JP6356227B2 - メタロβラクタマーゼの阻害剤 - Google Patents
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Description
本願は、2013年5月7日に出願の係属中の米国特許仮出願番号第61/820,277号の優先権の利益を主張するものであり、この内容は本明細書中参照として全体に援用される。
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤と、
1つまたは複数の式I
R1が、C(O)OR5、C(O)NHR5、およびCH(NH2)C(O)OR5から選択され;
R2、R3、R4、およびR5が、独立して、H、C1−24アルキル、C1−6アルキレンC6−10アリール、C1−6アルキレンC3−10シクロアルキル、C1−6アルキレンC3−10ヘテロシクロアルキル、およびC1−6アルキレン−OC(O)C1−6アルキルから選択され;
n、m、およびpが、1および2から独立して選択される;
化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と
を含む医薬組成物であって、
1つまたは複数のβラクタム系化合物および1つまたは複数の式Iの化合物は、細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害、もしくは状態を処置するために有効な量で存在する、
医薬組成物を含む。
R1が、C(O)OR5、C(O)NHR5、およびCH(NH2)C(O)OR5から選択され;
R2、R3、R4、およびR5が、独立して、H、C1−24アルキル、C1−6アルキレンC6−10アリール、C1−6アルキレンC3−10シクロアルキル、C1−6アルキレンC3−10ヘテロシクロアルキル、およびC1−6アルキレン−OC(O)C1−6アルキルから選択され;
n、m、およびpが、独立して1および2から選択される;
化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物の有効量と併用して1つまたは複数のβラクタム系抗生剤の有効量を、それを必要とする対象に投与することを含む、方法を含む。
(a)細菌耐性遺伝子を発現する細菌細胞と1つまたは複数の化合物を接触させることであって、上記細胞が(i)細胞内への分子の侵入を遮断するタンパク質をコードする遺伝子および(ii)細胞からの分子の排出を促進するタンパク質をコードする遺伝子のうちの1つまたは複数が欠失するように改変されており、上記1つまたは複数の化合物が、細菌耐性遺伝子によりコードされるタンパク質に感受性のある抗生剤の存在下で細胞と接触される、ことと、
(b)抗生剤耐性を処置する化合物として細菌細胞の増殖を阻害する化合物を同定することと
を含む、方法を含む。
特段記載がない限り、このセクションおよび他のセクションに記載される定義および実施形態は、当業者が適切に理解するために説明される本明細書中の本願の全ての実施形態および態様に使用可能であるように意図される。
環境微生物由来の天然産物抽出物の収集物を使用してNDM−1メタロβラクタマーゼの阻害剤の細胞ベースのスクリーニングを実施した。MBL阻害剤の発見に対するスクリーニングの感受性を増大させるために、bamBおよびtolCの遺伝子が、独立して欠失している大腸菌 BW25113の試験株(E.coli BW25113ΔbamBΔtolC)を作製した。BamBは、外膜のポリンアセンブリに関与しており、破壊されると小分子に対する透過性が増大し19、TolCは、細胞から小分子を能動的に排除するAcrA−AcrB−TolCなどの3分子の小分子排出システムの一部である20。よって、E.coli BW25113ΔbamBΔtolCは、「ヒット」の発見のためのスクリーニングの感受性を増大させる。この株を、pLacプロモーターの制御下でblaNDM−1βラクタマーゼ遺伝子を染色体[E.coli BW25113ΔbamBΔtolCΔaraDAB::pLac(blaNDM−1)]に統合することによりさらに改変した。この株を、〜500の天然産物の抽出物と組み合わせたメロペネムの亜致死濃度(0.125μg/mlの最小阻止濃度の1/4)の存在下でスクリーニングした。
R1が、C(O)OR5、C(O)NHR5、およびCH(NH2)C(O)OR5から選択され;
R2、R3、R4、およびR5が、独立して、H、C1−24アルキル、C1−6アルキレンC6−10アリール、C1−6アルキレンC3−10シクロアルキル、C1−6アルキレンC3−10ヘテロシクロアルキル、およびC1−6アルキレン−OC(O)C1−6アルキルから選択され;
n、m、およびpが、独立して1および2から選択される;
