JP5677097B2 - セロビオース２−エピメラーゼとその製造方法並びに用途 - Google Patents

Description

本発明は、新規セロビオース２−エピメラーゼとその製造方法並びに用途に関し、詳細には、２−エピマー化反応のみならずアルドース−ケトース変換反応をも触媒するセロビオース２−エピメラーゼとその製造方法、当該酵素をコードするＤＮＡとこれを含んでなる組換えＤＮＡと形質転換体、さらには当該酵素を用いた異性化糖の製造方法に関するものである。

異性化酵素（イソメラーゼ）は異性体間の変換を触媒する酵素の総称であり、エンザイム・ノメンクレイチャー（Ｅｎｚｙｍｅ Ｎｏｍｅｎｃｌａｔｕｒｅ、アメリカ合衆国、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ. Ｉｎｃ．１９９２年）によると、（１）光学異性化を触媒するラセマーゼ、エピメラーゼを含むＥＣ５．１群；（２）シス−トランス幾何異性体間の変換を触媒するＥＣ５．２群；（３）アルドース−ケトース変換、ケト−エノール互変異性、分子内で二重結合の位置の移動を触媒するＥＣ５．３群；（４）分子内基転位を触媒し構造異性体を生成するＥＣ５．４群；（５）分子内リアーゼ反応を触媒するＥＣ５．５群；及び（６）他の異性化反応を触媒するＥＣ５．９９群の６群に分類されている。これら異性化酵素の内、中性糖の異性化を触媒する異性化酵素としては、例えば、Ｄ−キシロースとＤ−キシルロース、Ｄ−グルコースとＤ−フラクトースの相互変換（アルドース−ケトース変換）を触媒するキシロースイソメラーゼ（ＥＣ ５．３．１．５）、アルドースのα、βアノマーの相互変換を触媒するアルドース１−エピメラーゼ（ＥＣ ５．１．３．３）、種々のケトペントース及びケトヘキソースの３位をエピマー化し、それぞれに対応するエピマーに変換するケトース３−エピメラーゼ（特開平６−１２５７７６号公報、国際公開番号 ＷＯ ２００７／０５８０８６号パンフレットなどを参照）などがよく知られており、それぞれ工業的な異性化糖の製造、糖の定量、希少糖質の調製などに幅広く利用されている。

一方、タイラー（Ｔｙｌｅｒ）ら、アーカイブス・オブ・バイオケミストリー・アンド・バイオフィジックス（Ａｒｃｈｉｖｅｓ ｏｆ ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ ｂｉｏｐｈｙｓｉｃｓ）、第１１９巻、３６３乃至３６７頁（１９６７年）には、嫌気性菌ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）が産生する、セロビオースの還元末端グルコースの２位をエピマー化してエピセロビオース（４−Ｏ−β−Ｄ−グルコシルＤ−マンノース）に変換するセロビオース２−エピメラーゼが報告されており、当該酵素には前記エンザイム・ノメンクレイチャーにおいて酵素番号ＥＣ ５．１．３．１１が付与されている。イトウ（Ｉｔｏ）ら、バイオケミカル・アンド・バイオフィジカル・リサーチ・コミュニケーションズ（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ）、第３６０巻、６４０乃至６４５頁（２００７年）及びイトウ（Ｉｔｏ）ら、アプライド・ミクロバイオロジー・アンド・バイオテクノロジー（Ａｐｐｌｉｅｄ ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）、第７９巻、４３３乃至４４１頁（２００８年）には当該セロビオース２−エピメラーゼのアミノ酸配列、そのアミノ酸配列をコードするＤＮＡの塩基配列、及び、当該セロビオース２−エピメラーゼがセロビオースのみならずセロオリゴ糖やラクトースにも作用し、エピセロオリゴ糖やエピラクトース（４−Ｏ−β−Ｄ−ガラクトシルＤ−マンノース）をも生成することなどが開示されている。さらに、タグチ（Ｔａｇｕｃｈｉ）ら、フェムス・ミクロバイオロジー・レターズ（ＦＥＭＳ ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ｌｅｔｔｅｒｓ）、第２８７巻、３４乃至４０頁（２００８年）には、同じく嫌気性菌であるユーバクテリウム・セルロソルベンス（Ｅｕｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｃｅｌｌｕｌｏｓｏｌｖｅｎｓ）由来のセロビオース２−エピメラーゼが開示されている。

また、ニシムカイ（Ｎｉｓｈｉｍｕｋａｉ）ら、ジャーナル・オブ・アグリカルチュラル・アンド・フード・ケミストリー（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ ａｎｄ ｆｏｏｄ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）、第５６巻、１０３４０乃至１０３４５頁（２００８年）には、セロビオース２−エピメラーゼを用いてラクトースを変換して調製されるエピラクトースが、ラットに摂取させた場合、小腸でのカルシウム吸収を増強し、腸内の短鎖脂肪酸量を増加させ、血漿中のコレステロールを低減するなどの生理機能を発揮するという知見が開示されており、エピラクトースのプレバイオティクスの素材としての開発が期待されている。

しかしながら、上記した公知のセロビオース２−エピメラーゼには、耐熱性が低く、エピラクトース、エピセロビオースなどの糖質を工業レベルで製造するには利用し難いという問題点がある。酵素の耐熱性は、酵素反応を実用化する際、極めて重要な因子であり、耐熱性に優れる酵素は、少量の酵素量で長時間反応できるため、酵素反応における酵素量が低減でき経済的に有利である。また、工業的な利用を考慮すると、雑菌汚染を防止するため５５℃以上、望ましくは、６０℃以上で反応を行うことが好ましい。このような観点から、より耐熱性に優れるセロビオース２−エピメラーゼが望まれている。

本発明は、耐熱性に優れるセロビオース２−エピメラーゼとその製造方法並びに用途を提供することを課題とする。

このような状況下、上記課題を解決するために、本発明者らは、耐熱性に優れたセロビオース２−エピメラーゼを求めて多数の好熱性微生物を対象としてスクリーニングを行った。その結果、カルジセルロシルプトル（Ｃａｌｄｉｃｅｌｌｕｌｏｓｉｒｕｐｔｏｒ）属に属する微生物カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス（Ｃａｌｄｉｃｅｌｌｕｌｏｓｉｒｕｐｔｏｒ ｓａｃｃｈａｒｏｌｙｔｉｃｕｓ） ＡＴＣＣ４３４９４の菌体破砕抽出液にラクトースをエピマー化してエピラクトースを生成し、また、セロビオースから異性化糖と推定される糖質を生成する酵素活性を見出した。当該エピメラーゼを、電気泳動的に単一バンドを示す程度まで精製し性質を調べたところ、７０℃まで安定な耐熱性を有することが判明した。しかしながら、得られた精製酵素標品は微量であり、当該エピメラーゼの詳細な基質特異性を調べるには不十分であった。

そこで、当該エピメラーゼの部分アミノ酸配列の情報に基づき、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカスのゲノムＤＮＡより、当該エピメラーゼをコードするＤＮＡをクローニングし、これを含む組換えＤＮＡで大腸菌を形質転換し、培養して組換え酵素を調製した。この組換え酵素を用いて基質特異性を調べたところ、意外にもこの酵素は、セロビオース及びラクトースをエピマー化してそれぞれをエピセロビオース及びエピラクトースに変換するのみならず、単糖ではＤ−グルコース及びＤ−ガラクトースに作用し、二糖ではさらにマルトースに、オリゴ糖では重合度３以上のマルトオリゴ糖及びセロオリゴ糖に作用してエピマー化し、それぞれに対応するＤ−マンノース、Ｄ−タロース、エピマルトース（４−Ｏ−α−Ｄ−グルコシルＤ−マンノース）、重合度３以上のエピマルトオリゴ糖及びエピセロオリゴ糖に変換するという幅広い基質特異性を有することを見出した。また、本酵素は、酵素作用量を増すと２−エピマー化反応のみならずアルドース−ケトース変換反応をも触媒し、Ｄ−グルコース又はＤ−マンノース、Ｄ−ガラクトース又はＤ−タロース、マルトース又はエピマルトース、セロビオース又はエピセロビオース、及び、ラクトース又はエピラクトースに作用して、それぞれ対応するＤ−フラクトース、Ｄ−タガトース、マルツロース（４−Ｏ−α−Ｄ−グルコシルＤ−フラクトース）、セロビウロース（４−Ｏ−β−Ｄ−グルコシルＤ−フラクトース）及びラクツロース（４−Ｏ−β−Ｄ−ガラクトシルＤ−フラクトース）に変換する作用を有することも見出した。すなわち、本酵素は、２−エピマー化反応とアルドース−ケトース変換反応のいずれをも触媒する、新規なセロビオース２−エピメラーゼであることが判明した。

これらの知見に基づき、本発明者らは、新規セロビオース２−エピメラーゼ、当該酵素をコードするＤＮＡとこれを含んでなる組換えＤＮＡ及び形質転換体、当該酵素の製造方法を確立するとともに、該酵素を利用した異性化糖の製造方法を確立して本発明を完成した。

すなわち、本発明は、耐熱性に優れるセロビオース２−エピメラーゼ、当該酵素をコードするＤＮＡとこれを含んでなる組換えＤＮＡ、形質転換体、及び、当該酵素の製造方法、さらには当該酵素を用いた異性化糖の製造方法を提供することにより上記課題を解決するものである。

本発明のセロビオース２−エピメラーゼは、耐熱性が高く、組換え微生物における大量発現が可能で、組換え型酵素の精製も容易である。本発明のセロビオース２−エピメラーゼによれば、Ｄ−グルコースからＤ−マンノースを、マルトースからエピマルトースを、セロビオースからエピセロビオース又はセロビウロースを、さらに、ラクトースからエピラクトース又はラクツロースを製造でき、安価な原料から、希少であって、より付加価値の高い糖質を工業レベルで製造することができる。

カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４の菌体破砕抽出液上清をセロビオース、ラクトース又はエピラクトースに作用させた場合の反応液のＴＬＣクロマトグラムである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼの酵素活性に及ぼす温度の影響を示す図である。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼの酵素活性に及ぼすｐＨの影響を示す図である。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼの安定性に及ぼす温度の影響を示す図である。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼの安定性に及ぼすｐＨの影響を示す図である。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをラクトースに作用させて得た反応液のＨＰＬＣクロマトグラムである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをラクトースに作用させて単離した異性化糖Ａの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 市販のエピラクトース標準品の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをラクトースに作用させて単離した異性化糖Ｂの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 市販のラクツロース標準品の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをセロビオースに作用させて得た反応液のＨＰＬＣクロマトグラムである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをセロビオースに作用させて単離した異性化糖Ｃの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをセロビオースに作用させて単離した異性化糖Ｃの^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをセロビオースに作用させて単離した異性化糖Ｄの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをセロビオースに作用させて単離した異性化糖Ｄの^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをマルトースに作用させて得た反応液のＨＰＬＣクロマトグラムである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをマルトースに作用させて単離した異性化糖Ｅの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをマルトースに作用させて単離した異性化糖Ｅの^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルである 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをマルトースに作用させて単離した異性化糖Ｆの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 市販のマルツロース標準品の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをマルトトリオースに作用させて得た反応液のＨＰＬＣクロマトグラムである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをマルトトリオースに作用させて単離した異性化糖Ｇの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。 本発明のセロビオース２−エピメラーゼをマルトトリオースに作用させて単離した異性化糖Ｇの^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルである。

