JP6305626B2 - フィリリンの化学合成方法 - Google Patents
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Description
1)グリコシル基受容体であるフィリゲニン及びグリコシル基供与容体を第一の有機溶媒に溶解したのち、グリコシル化して、テトラアシルフィリリンを得る、
2)テトラアシルフィリリンを第二の有機溶媒に溶解したのち、脱アシル化反応のためにナトリウムメトキシドを添加し、酸性のpH調整剤を添加して反応混合液のpH値を中性に調整し、精製してフィリリンを得る。
1)グリコシル化
フィリゲニン(372mg,0.001mol)及び2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダート(738mg,0.0015mol)が100mLの三つ口フラスコに入れられ、ここで、フィリゲニンと2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:1.5である、無水ジクロロメタン20mL及び4Åタイプのアルミノケイ酸塩分子篩(744mg)がフラスコに添加されたのち、不活性ガスによる保護のため不活性ガスである窒素がフラスコに導入され、続いて0.5時間撹拌され、均一に混ぜられたのち、ルイス酸触媒であるトリメチルシリルトリフラート(TMSOTf,0.06mL,0.312mmol)が液滴に添加され、ここで、ルイス酸触媒と2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:5であり、分子篩とフィリゲニンとの質量比は2:1である、得られた混合物はグリコシル化するために0℃で10時間撹拌された。
クエンチ剤であるトリエチルアミン(0.312mmol)がグリコシル化をクエンチするため、反応混合液に添加される、ここで、クエンチ剤であるトリエチルアミンとルイス酸触媒であるトリフルオロメタンスルホン酸トリメチルシリル(すなわち、トリメチルシリルトリフラート)のモル比は1:1である。その後、クエンチされたグリコシル化混合物はブフナー漏斗によって濾過され、濾過物はシリカゲルクロマトグラフィー(溶離液:石油エーテル/酢酸エチル=3:2(v/v))によって濃縮、精製され、テトラアセチルフィリリンが得られる。
3−1)テトラアセチルフィリリンは、ジクロロメタン及びメタノールの混合液30mlに溶解され、ここで、混合液のジクロロメタンとメタノールとの体積比は1:2であり、その後、ナトリウムメトキシド(0.22mg,0.004mmol)が添加され、ナトリウムメトキシドと2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:375であり、続いて撹拌しながら4時間脱アシル化反応したのち、pH調節剤である酢酸を加えて脱アシル化反応混合物のpHをpH6に調整する。
ESI-MSによるm/z[M-H]が533であることから、その分子量は534である。
1)グリコシル化
フィリゲニン(372mg,0.001mol)及び2,3,4,6-テトラ-O-ベンゾイル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダート(1.11g,0.0015mol)が100mLの三つ口フラスコに入れられ、ここで、フィリゲニンと2,3,4,6-テトラ-O-ベンゾイル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:1.5である、無水ジクロロメタン20mL及び3Åタイプのアルミノケイ酸塩分子篩(744mg)が添加されたのち、不活性ガスによる保護のため、不活性ガスであるアルゴンが導入され、続いて0.5時間撹拌され、ルイス酸触媒であるトリフルオロメタンスルホン酸銀80mg(0.312mmol)が液滴に添加され、ここで、ルイス酸触媒と2,3,4,6-テトラ-O-ベンゾイル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:5である、分子篩とフィリゲニンとの質量比は2:1である、得られた混合物はグリコシル化するために10℃で8時間撹拌される。
分子篩は、反応の促進を確実にするため、反応により生成した水を除去する目的で添加される。
グリコシル化をクエンチするため、クエンチ剤であるチオ硫酸ナトリウム(0.312mmol)が反応混合液に添加される、ここで、クエンチ剤であるチオ硫酸ナトリウムとルイス酸触媒であるトリフルオロメタンスルホン酸トリメチルシリルのモル比は1:1である、その後、クエンチしたグリコシル化した混合物は、ブフナー漏斗によって濾過され、濾過物はシリカゲルクロマトグラフィー(溶離液:石油エーテル/酢酸エチル=2:1(v/v))によって濃縮・精製され、テトラ-ベンゾイル-フィリリンが得られる。
3−1)テトラ-ベンゾイル-フィリリンは、ジクロロメタン及びメタノールの混合液30mlに溶解され、ここで、混合液のジクロロメタンとメタノールとの体積比は1:2であり、その後、ナトリウムメトキシド(0.22mg,0.004mmol)が添加され、ここで、ナトリウムメトキシドと2,3,4,6-テトラ-O-ベンゾイル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:375であり、続いて撹拌しながら4時間脱アシル化反応したのち、pH調節剤である酢酸を加えて脱アシル化反応混合物のpHをpH7に調整する。
