JP6247287B2 - 抗ビオチン抗体および使用方法 - Google Patents
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Description
本発明は抗ビオチン抗体および抗ビオチン誘導体抗体ならびにそれらの使用方法に関する。
ハプテン結合性抗体は、治療的応用および診断的応用に、捕捉モジュールとして応用することができる。例えば、フルオロフォア、キレート試薬、ペプチド、核酸、タンパク質、脂質、ナノ粒子、および他の多くの作用物質などのハプテン結合実体は、ハプテン結合性の抗体および抗体誘導体と反応することができる。これにより、そのような「ペイロード(payload)」の効果的検出、ならびに捕捉、所望の場所における蓄積、架橋および他の抗体媒介効果が可能になる。ハプテンの特徴および組成はハプテン結合実体の組成および「挙動」(サイズ、溶解度、活性、生物物理学的特性、PK、生物学的効果その他を含む)に影響を及ぼしうるので、多種多様なハプテン結合性実体を開発することが、極めて望ましい。それにより、選択したハプテンを所与のペイロードと対応させて、最適化されたハプテンコンジュゲートを生成することが可能になる。次に、最適なハプテン結合性実体を、該コンジュゲートと組み合わせて、最適な抗体-ハプテン-ペイロード複合体を生成することができる。ヒト化された抗体誘導体などのハプテン結合性実体があることは、さらに望ましい。これにより、治療的応用における免疫原性などといった干渉のリスクを著しく低減した応用が可能になる。本明細書に記載する抗体はビオチン誘導体と結合する(しかし、無修飾ビオチンとは結合しない)。これらの抗体をこの文書では「ビオチン結合性」または「抗ビオチン」抗体と呼ぶ。
本発明は、抗ビオチン抗体および抗ビオチン誘導体抗体ならびにそれらを使用する方法を提供する。
[本発明1001]
(a)SEQ ID NO:11のアミノ酸配列を含むHVR-H3、(b)SEQ ID NO:15のアミノ酸配列を含むHVR-L3、および(c)SEQ ID NO:10のアミノ酸配列を含むHVR-H2を含む、ヒト化抗ビオチン抗体。
[本発明1002]
(a)SEQ ID NO:09のアミノ酸配列を含むHVR-H1、(b)SEQ ID NO:10のアミノ酸配列を含むHVR-H2、および(c)SEQ ID NO:11のアミノ酸配列を含むHVR-H3を含む、本発明1001の抗体。
[本発明1003]
(a)SEQ ID NO:13のアミノ酸配列を含むHVR-L1、(b)SEQ ID NO:14のアミノ酸配列を含むHVR-L2、および(c)SEQ ID NO:15のアミノ酸配列を含むHVR-L3を含む、前記本発明のいずれかの抗体。
[本発明1004]
Kabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの24位にアミノ酸残基セリンを含み、かつ/またはKabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの73位にアミノ酸残基スレオニンを含むことを特徴とする、前記本発明のいずれかの抗体。
[本発明1005]
Kabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの60位にアミノ酸残基アラニンを含み、かつKabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの61位にアミノ酸残基グルタミンを含むことを特徴とする、前記本発明のいずれかの抗体。
[本発明1006]
(a)SEQ ID NO:12のアミノ酸配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有するVH配列、
(b)SEQ ID NO:16のアミノ酸配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有するVL配列、または
(c)(a)のVH配列および(b)のVL配列
を含む抗体であって、Kabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの24位のアミノ酸残基がセリンであり、かつ/またはKabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの73位のアミノ酸残基がスレオニンである、前記本発明のいずれかの抗体。
[本発明1007]
SEQ ID NO:12のVH配列を含む、本発明1004の抗体。
[本発明1008]
SEQ ID NO:16のVL配列を含む、本発明1004または1007のいずれかの抗体。
[本発明1009]
SEQ ID NO:12のVH配列およびSEQ ID NO:16のVL配列を含む、抗体。
[本発明1010]
完全長IgG1抗体または完全長IgG4抗体である、本発明1001の抗体。
[本発明1011]
モノクローナル抗体である、前記本発明のいずれかの抗体。
[本発明1012]
ビオチンと結合する抗体フラグメントである、前記本発明のいずれかの抗体。
[本発明1013]
前記本発明のいずれかの抗体と、薬学的に許容される担体とを含む、薬学的製剤。
[本発明1014]
医薬として使用するための、本発明1001〜1012のいずれかの抗体。
[本発明1015]
医薬の製造における本発明1001〜1012のいずれかの抗体の使用。
I.定義
本明細書に関して「アクセプターヒトフレームワーク」とは、以下に定義するヒト免疫グロブリンフレームワークまたはヒトコンセンサスフレームワークに由来する軽鎖可変ドメイン(VL)フレームワークまたは重鎖可変ドメイン(VH)フレームワークのアミノ酸配列を含むフレームワークである。ヒト免疫グロブリンフレームワークまたはヒトコンセンサスフレームワーク「に由来する」アクセプターヒトフレームワークは、それと同じアミノ酸配列を含むか、またはアミノ酸配列変化を含有しうる。いくつかの態様では、アミノ酸変化の数が10以下、9以下、8以下、7以下、6以下、5以下、4以下、3以下、または2以下である。いくつかの態様では、VLアクセプターヒトフレームワークの配列が、VLヒト免疫グロブリンフレームワーク配列またはヒトコンセンサスフレームワーク配列と同一である。
分率X/Y×100
ここで、Xは、配列整列プログラムALIGN-2が、そのプログラムによるAとBとの整列において、完全一致(identical match)と記録したアミノ酸残基の数であり、YはB中のアミノ酸残基の総数である。アミノ酸配列Aの長さがアミノ酸配列Bの長さと等しくない場合に、Aの、Bとのアミノ酸配列同一性%が、Bの、Aとのアミノ酸配列同一性%と等しくなくなることは、理解されるであろう。別段の明言がある場合を除き、本明細書において使用するアミノ酸配列同一性%値は全て、すぐ上の段落で説明したように、ALIGN-2コンピュータプログラムを使って得られる。
一局面において本発明は、ビオチンに結合する抗体に基づく。これらの抗体は本明細書において規定される。本発明の抗体は、例えばビオチン化(biotinylated)化合物と結合するための単一特異性抗体として役立ち、また、ビオチン化化合物への結合特異性をその抗体の汎用ペイロード化特徴(universal payloading characteristic)として使用することにより、あらゆる種類の疾患を診断または処置するための多重特異性抗体としても役立つ。
