JP6173440B2 - 新規美白剤 - Google Patents
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Description
本発明は、式(I):
本発明はまた、式(I)で表される化合物又はその塩の製造方法に関する。以下、本発明の方法の好ましい実施形態について詳細に説明する。
本発明の方法は、3-ヒドロキシ-2-ピロン(3H2P)をリン酸化して、式(I)で表される化合物又はその塩を形成させる、リン酸化工程を含むことが必要である。
本発明の方法は、場合により、リン酸化工程で得られた式(I)で表される化合物又はその塩を精製する、精製工程を含むことができる。前記リン酸化工程により、式(I-i)で表される化合物及び/又は式(I-ii)で表される化合物が形成される。本工程は、リン酸化工程で得られた反応混合物から、式(I)で表される化合物又はその塩として、式(I-i)で表される化合物及び式(I-ii)で表される化合物並びにそれらの塩の少なくともいずれかを精製することを目的とする。
本発明はまた、式(I)で表される化合物又はその塩を有効成分として含有する美白剤又はメラニン生成阻害剤に関する。
[I-1:合成]
100mgの3-ヒドロキシ-2-ピロン(3H2P)と、287 mgのプロトンスポンジ(登録商標)(アルドリッチ社)と、3 mlのリン酸トリメチルとを、窒素気流下で50 ml すり付き試験管に加えて溶解させた。得られた溶液を0℃に冷却し、該溶液に、63μlのPOCl3を、氷冷下(0℃)で少量ずつ加えた。得られた反応溶液を、ゆっくりと室温に戻した後、終夜撹拌した。前記反応溶液に、4 mlの0.1 M 重炭酸トリエチルアンモニウム(TEAB)水溶液を加えて、室温で2時間撹拌した。前記の手順において、各原料の使用量及び反応条件(反応温度及び/又は時間等)を変更して、5回の反応を行った。全ての反応によって得られた反応溶液を一つの溶液にまとめた。得られた溶液を、DEAE カラム(DEAE TOYOPEARL(登録商標) 650M、約150 mlのゲル量、東ソー製)にマウントして、未反応の3H2P及びプロトンスポンジを含む非吸着画分を水で溶出させた。その後、A: 水からB: 0.35 M TEAB水溶液のグラジエント溶出条件(0〜300分間で0〜100%のB液濃度勾配)で、DEAEカラムから吸着画分を溶出させた。溶出液のUV吸収をモニターして、UV吸収を有する生成物の画分を分取し、濃縮した。得られた生成物の画分を、強酸性陽イオン交換樹脂カラム(Dowex(登録商標) 88、約100 mlのゲル量、ダウケミカル製)にマウントして、水で溶出させた。溶出液のUV吸収をモニターして、UV吸収を有する生成物の画分を分取した。得られた画分を凍結乾燥して、遊離酸の形態の3H2Pリン酸モノエステル(1)(864 mg)及び遊離酸の形態の3H2Pリン酸ビスエステル(2)(1118.4 mg)を得た。
以下の条件で、生成物の機器分析を行った。
・MS条件
装置 :micro TOF Focus型(ブルカー・ダルトニクス製)
イオン化 :ESI(正イオン -low mode;負イオン -low mode)
・LC条件
装置 :Agilent 1100シリーズ
カラム :Agilent Zorbax SB-C18(Agilent Technologies社製)
2.1 mm(内径)×150 mm(カラム長)(粒径3.5μm)
溶出液 :(A)アセトニトリル
(B)10 mM NH4HCO3水溶液
グラジエント :0〜15分間で0〜100%のA液濃度勾配
流速 :0.2 ml/分
試料 :1000 ppm(10 mM NH4HCO3水溶液で希釈)
インジェクト量:2μl
カラム温度 :40℃
検出器 :マルチチャンネル検出器(UV:293, 295 nm)
〔1H-NMR分析〕
装置 :JEOL AL-400(日本電子社製)
共鳴周波数 :395.75 MHz
溶媒 :D2O
内部標準物質:水(4.81 ppm)
〔13C-NMR分析〕
装置 :JEOL AL-400(日本電子社製)
共鳴周波数 :99.45 MHz
溶媒 :D2O
外部標準物質:テトラメチルシラン(CDCl3溶液)(0 ppm)
〔31P-NMR分析〕
装置 :JEOL AL-400(日本電子社製)
共鳴周波数 :160.10 MHz
溶媒 :D2O
外部標準物質:85% H3PO4(0 ppm)
〔分析結果〕
3H2Pリン酸モノエステル(1)(遊離酸):
HRMS 計算値:C5H6O6P 192.9897; 測定値:192.9886 (M+H)+, 計算値:C5H4O6P 190.9751; 測定値:190.9743 (M-H)-;1H-NMR (D2O, 395.75 MHz) δppm:7.40(ddd, JHH=5.1 Hz, JHH=1.7 Hz, JHP=1.0 Hz, 1H), 7.28(ddd, JHH=7.3-7.5 Hz, JHH=1.7-1.9 Hz, JHP=1.7-1.9 Hz, 1H), 6.36(dd, JHH=7.3 Hz, JHH=5.1 Hz, 1H);13C-NMR (D2O, 99.45 MHz) δppm:162.4(JCP=6.6 Hz), 147.5(JCP=1.6 Hz), 138.1(JCP=6.6 Hz), 128.9(JCP=4.1 Hz), 107.2(JCP=1.6 Hz);31P-NMR (D2O, 160.10 MHz) δppm:-3.5.