式Iの化合物またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物の有効量と併用して1つまたは複数のβラクタム系抗生剤の有効量を、その必要のある対象に投与することを含む、方法を含む。
本願はまた、
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤と、
1つまたは複数の式I
R1が、C(O)OR5、C(O)NHR5、およびCH(NH2)C(O)OR5から選択され;
R2、R3、R4、およびR5が、独立して、H、C1−24アルキル、C1−6アルキレンC6−10アリール、C1−6アルキレンC3−10シクロアルキル、C1−6アルキレンC3−10ヘテロシクロアルキル、およびC1−6アルキレン−OC(O)C1−6アルキルから選択され;
n、m、およびpが、独立して1および2から選択される;
式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/または溶媒和物と
を含む医薬組成物であって、
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤および1つまたは複数の式1の化合物が、細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害、もしくは状態を処置するために有効な量で存在する、
医薬組成物を含む。
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤と、
1つまたは複数の上記に定義した式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と
を含む医薬組成物であって、
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤および1つまたは複数の式Iの化合物が、細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害、もしくは状態の処置のためのβラクタム系抗生剤の効力を改善するために有効な量で存在する、
医薬組成物を含む。
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤と、
1つまたは複数の式I
R1が、C(O)OR5、C(O)NHR5、およびCH(NH2)C(O)OR5から選択され;
R2、R3、R4、およびR5が、独立して、H、C1−24アルキル、C1−6アルキレンC6−10アリール、C1−6アルキレンC3−10シクロアルキル、C1−6アルキレンC3−10ヘテロシクロアルキル、およびC1−6アルキレン−OC(O)C1−6アルキルから選択され;
n、m、およびpが、独立して1および2から選択される;
式Iの化合物またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
任意に、1つまたは複数のβラクタム系抗生剤ならびに1つまたは複数の式Iの化合物またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を、それを必要とする対象に投与するための説明書と
を含む、キットを含む。
1つまたは複数の上記に定義した式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
1つまたは複数の式Iの化合物またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を、細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害、もしくは状態のための抗生剤を投与されている対象に投与するための説明書と
を含む、キットを含む。
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤と、
1つまたは複数の上記に定義した式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
任意に、1つまたは複数のβラクタム系抗生剤ならびに1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を、それを必要とする対象に投与するための説明書と
を含む、キットを含む。
1つまたは複数の上記に定義した式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
1つまたは複数の上記に定義した式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を、細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害、もしくは状態を処置するためのβラクタム系抗生剤を投与されている対象に投与するための説明書と
