JP5341350B2 - 高血圧および血管新生におけるエンドセリン−1/アンジオテンシンii二重レセプター(dear)の役割 - Google Patents
高血圧および血管新生におけるエンドセリン−1/アンジオテンシンii二重レセプター(dear)の役割 Download PDFInfo
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Description
この出願は、2004年11月16日に出願されたU.S.Provisional Patent Application Serial No.60/628,447および2005年6月27日に出願されたU.S.Provisional Patent Application Serial No.60/694,268の35U.S.C.119(e)の下の利益を請求する。その内容はそのまま参照により本願に組み込まれる。
本発明は、National Institute of Health により授与されたContract No.HL69937の下で政府の支援を伴ってなされた。政府は、本発明における一定の権利を有する。
エンドセリン−1/アンジオテンシンII二重レセプター(Dear)は、AngIIアンチセンスオリゴヌクレオチドプローブを使用してそしてまた独立にET−1オリゴヌクレオチドを使用して、成獣ラット脳cDNAライブラリーから始めて単離された。Molecular Medicine4:96-108-1998参照。このレセプターの構造解析は、推定された1つの予想される膜貫通ドメインならびに別のET−1およびAngII推定結合ドメインを示した。機能的解析は、ET−1およびAngIIの両方共Dearに結合しそしてCa2+動員伝達システム(Ca2+ mobilizing transduction system)へのカップリングを誘導することを示した。
高血圧は、アメリカにおける最もありふれた慢性の病気である。American Heart Associationは、6千2百万人より多くの6歳以上のアメリカ人が高血圧に罹っておりそしてこれらの人々の少数の人しかその血圧をコントロールしていないと評価している。処置しないでいると、高血圧は、発作、心臓発作、腎臓損傷、充血性心不全および死亡をもたらすことがある。コントロールされていない軽度〜中程度の高血圧は、典型的な35歳の人の寿命の期待可能な長さを16歳減少させるであろう。最も軽い形態の高血圧、即ち「境界高血圧」ですら、人の寿命を数年短くすることができそしてクオリティーオブライフに負の影響を与えることができる。
血管新生は、新たに発生する血管の組織中への増殖(新生血管形成(neo-vascularization))および現存する血管のターゲット部位への合併吸収(co-opting)の両方を含む組織血管形成(tissue vascularization)のプロセスである。血管は、酸素および栄養を生きている組織に供給しそして廃産物を生きている組織から除去する手段である。血管新生は、重要な生物学的プロセスであることができる。例えば、血管新生は再生、成長および傷の修復に必須である。反対に、不適切な血管新生は、重い負の結果を与えることがある。例えば、腫瘍が急速に成長しそして転移することを可能とする酸素および栄養を腫瘍が十分に供給されるのは、血管新生の結果として充実性腫瘍に血管が形成された後のみである。
本発明の発明者は、Dearの発現および/またはDearへのET−1結合のアフィニティーを高めるDearにおける突然変異および/または多型は、高血圧に対する感受性を正確に予測することができることを発見した。Dearおよびそのヒト相同体における突然変異および/または多型は本発明に包含される。従って、本発明の1つの態様では、Dear遺伝子および/またはタンパク質を分析することにより高血圧に対する感受性を予測すること、目下の高血圧を診断することおよび/または高血圧の予後を提供することが可能である。野生型対照と比較して(1)Dear発現を高めるおよび/または(2)DearへのET−1結合のアフィニティーを高める突然変異および/または多型の存在は、高血圧へのヒトの感受性および/または高血圧による目下の苦痛を示している。
I.高血圧
本発明の1つの態様では、個体の高血圧への感受性を決定するための方法が開示され、そして高血圧の状態を決定するための診断および/または予後方法が開示される。対照と比較して、AngII、ET−1、VEGFシグナルペプチド(VEGFsp)または他のDearリガンドによるDearの発現増加および/またはDear活性化もしくはDearシグナリングの増強に相関するDearにおける突然変異および/または多型について、個体をスクリーニングする。健常な対照と比較して試験サンプルにおけるこのような突然変異および/または多型の存在は、個体の高血圧への感受性を示す。健常な対照と比較して試験サンプルにおけるこのような突然変異および/または多型の存在は、高血圧の目下の状態を示すこともできる。