一局面において、本発明は、ビオチンに結合する単離された抗体を提供する。一定の態様では、抗ビオチン抗体がヒト化抗ビオチン抗体である。一定の態様では、本明細書において報告する抗ビオチン抗体が、ビオチンにコンジュゲートされかつビオチン残基を介して抗体に特異的に結合される化合物の生物学的活性に干渉することなく、ビオチン化化合物に結合する。したがってこれらの抗体は、その抗体が単一特異性抗体である場合は、ビオチンにコンジュゲートされた化合物(ビオチン化化合物)の薬物動態特性を改良するために使用することができる。また、抗体が二重特異性または多重特異性抗体である場合、1つの結合特異性はビオチンを指向して、汎用ペイロード化特異性(universal payloading specificity)として使用することができ、一方、第2の結合特異性は、例えば細胞表面分子に特異的に結合して、二重特異性または多重特異性抗体のターゲティング特徴/構成要素となるので、これらの抗体はビオチン化化合物の標的送達のために使用することもできる。
・24位にS、および/または
・73位にT
のうちの1つまたは複数を含む。
一定の態様では、本明細書に規定する抗体が、≦1μM、≦100nM、≦10nM、≦1nM、≦0.1nM、≦0.01nM、または≦0.001nM(例えば10-8M以下、例えば10-8M〜10-13M、例えば10-9M〜10-13M)の解離定数(Kd)を有する。
一定の態様では、本明細書に規定する抗体が、抗体フラグメントである。抗体フラグメントには、Fab、Fab'、Fab'-SH、F(ab')2、Fv、およびscFvフラグメント、ならびに以下に述べる他のフラグメントがあるが、それらに限定されるわけではない。一定の抗体フラグメントを概観するには、Hudson, P.J., et al., Nat. Med. 9 (2003) 129-134を参照されたい。scFvフラグメントを概観するには、例えばPlueckthun, A., In;The Pharmacology of Monoclonal Antibodies, Vol. 113, Rosenburg and Moore (eds.), Springer-Verlag, New York (1994), pp.269-315を参照されたい。また、WO 93/16185およびUS 5,571,894およびUS 5,587,458も参照されたい。サルベージ受容体結合エピトープ残基を含み、増加したインビボ半減期を有するFabおよびF(ab')2フラグメントに関する解説については、US 5,869,046を参照されたい。
一定の態様では、本明細書に規定する抗体が、キメラ抗体である。例えばUS 4,816,567、およびMorrison, S.L., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81 (1984) 6851-6855には、一定のキメラ抗体が記載されている。一例では、キメラ抗体が、非ヒト可変領域(例えばマウス、ラット、ハムスター、ウサギ、またはサルなどの非ヒト霊長類に由来する可変領域)とヒト定常領域とを含む。さらなる例では、キメラ抗体が、クラスまたはサブクラスが親抗体のものから変化している「クラススイッチ」抗体である。キメラ抗体にはその抗原結合性フラグメントが含まれる。
一定の態様では、本明細書に規定する抗体が多重特異性抗体、例えば二重特異性抗体である。多重特異性抗体は、少なくとも2つの異なる部位に対する結合特異性を有するモノクローナル抗体である。一定の態様では、結合特異性の一方がビオチンに対するものであり、他方が他の任意の抗原に対するものである。一定の態様では、二重特異性抗体が、ビオチンの2つの異なるエピトープに結合しうる。二重特異性抗体は、ビオチンを発現する細胞に細胞毒性作用物質を局在化するためにも使用することができる。二重特異性抗体は完全長抗体または抗体フラグメントとして調製することができる。
一定の態様では、本明細書に規定する抗体のアミノ酸配列変種が考えられる。例えば抗体の結合親和性および/または他の生物学的特性を改良することが望ましい場合がありうる。抗体のアミノ酸配列変種は、抗体をコードするヌクレオチド配列に適当な修飾を導入するか、またはペプチド合成によって、調製することができる。そのような修飾には、例えば抗体のアミノ酸配列からの欠失、および/または抗体のアミノ酸配列への挿入、および/または抗体のアミノ酸配列内での残基の置換が含まれる。最終構築物が所望の特徴、例えば抗原結合性を持つ限り、欠失、挿入および置換を任意に組み合わせて、最終構築物に到達することができる。
一定の態様では、1つまたは複数のアミノ酸置換を有する抗体変種が提供される。置換変異導入のための関心対象の部位には、HVRおよびFRが含まれる。表1では保存的置換を「好ましい置換」という見出しの下に示す。より実質的な変化は、表1では「例示的置換」という見出しの下に掲載されており、アミノ酸側鎖クラスに関連して以下にさらに詳しく説明するとおりである。アミノ酸置換を関心対象の抗体に導入し、生成物を所望の活性について、例えば保持/改良された抗原結合、減少した免疫原性、または改良されたADCCもしくはCDCなどについてスクリーニングすることができる。
(1)疎水性:ノルロイシン、Met、Ala、Val、Leu、Ile;
(2)中性親水性:Cys、Ser、Thr、Asn、Gln;
(3)酸性:Asp、Glu;
(4)塩基性:His、Lys、Arg;
(5)鎖配向に影響を及ぼす残基:Gly、Pro;
(6)芳香族:Trp、Tyr、Phe。
一定の態様では、抗体がグリコシル化される程度を増加または減少させるために、本明細書に規定する抗体が改変される。抗体へのグリコシル化部位の付加または欠失は、1つまたは複数のグリコシル化部位が作出または除去されるようにアミノ酸配列を改変することによって、都合よく達成することができる。
一定の態様では、本明細書に規定する抗体のFc領域に1つまたは複数のアミノ酸修飾を導入することにより、Fc領域変種を生成することができる。Fc領域変種は、1つまたは複数のアミノ酸位置にアミノ酸修飾(例えば置換)を含むヒトFc領域配列(例えばヒトIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4 Fc領域)を含みうる。
一定の態様では、システイン改変抗体(cysteine engineered antibody)、例えば抗体の1つまたは複数の残基がシステイン残基で置換されている「チオMAb(thioMAb)」を作出することが望ましいかもしれない。特定の態様では、置換残基が抗体の接近可能部位に見いだされる。それらの残基をシステインで置換することによって抗体の接近可能部位に活性チオール基が置かれることになり、本明細書においてさらに説明するように、それを使って、抗体を他の部分、例えば薬物部分またはリンカー-薬物部分にコンジュゲートすることで、イムノコンジュゲートを作出することができる。一定の態様では、次に挙げる残基の任意の1つまたは複数をシステインで置換することができる:軽鎖のV205(Kabatナンバリング)、重鎖のA118(EUナンバリング)、および重鎖Fc領域のS400(EUナンバリング)。システイン改変抗体は、例えばUS 7,521,541に記載されているように生成することができる。