を含む、キットを含む。
本願はまた、細菌耐性遺伝子を発現する細菌細胞を含む細胞ベースのスクリーニングアッセイであって、上記細胞が(i)細胞中への分子の侵入を遮断するタンパク質をコードする遺伝子および(ii)細胞からの分子の排出を促進するタンパク質をコードする遺伝子の内の1つまたは複数が欠失するように改変されている、アッセイを含む。
(a)細菌耐性遺伝子を発現する細菌細胞と1つまたは複数の化合物を接触させることであって、上記細胞が(i)細胞中への分子の侵入を遮断するタンパク質をコードする遺伝子および(ii)細胞からの分子の排出を促進するタンパク質をコードする遺伝子のうちの1つまたは複数が欠失するように改変されており、1つまたは複数の化合物が、細菌耐性遺伝子によりコードされるタンパク質に感受性のある抗生剤の存在下で細胞と接触していることと、
(b)抗生剤の耐性を処置する化合物として、上記細菌細胞の増殖を阻害する化合物を同定することと
を含む、方法を含む。
実施例1:AM‐Aの単離および活性
材料および方法
(a)試薬
全ての酵素および分析グレードの化学物質は、特段記載のない限りシグマアルドリッチ社より購入した。プロトンおよびカーボンNMRスペクトルを、Bruker 700MHz分光計で記録した。ニトロセフィンを、従来報告されるようにに合成した。
プラスミドDNAの精製およびゲル抽出を、PureLink(商標)Quick plasmid miniprepおよびPureLink(商標)Quick gel extraction kit(インビトロジェン)をそれぞれ使用して実施した。制限酵素を、Fermentasから購入した。PCR DNA増幅のプライマーを、IDT(アイオワ州コーラルビル)から購入した、PCRを、製造元が特定した反応条件を使用し、Phusion ハイフィデリティーDNAポリメラーゼ(サーモフィッシャー・サイエンティフィック)を使用して行った。全てのライゲーション反応を、製造元の指示にしたがって、T4 DNAリガーゼ(サーモフィッシャー・サイエンティフィック)を使用して行った。全てのβラクタマーゼの過剰発現構築物を、N末端Hisタグを含むpET−28bプラスミドでリーダーペプチドなしで生成した。リーダーペプチド配列は、SignalP 4.0 25を使用して決定した。すべてのベクターを、E.coli TOP10 ケミカルコンピテントセルにおいて形質転換した。
VIM−2、IMP−7、CTX−M−15、TEM−1、およびOXA−48:それぞれのβラクタマーゼ構築物で形質転換したE. coli BL21(DE3)のコロニーを、50μg/mlのカナマイシンを含むLB培地でイノキュレートし、37℃で増殖させた。タンパク質の発現を、OD600 0.7で1mMのIPTGを用いて誘導し、培養物を一晩16℃でインキュベートした。細胞を遠心により収集し、βラクタマーゼを発現する1Lの培養物由来の細胞ペーストを、8mlの0.85%のNaClで洗浄し、20mMのHEPES(pH7.5)、500mMのNaCl、20mMのイミダゾールおよび20μMのZnSO4(金属酵素のため)を含むバッファーに再懸濁し、次いで超音波処理により溶解させた。溶解物を、Beckman JA 25.50ローターを使用して、20,000RPM(48254×g)、4℃で45分間遠心した。この上清を、5mLのHiTrap Ni−NTAカラム(GE Lifesciences)に、一定の流速3ml/分で適用した。カラムを5カラム容量の同一のバッファーで洗浄し、増大するイミダゾールのステップグラジエントを、洗浄および溶出ステップに使用した。精製されたβラクタマーゼを含む画分を、SDS−PAGEに基づき集め、20mMのHEPES(pH7.5)、150mMのNaCl、20%のグリセロールおよび金属酵素のための20μMのZnSO4を含むバッファー中で、4℃で一晩透析した。NDM−1は、84μgのSUMOプロテアーゼを添加して、上述のように精製した。プロテアーゼおよび非切断のNDM‐1を、5mlのHiTrap Ni−NTAカラムに透析した溶液を適用し流出画分を収集することにより除去した。全ての精製した酵素を、SDS‐PAGEによる評価で>95%の純度であると検証し、−20℃で保存した。
〜500の天然産物抽出物を、0.125μg/mlのメロペネムと組み合わせてE. coli BW25113ΔbamBΔtolCΔaraDAB::pLac(blaNDM−1)に対してスクリーニングした。このスクリーニングを、カチオンを調節したミューラーヒントンブロス(CAMHB)を使用して、96ウェルプレート中で2重に行った。低度増殖の対照は2×MICメロペネム(1μg/ml)であり、増殖の対照は1/4MICメロペネム(0.125μg/ml)であった。Z’は0.77と決定されており、これは良好なスクリーニングウィンドウを示した。
