JP5984189B2 - 反芻動物のメタン排出低減および/または反芻動物の生産性向上のための飼料中でのニトロオキシ有機分子の使用 - Google Patents
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Description
(式中、
Yは、次の組成:CaHbOdNeSgの有機分子であり、
ここで、
aは、1〜25、好ましくは1〜10に含まれ、
bは、2〜51、好ましくは2〜21に含まれ、
dは、0〜8、好ましくは0〜6に含まれ、
eは、0〜5、好ましくは0〜3に含まれ、
gは、0〜3、好ましくは0〜1に含まれる)
で示される化合物により定義されるが、ただし、式(II)
(式中、
uは、0〜23に含まれ、ここで、u≠0のとき、炭素鎖は、モノ不飽和またはポリ不飽和であってもよいかつ任意の異性体形であってもよい、線状、環状、または分岐線状もしくは分岐環状の脂肪族炭素鎖であり、
Zは、独立して、O、NH、またはN−R3であり、ここで、R1≠Hのとき、Z−R1は、エステル誘導体または第二級アミド誘導体を表し、
R1は、独立して、水素、または1〜10個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、
R2は、独立して、水素、または1〜23個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、かつ
R3は、独立して、水素、または1〜10個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基である)
により定義されるニトロオキシアルカン酸および/またはその誘導体は、除外される。
(式中、
nは、0〜12に含まれ、好ましくは0〜6に含まれ、ここで、n≠0のとき、炭素鎖は、非置換であっても、3個までのヒドロキシル基、アルコキシ基、アミノ基、アルキルアミノ基、ジアルキルアミノ基、もしくはニトロオキシ基で置換されていてもよい、線状、環状、もしくは分岐状の脂肪族炭素鎖、またはモノ不飽和もしくはポリ不飽和のかつ任意の異性体形のアルケニル炭素鎖もしくはアルキニル炭素鎖であり、
R4は、独立して、水素、または1〜12個、好ましくは1〜6個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、
Xは、水素、R5、R5≡N、−OR5、−OCOR5、−NR5R6、−ONO2、−COOR5、−CONR5R6、−NHSO2R5、または−SO2NHR5であり、
R5およびR6は、独立して、水素、または非置換の、もしくは3個までのヒドロキシル基、アルコキシ基、アミノ基、アルキルアミノ基、ジアルキルアミノ基、もしくはニトロオキシ基で置換された、C1〜C12の直線状、分岐状、もしくは環状のアルキル鎖、モノ不飽和もしくはポリ不飽和であってもよいかつ任意の異性体形であってもよいアルケニル炭素鎖もしくはアルキニル炭素鎖である)
で示される化合物である。
・(a)表1から選択される少なくとも1種の化合物と、(b)少なくとも1種の脂溶性ビタミン、(c)少なくとも1種の水溶性ビタミン、(d)少なくとも1種の微量ミネラル、および/または(e)少なくとも1種の多量ミネラルと、を含む動物用飼料添加物、
・表1から選択される少なくとも1種の化合物と、50〜800g/kg飼料の粗タンパク質分と、を含む動物用飼料組成物。
・脂溶性ビタミンの例は、ビタミンA、ビタミンD3、ビタミンE、およびビタミンK、たとえば、ビタミンK3である。
・水溶性ビタミンの例は、ビタミンB12、ビオチンおよびコリン、ビタミンB1、ビタミンB2、ビタミンB6、ナイアシン、葉酸、およびパントテン酸、たとえば、Ca−D−パントテン酸である。
・微量ミネラルの例は、マンガン、亜鉛、鉄、銅、ヨウ素、セレン、およびコバルトである。
・多量ミネラルの例は、カルシウム、リン、およびナトリウムである。
[実施例1:メタン生成のin vitro試験]
このin−vitro系により模倣したルーメン機能に及ぼす特定化合物の効果を試験するために、「Hohenheim茎葉飼料値試験(HFT)」の改変版を使用した。
ルーメン液組成物および適切な緩衝液混合物と共に、飼料をシリンジ中に入れる。溶液を39℃でインキュベートする。8時間後、生成したメタンの量(また組成)を測定して、変換式に代入する。
多量元素溶液:
・6.2gのリン酸二水素カリウム(KH2PO4)
・0.6gの硫酸マグネシウム七水和物(MgSO4・7H2O)
・9mlの濃リン酸(1mol/l)
・蒸溜水に溶解して1lにする(pH約1.6)
緩衝溶液:
・35.0gの炭酸水素ナトリウム(NaHCO3)
・4.0gの炭酸水素アンモニウム((NH4)HCO3)
・蒸溜水に溶解して1lにする
微量元素溶液:
・13.2gの塩化カルシウム二水和物(CaCl2・2H2O)
・10.0gの塩化マンガン(II)四水和物(MnCl2・4H2O)