一定の態様では、当技術分野において公知であり容易に入手することができる追加の非タンパク質部分を含有するように、本明細書に規定する抗体をさらに修飾することができる。抗体の誘導体化に適した部分には水溶性ポリマーがあるが、それらに限定されるわけではない。水溶性ポリマーの非限定的な例には、ポリエチレングリコール(PEG)、エチレングリコール/プロピレングリコールのコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ-1,3-ジオキソラン、ポリ-1,3,6-トリオキサン、エチレン/無水マレイン酸コポリマー、ポリアミノ酸(ホモポリマーまたはランダムコポリマー)、およびデキストランまたはポリ(n-ビニルピロリドン)ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール(propropylene glycol)ホモポリマー、ポリプロピレンオキシド(prolypropylene oxide)/エチレンオキシドコポリマー、ポリオキシエチル化ポリオール(例えばグリセロール)、ポリビニルアルコール、およびそれらの混合物などがあるが、それらに限定されるわけではない。ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒドは、水中でのその安定性ゆえに、製造時に有利でありうる。ポリマーは任意の分子量であってよく、分岐型であっても非分岐型であってもよい。抗体に取り付けられるポリマーの数はさまざまであってよく、2つ以上のポリマーが取り付けられる場合、それらは同じ分子または異なる分子であることができる。一般に、誘導体化に使用されるポリマーの数および/またはタイプは、例えば限定するわけではないが、改良しようとする抗体の特定の特性または機能、抗体誘導体が所定の条件下で治療に使用されるかどうかなどといった、考慮事項に基づいて決定することができる。
抗体は、例えばUS 4,816,567に記載されているような組換え法および組換え組成物を使って生産することができる。一態様では、本明細書に記載の抗ビオチン抗体をコードする単離された核酸が提供される。そのような核酸は、抗体のVLを含むアミノ酸配列および/または抗体のVHを含むアミノ酸配列(例えば抗体の軽鎖および/または重鎖)をコードしうる。さらなる態様では、そのような核酸を含む1つまたは複数のベクター(例えば発現ベクター)が提供される。さらなる態様では、そのような核酸を含む宿主細胞が提供される。そのような態様の一つでは、宿主細胞が、(1)抗体のVLを含むアミノ酸配列と抗体のVHを含むアミノ酸配列とをコードする核酸を含むベクターを含むか、または(2)抗体のVLを含むアミノ酸配列をコードする核酸を含む第1ベクターと抗体のVHを含むアミノ酸配列をコードする核酸を含む第2ベクターを含む(例えば、前記ベクターで形質転換されている)。一態様では、宿主細胞が真核生物、例えばチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞またはリンパ球系細胞(例えばY0、NS0、Sp20細胞)である。一態様では、抗ビオチン抗体を作成する方法であって、上に規定した抗体をコードする核酸を含む宿主細胞を抗体の発現に適した条件下で培養すること、および任意で、宿主細胞(または宿主細胞培養培地)から抗体を回収することを含む方法が提供される。
本明細書に規定する抗ビオチン抗体は、当技術分野において公知のさまざまなアッセイにより、それらの物理的/化学的特性および/または生物学的活性について、同定し、スクリーニングし、または特徴づけることができる。
一局面において、本発明の抗体は、例えばELISA、ウェスタンブロットなどの公知の方法によって、その抗原結合活性が試験される。
本発明は、1つまたは複数の細胞毒性作用物質、例えば化学療法剤または薬物、成長阻害剤、毒素(例えばタンパク質毒素、細菌、真菌、植物、もしくは動物由来の酵素的に活性な毒素、またはそのフラグメント)、または放射性同位体にコンジュゲートされた、本明細書における抗ビオチン抗体を含むイムノコンジュゲートも提供する。
本明細書において使用する用語「検出する」は、定量的検出または定性的検出を包含する。
本明細書に記載の抗ビオチン抗体の薬学的製剤は、望ましい純度を有するそのような抗体を1つまたは複数の随意の薬学的に許容される担体(Osol, A. (ed.) Remington's Pharmaceutical Sciences, 16th edition, (1980))と混合することにより、凍結乾燥製剤または水溶液の形態で調製される。薬学的に許容される担体は、使用される投薬量および濃度において受容者にとって一般に無毒性であり、これには、リン酸塩、クエン酸塩、および他の有機酸などの緩衝剤;アスコルビン酸およびメチオニンを含む酸化防止剤;保存剤(例えばオクタデシルジメチルベンジルアンモニウムクロリド;塩化ヘキサメトニウム;塩化ベンザルコニウム;塩化ベンゼトニウム;フェノール、ブチルまたはベンジルアルコール;アルキルパラベン、例えばメチルパラベンまたはプロピルパラベン;カテコール;レゾルシノール;シクロヘキサノール;3-ペンタノール;およびm-クレゾール);低分子量(約10残基未満)のポリペプチド;タンパク質、例えば血清アルブミン、ゼラチン、または免疫グロブリン;親水性ポリマー、例えばポリ(ビニルピロリドン);アミノ酸、例えばグリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン、またはリジン;単糖、二糖、および他の糖質、例えばグルコース、マンノース、またはデキストリン;キレート剤、例えばEDTA;糖類、例えばスクロース、マンニトール、トレハロースまたはソルビトール;塩形成対イオン、例えばナトリウム;金属錯体(例えばZn-タンパク質複合体);および/または非イオン界面活性剤、例えばポリエチレングリコール(PEG)などがあるが、それらに限定されるわけではない。本明細書における、例示的な薬学的に許容される担体には、さらに、間質薬物分散剤、例えば可溶性の中性活性ヒアルロニダーゼ糖タンパク質(sHASEGP)、例えばヒト可溶性PH-20ヒアルロニダーゼ糖タンパク質、例えばrhuPH20(HYLENEX(登録商標)、Baxter International, Inc.)が含まれる。rhuPH20を含む一定の例示的sHASEGPおよび使用方法は、US 2005/0260186ならびにUS 2006/0104968に記載されている。一局面では、sHASEGPが、1つまたは複数の追加グリコサミノグリカナーゼ、例えばコンドロイチナーゼと併用される。
本明細書に規定する抗ビオチン抗体はいずれも治療方法に使用することができる。
本発明の別の局面では、上述の障害の処置、防止および/または診断に有用な材料が入っている製造品が提供される。製造品は、容器、および容器上のまたは容器に付随するラベルまたは添付文書を含む。適切な容器には、例えば瓶、バイアル、シリンジ、IV溶液バッグなどがある。容器は、ガラスまたはプラスチックなど、さまざまな素材で形成されうる。容器は、組成物を単独で、またはその状態を処置、防止および/または診断するのに有効な別の組成物と組み合わせて保持し、滅菌アクセスポートを有しうる(例えば容器は静脈内溶液バッグであるか、皮下注射針で突き刺すことができる栓を有するバイアルであることができる)。組成物中の少なくとも1つの活性作用物質は本発明の抗体である。ラベルまたは添付文書は、その組成物が選択された状態の処置に使用されることを示す。さらにまた、製造品は、(a)本発明の抗体を含む組成物が入っている第1容器と、(b)さらなる細胞毒性作用物質または他の治療剤を含む組成物が入っている第2容器とを含みうる。本発明のこの態様の製造品は、さらに、特定の状態を処置するためにその組成物を使用できることを示す添付文書を含みうる。これに代えて、またはこれに加えて、製造品はさらに、薬学的に許容される緩衝液、例えば静菌性注射用水(BWFI)、リン酸緩衝食塩水、リンゲル液およびデキストロース溶液を含む第2(または第3)の容器を含みうる。商業的観点および使用者の観点から望ましい他の材料、例えば緩衝液、希釈剤、フィルタ、針、およびシリンジを、さらに含みうる。