WAC−138(アスペルギルス・ベルシコロル)(4L)を、2%(W/V)HP−20樹脂(ダイヤイオン)と共に減圧下で蒸発させ、残渣のWAC138−Eを得た。粗製混合物を、H2O(1L)、10%のMeOH(1L)、25%のMeOH(1L)、60%のMeOH(1L)、および100%のMeOH(1L)で溶出するHP−20(100g)カラム上に適用して、5つの画分、WAC138−E−1〜5を得た。活性画分WAC138−E−1を、逆相CombiFlash ISCO(RediSep Rf C18、テレダイン)に適用し、水−アセトニトリルリニアグラジエントシステム(linear gradient system)(0−100%のアセトニトリル)で溶出して65の画分、WAC138−E−1−1〜65を得た。活性細画分WAC138−E−1−5を、25%のMeOHで溶出するSephadex LH−20カラム(100ml)に通し、12の細画分を得た。活性細画分WAC138−E−1−5−6〜8を組み合わせ、1%の酢酸(V/V)5ml中で再結晶化させて、白色結晶としてAM‐Aを得た。1Lの培養物から、〜200mgのAM−Aを得た。
酵素(NDM−1、5nM;VIM−2,500pM;CTX−M−15、500pM;KPC−2、5nM;OXA−48、1nM;TEM−1、100pM;ACE、50nM)を、AM‐Aと5〜10分間プレインキュベートした後に、30μMのニトロセフィン(TEM1に対しては100μMのニトロセフィン、ACE24に対しては250μMのフランアクリロイル−L−フェニルアラニルグリシルグリシン[FAPGG])と混合した。金属酵素に、10μMのZnSO4を補充した。アッセイを、30〜37℃で、Spectramaxリーダー(モレキュラーデバイス)を使用して、490nmにて96ウェルマイクロプレートの形式で読み取った。
酵素(500nM)を、AM‐A(500μM)と10分間インキュベートした。上記の20μlを、以下の最終的な濃度:酵素(50nM)、FAPGG(50μM)/ニトロセフィン(20μM)、AM−A(50μM)とするために、180μlのニトロセフィンまたはFAPGG基質で希釈した。バッファー(50mMのHEPES(pH7.5)、300mMのNaCl)を、2g/100mLのキレックス−100(バイオ・ラッド;カリフォルニア州リッチモンド)と一晩撹拌した。アッセイを、37℃で、Spectramaxリーダー(モレキュラーデバイス)を使用して、490nmにて96ウェルマイクロプレートの形式で読み取った。
5mLのNDM−1(500nM)を、AM−A(100μM)と共に、またはAM−Aを用いることなく、氷上で1時間インキュベートした。酵素のない対照は、バッファー単独(キレックス処置した50mMのHEPES(pH7.5))であった。2.5mlを、バッファーでカラムを平衡化した後PD−10スピンカラム(GEヘルスケア)に通し、2,000×gで2分間遠心した。PD−10前(+AM−A、−AM−A、−NDM−1)、PD−10後((+AM−A、−AM−A、−NDM−1)、およびニトロセフィンを、30℃に平衡化した。酵素溶液の20μlを180μlのニトロセフィンに添加して、50mMの最終酵素濃度、ならびに100μMのニトロセフィンおよび10μMのAM‐Aとした。アッセイを、Spectramaxリーダー(モレキュラーデバイス)を使用して30℃で1時間、490nmにて96ウェルマイクロプレートの形式で読み取った。
10μMのZnSO4を補充したNDM−1(5nM)を、20μMのAM−Aと30℃で15分間インキュベートした。ニトロセフィン(30μM)および500nM〜40μMのZnSO4を添加して最終容量100μlとし、490nmでの吸光度を、Spectramaxリーダー(モレキュラーデバイス)を使用して30℃で30分間モニタリングした。%残存活性を、AM‐Aのない対照から計算した。わずかに負の%残存活性は0として報告した。
NDM−1(50nM)を、8μMから1/2の段階希釈でAM‐Aを含む20μMのニトロセフィンに添加した。このアッセイを、50mMのHEPES(pH7.5)、200μLの最終容量で実施した。アッセイを、Spectramaxリーダー(モレキュラーデバイス)を使用して、37℃で10分間、490nmにて96ウェルマイクロプレートの形式で読み取った。VIM−2(10nM)を、16μMからの1/2の段階希釈でAM−Aを含む20μMのニトロセフィンに添加した。アッセイを、50mMのHEPES(pH7.5)、200μLの最終容量で実施した。アッセイを、以前に報告されたように、Spectramaxリーダー(モレキュラーデバイス)を使用して、37℃で10分間490nmにて96ウェルマイクロプレートの形式で読み取った。全てのアッセイ実験で、反応開始と第1の読み取りとの間のオフセットは〜6sであった。
