JP5843612B2 - 肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ多糖の分子量を制御するための方法 - Google Patents
肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ多糖の分子量を制御するための方法 Download PDFInfo
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Description
本発明は、回収時間を制御することによって、単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖の分子量を増大させる方法に関する。
生物の肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）（肺炎球菌としても知られている）を原因とする侵襲性疾患の予防を対象とする多価結合型肺炎球菌ワクチンの調製では、選択された肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型を、ワクチンを生成するのに必要とされる多糖を供給するために増殖させる。細胞は、発酵槽で増殖させ、デオキシコール酸ナトリウムまたは代わりの溶解剤の添加によって発酵の終わりに溶解が誘導される。次いで、溶解物ブロスは、下流の精製および細菌細胞を取り囲む莢膜多糖の回収のために集められる。担体タンパク質との抱合後、多糖は最終ワクチン産物に含められ、選択された肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型に対する免疫を、ワクチンの標的集団に与える。
多糖のサイズは、各調製バッチ中で分析した品質特性であり、適切に制御しなければならない。肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ多糖に関して、多糖のサイズは、発酵ｐＨ、発酵温度、および保持温度などのパラメーターによって影響を受ける可能性がある。さらに、１９Ａ多糖の熱分解は、発酵／回収および精製プロセスの両方にわたって起こり、これは、１９Ａ多糖の大規模製造のために生成プロセスをスケールアップさせるとき、種々のパラメーターをうまく処理および制御することに関して別の課題をもたらす。
したがって、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細胞溶解物から高分子量の血清型１９Ａ莢膜多糖を回収するための改善された方法が必要とされている。
細胞性肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）溶解物から高分子量の血清型１９Ａ莢膜多糖を回収するための改善された方法を提供する。一方法では、血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細菌細胞の発酵培養物を、６時間未満発酵させた後に細菌細胞を溶解させ、莢膜多糖を集める。したがって、本発明の一実施形態において、この方法には、血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細菌細胞の発酵培養物を調製するステップと、２）発酵培養物を６時間未満発酵させるステップと、３）発酵培養物中で細菌細胞を溶解するステップと、４）発酵培養物から肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を単離するステップとが含まれ、それによって、高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液が生成される。特定の実施形態では、発酵培養物は、５時間未満発酵させる。他の実施形態では、発酵培養物は、４時間未満発酵させる。別の実施形態では、発酵培養物は、３時間〜６時間発酵させる。別の実施形態では、単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）莢膜多糖の分子量は、少なくとも４８０ｋＤａである。
本発明の別の実施形態では、方法は、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ多糖を生成する細菌細胞の発酵培養物にＣＯ２を供給することも伴う。したがって、一実施形態では、本発明の方法には、１）血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細菌細胞の発酵培養物を調製するステップと、２）発酵培養物にＣＯ２を供給するステップと、３）発酵培養物を６時間未満発酵させるステップと、４）発酵培養物中で細菌細胞を溶解するステップと、５）発酵培養物から肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を単離するステップとが含まれ、それによって高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液が生成される。特定の実施形態では、発酵培養物にＣＯ２を供給するステップは、発酵培養物に重炭酸イオン（ＨＣＯ３ −）を加えるステップ、例えば、発酵培養物にＮａＨＣＯ３（重炭酸ナトリウム）を加えるステップを含む。他の実施形態では、発酵培養物にＣＯ２を供給するステップは、発酵培養物に炭酸イオン（ＣＯ３ ２−）を加えるステップ、例えば、発酵培養物にＮａ２ＣＯ３（炭酸ナトリウム）を加えるステップを含む。別の実施形態では、発酵培養物にＣＯ２を供給するステップは、ＮａＨＣＯ３の第１の添加およびＮａ２ＣＯ３の第２の添加を含む。さらに別の実施形態では、発酵培養物にＣＯ２を供給するステップは、発酵培養物の上部にＣＯ２を通気するステップを含む。別の実施形態では、単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）莢膜多糖の分子量が少なくとも４８０ｋＤａである。