図１において、
ａ：マルトオリゴ糖混合物（グルコース重合度のマーカー）
ｂ：セロビオース標準品
ｃ：セロビオース反応液
ｄ：ラクトース標準品
ｅ：ラクトース反応液
ｆ：エピラクトース標準品
ｇ：エピラクトース反応液
←：ラクトース（異性化糖）
Ｇ_１：グルコース
Ｇ_２：マルトース
Ｇ_３：マルトトリオース
Ｇ_４：マルトテトラオース
図６において、
Ｌａｃ：ラクトース
Ａ＋Ｂ：異性化糖Ａ及びＢの混合物
図１１において、
Ｃｅｌ：セロビオース
Ｃ：異性化糖Ｃ
Ｄ：異性化糖Ｄ
図１２、１４及び１７において、
↓：Ｄ−グルコースの１位プロトンのシグナル
図１３、１８及び２３において、
＊：Ｄ−マンノースのＣ−４位シグナル
図１５において
＊：Ｄ−フラクトースのＣ−４位シグナル
図１６において、
Ｍａｌ：マルトース
Ｅ：異性化糖Ｅ
Ｆ：異性化糖Ｆ
図２１において、
Ｇ_３：マルトトリオース
Ｇ：異性化糖Ｇ
図２２において、
↓：Ｄ−マンノースに結合したＤ−グルコースの１プロトンのシグナル
ｘ：Ｄ−グルコースに結合したＤ−グルコースの１プロトンのシグナル
図２３において、
＃：Ｄ−グルコースが結合したＤ−グルコースのＣ−４位シグナル

本発明のセロビオース２−エピメラーゼは、異性化反応、より具体的には、下記の２−エピマー化反応とアルドース−ケトース変換反応を触媒する酵素である。
（１）２−エピマー化反応
Ｄ−グルコース及びＤ−ガラクトースの２位をエピマー化して、それぞれＤ−マンノース及びＤ−タロースに変換し、その逆反応も触媒する；
マルトース、セロビオース及びラクトースにおける還元末端グルコースの２位をエピマー化して、それぞれエピマルトース、エピセロビオース及びエピラクトースに変換する；
重合度３以上のマルトオリゴ糖及びセロオリゴ糖における還元末端グルコースの２位をエピマー化して、それぞれエピマルトオリゴ糖及びエピセロオリゴ糖に変換する；
（２）アルドース−ケトース変換反応
Ｄ−グルコース又はＤ−マンノースをＤ−フラクトースに、Ｄ−ガラクトース又はＤ−タロースをＤ−タガトースにそれぞれ変換し、その逆反応も触媒する；
マルトース又はエピマルトースをマルツロースに、セロビオース又はエピセロビオースをセロビウロースに、ラクトース又はエピラクトースをラクツロースに変換する。

本発明のセロビオース２−エピメラーゼの具体例としては、下記の理化学的性質を有するものが挙げられる。
（１）分子量
ＳＤＳ−ゲル電気泳動法において、４４，０００±５，０００ダルトン；
（２）至適温度
ｐＨ６．０、２０分間反応の条件下で８０℃；
（３）至適ｐＨ
５０℃、２０分間反応の条件下でｐＨ７．８；
（４）温度安定性
ｐＨ６．０、６０分間保持する条件下で７０℃まで安定；
（５）ｐＨ安定性
４℃、２４時間保持する条件下でｐＨ４．５乃至９．５の範囲で安定。

本明細書を通じてセロビオース２−エピメラーゼの酵素活性は、高純度品が安価に入手できるラクトースを基質として用い、ラクトースをエピマー化してエピラクトースを生成するラクトース２−エピメラーゼ活性として評価した。ラクトース２−エピメラーゼ活性は以下のようにして測定した。反応液における終濃度としてラクトースを３５．１ｍＭ、酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）を２０ｍＭとなるよう調製した基質溶液１０００μｌに酵素液２００μｌを加えて１２００μｌの反応液とし、５０℃で２０分間反応を行った後、沸騰湯浴中で１０分間加熱し反応を停止させた。この反応停止液をＨＰＬＣ分析に供し、本酵素の反応によって生成したエピラクトース量を測定した。なお、ＨＰＬＣは、『エムシーアイゲル（ＭＣＩ ＧＥＬ）ＣＫ０８ＥＰ』カラム（三菱化学株式会社製）を用い、カラム温度７５℃、流速０．６ｍｌ／ｍｉｎ、溶離液に水を用いる条件で行い、検出は示差屈折計『ＲＩＤ−１０Ａ』（株式会社島津製作所製）を用いて行なった。酵素活性１単位は、上記条件下でラクトースから１分間に１μｍｏｌのエピラクトースを生成する酵素量と定義した。

また、上記理化学的性質を有する本発明のセロビオース２−エピメラーゼの一つは、上記理化学的性質のみならず、そのＮ末端配列として、配列表における配列番号１で表されるアミノ酸配列を有している場合がある。

本発明のセロビオース２−エピメラーゼは、通常、特定のアミノ酸配列を有しており、その一例としては、例えば、配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列又はそれに相同的なアミノ酸配列が挙げられる。配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列としては、種々の異性化反応を触媒するという上記酵素活性を保持する範囲で、配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列において１個以上１０個未満のアミノ酸が欠失、置換、若しくは付加したアミノ酸配列が挙げられる。

本発明のＤＮＡとは、上記のアミノ酸配列を有するセロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡを意味する。本発明のＤＮＡは、当該セロビオース２−エピメラーゼをコードするものである限り、それが天然由来のものであっても、人為的に合成されたものであってもよい。天然の給源としては、例えば、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス（Ｃａｌｄｉｃｅｌｌｕｌｏｓｉｒｕｐｔｏｒ ｓａｃｃｈａｒｏｌｙｔｉｃｕｓ） ＡＴＣＣ４３４９４を含むカルジセルロシルプトル属の微生物が挙げられ、これらの菌体から本発明のＤＮＡを含むゲノムＤＮＡを得ることができる。すなわち、斯かる微生物を栄養培地に接種し、嫌気的条件下で約１乃至３日間培養後、培養物から菌体を採取し、リゾチームやβ−グルカナーゼなどの細胞壁溶解酵素や超音波で処理することにより当該ＤＮＡを含むゲノムＤＮＡを菌体外に溶出させる。このとき、プロテアーゼなどの蛋白質分解酵素を併用したり、ＳＤＳなどの界面活性剤を共存させたり凍結融解してもよい。斯くして得られる処理物に、例えば、フェノール抽出、アルコール沈殿、遠心分離、リボヌクレアーゼ処理などの常法を適用すれば目的のゲノムＤＮＡが得られる。本発明のＤＮＡを人為的に合成するには、例えば、配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列に基づいて化学合成すればよい。また、当該ＤＮＡを含むゲノムＤＮＡを鋳型として、適当なプライマーとなる化学合成オリゴヌクレオチドを用いてＰＣＲ合成することも有利に実施できる。

本発明のＤＮＡは、特定の塩基配列を有する場合があり、その一例としては、例えば、配列表における配列番号９で示される塩基配列又はそれに相同的な塩基配列、又はそれらの塩基配列に相補的な塩基配列が挙げられる。配列表における配列番号９で示される塩基配列に相同的な塩基配列としては、配列表における配列番号９で示される塩基配列において、コードする酵素の活性を保持する範囲で、１個以上３０個未満の塩基が欠失、置換、若しくは付加した塩基配列が挙げられる。また、当然のことながら、本発明のＤＮＡには、配列表における配列番号９で示される塩基配列か、又は、配列表における配列番号９で示される塩基配列において、コードする酵素の活性を保持する範囲で、１個以上３０個未満の塩基が欠失、置換、若しくは付加した塩基配列において、遺伝暗号の縮重に基づき、コードする酵素のアミノ酸配列を変えることなく塩基の１個又は２個以上を他の塩基に置換した塩基配列を有するＤＮＡも含まれる。

本発明のＤＮＡを、自律複製可能な適宜のベクターに挿入して組換えＤＮＡとすることも有利に実施できる。組換えＤＮＡは、通常、ＤＮＡと自律複製可能なベクターとからなり、ＤＮＡが入手できれば、常法の組換えＤＮＡ技術により比較的容易に調製することができる。斯かるベクターの例としては、ｐＢＲ３２２、ｐＵＣ１８、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＩＩ ＳＫ（＋）、ｐＵＢ１１０、ｐＴＺ４、ｐＣ１９４、ｐＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ Ｃａｍ ＳＫ＋、ｐＨＶ１４、ＴＲｐ７、ＹＥｐ７、ｐＢＳ７などのプラスミドベクターやλｇｔ・λＣ、λｇｔ・λＢ、ρ１１、φ１、φ１０５などのファージベクターが挙げられる。この内、本発明のＤＮＡを大腸菌で発現させるには、ｐＢＲ３２２、ｐＵＣ１８、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＩＩ ＳＫ（＋）、ｐＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ Ｃａｍ ＳＫ＋、λｇｔ・λＣ及びλｇｔ・λＢが好適であり、一方、枯草菌で発現させるには、ｐＵＢ１１０、ｐＴＺ４、ｐＣ１９４、ρ１１、φ１及びφ１０５が好適である。ｐＨＶ１４、ＴＲｐ７、ＹＥｐ７及びｐＢＳ７は、組換えＤＮＡを二種以上の宿主内で複製させる場合に有用である。ＤＮＡを斯かるベクターに挿入するには、斯界において通常一般の方法が採用される。具体的には、まず、ＤＮＡを含むゲノムＤＮＡと自律複製可能なベクターとを制限酵素により切断し、次に、生成したＤＮＡ断片とベクター断片とを連結する。遺伝子ＤＮＡ及びベクターの切断にヌクレオチドに特異的に作用する制限酵素、とりわけＩＩ型の制限酵素、詳細には、Ｓａｕ ３ＡＩ、Ｅｃｏ ＲＩ、Ｈｉｎｄ ＩＩＩ、Ｂａｍ ＨＩ、Ｓａｌ Ｉ、Ｘｂａ Ｉ、Ｓａｃ Ｉ、Ｐｓｔ Ｉ、Ｎｄｅ Ｉ、Ｎｃｏ Ｉなどを使用すれば、ＤＮＡ断片とベクター断片とを連結するのが容易である。必要に応じて、両者をアニーリングした後、生体内又は生体外でＤＮＡリガーゼを作用させればよい。斯くして得られる組換えＤＮＡは、適宜宿主に導入して形質転換体とし、これを培養することにより無限に複製可能である。

このようにして得られる組換えＤＮＡを、大腸菌、枯草菌、放線菌、酵母などの適宜の宿主微生物に導入することにより形質転換体を得ることができる。形質転換体を取得するには、コロニーハイブリダイゼーション法を適用するか、栄養培地で培養して粗酵素を調製し、当該セロビオース２−エピメラーゼ活性を有するものを選択すればよい。

本発明のセロビオース２−エピメラーゼ産生能を有する微生物（形質転換体を含む）の培養に用いる培地は、微生物が生育でき、セロビオース２−エピメラーゼを産生しうる栄養培地であればよく、合成培地および天然培地のいずれでもよい。炭素源としては、微生物が生育に利用できる物であればよく、例えば、澱粉の部分分解物やグルコース、フラクトース、ラクトース、スクロース、マンニトール、ソルビトール、糖蜜などの糖質、また、クエン酸、コハク酸などの有機酸も使用することができる。培地におけるこれらの炭素源の濃度は炭素源の種類により適宜選択できる。窒素源としては、例えば、アンモニウム塩、硝酸塩などの無機窒素化合物および、例えば、尿素、コーン・スティープ・リカー、カゼイン、ペプトン、酵母エキス、肉エキスなどの有機窒素含有物を適宜用いることができる。また、無機成分としては、例えば、カルシウム塩、マグネシウム塩、カリウム塩、ナトリウム塩、リン酸塩、マンガン塩、亜鉛塩、鉄塩、銅塩、モリブデン塩、コバルト塩などの塩類を適宜用いることができる。更に、必要に応じて、アミノ酸、ビタミンなども適宜用いることができる。

