JP6169077B2 - 低い酸素移動容量係数ＫＬａを有する、発酵槽に適した糸状菌を用いるセルラーゼの生産方法 - Google Patents

Description

本発明は、リグノセルロース系バイオマスの酵素加水分解に必要な糸状菌（filamentous fungus）、例えば、第二世代の方法として知られるバイオ燃料の生産方法、あるいは化学製品、製紙または繊維産業における他の方法において用いられる糸状菌を用いるセルラーゼの生産方法に関する。

第二世代バイオ燃料の生産のための経済的に実行可能な方法の開発が、現在「注目の話題」となっている。これらの燃料は、リグノセルロース系バイオマスから生産され、サトウキビ、トウモロコシ、小麦またはテンサイから生産される「第一世代」バイオ燃料と比較して、食料のための農地の使用との競合に関して問題がより少ない。

リグノセルロース系バイオマスは、３種の主要なフラクション：セルロース、ヘミセルロースおよびリグニンによって構成される複雑な構造によって特徴付けられる。リグノセルロース系バイオマスをエタノールに転換するための従来の方法は多数の工程を含む。前処理により、セルロースは酵素、すなわちセルラーゼにアクセス可能となる。酵素加水分解工程は、セルロースをグルコースへと転換するために用いられ得、次いでグルコースは、発酵工程の間に、一般的に酵母サッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）を用いてエタノールに転換される。最後に、蒸留工程により、発酵マスト（fermentation must）からエタノールを分離・回収することが可能となる。

種々の技術−経済の研究により、セルラーゼのコストを低減させることが、リグノセルロース系物質から出発する生物学的エタノール生産方法においてキー・ポイントの一つであることが立証された。現在、工業用セルラーゼが、糸状菌であるトリコデルマ・リーゼイ（Trichoderma reesei）によって主に生産されているのは、その高いセルラーゼ分泌力のためである。工業的に適用されている戦略は、菌を所与の濃度にまで急速に生育させ、次いでセルラーゼの生産を誘導して、生産性と収率を最大化させることである。トリコデルマ・リーゼイは、完全に好気性であり、その生育により培地の粘度が大幅に上昇するに至り、これにより、その生存に必要である酸素の移動が困難となる。酸素移動は、Ｋ_Ｌａに関連し、Ｋ_Ｌａは、培地の単位容積当たりの酸素移動容量の係数として知られている。これは、係数Ｋ_Ｌ（全体のＯ_２交換係数（ｍ／ｓまたはｍ／ｈ）と、係数「ａ」（液相培養培地の単位体積当たりの比交換面積（specific exchange area）（ｍ^２／ｍ^３（培養培地））との積である。Ｋ_Ｌａは、撹拌と通気に比例する。菌生育段階の間に増加する生物学的酸素要求量を満たすために、酸素移動を増加させることが必要であり、これは一般的に、撹拌または通気流量を増やすことによって達成される。このことにより、プロセスのエネルギー消費が増大するに至り（撹拌のためのモータへの電力および通気のためのコンプレッサへの電力）、その結果、操作コストが増大する。撹拌および通気に関連するコストは、セルラーゼの生産方法の操作コストの最大で５０％を表し得る。

酵素生産のコストを低減させる一つの方法は、従って、セルロースの生産性を維持しながら要求されるＫ_Ｌａを最小限にするように方法の操作を改変することによって操作コストを低減させることである。このことはまた、２００ｈ^−１超のＫ_Ｌａ値では困難となる、工業用発酵槽（fermenter）の寸法（典型的には１００〜１０００ｍ^３）に関し、スケールアップが単純化させられ得ることを意味する。

酵素的トリコデルマ・リーゼイ複合体の酵素は、３つの主な活性タイプ：エンドグルカナーゼと、エキソグルカナーゼと、セロビアーゼまたはベータ−グルコシダーゼとを含む。リグノセルロース系材料の加水分解に必須である機能または活性を有する他のタンパク質も、トリコデルマ・リーゼイによって生産され、例えばキシラナーゼである。誘導基質の存在は、セルロース分解性および／またはヘミセルロース分解性の酵素の発現に必須である。