突然変異および/または多型は、分析されるべき個体からのターゲット核酸において検出される。例えば、ゲノムDNAのアッセイのために、実質的にいかなる生物学的サンプル(純粋な赤血球以外の)も適当である。例えば、好都合な組織サンプルは、全血、精液、唾液、涙、尿、胎児物質、汗、頬、皮膚および髪を含む。cDNAおよびmRNAのアッセイのために、組織サンプルは、ターゲット核酸が発現される器官から得ることができ、例えば心臓、脳、腎臓、肝臓、脾臓、肺、大動脈、睾丸および子宮におけるDear発現を示す図5B参照。
突然変異した部位または多型部位を占める塩基の同一性は、以下に記載されるいくつかの方法により個体(例えば、分析されるべき患者)において決定されうる。
突然変異および/または多型を解析するためのアレル特異的プローブのデザインおよび使用は、例えば、Saiki et al., Nature 324, 163-166(1986); Dattagupta, EP235,726, Saiki, WO89/11548により記載されている。アレル特異的プローブは、2つの個体からのそれぞれのセグメントにおいて異なる突然変異形態または多型形態の存在により、1つの個体からのターゲットDNAのセグメントにはハイブリダイゼーションするが、他の個体からの対応するセグメントにはハイブリダイゼーションしないようにデザインされうる。ハイブリダイゼーション条件は、アレル間のハイブリダイゼーション強度の有意な差、好ましくはプローブがアレルの1つのみにハイブリダイゼーションする本質的に二者択一な応答(binary response)があるように、十分にストリンジェントであるべきである。あるプローブは、多型部位がプローブの中心位置(例えば、15マーにおいては7位置、16マーでは8または9位置において)とアラインメントするようにターゲットDNAのセグメントにハイブリダイゼーションするようにデザインされる。プローブのこのデザインは、異なるアレル形態間のハイブリダイゼーションにおける良好な識別を達成する。
突然変異および/または多型は、核酸アレーへのハイブリダイゼーションにより同定することができ、そのいくらかの例はWO95/11995により記載されている(これらはすべての目的でそのまま参照により組み込まれる)。特徴付けられた突然変異および/または多型の解析のために同じアレーまたは異なるアレーを使用することができる。WO95/11995は、前以て特徴付けられた突然変異および/または多型の変異体形態の検出のために最適化されるサブアレーも記載している。このようなサブアレーは、第1基準配列のアレル変異体である第2基準配列に対して相補性であるようにデザインされたプローブを含有する。プローブの第2グループは、プローブが第2基準配列に相補性を示すことを除いて上記したのと同じ原理によりデザインされる。第2グループ(または更なるグループ)を包含することは、多重突然変異がプローブの長さに対応する短い距離内で起こる(即ち、9〜21塩基内に2つ以上の突然変異)ことが期待される一次基準配列の短いサブ配列を解析するために特に有用でありうる。
アレル特異的プライマーは、突然変異および/または多型にオーバーラッピングするターゲットDNA上の部位にハイブリダイゼーションし、そして該プライマーが完全な相補性を示すアレル形態の増幅のみをプライミングする。Gibbs, Nucleic Acid Res. 17, 2427-2448(1989)参照。このプライマーは、遠位部位でハイブリダイゼーションする第2プライマーと共に使用される。増幅は、特定のアレル形態が存在することを意味する検出可能な産物をもたらす2つのプライマーから進行する。対照は、通常第2のプライマーの ペアーで行い、その1つは多型部位において一塩基ミスマッチを示しそしてその他方は遠位部位に対して完全に相補性を示す。一塩基ミスマッチは増幅を阻止しそして検出可能な産物が形成されない。この方法は、ミスマッチが突然変異および/または多型とアラインメントされたオリゴヌクレオチド3’の大部分の位置に含まれるとき、最善に働く。何故ならば、この位置はプライマーからの伸びに対して最も不安定化しているからである。例えば、WO93/22456を参照されたい。
本発明の突然変異および/または多型の配列の直接分析は、ジデオキシチェインターミネーター法またはマクサム−ギルバート法を使用して達成することができる(Sambrock et al., Molecular Cloning, A Laboratory manual(2nd Ed., CSHP, New York 1989); Zyskind et al., Recombinant DNA Laboratory Manual,(Acad. Press, 1988))。