別の実施形態では、本発明は、高分子量の肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液に関し、この場合、溶液は上記の方法のいずれかによって生成される。
肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）は、通常２個ずつ対になっている（双球菌）が、短連鎖または単一細胞としても見られる、グラム陽性、ランセット型の球菌である。これらは血液寒天培地プレート上で容易に増殖して光沢のあるコロニーを作り、β溶血を示す嫌気的環境で増殖させない限りα溶血を示す。ほとんどの肺炎球菌血清型の細胞は、各細胞を取り囲む多糖コーティングである莢膜を有する。この莢膜は、抗体が細菌細胞に付着するのを防ぐことによって食作用を妨害するので、ヒトにおける病原性の決定因子である。現在、９０種以上の既知の肺炎球菌莢膜血清型が確認されており、その２３種の最も一般的な血清型が世界中の侵襲性疾患の約９０％を占めている。
ワクチンとして、肺炎球菌多糖被膜は、発達したまたは損なわれていない免疫系を持った個体において、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）に対して妥当な程度の免疫を与えることができるが、多糖と抱合したタンパク質は、幼児および最も肺炎球菌感染の危険性がある高齢者にも免疫反応をもたらす。肺炎球菌細胞は、発酵槽で増殖させ、発酵の終わりに溶解を誘導する。次いで、下流の精製および莢膜多糖の回収のために溶解物ブロスを集める。
多糖のサイズは、各調製バッチ中で分析した品質特性であり、適切に制御しなければならない。血清型１９Ａ莢膜多糖の分子量は、発酵プロセスのパラメーターによって影響を受ける。本発明の方法は、細胞性肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）溶解物からの高分子量の血清型１９Ａ莢膜多糖の回収を可能にする。
本方法の開発において、多糖の最終収量および分子量を変更しようとして、ＨｙＳｏｙの濃度および塩基滴定液の選択を変更した。４つの発酵スキームを試験した。第１では、２８ｇ／Ｌ ＨｙＳｏｙでベースラインＮａＯＨプロセスを使用した。第２では、塩基滴定液として２０％炭酸ナトリウムおよび２０ｇ／Ｌ ＨｙＳｏｙを使用した。第３では、重炭酸ナトリウムの回分処理によって炭酸塩を導入することおよび混合ＮａＯＨ／炭酸塩の塩基滴定液を用いることによって最初の２つの手法の利点を組合せた。第４の手法では、塩基滴定液として炭酸塩を使用し、増殖を強めるために１０ｍＭ重炭酸塩を添加した。
発酵中に塩基滴定液としてＮａＯＨを用いることは、タンパク質を取り除き、ろ過を向上させるために、発泡させることなくデオキシコレート溶解物をｐＨ５．０に下げることができるという利点があったが、より低い分子量の多糖（＜４５０ｋＤａ）をもたらした。Ｎａ２ＣＯ３では、より高い分子量が得られたが、デオキシコレート溶解物のｐＨを下げた場合に発泡の問題点があった。高ｐＨ保持ステップの６．６では、Ｎａ２ＣＯ３を用いた発酵によりゲル様物質が形成し、その後のろ過問題が生じた。ｐＨ滴定液としてＮａＯＨとＮａ２ＣＯ３のブレンドを用いることによってＮａ２ＣＯ３の量を最小限に抑えることにより、大量のＣＯ２の突然の放出が原因の発泡およびろ過問題を解消しながら、Ｎａ２ＣＯ３の分子量サイズの利益が得られた。増殖を強めるために１０ｍＭ ＮａＨＣＯ３を添加した塩基滴定液としての２０％Ｎａ２ＣＯ３（ｗ／ｖ）の使用（第４の手法）は、安定した、高分子量の多糖を高収量でもたらした。
ＨｙＳｏｙ濃度および塩基滴定液に加えて、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖分子量に対する回収時間の影響も調べた。発酵培養物を６時間未満発酵させた後に細菌細胞を溶解させると、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細胞溶解物から高分子量の血清型１９Ａ莢膜多糖が生成することが判明した。
本発明はこのように、細胞性肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）溶解物から高分子量の血清型１９Ａ莢膜多糖を回収するための改善された方法を提供する。１つの方法では、高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液を生成するための方法が提供され、この方法には、１）血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細菌細胞の発酵培養物を調製するステップと、２）発酵培養物を６時間未満発酵させるステップと、３）発酵培養物中で細菌細胞を溶解するステップと、４）発酵培養物から肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を単離するステップとが含まれ、これによって、高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液が生成する。特定の実施形態では、発酵培養物は、約７時間未満、約６．５時間未満、約６時間未満、約５．５時間未満、約５時間未満、約４．５時間未満、約４時間未満、または約３．５時間未満発酵させる。別の実施形態では、発酵培養物は、３時間〜７時間、３時間〜６．５時間、３時間〜６時間、３時間〜５．５時間、３時間〜５時間、３時間〜４．５時間、３時間〜４時間、または３時間〜３．５時間発酵させる。別の実施形態では、本発明は、高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液に関し、この場合、溶液は上記の方法によって生成する。