E・Zn、A、E・Zn・A、およびZn・Aは、それぞれ、活性金属酵素、AM‐A、三元の金属酵素‐AM‐A複合体、およびAM‐A−金属複合体である、
モデルにしたがい、AM‐A濃度に関する擬一次速度定数kiの依存性に基づき計算した。Kiは三元複合体の解離定数を表し、k+2は、三元複合体の不活化酵素(Einact)およびAM‐A−Zn複合体への解離の速度定数である。定常状態の進行曲線は、以下の積分方程式
式に適合した。Kiおよびk+2の個々の値は、以前に報告されたように25式2
式2にkiの値を適合することにより決定した。
誘導結合質量分析(ICP−MS)を使用して、精製したNDM−1(27−270)からZn66をキレートするAM‐Aの特質を解析した。NDM−1タンパク質を、以前に報告されたように26精製し、15kDaのカットオフ透析チューブを使用して、ICP−MSバッファー(20mMのHEPES、100mMのNaCl、pH7.5)へと新たに4℃で一晩交換して、混入している金属を除去した。タンパク質を、〜5mg/mlに濃縮し、さまざまな濃度のAM−Aをタンパク質試料と、3重で、ゆっくりと撹拌しながら室温で3時間インキュベートした。タンパク質‐AM‐Aの試料を、12−14kDaカットオフ D−tube dialyzer mini(EMD biosciences)マイクロ透析カセットを使用して、ICP−MSバッファーへと、4℃で一晩再度透析した。最終的なタンパク質を、ICP−MSバッファー中で1mg/mlに希釈し、次いで、内部標準物質(10ug/L Sc45、1%の硝酸、Inorganic Ventures)中で1/40に希釈した。試料の解析の前に、ICP MSを、対象となる金属の同位体を含む標準溶液(Inorganic Ventures)を使用して較正した。次いで、タンパク質の試料を、NexION 3000 ICP質量分光計(パーキンエルマー)へ噴霧により移した。定量解析を、各要素に関して50ms/AMUの取り込み時間でのピークホッピングモードを使用して、読みとり当たり60スイープで、各試料について3重に実施した。器機の設定は、rfパワー(1600W)、積分時間(35s)、衝突気体(Ar40)、RPQ電圧(25V)および試料の流速(4rpm)であった。同位体存在比を、NexIONソフトウェアプログラムを使用して、ピーク面積を積分することにより決定し、データを、マイクロソフト社のエクセルを使用して図表として表した。
FIC値を、1/2で段階希釈した各メロペネムおよびAM‐Aの8つの濃度でチェッカーボードを設定する標準的な方法27により決定した。実験を二重に行い、平均値を計算に使用した。各化合物のMICは、増殖を示さない最も低い化合物濃度とした。各化合物のFICは、増殖を示さないウェルについて共化合物存在下での化合物濃度として計算し、その化合物のMICにより除算された。FICインデックスは、2つのFICの合計である。
AM‐Aの様々な濃度を、抵抗性についてのEUCASTの限界点である2mg/lのメロペネムと組み合わせて選択した28。2つの化合物の相乗的な特性は、増殖培地としてBHI(Oxford Science Park、英国)および0.5マックファーランドの接種菌液を使用してマイクロタイタートレイで試験した。すべてのプレートは、対照株の大腸菌ATCC 25922および緑膿菌ATCC 27853を含んだ。全体として、226の非クローン性の臨床単離物(腸内細菌科、緑膿菌およびアシネトバクター属)を、以下のMBL:SPM−1(n=17)、AIM−1(n=8)、NDM−1(n=67)、VIM−型(n=114)またはIMP−型(n=20)のうちの1つを含めて試験した。VIM−1を保有する3つのE.coliおよび5つの肺炎桿菌が、セリンカルバぺネマーゼKPCも有しており、NDM−1を保有する4つのE.Coliおよび1つの肺炎桿菌が、カルバぺネマーゼOXA−181も有していた。プレートを37℃でインキュベートし、18時間後に読み取った。サブセットの株(♯48)を反復して再現性を試験し、元のデータから偏差がないことを示した。
すべての動物を、マックマスター大学の中央動物施設での特定の病原体フリーユニットに収容した。全ての実験プロトコルは、マックマスター動物研究倫理審査会(McMaster Animal Research Ethics Board)により認可されており、これにしたがって実施された。雌性CD1マウスを、チャールズリバーより購入した。
