JP5117171B2

JP5117171B2 - 抗アレルギーの乳酸菌

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Publication number: JP5117171B2
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Description

本発明は、食品、或いは、医薬に応用する抗アレルギー乳酸菌菌株の組成物、及び、抗アレルギー能力への用途に関する。

近年、アレルギー疾患は年々増加する傾向にあり、アトピー性皮膚炎、アレルギー性鼻炎、気管支性喘息の発生率が増加している。現在、アレルギー性疾患の発生は文明の進歩と関係があるとされている。例えば、空気の汚染と感染の減少は、どれも、アレルギー疾患増加の原因とされている。現在、喘息治療は薬物に依存しており、ステロイドと肥大細胞が釈放する炎症物質を抑制する薬物、気管拡張剤、免疫療法等である。しかし、抗炎症薬物と気管拡張剤が含まれる薬物治療は、アレルギー免疫反応を根本から改善することができず、よって、緩和させる方法であるとしか言えない。唯一言えるのは、アレルギー免疫体質の治療方式は、いわゆる免疫療法であるが、免疫治療は治療に一定の時間を必要とし、時には副作用も現れるので、全ての患者に適用できるわけではない。

アレルギー疾患の増加に関し、現在、環境の変化と密接な関係があるとされ、特に、環境方面と明らかな関係がある。人体の腸内中の体によい働きをする細菌は、免疫システム作用を刺激するが、日常生活中の食品の抗生物質やステロイド含量が高いと、腸内の体によい働きをする細菌が減少し、免疫細胞中の第一型ヘルパー細胞（Ｔｈ１）の生成を効果的に刺激できず、これらの第一型ヘルパー細胞（Ｔｈ１）の生成と第二型ヘルパー細胞（Ｔｈ２）の相関するアレルギー疾患発生は密接な関係がある。よって、機能食品により我々の免疫システムを刺激し、アレルギー免疫反応のＴｈ１型免疫反応平衡アレルギーが引き起こすＴｈ２型免疫反応を調節することができるなら、アレルギー体質を改善する効果が達成される。

人類の微生物応用の歴史上、乳酸菌の応用起源は非常に早い。早期の乳製品の加工で発見され、食用乳酸菌発酵食品は、人類の胃腸疾患の発生率を低下させ、平均寿命を延長する効果がある。よって、多くの学者が乳酸菌を研究し、人の健康中で様々な役割を果たしていることが発見された。機能性乳酸菌は、西暦１９５４年に提出された後、数年間で熱心に研究され、１９６５年のLilly DM等により正式にProbiotic（腸内の体によい働きをする細菌）の概念が開示され、機能性乳酸菌の通称となっている。

一般の食用乳酸菌（LAB）の製品は、腸内の健康を調整するもので、多くの乳酸菌菌株が自然界に存在しているが、少数の乳酸菌株だけが抗アレルギーの特質を有する。少数のこれらの菌株が有する耐酸と耐胆汁塩能力、粘膜表皮細胞を吸付する能力、胃腸通過後も存在する能力等の特性は、健康を促進する菌株を選別する重要な証拠である。今日、少数の株が、抗アレルギーの健康効果を有する乳酸菌菌株があることが証明され、乳酸菌の健康に対する功能は、菌株（strain）の特異性で、菌種（species）ではない。この人体に有益な特殊功能を有する菌株は機能性プロバイオティクスと称される（非特許文献１ Guidelines for the evaluation of probiotics in food；Report of joint FAO/WHO working group on drafting guidelines for the evaluation of probiotics in food；London Ontario, Canada April 30 and May 1, 2002：1-7）。