3H2Pリン酸ビスエステル(2)(遊離酸):
HRMS (MALDI-TOF) 計算値:C10H8O8P 286.9951; 測定値:286.9947 (M+H)+, 計算値:C10H6O8P 284.9806; 測定値:284.9805 (M-H)-;1H-NMR (D2O, 395.75 MHz) δppm: 7.55(ddd, JHH=5.1 Hz, JHH=1.5-1.7 Hz, JHP=1.0-1.2 Hz, 1H), 7.48(ddd, JHH=7.3-7.5 Hz, JHH=1.7-1.9 Hz, JHP=1.7-1.9 Hz, 1H), 6.50(dd, JHH=7.3 Hz, JHH=5.1 Hz, 1H);13C-NMR (D2O, 99.45 MHz) δppm:162.0(JCP=6.6 Hz), 147.8(JCP=1.6 Hz), 137.9(JCP=7.4 Hz), 129.5(JCP=4.1 Hz), 107.0(JCP=1.6 Hz);31P-NMR (D2O, 160.10 MHz) δppm:-8.4.
[II-1:合成]
500mg(4.46 mmol)の3-ヒドロキシ-2-ピロン(3H2P)と、1.14 g(5.31 mmol)のプロトンスポンジ(登録商標)(アルドリッチ社)と、5 mlのリン酸トリメチルとを、窒素気流下で50 ml すり付き試験管に加えて溶解させた。得られた溶液を0℃に冷却し、該溶液に、499μl(5.35 mmol)のPOCl3を、氷冷下(0℃)で少量ずつ加えた。得られた反応溶液を、前記と同じ温度で2時間撹拌した。前記反応溶液に、0.1 M 重炭酸トリエチルアンモニウム(TEAB)水溶液を加えて、室温で2時間撹拌した。得られた反応溶液を、100 mlの水で希釈した。この溶液を、DEAE カラム(DEAE TOYOPEARL(登録商標) 650M、約150 mlのゲル量、東ソー製)にマウントして、A: 水からB: 0.3 M TEAB水溶液のグラジエント溶出条件(0〜40分間で0〜100%のB液濃度勾配)で、生成物の画分を分取した。得られた生成物の画分を、HPLCカラム(Phenomenex Luna(登録商標) 10μ C18(2)、10μm、21.2×250 mm、Phenomenex社製)にマウントして、A: 0.1 M TEAB水溶液からB: アセトニトリルのグラジエント溶出条件(0〜30分間で0〜40%のB液濃度勾配)で、生成物の画分を分取した。得られた画分を凍結乾燥して、3H2Pリン酸モノエステル(1)の1.5トリエチルアミン塩(138.6 mg、10.6%)及び3H2Pリン酸ビスエステル(2)の1トリエチルアミン塩(549.6 mg、31.8%)を得た(収率はモノトリエチルアミン塩として計算した)。
以下の条件で、生成物の機器分析を行った。
装置 :Shimadzu LCMS-2010A EV(島津製作所製)
カラム :Agilent Zorbax SB-C18(Agilent Technologies社製)
2.1 mm(内径)×150 mm(カラム長)(粒径3.5μm)
溶出液 :(A)10 mM NH4HCO3(3H2Pリン酸モノエステルの場合)
10 mM NH4HCO3 + 0.1% HCOOH/H2O
(3H2Pリン酸ビスエステルの場合)
(B)アセトニトリル
グラジエント :0〜15分間で0〜100%のB液濃度勾配
流速 :0.2 ml/分
希釈液(濃度):水(1 mg/ml)
インジェクト量:2μl
カラム温度 :40℃
検出器1 :ESI
プローブ電圧 :+1.6 kV(ESI−正イオンモード)
:-1.6 kV(ESI−負イオンモード)
CDL温度 :250℃
ブロックヒーター温度:200℃
ネブライザーガス流量:1.5 ml/分
乾燥ガス圧力 :0.02 MPa
検出器2 :PDA(190〜800 nm)
〔1H-NMR分析〕
装置 :JEOL JNM-ECS400(日本電子社製)
共鳴周波数 :400 MHz
溶媒 :D2O
内部標準物質:3-(トリメチルシリル)-1-プロパンスルホン酸ナトリウム塩
〔分析結果〕
3H2Pリン酸モノエステル(1)(1.5トリエチルアミン塩):
ESI-MS m/z: 193 (M+H)+, 191 (M-H)-;1H-NMR (D2O, 400 MHz) δppm: 7.48 (d, JHH = 4.4 Hz, 1H), 7.37 (m, 1H), 6.47 (dd, JHH = 7.4 Hz, JHH = 5.1-5.2 Hz, 1H), 3.2 (q, JHH = 7.4 Hz, 9H), 1.27 (t, JHH = 7.4 Hz, 13.5H).