1)グリコシル化
フィリゲニン(372mg,0.001mol)及び2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダート(1.23g,0.0025mol)が100mLの三つ口フラスコに入れられ、ここで、フィリゲニンと2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:2.5である、無水ジクロロメタン20mL及び5Åタイプのアルミノケイ酸塩分子篩(744mg)が添加されたのち、不活性ガスによる保護のため、不活性ガスである窒素が導入され、続いて0.5時間撹拌されたのち、ルイス酸触媒であるトリメチルシリルトリフラート(0.08mL,0.416mmol)が液滴に添加され、ここで、ルイス酸触媒と2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとモル比は1:6である、分子篩とフィリゲニンとの質量比は2:1である、得られた混合物はグリコシル化するために0℃で10時間撹拌される。
グリコシル化をクエンチするため、クエンチ剤であるトリエチルアミン(0.416mmol)が反応混合液に添加される、ここで、クエンチ剤であるトリエチルアミンとルイス酸触媒であるトリフルオロメタンスルホン酸トリメチルシリルとのモル比は1:1である、その後、クエンチしたグリコシル化混合物はブフナー漏斗によって濾過され、濾過物はシリカゲルクロマトグラフィー(溶離液:石油エーテル/酢酸エチル=3:2(v/v))によって濃縮・精製され、テトラ-アセチルフィリリンが得られる。
3−1)テトラ-アセチルフィリリンは、ジクロロメタン及びメタノールの混合液30mlに溶解され、ここで、混合液のジクロロメタンとメタノールとの体積比は1:2であり、その後、ナトリウムメトキシド(0.337mg,0.00625mmol)が添加され、ここで、ナトリウムメトキシドと2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:400である、続いて撹拌しながら4時間脱アシル化反応したのち、pH調節剤である酢酸を加えて脱アシル化反応混合物のpHをpH6に調整する。
1)グリコシル化
フィリゲニン(372mg,0.001mol)及び2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダート(492.6mg,0.001mol)が100mLの三つ口フラスコに入れられ、ここで、フィリゲニンと2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:1である、無水ジクロロメタン20mL及び4Åタイプのアルミノケイ酸塩分子篩(744mg)がフラスコに添加されたのち、不活性ガスによる保護のため、不活性ガスである窒素が導入される、続いて0.5時間撹拌され、ルイス酸触媒である三フッ化ホウ素エチルエーテル錯体(0.025mL,0.2mmol)が液滴に添加され、ここで、ルイス酸触媒と2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:5であり、ここで、分子篩とフィリゲニンとの質量比は2:1であり、得られた混合物はグリコシル化するために0℃で10時間撹拌される。
グリコシル化をクエンチするため、クエンチ剤であるトリエチルアミン(0.2mmol)が反応混合液に添加される、ここで、クエンチ剤であるトリエチルアミンとルイス酸触媒である三フッ化ホウ素エーテラートとのモル比は1:1であり、その後、クエンチされたグリコシル化混合物はブフナー漏斗によって濾過され、濾過物はシリカゲルクロマトグラフィー(溶離液:石油エーテル/酢酸エチル=3:2(v/v))によって濃縮・精製され、テトラ-アセチルフィリリンが得られる。
3−1)テトラアセチルフィリリンは、ジクロロメタン及びメタノールの混合液30mlに溶解され、ここで、混合液のジクロロメタンとメタノールとの体積比は1:2であり、その後、ナトリウムメトキシド(0.11mg,0.002mmol)が添加され、ナトリウムメトキシドと2,3,4,6-テトラ-O-アセチル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比は1:500であり、続いて撹拌しながら12時間脱アシル化反応したのち、pH調節剤である酢酸を加えて脱アシル化反応混合物のpHをpH7に調整する。
1 試験管内抗ウイルス試験
1.1 試験材料
(1)薬物:以下の薬物は、すべて精製水に溶解され、濾過され、殺菌され、分注され、使用するまで4℃で保管された。
1)フィリリン:Dalian Fusheng Natural Medicinal Development Co.,Ltd.から入手可能な白色固体である。2つの高速液体クロマトグラフィー検出器、すなわち、紫外線検出器及び蒸発光散乱検出器(ELSD)で面積正規化法により測定された純度は99.1%であった。
2)リバビリン注射剤:Henan Runhong Pharmaceutical Co.,Ltd.により製造された無色透明の液体である、製品ロット番号は1206261であり、中国医薬品許可番号はH19993553であり、その濃度は100mg/mlであり、本試験では陽性対照薬として使用される。