以下は本発明の方法および組成物の実施例である。一般論は上に述べたので、他にもさまざまな態様を実施することができると理解される。
カッパ軽鎖を有するIgG1クラスのマウス抗ビオチン抗体のVHおよびVLドメインをコードするcDNAのマウスハイブリドーマからの単離および特徴付け
マウスハプテン-ビオチン抗体のVHおよびVLドメインのタンパク質および(DNA)配列情報は、ハイブリドーマクローンから直接、取得した。次に行った実験工程は、(i)抗体産生ハイブリドーマ細胞からのRNAの単離、(ii)このRNAのcDNAへの変換、VHおよびVL保有PCRフラグメントへのトランスファー、ならびに(iii)これらのPCRフラグメントの、大腸菌における増殖およびそれらのDNA(および推定タンパク質)配列決定のための、プラスミドベクターへの組込みであった。
RNeasy-Kit(Qiagen)を応用して5×106個の抗体発現ハイブリドーマ細胞からRNAを調製した。簡単に述べると沈降させた細胞をPBS中で1回洗浄し、沈降させた後、溶解のために500μlのRLT緩衝液(+β-ME)に再懸濁した。細胞をQiashredder(Qiagen)に通すことによって完全に溶解した後、製造者のマニュアルに記載のマトリックスによる精製手法(ETOH、RNeasyカラム)に付した。最後の洗浄段階後に、RNAをカラムから50μlのRNAseフリー水に回収した。1:20希釈試料のA260とA280を定量することにより、回収されたRNAの濃度を決定した。単離されたRNA試料の完全性(品質、分解度)を、ホルムアミド-アガロースゲルでの変性RNAゲル電気泳動によって分析した(Maniatis Manual参照)。無傷の18sおよび28sリボソームRNAに相当する不連続なバンドが得られ、これらのバンドが無傷であること(およびおよそ2:1の強度比)から、RNA調製物の良好な品質が示された。ハイブリドーマからの単離RNAを凍結し、小分けして-80℃で保存した。
国際特許出願PCT/EP2011/074273に記載の技術を応用することにより、後続の(RACE-)PCR反応のためのcDNAをRNA調製物から調製した。次に、VHおよびVLをコードするPCRフラグメントを、標準的な分子生物学技法により、アガロースゲル抽出とそれに続く精製とによって単離した。pCR bluntII topoキット(Invitrogen)を製造者の説明書に厳密に従って適用することにより、PWOで生成した精製PCRフラグメントを、ベクターpCR bluntII topoに挿入した。Topoライゲーション反応を大腸菌Topo10-one-shotコンピテント細胞に形質転換した。その後、VL含有インサートまたはVH含有インサートのいずれかを有するベクターを含有する大腸菌クローンを、LB-カナマイシン寒天プレート上のコロニーとして同定した。これらのコロニーからプラスミドを調製し、ベクター中の所望のインサートの存在を、EcoRIによる制限消化で確認した。ベクターバックボーンはインサートのそれぞれの側に隣接するEcoRI制限認識部位を含有するので、インサートを保有するプラスミドは、EcoRiで放出されうるおよそ800bp(VLの場合)または600bp(VHの場合)のインサートを有することによって特定された。VLおよびVHのDNA配列および推定タンパク質配列を、VHおよびVLに関する複数クローンでの自動DNA配列決定によって決定した。
マウス抗ビオチン抗体のVHおよびVLドメインのヒト化
マウスビオチン結合性抗体muM33を次のようにヒト化した。マウスハイブリドーマからのカッパ軽鎖を有するIgG1クラスのマウス抗ビオチン抗体のVHドメインおよびVLドメインを含むコード配列およびアミノ酸配列の生成および特徴付けは、WO 2011/003557およびWO 2011/003780に記載されている。この情報に基づいて、ヒト生殖細胞系フレームワークIGHV1-69-02とIGKV1-27-01との組み合わせに基づく対応ヒト化抗ビオチン抗体(huM33)を生成した。VLについては、ヒトIGKV1-27-01のフレームワークとIGKJ2-01生殖細胞系のヒトJ要素に何らかの復帰変異を組み込む必要はなかった。ヒト化VHはヒトIGHV1-69-02生殖細胞系とIGHJ4-01-3生殖細胞系のヒトJ要素とに基づく。フレームワーク領域1中の24位(A24S)とフレームワーク領域3中の73位(K73T)に2つの復帰変異を導入した。ヒト化VHのアミノ酸配列をSEQ ID NO:12に表し、ヒト化VLのアミノ酸配列をSEQ ID NO:16に示す。
ビオチン存在下でのマウス抗ビオチンFv領域の結合領域の結晶化およびX線構造決定
マウス抗ビオチン抗体の構造を決定した。そのために、周知である最新の方法(パパイン消化)を応用して、精製IgGのプロテアーゼ消化でFabフラグメントを生成し、次にそれを精製した。
1括弧内は最外殻分解能の値(highest resolution bin)を示す。
2Rmerge=Σ|I-<I>|/ΣI(式中、Iは強度である)。
3Rcryst=Σ|F0-<Fc>|/ΣFo(式中、Foは構造因子振幅観測値であり、Fcは構造因子振幅計算値である)。
4Rfreeは精密化に際して省略した総データの5%に基づいて計算した。
5PROCHECK[Laskowski, R.A., MacArthur, M.W., Moss, D.S. & Thornton, J.M. PROCHECK: a program to check the stereochemical quality of protein structure. J. Appl. Crystallogr. 26, 283-291 (1993)]で計算した。
1括弧内は最外殻分解能の値を示す。
2Rmerge=Σ|I-<I>|/ΣI(式中、Iは強度である)。
3Rcryst=Σ|F0-<Fc>|/ΣFo(式中、Foは構造因子振幅観測値であり、Fcは構造因子振幅計算値である)。
4Rfreeは精密化に際して省略した総データの5%に基づいて計算した。
5PROCHECK[Laskowski, R.A., et al., J. Appl. Crystallogr. 26, 283-291 (1993)]で計算した。
組換え抗ビオチン抗体の組成、発現および精製
マウスおよびヒト化抗ビオチン抗体可変領域をヒト起源の定常領域と組み合わせて、単一特異性または二重特異性キメラまたはヒト化抗体を形成させた。
重鎖および軽鎖を発現させるための発現カセットを含む発現プラスミドは、哺乳動物細胞発現ベクター中で別々に組み立てられた。これにより、個々の要素をコードする遺伝子セグメントは、上に概説したように接続された。
・ヒトサイトメガロウイルス(hCMV)からの前初期エンハンサーおよびプロモーター、
・コザック配列を含む合成5'-UT、
・シグナル配列イントロンを含むマウス免疫グロブリン重鎖シグナル配列、
・5'端にユニークBsmI制限部位を配し、3'端にスプライス供与部位およびユニークNotI制限部位を配した、クローン化可変軽鎖cDNA、
・イントロン2マウスIg-κエンハンサーを含むゲノムヒトκ遺伝子定常領域(Picard, D., and Schaffner, W. Nature 307 (1984) 80-82)、および
・ヒト免疫グロブリンκ-ポリアデニル化(「ポリA」)シグナル配列。
