JP6235210B2 - 微細藻類の培養方法 - Google Patents
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Description
本発明は微細藻類の培養方法に関する。
近年、微細藻類が生産する脂質や糖等の有用物質の利活用が注目されている。有用物質の生産性を高めるためには、微細藻類を効率よく培養する必要がある。微細藻類の培養方法としては、中性やアルカリ性の培養液を用いる方法が専ら用いられてきた（非特許文献１参照）。
AquaFUELs-D1.4 Rev7-30 November 2010 Page28-36
培養液が中性又はアルカリ性である場合、培養の対象である微細藻類以外の微細藻類（以下、他の微細藻類とする）や、微細藻類を捕食する原生生物の増殖（コンタミ）が生じてしまう。また、微細藻類を培養する場合、培養液中にＣＯ2を連続的に導入することがあるが、培養液が中性又はアルカリ性であると、ＣＯ2から重炭酸イオンが生じ、培養液のｐＨが変動してしまう。すると、培養液へのｐＨ調整剤の投入が必要となり、培養液中の塩濃度が増加してしまう。
本発明は以上の点に鑑みなされたものであり、上述した課題の少なくとも一つを解決できる屋外での開放系における微細藻類の培養方法を提供することを目的とする。
本発明の第１局面に係る微細藻類の培養方法は、ｐＨが４以下である培養液を用いて、Coccomyxa属およびその近縁生物群、又はWatanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類の微細藻類を屋外の開放系の培養システムにて培養することを特徴とする。この培養方法によれば、培養液のｐＨが４以下であるので、他の微細藻類や原生生物の増殖が生じにくい可能性が考えられた。また、培養液中にＣＯ2を導入しても、重炭酸イオンが生じないので、培養液のｐＨが変動しにくい可能性が考えられ、実験を行った結果この予測が確認され、本発明を完成するに至った。
本発明の第２局面に係る微細藻類の培養方法は、ｐＨが４以下であり、アンモニア態窒素を含む培養液を用いて、Coccomyxa属およびその近縁生物群、Pseudococcomyxa属の微細藻類を屋外の開放系の培養システムにて培養することを特徴とする。この培養方法によれば、培養液のｐＨが４以下であるので、他の微細藻類や原生生物の増殖が生じにくく、特に、培養液がアンモニア態窒素（例えば尿素）を含むことにより、他の微細藻類や原生生物の増殖が一層生じにくい。また、培養液中にＣＯ2を導入しても、重炭酸イオンが生じないので、培養液のｐＨが変動しにくい。
本発明の実施形態を説明する。本発明の培養方法において培養の対象となる微細藻類としては、Coccomyxa属およびその近縁生物群、Pseudococcomyxa属、又はWatanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類が挙げられる。特に、温泉湧出環境等において採取したサンプルから、所定の単離条件（例えば、ｐＨが３であり、温度が１５〜３５℃の範囲内にある条件）にてスクリーニングされた微細藻類（上記の単離条件で生育可能な微細藻類）が挙げられる。
温泉湧出環境等において採取したサンプルから、上記のスクリーニングで選択される微細藻類として、例えば、Pseudochoricystis ellipsoidea N1株(MBIC11204：Pseudococcomyxa属近縁)、Pseudochoricystis ellipsoidea Obi株(MBIC11220：Pseudococcomyxa属近縁)、Coccomyxa simplex （UTEX274：Coccomyxa属）、Coccomyxa chodatii （UTEXB266：Coccomyxa属）等が挙げられる。