アレルギー疾患、例えば、アトピー性湿疹、じんましん、反覆発作するアレルギー性鼻炎、及び、アレルギー性喘息は、台湾、及び、その他の開発国家では既に重大な社会問題となっている。アレルギー性疾患がますます流行するのには原因があり、衛生仮説は、乳幼児が免疫刺激病原体に接触する機会が少ないほど、アレルギー相関疾病の生成が生じやすい（非特許文献２ Strachan, 1989）。アレルギー疾患の発生時、人体内の免疫反応は、Ｔｈ１細胞の数量を減少させ、多種細胞ホルモンを連続生成し、免疫反応がＴｈ２に向けて、体液免疫反応、例えば、ＩｇＥの生成と好酸球｛こうさんきゅう｝増加｛ぞうか｝症（非特許文献３ Romagnani, 1994、非特許文献４ Holt, 1995）を形成する。

エストニア、及び、スウェーデンの両国家の児童から、アレルギー疾患の児童の腸内の乳酸桿菌は、アレルギー疾患がない児童よりも少ないことが発見されている（非特許文献５ Bjo¨rksten et al., 1999）。乳酸桿菌は、Ｔｈ１の免疫反応を促進して、アレルギー症状を改善する（非特許文献６ Cross et al., 2001）。更に、卵白蛋白によるラットアレルギーを誘発する動物実験摸式中で、ラットを経口方式で熱処理したラクトバチルス・カゼイ・シロタ株（Lactobacillus casei strain Shirota）を食用させ、ラット血清中のＩｇＥの含量を抑制できることが証明されている（非特許文献７ Matsuzaki et al., 1998）。この他、カゼインによりラットのアレルギーを誘発する動物実験摸式で、熱処理後のＤＬ乳酸（Lactobacillus plantarum）Ｌ−１３７を腹腔注射しても、ＩｇＥの生成を抑制することが出来ることが証明されている（非特許文献８ Murosaki et al., 1998）。ブタクサ花粉によるアレルギー症状は、エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）ＦＫ−２３を経口し、腹膜内に収集された好酸球細胞量を減少させることができる（非特許文献９ Shimada et al., 2003）。人体の臨床試験中、妊娠期に、ＬＧＧ乳酸菌（Lactobacillus rhamnosus strain GG）を服用すると、出生後二年（非特許文献１０ Kallioma¨ki et al., 2001）、及び、新生児後（非特許文献１１ Kallioma¨ki et al., 2003）、乳幼児の過敏性湿疹のリスクと発生率を低下させることが発見されている。乳酸菌菌体（Lactobacillus rhamnosus）１９０７０−２、及び、ラクトバチルス・ロイテリ（Lactobacillus reuteri）ＤＳＭ１２２４６０も、適度にアトピー性皮膚炎の児童の重度の湿疹の過敏症状を改善することができる（非特許文献１２ Rosenfeldt et al., 2003）。
Guidelines for the evaluation of probiotics in food；Report of joint FAO/WHO working group on drafting guidelines for the evaluation of probiotics in food；London Ontario, Canada April 30 and May 1, 2002：1-7。 Strachan, 1989 Romagnani, 1994 Holt, 1995 Bjo¨rksten et al., 1999 Cross et al., 2001 Matsuzaki et al., 1998 Murosaki et al., 1998 Shimada et al., 2003 Kallioma¨ki et al., 2001 Kallioma¨ki et al., 2003 Rosenfeldt et al., 2003

本発明は、乳酸菌の株を選別し、Ｔｈ１型とＴｈ２型間の免疫バランスを調節する方法を提供することを目的とする。

本発明は、広義で下記の生物性純培養物を含む。ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ０００２菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０３８）、ラクトバチルスガセリ（Lactobacillus gasseri）ＰＭ−Ａ０００５菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０３９）、ラクトバチルスサリバリウス（Lactobacillus salivarius subsp. salicinius）ＰＭ−Ａ０００６菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０４０）、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０４１）、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０４２）である。生理的に容認できる賦形剤、或いは、希釈剤と組成される組成物である。

具体例中、組成物は、一種、或いは、一種以上のこれらの菌株を有し、賦形剤、或いは、希釈剤は、一種の食品を好ましい形式とし、この食品は、発酵乳、ヨーグルト、チーズ、乳飲料、全乳粉、茶飲料、或いは、コーヒー中のどれかであり、また、或いは、組成物は、医薬組成物で、且つ、賦形剤、或いは、希釈剤は、医薬上容認できる賦形剤、或いは、希釈剤である。