別の実施形態では、本発明の方法は、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ多糖を生成する細菌細胞の発酵培養物にＣＯ２を供給することも伴い、これには１）血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細菌細胞の発酵培養物を調製するステップと、２）発酵培養物にＣＯ２を供給するステップと、３）発酵培養物を６時間未満発酵させるステップと、４）発酵培養物中で細菌細胞を溶解するステップと、５）発酵培養物から肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を単離するステップとが含まれ、それによって高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液が生成される。別の実施形態では、本発明は、高分子量の肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液に関し、この溶液は、上記の方法によって生成される。
本発明の方法は、高分子量の肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する。本明細書では、「高分子量」は、少なくとも約４８０ｋＤａ、約４９０ｋＤａ、約５００ｋＤａ、約５１０ｋＤａ、約５２０ｋＤａ、約５２５ｋＤａ、約５５０ｋＤａ、約５７５ｋＤａ、約６００ｋＤａ、約６２５ｋＤａ、約６５０ｋＤａ、約６７５ｋＤａ、約７００ｋＤａ、約７２５ｋＤａ、約７５０ｋＤａ、約７７５ｋＤａ、約８００ｋＤａ、約８２５ｋＤａ、約８５０ｋＤａ、約８７５ｋＤａ、約９００ｋＤａ、約９２５ｋＤａ、約９５０ｋＤａ、約９７５ｋＤａ、または約１０００ｋＤａの分子量を意味する。
特定の方法では、発酵培養物にＣＯ２を供給するステップには、発酵培養物に重炭酸イオン（ＨＣＯ３ −）を加えるステップ、例えば、発酵培養物にＮａＨＣＯ３を加えるステップが含まれる。５ｍＭ、１０ｍＭ、１５ｍＭ、２０ｍＭ、２５ｍＭ、３０ｍＭ、３５ｍＭ、４０ｍＭ、４５ｍＭ、または５０ｍＭなど、５〜５０ｍＭのＮａＨＣＯ３の添加を利用することができる。他の方法では、発酵培養物にＣＯ２を供給するステップには、発酵培養物に炭酸イオン（ＣＯ３ ２−）を加えるステップ、例えば、発酵培養物にＮａ２ＣＯ３を加えるステップが含まれる。０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．４Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍ、０．９Ｍ、１．０Ｍ、１．５Ｍ、１．８Ｍ、または２．０Ｍなど、０．１Ｍ〜２．０ＭのＮａ２ＣＯ３の添加を利用することができる。５％（ｗ／ｖ）Ｎａ２ＣＯ３、１０％（ｗ／ｖ）Ｎａ２ＣＯ３または２０％（ｗ／ｖ）Ｎａ２ＣＯ３などの重量／体積（ｗ／ｖ）当量を利用することもできる。さらに他の方法では、発酵培養物にＣＯ２を供給するステップには、発酵培養物へのＮａＨＣＯ３の第１の添加およびＮａ２ＣＯ３の第２の添加が含まれる。さらなる方法では、発酵培養物にＣＯ２を供給するステップには、発酵培養物の上部にＣＯ２を通気するステップが含まれる。５％〜１００％、例えば、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、または１００％のＣＯ２通気を使用してもよい。
本発明の方法の範囲内では、細菌細胞は、任意の溶菌剤を使って溶解させることができる。「溶菌剤」は、例えば、洗浄剤を含む、細胞壁破壊および細胞溶解を引き起こす自己溶解素の放出を促進する任意の薬剤である。本明細書では、「洗浄剤」という用語は、細菌細胞の溶解を誘導することができる任意の陰イオンまたは陽イオン洗浄剤を意味する。本発明の方法の範囲内で使用するこのような洗浄剤の代表例には、デオキシコール酸ナトリウム（ＤＯＣ）、Ｎ−ラウリルサルコシン（ＮＬＳ）、ケノデオキシコール酸ナトリウム、およびサポニンがある。
本発明の一実施形態では、細菌細胞を溶解するのに使用する溶菌剤は、ＤＯＣである。ＤＯＣは、胆汁酸デオキシコール酸のナトリウム塩であり、一般に雌ウシまたは雄ウシなどの生物学的供給源に由来する。ＤＯＣは、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）における細胞壁成長および分裂に関与する自己溶解素であるＬｙｔＡタンパク質を活性化する。ＬｙｔＡタンパク質は、そのＣ末端部分にコリン結合領域を有しており、ｌｙｔＡ遺伝子の変異は、ＤＯＣによる溶解に耐性があるＬｙｔＡ変異体を生じることが知られている。
肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）多糖精製中のＤＯＣの使用が健康上のリスクを招くという証拠はないが、このような生物学的に由来する試薬の使用は、潜在的な規制問題を引き起こす可能性がある。したがって、本発明の一実施形態では、細菌細胞を溶解するために使用する溶菌剤は、非動物由来溶菌剤である。本発明の方法の範囲内で使用する非動物由来溶菌剤には、ＤＯＣの作用機構（すなわち、ＬｙｔＡ機能に影響を及ぼし、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細胞の溶解をもたらす）に類似する作用機構を有する非動物供給源由来の薬剤が含まれる。このような非動物由来溶菌剤には、ＤＯＣの類似体、界面活性剤、洗浄剤、およびコリンの構造類似体があるが、それだけには限定されず、本明細書の以下の実験の項に記載されている手順を用いて決定することができる。