JP5795340B2 - インフルエンザａ型ウイルスに対して中和活性を有するヒトｂ細胞由来のヒトモノクローナル抗体 - Google Patents
インフルエンザａ型ウイルスに対して中和活性を有するヒトｂ細胞由来のヒトモノクローナル抗体 Download PDFInfo
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Description
本発明は、インフルエンザＡ型ウイルス感染から快復した患者の血液に存在するヒトＢ細胞由来のヒトモノクローナル抗体であって、インフルエンザＡ型ウイルスに対する中和活性を有するヒトモノクローナル抗体に関する。
インフルエンザは、インフルエンザウイルスに呼吸器感染することで罹患する疾患であり、冬期に多く発生する。インフルエンザウイルスは高い伝染力を持つことが知られ、全ての年齢層、特に高年齢層に侵襲することが知られている（Ｔｒｅａｎｏｒ Ｊ，２００４年，Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ．３５０（３）：２１８−２０）。インフルエンザウイルスは、エンベロープを持つ、マイナス鎖の一本鎖ＲＮＡ（リボ核酸）ウイルスであり、オルトミクソウイルス（Ｏｒｔｈｏｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ）科に属する。インフルエンザウイルスは８分節からなる一本鎖ＲＮＡを持ち、Ａ型、Ｂ型、またはＣ型の何れかに分類される。インフルエンザＡ型ウイルスは、ヘマグルチニン（ＨＡ）及びノイラミニダーゼ（ＮＡ）といった主要な表面タンパク質に応じて、幾つかの亜型に更に分類される。これら表面タンパク質については、現在までに１６種類のＨＡと９種類のＮＡとが同定されている（Ｃｈｅｕｎｇ ＴＫ ａｎｄ Ｐｏｏｎ ＬＬ ２００７年，Ａｎｎ Ｎ Ｙ Ａｃａｄ Ｓｃｉ． １１０２：１−２５）。インフルエンザウイルスは、タイプに応じて、鳥に感染するもの、豚に感染するもの、及びヒトに感染するものなど多岐に及び、区分化したＲＮＡから構成されたゲノムを含む。このような理由から、インフルエンザウイルスは連続的変異及び再結合により遺伝的な多様性を獲得することが可能である（Ｔｒｅａｎｏｒ Ｊ， ２００４年． Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ． ３５０（３）：２１８−２０）。このため、インフルエンザウイルスに対する終生免疫力を得ることは困難である。現在利用されている最も効果的な予防方法は、各年に流行が予測される特定のインフルエンザウイルスに対するワクチン接種を行うことである。
通常、インフルエンザワクチンは卵を使用して作製されるが、このような方法は、インフルエンザワクチン作製に要する時間が長時間になり非効率的である。したがって、この方法の場合、限られた期間内に十分な量のワクチンを毎年作製するのが困難であるという問題が生じる。この問題を解決するために、幾つかの製薬会社（ＧＳＫ社、Ｂａｘｔｅｒ社等）では、細胞培養によりワクチンを作製する方法の研究を盛んに行っている。さらに、インフルエンザウイルス感染が大流行した場合に、ワクチンを迅速に開発することは非常に困難である。また、抗ウイルス剤への耐性を獲得した変異ウイルスの出現に伴う問題に起因して、抗ウイルス剤の信頼性が不十分であった。
上記問題を解決するために、治療用のインフルエンザウイルス抗体が近年盛んに開発されている（Ｔｈｒｏｓｂｙ ｅｔ ａｌ， ２００８年， ＰｌｏＳ Ｏｎｅ ３ （ｅ３９４２）； Ｓｕｉ ｅｔ ａｌ．， ２００９年， Ｎａｔｕｒｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ＆ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ． １６ （２６５−２７３）； Ｓｉｍｍｏｎｓ ｅｔ ａｌ， ２００７年， ＰｌｏＳ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ ４ （ｅ１７８））。
感染から快復した患者の血液から作製した血液製剤を使用して、様々なウイルスの感染患者の治療及び汎発性インフルエンザウイルスの感染患者の治療が行われてきた。例えば、スペイン風邪ウイルスに感染した患者が肺炎症状を発症した場合、スペイン風邪ウイルス感染から快復した他の患者の血液から作製した血液製剤を使用して治療を行う（Ｌｕｋｅ ｅｔ ａｌ．，２００６年． Ａｎｎａｌｓ ｏｆ ｉｎｔｅｒｎａｌ ｍｅｄｉｃｉｎｅ． １４５：５９９）。しかし、高力価免疫グロブリン（ＩｇＩｖ）をヒト血漿から精製して、様々なウイルスの感染患者の治療に使用する場合、上記のように得られる製剤は血液中に存在する潜在的な病原菌に汚染されているおそれが有り、且つ、大量生産を実現するには非効率的である。
特定のヒトモノクローナル抗体をスクリーニングするために、ヒトＢ細胞を使用する。しかし、Ｂ細胞の不死化として、Ｅｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒウイルス（ＥＢＶ）を使用したヒトＢ細胞の不死化は非効率的であり、多大な時間を必要とする。このような非効率性を克服するために、新規の技術が開発され、使用されている。そのような技術のひとつには、抗体の遺伝情報をＢ細胞から直接得るためにＲＴ−ＰＣＲ方法を使用するものがある。このような方法としては、例えば、抗原に対し特異的な抗体を発現するＢ細胞を染色する工程と、蛍光標示式細胞分取器（ＦＡＣＳ ｓｏｒｔｅｒ）を使用して上記Ｂ細胞を単離する工程と、ＲＴ−ＰＣＲ方法により単一のＢ細胞から上記抗体の遺伝情報を得る工程と、上記遺伝情報を発現ベクターに挿入する工程と、上記発現ベクターで動物細胞をトランスフェクトして、上記抗体を大量に作製する工程とを含む方法がある。また、抗体のこのような作製を簡単に且つ迅速に行うために、以下の技術を使用することができる。新しい技術であるＩＳＡＡＣ法（ｉｍｍｕｎｏｓｐｏｔ ａｒｒａｙ ａｓｓａｙ ｏｎ ａ ｃｈｉｐ）は、特定のモノクローナル抗体を分泌する単一のＢ細胞をスクリーニングすることによって、数週間の間に抗体遺伝子を得ることを可能にする（Ｊｉｎ ｅｔ ａｌ．， ２００９年 Ｎａｔ Ｍｅｄ． １５， １０８８−１０９２）。これにより得た抗体は、免疫原性の点においてより効果的なヒト天然抗体である。
Ｒｅｅｄ Ｌ．Ｊ． ａｎｄ Ｍｕｅｎｃｈ Ｈ （１９３８年）． Ａ ｓｉｍｐｌｅ ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ ｅｓｔｉｍａｔｉｎｇ ｆｉｆｔｙ ｐｅｒｃｅｎｔ ｅｎｄｐｏｉｎｔｓ． Ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｈｙｇｉｅｎｅ， ２７ （４９３−４９７）.
本発明の目的は、ヒトＢ細胞由来のヒトモノクローナル抗体であって、インフルエンザＡ型ウイルスに対して中和活性を有するヒトモノクローナル抗体を提供することである。
本発明の他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体をエンコードする単離核酸分子を提供することである。
本発明の更に他の目的は、上記単離核酸分子が挿入された発現ベクターを提供することである。
本発明の更に他の目的は、上記発現ベクターをトランスフェクトした、抗体作製用の細胞系を提供することである。
本発明の更に他の目的は、ヒトモノクローナル抗体をスクリーニングする方法を提供することである。
本発明の更に他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体を含む組成物を提供することである。
本発明の更に他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザＡ型ウイルスによって発病する疾患を治療する方法を提供することである。
本発明の更に他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザＡ型ウイルスによって発病する疾患を予防する方法を提供することである。
本発明の更に他の目的は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザＡ型ウイルス感染を診断する診断方法を提供することである。
本発明の更に他の目的は、インフルエンザＡ型ウイルスの診断キットであって、上記ヒトモノクローナル抗体を含む診断キットを提供することである。
上記課題を解決するために、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型からなる一群から選択される少なくとも１つに対して中和活性を有する抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体を提供する。
また、本発明は、上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体をエンコードする単離核酸分子を提供する。
また、本発明は、上記単離核酸分子が挿入された発現ベクターを提供する。
また、本発明は、上記発現ベクターをトランスフェクトした、抗体作製用の細胞系を提供する。
また、本発明は、ヒトモノクローナル抗体をスクリーニングするスクリーニング方法を提供する。
また、本発明は、上記ヒトモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。
また、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルスによって発病する疾患の予防及び治療用の組成物であって、上記ヒトモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。
また、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルス感染の診断用の組成物であって、上記ヒトモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。
また、本発明は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザＡ型ウイルスによって発病する疾患を治療する治療方法を提供する。
また、本発明は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザＡ型ウイルスによって発病する疾患を予防する予防方法を提供する。
また、本発明は、上記ヒトモノクローナル抗体を使用してインフルエンザＡ型ウイルス感染を診断する診断方法を提供する。
また、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルスの診断キットであって、上記ヒトモノクローナル抗体を含む診断キットを提供する。
本発明に係る抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体は、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型からなる一群から選択される少なくとも１つに対して結合活性と中和活性とを有している。よって、本発明に係る抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体は、上記インフルエンザＡ型ウイルスによって発病する疾患の予防及び治療に有用であり、上記インフルエンザＡ型ウイルスの感染診断にも有用である。
以下、本明細書において使用する用語を下記のように定義する。
“インフルエンザＡ型ウイルス”は、エンベロープを持つマイナス鎖のＲＮＡ（リボ核酸）ウイルスであって、オルトミクソウイルス（Ｏｒｔｈｏｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ）科に属するＲＮＡウイルスを指す。インフルエンザウイルスは８分節から構成される一本鎖ＲＮＡを持ち、Ａ型、Ｂ型、及びＣ型の何れかに分類される。各型のインフルエンザウイルスは、ＨＡ（ヘマグルチニン）及びＮＡ（ノイラミニダーゼ）といった主要な表面タンパク質に応じて、更に亜型に分類される。インフルエンザＡ型ウイルスの表面タンパク質については、現在までに１６種類のＨＡと９種類のＮＡとが知られている。
本明細書の“Ｈ１亜型”は、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１Ｎ１亜型、Ｈ１Ｎ２亜型、 Ｈ１Ｎ３亜型、Ｈ１Ｎ４亜型、 Ｈ１Ｎ５亜型、 Ｈ１Ｎ６亜型、 Ｈ１Ｎ７亜型、Ｈ１Ｎ８亜型、及びＨ１Ｎ９亜型を含むものである。
本明細書の“Ｈ２亜型”は、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ２Ｎ１亜型、Ｈ２Ｎ２亜型、Ｈ２Ｎ３亜型、Ｈ２Ｎ４亜型、Ｈ２Ｎ５亜型、Ｈ２Ｎ６亜型、Ｈ２Ｎ７亜型、Ｈ２Ｎ８亜型、及びＨ２Ｎ９亜型を含むものである。
本明細書の“Ｈ５亜型”は、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ５Ｎ１亜型、Ｈ５Ｎ２亜型、Ｈ５Ｎ３亜型、Ｈ５Ｎ４亜型、Ｈ５Ｎ５亜型、Ｈ５Ｎ６亜型、Ｈ５Ｎ７亜型、Ｈ５Ｎ８亜型、及びＨ５Ｎ９亜型を含むものである。
“ヘマグルチニン”（以下、“ＨＡ”と称する）は、インフルエンザウイルスのエンベロープ糖タンパク質を意味する。ＨＡは、インフルエンザウイルスの宿主細胞への吸着及び侵入を可能にする。ＨＡの亜型は１６種類が知られている。