もう一つの具体例中、抗アレルギー能力を増強できる生理的に容認できる下記の任意の菌株の同種、或いは、突変種の生物性純培養物は、ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌ＰＭ−Ａ０００９菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ００１３菌株である。

また、もう一つの具体例中、本発明は、広義のインターロイキン（ＩＬ−１２）、或いは、インターフェロンγ調整Ｔｈ１型免疫反応により免疫球蛋白ＩｇＥを促進することにより、Ｔｈ２型免疫反応可能のアレルギー現象を改善し、哺乳動物に対し投与すれば、Ｔｈ１型免疫効果剤量の前述の生物性純培養物を刺激することができる。

更に、もう一つの具体例中、菌株中の一つ以上を含む生物性純培養物を定義し、培養物と生理的に容認できる賦形剤、或いは、希釈剤は組み合わせの形式が投与であるのが好ましく、及び、生理的に容認できる賦形剤、或いは、希釈剤は食品が好ましく、食品は、発酵乳、ヨーグルト、チーズ、乳飲料、全乳粉、茶飲料、或いは、コーヒー中のどれかであり、或いは、組成物は、医薬組成物で、且つ、賦形剤、或いは、希釈剤は、医薬上容認できる賦形剤、或いは、希釈剤である。

本発明の方法により、乳酸菌株組成物を選別し、Ｔｈ１型免疫反応を増進して、アレルギーによる反応が過度なＴｈ２型の免疫反応を調節することができる。

本発明は、広義で下記の生物性純培養物を含む。ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ０００２菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０３８）、ラクトバチルスガセリ（Lactobacillus gasseri）ＰＭ−Ａ０００５菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０３９）、ラクトバチルスサリバリウス（Lactobacillus salivarius subsp. salicinius）ＰＭ−Ａ０００６菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０４０）、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０４１）、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株（２００７年４月６日、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）番号第Ｍ２０７０４２）である。

多くの文献で、第一型Ｔ細胞サイトカイン、インターロイキンＩＬ−１２）、インターフェロンγの分泌増加により、アレルギー現象を改善することが示されている。他の研究でも、特定の乳酸菌株とトール様受容体（Toll-like receptor）を結合し、活性細胞内の変換蛋白を核内に移して大量のサイトカインを釈放し、先天免疫の一環に属するので、ある特定の乳酸菌菌種は、その細胞壁多糖類物質、ペプチドグリカン（peptidoglycan）、リポ多糖体（lipopolysaccharide）、多糖（polysaccharide）等、先天免疫システムにより、Ｔ細胞の発育を確実に活性させることができる。

五株の細菌菌株の冷凍乾燥培養物は、中▲国▼武漢大▲学▼China Center for Type Culture Collection（ＣＣＴＣＣ）に存在する。詳細は、表１のようである。

上述の五株の乳酸菌は、既に、抗アレルギー性であることが確認されており、アトピー性皮膚炎、じんましん、アレルギー性鼻炎、植物アレルギー、及び、喘息の症状に対し、緩和、及び、治療の功能を有する。

実施例１：五株の抗アレルギー乳酸菌の形態学、及び、一般性質。
１６ＳｒＤＮＡ序列分析、及び、ＡＰＩ細菌鑑定システム分析結果に基づいて、菌株の分類学上の特徴を確認する。東宇菌株番号ＰＭ−Ａ０００２はラクトバチルスアシドフィラス菌；東宇菌株番号ＰＭ−Ａ０００５はラクトバチルスガセリ；東宇菌株番号ＰＭ−Ａ０００６はラクトバチルスサリバリウス；東宇菌株番号ＰＭ−Ａ０００９はラクトバシルスジョンソニイ菌、及び、東宇菌株番号ＰＭ−Ａ００１３ラクトバチルスアシドフィラス菌である。この五株の抗アレルギー乳酸菌の形態学、及び、一般性質は表２で示される。