・1.0gの塩化コバルト(II)六水和物(CoCl2・6H2O)
・8.0gの塩化鉄(III)(FeCl3・6H2O)
・蒸溜水に溶解して100mlにする
ナトリウム塩溶液:
・100mgのナトリウム塩
・蒸溜水に溶解して100mlにする
還元溶液:
・最初に3mlの水酸化ナトリウム(c=1mol/l)、次いで427.5mgの硫化ナトリウム水和物(Na2S・H2O)を71.25mlのH2Oに添加する
・媒体溶液に添加する直前に溶液を調製しなければならない
[サンプル秤量:]
飼料原料を1mmの篩にかけて−通常はTMR(44%の濃厚飼料、6%の乾草、37%のメイズサイレージ、および13%のイネ科牧草サイレージ)−64個のシリンジ中に正確に秤取する。これらのシリンジのうちの4個は、試験化合物の効果を含まないガス生成を呈する基質対照である。4個の他のシリンジは、ブロモエタンスルホネートが0.1mMになるように添加された陽性対照である。必要な場合、4個のシリンジは、担体対照を含有する(試験化合物が担体を必要とする場合)。残りのシリンジは、1グループあたり4個のシリンジで、試験物質を含有する。
以下の順序でWoulff瓶中で成分を混合する。
・711mlの水
・0.18mlの微量元素溶液
・355.5mlの緩衝溶液
・355.5mlの多量元素溶液
完成溶液を39℃まで加温し、続いて、1.83mlのナトリウム塩溶液の添加および36℃で還元溶液の添加を行う。指示薬が無色になった時、ルーメン液を添加する。
連続撹拌下およびCO2ガス供給下で、750mlのルーメン液を約1,400mlの媒体溶液に添加する。
希釈ルーメン流体(24ml)をガラスシリンジに添加する。次いで、緩速撹拌下39℃でシリンジを8時間インキュベートする。8時間後、生成したガスの体積を測定し、気相中のメタンのパーセントをガスクロマトグラフィーにより決定する。
発酵食物は、人工TMR(44%の濃厚飼料、6%の乾草、37%のメイズサイレージ、および13%のイネ科牧草サイレージ)であった。実施例2〜14で説明したように生成された化合物を2〜0.005%の乾物(DM)濃度になるように発酵シリンジに添加した。結果を以下の表に示す。
ニトロオキシ基を異なる有機基で置き換えた一連の分子を用いて、実施例1で説明したのと同一のin vitroアッセイを行った。さらに、無機塩NaNO3も試験した。表4に示される結果を参照されたい。一連の分子のうちニトロオキシ基が存在する場合にのみ、有意なメタン低減活性が観測されることが、このデータから実証される。
100mlのアセトニトリル中に溶解された50.1mmolの3−ブロモプロパノールおよび125.25mmolの硝酸銀を、光から保護されたフラスコ内に添加した。この懸濁液を70℃で21時間攪拌した。室温に冷却後、懸濁液を濾過して、減圧下で濃縮した。残渣を水中に溶解して、TMBEで2回抽出した。有機相を水およびブラインで洗浄し、組み合わせ、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去したところ、5.63gが残った。
20mlのアセトニトリル中に溶解された5mmolの2−(ブロモメチル)−2−(ヒドロキシメチル)−1,3−プロパンジオールおよび15mmolの硝酸銀を、光から保護されたフラスコ内に添加した。この懸濁液を70℃で24時間攪拌した。室温に冷却後、懸濁液を濾過して、溶媒を減圧下で除去したところ、3.05gが残った。
40mlのアセトニトリル中に溶解された7.5mmolの4−フェニル−1−ブテン、20.3mmolの硝酸銀、および7.5mmolのヨウ素(lode)を、光から保護されたフラスコ内に添加した。この懸濁液を25℃で30分間、次いで、79℃で16時間攪拌した。室温に冷却後、懸濁液を濾過して、エチルアセテートで洗浄した。濾液を水で3回抽出してブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去したところ、1.92gが残った。
フラスコ内で、17mmolの3−クロロプロピオン酸スルホニルクロリドを5mlのテトラヒドロフラン中に溶解した。45分間にわたり33.3mmolのエチルアミンを添加した。その後、溶媒を減圧下で除去した。残渣を水中に溶解して、エチルアセテートで3回抽出した。合わせた有機相をブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去した。
9.1mmolのプロピオニルクロリドを10mlのTMBE中に溶解して、3℃に冷却した。5mlのTMBE中の8.25mmolの3−ニトロオキシプロパノールおよび9.1mmolのトリエチルアミンを、3〜6℃で5分間かけて滴下した。冷却せずに2時間30分撹拌した後、反応混合物を1N HCl、水で2回抽出し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去したところ、1.35gが残った。