一実施形態では、非動物由来溶菌剤は、デカンスルホン酸、ｔｅｒｔ−オクチルフェノキシポリ（オキシエチレン）エタノール（例えばＩｇｅｐａｌ（登録商標）ＣＡ−６３０、ＣＡＳ＃：９００２−９３−１、Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ、米国ミズーリ州Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓより入手可能）、オクチルフェノールエチレンオキシド縮合物（例えばＴｒｉｔｏｎ（登録商標）Ｘ−１００、Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ、米国ミズーリ州Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓより入手可能）、Ｎ−ラウリルサルコシンナトリウム（ＮＬＳ）、ラウリルイミノジプロピオネート、ドデシル硫酸ナトリウム、ケノデオキシコレート、ヒオデオキシコレート、グリコデオキシコレート、タウロデオキシコレート、タウロケノデオキシコレート、およびコール酸塩からなる群から選択される。別の実施形態では、非動物由来溶菌剤は、ＮＬＳである。
本発明の方法の範囲内で、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）莢膜多糖を、当業者に既知の標準的な技術を用いて単離する。例えば、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する細菌細胞の発酵後に、細菌細胞を溶解して細胞溶解物を生成する。次いで莢膜多糖を、遠心分離、沈殿、限外ろ過、およびカラムクロマトグラフィーの使用（例えば、米国特許出願公開第２００６０２２８３８０号、第２００６０２２８３８１号、第２００７０１８４０７１号、第２００７０１８４０７２号、第２００７０２３１３４０号、および第２００８０１０２４９８号を参照のこと）を含む当技術分野で既知の精製技術を用いて、細胞溶解物から単離することができる。
上記のプロセス変更は、細胞性肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）溶解物からの高分子量の血清型１９Ａ莢膜多糖の回収を可能にする。これは、肺炎球菌多糖の生成を大きく増進させることができる発酵／回収プロセスの強力な改善である。
以下の実施例は、例示のために示しており、限定するためではない。
血清型１９Ａを生成する肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細菌細胞を、ワクチンに含まれる莢膜血清型による肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）を原因とする侵襲性疾患に対する能動免疫化のためのワクチンを生成するのに必要とされる多糖を供給するために増殖させた。細胞を発酵槽で増殖させ、発酵の終わりに溶解を誘導した。次いで溶解物ブロスを、下流の精製および莢膜多糖の回収のために集めた。多糖サイズは各調製バッチ中で分析される品質特性なので、多糖サイズは適切に制御しなければならない。血清型１９Ａ莢膜多糖の分子量は、発酵プロセスのパラメーターによって影響を受けていることがわかった。以下の実施例は、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａの発酵中の回収時間およびＣＯ２の供給に関する試験について記載している。
（実施例１）
多糖分子量に対する二酸化炭素供給効果
発酵
３ＬのＢｒａｕｎ Ｂｉｏｓｔａｔ Ｂ発酵槽（Ｂ． Ｂｒａｕｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ、米国ペンシルベニア州Ａｌｌｅｎｔｏｗｎ）で実験室での実験を行った。発酵槽にＨＹＳ培地（２０ｇ／Ｌ ＨｙＳｏｙ、２．５ｇ／Ｌ ＮａＣｌ、０．５ｇ／Ｌ ＫＨ２ＰＯ４、０．０１３ｇ／Ｌ ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ、０．１５ｇ／Ｌ Ｌ−システインＨＣｌ）１．８Ｌを充填した。次いで発酵槽を、１２１℃で６０分間加圧滅菌した。冷却した後、各ユニットに５０％グルコース＋１％硫酸マグネシウム（ｗ／ｖ）（ＤＭＳ）溶液４０または６０ｍＬ／Ｌを加えた。必要に応じて、接種の前に重炭酸ナトリウムを加えた。
多糖分子量に対する二酸化炭素供給効果
発酵
３ＬのＢｒａｕｎ Ｂｉｏｓｔａｔ Ｂ発酵槽（Ｂ． Ｂｒａｕｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ、米国ペンシルベニア州Ａｌｌｅｎｔｏｗｎ）で実験室での実験を行った。発酵槽にＨＹＳ培地（２０ｇ／Ｌ ＨｙＳｏｙ、２．５ｇ／Ｌ ＮａＣｌ、０．５ｇ／Ｌ ＫＨ２ＰＯ４、０．０１３ｇ／Ｌ ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ、０．１５ｇ／Ｌ Ｌ−システインＨＣｌ）１．８Ｌを充填した。次いで発酵槽を、１２１℃で６０分間加圧滅菌した。冷却した後、各ユニットに５０％グルコース＋１％硫酸マグネシウム（ｗ／ｖ）（ＤＭＳ）溶液４０または６０ｍＬ／Ｌを加えた。必要に応じて、接種の前に重炭酸ナトリウムを加えた。
