JP5199094B2 - 固体形態の不揮発性微生物代謝産物の発酵生産 - Google Patents
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Description
a1)穀物から選択されるデンプン供給原料を製粉することによって、粉砕原料を生産するステップと、
a2)水性液体中の粉砕原料を少なくとも1つのデンプン液化酵素の存在下で液化し、次いで少なくとも1つの糖化酵素を用いて糖化するステップ、
によって調製されるものであり、
但し、液化目的で、粉砕原料の少なくとも一部を液化の過程中に連続的にまたはバッチ式で水性液体に加える、
上記方法に関する。
a)ステップa1)およびa2)に記載の20重量%を超える単糖含有率を有する糖含有液体培地を調製するステップであって、糖含有液体培地がデンプン供給原料の非デンプン質固体成分も含む、ステップと、
b)不揮発性代謝産物(複数可)を生産するために発酵において糖含有液体培地を使用するステップと、
c)発酵液の揮発性成分の少なくとも一部を除去することによって、発酵液から、固体形態の不揮発性代謝産物(複数可)を、デンプン供給原料の非デンプン質固体成分の少なくとも一部と共に得るステップ。
(i)穀物粒から選択されるデンプン供給原料の非デンプン質固体成分を含む、ステップa2)で得られた糖含有液体培地から、50重量%以下の部分を除去し、残りを用いて、第1の不揮発性代謝産物(A)を固体形態で生産するための発酵を実施し;
(ii)デンプン供給原料の非デンプン質固体成分のすべてまたは一部をこの一部から除去し、これを用いて、代謝産物(A)と同一または異なる第2の不揮発性代謝産物(B)を固体形態で生産するための発酵を実施する、
上記方法に関する。
本明細書中、以下で用いる粉砕原料は、以下のように生成した。ローターミルを用いて、全トウモロコシ穀粒を完全に粉砕した。異なるビーター、粉砕通路またはスクリーン構成要素を用いて、3つの異なる度合の微粉度を得た。実験室用振動スクリーン(振動分析器:Retsch Vibrotronic VE1型;スクリーニング時間:5分間、振幅:1.5mm)を用いた粉砕原料のスクリーン分析により、表1に示す結果が得られた。
II.1.糖化ステップでのフィターゼ不使用
II.1a)酵素的なデンプンの液化
320gの乾式製粉したトウモロコシ穀粉(meal)(T71/03)を480gの水に懸濁させ、連続的に撹拌しながら310mgの塩化カルシウムを混合した。実験の全体にわたって撹拌を続けた。H2SO4でpHを6.5にし、混合物を35℃まで加熱した後、2.4gのターマミル(Termamyl) 120L L型(Novozymes A/S)を加えた。40分間の過程中で、反応混合物を86.5℃の温度まで加熱し、適切な場合は、pHをNaOHで上記値に再調整した。30分間以内に、さらに400gの乾式製粉したトウモロコシ穀粉(T71/03)を加え、このプロセス中に温度を91℃まで上げた。反応混合物をこの温度で約100分間保った。続いて、さらに2.4gのターマミル120Lを加え、温度を約100分間保った。実験中、ヨウ素-デンプン反応を用いて液化の進行をモニターした。最終的に温度を100℃まで上げ、反応混合物をさらに20分間沸騰させた。この時点で、デンプンは検出不可能となった。反応器を35℃まで冷却した。
II.1a)で得られた反応混合物を絶えず撹拌しながら61℃まで加熱した。実験の全体にわたって撹拌を続けた。H2SO4でpHを4.3にした後、10.8g(9.15ml)のDextrozyme GA(Novozymes A/S)を加えた。温度を約3時間保ち、この間、グルコース試験紙(BoehringerのS-Glucotest)を用いて反応の進行をモニターした。結果を本明細書の以下の表2に示す。続いて、反応混合物を80℃まで加熱し、その後、冷却した。これにより、約1.2kg/lの密度、および赤外線乾燥機によって決定すると約53.7重量%に達する乾物含有率を示す、約1180gの液体生成物が得られた。水で洗浄した後、約14重量%の乾物含有率(水溶性成分を含まず)が得られた。HPLCによって測定した反応混合物のグルコース含有率は、380g/lに達した(表2参照、試料番号7)。