本明細書の“快復または全快復患者”は、インフルエンザＡ型ウイルスの感染によってインフルエンザＡ型ウイルスに対し陽性反応を示し、一定時間後、血液中でインフルエンザＡ型ウイルスに対し陰性反応を示した患者であり、上記陰性反応は上記インフルエンザＡ型ウイルス感染からの快復を示唆している。
以下、本発明を詳細に説明する。
本願発明者らは、インフルエンザＡ型ウイルス感染から快復後の患者から採取した血液中の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を単離した。そして、単離したＰＢＭＣからモノクローナル抗体作製用のＢ細胞をスクリーニングした。スクリーニング後の上記Ｂ細胞から、モノクローナル抗体を作製するための遺伝情報をＲＴ−ＰＣＲ方法により取得し、ｐｃＤＮＡベクターへ挿入した。抗体の予備生成とこの抗体のＨＡに対する結合活性とを確認するために、上記ｐｃＤＮＡベクターをＣＨＯ細胞系にトランスフェクトした。その結果、全部で８２種類の抗体がスクリーニングされた。続いて、ＨＡに対する結合親和力をより正確に測定するために、上記ｐｃＤＮＡベクターに挿入された各抗体をヒトＦ２Ｎ細胞にトランスフェクトし、トランスフェクト後、単量体ＨＡと三量体ＨＡとを抗原とするＨＡ−ＥＬＩＳＡ法を使用して、上記ヒトＦ２Ｎ細胞が生成する抗体の比較分析を行った。これにより、上記単量体ＨＡよりも高い反応度で上記三量体ＨＡと反応した３５種類の抗体を選択した。次に、上記ｐｃＤＮＡベクターにおけるこれら３５種類の抗体遺伝子をＭａｒＥｘ発現ベクターに挿入した。大量の抗体を生成するように、このＭａｒＥｘ発現ベクターをＦ２Ｎ細胞にトランスフェクトした。トランスフェクト後、Ｆ２Ｎ細胞により生成される抗体を使用して、マイクロ中和試験（以下、“ＭＮ試験”と称する）及び血球凝集抑制試験（以下、“ＨＩ試験”と称する）を行い、多様のインフルエンザウイルスに対する中和活性を測定した。その結果、上記抗体のうちの多数が、多様なインフルエンザウイルスに対して高い中和活性または低い中和活性を示した。しかし、上記ＨＩ試験では、上記抗体の全てが陰性反応を示した。上記ＭＮ試験によって、多様なウイルスに対する中和活性を示す３種類のモノクローナル抗体（ＣＴ１０４抗体、ＣＴ１２０抗体、及びＣＴ１２３抗体）が最終的に選択された。スクリーニングにより選択した上記３種類のモノクローナル抗体のうち、ＣＴ１０４抗体がＨＩ亜型及びＨ５亜型に対し中和活性を有し、ＣＴ１２０抗体がＨＩ亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型に対し中和活性を有し、ＣＴ１２３抗体が上記Ｈ１亜型に対し中和活性を有することが見出された（表１参照）。また、上記Ｈ１亜型及び上記Ｈ５亜型を使用した動物（マウス）生存実験では、上記ＣＴ１０４抗体並びに上記ＣＴ１２０抗体がＨ５Ｎ１ウイルス感染に対して優れた予防効果及び治療効果を示し、上記３種類のうち全抗体が、新型Ｈ１Ｎ１ウイルス感染及び季節性Ｈ１Ｎ１ウイルス感染に対して優れた予防効果を示した（図６参照）。また、上記Ｈ１亜型を使用した他の動物（フェレット）実験では、上記ＣＴ１２０抗体がＨ１Ｎ１ウイルス（Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０４／０９）感染に対して優れた治療効果を示した（図７及び図８参照）。上記の結果に基づいて、本願発明者らは、インフルエンザＡ型ウイルス感染を予防する中和性のモノクローナル抗体である本発明を完成させた。
したがって、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型に対する中和活性を有するモノクローナル抗体を提供する。
本発明では、上記モノクローナル抗体が、インフルエンザＡ型ウイルスの表面上のＨＡと結合することが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型の感染から快復した患者の血液中に存在するＢ細胞に由来することが好ましい。
本発明では、上記インフルエンザＡ型ウイルスがインフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型であることが好ましく、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型は、Ａ／Ｔｅｘａｓ／０５／２００９−ＲＧ１５と、Ａ／Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ／１８／２００９−ＲＧ１５と、Ａ／Ｓｏｌｏｍｏｎ Ｉｓｌａｎｄｓ／２００６と、Ａ／Ｏｈｉｏ／８３とからなる一群から選択される少なくとも１つである。また、上記インフルエンザＡ型ウイルスは、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ２Ｎ２亜型であることが好ましく、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ２Ｎ２亜型はＡ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／６／６０ ｃａである。さらに、上記インフルエンザＡ型ウイルスは、Ｈ５Ｎ１亜型であることが好ましく、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ５Ｎ１亜型は、Ａ／Ｖｉｅｔｎａｍ／１２０３／０４及びＡ／Ａｎｈｕｉ／１／０５から選択される１つである。
本発明では、上記モノクローナル抗体は、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ３Ｎ２亜型に対する中和活性を有していない。
また、本発明は、次の軽鎖及び重鎖のポリペプチド配列を含む抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体、並びに、その断片及び機能変異体を提供し：
軽鎖は、配列番号１、７、及び１２からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ１領域と、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域と、配列番号３、８、及び１３からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ３領域とを含み；
重鎖は、配列番号４、９、及び１４からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ１領域と、配列番号５、１０、及び１５からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ２領域と、配列番号６、１１、及び１６からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ３領域と、を含む。
軽鎖は、配列番号１、７、及び１２からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ１領域と、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域と、配列番号３、８、及び１３からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ３領域とを含み；
重鎖は、配列番号４、９、及び１４からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ１領域と、配列番号５、１０、及び１５からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ２領域と、配列番号６、１１、及び１６からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ３領域と、を含む。
また、本発明は、以下のモノクローナル抗体からなる一群から選択される抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及びその機能変異体を提供する：
配列番号１に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号４に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号５に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号６に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；
配列番号７に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号８に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、（ｉｉ´）配列番号９に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１０に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１１に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；及び
配列番号１２に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１３に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号１４に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１５に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１６に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体。
配列番号１に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号４に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号５に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号６に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；
配列番号７に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号８に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、（ｉｉ´）配列番号９に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１０に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１１に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；及び
配列番号１２に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１３に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号１４に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１５に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１６に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体。
本発明では、上記モノクローナル抗体が、配列番号３６に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と配列番号３７に示すポリペプチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体は、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型及びＨ５亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ３亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型は、Ｈ１Ｎ１亜型と、Ｈ１Ｎ２亜型と、Ｈ１Ｎ３亜型と、Ｈ１Ｎ４亜型と、Ｈ１Ｎ５亜型と、Ｈ１Ｎ６亜型と、Ｈ１Ｎ７亜型と、Ｈ１Ｎ８亜型と、Ｈ１Ｎ９亜型とを含み、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ５亜型は、Ｈ５Ｎ１亜型と、Ｈ５Ｎ２亜型と、Ｈ５Ｎ３亜型と、Ｈ５Ｎ４亜型と、Ｈ５Ｎ５亜型と、Ｈ５Ｎ６亜型と、Ｈ５Ｎ７亜型と、Ｈ５Ｎ８亜型と、Ｈ５Ｎ９亜型とを含む。