ＨＹＳ培地１Ｌを含有する２Ｌ種ボトルに、１９Ａ型の凍結保存種菌を接種し、撹拌せずに３６℃で約６〜８時間インキュベートした。発酵槽の接種は、ＯＤ６００が０．３〜０．９、ｐＨが４．７５〜５．６０のボトルから小分けにした１００ｍＬ（約５．２％ ｖ／ｖ）の体積量で行った。発酵温度およびｐＨは、所望の設定値で制御した。３６℃、１Ｌ／分の空気通気、７に制御したｐＨおよび７５ｒｐｍの撹拌の標準条件を使用した。２枚のインペラーを、撹拌シャフト上の低位置および中央位置に配置した。適切な塩基滴定液（３Ｎ ＮａＯＨ、種々の濃度のＮａＨＣＯ３とブレンドした３Ｎ ＮａＯＨ、種々の濃度のＮａ２ＣＯ３およびＮａＨＣＯ３とブレンドした３Ｎ ＮａＯＨ、ならびに２０％Ｎａ２ＣＯ３）を含有するボトルを、自動ｐＨ制御のために接続した。発酵槽を、外部ｐＨ、ＯＤ６００、グルコース、多糖、およびタンパク質について種々の時点でサンプリングした。グルコース濃度がほとんど枯渇したら、あるいは時間が経つにつれてＯＤの増加が認められなくなったら、実験を終了した。
光学密度（ＯＤ６００）測定
Ｓｈｉｍａｄｚｕ（米国メリーランド州Ｃｏｌｕｍｂｉａ）ＵＶ−１６０１（２ｎｍ帯域幅）またはＳｐｅｃｔｒｏｎｉｃｓ（米国ニューヨーク州Ｗｅｓｔｂｕｒｙ）Ｇｅｎｅｓｙｓ ５分光光度計（５ｎｍ帯域幅）を用いて６００ｎｍで試料の吸光度を読み取ることによって、発酵ブロスの細胞密度を決定した。ユニットは、試料の要求される希釈度に合うように脱イオン（ＤＩ）水で希釈したＨＹＳ培地で対照をとった。吸光度の数値を、十分に分光光度計の直線領域の範囲内である０．４未満に維持するために試料を希釈した。
Ｓｈｉｍａｄｚｕ（米国メリーランド州Ｃｏｌｕｍｂｉａ）ＵＶ−１６０１（２ｎｍ帯域幅）またはＳｐｅｃｔｒｏｎｉｃｓ（米国ニューヨーク州Ｗｅｓｔｂｕｒｙ）Ｇｅｎｅｓｙｓ ５分光光度計（５ｎｍ帯域幅）を用いて６００ｎｍで試料の吸光度を読み取ることによって、発酵ブロスの細胞密度を決定した。ユニットは、試料の要求される希釈度に合うように脱イオン（ＤＩ）水で希釈したＨＹＳ培地で対照をとった。吸光度の数値を、十分に分光光度計の直線領域の範囲内である０．４未満に維持するために試料を希釈した。
グルコース濃度
細胞を遠心分離機で分離し、その上清をそのまま、もしくはＤＩ水で３倍希釈することによって、グルコースレベルを決定した。試料をＮｏｖａ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ（米国マサチューセッツ州Ｗａｌｔｈａｍ）ＢｉｏＰｒｏｆｉｌｅ ４００で分析した。
細胞を遠心分離機で分離し、その上清をそのまま、もしくはＤＩ水で３倍希釈することによって、グルコースレベルを決定した。試料をＮｏｖａ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ（米国マサチューセッツ州Ｗａｌｔｈａｍ）ＢｉｏＰｒｏｆｉｌｅ ４００で分析した。
多糖分析
試料を最終発酵読み取り値で採取し、０．１３％（ｗ／ｖ）の濃度まで１２％デオキシコール酸ナトリウム（ＤＯＣ）で処理し、穏やかに撹拌した。それらを５℃で８〜２４時間保持し、次いで５０％酢酸でｐＨを５．０に調節して、大部分のＤＯＣおよびタンパク質を沈殿させた。５℃でのさらに１２〜２４時間の保持間隔の後、試料を遠心分離した（１４０００ｒｐｍ、Ｓｏｒｖａｌｌ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、米国マサチューセッツ州Ｗａｌｔｈａｍ）ＳＳ３４ローター、１５℃で１０分）。上清のｐＨを６．０に調節した。次いで、上清を０．４５μｍ Ｐａｌｌ（米国ニューヨーク州Ｅａｓｔ Ｈｉｌｌｓ）ＨＴ Ｔｕｆｆｒｙｎ膜シリンジフィルター（低タンパク質結合）に通してろ過した。ろ過した生成物を、当技術分野でよく知られている標準的な方法を用いて高速サイズ排除クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ−ＳＥＣ）によって分析した（例えば、Ａｑｕｉｌａｒ、Ｍ．「ＨＰＬＣ ｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ： Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ」 Ｔｏｔｏｗａ、ＮＪ： Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ（２００４）を参照のこと）。
試料を最終発酵読み取り値で採取し、０．１３％（ｗ／ｖ）の濃度まで１２％デオキシコール酸ナトリウム（ＤＯＣ）で処理し、穏やかに撹拌した。それらを５℃で８〜２４時間保持し、次いで５０％酢酸でｐＨを５．０に調節して、大部分のＤＯＣおよびタンパク質を沈殿させた。５℃でのさらに１２〜２４時間の保持間隔の後、試料を遠心分離した（１４０００ｒｐｍ、Ｓｏｒｖａｌｌ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、米国マサチューセッツ州Ｗａｌｔｈａｍ）ＳＳ３４ローター、１５℃で１０分）。上清のｐＨを６．０に調節した。次いで、上清を０．４５μｍ Ｐａｌｌ（米国ニューヨーク州Ｅａｓｔ Ｈｉｌｌｓ）ＨＴ Ｔｕｆｆｒｙｎ膜シリンジフィルター（低タンパク質結合）に通してろ過した。ろ過した生成物を、当技術分野でよく知られている標準的な方法を用いて高速サイズ排除クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ−ＳＥＣ）によって分析した（例えば、Ａｑｕｉｌａｒ、Ｍ．「ＨＰＬＣ ｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ： Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ」 Ｔｏｔｏｗａ、ＮＪ： Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ（２００４）を参照のこと）。
タンパク質分析