また、温泉湧出環境等において採取したサンプルから、上記のスクリーニングにより、Coccomyxa属およびその近縁生物群、Pseudococcomyxa属、又はWatanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類の微細藻類を選択し、それを本発明の培養方法に用いることもできる。なお、微細藻類がCoccomyxa属およびその近縁生物群、Pseudococcomyxa属、又はWatanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類であることは、ＤＮＡの相同性により確認することができ、18S rRNAでの同一性が97%以上のものであった。相同性の確認には、周知のＤＮＡデータベースを使用することができる。
本発明の培養方法における培養液としては、周知の組成を有する培養液を用いることができる。培養液のｐＨは４以下であり、好ましくは３〜４である。本発明の培養方法において、例えば、培養液にＣＯ2（ＣＯ2含有ガス）を連続的に導入することができる。この場合、微細藻類の培養速度が高水準に維持される。なお、培養液のｐＨが４以下であることにより、ＣＯ2を導入しても重炭酸は生じにくく、培養液のｐＨは変動しにくい。
本発明の培養方法において、培養液中にアンモニア態窒素を含むことができる。この場合、他の微細藻類や原生生物の増殖が一層生じにくくなる。アンモニア態窒素は特に限定されないが、例えば尿素が挙げられる。
本発明の培養方法では、例えば、微細藻類の培養に用いた培養液から微細藻類の全部又は一部を回収し、回収後の培養液を用い、例えば、不足分の培地成分を追加することで新たな微細藻類を培養することができる。この場合、培養液を再利用できるので、微細藻類の培養コストを低減することができる。
本発明の培養方法は、例えば、培養液における、ｐＨ、ＣＯ2濃度、及び藻体濃度から成る群から選ばれる１以上のパラメータを検知する検知手段と、そのパラメータを所定の範囲内に制御する制御手段を備える培養システムを用いて行うことができる。この培養システムを用いれば、前記パラメータを適切な範囲に維持することが容易になる。
前記パラメータにｐＨが含まれる場合、培養システムは、検知手段によってｐＨを検知し、制御手段によってｐＨを４以下（好ましくは３〜４）の範囲に維持する。また、前記パラメータにＣＯ2濃度が含まれる場合、培養システムは、検知手段によってＣＯ2濃度を検知し、制御手段によってＣＯ2濃度を、例えば、７．４５〜７４．５ｍｇ／Ｌの範囲に維持する。
検知手段としては、例えば、前記パラメータを測定可能なセンサ（例えばｐＨ測定センサ、ＣＯ2濃度測定センサ、藻体濃度測定センサ）が挙げられる。また、制御手段としては、例えば、前記パラメータを調整する調整手段（例えば、培養液へのｐＨ調整剤の導入量を調整するバルブ機構、培養液へのＣＯ2含有ガスの導入量を調整するバルブ機構、培養液への微細藻類の導入量を調整するバルブ機構）と、上記のセンサの測定結果に応じて上記の調整手段を制御するコンピュータと、から成るものが挙げられる。
（実施例１）
屋外の開放系培養システム（５００Ｌ）に、以下の組成を有する培養液を収容した。
（実施例１）
屋外の開放系培養システム（５００Ｌ）に、以下の組成を有する培養液を収容した。
イオン交換水：５００ｋｇ
アンモニア態窒素（尿素）：９．８ｇ
リン：５６０ｍｇ
カリウム：５６０ｍｇ
カルシウム：１５０ｍｇ
マグネシウム：１７０ｍｇ
キレート金属塩：８５ｍｇ
培養液のｐＨは微細藻類の植株前に塩酸を用いて３．５に調整し、その後は調整しなかった。この培養液に、Pseudococcomyxa属近縁の微細藻類であるPseudochoricystis ellipsoidea N1株(MBIC11204)を、０．０２ｇ／ｌとなるように植株した。
アンモニア態窒素（尿素）：９．８ｇ
リン：５６０ｍｇ
カリウム：５６０ｍｇ
カルシウム：１５０ｍｇ
マグネシウム：１７０ｍｇ
キレート金属塩：８５ｍｇ