3)リン酸オセルタミビル:中国薬品生物製品検定所(National Institute for the Control of Pharmaceutical and Biological Products)から入手可能である。製品ロット番号は101096-200901であり、100mg/注入量であり、本試験では陽性対照薬として使用される。
ベロ細胞(アフリカミドリザル腎細胞)の細胞株は、吉林大学(Jilin University)の基礎医学院(College of Basic Medical Sciences)に保管されていた。
1)インフルエンザウイルス、パラインフルエンザウイルス及び呼吸器合胞体ウイルス(RSV)は、何れも中国予防医学科学院(Chinese Academy of Preventive Medicine)のウイルス研究所(Virology Institute)から商業的に入手できた。
2)コクサッキーウイルスB3型(CVB3)株は、アメリカに由来し、我々の教育及び研究オフィス(teaching and research office)に保管されていた。
3)コクサッキーウイルスA16型(CoxA16)株及びエンテロウイルスEV71株は、日本の国立仙台病院により贈与され、我々の教育及び研究オフィスで保管されていた。
4)アデノウイルス(AdV)は、吉林大学のノーマン・ベチューン医科大学の第一病院(The First Hospital of Norman Bethune Health Science Center)の小児科研究部から入手できた。
5)単純ヘルペスウイルスI型(HSV-I)は、厚生省の薬品生物製品検定所(The Institute for the Control of Pharmaceutical and Biological Products, Ministry of Health)から購入した。
生物学的安全キャビネット BHC−1300IIA/B3,AIRTECH
炭酸ガスインキュベーター MCO−18AIC,三洋電機
倒立顕微鏡 CKX41,オリンパス
電子化学てんびん AR1140/C,DHAUS
培地 DMEM,HyClone
ウシ胎仔血清 HyClone
トリプシン Gibco
MTT Sigma
DMSOは、Tianjin Beilian Fine Chemicals Development Co., Ltd.から入手できた。
(1)細胞の調製
ベロ細胞を1〜2日間継代培養して製膜した。培養細胞は、その後、明瞭な境界線、強い立体感及び視度が示されたのち、トリプシン消化された。トリプシン消化は、細胞表面に針状の孔が生じたあとに停止され、その後、細胞は数ミリリットルの培養液に分散され、計数され、培養液(10%のウシ胎仔血清を含有するDMEM)で約5×107 cells/Lまで希釈され、96ウェル培養プレートに播種されたのち、単層になるまで培養された。
細胞毒性試験:薬物は、細胞毒性を測定するために表1−1に示す濃度に従って希釈された。
10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、及び10-6の異なる希釈度を有するように、各ウイルスが10倍段階で順次希釈された。単層ベロ細胞を含む96ウェル培養プレートの6つの重複ウェルは、正常細胞対照群とともに、100μLの順次希釈液で培養された。培養プレートは、5%炭酸ガス中、37℃で2時間培養されたのち、ウイルス液が廃棄され、100μLの細胞維持液が各ウェルに添加され、5%炭酸ガス中、37℃で培養された。細胞変性効果は、3日目から顕微鏡で観察され、結果は7日目から8日目に測定され記録された。ウイルス力価は、細胞ウェルの50%に陽性病変が起こるところを終点とする最高希釈度に基づいて、Karber法により算出された。
単層細胞で覆われた培養プレートの培養液を吸引して、100TCID50となる量の攻撃ウィルスが細胞が細胞に接種され、5%炭酸ガス中、37℃で2時間置かれ、特定の濃度(およそ最大非毒性濃度)の種々の薬物液が添加された。濃度ごとに6つの重複ウェル、200μL/ウェルで試験された。リバビリン注射剤及びリン酸オセルタミビルが陽性薬物対照群、正常対照群(ウイルス及び薬物が添加されていない。)及びウイルス対照群(ウイルスは添加されているが、薬物は添加されていない。)が、薬物のウイルス誘発CPEに与える影響を調べるために、用意された。72時間後、492nm波長下でのOD値が、MTT比色法を使用して測定され、薬物の抗ウイルス有効率(ER%)が算出された。SPSS18.0統計ソフトウェアの分散分析法(ANOVA)が、薬物間で抗ウイルス有効性に有意差があるかを否かを調べるために使用された。
(1)種々のウイルスのTCID50
1)薬物の細胞毒性の測定
ベロ細胞に対する薬物の最大非毒性濃度(TC0)、50%細胞毒性濃度(TC50)及び薬物の抗ウイルス試験に使用される濃度を表1−2に示された。
種々のウイルスに抵抗する薬物の有効率及び一元配置分散分析法(ANOVA)の結果は、表1−3に示された。
2.1 実験材料
(1)実験動物
医薬用動物No.10-5219である昆明マウスは、吉林大学のノーマン・ベチューン健康科学センター(Norman Bethune Health Science Center)の実験動物センターにより提供された。
定量PCR装置 7300 ABI
PCR装置 ES-60J Shenyang Longteng Electronic
Weighing Instrument Co.,Ltd.
電子化学てんびん FA1004 Shenyang Longteng Co.,Ltd.