タンパク質レベルを、当技術分野でよく知られているドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）法によって分析した（例えば、Ｗａｌｋｅｒ、Ｊ．Ｍ．「Ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ Ｈａｎｄｂｏｏｋ」 Ｔｏｔｏｗａ、ＮＪ： Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ（２００２）を参照のこと）。上記で調製したろ過した細胞溶解物（上清）をアリコートにして６５μＬ／チューブでマイクロチューブ中に入れた。還元剤（１０μＬジチオスレイトール（ＤＴＴ））およびＮｕＰＡＧＥ（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ）４倍ドデシル硫酸リチウム（ＬＤＳ）試料バッファー（２５μＬ）の添加を各試料に行った。試料をボルテックスにかけて１０分間加熱してからＮｕＰＡＧＥ（登録商標）４〜１２％Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ１２ウェルゲルに１０μＬ／レーンを導入した。ゲルをＮｕＰＡＧＥ（登録商標）ＭＥＳ−ＳＤＳバッファー中１５０Ｖで約６０分間に限定して泳動し、続いてＺｏｉｏｎ染色プロトコル（Ｚｏｉｏｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ、米国マサチューセッツ州Ｗｏｒｃｅｓｔｅｒ）を用いて染色した。ＬａｂＷｏｒｋｓ（商標）（ＵＶＰ Ｉｎｃ．）Ｖ．３ソフトウェアを備えたＵＶＰ Ｉｍａｇｅｒ（ＵＶＰ Ｉｎｃ．、米国カリフォルニア州Ｕｐｌａｎｄ）を用いて試料分析を行って、目的とする特定のタンパク質バンドのおおよその濃度を得た。ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）フラクションＶを使用してタンパク質の標準曲線を作って、試料（溶解した細胞ブロス中）のおおよそのタンパク質値を計算した。
タンパク質レベルを、当技術分野でよく知られているドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）法によって分析した（例えば、Ｗａｌｋｅｒ、Ｊ．Ｍ．「Ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ Ｈａｎｄｂｏｏｋ」 Ｔｏｔｏｗａ、ＮＪ： Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ（２００２）を参照のこと）。上記で調製したろ過した細胞溶解物（上清）をアリコートにして６５μＬ／チューブでマイクロチューブ中に入れた。還元剤（１０μＬジチオスレイトール（ＤＴＴ））およびＮｕＰＡＧＥ（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ）４倍ドデシル硫酸リチウム（ＬＤＳ）試料バッファー（２５μＬ）の添加を各試料に行った。試料をボルテックスにかけて１０分間加熱してからＮｕＰＡＧＥ（登録商標）４〜１２％Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ１２ウェルゲルに１０μＬ／レーンを導入した。ゲルをＮｕＰＡＧＥ（登録商標）ＭＥＳ−ＳＤＳバッファー中１５０Ｖで約６０分間に限定して泳動し、続いてＺｏｉｏｎ染色プロトコル（Ｚｏｉｏｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ、米国マサチューセッツ州Ｗｏｒｃｅｓｔｅｒ）を用いて染色した。ＬａｂＷｏｒｋｓ（商標）（ＵＶＰ Ｉｎｃ．）Ｖ．３ソフトウェアを備えたＵＶＰ Ｉｍａｇｅｒ（ＵＶＰ Ｉｎｃ．、米国カリフォルニア州Ｕｐｌａｎｄ）を用いて試料分析を行って、目的とする特定のタンパク質バンドのおおよその濃度を得た。ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）フラクションＶを使用してタンパク質の標準曲線を作って、試料（溶解した細胞ブロス中）のおおよそのタンパク質値を計算した。
分子量分析
発酵試料１〜２リットルを、２００ｒｐｍで撹拌しながら１２％ナトリウムＤＯＣで処理して０．１３％（ｗ／ｖ）の濃度にした。試料を５℃または２０℃のいずれかで８〜２４時間保持した。次いで、５０％酢酸で試料のｐＨを５．０または６．６に調節して、大部分のＤＯＣおよびタンパク質を沈殿させた。５℃での１２〜２４時間の別の保持間隔の後、試料を遠心分離した（１１０００ｒｐｍ、Ｓｏｒｖａｌｌ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、米国マサチューセッツ州Ｗａｌｔｈａｍ）ＳＬＡ−３０００ローター、１０℃で１５分）。次いで、３Ｎ ＮａＯＨで上清試料のｐＨを６．０に調節し、０．４５μｍ Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ（米国マサチューセッツ州Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ）ＭＰ６０フィルターを用いてろ過した。次いで、試料を、１００Ｋ分子量カットオフ（ＭＷＣＯ）ダイアフィルトレーション（５倍濃度、続いてＤＩ水を用いた７．５倍ダイアフィルトレーション）、０．１％ＨＢ沈殿、および炭素ろ過で構成される改変精製プロセスにかけた。次いで、精製した物質を多角度光散乱（ＭＡＬＬＳ）分析にかけた。