培養には、本発明のセロビオース２−エピメラーゼ産生能を有する微生物が良好に生育する条件を適宜選択して用いればよい。例えば、カルジセルロシルプトル属の微生物を用いる場合、培養は、通常、温度５０乃至８０℃、好ましくは、６０乃至７０℃、ｐＨ５乃至８、好ましくは、ｐＨ６．５乃至７．５の範囲から選ばれる条件で嫌気的に行われる。培養時間は当該微生物が増殖し得る時間であればよく、好ましくは１０乃至７２時間である。また、微生物が形質転換体である場合、その宿主微生物の種類によって異なるものの、培養は、通常、温度１５乃至３７℃でｐＨ５．５乃至１０の範囲、好ましくは温度２０乃至５０℃、ｐＨ２乃至９の範囲から選ばれる条件で、通気攪拌する好気的な条件下で１０時間乃至１５０時間とすればよい。また、培養方式は、回分培養又は連続培養のいずれでもよい。

このようにして微生物を培養した後、本発明のセロビオース２−エピメラーゼを含む培養物を回収する。本発明のセロビオース２−エピメラーゼ活性は、主に菌体内に認められ、菌体を粗酵素として採取することも、菌体破砕抽出液を粗酵素液として用いることもできる。培養物から菌体を回収するには公知の固液分離法が採用される。例えば、培養物そのものを遠心分離する方法、あるいは、プレコートフィルターなどを用いて濾過分離する方法、平膜、中空糸膜などの膜濾過により分離する方法などが適宜採用される。菌体破砕抽出液は、そのまま粗酵素液として用いることができるものの、一般的には、濃縮して用いられる。濃縮法としては、硫安塩析法、アセトン及びアルコール沈殿法、平膜、中空膜などを用いた膜濃縮法などを採用することができる。

本発明のセロビオース２−エピメラーゼが組換え酵素である場合には、宿主の種類によっては菌体内に酵素が蓄積することがある。このような場合には、菌体又は培養物をそのまま使用することも可能であるものの、通常は使用に先立ち、必要に応じて、浸透圧ショックや界面活性剤により菌体から抽出した後、又は、超音波や細胞壁溶解酵素により菌体を破砕した後、濾過、遠心分離などにより組換え型酵素を菌体又は菌体破砕物から分離して用いることも有利に実施できる。

上記のように本発明のセロビオース２−エピメラーゼは、菌体破砕抽出液などの粗酵素液をそのまま又は濃縮して用いることができるものの、必要に応じて、公知の方法によって、さらに分離・精製して利用することもできる。例えば、菌体破砕抽出液の上清をＵＦ膜で濃縮、又は硫安塩析・透析した酵素液を陰イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィーなど各種の精製方法を組み合わせて精製することにより、本発明のセロビオース２−エピメラーゼを電気泳動的に単一な酵素として得ることができる。また、本発明のセロビオース２−エピメラーゼが形質転換体を培養して得た組換え型酵素の場合、通常の蛋白質よりも耐熱性に優れる点を利用して、菌体破砕抽出液を硫安塩析して濃縮した粗酵素標品を、約７０℃で一定時間熱処理することにより夾雑する宿主由来の蛋白質を熱変性させ、変性により沈澱する蛋白質を遠心分離などで除去することにより簡便に精製することができる。

更に、本発明のセロビオース２−エピメラーゼ活性を有する菌体破砕抽出液、濃縮液又は精製した酵素液を用いて、本発明のセロビオース２−エピメラーゼを公知の方法により固定化酵素とすることもできる。固定化方法としては、例えば、イオン交換体への結合法、樹脂及び膜などとの共有結合法・吸着法、高分子物質を用いた包括法などを適宜採用できる。

本発明のセロビオース２−エピメラーゼは幅広い基質特異性を有する。後述する実験の項で示すように、単糖ではＤ−グルコース、Ｄ−ガラクトース及びＤ−マンノースに作用し、それぞれのエピマーであるＤ−マンノース、Ｄ−タロース及びＤ−グルコースに変換する。二糖では、マルトース、セロビオース及びラクトースに作用し、それぞれエピマルトース、エピセロビオース及びエピラクトースに変換する。さらに、オリゴ糖ではセロオリゴ糖及びマルトオリゴ糖に作用し、それぞれに対応するエピセロオリゴ糖及びエピマルトオリゴ糖に変換する。

またさらに、本発明のセロビオース２−エピメラーゼは、酵素作用量を増すと、２−エピマー化反応のみならず、アルドース−ケトース変換反応をも触媒する。単糖では、Ｄ−グルコース又はＤ−マンノースをＤ−フラクトースに、Ｄ−ガラクトース又はＤ−タロースをＤ−タガトースに変換する。二糖では、セロビオース又はエピセロビオースをセロビウロースに、ラクトース又はエピラクトースをラクツロースに、また、マルトース又はエピマルトースをマルツロースに変換する。本酵素はアルドースをケトースに変換し、その逆反応をも触媒するものの、ケトースのアルドースへの変換活性は微弱であり、変換には多量の酵素を要する。

本発明のセロビオース２−エピメラーゼを基質に作用させるに際し、その基質濃度は特に限定されず、例えば、基質濃度０．１％（ｗ／ｖ）の比較的低濃度の溶液を用いた場合でも、本発明のセロビオース２−エピメラーゼの反応は進行して、特定の糖質からそのエピマー及び／又はアルドース−ケトース変換した異性化糖を生成する。工業的には、基質濃度１％（ｗ／ｖ）以上が好適であり、この条件下で、種々のエピマー及び／又は異性化糖を有利に生成できる。反応温度は反応が進行する温度、即ち８０℃付近までで行えばよい。好ましくは５０乃至６０℃付近の温度を用いる。反応ｐＨは、通常、５．０乃至９．０の範囲、好ましくはｐＨ６．０乃至８．０の範囲に調整するのがよい。酵素の使用量と反応時間とは密接に関係しており、目的とする酵素反応の進行により適宜選択すればよい。

また、本発明のセロビオース２−エピメラーゼ産生能を有する微生物を、基質となる上記アルドース又はケトースを含んでなる栄養培地で培養し、培養液中に生成する、アルドース又はケトースにそれぞれ対応する異性化糖を採取することにより異性化糖を製造することもできる。

上記の反応系によって得られた異性化糖の精製方法としては、糖の精製に用いられる通常の方法を適宜採用すればよく、例えば、活性炭による脱色、Ｈ型、ＯＨ型イオン交換樹脂による脱塩、イオン交換カラムクロマトグラフィー、活性炭カラムクロマトグラフィー、シリカゲルカラムクロマトグラフィーなどのカラムクロマトグラフィーによる分画、適度な分離性能を有する膜による分離、更には、目的糖質を利用せず夾雑糖質を資化、分解する微生物、例えば酵母などによる発酵処理や、目的糖質に作用せず原料糖質を特異的に分解する酵素を用いる酵素処理などの１種又は２種以上の精製方法が適宜採用できる。

とりわけ、工業的な精製方法としては、イオン交換カラムクロマトグラフィーの採用が好適であり、例えば、特開昭５８−２３７９９号公報、特開昭５８−７２５９８号公報などに開示されている強酸性カチオン交換樹脂を用いるカラムクロマトグラフィーにより夾雑糖類を除去し、目的糖質含量を向上させた糖組成物を有利に製造することができる。この際、固定床方式、移動床方式、疑似移動床方式のいずれの方式を採用することも随意である。

以下、実験により本発明をさらに具体的に説明する。

＜実験１：カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４菌体破砕抽出液によるエピラクトース及びエピセロビオースの生成＞

＜実験１−１：カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４の培養と菌体破砕抽出液の調製＞
『ＡＴＣＣカタログ・オブ・バクテリア・アンド・バクテリオファージズ、第１８版』（アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション発行、１９９２年）４７０頁に記載のアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション培地、１３６８番を調製し、１２ｍｌ容耐圧ガラスボトルに１２ｍｌ入れ滅菌した後、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４を接種して温度７０℃で約７２時間静置培養した。培養液を遠心分離して得た菌体を超音波破砕し、菌体破砕抽出液の遠心上清を粗酵素液とした。

＜実験１−２：粗酵素液のラクトース、セロビオース及びエピラクトースへの作用＞
セロビオース、ラクトース又はエピラクトースを１００ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）に終濃度３．４％（ｗ／ｖ）となるように溶解し、それぞれ基質溶液とした。基質溶液１０μｌに、実験１−１の方法で調製した粗酵素液を１０μｌ加え、５０℃で１６時間反応させた。反応終了後、下記の条件による薄層クロマトグラフィー（以下、「ＴＬＣ」と略称する）分析に供した。ＴＬＣクロマトグラムを図１に示す。
＜ＴＬＣ分析の条件＞
薄層プレート：シリカゲルアルミプレート（１０×２０ｃｍ）
（『キーゼルゲル６０Ｆ_２５４』、メルク社製、１０×２０ｃｍ）
展開溶媒：ｎ−ブタノール：ピリジン：水（容量比６：４：１）混液
展開方法及び回数：上昇法にて２回展開
発色方法：１０％硫酸−メタノール溶液を噴霧し、１１０℃、６分間加熱

図１における符号ａ乃至ｇは、それぞれＴＬＣ分析に供した試料を表し、符号ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ及びｇは、それぞれマルトオリゴ糖混合物（グルコース重合度のマーカー）、セロビオース標準品、セロビオース反応液、ラクトース標準品、ラクトース反応液、エピラクトース標準品及びエピラクトース反応液を示す。図１に示すように、セロビオースの反応液（図１における符号ｃ）にはセロビオースの分解産物であるグルコース（図１の符号ａにおけるＧ_１に相当する位置）と未知糖（図１の符号ａにおけるＧ_４に相当する位置）のスポットが認められ、ラクトースの反応液（図１における符号ｅ）にはラクトースの分解産物であるグルコースとガラクトース（図１の符号ａにおけるＧ_２に相当する位置）のスポットが認められた。一方、エピラクトースの反応液（図１における符号ｇ）にはラクトースと推定される異性化物のスポット（図１における符号←）が認められた。エピラクトースから異性化物であるラクトースの生成が認められたことから、セロビオースとラクトースの反応液には分解産物以外の生成物が存在し、そのスポットが分解産物のスポットと重なっている可能性が考えられたため、セロビオースとラクトースの反応液について、さらに、反応液を常法に従いトリメチルシリル化（ＴＭＳ化）した後、下記の条件によるガスクロマトグラフィー（以下、「ＧＣ」と略称する。）に供して生成物を同定した。その結果、ラクトースからは分解産物以外にエピラクトースが、セロビオースからは分解産物以外にエピセロビオースと推定される未知糖が、それぞれ生成していることが確認された。この結果から、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４はセロビオース、ラクトース及びエピラクトースをエピマー化するエピメラーゼ（セロビオース２−エピメラーゼ）産生能を有することが判明した。
＜ＧＣ分析条件＞
ガスクロマトグラフ：ＧＣ−１４Ａ（株式会社島津製作所製）
カラム：２％ ＯＶ−１７ クロモソルブＷ／ＡＷ−ＤＭＣＳ
（内径３ｍｍ×長さ２ｍ、株式会社ジー・エル・サイエンス製）
キャリアーガス：窒素 キャリアーガス流量：４０ｍｌ／分
燃焼ガス：水素 燃焼ガス流量：４０ｍｌ／分
助燃ガス：空気 助燃ガス流量：６００ｍｌ／分
昇温プログラム：１６０℃ → ３２０℃（７．５℃／分）
検出：ＦＩＤ（水素炎イオン化検出器）

＜実験２：カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４からのセロビオース２−エピメラーゼの精製＞
カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４が産生するセロビオース２−エピメラーゼの理化学的性質を明らかにする目的で当該酵素の精製を行った。

＜実験２−１：粗酵素液の調製＞
実験１−１で用いた培地１００ｍｌを入れた１００ｍｌ容耐圧ガラスボトル８本に、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４を接種した以外は、実験１−１と同様に培養し、種培養とした。次いで、同培地１０Ｌを入れた１１Ｌ容耐圧スチールボトル８本に、種培養した培養液を１本ずつ接種して同様に培養し、培養後、約８０Ｌの培養液を遠心分離して湿菌体約２４ｇを得た。菌体を２０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁し、超音波破砕した後遠心分離して菌体破砕抽出液上清を得た。菌体破砕抽出液上清を粗酵素液とした。粗酵素液のエピメラーゼ活性を測定し、培養液１ｍｌ当たりに換算すると０．００９単位／ｍｌであった。