10mlのTMBE中に溶解された16.5mmolの3−ニトロオキシプロパノールおよび18.2mmolのトリエチルアミンを3℃に冷却した。5mlのTMBE中の18.2mmolのベンゾイルクロリドを、3〜6℃で7分間にわたり滴下した。冷却せずに24時間30分撹拌した後、反応混合物を飽和NaHCO3、水、1N HCl、水で2回抽出し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去したところ、3.3gが残った。
10mlのジエチルエーテル中に溶解された20mmolの3−ニトロオキシプロパノールおよび20mmolのトリエチルアミンを0℃に冷却した。18.2mmolのヘキソイルクロリドを、0〜5℃で5分間にわたり滴下した。冷却せずに19時間撹拌した後、反応混合物を1N HCl、水で2回抽出し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去したところ、3.1gが残った。
10mlのジエチルエーテル中に溶解された20mmolの3−ニトロオキシプロパノールおよび20mmolのトリエチルアミンを0℃に冷却した。18.2mmolの5−ニトロオキシペントイルクロリドを、0〜5℃で5分間かけて滴下した。冷却せずに一晩撹拌した後、反応混合物を1N HCl、水で2回抽出し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去した。
80mlのアセトニトリル中に溶解された10mmolのベンジルブロミドおよび25mmolの硝酸銀を、光から保護されたフラスコ内に添加した。この懸濁液を70℃で5時間攪拌した。室温に冷却後、懸濁液を濾過して、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタン中に溶解して、水で抽出した。再度、水相をジクロロメタンで2回洗浄した。合わせた有機相を水およびブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去した。収量:1.55g(10.1mmol;100%)。
20.0mLの無水アセトニトリル中の1,3−ジブロモプロパン(2.00g、1.0eq)の溶液に、硝酸銀(3.70g、2.2eq)を添加した。暗所において反応混合物を70℃で2時間加熱した。得られた混合物をセライトに通して濾別し、そして濾液を濃縮した。残渣を水(50.0mL)中に溶解し、ジクロロメタン(2×50.0mL)で抽出し、硫酸マグネシウムで脱水し、そして溶媒を減圧下で蒸発させたところ、無色液体として1.44gの化合物が得られた(収率=87%)。
20.0mLの無水アセトニトリル中の1,4−ジブロモブタン(2.00g、1.0eq)の溶液に、硝酸銀(3.50g、2.2eq)を添加した。暗所において反応混合物を70℃で2時間加熱した。得られた混合物をセライトに通して濾別し、そして濾液を濃縮した。残渣を水(50.0mL)中に溶解し、ジクロロメタン(2×50.0mL)で抽出し、そして硫酸マグネシウムで脱水した。溶媒を減圧下で蒸発させたところ、無色液体として1.49gの化合物が得られた(収率=89%)。
20.0mLの無水アセトニトリル中の1,5−ジブロモペンタン(2.00g、1.0eq)の溶液に、硝酸銀(3.30g、2.2eq)を添加した。暗所において反応混合物を70℃で2時間加熱した。得られた混合物をセライトに通して濾別し、そして濾液を濃縮した。残渣を水(50.0mL)中に溶解し、ジクロロメタン(2×50.0mL)で抽出し、そして硫酸マグネシウムで脱水した。溶媒を減圧下で蒸発させたところ、無色液体として1.38gの化合物が得られた(収率=82%)。
40.0mLの無水アセトニトリル中の5−ブロモバレロニトリル(4.00g、1.0eq)の溶液に、硝酸銀(4.60g、1.1eq)を添加した。暗所において反応混合物を70℃で2時間加熱した。得られた混合物をセライトに通して濾別し、そして濾液を濃縮した。残渣を水(50.0mL)中に溶解し、ジクロロメタン(2×50.0mL)で抽出し、そして硫酸マグネシウムで脱水した。溶媒を減圧下で蒸発させたところ、無色液体として3.56gの化合物が得られた(収率=99%)。
30mlのアセトニトリル中に溶解された16.05mmolのビス(2−ブロモエチル)エーテルおよび40.13mmolの硝酸銀を、光から保護されたフラスコ内に添加した。この懸濁液を70℃で16時間攪拌した。室温に冷却後、懸濁液を濾過して、減圧下で濃縮した。残渣を水中に溶解して、TMBEで2回抽出した。有機相を水およびブラインで洗浄し、組み合わせ、Na2SO4で脱水し、そして溶媒を減圧下で除去したところ、3.06gが残った。ヘプタン/エチルアセテート1:1を用いてシリカゲルで粗生成物を濾過した。収量:2.94g(15.0mmol、93.4%)。
[材料および方法]