種々の炭素源によるセルラーゼ遺伝子の制御が詳細に研究された。それらは、セルロース、その加水分解生成物（例えば、セロビオース）または所定のオリゴ糖、例えば、ラクトースまたはソホロースの存在下に誘導された（非特許文献１）。

従来の突然変異遺伝子技術により、セルラーゼを過剰生産するトリコデルマ・リーゼイの菌株、例えば、菌株MCG77（Gallo‐特許文献１）、MCG80（非特許文献２）、RUT C30（非特許文献３）およびCL847（非特許文献４）の選択が可能となった。

良好な酵素生産性を得るために、セルラーゼの生産のための工業的プロセス、例えば特許文献２に記載された方法は、以下の２つの工程において行われる：
・ 「バッチ」様式での生育工程：トリコデルマ・リーゼイの生育のために急速に吸収され得る炭素の源を供給することが必要である；ついで、
・ 「流加（fed batch）」生産工程：これは、セルラーゼの発現および培養培地への分泌を可能とする誘導基質、例えば、ラクトースを用いる；このような可溶性の炭素質基質を連続的に供給することにより、培養物中の残留濃度を制限し、これにより糖の量を最適化させることは、高い酵素生産性を得ることができることを意味する；引用特許で適用された炭素質源の最適な流れは、３５〜４５ｍｇ（糖）・ｇ（細胞乾燥重量）^−１・ｈ^−１の範囲である
この手順は、微生物の酸素要求量を満たすために高いエネルギー出力を必要とするという不利な点を抱えている。生育段階の終わりに、酸素要求量は非常に高い。実際、基質の全てが過剰に利用可能である場合、生育は、その菌株の最大生育速度に近い生育速度で起こる。生物学的酸素要求量（バイオマスの生育速度および濃度の関数である）は増加するだろう。培養物は、溶存酸素の濃度を一定の値に制御するので、酸素移動速度（oxygen transfer rate：ＯＴＲ）は、酸素消費速度（rate of oxygen consumption：ＲＯＣ）（あるいは生物学的酸素要求量）と等しくなければならない。

ｋ_Ｌａ＊（Ｏ_２ ^＊−Ｏ_２Ｌ）＝（μ＊Ｘ）／Ｒ_Ｘ／Ｏ２
（式中：
Ｏ_２ ^＊：飽和酸素濃度
Ｏ_２Ｌ：液相中の酸素濃度
μ：微生物の生育の速度（ｈ^−１）
Ｒ_Ｘ／Ｏ２：消費された酸素に対する細胞バイオマスの収率
Ｘ＝細胞バイオマス（乾燥重量）の濃度
従って、このタイプの方法は、この要求量を満たすために非常に高いｋ_Ｌａを必要とする。これは、一般的に、撹拌（または通気）を増加させることにより達成されるが、これにより電気エネルギーが消費される。

ｋ_Ｌａが半減するならば、同じ生育速度で得ることが可能である最大バイオマスも半減する。より低い生育速度で同量のバイオマスを得ることが可能であるが、これには、より多くの時間を必要とし、従って、分泌される酵素の最終の生産性の低下が引き起こされる。

本発明は、酵素の生産性を低減させることなく、生物学的酸素要求量をより良好に制御するために用いられ得る。このことは、炭素質基質に関して制限された条件下で、トリコデルマ・リーゼイ等の糸状菌の生理学的特徴を利用することによって可能とされる。

米国特許第４２７５１６７号明細書 仏国特許発明第２８８１７５３号明細書

IImenら著、「Appl Environ Microbiol」、１９９７年、第６３巻、ｐ．１２９８−１３０６ Allen, A. L.、Andreotti, R. E.著、「Biotechnol- Bioengi」、１９８２年、第１２巻、ｐ．４５１−４５９ Montenecourt, B. S.、Eveleigh, D. E.著、「Appl Environ Microbiol」、１９７７年、第３４巻、ｐ．７７７−７８２ Durandら著、「Proc Colloque SFM 「Genetique des microorganismes industriels［Genetics of industrial microorganisms：工業的微生物の遺伝学］」、パリ、H. HESLOT出版、１９８４年、ｐ．３９−５０