＜実験２−２：セロビオース２−エピメラーゼの精製＞
実験２−１で得た粗酵素液をＵＦ膜にて濃縮し、濃縮酵素液約４０ｍｌを回収した。この濃縮酵素液を２０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）対して一晩透析し、遠心分離して不溶物を除いて得た透析液上清（３８ｍｌ）を『ＤＥＡＥ−トヨパール６５０Ｓ』（東ソー株式会社販売）ゲルを用いた陰イオン交換カラムクロマトグラフィー（ゲル容量３８０ｍｌ）に供した。カラムに吸着した蛋白を０から０．５ＭＮａＣｌまでのリニアグラジエントにより溶出させ、得られたフラクションのエピメラーゼ活性を調べたところ、エピメラーゼ活性は約０．１ＭのＮａＣｌ濃度の画分に溶出していた。この溶出活性画分を回収し、１Ｍ硫安を含む同緩衝液に対して透析し、『Ｂｕｔｙｌ−トヨパール６５０Ｍ』（東ソー株式会社販売）ゲルを用いた疎水カラムクロマトグラフィー（ゲル容量５０ｍｌ）に供した。カラムに吸着した蛋白を１Ｍから０Ｍ硫安までのリニアグラジエントにより溶出させたところ、エピメラーゼ活性は約０．８Ｍの硫安濃度の画分に溶出していた。当該活性画分をＵＦ膜で濃縮し、０．４Ｍ ＮａＣｌを含有する２０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）に対して透析した後、同緩衝液で平衡化した『スーパーデックス７５』カラム（１６ｍｍ×６０ｃｍ、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス株式会社製）を用いたゲル濾過クロマトグラフィーに供し、エピメラーゼ活性画分を回収した。回収した活性画分を２０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）対して一晩透析し、同緩衝液で平衡化した『ＤＥＡＥ−５ＰＷ』カラム（３．３ｍｌ、東ソー株式会社製）を用いた陰イオン交換クロマトグラフィーに供した。カラムに吸着した蛋白を０Ｍから０．５ＭまでのＮａＣｌリニアグラジエントにより溶出し、約０．１ＭのＮａＣｌ濃度の画分に溶出するエピメラーゼ活性画分を回収した。

以上の精製により得られた精製酵素標品は、蛋白として０．９ｍｇであり、粗酵素液からの活性回収率は３．４％であった。また、本精製酵素標品の比活性は２６．９単位／ｍｇ−蛋白であった。なお、蛋白の定量は牛血清アルブミンを標準蛋白としたローリー法にて行った。本精製酵素標品の純度を５乃至２０％（ｗ／ｖ）濃度勾配ポリアクリルアミドゲルを用いたゲル電気泳動法により検定したところ、蛋白バンドは単一であり純度の高い標品であった。

＜実験３：カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４由来セロビオース２−エピメラーゼの諸性質＞

＜実験３−１：分子量＞
実験２の方法で得たセロビオース２−エピメラーゼ精製標品を５乃至２０％（ｗ／ｖ）グラジエントゲルを用いたＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法に供し、同時に泳動した分子量マーカー（日本バイオ・ラッド・ラボラトリーズ株式会社製）と比較して分子量を測定したところ、分子量は４４，０００±５，０００ダルトンであった。

＜実験３−２：至適温度及び至適ｐＨ＞
実験２の方法で得たセロビオース２−エピメラーゼ精製標品を用いて、エピメラーゼ活性に及ぼす温度及びｐＨの影響を活性測定の方法に準じて調べた。結果を図３（至適温度）及び図４（至適ｐＨ）に示す。本エピメラーゼの至適温度はｐＨ６．０、２０分間反応で８０℃であった。至適ｐＨは、５０℃、２０分間反応でｐＨ７．８であった。

＜実験３−３：温度安定性及びｐＨ安定性＞
実験２の方法で得たセロビオース２−エピメラーゼ精製標品を用いて、エピメラーゼ活性の安定性に及ぼす温度及びｐＨの影響を調べた。温度安定性は、１０ｍＭ 酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）を用い、酵素溶液を各温度に６０分間保持し、水冷した後、残存する酵素活性を測定することにより求めた。ｐＨ安定性は、酵素を各ｐＨの１００ｍＭ緩衝液中で４℃、２４時間保持した後、ｐＨを６．０に再調整し、残存する酵素活性を測定することにより求めた。これらの結果を図５（温度安定性）及び図６（ｐＨ安定性）に示す。図５から明らかなように、本エピメラーゼは７０℃まで安定であった。また、図６から明らかなように、本エピメラーゼは、ｐＨ４．５乃至９．５の範囲で安定であった。

＜実験３−４：酵素活性に及ぼす金属イオンの影響＞
実験２の方法で得たセロビオース２−エピメラーゼ精製標品を用いて、酵素活性に及ぼす金属イオンの影響を、１ｍＭの各種金属塩存在下で活性測定することにより調べた。結果を表１に示す。

表１に示すように、本エピメラーゼの活性は、Ａｌ^３＋、Ｆｅ^２＋、Ｆｅ^３＋及びＰｂ^２＋イオンによって阻害され、Ｃｕ^２＋、Ｚｎ^２＋及びＨｇ^２＋イオンによってほぼ完全に阻害されることが判明した。

＜実験３−５：Ｎ末端アミノ酸配列＞
実験２の方法で得たセロビオース２−エピメラーゼ精製標品を用いて、本酵素のＮ末端アミノ酸配列を、プロテインシーケンサー モデル４９２ＨＴ（アプライドバイオシステムズ社製）を用いてＮ末端から１５残基分析したところ、配列表における配列番号１で示されるアミノ酸配列、すなわち、メチオニン―アスパラギン酸−イソロイシン−スレオニン−アルギニン−フェニルアラニン−リジン−グルタミン酸−アスパラギン酸−ロイシン−リジン−アラニン−ヒスチジン−ロイシン−グルタミン酸 を有していることが判明した。

＜実験３−６：内部部分アミノ酸配列＞
実験２の方法で得たセロビオース２−エピメラーゼ精製標品を適量とり、１０ｍＭトリス・塩酸緩衝液（ｐＨ９．０）に対して４℃で１８時間透析した後、同緩衝液を加えて蛋白濃度約０．６ｍｇ／ｍｌとした。この溶液を約５０μｌとり、リジルエンドペプチダーゼ（和光純薬株式会社販売）１．２μｇを加えて、３０℃、２０時間保持して酵素蛋白を加水分解した。加水分解物を予め０．０６５％（ｖ／ｖ）トリフルオロ酢酸で平衡化させておいたＨＰＬＣ用カラム（商品名『マイクロＲＰＣ Ｃ２／Ｃ１８ ＳＣ２．１／１０』、直径２．１ｍｍ×長さ１００ｍｍ、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）に注入し、流速０．１ｍｌ／分、室温の条件下、０．０６５％（ｖ／ｖ）トリフルオロ酢酸−から０．０５５％（ｖ／ｖ）トリフルオロ酢酸−８０％（ｖ／ｖ）アセトニトリル溶液の１６０分間のリニアグラジエントで通液し、ペプチド断片を分画した。カラムから溶出したペプチド断片は波長２１４ｎｍの吸光度を測定することにより検出した。保持時間約２９分、約３７分及び約３９分に溶出した３種のペプチド断片Ｐ１、Ｐ２及びＰ３を分取し、それぞれのアミノ酸配列を実験３−５と同じ方法で分析したところ、それぞれ配列表における配列番号２、３及び４で示されるアミノ酸配列を有していた。

＜実験４：セロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡのクローニング及びこれを含む組換えＤＮＡと形質転換体の調製＞
セロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡをカルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４からクローニングし、自律複製可能な組換えＤＮＡの作製、酵素をコードするＤＮＡの塩基配列の決定及び形質転換体の調製を行った。

＜実験４−１：ゲノムＤＮＡの調製＞
実験１−１と同じ方法でカルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４を培養し、培養液約２０ｍｌを遠心分離して、培養菌体１０ｍｇを得た。回収した菌体から『ディーエヌイージー・ティシュー・キット』（キアゲン社製）を用い、キットに添付された説明書記載の方法に従ってゲノムＤＮＡを調製し、１．８ｍｇを得た。調製したゲノムＤＮＡの濃度は１．８ｍｇ／ｍｌとした。

＜実験４−２：セロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡのクローニング及び塩基配列の決定＞
セロビオース２−エピメラーゼのＮ末端アミノ酸配列（配列表における配列番号１で示されるアミノ酸配列）の第１乃至第６番目のアミノ酸配列に基づき、センスプライマーとして配列表における配列番号５で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成し、同エピメラーゼの内部部分アミノ酸配列である配列表における配列番号４で示されるアミノ酸配列の第２乃至第７番目のアミノ酸配列に基づき、アンチセンスプライマーとして配列表における配列番号６で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成した。これらのプライマーを用い、実験４−１で得たゲノムＤＮＡを鋳型とし、ＫＯＤ−プラス−ＤＮＡポリメラーゼ（東洋紡製）をＰＣＲ酵素として、ＤＮＡ サーマルサイクラー ＰＪ２０００（パーキン・エルマー社製）を用いて常法によりＰＣＲ増幅を行ったところ、約１，０００ｂｐのＤＮＡ断片が増幅された。このＤＮＡ断片をクローニングベクターｐＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ Ｃａｍ ＳＫ＋（ストラタジーン社製）の制限酵素Ｓｒｆ Ｉサイトにクローニングし、得られた組換えＤＮＡを用いて大腸菌ＸＬ−１０Ｇｏｌｄを形質転換した。形質転換体からプラスミドを調製して調べたところ、目的とする約１，０００ｂｐのＤＮＡ断片を有していた。その組換えＤＮＡを「ｐＣＲＣＳ１」と命名した。

組換えＤＮＡ、ｐＣＲＣＳ１が有する約１，０００ｂｐのＤＮＡ断片の塩基配列を、通常のジデオキシ法により解読したところ、解読した１，００４ｂｐの塩基配列がコードするアミノ酸配列中に、セロビオース２−エピメラーゼの内部部分アミノ酸配列（配列表における配列番号３で示されるアミノ酸配列）が含まれていた。この結果から、得られたＤＮＡ断片は目的とするセロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡの一部と推察された。

上記のセロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡの一部と推察されたＤＮＡ断片が制限酵素Ｐｓｔ Ｉにて切断されないことを予め確認した後、実験４−１で得たゲノムＤＮＡを制限酵素Ｐｓｔ Ｉにて消化し、消化物をセルフライゲーションさせて環状化ゲノムを得た。セロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡの一部と推定されるＤＮＡ断片の塩基配列に基づき、配列表における配列番号７及び８で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドをそれぞれセンスプライマー及びアンチセンスプライマーとして合成し、上記環状化ゲノムを鋳型としてＰＣＲを行ったところ、約３，４００ｂｐの増幅ＤＮＡ断片が得られた。