10頭のヒツジのルーメンにカニューレを挿入した。外科手術の1ヶ月後に試験を開始した。3種の処理、すなわち、対照、添加物1、および添加物2(いずれも単回用量)を施した。添加物1は、エチル−3−ニトロオキシプロピオネートであり、添加物2は、本発明に係る3−ニトロオキシプロパノールである。実験計画は、各期間および3つの連続期間で1種の処理あたり3頭のヒツジを用いる3×3ラテン方格で構成した。各期間は、処理への適応の28日間と、チャンバー内でのメタン測定およびルーメンサンプル採取の連続2日間と、を含んでいた。適応期全体を通じて、14日目に中期のメタン測定を行った。それに加えて、22日目および23日目の時に、ナイロンバッグ中に入れられたアルファルファ乾草およびエンバクのサンプルをヒツジのルーメン内でインキュベートして、乾物ルーメン分解を決定した。チャンバー内でのメタン測定の2日間(29日目および30日目)では、朝の給餌の2時間後、ルーメン内容物サンプルを採取し、サブサンプル化し、ただちに凍結し、その後、DNAの抽出さらには揮発性脂肪酸およびアンモニア態窒素の濃度の決定を行った。実験動物をそれぞれ3頭の動物からなる3つのサブグループにランダムに割り付けて、3種の処理(対照、添加物1、および添加物2)の1つに無作為に帰属した。3つのサブグループは、チャンバー内でのメタン測定前の適応日数が同一になるように、2日間の間隔をあけて食餌への適応を開始した。新鮮な水が常に得られる檻の中に動物を個別に維持した。60:40の比の15〜20cmに裁断されたアルファルファ乾草およびエンバクと、ミネラル−ビタミン栄養補助剤と、で構成される食餌を、9:00および14:00の2回の等しい給餌時刻でエネルギー維持レベルの約1.1倍で動物に提供した。新たな物質摂取量を試験全体にわたり動物ごとに毎日モニターした。飼料と同一の時刻にルーメンカニューレを介して添加物を1日2回提供した。ルーメンに入れる直前に、各添加物の対応量(いずれの添加物についても、1頭の動物あたり1日につき100mg)を10グラムの粉砕エンバク中にピペット添加し、セルロース紙で包んだ。活性分子が揮発性であるので、以上に挙げた手順は、4℃の低温室で行った。
4つのメタンチャンバーのセットを使用した。14、29、および30日目、動物をメタン測定用チャンバー内に入れた。各測定チャンバーは、幅1.8m×深さ1.8m×高さ1.5mの大きさであった。チャンバーの気温を15〜20℃に維持した。各チャンバー内で、動物を適応時と同一の檻の中に個別に拘束した。毎日09:00に割込みを行って、チャンバーの床を清掃し、動物に給餌した。流量を1日3回計算してから平均して23時間排出値を導出したので、これらの割込みは、毎日のメタン排出にほとんど影響しなかった。空気流量およびメタン濃度を各チャンバーの流入ダクトおよび流出ダクトで測定した。各チャンバーの排気ダクトで空気速度を終日にわたり連続的にモニターした。4つのダクト(チャンバー1、2、および3、ならびにバックグラウンド)のそれぞれの空気流をサブサンプル化して、ガスアナライザーADM MGA3000(Spurling works,Herts,UK)を用いてメタン濃度を連続的に測定した。チャンバーのすべての流入ダクトおよび排気ダクトで逐次的に空気流をサンプリングするのに、11分間を要した(チャンバー1、2、3で3分間、バックグラウンドで2分間)。要約すると、各測定日に、新鮮な空気の流入とチャンバー排気とのメタン濃度差および平均空気速度から、各チャンバーのメタン流量を計算した。
ルーメン内容物のサンプルを凍結乾燥し、ビーズビーター(Mini−bead Beater;BioSpec Products,Bartlesville,OK,USA)を用いて物理的破壊により十分混合し、その後、溶解インキュベーションでより高い温度(95℃)を用いるように変更を加えて、製造業者の説明書に従って、QIAamp(登録商標)DNA Stool Mini Kit(Qiagen Ltd,West Sussex,UK)を用いて、約50mgのサンプルでDNA抽出を行った。DNAサンプルを定量リアルタイムPCR(qPCR)増幅用の鋳型として使用した。全細菌、全原生動物、および全メタン生成古細菌の存在量を、リアルタイムPCR(qPCR)により定量した。16S rRNA遺伝子標的の全細菌(Maeda et al.,2003)および18S rRNA遺伝子標的の全原生動物(Sylvester et al 2005)を増幅するために、異なるプライマーセットを使用した。メタン生成古細菌の検出用に設計されたプライマーは、メチル補酵素Mレダクターゼ(mcrA)遺伝子(Denman et al.,2007)を標的とした。増幅混合物は、23μlの最終体積中に、11.5μlの2×RT−PCRスーパーミックスBio−Rad(Bio−Rad Laboratories Inc.,Hercules,CA,USA)、0.4μlの各プライマー、および0.5μlのサンプルを含有していた。蛍光発光測定のために、次のプログラム、すなわち、95℃で5分間のサイクル、95℃で15秒間、60℃で30秒間、72℃で55秒間、および75℃で6秒間の40回のサイクルを用いて、各ペアのプライマーに対して増幅効率を評価した。