本発明では、上記モノクローナル抗体が、配列番号４０に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と配列番号４１に示すポリペプチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体は、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型と、Ｈ２亜型と、Ｈ５亜型とに対し中和活性を有し、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ３亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型は、Ｈ１Ｎ１亜型と、Ｈ１Ｎ２亜型と、Ｈ１Ｎ３亜型と、Ｈ１Ｎ４亜型と、Ｈ１Ｎ５亜型と、Ｈ１Ｎ６亜型と、Ｈ１Ｎ７亜型と、Ｈ１Ｎ８亜型と、Ｈ１Ｎ９亜型とを含み、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ２亜型は、Ｈ２Ｎ１亜型と、Ｈ２Ｎ２亜型と、Ｈ２Ｎ３亜型と、Ｈ２Ｎ４亜型と、Ｈ２Ｎ５亜型と、Ｈ２Ｎ６亜型と、Ｈ２Ｎ７亜型と、Ｈ２Ｎ８亜型と、Ｈ２Ｎ９亜型とを含み、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ５亜型は、Ｈ５Ｎ１亜型と、Ｈ５Ｎ２亜型と、Ｈ５Ｎ３亜型と、Ｈ５Ｎ４亜型と、Ｈ５Ｎ５亜型と、Ｈ５Ｎ６亜型と、Ｈ５Ｎ７亜型と、Ｈ５Ｎ８亜型と、Ｈ５Ｎ９亜型とを含む。
本発明では、上記モノクローナル抗体が、配列番号４４に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と配列番号４５に示すポリペプチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ３亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型は、Ｈ１Ｎ１亜型と、Ｈ１Ｎ２亜型と、Ｈ１Ｎ３亜型と、Ｈ１Ｎ４亜型と、Ｈ１Ｎ５亜型と、Ｈ１Ｎ６亜型と、Ｈ１Ｎ７亜型と、Ｈ１Ｎ８亜型と、Ｈ１Ｎ９亜型とを含む。
本発明のインフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体の断片は、上記インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体全体ではなく、その一部である。上記断片は、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨＡへ結合する能力を有し、本発明の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体と競合して上記ＨＡに結合する全ての断片を含むものとする。
さらに、本発明は、本発明のインフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体の機能変異体を含む。上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型に特異的に結合する本発明のインフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体とその断片とが上記機能変異体に含まれている場合、上記機能変異体を本発明のモノクローナル抗体の機能変異体と見なす。特に、機能変異体が上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ３亜型またはその断片に結合でき、これらインフルエンザＡ型ウイルスの亜型またはその断片に対する中和活性を有している場合、上記機能変異体を本発明の機能変異体と見なす。機能変異体としては、一次構造配列が実質的に類似するが、親抗体である上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体には見られない、化学的若しくは生化学的な、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏの修飾を含む誘導体が挙げられるが、これに限定されない。このような修飾としては、例えば、アセチル化、アシル化、ヌクレオチドまたはヌクレオチド誘導体の共有結合化、脂質または脂質誘導体の共有結合化、架橋、ジスルフィド結合、グリコシル化、水酸化、メチル化、酸化、ＰＥＧ化（ｐｅｇｙｌａｔｉｏｎ）、タンパク質分解処理、リン酸化などが挙げられる。また、機能変異体は、親抗体である上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体のアミノ酸配列と比較して、１つ以上のアミノ酸の置換、挿入、欠損、またはこれらの組合せを含むアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体であってもよい。さらに、機能変異体は、アミノ末端側とカルボキシル末端側との一方または両方のアミノ酸配列が切断されたものでもよい。本発明の機能変異体は、親抗体である上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体のアミノ酸配列と同一の結合親和力または異なる結合親和力（親抗体である上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体のアミノ酸配列よりも高い結合親和力または低い結合親和力）を有していてもよく、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型またはそれらの断片に結合し得る。例えば、本発明の機能変異体では、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型またはそれらの断片に対する結合親和力が、親結合分子と比較して増大または減少したものであってよい。好ましくは、様々な領域（フレームワーク領域、超可変領域、特に上記ＣＤＲ３領域が挙げられるが、これに限定されない）のアミノ酸配列は修飾されている。一般的に、上記軽鎖領域または上記重鎖領域は、３つのＣＤＲ領域を含む３つの超可変領域と、より保存性の高い領域（所謂フレームワーク領域（ＦＲ））とを含む。上記超可変領域は、ＣＤＲのアミノ酸残基と超可変ループのアミノ酸残基とを含む。本発明の範囲に含まれる機能変異体では、上述の親モノクローナル抗体に対するアミノ酸配列の相同性が少なくとも約５０％〜約９９％であり、好ましくは少なくとも約６０％〜約９９％であり、より好ましくは少なくとも約８０％〜約９９％であり、さらに好ましくは少なくとも約９０％〜約９９％であり、特に好ましくは少なくとも約９５％〜約９９％であり、さらに好ましくは少なくとも約９７％〜約９９％である。Ｇａｐ法またはＢｅｓｔｆｉｔ等の当業者に公知のコンピュータアルゴリズムを使用して、アミノ酸配列同士を比較できるように最適に揃えて、同様または同一のアミノ酸残基を決定することができる。機能変異体は、ＰＣＲ法、オリゴヌクレオチド指定突然変異誘発法、及び部位特異的突然変異誘発法などの当業者に公知の分子生物学法または有機組織法によって上記親モノクローナル抗体またはその一部を改変することにより得られる。
また、本発明は、次の軽鎖及び重鎖を含む抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体を提供し：
上記軽鎖は、配列番号１７、２３、及び２８からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ１領域と、配列番号１８または２９に示す配列を含むＣＤＲ２領域と、配列番号１９、２４、及び３０からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ３領域と、を含み；
上記重鎖は、配列番号２０、２５、及び３１からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ１領域と、配列番号２１、２６、及び３２からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ２領域と、配列番号２２、２７、及び３３からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ３領域と、を含む。
上記軽鎖は、配列番号１７、２３、及び２８からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ１領域と、配列番号１８または２９に示す配列を含むＣＤＲ２領域と、配列番号１９、２４、及び３０からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ３領域と、を含み；
上記重鎖は、配列番号２０、２５、及び３１からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ１領域と、配列番号２１、２６、及び３２からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ２領域と、配列番号２２、２７、及び３３からなる一群から選択される配列を含むＣＤＲ３領域と、を含む。
また、本発明は、以下のモノクローナル抗体からなる一群から選択される抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体を提供する：
配列番号１７に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１８に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１９に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号２０に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２１に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２２に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；
配列番号２３に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１８に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２４に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号２５に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２６に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２７に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；及び
配列番号２８に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２９に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３０に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号３１に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号３２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３３に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体。
配列番号１７に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１８に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１９に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号２０に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２１に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２２に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；
配列番号２３に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１８に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２４に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号２５に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２６に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２７に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；及び
配列番号２８に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２９に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３０に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号３１に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号３２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３３に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体。