（発明の要約）
本発明は、酵素生産性性能を維持するために用いられ得る糸状菌によるセルラーゼの生産であって、低い酸素移動容量係数（volumetric oxygen transfer coefficient）ｋ_Ｌａを有するバイオリアクターを用いることによる生産に関する。

図１は、トリコデルマ・リーゼイの別の菌株で得られたTolanおよびFoodyによる論文（１９９９年）において挙げられた実験値を用いた、モデルによってシミュレートされた値の比較を表す。 図２は、実施例１に対応する、バイオマス濃度、プロテイン濃度およびｋ_Ｌａの変化を表す。 図３は、実施例２に対応する、状態変数の経時変化を表す。 図４は、実施例３に対応する、状態変数の経時変化を表す。 図５は、実施例３に対応する、ｋ_Ｌａの経時変化を表す。

（発明の詳細な説明）
本発明は、通気撹拌型バイオリアクター内において糸状菌株を用いてセルラーゼを生産する方法であって、少なくとも以下の２つの工程：
・ バッチ相における、少なくとも１種の炭素質生育基質の存在下での生育の第１の工程であって、炭素質生育基質の濃度が１０〜８０ｇ／Ｌの範囲である、工程；
・ 流加相における、少なくとも１種の誘導炭素質基質（inducer carbonaceous substrate）の存在下での生育および生産の第２の工程であって、毎時の細胞の重量（ｇ）当たり５０〜１４０ｍｇの範囲の炭素源の制限的な流れの存在下での工程
を含む、方法に関する。

好ましくは、炭素質生育基質の濃度は、１０〜２０ｇ／Ｌの範囲である。より好ましくは、それは、１２〜１７ｇ／Ｌの範囲である。

生育段階の間に、炭素質基質の濃度は、生育が最大生育速度で起こるようになされる。

好ましくは、流加段階において用いられる誘導炭素質基質の濃度は、毎時の細胞の重量（ｇ）当たり７０〜１００ｍｇの範囲である。より一層好ましくは、それは、毎時の細胞の重量（ｇ）当たり８０〜９０ｍｇの範囲である。

本発明において用いられるバイオリアクターは、それ故に、４０〜１８０ｈ^−１の範囲の酸素移動容量係数ｋ_Ｌａを有し得、好ましくは４０〜１５０ｈ^−１の範囲である。

第２の工程は、最大菌株消費容量未満である流れを有する制限的な誘導炭素質基質の条件下に行われる。

炭素質生育基質は、好ましくは、ラクトース、グルコース、キシロース、セルロース系バイオマスの酵素加水分解物の単量体糖のエタノール発酵後に得られる残渣および／またはセルロース系バイオマスの前処理に由来する水溶性ペントースの粗抽出物から選択される。

誘導炭素質基質は、好ましくは、ラクトース、セロビオース、ソホロース、セルロース系バイオマスの酵素加水分解物の単量体糖のエタノール発酵後に得られる残渣および／またはセルロース系バイオマスの前処理に由来する水溶性ペントースの粗抽出物から選択される。

上記の誘導生育基質は、単独であるいは混合物として用いられてよい。

その性質に応じて、バイオマスを生産するために選択される炭素質生育基質は、滅菌前に発酵槽に導入されるか、あるいは、それは、別個に滅菌され、滅菌後のバイオリアクターに導入される。