55℃から95℃に温度を上昇させることにより融解曲線を作成し、5℃ごとに読み値を取得した。次のプログラム、すなわち、95℃で5分間のサイクル、95℃で15秒間、60℃で15秒間、および72℃で45秒間の40回のサイクル(蛍光発光測定を含む)、ならびに45℃の設定温度および95℃の最終温度の融解曲線を用いて、各標的グループの増幅を行った。プラスミドpCR(登録商標)4−TOPO(Invitrogen(商標),Carlsbad,CA,USA)を標準として用いて、DNAのコピー数として表される、細菌、原生動物、およびメタン生成古細菌の絶対量を決定した。それぞれのプライマーセットを用いて得られたPCR産物を精製し、次いで、pCR(登録商標)4−TOPO(登録商標)プラスミド(Invitrogen(商標),Carlsbad,CA,USA)中にクローニングして、組換えプラスミドを生成した。PCRを用いて予想インサートが検証された単一コロニーを、抗生物質およびX−galと共に、固体培地で一晩増殖させた。その後、形質転換E.コリ(E.coli)コロニーのスクリーニングを行って、陽性コロニーのいくつかをランダムに選択した。PCRによりコロニー中の挿入断片の存在を検査した後、液体培地で陽性コロニーの大量培養を一晩行った。Pure Link(商標) Miniprepキット(Invitrogen(商標),Carlsbad,CA,USA)を用いて、これらの培養物に属するプラスミドを抽出し、次いで、配列決定して挿入断片の存在を検証した。プラスミドDNA濃度およびインサートを有するベクターの分子質量を用いて、プラスミド抽出物中に存在する16S rRNA遺伝子のコピー数を計算した。108〜102個のコピー数範囲を提供するように濃縮プラスミドを逐次希釈(10倍)して、標準曲線を作成した。16sRNAを参照遺伝子として用いて、Denman and McSweeny(2006)に記載のように、メタン生成古細菌および原生動物の相対存在量の定量化に利用した。ガスクロマトグラフィーにより揮発性脂肪酸を分析し、我々の研究室(Martin−Garcia et al.,2004)で確立したプロトコルに従って比色法によりアンモニア態N濃度を分析した。
50μmの細孔サイズを有する5cm×10cmナイロンバッグ(#R510 Ankom in situバッグ、Macedon NY)中に3グラムの2mm粉砕飼料を入れた。動物の食餌に使用される2種の成分、すなわち、エンバクおよびアルファルファ乾草を試験した。エンバクの入ったバッグは、ルーメン内で24時間インキュベートしたが、アルファルファ乾草の入ったバッグは、48時間インキュベートした。異なる飼料原料のルーメン内の平均滞留時間に基づいて、インキュベーション時間を選択した。22日目および23日目、1種の飼料および1頭の動物および1つの期間あたり2個のバッグであった。朝の給餌の直前にバッグをルーメン内に入れた。24または48時間でそれらをルーメンから取り出し、冷水で洗浄し、そして−20℃で凍結させた。すべての期間の終了時、溶解性を考慮してルーメン内でインキュベートしなかった1種の飼料あたり2個のバッグを含めて、短時間冷水プログラムを用いて、凍結バッグを洗浄機で洗浄した。洗浄後、バッグを60℃のオーブン中に48時間入れた。インキュベーション時間にわたる乾物の損失としてルーメン分解性(%)を計算した。
ヒツジに対する管理および実験手順はすべて、実験動物保護のためにスペインガイドライン(2005年10月10日のAct No.1201/2005)に厳格に従って熟練者により行った。動物保護条件を考慮して、チャンバー内の温度、湿度、および排気を注意深くモニターした。また、良好な空気の質および更新速度を保証する限界内に維持すべく、CO2濃度を連続的にモニターした。チャンバー内に割り付けられた間、動物は、なんらストレス挙動を示さなかった。
添加物を含む効果を調べるために、個別のメタン排出、VFAプロファイル、酢酸対プロピオン酸の比、アンモニア態N濃度、全細菌、全原生動物、および全メタン生成古細菌の濃度のlog10変換、ならびに相対存在量を解析した。各解析に対して平均値の標準誤差(SEM)を計算した。最小有意差(LSD)試験を用いて、平均値をさらに比較した。
乾物摂取量は、処理により影響を受けず(P>0.05)、14日目および30日目に動物をメタンチャンバー内に導入した時、摂取量のごくわずかな減少が観測された。
両者の添加物の使用は、メタン生成の有意な低減をもたらし、そのうえさらに、VFAプロファイルによれば、H2移動が関与する代謝経路のシフトは、添加物により促進された。この試験の目的は、1ヶ月間の動物の処理が、2週間の処理にわたり観測された結果の持続性を示すかを確認することであった。このことは、飼料添加物の実用の好適性を評価する場合、不可欠である。この研究では、両者の添加物は、発酵パターンのシフトによりさらに確認されるメタン排出における効果を1ヶ月間の処理にわたり示した。
[材料および方法]