II.2a)デンプンの液化
II.1a)に記載のようにして、乾式製粉したトウモロコシ穀粉の試料を液化する。
II.2a)で得られた反応混合物を絶えず撹拌しながら61℃まで加熱する。実験の全体にわたって撹拌を続ける。H2SO4でpHを4.3にした後、10.8g(9.15ml)のDextrozyme GA(Novozymes A/S)および70μlのフィターゼ(700単位のフィターゼ、BASF AGのNatuphyt Liquid 10 000L)を加える。温度を約3時間保ち、この間、グルコース試験紙(BoehringerのS-Glucotest)を用いて反応の進行をモニターする。続いて、反応混合物を80℃まで加熱し、その後、冷却する。得られた生成物を赤外線乾燥機によって乾燥させ、水で洗浄する。反応混合物のグルコース含有率をHPLCによって測定する。
II.3a)トウモロコシ穀粉
360gの脱イオン水を反応器内に導入する。1.54mlのCaCl2ストック溶液(100gのCaCl2×2H2O/l)を、約70ppmのCa2+の最終濃度までスラリーに加える。240gのトウモロコシ穀粉を、絶えず撹拌しながらゆっくりと水に流し込む。50重量%強度のNaOH水溶液を用いてpHを6.5にした後、4.0ml(=2重量%の酵素/乾物)のターマミル120 L L型(Novozymes A/S)を加える。その後、スラリーを85℃まで迅速に加熱する。このプロセス中、pHを持続的にモニターし、適切な場合はそれを調整することが必要である。
360gの脱イオン水を反応器に導入する。155gのライムギ穀粉を、絶えず撹拌しながらゆっくりと水に流し込む。温度を50℃で一定に維持する。50重量%強度のNaOH水溶液を用いてpHを5.5にした後、3.21ml(=2.5重量%の酵素/乾物)のViscozyme L(Novozymes A/S)を加える。30分後、さらなる穀粉の添加を開始し、最初に55gの穀粉を加える。さらに30分後、さらに50gの穀粉を加え、30分後、さらに40gの穀粉を加える。最後の添加の30分後、液化を開始してもよい。
360gの脱イオン水を反応器に導入する。水を55℃まで加熱し、50重量%強度のNaOH水溶液を用いてpHを6.0に調整する。温度およびpHを調整した後、3.21ml(=2.5重量%の酵素/乾物)のShearzyme 500L(Novozymes A/S)を加える。155gのコムギ穀粉を、絶えず撹拌しながら溶液に流し込む。温度およびpHを一定に保つ。30分後、さらなる穀粉の添加を開始し、最初に55gの穀粉を加える。さらに30分後、さらに50gの穀粉を加え、30分後、さらに40gの穀粉を加える。最後の添加の30分後、液化を開始してもよい。
以下の実施例の一部では、国際公開WO05/059144号に名称ATCC13032 lysCfbrとして記載された改変コリネバクテリウム・グルタミカム株を用いた。
a)酵素的なデンプンの液化および糖化
500gの乾式製粉したトウモロコシ穀粉を750mlの水に懸濁させ、撹拌ミキサーで再度微粉砕した。その懸濁液を4つの試料(試料番号1〜4)に分割し、これらのそれぞれを約3gの熱安定性α-アミラーゼで処理した(試料番号1および2:ターマミルL;試料番号3および4:Spezyme)。その後、試料番号2および4を約7g/lのグルコアミラーゼで処理した(試料番号2:Dextrozyme GA;試料番号4:Optidex)。これにより、淡黄色の粘稠試料が得られ、その固体含有物をそれぞれ遠心分離によって分離除去したが、それは透明な液相の上部に浮遊する疎水性固体の相であった。
実施例II.1に従って得られた2つのトウモロコシ穀粉加水分解物を、コリネバクテリウム・グルタミカムを用いた振盪フラスコ実験で使用した(フラスコ4〜9)。さらに、実施例II.1と同様に調製したコムギ穀粉加水分解物を並行して使用した(フラスコ1〜3)。
