌を死滅させるためのMitoTAX及びTAXのIC50値を見ることが出来る。IC50値は全ての場合においてTAXよりもMitoTAXについて低い値となった。
図18は、MCF7乳癌細胞(A)及び高HER2タンパク質レベルのMCF細胞亜株(B)における、表3に示されているMitoTAXのアルキル及びアルケニルトリフェニルホスホニウム誘導体の効果により誘導されたアポトーシスを示している。フローサイトメトリーを用いたアネキシンVの外部局在化レベルの評価に基づく特定のアポトーシスアッセイを利用して、アポトーシスを起こした細胞の割合を決定した。MCF7及びMCF7HER2+細胞を、それぞれのMitoTAX誘導体に2μMの濃度で24時間暴露した。「CTRL」の列は、試験した物質の添加無しの細胞集団におけるアポトーシスを起こした細胞の割合を示しており、よってこれはアポトーシスの基準値と対応している。全ての試験したMitoTAX誘導体がアポトーシスを誘導した。
本発明による一般化学式I及びIAの新規タモキシフェン誘導体は、医療の現場における癌治療法のために、及び製薬業界において効果的ながん治療薬を調製するために適用することができる。
Claims (14)
- タモキシフェン由来のトリフェニルホスホニウムが付加された脂肪族鎖を持つ、ミトコンドリア標的型のE型及び/又はZ型異性体であって、前記脂肪族鎖はアルキル又はアルケニルである前記異性体、及び
それらの対応する第三級アミン塩であって、クエン酸塩、酢酸塩、乳酸塩、酒石酸塩、シュウ酸塩、アスコルビン酸塩、メシル酸塩、トシル酸塩などの有機酸塩、又は硫酸塩、ハロゲン化物、リン酸塩などの無機酸塩の群から選択される前記第三級アミン塩、及び/又は
これらの混合物であって、
タモキシフェンのアルキルトリフェニルホスホニウム誘導体は以下の一般化学式Iを有し、
一般化学式I中のタモキシフェン部分に位置する交差した二重結合は、当該二重結合がE型及び/又はZ型の配置をとりうることを示し、
タモキシフェンのアルケニルトリフェニルホスホニウム誘導体は一般化学式IAを有し、
一般化学式IA中の側鎖に位置する交差した二重結合は、当該二重結合がE型及び/又はZ型の配置をとりうることを示す、
異性体、及びそれらの対応する第三級アミン塩、及び/又はこれらの混合物。 - 請求項1記載の一般化学式Iのタモキシフェンのアルキルトリフェニルホスホニウム誘導体を調整する方法であって、前記方法は、一般化学式IIのtert−ブチルジメチルシリル−オキシ−アルキル−トリフェニルホスホニウムであって、
XはI、Br、Cl、又はメシルである、前記ホスホニウムから、テトラヒドロフラン中、アルゴン気体下、−78℃下における有機塩基の処理下において生成されるイリドが、化学式IIIのアルデヒドと縮合して、
一般化学式IVのシリル化誘導体はフッ化テトラブチルアンモニウムによって処理され、一般化学式Vのアルケノールを生成し、
これは、触媒存在下の水素気体中において、一般化学式VIのアルコールに還元され、
一般化学式VIのアルコールは、一般化学式VIIの適切な誘導体に置換され、
XはI、Br、Cl、又はメシルであり、
これは、トリフェニルホスフィンとともに加熱することによって、一般化学式Iのミトコンドリア標的型のタモキシフェンのアルキルトリフェニルホスホニウム誘導体へと変換される
ことを特徴とする、方法。 - 請求項1記載の一般化学式Iのタモキシフェンのアルキルトリフェニルホスホニウム誘導体を調整する方法であって、前記方法は、対応する臭化(ヒドロキシアルキル)トリフェニルホスホニウムが塩基によって処理され、室温下テトラヒドロフラン及びジメチルスルホキシドの混合物中において化学式IIIのアルデヒドと縮合し、一般化学式Vのアルケノールを生成し、当該アルケノールから、請求項2記載の方法を用いることによって一般化学式Iのタモキシフェンのアルキルトリフェニルホスホニウムが得られることを特徴とする、方法。
- 腫瘍性疾患を治療する薬剤を調製するための、請求項1記載の一般化学式I及び/又はIAの、タモキシフェンの脂肪族トリフェニルホスホニウム誘導体のミトコンドリア標的型のE型及び/又はZ型異性体、またはそれらの混合物の使用。
- 癌腫、肉腫、リンパ腫、及び白血病の治療薬を調製するための請求項5記載の使用。
- 星状細胞腫、神経芽腫、膠芽腫、中皮腫、乳癌、前立腺癌、非小細胞肺癌、子宮頚癌、骨肉腫、結腸直腸癌、肝細胞癌、白血病を含むがこれらに限定されない腫瘍性疾患の治療薬を調製するための請求項5記載の使用。
- 請求項1記載の一般化学式I及び/又はIAの、タモキシフェンの脂肪族トリフェニルホスホニウム誘導体のミトコンドリア標的型のE型及び/又はZ型異性体、またはそれらの混合物の使用であって、HER2、ERα、GATA3又はKi67タンパク質の異なるレベルでの発現に関係なく、乳癌腫瘍の様々な領域中の癌細胞を死滅させる薬剤を調製するための使用。
- 請求項1記載の一般化学式I及び/又はIAの、タモキシフェンの脂肪族トリフェニルホスホニウム誘導体のミトコンドリア標的型のE型及び/又はZ型異性体、またはそれらの混合物の使用であって、エストロゲン受容体ERαを抑制する薬剤を調製するための使用。
- 請求項1記載の一般化学式I及び/又はIAの、タモキシフェンの脂肪族トリフェニルホスホニウム誘導体のミトコンドリア標的型のE型及び/又はZ型異性体、またはそれらの混合物の使用であって、ミトコンドリア複合体Iを介した呼吸を阻害する薬剤を調製するための使用。
- 請求項1記載の一般化学式I及び/又はIAのタモキシフェンの脂肪族トリフェニルホスホニウム誘導体のE型及び/又はZ型異性体の少なくとも一つを含有することを特徴とする、腫瘍性疾患を治療するための薬剤。
- 請求項11記載の薬剤であって、腫瘍性疾患が高HER2タンパク質レベルの乳癌であることを特徴とする、薬剤。
- 請求項11記載の薬剤であって、腫瘍性疾患が低HER2タンパク質レベルの乳癌であることを特徴とする、薬剤。
- 請求項11記載の薬剤であって、低及び高HER2タンパク質レベルの乳癌以外の腫瘍性疾患に対して有効であることを特徴とする、薬剤。
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