得られた約３，４００ｂｐのＤＮＡ断片の塩基配列を、直接、常法のジデオキシ法により解読したところ、セロビオース２−エピメラーゼのＮ末端アミノ酸配列（配列表における配列番号１で示されるアミノ酸配列）で始まり、３種の内部部分アミノ酸配列（配列表における配列番号２乃至４で示されるアミノ酸配列）を全て含むアミノ酸配列をコードするオープンリーディングフレームが認められ、本ＤＮＡ断片中に目的遺伝子全長が存在していることが判明した。この知見に基づきセロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡの塩基配列及びこれにコードされる当該酵素のアミノ酸配列を決定した。その結果、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４由来セロビオース２−エピメラーゼをコードするＤＮＡは、配列表における配列番号９で示される鎖長１，１７０ｂｐの塩基配列を有しており、当該塩基配列は配列表における配列番号１０で示される３９０残基のアミノ酸配列をコードしていることが判明した。実験３−５で判明したセロビオース２−エピメラーゼのＮ末端アミノ酸配列（配列表における配列番号１で示されるアミノ酸配列）及び実験３−６で判明した３種の内部部分アミノ酸配列（配列表における配列番号２乃至４で示されるアミノ酸配列）は、そのいずれもが配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列に認められ、それぞれ当該アミノ酸配列における第１乃至第１５番目、第３４２乃至第３４９番目、第１０４乃至第１１０番目、及び、第３２９乃至第３３５番目のアミノ酸配列と完全に一致していた。なお、配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列から算出される分子量は４６，４８８であり、この値は実験３−１で求めたカルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４由来セロビオース２−エピメラーゼの分子量、４４，０００±５，０００ダルトンとよく一致するものであった。

＜実験４−３：組換え型セロビオース２−エピメラーゼ発現用ベクターの構築と形質転換体の調製＞
カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４由来セロビオース２−エピメラーゼのＮ末端アミノ酸配列（配列表における配列番号１で示されるアミノ酸配列）における第１乃至第９番目のアミノ酸配列に基づき、また、遺伝子の５´末端側に制限酵素Ｎｃｏ Ｉ認識部位を作製すべく、センスプライマーとして配列表における配列番号１１で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成した。また、配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列における第３８４乃至第３９０番目のアミノ酸配列に基づき、また、遺伝子の３´末端側に制限酵素Ｂａｍ ＨＩ認識部位を作製すべく、アンチセンスプライマーとして配列表における配列番号１２で示される塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを合成した。これらのプライマーを用い、実験４−１で得たゲノムＤＮＡを鋳型とし、ＫＯＤ−プラス−ＤＮＡポリメラーゼ（東洋紡製）をＰＣＲ酵素として、ＤＮＡ サーマルサイクラー ＰＪ２０００（パーキン・エルマー社製）を用いて常法によりＰＣＲ増幅を行ったところ、約１，２００ｂｐのＤＮＡ断片が増幅された。増幅されたＤＮＡを制限酵素Ｎｃｏ Ｉ及びＢａｍ ＨＩにより消化し、フェノール・クロロホルム処理して制限酵素を失活させた後、この消化物を用いて、予め制限酵素Ｎｃｏ Ｉ及びＢａｍ ＨＩで消化した発現ベクター、ｐＥＴ−３ｄ（ノバジェン社製）に市販のキット（商品名「Ｌｉｇａｔｉｏｎ Ｈｉｇｈ、東洋紡製）を用いて挿入した。この反応物を用いてクローニング用宿主大腸菌ＸＬ１０−Ｇｏｌｄ（ストラタジーン社製）を形質転換した。形質転換体からプラスミドを調製して調べ、目的とする約１，２００ｂｐのＤＮＡ断片を有するものを選択した。選択した形質転換体が有する組換えＤＮＡを「ｐＥＴＣＳ１」と命名した。組換えＤＮＡ、ｐＥＴＣＳ１を用いて発現用宿主大腸菌Ｒｏｓｅｔｔａ（ＤＥ３）（ノバジェン社製）を形質転換し、形質転換体『ＥＴＣＳ１』を調製した。

＜実験４−４：形質転換体における組換え型セロビオース２−エピメラーゼの発現と精製＞
実験４−３で得た形質転換体ＥＴＣＳ１を、５００ｍｌ容の三角フラスコに１００ｍｌずつ入れたＴＢ培地（トリプトン １．２％、酵母エキス ２．４％、グリセリン ０．４％、リン酸２水素１カリウム １７ｍＭ、リン酸水素２カリウム ７２ｍＭ、ｐＨ６．８、アンピシリン ８０μｇ／ｍｌ、クロラムフェニコール ３０μｇ／ｍｌ含有）に植菌し、２７℃で２４時間培養した。得られた培養物を、常法に従い、遠心分離して培養上清と菌体とに分離して回収した。菌体については、超音波破砕法により細胞からの全抽出物を調製した。超音波破砕法は、菌体を２０ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ６．５）に懸濁した後、その菌体懸濁液を氷水中で冷却しながら超音波ホモジナイザー（モデルＵＨ−６００、株式会社エスエムテー製）で細胞破砕することによって行い、その破砕物を全細胞抽出物とした。

このようにして調製した培養上清と全細胞抽出物とについて、それぞれのセロビオース２−エピメラーゼ活性（ラクトース２−エピメラーゼ活性）を測定し、それぞれの活性値を培養物１ｍｌ当りに換算した。なお、対照としてプラスミドｐＥＴ−３ｄを保持する大腸菌Ｒｏｓｅｔｔａ（ＤＥ３）を上述の形質転換体の場合と同一条件で培養し、培養物から培養上清と全細胞抽出物を調製し、同様に酵素活性を測定した。これらの結果を表２に示す。

表２の結果から明らかなように、形質転換体ＥＴＣＳ１は、セロビオース２−エピメラーゼを細胞内に産生することが判明した。宿主である対照の大腸菌では培養上清、全細胞抽出物のいずれにも当該エピメラーゼ活性は全く認められなかった。

上記で得た全細胞抽出物を、７０℃で３０分間熱処理し、熱変性して不溶化した宿主由来の蛋白を遠心分離にて除去した。この熱処理液上清を、『ＤＥＡＥ−５ＰＷ』カラムを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー及び『スーパーデックス ２００』ゲルを用いたゲル濾過カラムクロマトグラフィーに供して精製し、さらにこの精製酵素標品を実験３に示した方法に準じて分析した。その結果、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法による分子量は４４，０００±５，０００ダルトン、エピメラーゼ活性の至適温度は、ｐＨ６．０、２０分間反応の条件下で８０℃、至適ｐＨは５０℃、２０分間反応の条件下で７．８、温度安定性は、各温度に６０分間保持する条件下で７０℃まで安定であり、ｐＨ安定性は、各ｐＨに４℃で２４時間保持する条件下で４．５乃至９．５の範囲で安定であった。組換え型エピメラーゼのこれらの理化学的性質は、実験２で精製したセロビオース２−エピメラーゼのそれと実質的に同一であった。以上の結果は、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４由来セロビオース２−エピメラーゼは、組換えＤＮＡ技術によって良好に製造できることを示している。

なお、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４のゲノムＤＮＡの全塩基配列は既に明らかにされており、遺伝子データベース『ＧｅｎＢａｎｋ』に登録されている（アクセッションＮｏ．ＣＰ０００６７９）。実験４−２で判明したセロビオース２−エピメラーゼの全アミノ酸配列（配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列）に基づき、当該ゲノムＤＮＡ情報を検索したところ、セロビオース２−エピメラーゼのアミノ酸配列は、意外にもカルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４のゲノムＤＮＡにおいて、「Ｎ−アシルグルコサミン２−エピメラーゼ」をコードすると推定されている遺伝子（Ｃｓａｃ０２９４）がコードするアミノ酸配列と完全に一致していることが判明した。この結果は、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４のゲノムＤＮＡにおいて「Ｎ−アシルグルコサミン２−エピメラーゼ」をコードすると推定されていた遺伝子（Ｃｓａｃ０２９４）が、正しくはセロビオース２−エピメラーゼをコードする遺伝子であることを物語っている。

＜実験５：セロビオース２−エピメラーゼの基質特異性＞
実験４−４の方法で得た組換え型セロビオース２−エピメラーゼ精製標品を各種糖質に作用させて基質特異性を調べた。Ｄ−グルコース、Ｄ−キシロース、Ｄ−アロース、Ｄ−リボース、Ｄ−ガラクトース、Ｄ−フラクトース、Ｄ−マンノース、Ｄ−プシコース、Ｄ−タガトース、Ｌ−ソルボース、Ｌ−ラムノース、Ｌ−リボース、トレハロース、コージビオース、ニゲロース、イソマルトース、ネオトレハロース、ゲンチオビオース、ラクトース、スクロース、マルツロース、パラチノース、マルトース、マルトトリオース、マルトテトラオース、マルトペンタオース、マルトヘキサオース、マルトヘプタオース、セロビオース、セロトリオース、セロテトラオース、セラギノース、イソマルトシルグルコシド、イソマルトトリオース、パノース、イソパノース、エルロース、マルチトール、マルトトリイトール、メチル−α−グルコシド、メチル−β−グルコシド、Ｄ−グルコサミン、Ｄ−ガラクトサミン、Ｄ−グルクロン酸、Ｎ−アセチルグルコサミン、又は、Ｎ−アセチルガラクトサミンを２％（ｗ／ｖ）含み、終濃度４０ｍＭになるようＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ８．０）を加えた各基質溶液に、実験４−４の方法で得た組換え型セロビオース２−エピメラーゼ精製標品を基質固形物１グラム当たりそれぞれ５００単位ずつ加え、６０℃で２４時間作用させた。反応液を１００℃で１０分間加熱して反応を停止させた後、酵素反応前後の反応液中の糖質を調べるため、実験１−２で行ったものと同じ方法によるＴＬＣ分析に供した。基質特異性は、基質糖質以外の反応生成物のスポットの有無と発色の強さの程度を調べることにより判定した。結果を表３に示す。

表３の結果から明らかなように、本酵素は、試験した基質の内、ラクトース、セロビオース、セロトリオース及びセロテトラオースによく作用し、また、Ｄ−グルコース、Ｄ−マンノース、マルトース及びマルトトリオースに作用して、異性化糖と考えられる生成物を生成した。さらに、Ｄ−ガラクトース、Ｄ−フラクトース、Ｄ−タガトース、マルツロース、マルトテトラオース、マルトペンタオース、マルトヘキサオース及びマルトヘプタオースにも僅かに作用した。

＜実験６：単糖から生成する異性化糖＞
本セロビオース２−エピメラーゼをＤ−グルコース、Ｄ−ガラクトース又はＤ−マンノースに作用させた場合の反応生成物を調べた。Ｄ−グルコース、Ｄ−ガラクトース又はＤ−マンノースを５０ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）に終濃度２０％（ｗ／ｖ）となるように溶解し、それぞれ基質溶液とした。基質溶液０．１ｍｌに、実験４−４の方法で調製した組換え型セロビオース２−エピメラーゼ精製標品を、Ｄ−グルコース及びＤ−マンノースの場合には基質固形物１グラム当たり１３０単位（酵素液として０．１ｍｌ）、Ｄ−ガラクトースの場合には基質固形物１グラム当たり５００単位（酵素液として０．１ｍｌ）加え、６０℃で４８時間反応させた。酵素反応後、１００℃で１０分間加熱して反応を停止させた。各反応液は反応液中の生成物を調べるためＨＰＬＣ分析に供した。なお、反応液中の生成物の分析は、単糖を分離するため下記のＨＰＬＣ条件により行った。結果を表４に示す。
＜ＨＰＬＣ条件＞
カラム：ＭＣＩｇｅｌ ＣＫ０８ＥＣ（三菱化学株式会社製）
溶離液：脱イオン水 カラム温度：７５℃
流 速：０．６ｍｌ／分
検 出：示差屈折計 ＲＩＤ−１０Ａ（株式会社島津製作所製）

表４の結果から明らかなように、本セロビオース２−エピメラーゼは、Ｄ−グルコースからＤ−マンノース及びＤ−フラクトースを、Ｄ−ガラクトースからＤ−タロース及びＤ−タガトースを、また、Ｄ−マンノースからＤ−グルコース及びＤ−フラクトースをそれぞれ生成していた。本酵素のＤ−ガラクトースへの作用は、Ｄ−グルコース及びＤ−マンノースへの作用に比べ弱いものであった。本酵素は、Ｄ−グルコース及びＤ−ガラクトースをそれぞれのエピマーであるＤ−マンノース及びＤ−タロースに変換するのみならず、それぞれＤ−フラクトース及びＤ−タガトースをも生成したことから、本酵素は２−エピマー化反応とアルドース−ケトース変換反応のいずれをも触媒する酵素であることが判明した。