細胞を無菌CM寒天(組成:表4参照;121℃で20分間)上にストリーキングし、その後、30℃で48時間インキュベーションを行う。続いて細胞をプレートから掻き取り、生理食塩水に再懸濁させた。250mlのエルレンマイヤーフラスコ中の25mlの培地(表5参照)に、それぞれ光学密度が600nmでOD600値が1に達するように調製した量の細胞懸濁液を用いて接種する。
フラスコ培地1〜9の組成を表5に示す。
c.1)噴霧乾燥
約20重量%の固体含有率を有する250gのリシン含有溶液(実施例1aおよび1bに記載のようにしてトウモロコシ穀粉懸濁液から得た)を室温でガラスビーカーに導入し、ローラーポンプ(型:ISM444、Ismatec)によって、噴霧タワーの並流稼動の二物質ノズル(Niro、Minor High Tec)に運搬した。噴霧圧は4バールであった。噴霧プロセス中、約2〜3gのSipernat S22が少量ずつ計量された。入口温度は95℃〜100℃であった。生成物の温度が原則的に50℃以下にならないようにポンプ容量を調節した。
80℃で60分間加熱した、約20重量%の固体含有率を有する400gのリシン含有溶液(実施例1aおよび1bと同様にしてトウモロコシ穀粉懸濁液から得た)を、14gのポリビニルアルコール(PVA; MW=10000〜190000g/mol)を75gの水に溶解させることによって調製したPVA溶液で処理した。得られた懸濁液のpHは約7であった。この懸濁液を、まずLodigeミキサーに入れて、約100〜350rpmで混合した、約950gのトウモロコシデンプン(Roquette)に加えた。
500gのNa2SO4を最初に流動床装置Aeromatic MP-1(Niro Aeromatic;穿孔底部の穿孔面積:12%(12%FF))のコーン内に導入し、50℃の温度まで温めた。約20重量%の固体含有率を有する998gのリシン含有溶液(実施例1aおよび1bと同様にしてトウモロコシ穀粉懸濁液から得た)を、ローラーポンプによって二物質ノズル(d=1.2mm)に供給し、このノズルを介して上部噴霧位置から(すなわち上方から)、コーン内に導入した固体上に噴霧した。噴霧圧は1.5バールであった。噴霧プロセスは、278gおよびさらに320gのリシン含有溶液の添加(流動床装置中の全固体に基づいてそれぞれ10および20重量%である一部に相当する噴霧された発酵固体)後に中断したが、これは、それぞれ中間の乾燥およびサンプリングのためであった(それぞれ50g)。吸入空気は約45〜60m3/時の範囲の量に調節し、乾燥ステップ中に減少させた。吸入空気の温度は、最終乾燥ステップ中に約46℃〜80℃の範囲であり、一部の例ではそれよりも低かった。生成物の温度が約50℃、原則的に45℃以上であるようにポンプ容量を調節した。冷却後、513gの生成物が放出された。採取した3つの生成物試料すべての凝集塊の大きさは、数百マイクロメートルの範囲内であった。
約20重量%の固体含有率を有する240gのリシン含有溶液(実施例1aおよび1bと同様にしてトウモロコシ製粉懸濁液から得た)を500mlの丸底フラスコ内に導入し、続いてロータリーエバポレーターを用いてわずかに減圧(880〜920mbar)して濃縮した。浴温は140〜145℃であった。約40分後、フラスコの壁に生じたコーティングを機械的に微粉砕し、乾燥を続け、さらに40分後、さらに微粉砕ステップを行った。その後、乾燥を続け、残渣のさらなる微粉砕を行うために時々中断した。合計乾燥時間は2.5時間であった。得られた顆粒は暗褐色であり、容易に流動可能であった。顆粒の残存水分は3%であった。少量の顆粒のみがフラスコの壁に付着していた。
実施例II.1に従って得られたトウモロコシ穀粉加水分解物を用いて、国際公開WO05/059144号に記載の株ATCC13032 lysCfbrを使用して、実施例1b)と同様に発酵を実施する。細胞を、無菌CM寒天(組成は表4;121℃で20分間)上、30℃で48時間インキュベーションを行う。続いて細胞をプレートから掻き取り、生理食塩水に再懸濁させる。250mlのエルレンマイヤーフラスコ中の25mlの培地1または2(表5参照)に、それぞれ光学密度が610nmのOD610値で1に達するような量に調製した細胞懸濁液を用いて接種する。その後、試料を、加湿した振盪機(相対大気湿度85%)中、200rpm、30℃で48時間インキュベーションを行う。培地中のリシン濃度をHPLCによって測定する。いずれの場合でも、ほぼ同量のリシンが生産された。