・ヒトサイトメガロウイルス(hCMV)からの前初期エンハンサーおよびプロモーター、
・コザック配列を含む合成5'-UT、
・シグナル配列イントロンを含む修飾マウス免疫グロブリン重鎖シグナル配列、
・5'端にユニークBsmI制限部位を配し、3'端にスプライス供与部位およびユニークNotI制限部位を配した、クローン化単一特異性可変重鎖cDNAまたはクローン化二重特異性融合scFv可変重鎖cDNA、
・マウスIgμ-エンハンサーを含む、ゲノムヒトγ1重鎖遺伝子定常領域(Neuberger, M.S., EMBO J. 2 (1983) 1373-1378)、および
・ヒトγ1-免疫グロブリンポリアデニル化(「ポリA」)シグナル配列。
・ハイグロマイシン耐性遺伝子、
・エプスタイン・バー・ウイルス(EBV)の複製起点oriP、
・大腸菌におけるこのプラスミドの複製を可能にするベクターpUC18からの複製起点、
・大腸菌におけるアンピシリン耐性を付与するβ-ラクタマーゼ遺伝子
を含有する。
クローニングは、Sambrook, J., et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, second edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)に記載の標準的クローニング技法を使って行った。分子生物学用試薬は(別段の表示がない場合)全て市販されており、製造者の説明書に従って使用した。
配列の作成、マッピング、解析、アノテーション、および図解には、Vector NTI Advanceスイート・バージョン9.0を使用した。
懸濁状態のヒト胎児腎臓293(HEK293)細胞の一過性トランスフェクションによって、抗ビオチン抗体を発現させた。そのために、対応する単一特異性または二重特異性抗体の軽鎖および重鎖を、上に概説したように、原核生物選択マーカーおよび真核生物選択マーカーを保有する発現ベクター中に構築した。これらのプラスミドを大腸菌中で増幅し、精製した後、一過性トランスフェクションに応用した。細胞の取り扱いには、Current Protocols in Cell Biology (2000)、Bonifacino, J.S., Dasso, M., Harford, J.B., Lippincott-Schwartz, J. and Yamada, K.M. (eds.), John Wiley & Sons, Inc.に記載されているように、標準的細胞培養技法を使用した。
トランスフェクションの7日後にHEK293細胞上清を採取した。そこに含有される組換え抗体を、プロテインA-Sepharose(商標)アフィニティクロマトグラフィー(GE Healthcare、スウェーデン)を使ったアフィニティクロマトグラフィーと、Superdex200サイズ排除クロマトグラフィーとにより、2段階で上清から精製した。簡単に述べると、抗体を含有する清澄化培養上清を、PBS緩衝液(10mM Na2HPO4、1mM KH2PO4、137mM NaClおよび2.7mM KCl、pH7.4)で平衡化したMabSelect SuReプロテインA(5〜50ml)カラムに適用した。結合していないタンパク質を平衡化緩衝液で洗い流した。抗体(または抗体誘導体)を50mMクエン酸緩衝液(pH3.2)で溶出させた。タンパク質含有画分を0.1mlの2Mトリス(pH9.0)で中和した。次に、溶出したタンパク質画分をプールし、Amicon Ultra遠心分離フィルタデバイス(MWCO:30K、Millipore)で濃縮し、20mMヒスチジン、140mM NaCl(pH6.0)で平衡化したSuperdex200 HiLoad26/60ゲル濾過カラム(GE Healthcare、スウェーデン)にのせた。精製された抗体および誘導体のタンパク質濃度は、Pace, et al., Protein Science 4 (1995) 2411-2423に従いアミノ酸配列に基づいて算出されたモル吸光計数を使用し、280nmにおける光学密度(OD)を、バックラウンド補正としての320nmにおけるODと共に決定することによって決定した。単量体型の抗体画分をプールし、瞬間凍結し、-80℃で保存した。試料の一部を後続のタンパク質分析および特徴付けに供した。
ビオチン標識化合物(ビオチン化化合物)への組換えヒト化抗ビオチン抗体の結合
バイオレイヤー干渉法(BLI)技術により、Octet QK計器(Fortebio Inc.)を使って、組換えキメラ抗ビオチン抗体および組換えヒト化抗ビオチン抗体ならびにKabatのナンバリングでHVR-H2中の53位にシステインを有するそれらの変種の結合特性を解析した。これは分子相互作用を研究するための確立されたシステムである。BLi技術は、バイオセンサーチップの表面と内部リファレンスとから反射される白色光の干渉パターンの測定に基づく。バイオセンサーチップへの分子の結合は、測定することができる干渉パターンのシフトをもたらす。上述のヒト化手法が抗ビオチン抗体のビオチンへの結合能を減少させたかどうかを解析するために、キメラ型およびヒト型の抗体の特性を、そのビオチン化タンパク質への結合能について、直接比較した。結合研究は、抗huIgG Fc抗体捕捉(anti-huIgG Fc antibody Capture)(AHC)バイオセンサー(Fortebio Inc.)上で抗ビオチン抗体を捕捉することによって行った。まず、20mMヒスチジン、140mM NaCl、pH6.0中、濃度が0.5mg/mlの抗体溶液において、バイオセンサーを1分間インキュベートした。その後、安定なベースラインに到達するように、バイオセンサーを1×PBS(pH7.4)中で1分間インキュベートした。20mMヒスチジン、140mM NaCl、pH6.0中にビオチン化タンパク質を0.06mg/mlの濃度で含有する溶液において、抗体被覆バイオセンサーを5分間インキュベートすることによって、結合を測定した。解離は1×PBS(pH7.4)中で5分間モニターした。その結果得られたキメラ抗ビオチン化抗体とヒト化抗ビオチン抗体に関する結合曲線を直接比較した。
表面プラズモン共鳴測定は、BIAcore(登録商標)T200計器(GE Healthcare Biosciences AB、スウェーデン)で、25℃において行った。4300レゾナンスユニット(RU)の捕捉系(ヒト抗体捕捉キット(Human Antibody Capture Kit)BR-1008-39(GE Healthcare Biosciences AB、スウェーデン)の10μg/ml抗ヒト捕捉(Anti-human Capture)(IgG Fc))を、GE Healthcareが供給している標準的なアミンカップリングキット(BR-1000-50)を使って、CM3チップ(GE Healthcare、BR-1005-36)にpH5.0でカップリングした。アミンカップリングのためのランニング緩衝液はHBS-N(10mM HEPES、pH7.4、150mM NaCl、GE Healthcare、BR-1006-70)とした。続く結合研究用のランニングおよび希釈緩衝液は、PBS-T(0.05%Tween 20を含む10mMリン酸緩衝食塩水)pH7.4とした。ヒト化抗ビオチン抗体の捕捉は、2nM溶液を5μl/分の流速で60秒間注入することによって行った。ビオチン化siRNAをPBS-Tで0.14〜100nM(1:3希釈系列)の濃度に希釈した。各濃度を30μ1/分の流速で180秒間注入することによって結合を測定した(解離時間600秒)。流速5μl/分の3M MgCl2溶液による30秒間の洗浄で、表面を再生した。BIAevaluationソフトウェア(GE Healthcare Biosciences AB、スウェーデン)を使ってデータを評価した。抗ヒトIgG Fc表面から得られた応答を差し引くことによってバルク屈折率の差を補正した。ブランク注入も差し引いた(=二重参照)。KDおよび速度論的パラメータの計算にはラングミュア1:1モデルを使用した。