動物: 2産以上の産次かつ550〜800kgの体重の6頭のルーメン瘻孔形成泌乳Holstein X Friesian乳牛を研究に使用した。ウシは、研究の開始時、泌乳中期であった。
飼料摂取量: 毎日の乾物摂取量(DMI)に及ぼす生成物(3−ニトロオキシプロパノール)の有意な影響はなかった(表9参照)。
Claims (23)
- 反芻動物の消化活動に由来するメタン生成を低減するための動物飼養における活性化合物としての、式(I)
(式中、
Yは、次の組成:CaHbOdNeSgの有機分子であり、
ここで、
aは、1〜25に含まれ、
bは、2〜51に含まれ、
dは、0〜8に含まれ、
eは、0〜5に含まれ、
gは、0〜3に含まれる)
により定義される少なくとも1個のニトロオキシ基により任意の位置で置換された少なくとも1種の有機分子またはその塩の使用であって、
式(II)
(式中、
uは、0〜23に含まれ、ここで、u≠0のとき、炭素鎖は、モノ不飽和またはポリ不飽和であってもよいかつ任意の異性体形であってもよい、線状、環状、または分岐線状もしくは分岐環状の脂肪族炭素鎖であり、
Zは、独立して、O、NH、またはN−R3であり、ここで、R1≠Hのとき、Z−R1は、エステル誘導体または第二級アミド誘導体を表し、
R1は、独立して、水素、または1〜10個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、
R2は、独立して、水素、または1〜23個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、かつ
R3は、独立して、水素、または1〜10個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基である)
により定義されるニトロオキシアルカン酸および/またはその誘導体が除外される、使用。 - aが、1〜10に含まれ、
bが、2〜21に含まれ、
dが、0〜6に含まれ、
eが、0〜3に含まれ、
gが、0〜1に含まれる
請求項1に記載の使用。 - 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子が、式(III)
(式中、
nは、0〜12に含まれ、ここで、n≠0のとき、炭素鎖は、非置換であっても、3個までのヒドロキシル基、アルコキシ基、アミノ基、アルキルアミノ基、ジアルキルアミノ基、もしくはニトロオキシ基で置換されていてもよい、線状、環状、もしくは分岐状の脂肪族炭素鎖、またはモノ不飽和もしくはポリ不飽和のかつ任意の異性体形のアルケニル炭素鎖もしくはアルキニル炭素鎖であり、
R4は、独立して、水素、または1〜12個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、
Xは、水素、R5、R5≡N、−OR5、−OCOR5、−NR5R6、−ONO2、−COOR5、−CONR5R6、−NHSO2R5、または−SO2NHR5であり、
R5およびR6は、独立して、水素、または非置換の、もしくは3個までのヒドロキシル基、アルコキシ基、アミノ基、アルキルアミノ基、ジアルキルアミノ基、もしくはニトロオキシ基で置換された、C1〜C12の直線状、分岐状、もしくは環状のアルキル鎖、モノ不飽和もしくはポリ不飽和であってもよいかつ任意の異性体形であってもよいアルケニル炭素鎖もしくはアルキニル炭素鎖である)
で示される化合物である、請求項1に記載の使用。 - nが0〜6に含まれる、請求項3に記載の使用。
- R4が独立して、水素、または1〜6個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基である、請求項3又は4に記載の使用。
- 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子またはその塩が、3−ニトロオキシプロパノール、ラセミ体−4−フェニルブタン−1,2−ジイルジニトレート、2−(ヒドロキシメチル)−2−(ニトロオキシメチル)−1,3−プロパンジオール、N−エチル−3−ニトロオキシ−プロピオン酸スルホニルアミド、5−ニトロオキシ−ペンタンニトリル、5−ニトロオキシ−ペンタン、3−ニトロオキシ−プロピルプロピオネート、1,3−ビス−ニトロオキシプロパン、1,4−ビス−ニトロオキシブタン、1,5−ビス−ニトロオキシペンタン、3−ニトロオキシ−プロピルベンゾエート、3−ニトロオキシ−プロピルヘキサノエート、3−ニトロオキシ−プロピル5−ニトロオキシ−ヘキサノエート、ベンジルニトレート、イソソルビド−ジニトレート、ならびにN−[2−(ニトロオキシ)エチル]−3−ピリジンカルボキサミド、2−ニトロ−5−ニトロオキシメチル−フラン、およびビス−(2−ニトロオキシエチル)エーテルから選択される、請求項1〜5のいずれか一項に記載の使用。