ポリメラーゼ連鎖反応を使用して発生された増幅産物を、変性剤濃度勾配ゲル電気泳動の使用により解析することができる。異なるアレルは異なる配列依存性溶融性および溶液中のDNAの電気泳動移動に基づいて同定されうる。Erlich, ed., PCR Technology, Principles and Applications for DNA Amplification,(W.H.Freeman and Co, New York, 1992), Chapter 7.。
Orita et al., Proc. Nat. Acad. Sci. 86, 2766-2770(1989)に記載されたとおり、一本鎖PCR産物の電気泳動移動の変化により塩基の差を同定する一本鎖コンフォメーション突然変異および/または多型解析を使用して、ターゲット配列のアレルを区別することができる。増幅されたPCR産物を上記のように発生させることができ、そして加熱またはそうでなければ変性して一本鎖増幅産物を形成させることができる。一本鎖核酸を折りたたむかまたは塩基配列に部分的に依存している二次構造を形成することができる。一本鎖増幅産物の異なる電気泳動移動度は、ターゲット配列のアレル間の塩基配列の差に関係することができる。
本発明の他の局面に従えば、ヒトDearポリペプチドのアレル変異体(突然変異および/または多型)に対して特異的な抗体を使用して、Dear突然変異および/または多型の存在または不存在を検出することができる。
本明細書でそして全体にわたって使用された「Dear」、「DEAR」または「Dear」は、エンドセリン−1/アンジオテンシンII二重レセプターである。
A.血管新生を阻害すること
本発明の他の態様では、血管新生に依存するかまたは該血管新生によりモデュレーションされる疾患または障害を有する個体の組織において血管新生を阻害する方法であって、疾患または障害を血管新生の阻害により処置する方法が開示される。一般に、この方法は、血管新生阻害量のDear阻害剤を含む組成物を組織に投与することを含む。
本発明の別の態様では、新生血管形成または追加の血液供給を必要としている組織または器官における血管新生を刺激するのにDearアクチベーターを使用する。これらの場合に、Dearアクチベーター単独の送達または他の血管新生刺激剤との併用の送達は有利でありうる。
本発明のDearアクチベーターおよび阻害剤は、静脈内(I.V)、筋肉内(I.M)、皮下(S.C)、皮内(I.D)、腹腔内(I.P)、鞘内(I.T)、胸膜内、子宮内、直腸、膣アクチベーターまたは阻害剤)は、注射によるか、長時間にわたる緩やかな注入(gradual infusion)により非経口的に投与することができ、そして蠕動手段により送達することができる。
Rattus norvegicus エンドセリン1,アンジオテンシンIIレ二重セプター(Dear)、mRNA:
GeneID:446170 Locus tag: RGD:1303105
近親交配したDahl/JRラットモデルは、その先祖が同じの食塩抵抗性正常血圧の対照系統(Dahl R)(52)と共に食塩感受性高血圧系統(Dah1 S)からなるヒト本態性高血圧の確立されたモデルである。高血圧病因におけるDearの関与を調査するために、我々は、Dahl SおよびDahl Rレセプターの両方についての全体アミノ酸コード領域に及ぶcDNAsを得た。2つの非保存性アミノ酸置換をもたらす2つのヌクレオチドの相違が検出された:S44P置換をもたらすT2814(Dahl S)/C2814(Dahl R)ヌクレオチドトランジッションおよびM74T置換をもたらすT2901(Dahl S)/C2901(Dahl R)ヌクレオチドトランジッション(図1A、1B)。S44P置換は、細胞外ドメインにおける推定AngII結合部位に位置しており;一方M74T置換は推定膜貫通ドメインに位置している(図1B)。Dahl S cDNAヌクレオチド配列は、先に報告されたスプグレーグ−ドーリーラット脳DearcDNA(1)と同一である。我々は、Dahl SおよびDahl Rラット株の両方共スプレーグ−ドーリー株に由来している(52)ことを指摘する。
Dahl SおよびDahl R Dear cDNAsの特徴付け
Dahl SおよびDahl R Dear cDNAsは、それぞれDahl S/JRHsdおよびDahl R/JRHsdラット腎臓ポリA+RNAsからのRT−PCRであり(フォワードプライマー:5’−AAG−AAA−GCA−GCA−CCT−TGG−T−3’(配列番号3);リバースプライマー:5’−CGT−GGA−CAG−AGA−CCT−TGT−CT−3’(配列番号4))、次いでPT−ベクター系(Clontech, Palo Alto, CA)にサブクローニングした。プライマー配列は、先に報告されたスプレーグ−ドーリーDear cDNA(Genbank アクセッションナンバー AY664492)から得られた。次いで、全Dearアミノ酸コード領域を含むcDNAs(432bp)を両鎖に関して配列決定した。6匹のDahl Sラットおよび6匹のDahl Rラットを配列決定して、系統内配列不均一性を示さなかった。