本発明では、上記モノクローナル抗体が、配列番号３４に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と配列番号３５に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型及びＨ５亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ３Ｎ２亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型は、Ｈ１Ｎ１亜型と、Ｈ１Ｎ２亜型と、Ｈ１Ｎ３亜型と、Ｈ１Ｎ４亜型と、Ｈ１Ｎ５亜型と、Ｈ１Ｎ６亜型と、Ｈ１Ｎ７亜型と、Ｈ１Ｎ８亜型と、Ｈ１Ｎ９亜型と含み、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ５亜型は、Ｈ５Ｎ１亜型と、Ｈ５Ｎ２亜型と、Ｈ５Ｎ３亜型と、Ｈ５Ｎ４亜型と、Ｈ５Ｎ５亜型と、Ｈ５Ｎ６亜型と、Ｈ５Ｎ７亜型と、Ｈ５Ｎ８亜型と、Ｈ５Ｎ９亜型とを含む。
本発明によれば、上記モノクローナル抗体が、配列番号３８に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と配列番号３９に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ３Ｎ２亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型は、Ｈ１Ｎ１亜型と、Ｈ１Ｎ２亜型と、Ｈ１Ｎ３亜型と、Ｈ１Ｎ４亜型と、Ｈ１Ｎ５亜型と、Ｈ１Ｎ６亜型と、Ｈ１Ｎ７亜型と、Ｈ１Ｎ８亜型と、Ｈ１Ｎ９亜型とを含み、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ２亜型は、Ｈ２Ｎ１亜型と、Ｈ２Ｎ２亜型と、Ｈ２Ｎ３亜型と、Ｈ２Ｎ４亜型と、Ｈ２Ｎ５亜型と、Ｈ２Ｎ６亜型と、Ｈ２Ｎ７亜型と、Ｈ２Ｎ８亜型と、Ｈ２Ｎ９亜型とを含み、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ５亜型は、Ｈ５Ｎ１亜型と、Ｈ５Ｎ２亜型と、Ｈ５Ｎ３亜型と、Ｈ５Ｎ４亜型と、Ｈ５Ｎ５亜型と、Ｈ５Ｎ６亜型と、Ｈ５Ｎ７亜型と、Ｈ５Ｎ８亜型と、Ｈ５Ｎ９亜型とを含む。
本発明によれば、上記モノクローナル抗体が、配列番号４２に示すポリヌクレオチド配列を含む軽鎖と配列番号４３に示すポリヌクレオチド配列を含む重鎖とを含むことが好ましい。また、上記モノクローナル抗体が、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型に対し中和活性を有し、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ３亜型に対し中和活性を有していないことが好ましい。上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型は、Ｈ１Ｎ１亜型と、Ｈ１Ｎ２亜型と、Ｈ１Ｎ３亜型と、Ｈ１Ｎ４亜型と、Ｈ１Ｎ５亜型と、Ｈ１Ｎ６亜型と、Ｈ１Ｎ７亜型と、Ｈ１Ｎ８亜型と、Ｈ１Ｎ９亜型とを含む。
また、本発明は、上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体をエンコードする、単離した核酸分子を提供する。
本発明の上記核酸分子は、本発明の抗体のアミノ酸配列を当業者に公知の方法に従ってポリヌクレオチド配列へ翻訳して得られる全ての核酸分子を含む。したがって、オープン・リーディング・フレーム（ｏｐｅｎ ｒｅａｄｉｎｇ ｆｒａｍｅｓ（ＯＲＦｓ））を含む多様なポリヌクレオチド配列を調製することができ、これらポリヌクレオチド配列を本発明の核酸分子の範囲に含めることができる。
また、本発明は、上記核酸分子が挿入された発現ベクターを提供する。上記発現ベクターは、ＭａｒＥｘ発現ベクター（Ｃｅｌｌｔｒｉｏｎ社、韓国）、広く市場に流通しているｐＣＤＮＡベクター、Ｆ、Ｒ１、ＲＰ１、Ｃｏｌ、ｐＢＲ３２２、ＴｏＬ、Ｔｉベクター等のベクターと；コスミドと；ラムダ、ラムドイド、Ｍ１３、Ｍｕ、Ｐ１、Ｐ２２、Ｑμ、Ｔ−ｅｖｅｎ、Ｔ２、Ｔ４、Ｔ７等のファージと；植物ウイルスとからなる一群から選択される１つに由来することが好ましいが、これに限定されない。本発明では、当業者に公知の多様な発現ベクターのうち任意の発現ベクターを使用でき、発現ベクターの選択は、選択された宿主細胞の種類に応じたもので実施される。上記発現ベクターの宿主細部への導入は、リン酸カルシウムトランスフェクション法、ウイルス感染法、ＤＥＡＥ−デキストランを介したトランスフェクション法、リポフェクタミントランスフェクション法、または電気穿孔法によって実現できるが、これに限定されない。当業者であれば、使用する発現ベクター及び宿主細胞に好適な導入方法を選択し、使用することができる。好ましくは、上記発現ベクターが１つまたは複数の選択マーカーを含むが、これに限定されない。よって、選択マーカーを含まないベクターを使用してもよい。上記選択マーカーの選択は選択された宿主細胞に応じたものでもよいが、このような選択マーカーの選択は当業者に周知であり、本発明にとって重要ではない。
本発明の核酸分子の精製を容易にするために、上記発現ベクターに標識配列を挿入してもよい。例えば、上記標識配列として、ヘクサ−ヒスチジン標識、ヘマグルチニン標識、ｍｙｃ標識、またはＦＬＡＧ標識が挙げられるが、これに限定されない。本発明においては、精製を容易にするための当業者に公知の任意の標識を使用してもよい。
また、本発明は、上記発現ベクターをトランスフェクトした、抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体作製用の細胞系を提供する。
本発明では、上記細胞として、哺乳類細胞、植物細胞、昆虫細胞、真菌細胞、または細菌発生細胞が挙げられるが、これに限定されない。上記細胞が哺乳類細胞である場合、ＣＨＯ細胞と、Ｆ２細胞と、ＣＳＯ細胞と、ＢＨＫ細胞と、Ｂｏｗｅｓ ｍｅｌａｎｏｍａ細胞と、ＨｅＬａ細胞と、９１１細胞と、ＡＴ１０８０細胞と、Ａ５４９細胞と、ＨＥＫ２９３細胞と、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞とからなる一群から選択される１つを宿主細胞として使用するのが好ましいが、これに限定されない。また、哺乳類宿主細胞として使用可能な当業者に公知の任意の細胞を本発明に使用してもよい。
また、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルス感染から快復した患者から、インフルエンザＡ型ウイルスに対して中和活性を有する抗体をスクリーニングする方法であって、以下の工程（１）〜（１２）を含む方法を提供する：（１）患者がインフルエンザＡ型ウイルス感染から全快したか否かを検査して、且つ、血液中のインフルエンザＡ型ウイルス反応が陰性を示す患者を選別する工程と、（２）上記工程（１）で選別された、インフルエンザＡ型ウイルス感染から全快している患者の血液を採取する工程と、（３）上記工程（２）で採取した血液中のＢ細胞を単離する工程と、（４）上記工程（３）で単離したＢ細胞のうち、ＨＡ結合性の抗体を生成するＢ細胞のみを選別する工程と、（５）上記工程（４）で選別したＢ細胞からＲＮＡを抽出する工程と、（６）上記工程（５）において抽出したＲＮＡから抗体遺伝子を増幅する工程と、（７）上記工程（６）で増幅した抗体遺伝子を発現ベクター内にクローニングする工程と、（８）上記工程（７）で抗体遺伝子のクローニングを行った発現ベクターを宿主細胞にトランスフェクトする工程と、（９）上記工程（８）において上記発現ベクターをトランスフェクトした宿主細胞が上記ＨＡ結合性の抗体を生成するか否かを確認する工程と、（１０）上記工程（９）の確認結果に基づいて選別した宿主細胞を培養する工程と、（１１）上記工程（１０）の培養後の上記宿主細胞から、上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨＡに結合している抗体を精製する工程と、（１２）上記工程（１１）で精製した上記抗体がインフルエンザＡ型ウイルスに対して中和活性を有するか否かを再度確認する工程と、（１３）上記工程（１２）においてインフルエンザＡ型ウイルスに対して中和活性を有することが再度確認された抗体を再度選別する工程。
また、本発明は、上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。
本発明の上記組成物は、上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体に加えて、薬学的に許容可能な添加剤を含んでよい。なお、薬学的に許容可能な添加剤は当業者に周知である。
また、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルスによって発病する疾患の予防及び治療用の組成物であって、上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体を含む組成物を提供する。
本発明の組成物は、上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体に加えて、薬学的に許容可能な添加剤を含んでよい。なお、薬学的に許容可能な添加剤は当業者に周知である。
また、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、少なくとも５つの他のＡ型インフルエンザ治療剤を含んでもよい。さらに、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型またはそれらの断片に結合する多様なモノクローナル抗体を含んでもよく、上記モノクローナル抗体は中和活性の相乗効果を発揮する。
また、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、１つまたは複数の他の治療剤または診断用剤を更に含んでもよい。上記治療剤としては、抗ウイルス薬が挙げられるが、これに限定されない。このような抗ウイルス薬としては、抗体、小分子、有機化合物または無機化合物、酵素、ポリヌクレオチド配列、及び抗ウイルス配列等が挙げられる。
また、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、製造過程及び保存過程において無菌且つ安定状態であることが求められる。また、本発明の疾患の予防及び治療用の組成物は、出荷前または出荷時に薬学的に許容可能な適当な添加剤中で再構成されるように、粉末形態であってもよい。本発明の疾患の予防及び治療用の組成物が、無菌状態の注射剤を調製できるような粉末形態の場合、好適な調整方法としては、予め除菌した溶液から活性成分の粉末と他の任意の所望の含有物を作製する真空乾燥法と凍結乾燥法とが挙げられる。また、本発明の組成物は溶解状態であってもよく、適当な薬学的に許容可能な添加剤を出荷前または出荷時に添加及び／または混合して、単位投与量の注射可能な形態を提供してもよい。好ましくは、本発明において使用する上記薬学的に許容可能な添加剤は高薬物濃度に好適であり、適切な流動性を保持できるものであり、必要に応じて、吸収を遅らせられるものである。
上記疾患の予防及び治療用の組成物の最適な投与経路は、上記組成物内の活性分子の物理的機械的性質、臨床的症状の緊急性、及び上記活性分子の血漿濃度と所望の治療効果との関係等の幾つかの要因に影響される。例えば、本発明のモノクローナル抗体を、放出制御製剤等の上記モノクローナル抗体の急速な放出を防ぐ担体と共に調整してもよく、上記担体としてはインプラント、経皮貼布、及びマイクロカプセル封入送達系（ｍｉｃｒｏｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｓｙｓｔｅｍｓ）が挙げられる。また、エチレン酢酸ビニール、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル、及びポリ乳酸などの生体分解性の生体適合性ポリマーを本発明に使用してもよい。さらに、上記モノクローナル抗体は、上記モノクローナル抗体の不活性化を防止する材料または化合物によってコーティングされてもよいし、上記モノクローナル抗体の不活性化を防止する材料または化合物と共に投与されてもよい。例えば、上記モノクローナル抗体をリポソームまたは希釈剤などの適当な担体と一緒に投与してもよい。
本発明の疾患の予防用及び治療用の組成物の投与経路は、経口投与と非経口的投与とに分類することができる。好適な投与経路は静脈内投与法であるが、これに限定されない。
経口投与用の剤形としては、錠剤状、トローチ剤状、薬用キャンディ状、水性懸濁液状または油性懸濁液状、分散性粉末状または分散性顆粒状、硬カプセル剤状、軟質ゼラチンカプセル状、シロップ剤状またはエリキシル剤状、ピル状、糖衣錠状、液状、ゲル状、またはスラリー状が挙げられる。なお、これら製剤は医薬品賦形剤を含んでよく、上記医薬品賦形剤としては造粒剤及び崩壊剤、結合剤、平滑剤、防腐剤、着色剤、香料添加剤または甘味剤、植物油または鉱油、湿潤剤、及び増粘剤が挙げられるが、これに限定されない。
非経口的投与用の剤形は、等張性で、無菌性且つ非毒性の注射水溶液または非水溶液形態、輸水溶液または輸非水溶液形態、または、懸濁水溶液または懸濁非水溶液形態とすることができる。上記溶液または懸濁液は、使用される投与量及び濃度において受容者に対する毒性を示さない物質を含んでもよく、このような物質として、１，３−ブタンジオール、リンガー溶液、ハンク溶液（Ｈａｎｋ’ｓ ｓｏｌｕｔｉｏｎ）、生理食塩液、油類、脂肪酸、局所麻酔薬、保存料、緩衝剤、粘度または溶解度増大剤、水溶性抗酸化物質、油溶性抗酸化物質、及び金属キレート剤等が挙げられる。