流加段階の間に導入される誘導炭素質基質は、バイオリアクターに導入される前に独立的に滅菌される。

好ましくは、誘導的炭素源がラクトースである場合、水溶液が、２００〜２５０ｇ／Ｌの濃度で調製される。

本発明の方法は、バイオリアクターを用いて、２．５倍小さい、すなわち、２５０ｈ^−１ではなく１００ｈ^−１のＫ_Ｌａの酸素移動容量で、類似のセルラーゼ生産性を得るために用いられ得る。Ｋ_Ｌａと通気撹拌型バイオリアクター、例えば、ＮＲＥＬ報告書「Lignocellulosic to ethanol process design and economics utilizing co-current dilute acid prehydrolysis and enzymatic hydrolysis, current and futuristic scenarios」（R Wooleyら、NREL/TP-580-26157（1999）, enzyme production sectionにおいて示されるものにおいて消散させられる電力とを関連付ける相関は、以下の通りである：
Ｋ_Ｌａ＝０．０２６＊（Ｐ／Ｖ）^０．４＊Ｖ_Ｇ ^０．５
（式中：
Ｐ／Ｖ：散逸電力（Ｗ／ｍ^３）
Ｖ_Ｇ：気体の表面速度（ｍ／ｓ）
である。）
従って、この相関によると、１００ｈ^−１のＫ_Ｌａについての消散電力（Ｐ／Ｖ）は、Ｋ_Ｌａが２５０ｈ^−１である場合に必要な消散電力より約１０倍小さい。

本発明による方法の利点は、方法の工業スケールへのスケールアップの単純化（典型的に１００から１０００ｍ^３への）および操作コストの低減が可能となることである。

本方法は単純であり、強固であり、かつ炭素質基質により制限条件下で菌の生理学的特性を利用する。

従来の方法と比較して、操作モードの適合は、一方では、「バッチ」モードプロセスの第１の段階の間に生育基質の初期濃度を低減させて、この段階の終わりに最大生物学的酸素要求量を低減させることによってなされ、他方では、「流加」段階の間に炭素質基質の流れを増大させて、この段階の始まりの間に、低減した生育速度で、酵素と同時に細胞バイオマスを生産し続けることによってなされる。菌の生理学的特性を利用して、流加の流量およびバイオマスの所望濃度が決定される。

このことは、より少ない酸素移動容量をバイオリアクターに要求しながら、最終的な生産性能が維持され得ることを意味する。

本方法において用いられる菌株は、トリコデルマ（Trichoderma）属、アスペルギルス（Aspergillus）属、ペニシリウム（Penicillium）属またはスエヒロタケ（Schizophyllum）属に属する糸状菌の菌株である。

好ましくは、用いられる菌株は、トリコデルマ・リーゼイ種に属する菌株である。

用いられる工業的な菌株は、トリコデルマ・リーゼイ種に属し、これは、突然変異−選択プロセスによってセルロース分解性および／またはヘミセルロース分解性の酵素を改良するように改変されてもよく、例えば、菌株IFP CL847等である；遺伝子組み換え技術によって改良された菌株が用いられてもよい。これらの菌株は、通気撹拌型発酵槽内で、それらの生育および酵素生成に適合する条件下で培養される。トリコデルマで用いられる方法と同様の方法を用いて酵素を生じさせる他の微生物菌株が用いられてよい。

好ましくは、用いられる菌株は、遺伝子突然変異、選択または組み換えによって改変されたトリコデルマ・リーゼイの菌株である。

例として、菌株は、CL847、RutC30、MCG77、またはMCG80の菌株である。

時間（ｈ）当たりかつバイオマスの重量（ｇ）当たり糖約１４０ｍｇ超の誘導炭素質基質（ｑｓ）の流れは、培地中に糖の蓄積を引き起こし、トリコデルマ・リーゼイの生理学的な挙動を改変し、これにより、タンパク質生産の特定の速度（ｑｐ）が低下するに至る（異化代謝抑制現象）。この流れを、時間当たりかつバイオマスの重量（ｇ）当たり糖５０〜１４０ｍｇの範囲の値に制限することによって、制限条件下の場合に、菌株は、同時に、バイオマスおよび酵素を生じさせ、酵素のみを作る平衡状態に向かう傾向にある。