Dahl S/jrHsd、Dahl R/jrHsd、LEW/SsNHsd、WKY/NHsd、SHR/NHsd、およびBN/HsdラットをHarlan Inc.(Indianapolis, IN)から購入した。SSCP解析を、本質的に記載された(60)異なるラット系統から単離されたゲノムDNAで行った。SSCPマーカーは、DearcDNAのアミノ酸コード領域以内のヌクレオチド2774〜2911(S44P置換に及ぶ)を含むPCR産物に基づいている(フォワードプライマー:5‘−GCT−ATG−TAT−CTG−GAC−AGC−AGC−3’(配列番号5);リバースプライマー:5’AGT−GAA−GCA−CAT−GAT−GCA−AGT−3’(配列番号6);産物:137bp)(1)。SSCPマーカーは、6%非変性ポリアクリルアミドにより検出された。
Dahl SおよびDahl R Dear cDNAsをpcDNA(+)発現ベクター(Invitrogen, Carlsbad, CA)に指向的に(5’から3’へ)サブクローニングし、そしてCos1細胞(ATCC)において一過性で発現させた。Cos1細胞をリポフェクチン媒介遺伝子トランスファーにより発現ベクターでランスフェクションし、そして細胞膜をホルモン結合のためにトランスフェクションの72時間後に単離した。ラット腎臓膜を実質的に記載されたとおりに調製した(42)。COS1細胞膜を記載のとおりに単離した(36)。簡単に言えば、細胞をリン酸緩衝化生理食塩水中で2回洗浄しそして10倍の氷冷バッファー(0.25Mスクロース、1mMEDTA、50μg/mlアプロチニン、10μg/mlロイペプチン、100μMフェニルメチルスルホニルフルオリド、25mMイミダゾール/HCl、pH7.4)中でホモジナイズした。ホモジネートを5,000gで15分間遠心し、そしてペレットを捨てた。次いで上清を27,500gで30分間遠心し、そして得られるペレットを氷冷懸濁バッファー(5mMMgCl2、0.2mMEDTA、50mMHepes、pH734)中で2回洗浄した。採集のペレットを適切なアッセイバッファーに再懸濁させそして液体窒素中で迅速に凍結させた。膜調製物を使用まで−80℃で保存した。膜のタンパク質濃度は、BCAタンパク質アッセイキット(PIERCE)により決定された。
[125I]Tyr4−アンジオテンシンIIおよび[125I]Tyr13−エンドセリン−1のCOS−1膜への結合を、急速濾過法により行った(32、50)。簡単に言えば、[125I]Tyr4−アンジオテンシンII(0.25〜6.5nM)または[125I]Tyr13−エンドセリン−1(0.045〜1.46nM)を100μlバッファーA(5mM MgCl2、0.2mMEDTA、10mg/mlBSA、10mMHepes、pH7.4)中で37℃で20分間膜(100μg)とインキュベーションした。結合反応を、1ml氷冷バッファーAの添加により終結させそして直ちに、ワットマンGF/Cフィルター(10mg/mlBSA中で4℃で一夜予備浸漬した)を通して直ちに濾過し、次いで15ml氷冷バッファーAで洗浄した。膜に結合した総放射能と1μMAngIIまたは1μMET−1を含有するブランクに結合した放射能との差として特異的結合を決定した。解離定数(Kd)および最大リガンド結合部位(Bmax)をHillプロット解析(55)を使用して決定した。Hill係数値(h)は、
関係式 In[B/(Bmax−B]]=hIn[遊離放射性リガンド]−InKd
から計算された。F検定(P<0.05)を使用して、飽和結合曲線が1つまたは2つの独立した結合部位に最善に適合しているかどうかを決定した。データは、スキャッチャードプロット解析により決定された2つのアフィニティー状態により最善に適合しており;KHおよびKLはそれぞれレセプターの高アフィニティー状態および低アフィニティー状態を意味する(44)。大部分の結果は、3〜5の独立した実験からの平均±SE(標準誤差)として表される。
合成ペプチドP51LLTSLGSKE60(配列番号7)に対して生じたポリクローナルウサギ抗ペプチド抗体を、ウエスタンブロット分析のために利用した(1)。形質膜(40μgタンパク質/レーン)を、12.5%SDS−PAGEに供し、そして分離したタンパク質をPVDF膜上にエレクトロトランスファーし、これをブロッキングバッファー(0.3%Tween−20、5%脱脂牛乳、137mMNaCl、2.7mMKCl、8.1mMNa2HPO4および1.5mMKH2PO4、pH7.4)と室温で2時間インキュベーションし、次いで一次抗体(1:500)と4℃で16時間インキュベーションした。次いで、PVDF膜を順次にビオチニル化ヤギ抗ウサギIgGとインキュベーションし、続いてセイヨウワサビペルオキシダーゼ連結ストレプトアビジンで免疫染色した。Dearとリガンドとの相互作用を確かめるために、我々はウエストウエスタンブロット分析を行った(62)。簡単にいえば、腎臓およびCOS−1細胞膜のタンパク質ブロットを、バッファーA中で放射性リガンド(10ml中の0.5μCi)と37℃で16時間インキュベーションした。次いでPVDF膜をバッファーAで37℃で15分間3回洗浄しそして−80℃で1〜3日間X線フイルムに露光させた。