＜実験７：ラクトースから生成する異性化糖＞
本セロビオース２−エピメラーゼの作用によりラクトースから生成する異性化糖を確認する目的で、異性化糖の単離と構造解析を行った。

＜実験７−１：ラクトースからの異性化糖の調製＞
２０ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）に終濃度１．１ｗ／ｖ％となるようにラクトースを溶解した基質溶液２００ｍｌに、実験４−４の方法で得た組換え型セロビオース２−エピメラーゼ精製標品を、基質固形物１グラム当たり１３０単位（酵素液として２０ｍｌ）を加え、５０℃で８時間反応させた。酵素反応後、１００℃で１０分間加熱して反応を停止させた。反応液中の糖質を調べるため、実験１−２に記載した条件によるＴＬＣ分析と下記の条件によるＨＰＬＣ分析とを行った。
＜ＨＰＬＣ条件＞
カラム：ＭＣＩｇｅｌ ＣＫ０８ＥＰ（三菱化学株式会社製造）
溶離液：脱イオン水 カラム温度：７５℃
流 速：０．６ｍｌ／分
検 出：示差屈折計 ＲＩＤ−１０Ａ（株式会社島津製作所製）

ＴＬＣクロマトグラムにおいて、反応液中には未反応のラクトースとともに２種類の異性化糖が認められた。ＴＬＣにおいてエピラクトースと同じＲｆ値を示す異性化糖を異性化糖Ａと、ラクトースとほとんど分離しないＲｆ値のより低い異性化糖を異性化糖Ｂと呼称することにした。異性化糖Ｂは、ジフェニルアミン−アニリン−リン酸発色において発色したことから、構造中にケトースを含む異性化糖と考えられた。反応液のＨＰＬＣクロマトグラムを図６に示す。ＨＰＬＣにおいて、これら異性化糖Ａ及びＢはラクトース（図６における符号Ｌａｃ）とは分離したものの、異性化糖同士では分離せず混合物の状態で検出され（図６における符号Ａ＋Ｂ）、反応液の糖組成はラクトース５２．７質量％、異性化糖Ａ及びＢの混合物４７．３質量％であった。

＜実験７−２：異性化糖Ａ及びＢの単離精製＞
上記したように、ＴＬＣでは異性化糖ＡとＢは分離するものの異性化糖Ｂがラクトースと分離せず、一方、ＨＰＬＣでは異性化糖Ａ及びＢとラクトースは分離するものの、異性化糖ＡとＢは分離しなかった。この知見に基づき、まずＨＰＬＣによりラクトースを除去し異性化糖Ａ及びＢの混合物を取得した後、分取ＴＬＣにより異性化糖Ａ及びＢを単離精製することとした。

＜実験７−２−１：分取ＨＰＬＣによる異性化糖Ａ及びＢの混合物の取得＞
実験７−１で得た反応液の固形物として３３０ｍｇを８０回に分けて実験７−１に記載したＨＰＬＣに供し、異性化糖Ａ及びＢの混合物を分取し、分取画分を濃縮、乾固し、混合物としての含量９８．７質量％の糖質標品（単糖を１．３質量％含有）を固形物として１５３ｍｇ得た。

＜実験７−２−２：分取ＴＬＣによる異性化糖Ａ及びＢの単離＞
実験７−２−１で得た異性化糖Ａ及びＢを含む糖質標品５７．６ｍｇを実験１−２に記載したＴＬＣに供して２回展開した後、異性化糖Ａ及びＢそれぞれに該当するＲｆ値のシリカゲルを別々にかき取り、採取したシリカゲルから異性化糖Ａ及びＢを常法に従い脱イオン水で抽出し、濃縮、乾固して異性化糖Ａ標品を固形物として２１．９ｍｇ、異性化糖Ｂ標品を固形物として１７．８ｍｇ得た。得られた標品の一部を実験１−２に記載の方法でＧＣ分析に供し、それぞれの純度を測定したところ、異性化糖Ａは純度９０．２質量％（単糖を９．８質量％含有）、異性化糖Ｂは純度９７．７質量％（単糖を２．３質量％含有）であった。

＜実験７−３：異性化糖Ａ及びＢの構造解析＞
実験６において本酵素は２−エピマー化反応とアルドース−ケトース変換反応のいずれをも触媒することが判明した。その結果に基づいて、異性化糖Ａを基質ラクトースのエピマーであるエピラクトースと、また、異性化糖Ｂをラクトースの還元末端グルコースがフラクトースに異性化したラクツロースと推定した。以下、本実験では、異性化糖Ａ及びＢの、市販のエピラクトース標準品及びラクツロース標準品との異同を核磁気共鳴（ＮＭＲ）分析により調べた。

実験７−２で得られた異性化糖Ａ及びＢの標品を用い、下記の条件によりプロトンＮＭＲ（^１Ｈ−ＮＭＲ）分析を行った。また、市販のエピラクトース及びラクツロースの標準品についても同様に行った。異性化糖Ａ及びエピラクトース標準品の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルをそれぞれ図７及び８に、また、異性化糖Ｂ及びラクツロース標準品の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルをそれぞれ図９及び１０に示した。
＜^１Ｈ−ＮＭＲ測定条件＞
核磁気共鳴装置：ＪＮＭ−ＡＬ３００型（日本電子株式会社製）
溶媒：Ｄ_２Ｏ 試料量：２０ｍｇ
磁場強度：３００．４ＭＨｚ 積算回数：１６回

図７及び８から明らかなように、異性化糖Ａの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルはエピラクトース標準品のそれと、また、図９及び１０から明らかなように、異性化糖Ｂの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルはラクツロース標準品のそれと、それぞれ完全に一致した。以上の結果から、ラクトースから生成した異性化糖Ａはエピラクトースであり、異性化糖Ｂはラクツロースであることが確認された。

＜実験８：セロビオースから生成する異性化糖＞
本セロビオース２−エピメラーゼの作用によりセロビオースから生成する異性化糖を特定する目的で、異性化糖の単離と構造解析を行った。

＜実験８−１：セロビオースからの異性化糖の調製＞
セロビオースを２０ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）に１０％（ｗ／ｖ）となるように溶解した基質溶液２０ｍｌに、実験４−４の方法で得た組換え型セロビオース２−エピメラーゼ生成標品を、基質固形物１グラム当たり５０単位（酵素液として１０ｍｌ）加え、６０℃で２３時間反応させた。酵素反応後、反応液を１００℃で１０分間加熱して反応を停止させた。反応液の糖組成を下記の条件によるＨＰＬＣ分析にて調べた。ＨＰＬＣクロマトグラムを図１１に示す。
＜ＨＰＬＣ条件＞
カラム：Ｓｈｏｄｅｘ ＳＵＧＡＲ ＳＰ０８１０（昭和電工株式会社製）とＭＣＩｇｅｌ ＣＫ０８ＥＰ（三菱化学株式会社製造）の２本のカラムをこの順序で直列に連結したもの
溶離液：脱イオン水 カラム温度：７５℃
流 速：０．６ｍｌ／分
検 出：示差屈折計 ＲＩＤ−１０Ａ（株式会社島津製作所製）

図１１に示すように、反応液には未反応のセロビオースのピーク（図１１における符号Ｃｅｌ）とともに異性化糖と考えられる２つのピークが認められた。上記ＨＰＬＣにおいて２８．９分に溶出する糖質を異性化糖Ｃ（図１１における符号Ｃ）と、また、２７．４分に溶出する糖質を異性化糖Ｄ（図１１における符号Ｄ）と呼称することにした。反応液の糖組成はセロビオース４０．５質量％、異性化糖Ｃ１６．５質量％、及び、異性化糖Ｄ４３．０質量％であった。

＜実験８−２：異性化糖Ｃ及びＤの単離精製＞
実験８−１で得た反応液の固形物として４３２ｍｇを１００回に分けて実験８−１に記載したＨＰＬＣに供し、異性化糖Ｃ及びＤをそれぞれ分取し精製した。それぞれの分取画分を濃縮、乾固し、いずれも純度１００％の異性化糖Ｃを１７．９ｍｇ、異性化糖Ｄを１１８ｍｇ得た。

＜実験８−３：異性化糖Ｃの構造解析＞
＜実験８−３−１：質量分析＞
実験８−２で得た異性化糖Ｃについて質量分析装置『ＬＣＱ−Ａｄｖａｎｔａｇｅ』（サーモフィッシャー社製）を用いて質量分析したところ、質量数３６５のナトリウム付加分子イオンが顕著に検出され、異性化糖Ｃの質量数は３４２であることが判明した。

＜実験８−３−２：酵素分解＞
実験８−２で得た異性化糖Ｃを２０ｍＭ酢酸緩衝液に濃度２％（ｗ／ｖ）となるように溶解した基質溶液０．３ｍｌに、β−グルコシダーゼ（オリエンタル酵母工業株式会社製）を基質１グラム当たり５００単位添加（酵素液として０．３ｍｌ）し、４０℃で１６時間反応させた。１００℃で１０分間加熱して反応を停止させた後、反応生成物を調べるため実験６で用いたＨＰＬＣに供し、生成した単糖を調べたところ、Ｄ−グルコースとＤ−マンノースが等モル認められた。この結果とβ−グルコシダーゼの基質特異性を考慮すると、異性化糖ＣはＤ−マンノースにＤ−グルコースがβ結合した二糖であることが判明した。

＜実験８−３−３：核磁気共鳴分析＞
実験８−２の方法で得られた異性化糖Ｃの標品を用い、常法に従って、核磁気共鳴（ＮＭＲ）分析を行った。^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルは実験７−３記載の条件で、また、^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルは下記の条件で測定した。
＜^１３Ｃ−ＮＭＲ測定条件＞
核磁気共鳴装置：ＪＮＭ−ＡＬ３００型（日本電子株式会社製）
溶媒：Ｄ_２Ｏ 試料量：１４〜３０ｍｇ
磁場強度：７５．４５ＭＨｚ 積算回数：１０００回

異性化糖Ｃ標品の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルを図１２に、^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルを図１３に示す。図１３の^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルにおいて、Ｄ−マンノースのＣ−４位シグナル（７９．３及び７８．９ｐｐｍ、図１３における符号＊）が大きく低磁場側にシフトしていたことから、Ｄ−グルコースはＤ−マンノースの４位に結合していることが分かった。また、図１２の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルにおいて、約４．３５ｐｐｍのシグナル（図１２における符号↓）はＤ−グルコース残基の１位プロトンに帰属され、そのスピン−スピン結合定数を求めたところ、約７．９Ｈｚであったことから、Ｄ−マンノースの４位に結合したＤ−グルコース残基の１位のアノマー型はβ型であることが判明した。さらに、異性化糖Ｃの^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルにおける各炭素シグナルの化学シフト値は、ウスイら、アグリカルチュラル・バイオロジカル・ケミストリー（Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ），第４３巻，８６３−８６５頁（１９７９年）に開示されたエピセロビオースのそれとよく一致した。

実験８−３−１乃至８−３−３の結果から、本エピメラーゼの作用によりセロビオースから生成した異性化糖Ｃは、４−Ｏ−β−Ｄ−グルコシルＤ−マンノース、すなわち、エピセロビオースであることが判明した。

＜実験８−４：異性化糖Ｄの構造解析＞
＜実験８−４−１：質量分析＞
実験８−２で得た異性化糖Ｄについて実験８−３−１と同様に質量分析したところ、質量数３６５のナトリウム付加分子イオンが顕著に検出され、異性化糖Ｃの質量数は３４２であることが判明した。