発酵試料１〜２リットルを、２００ｒｐｍで撹拌しながら１２％ナトリウムＤＯＣで処理して０．１３％（ｗ／ｖ）の濃度にした。試料を５℃または２０℃のいずれかで８〜２４時間保持した。次いで、５０％酢酸で試料のｐＨを５．０または６．６に調節して、大部分のＤＯＣおよびタンパク質を沈殿させた。５℃での１２〜２４時間の別の保持間隔の後、試料を遠心分離した（１１０００ｒｐｍ、Ｓｏｒｖａｌｌ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、米国マサチューセッツ州Ｗａｌｔｈａｍ）ＳＬＡ−３０００ローター、１０℃で１５分）。次いで、３Ｎ ＮａＯＨで上清試料のｐＨを６．０に調節し、０．４５μｍ Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ（米国マサチューセッツ州Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ）ＭＰ６０フィルターを用いてろ過した。次いで、試料を、１００Ｋ分子量カットオフ（ＭＷＣＯ）ダイアフィルトレーション（５倍濃度、続いてＤＩ水を用いた７．５倍ダイアフィルトレーション）、０．１％ＨＢ沈殿、および炭素ろ過で構成される改変精製プロセスにかけた。次いで、精製した物質を多角度光散乱（ＭＡＬＬＳ）分析にかけた。
発酵プロセス試験
これまでの試験に基づいて、塩基滴定液としてＮａ２ＣＯ３からＮａＯＨに切り換えることによって発酵プロセスを最適化した。ＮａＯＨの使用により、回収ｐＨを５．０に下げることが可能になり、顕著なタンパク質沈殿が得られた。Ｎａ２ＣＯ３は、ＣＯ２を低ｐＨ（＜６．６）で放出し、発泡体の形成をもたらす。１９Ａ型多糖およびタンパク質レベルに対する塩基滴定液の影響を調べた。３Ｌ発酵槽２台を設置し、１台の発酵槽は、塩基供給として２０％Ｎａ２ＣＯ３溶液（ｗ／ｖ）を用いて元のプロセスの対照とした。他の発酵槽は、塩基供給として３Ｎ ＮａＯＨを使用した。
これまでの試験に基づいて、塩基滴定液としてＮａ２ＣＯ３からＮａＯＨに切り換えることによって発酵プロセスを最適化した。ＮａＯＨの使用により、回収ｐＨを５．０に下げることが可能になり、顕著なタンパク質沈殿が得られた。Ｎａ２ＣＯ３は、ＣＯ２を低ｐＨ（＜６．６）で放出し、発泡体の形成をもたらす。１９Ａ型多糖およびタンパク質レベルに対する塩基滴定液の影響を調べた。３Ｌ発酵槽２台を設置し、１台の発酵槽は、塩基供給として２０％Ｎａ２ＣＯ３溶液（ｗ／ｖ）を用いて元のプロセスの対照とした。他の発酵槽は、塩基供給として３Ｎ ＮａＯＨを使用した。
回収段階の間に、発酵槽を３６℃で３０分間保持しながら、発酵槽中で細胞をＤＯＣ（最終濃度０．１３％（ｗ／ｖ））で溶解した。このステップに続いて、溶解物を周囲温度（２２℃）で撹拌しながら終夜保持した。溶解物保持の後、試料を種々のｐＨ設定値で取り出しながら、溶解物を未調整から４．５までの範囲にわたってｐＨ滴定した。これらの試料を周囲温度で終夜保持してからプロセスにかけ、多糖およびタンパク質濃度について分析した。発酵段階中のＯＤ、塩基およびグルコースレベルを図１および図２に示す。主な違いは、炭酸塩実験についての高い最終ＯＤであった。
全タンパク質レベルに対するＤＯＣ溶解物ｐＨ調整後の影響も調べ、図３に示した。より低いｐＨレベルでは、ＮａＯＨ実験でもＮａ２ＣＯ３実験でも細胞を含まないブロスでタンパク質量が低減した。より低いｐＨ（＜６．６）は、多糖の収量に悪影響を与えなかった。発酵分析結果は、ＮａＯＨ塩基供給が、発酵中にＮａ２ＣＯ３塩基供給を用いるプロセスの許容できる代替法であったが、Ｎａ２ＣＯ３供給で得られたものよりも低い収量をもたらしたという指標となった。
１９Ａ分子量に対する塩基滴定液の影響
３Ｌスケールでの一連の発酵を行って、塩基滴定液、ＨｙＳｏｙ濃度およびｐＨ保持ステップが血清型１９Ａ分子量に影響を及ぼしたかどうかを決定した。改変精製プロセスとその後のＭＡＬＬＳアッセイを用いて分子量決定を行った。結果を表１に示す。
３Ｌスケールでの一連の発酵を行って、塩基滴定液、ＨｙＳｏｙ濃度およびｐＨ保持ステップが血清型１９Ａ分子量に影響を及ぼしたかどうかを決定した。改変精製プロセスとその後のＭＡＬＬＳアッセイを用いて分子量決定を行った。結果を表１に示す。
重炭酸塩および混合塩基ｐＨ滴定液の影響
第１の試験（実験Ｌ２９３３１−１２２および−１３９）では、ＤＯＣ保持ステップ後にｐＨ５．０保持ステップと共に異なるレベルの初期重炭酸ナトリウムおよび水酸化ナトリウムと炭酸ナトリウムの塩基ブレンドを使用した。初期の重炭酸塩添加は、１０〜５０ｍＭの範囲であり、塩基滴定液用の３Ｎ水酸化ナトリウムに加えた炭酸ナトリウムは、０．２〜１．８Ｍの範囲であった。１つの実験は、５０ｍＭ初期重炭酸塩を含有しており、塩基滴定液としてＮａＯＨを使用した。これらの発酵の終わりの炭酸塩レベルは、１４〜１１１ｍＭの範囲であった。血清型１９Ａ分子量は、５２０〜７１３ｋＤａの範囲であった。実験パラメーターおよび結果を表２に示す。
第１の試験（実験Ｌ２９３３１−１２２および−１３９）では、ＤＯＣ保持ステップ後にｐＨ５．０保持ステップと共に異なるレベルの初期重炭酸ナトリウムおよび水酸化ナトリウムと炭酸ナトリウムの塩基ブレンドを使用した。初期の重炭酸塩添加は、１０〜５０ｍＭの範囲であり、塩基滴定液用の３Ｎ水酸化ナトリウムに加えた炭酸ナトリウムは、０．２〜１．８Ｍの範囲であった。１つの実験は、５０ｍＭ初期重炭酸塩を含有しており、塩基滴定液としてＮａＯＨを使用した。これらの発酵の終わりの炭酸塩レベルは、１４〜１１１ｍＭの範囲であった。血清型１９Ａ分子量は、５２０〜７１３ｋＤａの範囲であった。実験パラメーターおよび結果を表２に示す。
第２の試験（Ｌ２９３３１−１５９および−１８５）は、１５〜３０ｍＭの初期重炭酸塩添加を使用し、塩基ブレンドは、０．４〜１．０Ｍ Ｎａ２ＣＯ３を使用した。発酵の終わりの炭酸塩レベルは、２４〜６２ｍＭの範囲であった。血清型１９Ａ分子量は、５０２〜７６３ｋＤａの範囲であった。実験パラメーターおよび結果を表３に示す。
混合されたおよび純粋な炭酸塩滴定塩基発酵プロセスの比較