Dahl S/jrHsdおよびDahl R/jrHsdラット株(Harlan, Indianapolis, Indiana)を使用してF2コホートを発生させた。このF2コホートは、F1(R雌×S雄)雑種の兄弟−姉妹交配から誘導されて、F2雄(n=106、Dahl S遺伝的バッグラウンドからのY染色体のみを有する)およびF2雌(n=102)分離集団を産生させた。
すべての動物処置を協会のガイドラインに従って行った。動物を、離乳から12週齢で高食塩食が始まるまで0.4%NaClを含有するLabDiet5001げっ歯類食事(Harlan Teklad, Madison WI)に維持した。食物ペレットおよび水を随意に摂取可能とした。血圧(BP)は、大動脈内腹部ラジオテレメトリー移植片(DATASCIENCE)を使用して実質的に記載された(38)とおりに測定して、24時間5分毎に10秒にわたる平均値をとる非ストレス下の血圧測定値を得た。収縮期(SBP)、拡張期(DBP)および平均動脈圧(MAP)を、心拍数及び活性度と共に得られた。F2ラットについてのプロトコールは下記のとおりであった:10週齢での移植手術;手術後に合併症を有していないラットのみを使用し;12日後ベースラインBPレベルを得た。高食塩(8%NaCl)チャレンジを12週齢で始め、雄F2相互交配ラットでは8週間維持しそして雌F2相互交配ラットでは12週間維持し;雌のBPはより低いので雌が同様なF2平均BPに達するためにより長い高食塩チャレンジが必要であった。表現型について使用されたBP値は、非ストレスBPを確かめる立ち入り禁止日の期間中24時間の記録から食塩ローディングの最終週に得られた平均である。我々は、SBP、DBPおよびMAPのためのベースラインBP平均は、同等であり、異なるDear遺伝子型の間ですべての3つのBPパラメーターについて±1mmHg範囲であった(P>0.5)ことを指摘する。
我々のDahl[R×S]相互交配について情報提供する10の染色体2マイクロサテライトマーカーおよび1つのSSCPをベースとするDearマーカー(上記した)を使用してジェノタイピングを行った。マーカー回帰およびQTL解析を、量的形質としてMAPを使用するMap Manager QTXb17(MNQTXb17)プログラム(46)により行った。MMQTXb17は、可能なQTLの有意の目安として尤度比統計量(likelihood ratio statistics)(LRS)をもたらす。遺伝的距離は、Kosambiマッピング関数を使用して計算した(遺伝的距離はcMで表される)。連鎖についての限界有意値(critical significance values)(LRS値)は、Kosambiマッピング関数および自由回帰モデル(free regression model)を使用して我々の雄および雌の子孫に関する並べ替え検定(10cM間隔で2000並べ替え)により決定された。従って、F2雄コホートについての最小LRS値は、示唆的連鎖では=4.1(LOD=0.89);有意な連鎖では=10.6(LOD=2.30);高度に有意な連鎖では=18.4(LOD=4.00)でありそしてF2雌コホートでは、示唆的連鎖では=3.9(LOD=0.85);有意な連鎖では=9.9(LOD=2.15);高度に有意な連鎖では=16.6(LOD=3.61)である。LRS4.6は、LOD1支持区間を正確に叙述する。QTL位置についての信頼区間は、ヒストグラム単一ピークがQTLを正確に叙述し、ピーク幅がQTLについての信頼区間を定める、ブーツストラップリサンプリング法により評価された。1つより多くのピ―クを示すヒストグラムは、QTLについての位置が十分明確にされていないことを警告するか、または多重連鎖したQTLs(QTL Map Manager)(46)がありうることを警告する(46)。
我々は、129SVJマウスゲノムライブラリーからのマウスDear遺伝子を単離した。分子の特徴付けは、1エキソン転写単位を検出する(図5A)。マウスレセプターポリペプチドは、ラットレセプターとの78%相同性を示す127アミノ酸を含有し、そして最近特徴付けられたDahl R Dear S44P/M74Tラット変異体(2)に類似するET−1のみに結合し(データは示されていない)、そしてDear-/-マウスにおける観察が多分AngII媒介されていないことを示唆している。マウスDear mRNAは試験されたすべての組織において検出され、腎臓および大動脈において発現は最高レベルである(図5B)。