実施例II.3aに従って得られたトウモロコシ穀粉加水分解物を、コリネバクテリウム・グルタミカム(ATCC13032 lysCfbr)を使用した振盪フラスコ実験に用いた(フラスコ1+2)。さらに、実施例II.3と同様にして調製したコムギ穀粉加水分解物(フラスコ3+4)およびライムギ穀粉加水分解物(フラスコ5+6)を並行して使用した。
細胞を無菌CM+CaAc寒天(組成:表7参照;121℃で20分間)上にストリーキングし、その後、30℃で48時間インキュベーションを行い、その後、新鮮なプレートに接種し、終夜30℃でインキュベーションを行う。続いて細胞をプレートから掻き取り、生理食塩水に再懸濁させる。2つのバッフルを備えた250mlのエルレンマイヤーフラスコ中の23mlの培地(表8参照)に、それぞれ光学密度が610nmのOD610値で0.5に達するような量に調製した細胞懸濁液を用いて接種した。
フラスコ培地1〜6の組成を表8に示す。
実施例II.3aに従って得られたトウモロコシ穀粉加水分解物を振盪フラスコ実験(フラスコ1〜3)に用いた。パントテン酸産生株はバチルス属PA824であった(国際公開WO02/061108号に詳述)。さらに、実施例II.3と同様にして調製したコムギ穀粉加水分解物(フラスコ4〜6)およびライムギ穀粉加水分解物(フラスコ7〜9)を並行して使用した。
2つのバッフルを備えた250mlのエルレンマイヤーフラスコ中の42mlの前培養培地(表10参照)に、それぞれ0.4の凍結培養物を用いて接種し、43℃で24時間、加湿した振盪機内で振盪しながら(250rpm)インキュベーションを行う。
フラスコ培地1〜9の組成を表11に示す。
実施例II.3aに従って得られたトウモロコシ穀粉加水分解物を、アスペルギルス・ニガーを使用した振盪フラスコ実験に用いた(フラスコ1〜3)。さらに、実施例II.3と同様に調製したコムギ穀粉加水分解物(フラスコ4〜6)およびライムギ穀粉加水分解物(フラスコ7〜9)を並行して使用した。
glaAプロモーターの制御下にあるアスペルギルス・フィカム(Aspergillus ficuum)由来のphyA遺伝子を6コピー有するアスペルギルス・ニガーフィターゼ産生株を、国際公開WO98/46772号に詳述されているNP505-7の作製と同様にして作製した。用いた対照は、3つの改変したglaA単位複製配列(アンプリコン)(ISO 505と同様)を有するが組み込まれたphyA発現カセットを有さない株であった。
1つのバッフルを備えた100mlのエルレンマイヤーフラスコ中の20mlの前培養培地(表13参照)に、それぞれ100μlの凍結培養物を接種し、34℃で24時間、加湿した振盪機内で振盪しながら(170rpm)インキュベーションを行う。
フラスコ培地1〜9の組成を表14に示す。
実施例II.3aに従って得られたトウモロコシ穀粉加水分解物を、アシュビア・ゴシピーを使用した振盪フラスコ実験に用いた(フラスコ1〜4)。さらに、実施例II.3と同様に調製したコムギ穀粉加水分解物(フラスコ5〜8)およびライムギ穀粉加水分解物(フラスコ9〜12)を並行して使用した。
用いたリボフラビン産生株は、アシュビア・ゴシピーATCC 10895である(Schmidt G他、「精製イソクエン酸分解酵素の阻害により、イタコン酸およびシュウ酸がリボフラビン過剰産生体であるアシュビア・ゴシピーの潜在的な代謝拮抗剤として同定された(Inhibition of purified isocitrate lyase identified itaconate and oxalate as potential antimetabolites for the riboflavin overproducer Ashbya gossypii.)」 Microbiology 142: 411〜417ページ、1996年も参照)。
細胞を無菌YMG寒天(組成:表16参照;121℃で20分間)上にストリーキングし、その後、28℃で72時間インキュベーションを行う。
フラスコ培地1〜12の組成を表18に詳述する。