モデルは、これらの観察をもとに構築され、０．０１８ｈ^−１の希釈度で、炭素質基質の種々の初期濃度について連続的に行われるバイオマスおよび酵素の生産をシミュレートするように適用された。その条件は、TolanおよびFoodyによる論文（“Cellulase from submerged fermentation”, (1999), Adv in biochemical engineering biotechnology, Vol 65, p42-67）において記載された研究に相当する。上記論文は、Nicholsonらによる論文（１９８９）（Proceedings of the 7th Canadian bioenergy seminar, Energy Mines, and Resources）を引用し、バイオマスおよびタンパク質の濃度についての実験結果を提供する。本発明者らは、CL847菌株について同定された速度論的パラメータ（kinetic parameters）を保持したが、上記著者は異なる菌株を用いていた。結果は図１に報告され、モデルと実験との間の非常に良好な合致を証明する。

このことはまた、このモデルが、CL847菌株と同じ生理学的挙動を有するトリコデルマ・リーゼイの他の菌株にも有効であることを証明する。

バッチ段階の間の炭素質生育基質の濃度は、従来技術の開示（FR 2 881 753）と比べてより低く、これにより、１００ｈ^−１のｋ_Ｌａを有するバイオリアクターについてのこの段階の終わりにおける最大の生物学的酸素要求量（μｍａｘ）が低減させられる。炭素質基質の流れは、「流加」段階の間に、時間（ｈ）当たりかつバイオマスの重量（ｇ）当たりの誘導炭素質基質３５〜４５ｍｇの範囲の流れを推奨する特許FR 2 881 753と比べて増大させられた。このことは、バイオマスが、低減した生育速度ではあったが、この段階の開始の間に酵素と同時に継続して生産され得たことを意味し、このことは、生物学的酸素要求量が制御され得たことを意味する。流加段階の間の炭素源の流れは、それ故に、流加段階の開始時に、毎時のバイオマスの重量（ｇ）当たり糖５０ｍｇ超の値に増大させられた。生育が、酵素生成と同時に継続し、かつ、安定化したのは、炭素源の流れが、菌株にとっての最適値に近い時であった。

（実施例）
以下の実施例において、実施例１は、２５０ｈ^−１のｋ_Ｌａを有するバイオリアクターによる特許FR 2 881 753の基準条件を用いる培養を提示する。実施例２は、実施例１と同じ条件下で行われるが、１００ｈ^−１のｋ_Ｌａを有する発酵槽を用いる実験を提示する。この実施例は、炭素質基質の蓄積で終了し、バイオマス生産は高く、酵素生産は低かった。実施例３は、本発明の方法を実施したものであった。それは、１００ｈ^−１のｋ_Ｌａを有するバイオリアクターを用いて、実施例１の生産性に近い生産性を得るために用いられた。

（実施例１：グルコースによる酵素の生産）
セルロースの生産が、機械的に撹拌された発酵槽内で行われた。無機培地は、以下の組成を有していた：ＫＯＨ １．６６ｇ／Ｌ、８５％Ｈ_３ＰＯ_４ ２ｍＬ／Ｌ、（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４ ２．８ｇ／Ｌ、ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ ０．６ｇ／Ｌ、ＣａＣｌ_２ ０．６ｇ／Ｌ、ＭｎＳＯ_４ ３．２ｍｇ／Ｌ、ＺｎＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ ２．８ｍｇ／Ｌ、ＣｏＣｌ_２ １０４．０ｍｇ／Ｌ、ＦｅＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ １０ｍｇ／Ｌ、コーンスティープ（Corn Steep） １．２ｇ／Ｌ、消泡剤 ０．５ｍＬ／Ｌ。