ノーザンブロット解析
全RNAは、解析された異なる組織からのTRIzol(Invitrogen, Life technologies, Inc.,)で抽出された。次いで、ポリA+RNAを全RNAから、製造者の規定のとおりにDynabeads mRNA精製キット(Dynal Biotech)を使用して単離した。ポリA+RNA(3μg)を1%ホルムアルデヒド変性アガロースゲル上に流し、Zeta−Probeブロッティング膜(Bio−Rad)にトランスファーしそしてUV架橋して後ハイブリダイゼーションさせた。5×SSC、20mM Na2HPO4、7%SDS、1×Denhardt’s、100ug/ml変性された仔ウシDNAを含有するバッファー中で50℃で24時間ハイブリダイゼーションを行った。γ−32P−端部標識されたアンチセンスマウスDearオリゴヌクレオチド(5’−AGT−GAT−AGA−GCC−CCA−GTT−CCA−GCG−AGA−CTT−CAT−CTC−CTT−GC−3’)(配列番号8)をプローブとして使用した。膜を3×SSC、5%SDSで50℃で2回各30分間および1XXSSC、1%SDSで50℃で30分間順次に洗浄した。強化スクリーンにより−80℃でオートラジオグラフィーを行った。
λFIXII 129SVJマウスゲノムライブラリーからの100万の独立したリコンビナントを、プローブとして完全長3274bpラットDear cDNA1でスクリーニングした。第4ラウンドのスクリーニングの後に6つの独立したゲノムクローンを同定しそしてプラーク精製した。それらの1つ、λ191を更に制限消化及びその後のサザーンブロット分析により特徴付けた。1つの8kbBamHI/BamHI制限フラグメント(3274bpラットDear cDNAプローブにハイブリダイゼーションした)をpsp73プラスミドベクターにサブクローニングしそして配列決定した。
すべての動物処置は、教示ガイドラインに従って行った。Dearのアミノ酸81〜127を有効に欠失させるPGKNeoカセット(図5)でDearの3’端部を含有する300bpピースを置換することにより、ターゲティングベクターを構築した。ターゲティングベクターを129SVJ ES細胞にエレクトロポレーションしそしてG418耐性細胞クローンを単離した。各ES細胞クローンからゲノムDNAを得、そしてSphIで制限しそしてサザンブロット分析に供した。Dearの1.5Kbフラグメントをプローブとして使用した(図5)。8Kb内在性バンドおよび5.2Kbバンドの存在は、相同性組換えを示した(図5)。相同性組換えは、ターゲティングベクターの5’−端部から171bp上流に位置した上流プライマー(P1:5’−TGTGAGGCTAGAAGGCTGC−3’(配列番号9))およびPGKNeoカセット内に位置したリバースプライマー(P2:5’−GAGCAAGGTGAGATGACAGC−3’(配列番号10)を使用してPCR分析により更に証明された。サザンブロット分析(図5)において使用した同じプローブにハイブリダイゼーションさせた5.5Kbフラグメントの増幅は相同性組換えを示した。次いで5つのポジティブES細胞クローンを129SVJ胚盤胞にマイクロインジェクションして14のキメラマウスを発生させ、これをDearノックアウトされた系統を樹立するために使用した。C57BL/6遺伝的バックグラウンド上に同系交配するためのスピードコンジェニック戻し交配繁殖を10世代より多くの世代、≧BC10、にわたって行い、分析のためのすべてのDear+/-およびDear-/-マウスを得た(C57BL/6バックグラウンドにおける>99.95%コンジェニック系統)。
C57BL/6マウス腎臓ポリA+RNAからのRT−PCR(フォワードプライマー、5’−CACACAAAGCCTTACTTTATCC−3’(配列番号13);リバースプライマー、5’−AAAGCCAGCCTTTAGATAACC−3’(配列番号14))によりマウスDear cDNAを得、PT−ベクターシステム(Clontech,Palo Alto,CA)にサブクローニングし、次いで配列決定した(GenBank accession no.DQ009865)。PolyA+RNA(3μg)、プローブとしてγ−32P−端部標識されたアンチセンスマウスDearオリゴヌクレオチド(5’−AGTGATAGAGCCCCAGTTCCAGCGAGACTTCATCTCCTTGC−3’)(配列番号15)を使用して、記載された(1)とおりにRNAブロット分析を行った。レセプター発現研究、膜への125I−ET−1−1および125I−AngII結合、を記載のとおりに(2)行った。