ビオチン化化合物と抗ビオチン抗体との非共有結合的複合体の生成
一般的方法:
抗ビオチン抗体とビオチン化化合物(=ペイロードにコンジュゲートされたビオチン)との複合体の生成は、明確な複合体をもたらすべきであり、これらの複合体中の化合物(=ペイロード)はその活性を保っていることが保証されるべきである。ビオチン化化合物と抗ビオチン抗体との複合体を生成するために、ビオチン化化合物を最終濃度が1mg/mlになるようにH2Oに溶解した。抗体は、20mMヒスチジン緩衝液、140mM NaCl、pH=6.0中で、1mg/ml(4.85μM)の最終濃度まで濃縮した。ビオチン化ペイロードと抗体を、モル比が2:1(化合物対抗体)になるように、上下にピペッティングすることによって混合し、室温で15分間インキュベートした。
システイニル化リンカーを含有するビオチン誘導体化Cy5(ビオチン-Cys-Cy5)の複合体を生成するために、0.16mgのビオチン-Cys-Cy5を、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。1mgの抗体を、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、10.1mg/ml(約69μM)の濃度で使用した。ビオチン-Cys-Cy5と抗体を2.5:1のモル比(ビオチン-Cys-Cy5対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。その結果得られたコンジュゲートを、実施例7で述べるようにSDS-PAGEで分析した。蛍光の検出は実施例7で述べるように行った。
システイニル化リンカーを含有するビオチン誘導体化Cy5(ビオチン-Cys-Cy5)の複合体を生成するために、0.16mgのビオチン-Cys-Cy5を、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。1mgの抗体を、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、5.5mg/ml(約38μM)の濃度で使用した。ビオチン-Cys-Cy5と抗体を2.5:1のモル比(ビオチン-Cys-Cy5対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。その結果得られたコンジュゲートを、実施例7で述べるようにSDS-PAGEで分析した。蛍光の検出は実施例7で述べるように行った。
システイニル化リンカーを含有するビオチン化-PYY-ポリペプチドの非共有結合的複合体を生成するために、0.19mgのAc-PYY-PEG3-Cys-β-Ala-ビオチンを、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。抗体は、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、10.7mg/ml(約73μM)の濃度で使用した。Ac-PYY-PEG3-Cys-β-Ala-ビオチンと抗体を2.5:1のモル比(Ac-PYY-PEG3-Cys-β-Ala-ビオチン対抗体)で混合し、室温、350rpmで、60分間インキュベートした。その結果得られた複合体は、サイズ排除クロマトグラフィーにおいて単一ピークが存在することから、単量体型のIgG様分子(95%モノマー)であることが明らかになった。得られた複合体を、SDS-PAGEとそれに続くウェスタンブロット解析によって、さらに分析した。10μgの複合体を4×LDS試料緩衝液(Invitrogen)と混合し、95℃で5分間インキュベートした。試料を4-12%ビス-トリスポリアクリルアミドゲル(NuPAGE、Invitrogen)にのせ、それを200Vおよび120mAで35分間泳動した。ポリアクリルアミドゲル中で分離した分子をPVDFメンブレン(孔径0.2μm、Invitrogen)に25Vおよび160mAで40分間転写した。メンブレンを、1×PBST(1×PBS+0.1%Tween20)中、1%(w/v)脱脂乳により、室温で1時間ブロッキングした。メンブレンを1×PBST中で5分間ずつ3回洗浄した後、ストレプトアビジン-PODコンジュゲート(2900U/ml、Roche)(1:2000希釈で使用)と共にインキュベートした。メンブレン上のビオチンに結合したストレプトアビジン-PODの検出は、Lumi-Lightウェスタンブロッティング基質(Roche)を使って行った。
システイニル化リンカーを含有するビオチン化-PYY-ポリペプチドの非共有結合的複合体を生成するために、0.16mgのAc-PYY-PEG3-Cys-PEG2-ビオチンを、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。抗体は、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、10.7mg/ml(約73μM)の濃度で使用した。Ac-PYY-PEG3-Cys-PEG2-ビオチンと抗体を2.5:1のモル比(Ac-PYY-PEG3-Cys-PEG2-ビオチン対抗体)で混合し、室温、350rpmで、60分間インキュベートした。その結果得られた複合体は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、63%が単量体型IgG様分子であり、37%が二量体型可溶性凝集体であることが明らかになった。得られた複合体を、SDS-PAGEとそれに続くウェスタンブロット解析によって、さらに分析した。10μgの複合体を4×LDS試料緩衝液(Invitrogen)と混合し、95℃で5分間インキュベートした。試料を4-12%ビス-トリスポリアクリルアミドゲル(NuPAGE、Invitrogen)にのせ、それを200Vおよび120mAで35分間泳動した。ポリアクリルアミドゲル中で分離した分子をPVDFメンブレン(孔径0.2μm、Invitrogen)に25Vおよび160mAで40分間転写した。メンブレンを、1×PBST(1×PBS+0.1%Tween20)中、1%(w/v)脱脂乳により、室温で1時間ブロッキングした。メンブレンを1×PBST中で5分間ずつ3回洗浄した後、ストレプトアビジン-PODコンジュゲート(2900U/ml、Roche)(1:2000希釈で使用)と共にインキュベートした。メンブレン上のビオチンに結合したストレプトアビジン-PODの検出は、Lumi-Lightウェスタンブロッティング基質(Roche)を使って行った。
共有結合的抗ビオチン抗体/ビオチン化ポリペプチドまたはビオチン化色素ジスルフィド連結コンジュゲートを生成するには、(i)ポリペプチドを抗体表面上に露出させることでその活性を保つことを可能にする適切な反応性基(例えばシステイン、マレイミドなど)含有リンカーを介して、ビオチンをポリペプチドまたは色素にカップリングすること、および(ii)ポリペプチドの生物学的活性が保たれている、ビオチン化ポリペプチドとシステイン変異を有する抗ビオチン抗体(=抗体VH52bC/VH53C)との部位特異的共有結合コンジュゲートを生成すること、および(iii)抗体鎖間ジスルフィド橋の還元を避けるために、還元剤の非存在下で反応を行うことが必要である。