培養液のｐＨは微細藻類の植株前に塩酸を用いて３．５に調整し、その後は調整しなかった。この培養液に、Pseudococcomyxa属近縁の微細藻類であるPseudochoricystis ellipsoidea N1株(MBIC11204)を、０．０２ｇ／ｌとなるように植株した。
培養中は、光源に太陽による日射を用い、二酸化炭素濃度１ｖｏｌ％のガスを連続的に培養液に通気させた。
培養中、培養液における藻体濃度とｐＨとを継続的に測定した。その測定結果を図１に示す。図１において「ＯＤ７２０」は培養液中の藻体濃度を示し、「ｐＨ」は培養液のｐＨを示す。また、培養終了後における藻体中の窒素濃度及び油脂含量を測定した。その結果を表１に示す。
培養中、培養液における藻体濃度とｐＨとを継続的に測定した。その測定結果を図１に示す。図１において「ＯＤ７２０」は培養液中の藻体濃度を示し、「ｐＨ」は培養液のｐＨを示す。また、培養終了後における藻体中の窒素濃度及び油脂含量を測定した。その結果を表１に示す。
（実施例２）
微細藻類として、Pseudococcomyxa属近縁の微細藻類であるPseudochoricystis ellipsoidea N1株(MBIC11204)の代わりに、同じPseudococcomyxa属近縁の微細藻類であるPseudochoricystis ellipsoidea Obi株(MBIC11220)を用いて、前記実施例１と同様に培養を行った。
培養終了後における藻体中の窒素濃度及び油脂含量を測定した。その結果を上記表１に示す。表１から明らかなように、微細藻類の生育は良好であった。また、培養中、培養液のｐＨはほとんど変動せず、他の微細藻類や原生生物の増殖は見られなかった。
（実施例３）
微細藻類として、Pseudochoricystis ellipsoidea N1株(MBIC11204)の代わりに、Coccomyxa simplex （UTEX274）を用いる点以外は前記実施例１と同様にして微細藻類の培養を行った。
（実施例３）
微細藻類として、Pseudochoricystis ellipsoidea N1株(MBIC11204)の代わりに、Coccomyxa simplex （UTEX274）を用いる点以外は前記実施例１と同様にして微細藻類の培養を行った。
培養終了後における藻体中の窒素濃度を測定した。その結果を上記表１に示す。表１から明らかなように、微細藻類の生育は良好であった。また、培養中、培養液のｐＨはほとんど変動せず、他の微細藻類や原生生物の増殖は見られなかった。
（実施例４）
微細藻類として、Pseudochoricystis ellipsoidea N1株(MBIC11204)の代わりに、Coccomyxa chodatii （UTEXB266）を用いる点以外は前記実施例１と同様にして微細藻類の培養を行った。
（実施例４）
微細藻類として、Pseudochoricystis ellipsoidea N1株(MBIC11204)の代わりに、Coccomyxa chodatii （UTEXB266）を用いる点以外は前記実施例１と同様にして微細藻類の培養を行った。
培養終了後における藻体中の窒素濃度及び油脂含量を測定したところ、微細藻類の生育が良好であることを裏付けていた。また、培養中、培養液のｐＨはほとんど変動せず、他の微細藻類や原生生物の増殖は見られなかった。
（実施例５）
屋外の開放系培養システム（５００Ｌ）に、以下の組成を有する培養液を収容した。
（実施例５）
屋外の開放系培養システム（５００Ｌ）に、以下の組成を有する培養液を収容した。
イオン交換水：５００ｋｇ
硝酸体態窒素（硝酸ナトリウム）：２７．３ｇ
リン：５６０ｍｇ
カリウム：５６０ｍｇ
カルシウム：１５０ｍｇ
マグネシウム：１７０ｇ
キレート金属塩：８５ｍｇ