胚外膜から単離されたゲノムDNAのPCR分析によりジェノタイピングを行った。Dearのアミノ酸コード領域内に位置したSacI部位にフランキングするプライマー(上流プライマー:5’−AACTTCTCTGGTCCGCTCC−3’(配列番号11);下流プライマー:5’−ACTGCTGAAACTAAAACCTGC−3’(配列番号12))を使用して野生型アレル(PCR産物=野生型アレルの存在を示す153bp)を検出し、そしてプライマーP1およびP2(上記した)を使用して突然変異したアレル(PCR産物=突然変異したアレルの存在を示す5.5Kb)を検出した。
我々は、マウス腎臓膜からの等量のタンパク質(40μg)およびマウスDear特異的合成ペプチド:L16SKCNHNEQDTA27(配列番号16)に対して発生させたウサギIgG抗マウスDear抗ペプチド特異的抗体(1:500希釈)を使用するウエスタンブロット分析によりDearタンパク質レベルについて戻し交雑BC10[C57BL/6]Dear+/-を解析して、Dear特異的ポリペプチドを検出した。我々は、300〜500拍動/分の範囲の心拍数を有する期間にBP測定を限定することにより、同等な生理学的状態を保証する軽い麻酔の下でテイルスカッフ血圧計(Visitech BP2000, Visitech CA)により6ヶ月齢マウスにおいて血圧を測定した。我々はマウス当たり3組の10回の連続した読み取りを得、そして規定された正常な心拍数範囲内での少なくとも20回の読み取りの平均を取った。
時間を決めた妊娠マウス(膣栓が検出される日の正午を0.5Eとみなす)から胚E9.5−E12.5日に胚を収集し;胚外膜組織DNAのPCR分析により遺伝子型を決定した。胚を解析し、そしてそれらの卵黄嚢の範囲内で写真を撮り、次いで4%の調製したばかりのPBS緩衝化パラホルムアルデヒド中に固定した。組織学的処理およびマッソントリクローム染色を確立された手順に従って行った。それぞれ、Nikon立体顕微鏡およびZeis Axioskop顕微鏡を使用してディジタル立体顕微鏡写真法および明視野顕微鏡写真法を行った。本質的に記載されたとおりに(27)、免疫組織化学を行った。
血圧測定
DearKOおよび野生型(N10戻し交雑世代)の雄及び雌コホートを使用してBPを測定した。12匹(+/-)および11匹(+/+)雌マウスおよび14匹(+/-)および14匹(+/+)雄マウスを調べた。試験は6ヶ月齢で行った。
図10Aに示されたとおり、SBPは、6ヶ月齢でWTおよびKO雄マウス間で異ならなかった(WT,137.2±5.1;KO,138.6±3.7,t=0.05,P>0.8)。対照的に、SBPは、WT雌マウスと比較するとKO雌マウスでは有意により低い(WT,134.9±4.0;KO,112.3±6.1;t=3.03,P<0.01)。平均心拍数は、WT雌マウスとKO雌マウス間で観察されるSBP差を断言する対比グループ(図10B)間で差はなかった。したがって、Dearローカスにおけるヘテロ接合性は、雌のみに影響を与えるBPに関する性特異的効果を示す。この結果は、Dahl ラットモデルにおける食塩感受性高血圧におけるDear変異体の雌特異的効果を示唆している最近のデータと一致している。
我々は、次に2つの確立されたげっ歯類腫瘍モデルにおけるDear阻害の役割を調べた。最初に、ヘテロ接合体Dear+/-欠失マウスおよび野生型Dear+/+同腹子を比較して、我々は、ヘテロ接合Dear+/-欠失雌(t検定、P<0.02)マウスでB16−F10メラノーマ細胞誘導腫瘍モデル(74)において腫瘍質量の有意な低下(図11A−B)および腫瘍容積の有意な低下(図11C−D)を検出したが、雄マウスでは検出しなかった。第2に、効果は雌Dear+/-マウスでのみ見られたので、我々は次に、Dear阻害が、3ヶ月未満の腫瘍潜伏期を有する雌ラットにおいて137Cs放射線誘導乳癌モデル(70)における腫瘍増殖を減少させるかどうかを試験した。2つの独立した阻害方法、照射の4週間後に開始された抗ラットDear抗ペプチド特異的抗体(図11C)および照射の2週間後に開始された抗ラットDearDNAワクチン(図11D)、を使用して、我々は6週間の観察期間中腫瘍の増殖の有意な減少を検出する。それぞれの対照グループとは対照的に、両抗Dear処置は、腫瘍増殖を阻止し、腫瘍出現の4〜6週間後から検出された腫瘍容積の%変化において有意な減少を伴った(ab−Rx:P<0.05〜0.01;DNA−v:P<0.02〜0.001)。更に、我々は、抗DearDNAワクチン接種したラットにおける腫瘍容積の68%減少を伴う有意な腫瘍退縮を検出する(図11D、P<0.01)。腫瘍増殖の阻害は、年齢が一致した無処置対照ラットと比較して、抗Dear抗体およびDNAワクチン処置したラットの両方における腫瘍パターン、核グレードおよび血管浸潤に基づく悪性潜在力の減少と関連している(図11E)。更に、無秩序脈管およびモザイク脈管の数の減少も抗Dear処置の結果として検出された。