無機培地を含む発酵槽が、１２０℃で２０分間にわたり滅菌され、炭素源は、１２０℃で２０分間にわたり滅菌されたグルコースの溶液であり、次いで、殺菌した様式で、３０ｇ／Ｌの最終濃度を生じさせるように発酵槽に加えられた。発酵槽は、１０％（ｖ／ｖ）まで、トリコデルマ・リーゼイCL847菌株の液体前培養物を播種された。前培養物のための無機培地は、ｐＨを緩衝するために５ｇ／Ｌのフタル酸カリウムを添加したこと以外は、発酵槽のものと同じであった。前培養の間の菌の生育は、炭素質基質としてグルコースを３０ｇ／Ｌの濃度で用いて行われた。接種菌の生育は２〜３日間続き、２８℃で攪拌型インキュベータにおいて大気圧で行われた。グルコースの残留濃度が１５ｇ／Ｌ未満であったならば、発酵槽への移動が行われた。

バイオリアクター内で行われた実験は、以下の２つの段階を含んでいた：
・ グルコース炭素質基質（初期濃度＝３０ｇ／Ｌ）による生育の段階；温度２７℃およびｐＨ４．８（５．５Ｍアンモニア性溶液を用いて設定される）で行われる；通気は、０．５ｖｖｍにされ、攪拌は、Ｏ_２圧（溶存酸素の圧力）に応じて２００〜８００ｒｐｍの間に増大させられ、Ｏ_２圧力は、３０％に設定された；
・ 酵素生成段階；３０時間後に、２５０ｇ／Ｌのラクトース溶液が、２５０時間にわたり、毎時の細胞の重量（ｇ）当たり３５ｍｇの流量で連続的に注入された；温度は、２５℃に降下させられ、ｐＨは４にされて、培養は終了した；ｐＨは、５．５Ｍのアンモニア性溶液を加えることによって設定され、これは、排出されるタンパク質の合成に必要な窒素を提供した；溶存酸素の量は、攪拌作用によって３０％超に維持された。

酵素生成後、ろ過または遠心分離による菌糸体の分離の後にＢＳＡ（「Bovine serum albumin」：ウシ血清アルブミン）により行われる較正に基づくローリー（Lowry）法を用いた細胞外タンパク質のアッセイを行った。測定されたセルロース分解活性
− ろ紙活性またはＦＰ（これは、ＦＰＵ（filter paper units）で表される）；これは、エンドグルカナーゼおよびエンドグルカナーゼの酵素的プールの全体的な活性をアッセイするために用いられ得た；
− 特定の活性についてのβ−グルコシダーゼおよびキシラナーゼの活性；
は以下の通りであった。

ＦＰ活性は、ワットマンNo.1紙により（IUPACバイオテクノロジー委員会によって推奨される手順）、５０ｇ／Ｌの初期濃度で測定された；６０分内で２ｇ／Ｌ当量のグルコース（比色アッセイ）を遊離させた、分析されるべき酵素溶液の試験サンプルが測定された。ろ紙活性の原理は、ＤＮＳ（dinitrosalicylic acid：ジニトロサリチル酸）アッセイによって、ワットマンＮｏ．１紙から得られた還元糖の量を測定することにある。

β−グルコシダーゼ活性を測定するために用いられた基質は、ｐ−ニトロフェニル−β−Ｄ−グルコピラノシド（p-nitrophenyl-β-D-glucopyranoside：ＰＮＰＧ）であった。それは、β−グルコシダーゼによって切断され、これは、ｐ−ニトロフェノールを遊離させた。

１のβ−グルコシダーゼ活性単位は、分当たりにＰＮＰＧから１μｍｏｌのｐ−ニトロフェノールを生じさせるために必要な酵素の量として定義され、ＩＵ／ｍＬで表される。

キシラーゼ活性をアッセイする原理は、ＤＮＳアッセイによって、加水分解されたキシラン溶液から得られた還元糖の量を測定することにある。このアッセイ方法は、糖、主としてキシロースの還元特性を用いる。キシラーゼ活性は、ＩＵ／ｍＬで表され、分当たりに１μｍｏｌのキシロースを生じさせるために必要な酵素の量に相当する。