マウスに肺炎桿菌N11−2218を、すべての臓器細菌負荷実験では2×106のコロニー形成単位(cfu)で、またはすべての生存実験では5×107のcfuの用量で、腹腔内(ip)を介して感染させた。すべての臓器細菌負荷実験では、マウスを感染から48時間後に安楽死させ、脾臓および肝臓を回収した。臓器を氷上で1mlの滅菌性PBSの中に置き、次いでホモジナイズした(ミキサーミル400;レッチェ)。臓器のホモジネートをPBSで段階希釈し、cfu計測のためブリリアントグリーン寒天(Oxoid)上にプレーティングした。生存曲線のため、マウスをエンドポイントまでモニタリングした。すべての実験で、マウスを、特定の皮下用量のPBS、メロペネム、AM‐A阻害剤、または抗生剤および阻害剤の組み合わせのいずれかで、感染から30分後に処置した。
E.coli株BW25113を、浸透性を増大させ、かつ小分子の排出を低減させるためにbamBおよびtolCの遺伝子の欠失により改変性した。次いで、この株を、pLacプロモーター制御下のblaNDM−1遺伝子の単一コピー染色体挿入によりさらに改変性した。微生物の天然産物抽出物を、致死量以下の1/4MICメロペネムの存在下で、この株に対してスクリーニングした。AM‐Aをヒット抽出物から精製して、その構造をNMR、質量分析および旋光分析により明らかにした。AM‐AのIC50値を、以下の精製した酵素:MBL IMP−7、VIM−2、およびNDM−1;SBL CTX−M−15、KPC−2、OXA−48、およびTEM−1、ならびにウサギの肺由来のACEに対し、レポーター基質としてニトロセフィン(MBLおよびSer BLに関して)およびフランアクリロイル−L−フェニルアラニルグリシルグリシン(ACEに関して)21を使用して、決定した。IC50、可逆性、Zn2+回復、および不活性化酵素アッセイを、50mMのHEPES(pH7.5)中で実施し、SpectraMaxリーダー(モレキュラーデバイス)を使用して測定した。ICP−MSの実験を、5mg/mlの精製したNDM−1およびさまざまな濃度のAM‐Aを用い、続いての希釈および噴霧によるNexION 3000 ICP質量分光計(パーキンエルマー)内への移行により行った。FIC値を、標準的な方法27を使用して決定した。AM‐Aの様々な濃度を、シュードモナス属、アシネトバクター属、および腸内細菌科を含む200+のMBL−発現の臨床単離物に対して、2mg/lのメロペネムと組み合わせて試験した。2×106の形成単位(cfu)用量の肺炎桿菌のN11−2218を全ての臓器細菌量の実験で使用し、5×107cfuの用量をすべての生存実験で使用した。全ての実験で、マウスを感染から30分後に化合物で処置した。
この実施例では、様々なAM‐Aのプロドラッグを調製する。
(a)一般化学
AM−Aのプロドラッグを、AM‐A中のカルボン酸基を活性化し、次いで塩基の存在下で適切な求核剤を添加することにより調製する。反応混合物を中和後単離して、以下のAM‐Aのプロドラッグ
R=−CH3、−(CH2)xCH3(x=1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、15、15、16、17または18)、−CH2OC(O)t−Bおよび
AM‐Aのプロドラッグを得る。
Claims (34)
- 前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤が、ペニシリン誘導体(ペネム系)、セファロスポリン(セフェム系)、モノバクタム、およびカルバペネムから選択される、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤が、イミペネム、エルタペネム、メロペネム、ドリペネム、ビアペネム、パニペネム、チカルシリン、アンピシリン、アモキシシリン、カルベニシリン、ピペラシリン、アズロシリン、メズロシリン、チカルシリン、セフォペラゾン、セフォタキシム、セフトリアキソン、およびセフタジジムから選択される、請求項2に記載の医薬組成物。
- 前記1つまたは複数の抗生剤が、カルバペネム系抗生剤である、請求項2に記載の医薬組成物。
- 前記カルバペネム系抗生剤が、メロペネム、ビアペネム、ドリペネム、パニペネム、およびイミペネムから選択される、請求項4に記載の医薬組成物。
- R2、R3、R4、およびR5が、それぞれHである、請求項1〜5のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- R2、R3、R4、およびR5が、独立して、C1−18アルキル、C1−4アルキレンC5−6ヘテロシクロアルキル、およびC1−4アルキレン−OC(O)C1−6アルキルから選択される、請求項1〜5のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- R2、R3、R4、およびR5が同一であり、C1−18アルキル、C1−4アルキレンC5−6ヘテロシクロアルキル、およびC1−4アルキレン−OC(O)C1−6アルキルから選択される、請求項7に記載の医薬組成物。