我々は、10週齢Dear+/-および同腹子Dear+/+雄および雌マウス(n=5/グループ)において本質的にも記載されたとおり(74)B16−F10(ATCC)メラノーマ細胞誘導皮下腫瘍モデルを発生させた。腫瘍誘導の13日後に、我々は腫瘍を切り出しそして腫瘍重量及び容積を測定した。我々は、40日齢の本質的に記載された(70)48匹のスプレーグ−ドーリーラット(n=12/グループ)におけるラット乳腺腫瘍を127Cs放射能により誘導した。3ヶ月未満の腫瘍潜伏期を有するラットのみを研究のために使用した(抗Dear抗ペプチド抗体ではn=4;対照抗体ではn=3;抗DearDNAワクチンではn=3;対照pCDNAではn=3)。我々は照射の6週間後に12週齢で抗体処置を開始した。我々は、合成ペプチドP51LLTSLGSKE60(1)(配列番号7)に対して生じたアフィニティー精製したウサギIgG抗Dear抗ペプチド抗体を使用した。対照として、我々は、ウサギIgG(sc-2027, Santa Cruz Biologicals, Santa Cruz CA)を使用した。試験および対照抗体を腫瘍出現の6週間後の研究の終わりまで毎週3回腹腔内に注射した(6μg/注射)。平行して、我々は、抗Dear(pCDNA-Dear)DNAワクチンおよび対照発現ベクター(pCDNA,Invitrogen, Carlsbad, CA)模造(mock)ワクチンを使用して、8週例で照射の2週間後に試験ワクチン及び模造DNAワクチンを注射し、次いで腫瘍出現から6週間まで隔週に注射した(500μg/用量、筋肉内)。式(4/3πr1 2×r2)(式中、r1は記載された(71)より小さい半径でありそしてr2はより大きい半径である)を使用して測定した。我々は、t検定、二元反復測定分散分析(two-way repeated measures ANOVA)および統計的解析用の多重対比較のためのテューキーのポスト検定(Tukey's post test for multiple pairwise comparisons)を適切に使用した。
本明細書に記載されたすべての参考文献は、そのまま参照により本明細書に組みこまれる。
;トランスフェクションされていない対照Cos1細胞膜(Cos1−c)、Dahl R S44P/M74T変異体を発現するCos1細胞膜(Cos1−R)およびDahl S S44/M74変異体を発現するCos1細胞膜(Cos1−S)。125I−AngIIウエストウエスタンブロット分析(*AngII)は、Dahl S腎臓膜(Kid−S)およびDahl S S44/M74変異体を発現するCos1細胞膜(Cos1−S)にのみの結合を検出するが、125I−ET−1ウエストウエスタンブロット分析(*ET−1)は、Dahl R(Kid−R)およびDahl S(Kid−S)腎臓膜の両方ならびにDahl R S44P/M74T(Cos1−R)およびDahl S S44/M74(Cos1−S)分子変異体を発現するCos1細胞膜への結合を示す。
Claims (10)
- エンドセリン−1/アンジオテンシンII二重レセプター(Dear)に結合し、そしてET−1リガンドの結合を阻止する、抗Dear抗体または抗体フラグメントを含む、個体における血管新生を阻害するための医薬。
- 抗体または抗体フラグメントが、ヒト化抗体またはヒト化抗体フラグメントである、請求項1に記載の医薬。
- 血管新生は、免疫および非免疫炎症、慢性関節リューマチ、乾癬、糖尿病性網膜症、血管新生緑内症、再発狭窄症、黄班変性、アテローム性動脈硬化プラークにおける毛細管増殖、骨粗鬆症、癌、充実性腫瘍、充実性腫瘍転移、血管線維腫、水晶体後方線維増殖症、血管腫およびカポジ肉腫からなる群より選ばれる疾患または障害と関連している、請求項1に記載の医薬。
- 抗体が、モノクローナル抗体である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の医薬。
- 血管新生が、癌と関連している、請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬。
- 癌が、充実性腫瘍である、請求項5に記載の医薬。
- 癌が、充実性腫瘍転移である、請求項5に記載の医薬。
- 血管新生が、血管線維腫と関連している、請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬。
- 血管新生が、血管腫と関連している、請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬。
- 血管新生が、カポジ肉腫と関連している、請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬。
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