比活性（specific activity）は、ＩＵ／ｍＬで表される活性を、タンパク質の濃度で除算することによって得られる。それらは、ＩＵ／ｍｇで表される。

Ｋ_Ｌａ値は、炭素および酸化還元の平衡を確認した後に、ガスの平衡から測定された。

実施例１の最終マストについての分析的定量は、以下の結果を生じさせた：
細胞バイオマス（ｇ／Ｌ）＝１５．５
タンパク質（ｇ／Ｌ）＝５０．１
生産性＝０．２０ｇ／Ｌ／ｈ
ＦＰＵ＝２９．１ＩＵ／ｍＬ
キシラナーゼの比活性（Specific xylanase）＝８．２ＩＵ／ｍｇ
β−グルコシダーゼの比活性＝１．０ＩＵ／ｍｇ
図２は、バイオマス、タンパク質の濃度およびＫ_Ｌａにおける経時変化を表している。細胞バイオマスが実験の最初の５０時間の間に１５ｇ／Ｌまで増大したことおよびＫ_Ｌａが２４０ｈ^−１であったことが理解され得るだろう。タンパク質の濃度は、最初の５０時間の間にわずかに増加し、次いで、バイオマスの濃度が安定した時点から大幅に増加した。それは、培養が完了した時に５０ｇ／Ｌに達した。

（実施例２）
実施例２は、実施例１と同一の条件下に実施されたが、用いられた発酵槽の最大Ｋ_Ｌａは１００ｈ^−１であり、その初期容積は７５０ｍＬであった。発酵により、細胞バイオマスの高い生産（４５ｇ／Ｌ）および低いタンパク質生産（１９ｇ／Ｌ）がもたらされた（図３参照）。

これは、実験を通して高い残留濃度の炭素質基質（ラクトース、グルコース）が存在することよるものであった。これによりセルロース生成が再開し、これは、実際に、誘導炭素質基質についての制限条件下に誘導された。グルコースが消費されなかったのは、バイオリアクターの酸素移動容量が２．５倍少なく、これが、Ｏ_２消費の速度に比例する炭素質基質消費の速度を低減させたからである。

実際、酸素移動速度は、以下のように表される：
ＯＴＲ＝Ｋ_Ｌａ（Ｏ_２ ^＊−Ｏ_２Ｌ）
（式中、
Ｏ_２ ^＊：飽和酸素濃度
Ｏ_２Ｌ：液相中の酸素濃度
である）。

酸素消費の速度は、それ故に、２．５倍小さかったＯＴＲによって制限された。

最終マストについての分析的定量は、以下の結果を生じさせた：
細胞バイオマス（ｇ／Ｌ）＝４５
タンパク質（ｇ／Ｌ）＝１９
ＦＰＵ＝１０．１ＩＵ／ｍＬ
キシラナーゼの比活性＝８．５ＩＵ／ｍｇ
β−グルコシダーゼの比活性＝１．２ＩＵ／ｍｇ
（実施例３：本発明に合致する）
１００ｈ^−１のｋ_Ｌａを有するバイオリアクターが用いられたが、生産方法は、本発明に合致するように改変された。

初期グルコース濃度は、それ故に、１５ｇ／Ｌに低減させられ、その結果、二原子酸素消費の最大生物学的速度は、用いられた発酵槽と適合していた。グルコースに対する細胞バイオマス生産の収率は、これが過剰に存在していた時に０．５ｇ／ｇであった。このことは、この量のグルコースについての最大二原子酸素消費速度が０．５ｇ／Ｌ／ｈであったことを意味する（最大生育速度が０．０８ｈ^−１であり、二原子酸素のバイオマスへの転化収率が１．２ｇ／ｇである）。

流加段階は、２４時間後に、毎時のバイオマスの重量（ｇ）当たり基質８９ｍｇの流れ（２５０ｇ／Ｌのラクトース溶液）により着手された。生育段階は、タンパク質生成と同時に起こった。タンパク質生成は、実験の２４０時間後に５１．７ｇ／Ｌに達した（図４）。最終のタンパク質生産性は、それ故に、低減した移動容量を有する発酵槽の使用にも拘わらず維持された。それは、０．２１ｇ／Ｌ／ｈであった（実施例１の場合には、それは、０．２０ｇ／Ｌ／ｈであった）。