抗ビオチン抗体とビオチン化化合物とのコンジュゲートの生成は、明確な化学量論でコンジュゲートをもたらすべきであり、これらのコンジュゲート中の化合物はその活性を保っていることが保証されるべきである。ビオチン化化合物と抗ビオチン抗体とのコンジュゲートを生成するために、ビオチン化化合物を最終濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。抗ビオチン抗体VH52bC/VH53Cを、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH=8.2中、10mg/mlの濃度にした。ビオチン化化合物と抗ビオチン抗体VH52bC/VH53Cを、モル比が2.5:1(化合物対抗体)になるように、上下にピペッティングすることによって混合し、室温および350rpmで、60分間インキュベートした。
リンカー内にセリン残基を含有するビオチン誘導体化Cy5(ビオチン-Ser-Cy5)の複合体を生成するために、0.61mgのビオチン-Ser-Cy5を、10mg/mlの濃度になるように、20mMヒスチジン、140mM NaCl、pH6.0に溶解した。18.5mgのヒト化抗ビオチン抗体を、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、10mg/ml(約69μM)の濃度で使用した。ビオチン-Ser-Cy5と抗体を2.5:1のモル比(ビオチン-Ser-Cy5対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。次に、20mMヒスチジン、140mM NaCl、pH6.0を移動相とし、1.5ml/分の流速で、Superdex 200 16/60高負荷分取用(high load prep)カラム(GE Healthcare)を用いるサイズ排除クロマトグラフィーに、試料を付した。ピーク画分を収集し、SDS-PAGEで純度を分析した。色素対抗体比は、(1)280nm(タンパク質)および650nm(Cy5)で試料の吸光度を測定し、(2)式:標識されたタンパク質のA650/ε(Cy5)*タンパク質濃度(M)=タンパク質1モルあたりの色素のモル数(ここで、ε(Cy5)=250000M-1cm-1、複合体のA650=47.0、およびタンパク質濃度は86.67μMである)を使用することによって計算した。その結果得られた色素対抗体分子の比は2.17であった。これは、全ての抗体パラトープがビオチン-Cy5分子で飽和していることを示唆している。
システイニル化リンカーを含有するビオチン誘導体化Cy5のコンジュゲートを生成するために、0.16mgのビオチン-Cys-Cy5を、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。1mgの抗ビオチン抗体VH53Cを、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、9.7mg/ml(約68μM)の濃度で使用した。ビオチン-Cys-Cy5と抗体を2.5:1のモル比(Ac-ビオチン-Cys-Cy5対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。その結果得られたコンジュゲートを、実施例7で述べるようにSDS-PAGEで分析した。蛍光の検出は実施例7で述べるように行った。
システイニル化リンカーを含有するビオチン誘導体化Cy5のコンジュゲートを生成するために、0.16mgのビオチン-Cys-Cy5を、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。1mgのヒト化抗ビオチン抗体VH53Cを、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、7.4mg/ml(約51μM)の濃度で使用した。ビオチン-Cys-Cy5と抗体を2.5:1のモル比(Ac-ビオチン-Cys-Cy5対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。その結果得られたコンジュゲートを、実施例7で述べるようにSDS-PAGEで分析した。蛍光の検出は実施例7で述べるように行った。
システイニル化リンカーを含有するビオチン誘導体化PYY-ポリペプチドのコンジュゲートを生成するために、0.19mgのAc-PYY(PEG3-Cys-βAla-ビオチン)を、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。1mgのキメラ抗ビオチン抗体VH53Cを、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、9.7mg/ml(約67μM)の濃度で使用した。Ac-PYY(PEG3-Cys-βAla-ビオチン)と抗体を2.5:1のモル比(Ac-PYY(PEG3-Cys-βAla-ビオチン)対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。その結果得られたコンジュゲートを質量分析によって分析した。検出された分子種の87.7%は、2つのペプチド分子にカップリングされた抗体と同定され、12.3%は1つのペプチド分子にカップリングされた抗体と同定された。
システイニル化リンカーを含有するビオチン誘導体化PYY-ポリペプチドのコンジュゲートを生成するために、0.16mgのAc-PYY(PEG3-Cys-PEG2-ビオチン)を、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。1mgのキメラ抗ビオチン抗体VH53Cを、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、9.9mg/ml(約68μM)の濃度で使用した。Ac-PYY(PEG3-Cys-PEG2-ビオチン)と抗体を2.5:1のモル比(Ac-PYY(PEG3-Cys-PEG2-ビオチン)対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。その結果得られたコンジュゲートを質量分析によって分析した。検出された分子種の100%が2つのペプチド分子にカップリングされた抗体と同定された。
システイニル化リンカーを含有するビオチン誘導体化PYY-ポリペプチドのコンジュゲートを生成するために、0.06mgのAc-PYY(PEG3-Cys-βAla-ビオチン)を、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。0.8mgのヒト化抗ビオチン抗体VH53Cを、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、9mg/ml(約62μM)の濃度で使用した。Ac-PYY(PEG3-Cys-βAla-ビオチン)と抗体を2.5:1のモル比(Ac-PYY(PEG3-Cys-βAla-ビオチン)対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。その結果得られたコンジュゲートを質量分析によって分析した。検出された分子種の62.2%は2つのペプチド分子にカップリングされた抗体と同定され、33.9%は1つのペプチド分子にカップリングされた抗体と同定され、3.9%はカップリングされていない抗体と同定された。