また、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルスの診断用組成物であって、上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体に標識付けした標識を含む結合体を含んでなる診断用の組成物を提供する。
本発明の診断用組成物は、検出可能な部分／作用物質などの、少なくとも１つの検出可能な標識を含む。上記標識は、本発明の上記モノクローナル抗体と非共有結合してもよい。また、上記標識は、共有結合によって上記モノクローナル抗体と直接結合してもよい。あるいは、上記標識は、１つまたは複数の結合化合物によって、上記モノクローナル抗体に結合してもよい。なお、上記標識を上記モノクローナル抗体に結合する技術は当業者にとって周知である。上記標識としての上記検出可能部分／作用物質は、好ましくは、酵素、補欠分子族、蛍光物質、発光物質、生物発光物質、放射性物質、陽電子放出金属、及び非放射性常磁性金属イオンからなる一群から選択される１つであるが、これに限定されない。
また、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルスにより発病する疾患の治療方法であって、インフルエンザＡ型ウイルスにより発病する疾患を罹患している対象に本発明のインフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体を投与する工程を含む治療方法を提供する。
本発明の治療方法では、上記インフルエンザＡ型ウイルスは、好ましくは、Ｈ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型からなる一群から選択される少なくとも１つである。上記Ｈ１亜型としてはＨ１Ｎ１亜型、Ｈ１Ｎ２亜型、Ｈ１Ｎ３亜型、Ｈ１Ｎ４亜型、Ｈ１Ｎ５亜型、Ｈ１Ｎ６亜型、Ｈ１Ｎ７亜型、Ｈ１Ｎ８亜型、及びＨ１Ｎ９亜型が挙げられ、上記Ｈ２亜型としてはＨ２Ｎ１亜型、Ｈ２Ｎ２亜型、Ｈ２Ｎ３亜型、Ｈ２Ｎ４亜型、Ｈ２Ｎ５亜型、Ｈ２Ｎ６亜型、Ｈ２Ｎ７亜型、Ｈ２Ｎ８亜型、及びＨ２Ｎ９亜型が挙げられ、上記Ｈ５亜型としてはＨ５Ｎ１亜型、Ｈ５Ｎ２亜型、Ｈ５Ｎ３亜型、Ｈ５Ｎ４亜型、Ｈ５Ｎ５亜型、Ｈ５Ｎ６亜型、Ｈ５Ｎ７亜型、Ｈ５Ｎ８亜型、及びＨ５Ｎ９亜型が挙げられる。
本発明の治療方法では、当業者に公知であって、インフルエンザＡ型ウイルスにより発病する疾患の任意の治療剤を本発明の上記モノクローナル抗体と一緒に投与してもよい。
本発明の治療方法では、上記インフルエンザＡ型ウイルスにより発病する疾患は、新種のインフルエンザ、パンデミックインフルエンザ、及び季節性インフルエンザからなる一群から選択される１つであってよいが、これに限定されない。
本発明の診断方法では、上記インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体の投与量を至適反応に応じて調節してもよい。例えば、上記インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体の投与量は、０．０１〜２００ｍｇ／ｋｇであり、好ましくは０．１〜１５０ｍｇ／ｋｇであり、より好ましくは１〜１００ｍｇ／ｋｇであるが、これに限定されない。上記範囲の投与量を小分けにしたものを日々投与してもよいし、上記範囲の投与量を個々の状況において求められる要件に比例して減少させてもよい。また、本発明に係る上記組成物を１回で投与してもよいし、１日の間に時間をおいて複数回に渡って投与してもよい。本発明では、投与の様態は限定されず、患者の主治医によって決定することができる。
本発明の治療法によれば、上記インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体の投与経路は、経口投与と非経口的投与とに分類することができる。好適な投与経路は静脈内投与法であるが、これに限定されない。
また、本発明は、インフルエンザＡ型ウイルスにより発病する疾患の予防方法であって、本発明のインフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体を対象に投与する工程を含む予防方法を提供する。
本発明の予防方法によれば、上記インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体は、当業者に公知である、インフルエンザＡ型ウイルスにより発病する疾患の任意の予防剤と併せて投与されてもよい。
本発明の予防方法によれば、上記インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体の投与量は、至適反応に応じて調節してもよい。例えば、上記インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体の投与量は、０．０１〜２００ｍｇ／ｋｇであり、好ましくは０．１〜１５０ｍｇ／ｋｇであり、より好ましくは１〜１００ｍｇ／ｋｇであるが、これに限定されない。上記投与量を幾つかに分けたものを日々投与してもよいし、または、上記投与量を、個別の状況において求められる要件に比例して減少させてもよい。本発明の組成物は、１回のみ投与してもよいし、１日の間に時間をおいて複数回投与してもよい。本発明の投与の様態は限定されず、患者の担当医によって決定されてもよい。
また、本発明は、患者のインフルエンザＡ型ウイルス感染を診断する診断方法であって、（１）本発明に係る抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体にサンプルを接触させる工程と、（２）上記抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体と上記サンプルとの間の反応を検出する工程とを含む診断方法を提供する。または、上記診断方法は、（１）本発明に係る診断用組成物にサンプルを接触させる工程と、（２）上記診断用組成物と上記サンプルとの間に生じる反応を検出する工程とを含んでもよい。
本発明に係る上記診断方法によれば、上記インフルエンザＡ型ウイルスは、Ｈ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型からなる一群から選択される１つまたは複数の亜型を含む。上記Ｈ１亜型としてはＨ１Ｎ１亜型、Ｈ１Ｎ２亜型、Ｈ１Ｎ３亜型、Ｈ１Ｎ４亜型、Ｈ１Ｎ５亜型、Ｈ１Ｎ６亜型、Ｈ１Ｎ７亜型、Ｈ１Ｎ８亜型、及びＨ１Ｎ９亜型が挙げられ、上記Ｈ２亜型としてはＨ２Ｎ１亜型、Ｈ２Ｎ２亜型、Ｈ２Ｎ３亜型、Ｈ２Ｎ４亜型、Ｈ２Ｎ５亜型、Ｈ２Ｎ６亜型、Ｈ２Ｎ７亜型、Ｈ２Ｎ８亜型、及びＨ２Ｎ９亜型が挙げられ、上記Ｈ５亜型としてはＨ５Ｎ１亜型、Ｈ５Ｎ２亜型、Ｈ５Ｎ３亜型、Ｈ５Ｎ４亜型、Ｈ５Ｎ５亜型、Ｈ５Ｎ６亜型、Ｈ５Ｎ７亜型、Ｈ５Ｎ８亜型、及びＨ５Ｎ９亜型が挙げられる。
本発明の診断方法では、本発明のモノクローナル抗体は、必要に応じて、診断及び検出用標識を当業者に公知の任意の方法を使用して結合してもよい。
本発明の診断方法では、上記サンプルは、好ましくは、粘液、唾液（ｓｐｉｔｔｌｅ）、血液、肺細胞、肺組織粘液、呼吸組織、及びサルビア（ｓａｌｖｉａ）からなる一群から選択される１つであるが、これに限定されない。上記サンプルを当業者に公知の任意の従来の方法に従って調整してもよい。
本発明の診断方法では、上記反応を検出する検出方法は、電波免疫検定法（ＲＩＡ）、ＥＬＩＳＡ法、免疫蛍光法、免疫組織化学、ＦＡＣＳ法、ＢＩＡＣＯＲＥ法、ウエスタンブロット分析法等の同質結合免疫検定法及び異質結合免疫検定法からなる一群から選択される１つであるが、これに限定されない。また、当業者に公知の任意の検出方法を使用してもよい。
また、本発明は、（１）本発明の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体と、（２）容器とを備えるインフルエンザＡ型ウイルス診断用キットを提供する。
さらに、本発明は、（１）本発明のインフルエンザＡ型ウイルス感染の診断用組成物と、（２）容器とを備えるインフルエンザＡ型ウイルス感染の診断用キットを提供する。
本発明に係る上記診断用キットによれば、上記インフルエンザＡ型ウイルスは、好ましくは、Ｈ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型からなる一群から選択される１つまたは複数の亜型を含む。上記Ｈ１亜型としてＨ１Ｎ１亜型、Ｈ１Ｎ２亜型、Ｈ１Ｎ３亜型、Ｈ１Ｎ４亜型、Ｈ１Ｎ５亜型、Ｈ１Ｎ６亜型、Ｈ１Ｎ７亜型、Ｈ１Ｎ８亜型、及びＨ１Ｎ９亜型が挙げられ、上記Ｈ２亜型としてＨ２Ｎ１亜型、Ｈ２Ｎ２亜型、Ｈ２Ｎ３亜型、Ｈ２Ｎ４亜型、Ｈ２Ｎ５亜型、Ｈ２Ｎ６亜型、Ｈ２Ｎ７亜型、Ｈ２Ｎ８亜型、及びＨ２Ｎ９亜型が挙げられ、上記Ｈ５亜型としてＨ５Ｎ１亜型、Ｈ５Ｎ２亜型、Ｈ５Ｎ３亜型、Ｈ５Ｎ４亜型、Ｈ５Ｎ５亜型、Ｈ５Ｎ６亜型、Ｈ５Ｎ７亜型、Ｈ５Ｎ８亜型、及びＨ５Ｎ９亜型が挙げられる。
本発明に係る上記診断用キットでは、上記容器（２）に固形担体が備えられている。よって、本発明の上記モノクローナル抗体を上記固形担体に付着してもよい。なお、上記固形担体は多孔質または無孔質であってよく、平面状または非平面状でよい。
（実施例１：インフルエンザから快復した患者の血液中のＰＢＭＣの単離）
新型インフルエンザ感染の確認から２〜４週間後の患者ボランティアを快復患者集団とした。上記患者ボランティアについては、血液中にインフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１亜型）が存在しないこと、及び、上記新型インフルエンザウイルスに対する抗体を含むことが確認された。なお、本実験は施設内倫理委員会（ＩＲＢ）の認可を受けて行われた。また、快復患者集団は以下の特徴（１）〜（４）を有していた：（１）季節性インフルエンザのワクチンを未投与であり；（２）他の感染性ウイルス（すなわち、ＨＢｓＡｇ）に対して陰性反応を示し、抗ＨＣＶ抗体及び抗ＨＩＶ抗体に対して陰性反応を示し；（３）血漿中のインフルエンザウイルスのＨ１Ｎ１亜型を対象とするＲＴ−ＰＣＲ法に対して陰性反応を示し；（４）上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１Ｎ１亜型の（単量体）ＨＡ（Ｈ１Ｎ１）を分析するＥＬＩＳＡ法における血清中の滴定濃度が１：１６０以上であった。上述の各患者から約１００ｍｌの全血を採取し、ｌｙｍｐｈｏｐｒｅｐ（商標）（Ａｘｉｓ−Ｓｈｉｅｌｄ社、ノルウェー、１１１４５４５）を使用して、採取した全血液中の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を単離した。このように単離したＰＢＭＣを、リン酸緩衝生理食塩水を使用して３回洗浄し、ＫＭ ｂａｎｋｅｒ ＩＩ寒剤（Ｃｏｓｍｏｂｉｏ社、日本、ＫＯＪ−１６０９２０１０）を使用して、２×１０７細胞／ｍｌの割合で懸濁し、液体窒素タンクに保存した。
新型インフルエンザ感染の確認から２〜４週間後の患者ボランティアを快復患者集団とした。上記患者ボランティアについては、血液中にインフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１亜型）が存在しないこと、及び、上記新型インフルエンザウイルスに対する抗体を含むことが確認された。なお、本実験は施設内倫理委員会（ＩＲＢ）の認可を受けて行われた。また、快復患者集団は以下の特徴（１）〜（４）を有していた：（１）季節性インフルエンザのワクチンを未投与であり；（２）他の感染性ウイルス（すなわち、ＨＢｓＡｇ）に対して陰性反応を示し、抗ＨＣＶ抗体及び抗ＨＩＶ抗体に対して陰性反応を示し；（３）血漿中のインフルエンザウイルスのＨ１Ｎ１亜型を対象とするＲＴ−ＰＣＲ法に対して陰性反応を示し；（４）上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１Ｎ１亜型の（単量体）ＨＡ（Ｈ１Ｎ１）を分析するＥＬＩＳＡ法における血清中の滴定濃度が１：１６０以上であった。上述の各患者から約１００ｍｌの全血を採取し、ｌｙｍｐｈｏｐｒｅｐ（商標）（Ａｘｉｓ−Ｓｈｉｅｌｄ社、ノルウェー、１１１４５４５）を使用して、採取した全血液中の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を単離した。このように単離したＰＢＭＣを、リン酸緩衝生理食塩水を使用して３回洗浄し、ＫＭ ｂａｎｋｅｒ ＩＩ寒剤（Ｃｏｓｍｏｂｉｏ社、日本、ＫＯＪ−１６０９２０１０）を使用して、２×１０７細胞／ｍｌの割合で懸濁し、液体窒素タンクに保存した。
（実施例２：モノクローナル抗体の一次スクリーニング）
Ｊｉｎ ｅｔ ａｌ.（Ｊｉｎ Ａ． ｅｔ ａｌ．， ２００９年．Ｎａｔ Ｍｅｄ．１５， １０８８−１０９２）に開示されている方法を使用して、抗原特異抗体を分泌しているＢ細胞をスクリーニングした。簡潔に説明すると、上記ＰＢＭＣを１細胞／ウェルの密度でマイクロアレイチップの各ウェルに添加した。その後、プリコートした抗ヒトＩｇＧ抗体を使用して、上記単細胞から分泌される抗体を確認した。このようにして一次スクリーニングした上記Ｂ細胞がＨＡ結合性抗体を分泌しているか否かについて、標識付けしたＨＡ抗原を使用して、酵素結合免疫スポット測定法（ＥＬＩＳＰＯＴ法；Ｓｅｄｇｗｉｃｋ Ｊ．Ｄ．，２００５年，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ．Ｖｏｌ．３０２， ｐｐ．３１４）によって確認した。そして、上記抗体を分泌している個々の細胞から得られた抗体の重鎖遺伝子及び軽鎖遺伝子の全配列を、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応法（ＲＴ−ＰＣＲ法）により取得した。次に、こうして得た重鎖ＤＮＡ及び軽鎖ＤＮＡをｐｃＤＮＡ ３．１(＋)発現ベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国、Ｖ７９０−２０）に挿入して、上記抗体の重鎖及び軽鎖のそれぞれを作製する発現ベクターを用意した。そして、用意した上記発現ベクターをＣＨＯ細胞へ同時遺伝子導入した。その後、このようにして形質転換させた上記ＣＨＯ細胞に由来する抗体を使用して、ＨＡに結合している８２種類の抗体を以下の実施例３に記載するＨＡ−ＥＬＩＳＡ法によって一次スクリーニングした。なお、上記抗体のうちＨＡに対して反応を示す全ての抗体を、上記抗体サンプルを連続希釈することなく一次スクリーニングした。