- 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子またはその塩が、3−ニトロオキシプロパノール、5−ニトロオキシ−ペンタンニトリル、5−ニトロオキシ−ペンタン、3−ニトロオキシ−プロピルプロピオネート、1,3−ビス−ニトロオキシプロパン、1,4−ビス−ニトロオキシブタン、1,5−ビス−ニトロオキシペンタン、3−ニトロオキシ−プロピルベンゾエート、3−ニトロオキシ−プロピルヘキサノエート、3−ニトロオキシ−プロピル5−ニトロオキシ−ヘキサノエート、イソソルビド−ジニトレート、ならびにN−[2−(ニトロオキシ)エチル]−3−ピリジンカルボキサミド、およびビス−(2−ニトロオキシエチル)エーテルから選択される、請求項1〜6のいずれか一項に記載の使用。
- 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子が、3−ニトロオキシプロパノールと1,3−ビス−ニトロオキシプロパンとの混合物である、請求項1〜7のいずれか一項に記載の使用。
- 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子またはその塩が、ジアリルジスルフィド、ニンニク油、アリルイソチオシアネート、デオキシコール酸、ケノデオキシコール酸、およびそれらの誘導体からなる群から選択される、少なくとも1種の追加の活性物質と組み合される、請求項1〜8のいずれか一項に記載の使用。
- 前記反芻動物が、ウシ、ヤギ、ヒツジ、キリン、アメリカバイソン、ヨーロッパバイソン、ヤク、スイギュウ、シカ、ラクダ、アルパカ、ラマ、ウィルドビースト、アンテロープ、プロングホーン、およびニルガイからなる群から選択される、請求項1〜9のいずれか一項に記載の使用。
- 代謝チャンバー内で測定したときに乾物摂取量1キログラムあたりのリットル数で計算される反芻動物のメタン生成量が少なくとも10%低減される、請求項1〜10のいずれか一項に記載の使用。
- 前記反芻動物に投与される式(I)に定義される少なくとも1種の活性化合物の量が、飼料1kgあたり1mg〜10gである、請求項1〜11のいずれか一項に記載の使用。
- 式(I)により定義される少なくとも1個のニトロオキシ基により任意の位置で置換された少なくとも1種の有機分子またはその塩を含む、飼料組成物または飼料添加物。
(式中、
Yは、次の組成:C a H b O d N e S g の有機分子であり、
ここで、
aは、1〜10に含まれ、
bは、2〜21に含まれ、
dは、0〜6に含まれ、
eは、0〜3に含まれ、
gは、0〜1に含まれる
ただし、式(II)により定義されるニトロオキシアルカン酸および/またはその誘導体が除外される
(式中、
uは、0〜23に含まれ、ここで、u≠0のとき、炭素鎖は、モノ不飽和またはポリ不飽和であってもよいかつ任意の異性体形であってもよい、線状、環状、または分岐線状もしくは分岐環状の脂肪族炭素鎖であり、
Zは、独立して、O、NH、またはN−R3であり、ここで、R1≠Hのとき、Z−R1は、エステル誘導体または第二級アミド誘導体を表し、
R1は、独立して、水素、または1〜10個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、
R2は、独立して、水素、または1〜23個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、かつ
R3は、独立して、水素、または1〜10個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基である)) - 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子が、式(III)
(式中、
nは、0〜12に含まれ、ここで、n≠0のとき、炭素鎖は、非置換であっても、3個までのヒドロキシル基、アルコキシ基、アミノ基、アルキルアミノ基、ジアルキルアミノ基、もしくはニトロオキシ基で置換されていてもよい、線状、環状、もしくは分岐状の脂肪族炭素鎖、またはモノ不飽和もしくはポリ不飽和のかつ任意の異性体形のアルケニル炭素鎖もしくはアルキニル炭素鎖であり、
R4は、独立して、水素、または1〜12個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、
Xは、水素、R5、R5≡N、−OR5、−OCOR5、−NR5R6、−ONO2、−COOR5、−CONR5R6、−NHSO2R5、または−SO2NHR5であり、
R5およびR6は、独立して、水素、または非置換の、もしくは3個までのヒドロキシル基、アルコキシ基、アミノ基、アルキルアミノ基、ジアルキルアミノ基、もしくはニトロオキシ基で置換された、C1〜C12の直線状、分岐状、もしくは環状のアルキル鎖、モノ不飽和もしくはポリ不飽和であってもよいかつ任意の異性体形であってもよいアルケニル炭素鎖もしくはアルキニル炭素鎖である)