システイニル化リンカーを含有するビオチン誘導体化PYY-ポリペプチドのコンジュゲートを生成するために、0.08mgのAc-PYY(PEG3-Cys-PEG2-ビオチン)を、濃度が10mg/mlになるように100%DMFに溶解した。0.8mgのヒト化抗ビオチン抗体VH53Cを、50mMトリス-HCl、1mM EDTA、pH8.2から構成される緩衝液中、9mg/ml(約62μM)の濃度で使用した。Ac-PYY(PEG3-Cys-PEG2-ビオチン)と抗体を2.5:1のモル比(Ac-PYY(PEG3-Cys-PEG2-ビオチン)対抗体)で混合し、350rpmで振とうしながら室温で60分間インキュベートした。その結果得られたコンジュゲートを質量分析によって分析した。検出された分子種の71.4%が2つのペプチド分子にカップリングされた抗体と同定され、26%が1つのペプチド分子にカップリングされた抗体と同定され、2.5%がカップリングされていない抗体と同定された。
検出方法
SDSゲル電気泳動:
SDSゲル電気泳動のために、4×LDS試料緩衝液(Invitrogen)を試料に加えた。各試料について、10×NuPAGE試料還元剤(Invitrogen)を加えることによって、還元型試料も調製した。全ての試料を70℃で5分間インキュベートしてから、1×MOPS緩衝液(Invitrogen)を使って4-12%ビス-トリスポリアクリルアミドゲル(NuPAGE、Invitrogen)での電気泳動を行った。
ゲル中のCy5関連蛍光は、LumiImager F1デバイス(Roche)を使って、645nmの励起波長で検出した。蛍光の検出後に、ゲルをSimplyBlue SafeStain(Invitrogen)で染色した。
血清安定性
ビオチン化Cy5とヒト化抗ビオチン抗体VH53Cとの共有結合的コンジュゲートと比較した、ビオチン化Cy5とヒト化抗ビオチン抗体との複合体の血清安定性
ここに記載するペプチド修飾技術の目的は、ペプチドの治療上の利用可能性を改良することである。治療上の利用にとって主たる障害は、現在のところ制限があるインビボ安定性および/または短い血清中半減期と迅速なクリアランスである。フルオロフォアの抗体コンジュゲートのPKパラメータをインビボで決定した。それを非共有結合的抗体-フルオロフォア複合体のPKと比較する。そこで、(i)抗ビオチン抗体VH53Cをビオチン化フルオロフォアBiot-Cys-Cy5に共有結合でコンジュゲートし、(ii)抗ビオチン抗体とビオチン化フルオロフォアBiot-Cy5との非共有結合的複合体を生成し、(iii)共有結合的にコンジュゲートされた化合物と、非共有結合的に複合体化された化合物とを動物に適用し、(iv)これらの動物における化合物の血清中濃度を経時的に分析した。
小さな蛍光性基質が抗体複合体化のPKパラメータに及ぼす影響を解析するために、20mMヒスチジン/140mM NaCl、pH6.0中の13nmolのCy5-ビオチン/ヒト化抗ビオチン抗体ジスルフィド連結コンジュゲートまたは対応する抗体非共有結合的複合体化化合物を、各物質について6匹の雌マウス(NRMI系統)に適用する。次に挙げる時点後に、約0.1mlの血液試料を収集する:マウス1および2では0.08時間、8時間および48時間、マウス3および4では0.08時間、24時間および48時間、ならびにマウス5および6では0.08時間、36時間および48時間。室温で1時間後に遠心分離(9,300×g、3分、4℃)によって少なくとも40μlの血清試料を得る。血清試料を-80℃で保存する。
ビオシチンアミドとの複合体を形成しているマウス抗ビオチン抗体FabフラグメントのX線構造決定
ビオシチンアミドとの複合体を形成しているマウス抗ビオチン抗体Fabフラグメントのタンパク質構造を決定した。そのために、Fabフラグメントの結晶を、0.8Mコハク酸中で成長させ、次に、抗体結晶にビオシチジンアミドを装填した(結晶化溶液で10mMの作業濃度に希釈し、結晶化液滴中の結晶に適用した)。結晶を2μlの10mMビオシチジンアミド溶液で3回洗浄し、最後にビオシチジンアミドと共に21℃で16時間インキュベートし、凍結保護物質として15%グリセロールを使って採取し、液体窒素中で瞬間凍結した。処理した回折像は、2.5Åの分解能でタンパク質構造を与えた。ビオチン結合性可変領域の構造および電荷組成を図2に示す。ビオチンは、CDR領域からのアミノ酸で構成される荷電領域に挟まれた表面ポケット中に結合する。複合体を形成したハプテンは、負に荷電したアミノ酸のクラスターに近接している。ビオチンは、ハプテンとしてペイロードカップリングのためにそのカルボキシル基で誘導体化されており、これは、(COOH基を欠くので)その位置における電荷反発がないことから、効率よく結合する。これに対し、遊離の(普通の)ビオチンは、そのカルボキシル基がこの負電荷クラスターに近接することで反発が起きることから、抗体に効率よく結合することができない。
Claims (12)
- (a)SEQ ID NO:09のアミノ酸配列を含むHVR-H1、(b)SEQ ID NO:10のアミノ酸配列を含むHVR-H2、(c)SEQ ID NO:11のアミノ酸配列を含むHVR-H3、(d)SEQ ID NO:13のアミノ酸配列を含むHVR-L1、(e)SEQ ID NO:14のアミノ酸配列を含むHVR-L2、および(f)SEQ ID NO:15のアミノ酸配列を含むHVR-L3を含む、ヒト化抗ビオチン抗体であって、Kabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの24位にアミノ酸残基セリンを含み、かつKabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの73位にアミノ酸残基スレオニンを含む、前記抗体。
- Kabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの60位にアミノ酸残基アラニンを含み、かつKabatによるナンバリングで重鎖可変ドメインの61位にアミノ酸残基グルタミンを含むことを特徴とする、請求項1に記載の抗体。
- (a)SEQ ID NO:12のアミノ酸配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有するVH配列、
(b)SEQ ID NO:16のアミノ酸配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有するVL配列、または
(c)(a)のVH配列および(b)のVL配列
を含む、請求項1または2に記載の抗体。 - SEQ ID NO:12のVH配列を含む、請求項1に記載の抗体。
- SEQ ID NO:16のVL配列を含む、請求項1または4に記載の抗体。
- SEQ ID NO:12のVH配列およびSEQ ID NO:16のVL配列を含む、抗体。
- 完全長IgG1抗体または完全長IgG4抗体である、請求項1に記載の抗体。
- モノクローナル抗体である、請求項1〜7のいずれか一項に記載の抗体。
- ビオチンと結合する抗体フラグメントである、請求項1〜6のいずれか一項に記載の抗体。
- 請求項1〜9のいずれか一項に記載の抗体と、薬学的に許容される担体とを含む、薬学的製剤。
- 医薬として使用するための、請求項1〜9のいずれか一項に記載の抗体。
- 医薬の製造における請求項1〜9のいずれか一項に記載の抗体の使用。
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