Ｊｉｎ ｅｔ ａｌ.（Ｊｉｎ Ａ． ｅｔ ａｌ．， ２００９年．Ｎａｔ Ｍｅｄ．１５， １０８８−１０９２）に開示されている方法を使用して、抗原特異抗体を分泌しているＢ細胞をスクリーニングした。簡潔に説明すると、上記ＰＢＭＣを１細胞／ウェルの密度でマイクロアレイチップの各ウェルに添加した。その後、プリコートした抗ヒトＩｇＧ抗体を使用して、上記単細胞から分泌される抗体を確認した。このようにして一次スクリーニングした上記Ｂ細胞がＨＡ結合性抗体を分泌しているか否かについて、標識付けしたＨＡ抗原を使用して、酵素結合免疫スポット測定法（ＥＬＩＳＰＯＴ法；Ｓｅｄｇｗｉｃｋ Ｊ．Ｄ．，２００５年，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ．Ｖｏｌ．３０２， ｐｐ．３１４）によって確認した。そして、上記抗体を分泌している個々の細胞から得られた抗体の重鎖遺伝子及び軽鎖遺伝子の全配列を、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応法（ＲＴ−ＰＣＲ法）により取得した。次に、こうして得た重鎖ＤＮＡ及び軽鎖ＤＮＡをｐｃＤＮＡ ３．１(＋)発現ベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国、Ｖ７９０−２０）に挿入して、上記抗体の重鎖及び軽鎖のそれぞれを作製する発現ベクターを用意した。そして、用意した上記発現ベクターをＣＨＯ細胞へ同時遺伝子導入した。その後、このようにして形質転換させた上記ＣＨＯ細胞に由来する抗体を使用して、ＨＡに結合している８２種類の抗体を以下の実施例３に記載するＨＡ−ＥＬＩＳＡ法によって一次スクリーニングした。なお、上記抗体のうちＨＡに対して反応を示す全ての抗体を、上記抗体サンプルを連続希釈することなく一次スクリーニングした。
（実施例３：モノクローナル抗体とその生成物との二次スクリーニング）
一次スクリーニングを行った上記８２種類の抗体から得られる組み換えＨＡに対して高い結合親和力を有するモノクローナル抗体を二次スクリーニングするために、単量体ＨＡと三量体ＨＡとを使用したＨＡ−ＥＬＩＳＡを行った。なお、インフルエンザＡ型ウイルス（Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０４／２００９）からの組み換え単量体ＨＡ（１１０５５−Ｖ０８Ｈ）はＳｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ社（中国）から購入した。この組み換え単量体ＨＡは、Ｃ末端において１０個のポリヒスチジン残基を含み、トランスフェクトしたヒト細胞に由来するＨＡの細胞外ドメイン（ｍｅｔ１−ｇｌｎ５２９）から構成される。組み換え三量体ＨＡについては、ＩＲＲ（Ｉｎｆｌｕｅｎｚａ Ｒｅａｇｅｎｔ Ｒｅｓｏｕｒｃｅ、米国）から提供されたもの（ＦＲ−１８０）を使用した。Ｈ１Ｎ１（Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０４／２００９）から得た上記三量体ＨＡは、上記Ｃ末端においてトロンビン切断部位を含み、三量化領域（フォルドン）と６つのヒスチジン残基とを含み、バキュロウイルス系を使用して作製した。
一次スクリーニングを行った上記８２種類の抗体から得られる組み換えＨＡに対して高い結合親和力を有するモノクローナル抗体を二次スクリーニングするために、単量体ＨＡと三量体ＨＡとを使用したＨＡ−ＥＬＩＳＡを行った。なお、インフルエンザＡ型ウイルス（Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０４／２００９）からの組み換え単量体ＨＡ（１１０５５−Ｖ０８Ｈ）はＳｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ社（中国）から購入した。この組み換え単量体ＨＡは、Ｃ末端において１０個のポリヒスチジン残基を含み、トランスフェクトしたヒト細胞に由来するＨＡの細胞外ドメイン（ｍｅｔ１−ｇｌｎ５２９）から構成される。組み換え三量体ＨＡについては、ＩＲＲ（Ｉｎｆｌｕｅｎｚａ Ｒｅａｇｅｎｔ Ｒｅｓｏｕｒｃｅ、米国）から提供されたもの（ＦＲ−１８０）を使用した。Ｈ１Ｎ１（Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０４／２００９）から得た上記三量体ＨＡは、上記Ｃ末端においてトロンビン切断部位を含み、三量化領域（フォルドン）と６つのヒスチジン残基とを含み、バキュロウイルス系を使用して作製した。
上記抗体の上記ＨＡ抗原に対する反応性は、上記ＨＡと上記抗体とを使用したＥＬＩＳＡ法によって測定した。詳しくは、まず、９６−ウェルマイクロタイタープレート（Ｎｕｎｃ社、デンマーク、４４９８２４）の各ウェルに各単量体ＨＡまたは各三量体ＨＡを５０μｌずつ塗布（２５０ｎｇ／ｍｌ）した。そして、１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むリン酸緩衝生理食塩水（Ｔｅｋｎｏｖａ社、米国、Ｄ５１２０）を使用して、上記９６−ウェルマイクロタイタープレートをブロックし、３倍に連続希釈した抗体サンプル（開始濃度：１μｇ／ｍｌ）を上記プレートの各ウェルに供給した。次に、上記プレートを室温で１時間培養し、その後、ペルオキシダーゼ標識化ヤギ抗ヒト性ガンマ抗体（Ｚｙｍｅｄ社、米国、６２．８４２０）を使用して処理した。室温で１時間培養した後、テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ；Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社、米国、Ｔ０４４０）を使用して上記プレートを培養し、１ Ｎ ＨＣｌを添加して培養を中止した。その後、プレートリーダ（Ｓｐｅｃｔｒａｍａｘ ｐｌｕｓ ３８４, Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅ）を使用して４５０／５７０ｎｍの吸光度を測定し、抗原−抗体の反応性をＧｒａｐｈｐａｄ ｐｒｉｓｍ ｐｒｏｇｒａｍ（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ社、米国）を使用して図示した。
図１に示すように、上記ＣＴ１０９抗体と、上記ＣＴ１１１−１と、上記ＣＴ１５４−２抗体との何れもが上記三量体ＨＡ及び上記単量体ＨＡに対して高い結合活性を示したが、上記単量体ＨＡに対する結合活性は上記三量体ＨＡに対する結合活性よりも低かった。
一方、上記ＣＴ１０４抗体と、上記１２０抗体と、上記ＣＴ１２３抗体との何れもが上記三量体ＨＡに対しては高い結合活性を示したが、上記単量体ＨＡに対しては低い結合活性を示すか、あるいは結合活性を示さなかった（図２）。他の抗体（ＣＴ１３７抗体、ＣＴ１５１抗体、ＣＴ１６５抗体）に関しては、上記三量体ＨＡと上記単量体ＨＡとのどちらの抗原に対しても低い結合活性を示すのみか、または結合活性を示さなかった（図３）。
図１から３に示す結果に基づいて、上記一次スクリーニングにより選択された上記８２種類の抗体から、上記三量体ＨＡに対して高い結合活性を示す３５種類の抗体を二次選択した。ＭＮ試験において、上記モノクローナル抗体の結合活性を定量化し、上記モノクローナル抗体の数を絞るために、二次選択した上記抗体の発現レベルを増大させることが必要であった。したがって、以下の方法により、上記抗体の遺伝子を上記ｃＤＮＡベクターから再クローン化して、Ｃｅｌｌｔｒｉｏｎ社によって作製及び権利化されたＭａｒＥｘ発現ベクターを作製した。再クローニング後、上記抗体の遺伝子を含む上記ＭａｒＥｘ発現ベクターを使用して、ＭＮ試験及びＨＩ試験に必要な抗体を作製した。
上記二次選択した上記３５種類の抗体の重鎖遺伝子と軽鎖遺伝子とのそれぞれを含む原ｐｃＤＮＡを制限酵素Ｎｈｅ Ｉ及びＰｍｅ Ｉを使用して処理し、重鎖及び軽鎖を分離する。その後、得られた重鎖の遺伝子と軽鎖の遺伝子とを、上記制限酵素Ｎｈｅ Ｉ及びＰｍｅ Ｉを使用して予め処理を行っていたｐＣＴ１４５ベクターとｐＣＴ１４７ベクターとにそれぞれ挿入した。なお、上記ｐＣＴ１４５ベクター及び上記ｐＣＴ１４７ベクターは、それぞれ、上記重鎖発現ベクター及び上記軽鎖ベクター（図４）を作製するために、Ｃｅｌｌｔｒｉｏｎ社によって作製されたものである。次に、重鎖転写ユニット（プロモーター重鎖遺伝子ポリＡ）と軽鎖転写ユニット（プロモーター軽鎖遺伝子ポリＡ）とを含む発現ベクターを作製するために、上記重鎖遺伝子を含む上記ｐＣＴ１４５ベクターを上記制限酵素Ｐａｃ ＩとＡｓｃ Ｉとを使用して処理し、重鎖転写ユニットを分離し、その後、上記軽鎖遺伝子を含む上記ｐＣＴ１４７ベクターを上記制限酵素と同じ制限酵素を使用して処理し、分離した上記重鎖転写ユニットを挿入した。そして、上記重鎖転写ユニットと上記軽鎖転写ユニットとを含むベクターに対して、上記制限酵素を使用してスクリーニングを行った（図５）。スクリーニングを行った上記ベクターを、Ｅｎｄｏｆｒｅｅ ｐｌａｓｍｉｄ ｍａｘｉ ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社、ドイツ、１２３６２）を使用して抽出し、このベクターのサンプルの一部を使用してヌクレオチド配列を分析し、上記抗体のヌクレオチド配列を決定した。
次に、上記抽出した抗体のＤＮＡをＦ２Ｎ細胞系（Ｃｅｌｌｔｒｉｏｎ社、韓国）の懸濁細胞に導入し、一過的にモノクローナル抗体を作製した。実施例３では、上記ＤＮＡの導入を以下の方法で行った。ｃａｔｉｏｎｉｃ ｐｏｌｙｍｅｒ ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（商標） Ｍａｘ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国、１６４４７−１００）を製造者のマニュアルに従って使用して、プラスミドＤＮＡの上記細胞への導入を行った。上記導入の前日に、無血清培地ＥＸ−ＣＥＬＬ ２９３（ＳＡＦＣ， ＬＩＫ, １４５７１Ｃ；以下、“ＥＸ−ＣＥＬＬ ２９３培地”と称す）を使用して培養した上記Ｆ２Ｎ細胞を遠心分離機で分離し、細胞濃度が１×１０６細胞／ｍｌとなるように修飾ＥＸ−ＣＥＬＬ ２９３培地（ＳＡＦＣ， ＬＩＫ， ６５２３７；（注文生産））中に懸濁した。そして、容量が２５０ｍｌの三角フラスコ内に８０ｍｌの上記細胞の懸濁液、または、容量が１ｌの三角フラスコ内に２００ｍｌの上記細胞の懸濁液を播種した。上記導入の当日に、８０ｍｌの上記細胞の懸濁液を播種した場合、モノクローナル抗体をエンコードする各ＤＮＡと１００μｌのＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（商標）Ｍａｘ試薬とを体積が１．６ｍｌとなるようにＯｐｔｉＰＲＯ ＳＦＭ ＩＩ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、米国、１２３０９）を使用して希釈し、穏やかに攪拌した。一方、２００ｍｌの上記細胞の懸濁液を播種した場合、２５０μｇのＤＮＡと２５０μｇのＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（商標）Ｍａｘ試薬とを体積が４ｍｌとなるようにＯｐｔｉＰＲＯ ＳＦＭ ＩＩ培地を使用して希釈し、穏やかに攪拌した。攪拌の処理の直後に、上記ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（商標）Ｍａｘ試薬を希釈した溶液と上記ＤＮＡを希釈した溶液とを混合し、この混合溶液を室温で１０分間培養した。室温で１９分間の培養処理中、播種した上記Ｆ２Ｎ細胞を０．８×１０６の細胞濃度となるように、新品の修飾ＥＸ−ＣＥＬＬ ２９３培地を使用して希釈した。上記培養を１９分間行った後、上記ＤＮＡと上記とＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（商標）Ｍａｘ試薬を含む上記混合溶液を、トランスフェクション用に調整した上記Ｆ２Ｎ培養細胞に添加した。上記導入を行った翌日、上記量と同じ量のＥＸ−ＣＥＬＬ ２９３培地を、導入後の上記Ｆ２Ｎ培養細胞に添加し、その後、上記Ｆ２Ｎ培養細胞を７〜８日培養し、モノクローナル抗体作製した。
（実施例４： ウイルスに対するインビトロ中和活性の検討）
３５種類のモノクローナル抗体をスクリーニングすることによって、ＨＡ−ＥＬＩＳＡにおいて三量体ＨＡに対する高い結合親和力を示した１１種類の抗体を選択した。そして、これら１１種類の抗体の、多様のインフルエンザウイルスに対する中和活性を検討するために、ＭＮ試験を実施した。
３５種類のモノクローナル抗体をスクリーニングすることによって、ＨＡ−ＥＬＩＳＡにおいて三量体ＨＡに対する高い結合親和力を示した１１種類の抗体を選択した。そして、これら１１種類の抗体の、多様のインフルエンザウイルスに対する中和活性を検討するために、ＭＮ試験を実施した。
＜実施例４−１： ＭＤＣＫ細胞系の培養及びウイルス濃度の決定＞