で示される化合物である、請求項13に記載の飼料組成物または飼料添加物。 - 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子またはその塩が、3−ニトロオキシプロパノール、ラセミ体−4−フェニルブタン−1,2−ジイルジニトレート、2−(ヒドロキシメチル)−2−(ニトロオキシメチル)−1,3−プロパンジオール、N−エチル−3−ニトロオキシ−プロピオン酸スルホニルアミド、5−ニトロオキシ−ペンタンニトリル、5−ニトロオキシ−ペンタン、3−ニトロオキシ−プロピルプロピオネート、1,3−ビス−ニトロオキシプロパン、1,4−ビス−ニトロオキシブタン、1,5−ビス−ニトロオキシペンタン、3−ニトロオキシ−プロピルベンゾエート、3−ニトロオキシ−プロピルヘキサノエート、3−ニトロオキシ−プロピル5−ニトロオキシ−ヘキサノエート、ベンジルニトレート、イソソルビド−ジニトレート、ならびにN−[2−(ニトロオキシ)エチル]−3−ピリジンカルボキサミド、2−ニトロ−5−ニトロオキシメチル−フラン、およびビス−(2−ニトロオキシエチル)エーテルから選択される、請求項13または14に記載の飼料組成物または飼料添加物。
- 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子またはその塩が、3−ニトロオキシプロパノール、5−ニトロオキシ−ペンタンニトリル、5−ニトロオキシ−ペンタン、3−ニトロオキシ−プロピルプロピオネート、1,3−ビス−ニトロオキシプロパン、1,4−ビス−ニトロオキシブタン、1,5−ビス−ニトロオキシペンタン、3−ニトロオキシ−プロピルベンゾエート、3−ニトロオキシ−プロピルヘキサノエート、3−ニトロオキシ−プロピル5−ニトロオキシ−ヘキサノエート、イソソルビド−ジニトレート、ならびにN−[2−(ニトロオキシ)エチル]−3−ピリジンカルボキサミド、およびビス−(2−ニトロオキシエチル)エーテルから選択される、請求項13〜15のいずれか一項に記載の飼料組成物または飼料添加物。
- 式(I)で示される少なくとも1種の有機分子が、3−ニトロオキシプロパノールと1,3−ビス−ニトロオキシプロパンとの混合物である、請求項13〜16のいずれか一項に記載の飼料組成物または飼料添加物。
- ミネラルプレミックス、ビタミンプレミックス、もしくはビタミンとミネラルとを含むプレミックス、またはボーラスである、請求項13〜17のいずれか一項に記載の組成物。
- 式(I)
(式中、
Yは、次の組成:CaHbOdNeSgの有機分子であり、
ここで、
aは、1〜25に含まれ、
bは、2〜51に含まれ、
dは、0〜8に含まれ、
eは、0〜5に含まれ、
gは、0〜3に含まれる)
により定義される少なくとも1個のニトロオキシ基により任意の位置で置換された少なくとも1種の有機分子またはその塩を十分量で動物に経口投与することを含む、反芻動物の消化活動に由来するメタン生成を低減するための方法であって、
式(II)
(式中、
uは、0〜23に含まれ、ここで、u≠0のとき、炭素鎖は、モノ不飽和またはポリ不飽和であってもよいかつ任意の異性体形であってもよい、線状、環状、または分岐線状もしくは分岐環状の脂肪族炭素鎖であり、
Zは、独立して、O、NH、またはN−R3であり、ここで、R1≠Hのとき、Z−R1は、エステル誘導体または第二級アミド誘導体を表し、
R1は、独立して、水素、または1〜10個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、
R2は、独立して、水素、または1〜23個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基であり、かつ
R3は、独立して、水素、または1〜10個の炭素原子を含有する、飽和の直鎖、環状鎖、もしくは分岐鎖のアルキル基もしくはアルケニル基である)
により定義されるニトロオキシアルカン酸および/またはその誘導体が除外される、方法。 - 前記少なくとも1種の有機分子が、ジアリルジスルフィド、ニンニク油、アリルイソチオシアネート、デオキシコール酸、ケノデオキシコール酸、およびそれらの誘導体からなる群から選択される、少なくとも1種の追加の活性物質との組合せで、前記動物に投与される、請求項19に記載の方法。
- 前記反芻動物が、ウシ、ヤギ、ヒツジ、キリン、アメリカバイソン、ヨーロッパバイソン、ヤク、スイギュウ、シカ、ラクダ、アルパカ、ラマ、ウィルドビースト、アンテロープ、プロングホーン、およびニルガイからなる群から選択される、請求項19または20に記載の方法。
- 前記反芻動物に投与される式(I)に定義される少なくとも1種の活性化合物の量が、飼料1kgあたり1mg〜10gである、請求項19〜21のいずれか一項に記載の方法。
- 代謝チャンバー内で測定したときに乾物摂取量1キログラムあたりのリットル数で計算される反芻動物のメタン生成量が少なくとも10%低減される、請求項19〜22のいずれか一項に記載の方法。
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