実施例２：抗アレルギー乳酸菌のインターフェロンγの分泌を促進するＴｈ１型免疫能力作用（周辺血液の単核球細胞を体外効果検証プラットとする）
五株の抗アレルギー乳酸菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株のＴｈ１型免疫能力に対する増進効果は、末梢血単核球と抗アレルギー乳酸菌を共に培養後、インターフェロンγの分泌量を測定し、抗アレルギー能力を有する菌株を選定する。以下の実験工程を使用する。
１．適当な人類の血液量各２００ｍｌを採血する。
２．等比例の血球分離液（フィコール−パック、Ficoll-Paque）と血液を１８〜２０℃で４００ｇを３０〜４０分間遠心する。
３．人類の末梢血単核球（Peripheral blood mononuclear cell, PBMC)層を取り、緩衝溶液で細胞を２〜３回洗浄した後、適当な培養基（例えば、ＲＰＭＩ−１６４０）により細胞を懸濁させる。
４．細胞と３日間活性化した乳酸菌株を、１：１０の比例で４８時間培養する。
５．細胞培養の上澄み液を採取する。酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）によりインターフェロンγ（IFN-gamma）の上澄み液中の含量を測定する。

データの統計分析は、表３と図１で示され、Ｍｅａｎ±ＳＤで表示される。図１で示されるように、それぞれ、１０^６〜１０^８個ｃｆｕのラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株と１０^５〜１０^７個の人類の末梢血単核球（ＰＢＭＣ）を４８時間共培養し、細胞の上澄み液を採取して、酵素免疫測定法により、インターフェロンγ（IFN-gamma）の上澄み液中の含量を検出する。無抗アレルギー功能乳酸菌（Lactobacillus casei BCRC12249台湾食品工▲業▼▲発▼展研究所）を負制御組（ＮＣ）、ＰＨＡを正制御組（ＰＣ）とし、インターフェロンγが刺激を受ける濃度を検出する。結果は、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）は、これらの異なる乳酸菌株の刺激により、インターフェロンγ分泌を増加することができる。表３は、それぞれ、五株の抗アレルギー菌株と末梢血単核球の培養における、インターフェロンγの分泌量（means±SD）である。

実施例３：抗アレルギー乳酸菌のインターロイキン（ＩＬ−１２）の分泌を促進するＴｈ１型免疫能力作用（樹枝状細胞を体外効果検証プラットとする）
五株の抗アレルギー乳酸菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株のＴｈ１型免疫能力に対する増進効果は、末梢血単核球と抗アレルギー乳酸菌を共に培養後、インターフェロンγの分泌量を測定し、抗アレルギー能力を有する菌株を選定する。以下の実験工程を使用する。
１．適当な人類の血液量各２００ｍｌを採血する。
２．等比例の血球分離液（フィコール−パック（Ficoll-Paque））と血液を１８〜２０℃で４００ｇを３０〜４０分間遠心する。
３．人類の末梢血単核球（ＰＢＭＣ）層を取り、緩衝溶液で細胞を２〜３回洗浄した後、適当な培養基（例えば、ＲＰＭＩ−１６４０）により細胞を懸濁させる。
４．人類の末梢血単核球（ＰＢＭＣ）細胞を、ＣＤ１４^＋微粒子（MiniMACS system）により、細胞のＣＤ１４^＋単核球細胞を純化する。
５．インターロイキン（ＩＬ−４）、及び、成長ホルモンＧＭ−ＣＳＦにより細胞を刺激して樹枝状細胞に分化し、６〜７日間培養して、分化した樹枝状細胞を収集する。
６．抗アレルギー乳酸菌株を共培養する前の三日間は活性化し、その後、１００℃の熱で、乳酸菌株を３０分致死させる。
７．樹枝状細胞と既に熱致死した乳酸菌株を１：１０の比率で４８時間培養する。
８．細胞培養の上澄み液を採取する。酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）によりインターロイキン（ＩＬ−１２）の上澄み液中の含量を測定する。