培養液のｐＨは微細藻類の植株前に塩酸を用いて３に調整し、その後は調整しなかった。この培養液に、Watanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類を、０．０２ｇ／ｌとなるように植株した。この微細藻類は、温泉湧出環境等において採取したサンプルから、ｐＨが３であり、温度が１５〜３５℃の範囲内にある条件にてスクリーニングされた微細藻類である。この微細藻類がWatanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類であることはＤＮＡの相同性により確認した。この微細藻類のＤＮＡ配列を、配列表の配列番号４〜６に示す。
硝酸体態窒素（硝酸ナトリウム）：２７．３ｇ
リン：５６０ｍｇ
カリウム：５６０ｍｇ
カルシウム：１５０ｍｇ
マグネシウム：１７０ｇ
キレート金属塩：８５ｍｇ
培養液のｐＨは微細藻類の植株前に塩酸を用いて３に調整し、その後は調整しなかった。この培養液に、Watanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類を、０．０２ｇ／ｌとなるように植株した。この微細藻類は、温泉湧出環境等において採取したサンプルから、ｐＨが３であり、温度が１５〜３５℃の範囲内にある条件にてスクリーニングされた微細藻類である。この微細藻類がWatanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類であることはＤＮＡの相同性により確認した。この微細藻類のＤＮＡ配列を、配列表の配列番号４〜６に示す。
培養中は、光源に太陽による日射を用い、二酸化炭素濃度１ｖｏｌ％のガスを連続的に通気させた。培養中、培養液のｐＨはほとんど変動せず、微細藻類の生育は良好であった。また、他の微細藻類や原生生物の増殖は見られなかった。
（実施例６）
まず、前記実施例１と同じ微細藻類を用い、前記実施例１と同様に培養を行った。これを１回目の培養とする。その後、１回目の培養後の培養液から、微細藻類を回収し、回収後の培養液（微細藻類を実質的に含まない培養液）において、新たな微細藻類（前記実施例１と同じ微細藻類）を、前記実施例１と同様の方法で培養した。これを２回目の培養とする。培養液の培地組成に関しては、前記実施例１と同量添加した。
（実施例６）
まず、前記実施例１と同じ微細藻類を用い、前記実施例１と同様に培養を行った。これを１回目の培養とする。その後、１回目の培養後の培養液から、微細藻類を回収し、回収後の培養液（微細藻類を実質的に含まない培養液）において、新たな微細藻類（前記実施例１と同じ微細藻類）を、前記実施例１と同様の方法で培養した。これを２回目の培養とする。培養液の培地組成に関しては、前記実施例１と同量添加した。
次に、２回目の培養後の培養液から、微細藻類を回収し、回収後の培養液（微細藻類を実質的に含まない培養液）において、新たな微細藻類（前記実施例１と同じ微細藻類）を、前記実施例１と同様の方法で培養した。これを３回目の培養とする。培養液の培地組成に関しては、前記実施例１と同量添加した。
１回目の培養後における藻体濃度（ＯＤ７２０）、１回目の培養後におけるｐＨ、２回目の培養後における藻体濃度（ＯＤ７２０）、２回目の培養後におけるｐＨ、３回目の培養後における藻体濃度（ＯＤ７２０）、及び３回目の培養後におけるｐＨを図２に示す。また、２回目の培養後及び３回目の培養後における藻体中の油脂含量を表２に示す。なお、図２において、ｎ回目（ｎ＝１、２、３）の培養後における藻体濃度は「ｎ回目＿ＯＤ」と表記し、ｎ回目の培養後におけるｐＨは「ｎ回目＿ｐＨ」と表記する。
（実施例７）
温泉より採取したいろいろな微生物が混ざったものを用いて、実施例５と同様な方法で培養すると、Coccomyxa属およびその近縁生物群、Pseudococcomyxa属、又はWatanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類の微細藻類のみに増殖が見られた。Coccomyxa属およびその近縁生物群、Pseudococcomyxa属の微細藻類のＤＮＡ配列を、配列表の配列番号１〜３に示す。Watanabeaクレードに帰属する単細胞緑藻類の微細藻類のＤＮＡ配列を、配列表の配列番号４〜６に示す。