炭酸ガスインキュベーター HG303-5 Nanjing Experimental Instrument Factory
スーパークリーンベンチ SW-CJ-IF Suzhou Antai Air Tech Co.,Ltd.
倒立顕微鏡 CKX41 オリンパス
-80℃超低温フリーザー TECON-5082 オーストラリア
水浴振盪器 HZS-H Harbin Donglian Electronic
technology Development Co., Ltd.
マイクロプレートリーダ TECAN A-5082 オーストラリア
分光光度計 7550モデル 日本
(1)インフルエンザウイルス及びパラインフルエンザウイルスの感染により誘発された肺炎へのフィリリンの影響の研究
140匹の4週令の昆明マウスが2つの試験のために選ばれた。インフルエンザウイルス及びパラインフルエンザウイルスに感染したマウスに対するフィリリン投与後の肺指数及び肺指数阻害率を測定するために、マウスは14群にランダムに分けられた(各群10匹)。
脱脂綿の栓がビーカー(200〜300mL)に入れられ、綿が湿るまで適切な量のエーテルが添加された。麻酔をかけるためにマウスがそこに入れられる前に、脱脂綿が入ったビーカーは上下逆さまにされた。マウスが極度に興奮し明らかに弱ったのち、マウスが仰向けにされ、15LD50のインフルエンザウイルス及びパラインフルエンザウイルスを0.03ml/鼻孔の量で感染させられた。正常対照群では、ウイルス懸濁液は生理食塩液によって置き換えられた。
各マウスは、フィリリン、リバビリン及びリン酸オセルタミビルを感染1日前に経胃的に投与された。フィリリンは、13.0mg/kgの高用量、6.5mg/kgの中用量、及び3.25mg/kgの低用量が投与され、陽性薬物であるリバビリン及びリン酸オセルタミビルは、それぞれ19.5mg/kg及び58.5mg/kgが投与された。投与は、1日1回、連続した5日間なされた。ウイルス対照群は、同量の生理食塩液を飲ませられた。
薬物がマウスに投与されてから5日後、8時間水を飲ませることを止めたのち、マウスは秤量され、眼球摘出による放血により殺された。その後、肺は、胸腔を開いて取り出され、続いて、生理食塩液で2度洗浄され、肺の表面の水分が濾紙により除去され、秤量された。肺指数及び肺指数阻害率は以下の式に従って算出された。
マウスがインフルエンザウイルス及びパラインフルエンザウイルスに感染させられたのち、得られた肺指数の平均値は、3.25〜13.0mg/kg/dの範囲の濃度のフィリリンが、2つの肺指数を大きく低下させるとともに、インフルエンザウイルス及びパラインフルエンザウイルスに感染したマウス肺組織の相当な保護を提供すること、を示した。結果は、表2−1及び表2−2に示された。
生体内の抗ウイルス試験は、フィリリンが、インフルエンザウイルス及びパラインフルエンザウイルスによって誘発されるマウスのウイルス性肺炎に対して、3.25mg/kg/d〜13.0mg/kg/dの用量範囲で比較的顕著な阻害効果を有し、肺指数及び赤血球凝集価を著しく低減することができ、ウイルス対照群と比較して有意差を有すること、を示した。
Claims (5)
- 以下の工程を含むことを特徴とするフィリリンの化学合成方法、
1)グリコシル基受容体であるフィリゲニン及びグリコシル基供与容体である2,3,4,6-テトラ-O-アシル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートを第一の有機溶媒に溶解したのち、グリコシル化のための触媒及び分子篩を添加して、不活性ガスの保護下でグリコシル化し、テトラアシルフィリリンを得る、ここで、第一の有機溶媒は無水ジクロロメタンであり、分子篩はアルミノケイ酸塩分子篩又はアルミノケイ酸塩粉末である、
2)テトラアシルフィリリンを第二の有機溶媒に溶解したのち、脱アシル化反応のためにナトリウムメトキシドを添加して、酸性のpH調整剤を添加して反応混合液のpH値を中性に調整し、精製してフィリリンを得る、ここで、第二の有機溶媒はジクロロメタンとメタノールの混合液である。 - 請求項1に記載の方法であって、ルイス酸が触媒として使用されることを特徴とする方法。
- 請求項1に記載の方法であって、触媒とグリコシル基供与容体である2,3,4,6-テトラ-O-アシル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートとのモル比が、1:1-10であることを特徴とする方法。
- 請求項1又は2に記載の方法であって、テトラアシルフィリリンが第二の有機溶媒に溶解される前に、クエンチ剤によってグリコシル化をクエンチする工程1A)を含むことを特徴とする方法。
- 請求項1又は2記載の方法であって、工程2)におけるナトリウムメトキシドと2,3,4,6-テトラ-O-アシル-D-グルコピラノシルトリクロロアセトイミダートのモル比が1:300-500であることを特徴とする方法。
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