実施例II.3aに従って得られたトウモロコシ穀粉加水分解物を、コリネバクテリウム・グルタミカムを使用した振盪フラスコ実験に用いた(フラスコ1〜3)。さらに、実施例II.3と同様に調製したコムギ穀粉加水分解物(フラスコ4〜6)およびライムギ穀粉加水分解物(フラスコ7〜9)を並行して使用した。
メチオニンを産生するコリネバクテリウム株は当業者に知られている。そのような株の産生は、たとえば、Kumar D. Gomes J. Biotechnology Advances、23(1):41〜61ページ、2005年; Kumar D.他、Process Biochemistry、38:1165〜1171ページ、2003年;国際公開WO04/024933号および国際公開WO02/18613号に記載されている。
細胞を無菌CM+Kan寒天(組成:表20参照;121℃で20分間)上にストリーキングし、その後、30℃で24時間インキュベーションを行う。その後、細胞をプレートから掻き取り、生理食塩水に再懸濁させる。2つのバッフルを備えた250mlのエルレンマイヤーフラスコ中の25mlの培地(表5参照)に、それぞれ光学密度が610nmのOD610値で0.5に達するような量の得られた細胞懸濁液を接種した。
フラスコ培地1〜9の組成を表21に示す。対照培地では、穀粉加水分解物の代わりに対応する量のグルコース溶液を用いた。
実施例II.3aに従って得られたトウモロコシ穀粉加水分解物を、細菌130Zを使用した振盪フラスコ実験に用いた。
用いたスクシネート産生株は細菌130Zであった(ATCC 55618号)。
120mlの血清フラスコ中の50mlの主培養培地(表23参照)に、それぞれ1mlの凍結培養物を用いて接種した。血清フラスコを密封する前にCO2を注入した(0.7バール)。
実施例II.3aに従って得られたトウモロコシ穀粉加水分解物を、大腸菌を使用した振盪フラスコ実験に用いた(フラスコ1〜3)。さらに、実施例II.3と同様に調製したコムギ穀粉加水分解物(フラスコ4〜6)およびライムギ穀粉加水分解物(フラスコ7〜9)を並行して使用した。
L-スレオニンを産生する大腸菌株は当業者に知られている。そのような株の産生は、たとえば、欧州特許EP1013765 A1号、欧州特許EP1016710 A2号、米国特許US5,538,873号に記載されている。
細胞を無菌LB寒天上にストリーキングした。適切な耐性遺伝子がマーカーとして目的の株中に存在する場合は、抗生物質をLB寒天に加える。この目的のために用いることができる物質は、たとえば、カナマイシン(40μg/ml)またはアンピシリン(100mg/l)である。その株を、30℃で24時間インキュベーションを行う。細胞を、メチオニン(50μg/ml)、カナマイシン(40μg/ml)およびホモセリン(10μg/l)を添加した無菌M9グルコース最小培地上にストリーキングした後、30℃で24時間インキュベーションを行う。その後、細胞をプレートから掻き取り、生理食塩水に再懸濁させた。2つのバッフルを備えた250mlのエルレンマイヤーフラスコ中の25mlの培地(表25参照)に、それぞれ光学密度が610nmのOD610値で0.5に達するような量で調製した細胞懸濁液を用いて接種する。
フラスコ培地1〜9の組成を表25に示す。対照培地では、穀粉加水分解物の代わりに対応する量のグルコース溶液を用いる。
適切な株を用いて、他のL-アミノ酸であるグルタミン酸、ヒスチジン、プロリンおよびアルギニンを実施例9の手順と同様にして調製した。目的の株は、たとえば欧州特許EP1016710号に記載されている。
部分糖化したトウモロコシ穀粉加水分解物を、アスペルギルス・ニガーを使用した振盪フラスコ実験に用いた。
液化は、実施例II.3aと同様に実施した。懸濁液を61℃まで冷却し、pHを4.3に調節した後、5.38ml(=1.5重量%の酵素/乾物)のDextrozyme GA(Novozymes A/S)を加えた。それぞれ、酵素を加えた10、15、20、30、45および60分後に、50gの試料を採取し、25mlの無菌の氷冷した完全脱ミネラル水中に懸濁させた。試料を氷浴に入れ、直ちにフラスコ試験に用いた。酵素の失活は起こらなかった。