図５は、実験中のｋ_Ｌａにおける変化を例証する；それは、１００ｈ^−１未満にとどまっていた。

最終マストについての分析的定量は、以下の結果を与えた：
細胞バイオマス（ｇ／Ｌ）＝１８．９
タンパク質（ｇ／Ｌ）＝５１．７
生産性＝０．２１ｇ／Ｌ／ｈ
ＦＰＵ＝３０．１ＩＵ／ｍＬ
キシラナーゼの比活性＝９．５ＩＵ／ｍｇ
β−グルコシダーゼの比活性＝１．１２ＩＵ／ｍｇ

Claims (13)

1. 通気撹拌型バイオリアクター内において糸状菌に属する菌株を用いてセルラーゼを生産する方法であって、少なくとも以下の２つの工程：
   ・ バッチ相における少なくとも１種の炭素質生育基質の存在下での第１の生育工程であって、１０〜６０ｇ／Ｌの範囲の炭素質生育基質の濃度で行われる、工程；
   ・ 流加相における少なくとも１種の誘導炭素質基質の存在下での生育および酵素生産のための第２の工程であって、毎時の細胞バイオマスの乾燥重量（グラム）当たり５０〜１４０ｍｇの範囲の炭素源の制限的な流れの存在下での工程
   を含み、
   バイオリアクターの酸素移動容量係数ｋ_Ｌａは、４０〜１８０ｈ^−１の範囲である、方法。
2. 炭素質生育基質の濃度は、１０〜２０ｇ／Ｌの範囲である、請求項１に記載の方法。
3. 炭素質生育基質の濃度は、１２〜１７ｇ／Ｌの範囲である、請求項２に記載の方法。
4. 炭素源の流れは、毎時の細胞バイオマスの乾燥重量（グラム）当たり７０〜１００ｍｇの範囲である、請求項１〜３のいずれか１つに記載の方法。
5. 炭素源の流れは、毎時の細胞バイオマスの乾燥重量（グラム）当たり８０〜９０ｍｇの範囲である、請求項４に記載の方法。
6. バイオリアクターの酸素移動容量係数ｋ_Ｌａは、４０〜１５０ｈ^−１の範囲である、請
   求項１〜５のいずれか１つに記載の方法。
7. 炭素質生育基質は、ラクトース、グルコース、キシロース、セルロース系バイオマスの酵素加水分解物の単量体糖のエタノール発酵後に得られる残渣および／またはセルロース系バイオマスの前処理に由来する水溶性ペントースの粗抽出物から選択される、請求項１〜６のいずれか１つに記載の方法。
8. 誘導炭素質基質は、ラクトース、セロビオース、ソホロース、セルロース系バイオマスの酵素加水分解物の単量体糖のエタノール発酵後に得られる残渣および／またはセルロース系バイオマスの前処理に由来する水溶性ペントースの粗抽出物である、請求項１〜７のいずれか１つに記載の方法。
9. バイオマスを生産するために選択された炭素質生育基質は、滅菌の前に発酵槽に導入される、請求項１〜８のいずれか１つに記載の方法。
10. バイオマスを生産するために選択された炭素質生育基質は、別個に滅菌され、滅菌後のバイオリアクターに導入される、請求項１〜８のいずれか１つに記載の方法。
11. 流加段階の間に導入される誘導炭素質基質は、個別に滅菌された後に、前記リアクターに導入される、請求項１〜１０のいずれか１つに記載の方法。
12. 用いられる菌株は、トリコデルマ・リーゼイの菌株である、請求項１〜１１のいずれか
    １つに記載の方法。
13. 用いられる菌株は、遺伝子の突然変異、選択または組み換えによって改変されたトリコデルマ・リーゼイの菌株である、請求項１〜１１のいずれか１つに記載の方法。
    
    

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