＜実験８−４−２：酵素分解＞
異性化糖Ｃに替えて実験８−２で得た異性化糖Ｄを用いた以外は実験８−３−２と同様に処理して、異性化糖Ｄの酵素分解を行った。反応生成物を調べるため実験６で用いたＨＰＬＣに供し、生成した単糖を調べたところ、Ｄ−グルコースとＤ−フラクトースが等モル認められた。この結果とβ−グルコシダーゼの基質特異性を考慮すると、異性化糖ＤはＤ−フラクトースにＤ−グルコースがβ結合した二糖であることが判明した。

＜実験８−４−３：核磁気共鳴分析＞
実験８−３−３と同様に、実験８−２の方法で得た異性化糖Ｄ標品のＮＭＲ分析を行った。^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルを図１４に、^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルを図１５に示す。図１５の^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルにおいて、Ｄ−フラクトースのＣ−４位シグナル（７９．９、８６．４及び８７．７ｐｐｍ、図１５における符号＊）が大きく低磁場側にシフトしていたことから、Ｄ−グルコースはＤ−フラクトースの４位に結合していることが分かった。また、図１４の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルにおいて、約４．４９ｐｐｍのシグナル、約４．４０ｐｐｍのシグナル、及び、約４．３８ｐｐｍのシグナル（図１４における符号↓）はＤ−グルコース残基の１位プロトンに帰属され、そのスピン−スピン結合定数を求めたところ、約７．９Ｈｚ（約４．４９ｐｐｍのシグナル）、約７．７Ｈｚ（約４．４０ｐｐｍのシグナル）、及び、約６．１Ｈｚ（約４．３８ｐｐｍのシグナル）であったことから、Ｄ−フラクトースの４位に結合したＤ−グルコース残基の１位のアノマー型はβ型であることが判明した。さらに、異性化糖Ｄの^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルにおける各炭素シグナルの化学シフト値は、フェファーら、カーボハイドレート・リサーチ（Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ），第１０２巻，１１−２２頁（１９８２年）に開示されたセロビウロースのそれとよく一致した。

実験８−４−１乃至８−４−３の結果から、本エピメラーゼの作用によりセロビオースから生成した異性化糖Ｄは、４−Ｏ−β−Ｄ−グルコシルＤ−フラクトース、すなわち、セロビウロースであることが判明した。

＜実験９：マルトースから生成する異性化糖＞
本セロビオース２−エピメラーゼの作用によりマルトースから生成する異性化糖を特定する目的で、異性化糖の単離と構造解析を行った。

＜実験９−１：マルトースからの異性化糖の調製＞
基質をセロビオースからマルトースに替え、実験４−４の方法で得た組換え型セロビオース２−エピメラーゼの酵素作用量を基質固形物１グラム当たり２００単位とした以外は、実験８−１と同様に反応させて反応液を得た。反応液のＨＰＬＣクロマトグラムを図１６に示す。図１６に示すように、反応液には未反応のマルトースのピーク（図１６における符号Ｍａｌ）とともに異性化糖と考えられる２つのピークが認められた。上記ＨＰＬＣにおいて３１．６分に溶出する糖質を異性化糖Ｅ（図１６における符号Ｅ）と、また、２８．０分に溶出する糖質を異性化糖Ｆ（図１６における符号Ｆ）と呼称することにした。反応液の糖組成はマルトース７０．１質量％、異性化糖Ｅ２２．２質量％、及び、異性化糖Ｆ７．７質量％であった。

＜実験９−２：異性化糖Ｅ及びＦの単離精製＞
実験９−１で得た反応液の固形物として１９１ｍｇを２９回に分けて実験８−１で用いたＨＰＬＣに供し、異性化糖Ｅ及びＦをそれぞれ分取し精製した。分取画分をそれぞれ濃縮、乾固し、純度９９．１質量％の異性化糖Ｅを３８．１ｍｇ、純度９２．３質量％の異性化糖Ｆを１４．２ｍｇ得た。

＜実験９−３：異性化糖Ｅの構造解析＞
＜実験９−３−１：質量分析＞
実験９−２で得た異性化糖Ｅについて実験８−３−１と同様に質量分析したところ、質量数３６５のナトリウム付加分子イオンが顕著に検出され、異性化糖Ｅの質量数は３４２であることが判明した。

＜実験９−３−２：酵素分解＞
実験９−２で得た異性化糖Ｅを２０ｍＭ酢酸緩衝液に濃度２％（ｗ／ｖ）となるように溶解した基質溶液０．３ｍｌに、α−グルコシダーゼ（天野エンザイム株式会社製）を基質１グラム当たり５００単位添加（酵素液として０．３ｍｌ）し、５０℃で１６時間反応させた。１００℃で１０分間加熱して反応を停止させた後、反応生成物を調べるため実験６で用いたＨＰＬＣに供し、生成した単糖を調べたところ、Ｄ−グルコースとＤ−マンノースが等モル認められた。この結果とα−グルコシダーゼの基質特異性を考慮すると、異性化糖ＥはＤ−マンノースにＤ−グルコースがα結合した二糖であることが判明した。

＜実験９−３−３：核磁気共鳴分析＞
実験８−３−３と同様に、実験９−２の方法で得た異性化糖Ｅ標品のＮＭＲ分析を行った。^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルを図１７に、^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルを図１８に示す。図１８の^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルにおいて、Ｄ−マンノースのＣ−４位シグナル（７７．７及び７７．２ｐｐｍ、図１８における符号＊）が大きく低磁場側にシフトしていたことから、Ｄ−グルコースはＤ−マンノースの４位に結合していることが分かった。また、図１７の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルにおいて、約５．２２ｐｐｍのシグナル（図１７における符号↓）はＤ−グルコース残基の１位プロトンに帰属され、そのスピン−スピン結合定数を求めたところ、約３．９Ｈｚであったことから、Ｄ−マンノースの４位に結合したＤ−グルコース残基の１位のアノマー型はα型であることが判明した。さらに、異性化糖Ｅの^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルにおける各炭素シグナルの化学シフト値は、特開平１０−９５７９４号公報に開示された４−α−Ｄ−グルコシルＤ−マンノースのそれとよく一致した。

実験９−３−１乃至９−３−３の結果から、本エピメラーゼの作用によりマルトースから生成した異性化糖Ｅは、４−Ｏ−α−Ｄ−グルコシルＤ−マンノース、すなわち、エピマルトースであることが判明した。

＜実験９−４：異性化糖Ｆの構造解析＞
実験６において本酵素は２−エピマー化反応のみならずアルドース−ケトース変換反応をも触媒することが判明し、実験７においてラクトースからラクツロースが、実験８においてセロビオースからセロビウロースが生成していたことから、異性化糖Ｆはマルトースの還元末端グルコースがフラクトースに異性化したマルツロースであると推定された。以下、本実験では、異性化糖Ｆの市販のマルツロース標準品との異同を^１Ｈ−ＮＭＲ分析により調べた。

実験９−２で得た異性化糖Ｆ標品を用い、実験７−３と同じ条件で^１Ｈ−ＮＭＲ分析を行った。また、市販のマルツロース標準品についても同様に行った。異性化糖Ｆ及びマルツロース標準品の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルをそれぞれ図１９及び２０に示した。

図１９及び２０から明らかなように、異性化糖Ｆの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルはマルツロース標準品のそれと完全に一致した。この結果から、マルトースから生成した異性化糖Ｆはマルツロースと同定された。

＜実験１０：マルトトリオースから生成する異性化糖＞
本セロビオース２−エピメラーゼの作用によりマルトトリオースから生成する異性化糖を特定する目的で、異性化糖の単離と構造解析を行った。

＜実験１０−１：マルトトリオースからの異性化糖の調製＞
基質をマルトースからマルトトリオースに替えた以外は、実験９−１と同様に反応させて反応液を得た。反応液のＨＰＬＣクロマトグラムを図２１に示す。図２１に示すように、反応液には未反応のマルトトリオースのピーク（図２１における符号Ｇ_３）とともに異性化糖と考えられる１つのピークが認められた。上記ＨＰＬＣにおいて２９．９分に溶出する糖質を異性化糖Ｇ（図２１における符号Ｇ）と呼称することにした。反応液の糖組成はマルトトリオース７３．８質量％、異性化糖Ｇ２３．３質量％、及び、その他未知糖２．９質量％であった。

＜実験１０−２：異性化糖Ｇの単離精製＞
実験１０−１で得た反応液の固形物として４７５ｍｇを８０回に分けて実験８−１で用いたＨＰＬＣに供し、異性化糖Ｇを分取し精製した。分取画分を濃縮、乾固し、純度９９．４質量％の異性化糖Ｇを１１３ｍｇ得た。

＜実験１０−３：異性化糖Ｇの構造解析＞
＜実験１０−３−１：質量分析＞
実験１０−２で得た異性化糖Ｇについて実験８−３−１と同様に質量分析したところ、質量数５２７のナトリウム付加分子イオンが顕著に検出され、異性化糖Ｇの質量数は５０４であることが判明した。

＜実験１０−３−２：酵素分解＞
異性化糖Ｅ標品を実験１０−２で得た異性化糖Ｇ標品に替えた以外は実験９−３−２と同様にα−グルコシダーゼで酵素分解し、反応液をＨＰＬＣに供して生成した単糖を調べたところ、Ｄ−グルコースとＤ−マンノースが２：１のモル比で認められた。この結果とα−グルコシダーゼの基質特異性を考慮すると、異性化糖Ｇは、還元末端に存在するＤ−マンノース１分子とＤ−グルコース２分子とからなる三糖であることが判明した。

＜実験１０−３−３：核磁気共鳴分析＞
実験８−３−３と同様に、実験１０−２の方法で得た異性化糖Ｇ標品のＮＭＲ分析を行った。^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルを図２２に、^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルを図２３に示す。図２３の^１３Ｃ−ＮＭＲスペクトルにおいて、Ｄ−マンノースのＣ−４位シグナル（７７．９及び７７．３ｐｐｍ、図２３における符号＊）が大きく低磁場側にシフトしていたことから、Ｄ−グルコースはＤ−マンノースの４位に結合していることが分かった。また、Ｄ−グルコース１分子のＣ−４位シグナル（７９．２ｐｐｍ、図２３における符号＃）も大きく低磁場側にシフトしていたことから、Ｄ−グルコース１分子がＤ−グルコースの４位に結合していることも判明した。さらに、図２２の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルにおいて、約５．２０ｐｐｍのシグナル（図２２における符号↓）はＤ−マンノースに結合したＤ−グルコース残基の１位プロトンに帰属され、そのスピン−スピン結合定数を求めたところ、約３．９Ｈｚであったことから、Ｄ−マンノースの４位に結合したＤ−グルコース残基の１位のアノマー型はα型であることが判明した。またさらに、約５．２６ｐｐｍのシグナル（図２２における符号ｘ）はＤ−グルコースに結合したＤ−グルコース残基の１位プロトンに帰属され、そのスピン−スピン結合定数を求めたところ、約３．７Ｈｚであったことから、Ｄ−グルコースの４位に結合したＤ−グルコース残基の１位のアノマー型もα型であることが判明した。

実験１０−３−１乃至１０−３−３の結果から、本エピメラーゼの作用によりマルトトリオースから生成した異性化糖Ｇは、４−Ｏ−α−Ｄ−グルコシル−４−Ｏ−α−グルコシルＤ−マンノース、すなわち、エピマルトトリオースであることが判明した。

＜実験１１：各種糖質からの異性化糖の生成−酵素作用量の影響−＞
実験５乃至１０の結果から、本セロビオース２−エピメラーゼは、Ｄ−グルコース、Ｄ−ガラクトース、Ｄ−フラクトース、Ｄ−マンノース、Ｄ−タガトースなどの単糖、マルトース、セロビオース、ラクトースなどの二糖、及び、マルトオリゴ糖、セロオリゴ糖などのオリゴ糖に作用し、２−エピマー化反応とアルドース−ケトース変換反応を触媒することが判明した。本実験では、各種基質の異性化反応に及ぼす酵素作用量の影響を調べた。