- R 2、R3、R4、およびR5が、独立して、H、C1−18アルキル、C1−4アルキレンC5−6ヘテロシクロアルキル、およびC1−4アルキレン−OC(O)C1−6アルキルから選択される、請求項1〜5のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- R2、R3、R4、およびR5が同一である、請求項9に記載の医薬組成物。
- 式Iの化合物が、AM−Aまたはそれらの薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物から選択される、請求項1〜5のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 1つまたは複数のβラクタム系抗生剤と、
請求項1および請求項6〜11のいずれか1項に記載の1つまたは複数の式Iの化合物、またはそれらの薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
を含む医薬組成物であって、
前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤および1つまたは複数の式Iの化合物が、細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害、もしくは状態の処置に関するβラクタム系抗生剤の効力を改善するために有効な量で存在する、
医薬組成物。 - 前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤および前記1つまたは複数の式Iの化合物が、別々の剤形で製剤化される、請求項1〜12のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤および前記1つまたは複数の式Iの化合物が、単一の剤形で製剤化される、請求項1〜12のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記細菌感染症が、少なくとも1つのメタロβラクタマーゼ(MBL)を発現する細菌の感染症である、請求項1〜14のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記MBLが、IMP型、ヴェローナ・インテグロンコード型メタロβラクタマーゼ(Verona integron−encoded metallo−β−lactamase;VIM)、またはニューデリー・メタロベータラクタマーゼ(NDM)である、請求項15に記載の医薬組成物。
- 前記細菌感染症が、少なくとも1つのカルバペネム抵抗性グラム陰性細菌の感染症である、請求項1〜14のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記細菌感染症が、腸内細菌科、アシネトバクター、またはシュードモナスに属する少なくとも1つの細菌の感染症である、請求項1〜14のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記腸内細菌科の細菌が、クレブシエラ属である、請求項18に記載の医薬組成物。
- 前記腸内細菌科の細菌が、肺炎桿菌(Klebsiella pneumonia)または大腸菌(Escherichia coli)である、請求項18に記載の医薬組成物。
- 前記シュードモナス属の細菌が、緑膿菌である、請求項18に記載の医薬組成物。
- 対象において細菌感染症から生じる疾患、障害または状態を処置または予防する方法において使用するための医薬組成物であって、
前記組成物は、請求項1および請求項6〜11のいずれか1項に記載の1つまたは複数の式Iの化合物、またはそれらの薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を含み、
前記方法は、1つまたは複数のβラクタム系抗生剤の有効量を前記組成物と併用して、前記対象に投与することを含む、
医薬組成物。 - 細菌感染症を処置するためのβラクタム系抗生剤の効力を改善する方法において使用するための医薬組成物であって、
前記組成物は、請求項1および請求項6〜11のいずれか1項に定義される1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を含み、
前記方法は、前記組成物を前記抗生剤と併用して、それを必要とする対象に投与することを含む、
医薬組成物。 - 細菌感染症から生じる疾患、障害または状態を処置するためのβラクタム系抗生剤の効力を改善する方法において使用するための医薬組成物であって、
前記組成物は、請求項1および請求項6〜11のいずれか1項に定義される1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を含み、