メイディン・ダービー・イヌ腎臓細胞（ＭＤＣＫ）細胞系として、Ｌｏｎｄｏｎ細胞系（ＭＤＣＫ−Ｌ）を使用した。このＭＤＣＫ細胞系を、１０％のＦＢＳ（Ａｔｌａｓ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社、米国、Ｆ０５００Ａ）、１×ペニシリン／ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ社、米国、１５１４０）、２５ｍＭのＨＥＰＥＳ（Ｇｉｂｃｏ社、米国、１５６３０）、及び、２ｍＭのＬ−グルタミン（Ｇｉｂｃｏ社、米国、２５０３０）を含むＤＭＥＭ培地（Ｇｉｂｃｏ社、米国、１１９６５）を用いて、加湿器付き５％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で培養した。
メイディン・ダービー・イヌ腎臓細胞（ＭＤＣＫ）細胞系として、Ｌｏｎｄｏｎ細胞系（ＭＤＣＫ−Ｌ）を使用した。このＭＤＣＫ細胞系を、１０％のＦＢＳ（Ａｔｌａｓ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社、米国、Ｆ０５００Ａ）、１×ペニシリン／ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ社、米国、１５１４０）、２５ｍＭのＨＥＰＥＳ（Ｇｉｂｃｏ社、米国、１５６３０）、及び、２ｍＭのＬ−グルタミン（Ｇｉｂｃｏ社、米国、２５０３０）を含むＤＭＥＭ培地（Ｇｉｂｃｏ社、米国、１１９６５）を用いて、加湿器付き５％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で培養した。
そして、組織培養感染量（ＴＣＩＤ５０）を決定するために、ウイルス濃度をＥＬＩＳＡにより定量化した。ウイルス濃度の決定は、以下のように実施した。最初に、ウイルス希釈液［ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ社、米国）、３％のＢＳＡ（Ｇｉｂｃｏ社、米国、１５２６０）、１×ペニシリン／ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ社、米国）、及び、２５ｍＭのＨＥＰＥＳ（Ｇｉｂｃｏ社、米国）］を用いて、ウイルスのストックを１０倍に段階希釈した。次に、希釈後のウイルス１００μｌを、９６個のウェルを含むプレートの各ウェルに添加した。負のコントロールとして、ウイルスを含有しないウイルス希釈液を使用した。そして、培養していた上記ＭＤＣＫ細胞系をトリプシンで処理した後に上記培養用インキュベーターから取り出し、取り出したＭＤＣＫ細胞系を、トリプシンを中和するためにＭＤＣＫ培地で処理した。次に、細胞ペレットをリン酸緩衝食塩水で２回洗浄した後に、ウイルス希釈液で細胞濃度が５×１０５個／ｍｌになるまで希釈した。３〜４μｇ／ｍｌのＴＰＣＫトリプシン（Ｓｉｇｍａ社、米国）を、上記ウイルスを含む９６個のウェルを含むプレートに添加した後、ただちに１００μｌのＭＤＣＫ細胞系をプレートの各ウェルに添加し、さらに、加湿器付き５％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で２０時間のインキュベーションを実施した。インキュベーション後のプレートをリン酸緩衝食塩水で１回洗浄し、そして、プレートの各ウェルに、低温アセトンとリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）（８０：２０）との混液を２００μｌ添加した。次に、各細胞を８分間固定し、そして、プレートを室温で２０分間乾燥させた。２００μｌのリン酸緩衝食塩水をプレートの各ウェルに添加して、各ウェルを２回洗浄した。プレートの各ウェルに、１％のＢＳＡを含むリン酸緩衝食塩水で２，０００倍に希釈したビオチン化抗核タンパク質（ＮＰ）モノクローナル抗体（Ｍｉｌｉｐｏｒｅ社、米国、ＭＡＢ８２５７Ｂ）を１００μｌ添加し、室温で１時間インキュベーションした。プレートを各ウェル当たり２００μｌのリン酸緩衝食塩水で３回洗浄した。その後、ストレプトアビジン／ＨＲＰ結合型抗体を、１％のＢＳＡを含むリン酸緩衝食塩水で２０，０００倍に希釈した。そして、プレートの各ウェルに、この抗体希釈物１００μｌを添加して、室内圧力で１時間のインキュベーションを行った。プレートをリン酸緩衝食塩水で４回洗浄した後に、１００μｌのＯＰＤ溶液（Ｓｉｇｍａ社、米国、Ｐ８２８７）を各ウェルに添加し、プレートを室温で１０分間現像した。このプレートを各ウェル当たり５０μｌの３ＭのＨＣｌで処理し、発色現像を停止させた。次に、各ウェルのＯＤ４９０を測定した。測定したＯＤ４９０に基づいて、ＴＣＩＤ５０をＲｅｅｄ ＆ Ｍｕｅｎｃｈの方法（Ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ １９３８）によって算出した。
＜実施例４−２： ＭＮアッセイ＞
ウイルス希釈液を用いて、各抗体を１０μｇ／ｍｌの濃度まで希釈した。この初濃度から、ウイルス希釈液を用いて、抗体希釈物２倍に段階希釈した。次に、９６個のウェルを含むプレートの各ウェルに、段階希釈した希釈物を５０μｌ添加した。また、上記プレートの各ウェルに、５０μｌのウイルスを１００ＴＣＩＤ５０に対応する濃度で添加し、加湿器付き５％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で１時間インキュベーションした。次に、３〜４μｇ／ｍｌのＴＰＣＫトリプシン（Ｓｉｇｍａ社、米国、Ｔ１４２６）を各ウェルに添加し、さらに、１００μｌの処理済みＭＤＣＫ細胞を各ウェルに添加した後に、加湿器付き５％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で２０時間インキュベーションした。そして、実施例４−１で説明したウイルス定量化法と同じ方法でＭＮアッセイを実施し、こうして各ウェルのＯＤ４９０値を決定した。上記細胞だけを導入したウェルに比べて高いＯＤ４９０値を示したウェルが、ウイルスに感染したと判定した。ウイルス抗原を検出しなかった各抗体について、ＯＤ４９０値のうち、その抗体の最低濃度（μｇ／ｍｌ）を表１に示す。なお、抗体の濃度が低いことは、ウイルスに対する中和活性が高いことを意味している。
ウイルス希釈液を用いて、各抗体を１０μｇ／ｍｌの濃度まで希釈した。この初濃度から、ウイルス希釈液を用いて、抗体希釈物２倍に段階希釈した。次に、９６個のウェルを含むプレートの各ウェルに、段階希釈した希釈物を５０μｌ添加した。また、上記プレートの各ウェルに、５０μｌのウイルスを１００ＴＣＩＤ５０に対応する濃度で添加し、加湿器付き５％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で１時間インキュベーションした。次に、３〜４μｇ／ｍｌのＴＰＣＫトリプシン（Ｓｉｇｍａ社、米国、Ｔ１４２６）を各ウェルに添加し、さらに、１００μｌの処理済みＭＤＣＫ細胞を各ウェルに添加した後に、加湿器付き５％ＣＯ２インキュベーターにおいて３７℃で２０時間インキュベーションした。そして、実施例４−１で説明したウイルス定量化法と同じ方法でＭＮアッセイを実施し、こうして各ウェルのＯＤ４９０値を決定した。上記細胞だけを導入したウェルに比べて高いＯＤ４９０値を示したウェルが、ウイルスに感染したと判定した。ウイルス抗原を検出しなかった各抗体について、ＯＤ４９０値のうち、その抗体の最低濃度（μｇ／ｍｌ）を表１に示す。なお、抗体の濃度が低いことは、ウイルスに対する中和活性が高いことを意味している。
Ｈ１、Ｈ２、Ｈ３、及び、Ｈ５亜型のインフルエンザウイルスに対する抗体となり得る１１種類の候補について行ったＭＮアッセイの結果から分かるように、ＣＴ１０４は、低濃度（０．３１３〜０．６２５μｇ／ｍｌ）では２つのパンデミックＨ１Ｎ１亜型のウイルス（Ａ／Ｔｅｘａｓ／０５／２００９及びＡ／Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ／１８／２００９）ならびに２つの季節性Ｈ１Ｎ１亜型のウイルス（Ａ／Ｓｏｌｏｍｏｎ Ｉｓｌａｎｄｓ／３／２００６及びＡ／Ｏｈｉｏ／８３）に対して中和活性を示した。また、ＣＴ１０４は、２種類のＨ５Ｎ１亜型のウイルス（Ａ／Ｖｉｅｔｎａｍ／１２０３／０４及びＡ／Ａｎｈｕｉ／１／０５）を、それぞれ１．２５μｇ／ｍｌ及び０．６２５μｇ／ｍｌの濃度で中和した。ただし、このＣＴ１０４抗体は、Ｈ２Ｎ２亜型のウイルス（Ａ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／６／６０ｃａ）及びＨ３Ｎ２亜型のウイルス（Ａ／Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ／６７／２００５）に対しては中和活性を示さなかった。ＣＴ１２３は、試験を行った４種類のＨ１Ｎ１亜型のウイルスに対してのみ、中和活性を示した。特に、ＣＴ１２０抗体は、４種類のＨ１Ｎ１亜型のインフルエンザウイルス、１種類のＨ２Ｎ２インフルエンザ亜型のインフルエンザウイルス（Ａ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／６／６０ｃａ）、及び、２種類のＨ５Ｎ１亜型のインフルエンザウイルスに対して、高い中和活性を示した。ただし、ここに記載した各抗体は、Ｈ３クレイドに属するＨ３Ｎ２亜型に対しては中和活性を示さなかった。
ウイルスに対する中和活性を持つ、スクリーニング後の３種類の抗体のＩＣ５０値を測定及び比較した。測定結果を下の表２に示す。ここで、ＩＣ５０値とは、抗体がウイルスに対する最大中和活性の５０％の中和活性を示す抗体濃度であり、ＩＣ５０の値が低いほど抗体の中和活性が高いことを意味する。
上の表２から分かるように、表中の３種類の抗体は、ＩＣ５０値が非常に低く、したがって、表２に示す２種類のウイルスに対して高い中和活性を持っている。
（実施例５： ウイルスによって引き起こされる血球凝集反応に対して抗体が持つ阻害能力の検討）
６個のウェルを含むＶ字底部型プレートで、抗体を２倍に段階希釈した後、４倍のＨＡ単位のウイルスを抗体に添加及び混合した。次に、このプレートを室温で３０分間インキュベーションし、その後、１％のトリの赤血球をプレートの各ウェルに添加した。赤血球凝集阻止のエンドポイントを、血球凝集反応が観察されない抗体濃度の最低値として決定した。
６個のウェルを含むＶ字底部型プレートで、抗体を２倍に段階希釈した後、４倍のＨＡ単位のウイルスを抗体に添加及び混合した。次に、このプレートを室温で３０分間インキュベーションし、その後、１％のトリの赤血球をプレートの各ウェルに添加した。赤血球凝集阻止のエンドポイントを、血球凝集反応が観察されない抗体濃度の最低値として決定した。
この結果、試験を行ったどの抗体も、２種類のパンデミックＨ１Ｎ１亜型のウイルス（Ａ／Ｔｅｘａｓ／０５／２００９−ＲＧ１５及びＡ／Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ／１８／２００９−ＲＧ１８）に対して、高濃度（＞２０μｇ／ｍｌ）においても血球凝集を阻害しなかった（表３）。
（実施例６： 動物実験による、抗体のインフルエンザウイルス感染に対する予防効果及び治療効果の検討）
＜実施例６−１： マウスの生存実験＞
上記実施例においてスクリーニングしたＣＴ１０４、ＣＴ１２０、及び、ＣＴ１２３抗体が、マウスにおいてＨ１Ｎ１及びＨ５Ｎ１亜型のウイルスに対して予防効果及び治療効果を含むかどうかを検討するために、以下の実験を実施した。
＜実施例６−１： マウスの生存実験＞
上記実施例においてスクリーニングしたＣＴ１０４、ＣＴ１２０、及び、ＣＴ１２３抗体が、マウスにおいてＨ１Ｎ１及びＨ５Ｎ１亜型のウイルスに対して予防効果及び治療効果を含むかどうかを検討するために、以下の実験を実施した。
５匹のマウスからなる各個体群を、１０×ＬＤ５０のウイルスに経鼻的に感染させた。上記３つのスクリーニング済み抗体（ＣＴ−１０４、ＣＴ−１２０、及び、ＣＴ１２３）、及び、負のコントロール抗体（ＣＴ−Ｐ６）を、それぞれ、マウス１ｋｇ当たり１０ｍｇの量で、ウイルス感染の２４時間前、及び、ウイルス感染から４８時間後に腹腔注射によってマウスに投与した。
実験結果を図６に示す。図６に示すように、１０×ＬＤ５０のＨ５Ｎ１亜型のウイルス（Ａ／Ｖｉｅｔｎａｍ／１２０３／２００４）に感染させる２４時間前に、ＣＴ−１０４またはＣＴ−１２０をマウスに注射した場合には、全てのマウスが生存した。その一方で、マウスをＣＴ−１２３で処置した場合には、１２日後に２０％のマウスが死亡した。ネガティブコントロール抗体（ＣＴ−Ｐ６）の場合、コントロール抗体を注射したマウスが全て７日後に死亡した（図６Ａ）。抗体の治療効果検討するためにウイルス感染から２日後に上記抗体を注射した場合、ＣＴ−１０４及びＣＴ−１２０を注射したマウスは全て最長１４日（観察期間の最後の日）まで生存したが、ネガティブコントロール抗体（ＣＴ−Ｐ６）またはＣＴ−１２３を注射したマウスは、全て死亡した（図６Ｂ）。
抗体の予防効果を検討するためにパンデミックＨ１Ｎ１亜型のウイルス（Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０７／２００９）に感染させる２４時間前に抗体を注射した場合、ＣＴ−１２０及びＣＴ−１２３を注射したマウスは全て最長１４日（観察期間の最後の日）まで生存した。また、ＣＴ−１０４を注射したマウスは８０％が生存したが、ネガティブコントロール抗体（ＣＴ−Ｐ６）を注射したマウスは全て死亡した（図６Ｃ）。