実施例5.1)で使用した株を用いた。接種菌は、実施例5.2)に記載のように調製した。
部分糖化したトウモロコシ穀粉加水分解物を、コリネバクテリウム・グルタミカムを使用した振盪フラスコ実験に用いた。
液化は、実施例II.3aと同様に実施した。懸濁液を61℃まで冷却し、pHを4.3に調節した後、5.38ml(=1.5重量%の酵素/乾物)のDextrozyme GA(Novozymes A/S)を加えた。それぞれ、酵素を加えた10、15、20、30、45および60分後に、50gの試料を採取し、25mlの無菌の氷冷した完全脱ミネラル水中に懸濁させた。試料を氷浴に入れ、直ちにフラスコ試験に用いた。酵素の失活は起こらなかった。
実施例3)で使用した株を用いた。接種菌は、実施例3.1)に記載のように調製した。
Claims (16)
- 糖に基づいた微生物発酵によって少なくとも1つの不揮発性微生物代謝産物を固体形態で製造する方法であって、該方法において、所望の代謝産物を産生する微生物株を、液体培地の全重量に基づいて30重量%を超える単糖含有率を有する糖含有液体培地を用いて増殖させ、発酵液の不溶性成分を事前に分離せずにその発酵液の揮発性成分を大部分除去し、また該糖含有液体培地の調製は、
a1)穀物から選択されるデンプン供給原料を製粉することによって、粉砕原料を生産するステップと、
a2)水性液体中の粉砕原料を少なくとも1つのデンプン液化酵素の存在下で液化し、次いで少なくとも1つの糖化酵素を用いて糖化し、液体培地の全重量に基づいて30重量%を超える単糖含有率を有する糖含有液体培地を得るステップであって、該糖含有液体培地は、粉砕原料のデンプン質成分に基づいて少なくとも25重量%の量で、粉砕原料中に含まれる非デンプン質固体成分を含む、ステップ、
を含み、
但し、液化目的で、粉砕原料の少なくとも40重量%をステップa2)で液化過程中に連続的にまたはバッチ式で水性液体に加え、かつ、少なくとも1つの不揮発性代謝産物を、発酵液から固体形態で発酵液のすべての不溶性成分の全体と共に取得する、方法。 - a)ステップa1)およびa2)に記載の30重量%を超える単糖含有率を有する糖含有液体培地を調製するステップであって、糖含有液体培地が、粉砕原料のデンプン質成分に基づいて少なくとも25重量%のデンプン供給原料の非デンプン質固体成分を含む、ステップと、
b)不揮発性代謝産物を生産するために発酵において糖含有液体培地を使用するステップと、
c)発酵液の揮発性成分を除去することによって、発酵液から、固体形態の不揮発性代謝産物を、デンプン供給原料の非デンプン質固体成分と共に取得するステップと、
を含む、請求項1に記載の方法。 - 粉砕原料を水性液体中、少なくとも1つのα-アミラーゼの存在下で液化し、続いて少なくとも1つのグルコアミラーゼを用いて糖化する、請求項1または2に記載の方法。
- 少なくとも1つのα-アミラーゼの一部をステップa2)の液化中に水性液体に加える、請求項3に記載の方法。
- 穀物がトウモロコシ、ライムギ、ライコムギおよびコムギ穀粒から選択される、請求項1〜4のいずれかに記載の方法。
- ステップa1)の粉砕の際に得られる粉砕原料が、100μmを超える粒子径を有する穀粉粒を少なくとも50重量%含む、請求項1〜5のいずれかに記載の方法。
- 液体培地の粘度が20Pas以下であるようにステップa2)の粉砕原料の液化および糖化を実施する、請求項1〜6のいずれかに記載の方法。
- 液化中に加える粉砕原料の合計量の少なくとも25重量%を、粉砕原料中に存在するデンプンのゲル化温度よりも高い温度で加える、請求項1〜7のいずれかに記載の方法。
- 発酵ステップの前に、少なくとも1つのフィターゼを糖含有液体培地に加える、請求項1〜8のいずれかに記載の方法。