前記方法は、それを必要とする対象に前記組成物を投与することを含む、
医薬組成物。 - 細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害もしくは状態を処置するためのキットであって、
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤と、
請求項1および請求項6〜11のいずれか1項に定義される1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
任意に、前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤ならびに前記1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を、それを必要とする対象に投与するための説明書と
を含む、キット。 - 細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害もしくは状態を処置するためのキットであって、
請求項1および請求項6〜11のいずれか1項に定義される1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
前記1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を、細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害もしくは状態のための抗生剤を投与されている対象に投与するための説明書と
を含む、キット。 - 細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害もしくは状態を処置するためのβラクタム系抗生剤の効力を改善するためのキットであって、
1つまたは複数のβラクタム系抗生剤と、
請求項1および請求項6〜11のいずれか1項に定義される1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
任意に、前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤ならびに前記1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を、それを必要とする対象に投与するための説明書と
を含む、キット。 - 細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害もしくは状態の処置のためのβラクタム系抗生剤の効力を改善するためのキットであって、
請求項1および請求項6〜11のいずれか1項に定義される1つまたは複数の式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物と、
1つまたは複数の上記に定義される式Iの化合物、またはその薬学的に許容可能な塩および/もしくは溶媒和物を、細菌感染症、または細菌感染症から生じる疾患、障害もしくは状態を処置するために前記βラクタム系抗生剤を投与されている対象に投与するための説明書と
を含む、キット。 - 前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤が、ペニシリン誘導体(ペネム系)、セファロスポリン(セフェム系)、モノバクタムおよびカルバペネムから選択される、請求項25〜28のいずれか1項に記載のキット。
- 1つまたは複数のβラクタム系抗生剤が、イミペネム、エルタペネム、メロペネム、ドリペネム、ビアペネム、パニペネム、チカルシリン、アンピシリン、アモキシシリン、カルベニシリン、ピペラシリン、アズロシリン、メズロシリン、チカルシリン、セフォペラゾン、セフォタキシム、セフトリアキソンおよびセフタジジムから選択される、請求項25〜28のいずれか1項に記載のキット。
- 前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤および前記1つまたは複数の式Iの化合物が、別々の剤形で製剤化される、請求項25〜30のいずれか1項に記載のキット。
- 前記1つまたは複数のβラクタム系抗生剤および前記1つまたは複数の式Iの化合物が、単一の剤形で製剤化される、請求項25〜30のいずれか1項に記載のキット。
- 式Iの化合物が、真菌から抽出された天然産物である、請求項1〜24のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記真菌がアスペルギルス・ベルシコロル(Aspergillus versicolor)である、請求項33に記載の医薬組成物。
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