さらに、季節性Ｈ１Ｎ１亜型のウイルス（Ａ／ｐｕｅｒｔｏ Ｒｉｃｏ／８／１９３４）に感染させる２４時間前にＣＴ−１０４またはＣＴ−１２３を投与したマウスは、全て観察期間中生存した。また、ＣＴ−１２０を投与したマウスは８０％の生存率を示したが、ネガティブコントロール抗体（ＣＴ−Ｐ６抗体）を注射したマウスは全て死亡した（図６Ｄ）。
＜実施例６−２： フェレット実験＞
治療上の利点について調べるために、上記のように選択したＣＴ１２０について、フェレットの動物モデルに対して試験を行った。なお、フェレットの動物モデルは、インフルエンザウイルスに対してヒトと類似の感受性及び症状を示す。
治療上の利点について調べるために、上記のように選択したＣＴ１２０について、フェレットの動物モデルに対して試験を行った。なお、フェレットの動物モデルは、インフルエンザウイルスに対してヒトと類似の感受性及び症状を示す。
各試験群は９匹のフェレットから構成したが、ネガティブコントロール群には、ウイルス感染症の初濃度を測定するために、４匹のフェレットを追加した。フェレットに対して、１ｍｌの（１×１０６ ＥＩＤ５０／ｍｌ）インフルエンザウイルス（Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０４／０９（Ｈ１Ｎ１））を、順化後に経鼻的または経気管的に接種した。ウイルス接種から２４時間後に、ＣＴ１２０を１回静脈注射した。試験群１には１５ｍｇ／ｋｇのＣＴ１２０を注射し、試験群２には３０ｍｇ／ｋｇのＣＴ１２０を注射した。試験群３については、３０ｍｇ／ｋｇのＣＴ１２０を３日間のあいだ２４時間ごとに注射した。ネガティブコントロール群については、ウイルス接種から２４時間後に、３０ｍｇ／ｋｇのＣＴ−Ｐ６抗体を１回静脈注射した。
各試験群のそれぞれのフェレットの鼻洗浄液を、ウイルス接種から１、３、５、及び、８日後に収集し、受精卵を用いて収集したサンプル中のウイルス濃度を測定した。各試験群の３匹のフェレットをウイルス接種から１、３、５、及び、８日後に屠殺し、取り出した肺組織におけるウイルス濃度を、受精卵を用いて測定した。
ホモジナイザーを用いて、抗生物質（肺組織１ｇ当たり１ｍｌ）を含むＰＢＳ中で各肺組織を粉砕し、遠心分離後に上清を分離した。
鼻洗浄液を、それぞれ、抗生物質を含む１ｍｌのＰＢＳを用いて収集し、遠心分離後に上清を分離し、ウイルス濃度を測定した。肺組織のホモジネートまたは鼻洗浄液のいずれかの上清を、抗生物質を含むＰＢＳで１０倍に段階希釈し、この希釈後の上清を１０〜１３日の日齢の受精卵に対して接種した。４８時間インキュベーションした受精卵から得た尿膜腔液（５０μｌ）と、同体積の０．５％の赤血球（シチメンチョウ）との混合物を３０分間インキュベーションした後に、血液を凝集させることによって、ウイルスを滴定した。
鼻洗浄液におけるウイルス力価は、コントロール群においては、接種から５日後まで高い（＞ｌｏｇ１０ ４ ＥＩＤ０／ｍｌ）状態が続いた後に低下した。その一方で、ＣＴ１２０を注射した個体群においては、ウイルス力価が大幅に低下し、接種から８日後にはウイルスが検出されなかった（図７）。このように、ＣＴ１２０で処置した個体群においては、コントロール群に比べて急速なウイルス排除が観察された。特に、試験群３において最初の３日間は毎日抗体を注射した場合に、ウイルスがさらに大幅に抑制された。
肺組織におけるウイルス力価は、コントロール群においては、感染から５日後まで高い（＞ｌｏｇ４．５ ＥＩＤ５０／ｍｌ）状態が続いた後に低下した。その一方で、ＣＴ１２０を注射した個体群においては、ウイルス力価が著しく低下した。感染から８日後には、ウイルスが検出されなかった（図８）。特に、フェレット実験は、試験群２及び３においてウイルスがさらに大幅に抑制されることを示している。これらの結果は、３０ｍｇ／ｋｇのＣＴ１２０を投与すれば、１５ｍｇ／ｋｇの投与量に比べてより効果的にウイルスの増殖を抑制できることを実証している。
Claims (21)
- 以下のモノクローナル抗体、
配列番号１に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号４に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号５に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号６に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；
配列番号７に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号８に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号９に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１０に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１１に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体；及び
配列番号１２に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号２に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１３に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号１４に示す配列を含むＣＤＲ１領域、配列番号１５に示す配列を含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１６に示す配列を含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含むモノクローナル抗体、
からなる一群から選択される、抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体。 - 配列番号３６に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と、配列番号３７に示すポリペプチド配列を含む重鎖と、を含む、請求項１に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型及びＨ５亜型に対し中和活性を有する、請求項２に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 配列番号４０に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と、配列番号４１に示すポリペプチド配列を含む重鎖と、を含む請求項１に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型に対し中和活性を有する、請求項４に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 配列番号４４に示すポリペプチド配列を含む軽鎖と、配列番号４５に示すポリペプチド配列を含む重鎖と、を含む、請求項１に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型に対し中和活性を有する、請求項６に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 以下のモノクローナル抗体、
配列番号１７に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ１領域、配列番号１８に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ２領域、及び配列番号１９に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号２０に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ１領域、配列番号２１に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２２に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含む、モノクローナル抗体；
配列番号２３に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ１領域、配列番号１８に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２４に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号２５に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ１領域、配列番号２６に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ２領域、及び配列番号２７に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含む、モノクローナル抗体；及び
配列番号２８に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ１領域、配列番号２９に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３０に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ３領域を含む軽鎖と、配列番号３１に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ１領域、配列番号３２に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ２領域、及び配列番号３３に示す配列によってコードされるポリペプチドを含むＣＤＲ３領域を含む重鎖と、を含む、モノクローナル抗体、
からなる一群から選択される、抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体、並びにその断片及び機能変異体。 - 配列番号３４に示すポリヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドを含む軽鎖と、配列番号３５に示すポリヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドを含む重鎖と、を含む、請求項８に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型及びＨ５亜型に対し中和活性を有する、請求項９に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 配列番号３８に示すポリヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドを含む軽鎖と、配列番号３９に示すポリヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドを含む重鎖と、を含む、請求項８に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型、Ｈ２亜型、及びＨ５亜型に対し中和活性を有する、請求項１１に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 配列番号４２に示すポリヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドを含む軽鎖と、配列番号４３に示すポリヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドを含む重鎖と、を含む、請求項８に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 上記インフルエンザＡ型ウイルスのＨ１亜型に対し中和活性を有する、請求項１３に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体。
- 請求項１に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体をエンコードする、単離核酸分子。
- 請求項１５に記載の単離核酸分子が挿入された、発現ベクター。
- 請求項１６に記載の発現ベクターを宿主細胞にトランスフェクトした、抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体作製用の細胞系。
- 請求項１または８に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体を含む、組成物。
- インフルエンザＡ型ウイルスによって発病する疾患の予防及び治療用の組成物であって、請求項１または８に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体を含む、組成物。
- インフルエンザＡ型ウイルスの診断用の組成物であって、
結合体を含み、この結合体は、請求項１または８に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体と会合する標識を含む、組成物。 - （１）請求項１または８に記載の抗インフルエンザＡ型ウイルスモノクローナル抗体と、
（２）容器と、を備えた、インフルエンザＡ型ウイルス診断用キット。
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