3H2Pリン酸ビスエステル(2)(1トリエチルアミン塩):
ESI-MS m/z: 287 (M+H)+, 285 (M-H)-;1H-NMR (D2O, 400 MHz) δppm: 7.53 (d, JHH = 5.1 Hz, 2H), 7.47 (d, JHH = 7.4 Hz, 2H), 6.48 (dd, JHH = 7.3 Hz, JHH = 5.2-5.3 Hz, 2H), 3.19 (q, JHH = 7.4 Hz, 6H), 1.27 (t, JHH =7.4 Hz, 9H).
[III-1:安定性試験]
遊離酸の形態の3H2Pリン酸モノエステル(1)及び3H2Pリン酸ビスエステル(2)を、0.1%(重量/体積)の濃度となるように、20 mMクエン酸緩衝溶液(pH6.0)に溶解させた。各試験溶液を、4℃、25℃又は40℃で3週間保存した。保存後の各試験溶液に含まれる3H2Pリン酸モノエステル(1)又は3H2Pリン酸ビスエステル(2)を、逆相HPLC(Inertsil(登録商標) ODS-3、5μm、4.6×250 mm、ジーエルサイエンス社製))を用いて定量分析した。比較例として、3H2Pを用いて前記の手順で同様の試験を行った。各保存温度で保存した後の各試験溶液に含まれる化合物の残存率(試験開始時の化合物量に基づく百分率)を表1に示す。
マウス由来B16メラノーマ細胞4A5(理研)を、5.0×104個/ウェルの細胞密度となるように10%FBSを含むDMEM培地を用いて6ウェルプレートに播種し(培養0日)、37℃、5%の二酸化炭素濃度の条件下で、24時間培養した。翌日、播種した培地から、所定の濃度の試験化合物を添加した培地に交換した(培養1日目)。2日目以降は、一日おきに培地交換を行った。培養6日目に細胞をトリプシン処理により回収し、1 N水酸化ナトリウム水溶液を用いてメラニンを抽出した。得られたメラニン抽出液の405 nmの吸光度を測定し、メラニン標品を用いて作成した検量線に基づき、メラニン量を算出した。また、DCプロテインアッセイキット(BIO-RAD社製)を用いて、前記の手順で回収した細胞のタンパク質量を算出し、細胞数の指標とした。前記の測定値に基づき、試験化合物の濃度と、メラノーマ細胞のメラニン量及び細胞数との関係を図1に示す。図1Aは、遊離酸の形態の3H2Pリン酸モノエステル(1)及び3H2Pリン酸ビスエステル(2)を試験化合物として用いた試験結果を、図1Bは、3H2Pリン酸モノエステル(1)のトリエチルアミン塩及び3H2Pリン酸ビスエステル(2)のトリエチルアミン塩を試験化合物として用いた試験結果を、それぞれ示す。図中、試験化合物を添加した各試験区のメラニン量及び細胞数は、試験化合物を添加しない対照区(濃度0)のメラニン量及び細胞数の測定値を100とした相対値である。
6 mM L-DOPA溶液と、所定の濃度に調製した試験化合物の水溶液と、リン酸緩衝溶液(pH6.8)とを、2:2:1の体積比で混合した。1.0 mlの得られた基質混合液と0.2 mlの0.017 mg/ml チロシナーゼ酵素(シグマ社製)溶液とを混合して、37℃で酵素反応を開始させた。反応開始0分及び3分後における酵素反応溶液の475 nmの吸光度を測定した。前記の手順において、試験化合物を含まない他は前記と同様の方法で酵素反応を行った試験区を、ブランクの試験区とした。得られた吸光度の測定値から、下記の計算式に基づき、チロシナーゼ活性阻害率を算出した。結果を図2に示す。
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