単糖としてＤ−グルコース、Ｄ−ガラクトース、Ｄ−マンノース、Ｄ−タロース、Ｄ−フラクトース及びＤ−タガトースの６種、二糖としてマルトース、セロビオース及びラクトースの３種、三糖としてマルトトリオースの１種をそれぞれ基質として用い、それぞれを２０ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ６．０）に溶解し、実験４−４の方法で得た組換え型セロビオース２−エピメラーゼ精製標品を添加し、基質濃度１０％（ｗ／ｖ）、６０℃で７２時間反応させた。酵素作用量は、基質が単糖の場合は基質１グラム当たり１３０又は５００単位、基質が二糖及び三糖の場合は、基質１グラム当たり１及び／又は１３０単位とした。各反応液は、１００℃で１０分間加熱して反応を停止させ、ＨＰＬＣ分析に供して反応液の固形物当たりの異性化糖含量を測定した。なお、基質ラクトースの反応液中のエピラクトース及びラクツロース含量については、実験１−２で用いたＧＣ分析により測定した。結果を表５に示す。

表５から明らかなように、本セロビオース２−エピメラーゼはセロビオース及びラクトースによく作用し、酵素作用量が基質１グラム当たり１単位と比較的低い場合においても２−エピマー化反応を触媒し、エピセロビオース及びエピラクトースを生成した。また、酵素作用量を増加させるとアルドース−ケトース変換反応によるセロビウロース及びラクツロースが顕著に生成した。本酵素の単糖や三糖への作用は、セロビオース及びラクトースへの場合と比較して弱く、異性化には多量の酵素を要した。

ここまでの実験で得られたカルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４由来セロビオース２−エピメラーゼの理化学的性質及び基質特異性を、公知のルミノコッカス・アルブス由来セロビオース２−エピメラーゼ（非特許文献３より抜粋）及びユーバクテリウム・セルロソルベンス由来セロビオース２−エピメラーゼ（非特許文献４より抜粋）の理化学的性質及び基質特異性とともに表６にまとめた。

表６から明らかなように、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４由来セロビオース２−エピメラーゼは、ルミノコッカス・アルブス及びユーバクテリウム・セルロソルベンスにそれぞれ由来する公知のセロビオース２−エピメラーゼと比較して、至適温度が４５乃至５０℃高く、温度安定性が３０℃程度高い、耐熱性に優れる酵素であった。また、カルジセルロシルプトル・サッカロリティカス ＡＴＣＣ４３４９４由来セロビオース２−エピメラーゼは、公知のルミノコッカス・アルブス由来及びユーバクテリウム・セルロソルベンス由来セロビオース２−エピメラーゼでは作用しないと報告（非特許文献３及び４を参照）されているＤ−グルコース、Ｄ−ガラクトース、Ｄ−マンノースなどの単糖や、マルトースにも作用する新規な酵素であることが判明した

以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明する。しかしながら、本発明はこれら実施例により限定されるものではない。

＜Ｄ−マンノースの調製＞
Ｄ−グルコースの１０％（ｗ／ｖ）水溶液（ｐＨ６．５）に、実験４−４の方法で精製した組換え型セロビオース２−エピメラーゼをＤ−グルコース１グラム当り１３０単位（ラクトース２−エピメラーゼ活性）の割合で加え、６０℃で４８時間反応させたところ、糖組成中Ｄ−マンノースが２１質量％生成した。反応後、反応液を常法に従って、活性炭を用いて脱色し、次いで、Ｈ型イオン交換樹脂（商品名「ダイヤイオン ＳＫ１Ｂ」、三菱化学株式会社製）及びＯＨ型イオン交換樹脂（商品名「ダイヤイオン ＷＡ３０」、三菱化学株式会社製）を用いて脱塩し、減圧濃縮してＤ−マンノースを含む透明なシラップを得た。本シラップを塩型強酸性カチオン交換樹脂（ダイヤイオンＵＢＫ−５３０、Ｃａ型、三菱化学株式会社製）を用いるカラムクロマトグラフィーにかけ、分離精製し、濃縮してシラップ状のＤ−マンノースを固形物当り収率約１８％で得た。

＜エピラクトースの調製＞
ラクトースの１０％（ｗ／ｖ）水溶液（ｐＨ６．５）に、実験４−４の方法で精製した組換え型セロビオース２−エピメラーゼをラクトース１グラム当り２単位（ラクトース２−エピメラーゼ活性）の割合で加え、６０℃で７２時間反応させた。反応液を１００℃で１５分間加熱して反応を停止させ、冷却した後、反応液の糖組成をＨＰＬＣ及びＧＣにて測定したところ、固形物当たり未反応のラクトースを６９質量％、エピラクトースを２８質量％、ラクツロースを３質量％含有していた。この糖液のｐＨを４．５に調製した後、ラクターゼ剤（商品名「ラクターゼＹ−ＡＯ」、ヤクルト薬品工業株式会社販売）を基質１グラム当たり２５単位添加し、４０℃で１６時間反応させて、糖液中のラクトース及びラクツロースを優先的に加水分解し、反応後、反応液を実施例１と同様に、脱色、脱塩し、減圧濃縮してエピラクトースを含む透明なシラップを得た。本シラップを実施例１と同様に塩型強酸性カチオン交換樹脂を用いるカラムクロマトグラフィーにより、分離精製し、濃縮してシラップ状のエピラクトースを固形物当り収率約２３％で得た。

＜エピセロビオース含有シラップの調製＞
セロビオースの１０％（ｗ／ｖ）水溶液（ｐＨ６．５）に、実験４−４の方法で精製した組換え型セロビオース２−エピメラーゼをセロビオース１グラム当り２単位（ラクトース２−エピメラーゼ活性）の割合で加え、６０℃で７２時間反応させた。反応液を１００℃で１０分間加熱して反応を停止させ、冷却した後、反応液の糖組成をＨＰＬＣ及びＧＣにて測定したところ、固形物当たり未反応のセロビオースを６９質量％、エピセロビオースを２８質量％、セロビウロースを３質量％含有していた。反応液を実施例１と同様に、脱色、脱塩し、減圧濃縮し透明なエピセロビオース含有シラップを固形物当り収率約９７％で得た。

＜エピマルトース含有シラップの調製＞
マルトースの１０％（ｗ／ｖ）水溶液（ｐＨ７．３）に、実験４−４の方法で精製した組換え型セロビオース２−エピメラーゼをマルトース１グラム当り２００単位（ラクトース２−エピメラーゼ活性）の割合で加え、６０℃で２３時間反応させた。反応液を１００℃で１０分間加熱して反応を停止させ、冷却した後、反応液の糖組成をＨＰＬＣにて測定したところ、固形物当たり未反応のマルトースを７０質量％、エピマルトースを２２質量％、マルツロースを８質量％含有していた。反応液を実施例１と同様に、脱色、脱塩し、減圧濃縮し透明なエピマルトース含有シラップを固形物当り収率約９６％で得た。

＜セロビウロースの調製＞
実験４−４の方法で精製した組換え型セロビオース２−エピメラーゼをセロビオース１グラム当り１３０単位（ラクトース２−エピメラーゼ活性）作用させた以外は、実施例３と同様にしてセロビオースに作用させた。反応停止後の反応液の糖組成をＨＰＬＣにて調べたところ、固形物当たり未反応のセロビオースを３３質量％、エピセロビオースを１３質量％、セロビウロースを５４質量％含有していた。反応液を実施例３と同様に、脱色、脱塩し、減圧濃縮して透明なシラップを得た後、本シラップを実施例１と同様に塩型強酸性カチオン交換樹脂を用いるカラムクロマトグラフィーにより、分離精製し、濃縮してシラップ状のセロビウロースを固形物当り収率約４５％で得た。

＜固定化セロビオース２−エピメラーゼ＞
実験４−４の方法で形質転換体『ＥＴＣＳ１』を培養し、培養液を遠心分離してセロビオース２−エピメラーゼ活性を発現した湿菌体１００ｇを得た。次いで、この湿菌体を、２０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）に溶解した２．５％アルギン酸ナトリウム（和光純薬工業株式会社販売）１００ｍｌに混練した。得られた菌体を含むスラリーを、マグネティックスターラーで攪拌した０．１ＭのＣａＣｌ_２水溶液に、水面より約２０ｃｍの高さから連続的に滴下し、直径約２ｍｍの球状のゲル化物を調製した。これを０．１ＭのＣａＣｌ_２水溶液中に約２時間保持した後、吸引濾過してアルギン酸固定化菌体を回収した。この固定化菌体はセロビオース２−エピメラーゼ活性を発現していることから、カラムに充填するなどして固定化セロビオース２−エピメラーゼとして有利に利用できる。

本発明のセロビオース２−エピメラーゼは、従来公知のセロビオース２−エピメラーゼに比べ優れた耐熱性を有し、また新規な糖異性化反応を触媒するので、Ｄ−グルコースからＤ−マンノースの、マルトースからエピマルトースの、セロビオースからエピセロビオースやセロビウロースの、又は、ラクトースからエピラクトースやラクツロースの製造など、安価な原料から、より付加価値の高い糖質を工業レベルで製造する上で非常に有利な酵素である。本発明は、かくも顕著な作用効果を奏する発明であり、産業上の貢献度が誠に多大な意義ある発明である。

Claims (4)

1. Ｄ−グルコース、Ｄ−ガラクトース、マルトース、及び、重合度３以上のマルトオリゴ糖から選ばれる糖質に、配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列か、当該アミノ酸配列において酵素活性を保持する範囲で１個以上１０個未満のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加したアミノ酸配列を有するセロビオース２−エピメラーゼを作用させて、それぞれに対応するＤ−マンノース、Ｄ−タロース、エピマルトース、及び、重合度３以上のエピマルトオリゴ糖から選ばれる異性化糖を生成させる工程と、生成した異性化糖を採取する工程とを含んでなる異性化糖の製造方法。
2. Ｄ−グルコース、Ｄ−ガラクトース、マルトース、及び、重合度３以上のマルトオリゴ糖から選ばれる糖質を含んでなる栄養培地で配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列か、当該アミノ酸配列において酵素活性を保持する範囲で１個以上１０個未満のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加したアミノ酸配列を有するセロビオース２−エピメラーゼ産生能を有する微生物を培養する工程と、培養液中に生成する、それぞれに対応するＤ−マンノース、Ｄ−タロース、エピマルトース、及び、重合度３以上のエピマルトオリゴ糖から選ばれる異性化糖を採取する工程とを含んでなる異性化糖の製造方法。
3. Ｄ−グルコース又はＤ−マンノース、Ｄ−ガラクトース又はＤ−タロース、マルトース又はエピマルトース、セロビオース又はエピセロビオース、及び、ラクトース又はエピラクトースから選ばれる糖質に、配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列か、当該アミノ酸配列において酵素活性を保持する範囲で１個以上１０個未満のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加したアミノ酸配列を有するセロビオース２−エピメラーゼを作用させて、それぞれに対応するＤ−フラクトース、Ｄ−タガトース、マルツロース、セロビウロース及びラクツロースから選ばれる異性化糖を生成させる工程と、生成した異性化糖を採取する工程とを含んでなる異性化糖の製造方法。
4. Ｄ−グルコース又はＤ−マンノース、Ｄ−ガラクトース又はＤ−タロース、マルトース又はエピマルトース、セロビオース又はエピセロビオース、及び、ラクトース又はエピラクトースから選ばれる糖質を含んでなる栄養培地で配列表における配列番号１０で示されるアミノ酸配列か、当該アミノ酸配列において酵素活性を保持する範囲で１個以上１０個未満のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加したアミノ酸配列を有するセロビオース２−エピメラーゼ産生能を有する微生物を培養する工程と、培養液中に生成する、それぞれに対応するＤ−フラクトース、Ｄ−タガトース、マルツロース、セロビウロース及びラクツロースから選ばれる異性化糖を採取する工程とを含んでなる異性化糖の製造方法。