- 製造される不揮発性代謝産物が、ヒドロキシル基と結合していることがあり3〜10個の炭素原子を有する有機モノ-、ジ-およびトリカルボン酸、タンパク質構成性およびタンパク質非構成性アミノ酸、プリン塩基、ピリミジン塩基;ヌクレオシド、ヌクレオチド、脂質;飽和および不飽和脂肪酸;4〜10個の炭素原子を有するジオール、3個以上のヒドロキシル基を有する高官能性アルコール、少なくとも4個の炭素原子を有する長鎖アルコール、炭水化物、芳香族化合物、ビタミン、プロビタミン、補因子、栄養補助剤、タンパク質、カロテノイド、3〜10個の炭素原子を有するケトン、ラクトン、バイオポリマーならびにシクロデキストリンから選択される、請求項1〜9のいずれかに記載の方法。
- 調製される不揮発性代謝産物が、酵素、アミノ酸、ビタミン、二糖、3〜10個の炭素原子を有する脂肪族モノ-およびジカルボン酸、3〜10個の炭素原子を有する脂肪族ヒドロキシカルボン酸、3〜10個の炭素原子を有するケトン、4〜10個の炭素原子を有するアルカノールならびに3〜10個の炭素原子を有するアルカンジオールから選択される、請求項1〜10のいずれかに記載の方法。
- 微生物が、以下の代謝産物:酵素、アミノ酸、ビタミン、二糖、3〜10個の炭素原子を有する脂肪族モノ-およびジカルボン酸、3〜10個の炭素原子を有する脂肪族ヒドロキシカルボン酸、3〜10個の炭素原子を有するケトン、4〜10個の炭素原子を有するアルカノールならびに3〜10個の炭素原子を有するアルカンジオール、のうちの少なくとも1つを産生する天然または組換え微生物から選択される、請求項1〜11のいずれかに記載の方法。
- 微生物が、コリネバクテリウム属(Corynebacterium)、バチルス属(Bacillus)、アシュビア属(Ashbya)、エシェリキア属(Escherichia)、アスペルギルス属(Aspergillus)、アルカリゲネス属(Alcaligenes)、アクチノバチルス属(Actinobacillus)、アネロビオスピリウム属(Anaerobiospirillum)、ラクトバチルス属(Lactobacillus)、プロピオニバクテリウム属(Propionibacterium)、クロストリジウム属(Clostridium)およびリゾープス属(Rhizopus)から、とりわけコリネバクテリウム・グルタミカム(Corynebacterium glutamicum)、枯草菌(Bacillus subtilis)、アシュビア・ゴシピー(Ashbya Gossypii)、大腸菌(Escherichia coli)、アスペルギルス・ニガー(Aspergillus niger)、アルカリゲネス・レータス(Alcaligenes latus)、アネロビオスピリウム・スクシニシプロデュセンス(Anaerobiospirillum succiniproducens)、アクチノバチルス・スクシノゲネス(Actinobacillus succinogenes)、ラクトバチルス・デルブルエキイ(Lactobacillus delbrueckii)、ライヒマン菌(Lactobacillus leichmannii)、プロピオニバクテリウム・アラビノサム(Propionibacterium arabinosum)、プロピオニバクテリウム・シャーマニ(Propionibacterium schermanii)、プロピオニバクテリウム・フロイデンライヒ(Propionibacterium freudenreichii)、クロストリジウム・プロピオニカム(Clostridium propionicum)、クロストリジウム・アセトブトリカム(Clostridium acetobutlicum)、クロストリジウム・フォルミコアセチカム(Clostridium formicoaceticum)、リゾープス・オリゼ(Rhizopus oryzae)およびリゾープス・アルヒザス(Rhizopus arrhizus)の株から、選択される、請求項12に記載の方法。
- 発酵液の揮発性成分を、固体成分の合計乾重量に基づいて0.2〜20重量%の残存水分含有率になるまで発酵液から除去する、請求項1〜13のいずれかに記載の方法。
- 揮発性成分を除去するために発酵液を噴霧乾燥、流動床乾燥または凍結乾燥する、請求項1〜14のいずれかに記載の方法。
- 1つまたは複数の乾燥アジュバントを用いる、請求項15に記載の方法。
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