塩基ブレンドプロセス（０．７Ｍ Ｎａ２ＣＯ３／３Ｎ ＮａＯＨ）と炭酸塩滴定液プロセス（２０％Ｎａ２ＣＯ３溶液、ｗ／ｖ）を比較するために実験を行った。結果（表４）は、炭酸塩滴定液プロセスの分子量が、塩基ブレンドプロセス（５６１−６７１ｋＤａ）の分子量よりも高く、より安定（７７８、７８１ｋＤａ）していたことを立証した。多糖収量も、Ｎａ２ＣＯ３プロセスでより高かった。
塩基ブレンドプロセス（０．７Ｍ Ｎａ２ＣＯ３／３Ｎ ＮａＯＨ）と炭酸塩滴定液プロセス（２０％Ｎａ２ＣＯ３溶液、ｗ／ｖ）を比較するために実験を行った。結果（表４）は、炭酸塩滴定液プロセスの分子量が、塩基ブレンドプロセス（５６１−６７１ｋＤａ）の分子量よりも高く、より安定（７７８、７８１ｋＤａ）していたことを立証した。多糖収量も、Ｎａ２ＣＯ３プロセスでより高かった。
パイロットスケール実験
種々の塩基滴定液を用いたいくつかの血清型１９Ａパイロットスケール（１００Ｌ）実験を行った。完全な精製プロセスとその後のＭＡＬＬＳアッセイを用いて分子量決定を行い、最終精製バッチのものを報告している。結果を表５示す。
種々の塩基滴定液を用いたいくつかの血清型１９Ａパイロットスケール（１００Ｌ）実験を行った。完全な精製プロセスとその後のＭＡＬＬＳアッセイを用いて分子量決定を行い、最終精製バッチのものを報告している。結果を表５示す。
１９Ａ分子量に対する塩基滴定液および通気の影響
３Ｌスケールでの一連の発酵を行って、塩基滴定液および大気通気が分子量に影響を及ぼしたかどうかを決定した。改変精製プロセスとその後のＭＡＬＬＳアッセイを用いて分子量決定を行った。結果を表６示す。
３Ｌスケールでの一連の発酵を行って、塩基滴定液および大気通気が分子量に影響を及ぼしたかどうかを決定した。改変精製プロセスとその後のＭＡＬＬＳアッセイを用いて分子量決定を行った。結果を表６示す。
１９Ａ分子量に対する回収時間の影響
血清型１９Ａ多糖の分子量に対する回収時間の影響力も調べた。表７は、ＭＷの減少を発酵ＯＤおよび回収時間の関数として示す一実験のデータをまとめて示している。
血清型１９Ａ多糖の分子量に対する回収時間の影響力も調べた。表７は、ＭＷの減少を発酵ＯＤおよび回収時間の関数として示す一実験のデータをまとめて示している。
冠詞「ａ」および「ａｎ」は、本明細書において、１個または２個以上（すなわち、少なくとも１個）の文法上の目的語の冠詞を意味するように使用している。一例として、「ａｎ ｅｌｅｍｅｎｔ」は、１個または２個以上の要素を表す。
本明細書に記載した全ての刊行物および特許出願は、本発明に関連する当業者のレベルを示すものである。全ての刊行物および特許出願は、それぞれ単独の刊行物または特許出願が具体的にかつ単独で参照により組み込まれるように示されている場合と同じ程度に参照により本明細書に組み込まれる。
前述の発明は、理解を明確にするために例示および実施例によって多少詳しく記載されているが、特定の変形形態および変更形態を添付の特許請求の範囲内で実施してもよい。
Claims (10)
- 高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液を生成するための方法であって、
ａ）血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細菌細胞の培養物を調製するステップと、
ｂ）前記培養物を３時間〜６時間発酵させるステップと、
ｃ）前記発酵培養物中で細菌細胞を溶解するステップと、
ｄ）前記発酵培養物から肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を単離するステップとを含む、方法。 - 前記高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖が少なくとも４８０ｋＤの分子量を有する、請求項１に記載の方法。
- 高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を含有する溶液を生成するための方法であって、
ａ）血清型１９Ａ莢膜多糖を生成する肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）細菌細胞の培養物を調製するステップと、
ｂ）前記培養物にＣＯ２を供給するステップと、
ｃ）前記培養物を３時間〜６時間発酵させるステップと、
ｄ）前記発酵培養物中で細菌細胞を溶解するステップと、
ｅ）前記発酵培養物から肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖を単離するステップとを含む、方法。 - 前記高分子量の単離肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）血清型１９Ａ莢膜多糖の分子量が少なくとも４８０ｋＤである、請求項３に記載の方法。
- 前記培養物にＣＯ２を供給するステップが、培養物に重炭酸イオン（ＨＣＯ３ −）を加えるステップを含む、請求項３または請求項４に記載の方法。
- 培養物にＨＣＯ３ −を加えるステップが、ＮａＨＣＯ３を加えるステップを含む、請求項５に記載の方法。
- 前記培養物にＣＯ２を供給するステップが、培養物に炭酸イオン（ＣＯ３ ２−）を加えるステップを含む、請求項３または請求項４に記載の方法。
- 培養物にＣＯ３ ２−を加えるステップが、Ｎａ２ＣＯ３を加えるステップを含む、請求項７に記載の方法。
- 前記培養物にＣＯ２を供給するステップが、ＮａＨＣＯ３の第１の添加およびＮａ２ＣＯ３の第２の添加を含む、請求項３または請求項４に記載の方法。
- 前記培養物にＣＯ２を供給するステップが、培養物の上部にＣＯ２を通気するステップを含む、請求項３または請求項４に記載の方法。
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