（実施例８）
温泉より採取したいろいろな微生物が混ざったものを用いて、実施例１と同様な方法で培養すると、Coccomyxa属およびその近縁生物群、Pseudococcomyxa属の微細藻類のみに増殖が見られた。Coccomyxa属およびその近縁生物群、Pseudococcomyxa属の微細藻類のＤＮＡ配列を、配列表の配列番号１〜３に示す。
（実施例９）
図３に、培養システム１の構成を表す。培養システム１は、レースウェイ型の培養槽３と、培養槽３中の培養液を攪拌する攪拌用パドル５と、培養液のｐＨを検知するｐＨ測定センサ７と、培養液中のＣＯ2濃度を検知するＣＯ2濃度測定センサ９と、周知のコンピュータから成る制御部１１と、培養液へのｐＨ調整剤の投入を行うｐＨ調整剤投入部１３と、培養液へのＣＯ2含有ガスの導入を行うＣＯ2ガス導入部１５と、を備える。
ｐＨ調整剤投入部１３は周知のバルブ機構を有しており、培養液へのｐＨ調整剤の投入量を調整できる。また、ＣＯ2ガス導入部１５は周知のバルブ機構を有しており、培養液へのＣＯ2含有ガスの導入量を調整できる。
制御部１１は、ｐＨ測定センサ７の測定結果を取得し、培養液中のｐＨが３〜４の範囲に維持されるように、ｐＨ調整剤投入部１３を制御し、必要に応じてｐＨ調整剤を培養液に投入する。
また、制御部１１は、ＣＯ2濃度測定センサ９の測定結果を取得し、培養液中のＣＯ2濃度が７．４５〜７４．５ｍｇ／Ｌの範囲に維持されるように、ＣＯ2ガス導入部１５を制御し、培養液中へのＣＯ2含有ガスの導入量を調整する。なお、ｐＨ測定センサ７及びＣＯ2濃度測定センサ９は検知手段の一実施形態であり、制御部１１、ｐＨ調整剤投入部１３、及びＣＯ2ガス導入部１５は制御手段の一実施形態である。
本実施例の培養システム１は、前記実施例１〜６における微細藻類の培養に用いることができる。本実施例の培養システム１を用いれば、培養液のｐＨ及びＣＯ2濃度を好適な範囲に維持することが容易になる。
培養システム１は、培養液中の藻体濃度を測定するセンサと、そのセンサの測定結果に応じて藻体濃度を所定の範囲に調整する手段を備えていてもよい。この場合、制御部１１は、藻体濃度の測定結果に応じて藻体濃度を調整することで、藻体濃度を好ましい範囲に維持することができる。
尚、本発明は前記実施形態になんら限定されるものではなく、本発明を逸脱しない範囲において種々の態様で実施しうることはいうまでもない。
例えば、前記実施例１〜４、６、８において、尿素の代わりに、他のアンモニア態窒素を用いても略同様の効果を奏することができる。
例えば、前記実施例１〜４、６、８において、尿素の代わりに、他のアンモニア態窒素を用いても略同様の効果を奏することができる。
１・・・培養システム、３・・・培養槽、５・・・攪拌用パドル、
７・・・ｐＨ測定センサ、９・・・ＣＯ2濃度測定センサ、１１・・・制御部、
１３・・・ｐＨ調整剤投入部、１５・・・ＣＯ2ガス導入部
７・・・ｐＨ測定センサ、９・・・ＣＯ2濃度測定センサ、１１・・・制御部、
１３・・・ｐＨ調整剤投入部、１５・・・ＣＯ2ガス導入部
Claims (2)
- ｐＨが４以下であり、アンモニア態窒素を含む培養液を用いて、コッコミクサ属およびその近縁生物群、又はシュードココミクサ属の微細藻類を屋外の開放系培養システムにおいて培養することを特徴とする微細藻類の培養方法。
- 前記微細藻類の培養に用いた前記培養液から前記微細藻類を回収し、回収後の前記培養液を用いて新たな前記微細藻類を屋外の開放系培養システムにおいて培養することを特徴とする請求項１記載の微細藻類の培養方法。
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