データの統計分析は、表４と図２で示され、Ｍｅａｎ±ＳＤで表示される。図２で示されるように、それぞれ、熱致死させた１０^６〜１０^８個ｃｆｕのラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株、或いは、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株と１０^５〜１０^７個の樹枝状細胞を４８時間共培養し、細胞の上澄み液を採取して、酵素免疫測定法により、インターロイキン（ＩＬ−１２）の上澄み液中の含量を検出する。無抗アレルギー功能乳酸菌（Lactobacillus casei BCRC12249台湾食品工▲業▼▲発▼展研究所）を負制御組（ＮＣ）、ＰＨＡを正制御組（ＰＣ）とし、インターロイキン（ＩＬ−１２）が刺激を受ける濃度を検出する。結果は、樹枝状細胞は、五個の乳酸菌の刺激により、インターロイキン（ＩＬ−１２）の分泌を増加させる。表４は、五株の熱致死させた抗アレルギー菌株と樹枝状細胞の培養におけるインターロイキン（ＩＬ−１２）の分泌量（means±SD）である。

実施例４：抗アレルギー乳酸菌株耐胃酸胆汁塩試験
五株の抗アレルギー乳酸菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌ＰＭ−Ａ０００９菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ００１３菌株が、胃酸胆汁塩試験をパスする能力を有して、腸内で円滑にその抗アレルギー性功能を発揮できるかを検証し、その試験工程は、以下のようである。
１．五株の抗アレルギー乳酸菌を３日活性化する。
２．１ｍｌの菌液を採取して原始菌数を計算し、残りの乳酸菌は、５００ｇで１０分間遠心し、脱イオン水を加えて、乳酸菌を２〜３回洗浄する。
３．塩酸でｐＨ２．５にした培養液基中に、乳酸菌とｐＨ２．５の培養液基を十分に混合し、３７℃の培養箱に放置する。
４．毎時間１ｍｌの菌液を取り出し、脱イオン水で２〜３回洗浄した後、３時間の培養時間まで、存在細胞数を計算する。
５．残りの菌液を遠心後、沈殿物を１．５％（ｗ／Ｖ）オックスゴール（ox gall、Sigma）を含む培養基中で再度溶かし、充分に混合後、３７℃で培養する。
６．毎時間１ｍｌの菌液を取り出して、脱イオン水で２〜３回洗浄後、４時間の培養時間まで、存在細胞数を計算する。
７．乳酸菌の生長速度を記録し、乳酸菌の胃酸胆汁塩に対する耐受力を計算して、サンプル中の乳酸菌が胃酸、及び、胆汁塩の存在下で、菌株が抑制を受けるかどうか観察する。

耐胃酸能力の結果と分析が表５と図３で整理され、図３で示される結果は、市販の抗アレルギー乳酸菌が培養基で活性化後、総菌数は酸性の緩衝溶液、及び、胆汁塩処理され、菌数が明らかに減少する。アレルギーを調整する乳酸菌株の培養基での活性後、菌株を酸性の緩衝溶液と胆汁塩で処理し、ＰＭ−Ａ０００６、ＰＭ−Ａ０００９、ＰＭ−Ａ００１３菌数は、胃酸コリン変化の影響に対して急激に下降せず、ＰＭ−Ａ０００２、及び、ＰＭ−Ａ０００５は胃酸の影響を受けないが、菌数に影響し、胃酸に対する耐受性を証明する。但し、菌株が胆汁塩で処理される時、菌株は少し減少するが、胆汁塩に対する耐受性はあり、抗アレルギーのこの五株の乳酸菌株は、人体の消化器系の厳しい環境をパスできることを証明する。表５は、ｐＨ値２．５の塩酸と抗アレルギー乳酸菌を混合した耐胃酸能力のテストである。

耐胆汁塩能力の結果と分析は表６と図３で整理され、表６は１．５％の胆汁（bile）と抗アレルギー乳酸菌を混合した耐胆汁塩能力のテストである。

実施例５：抗アレルギー乳酸菌の人体の腸内表皮細胞（ＣａＣｏ−２）に対する吸付能力試験である。
生体外で既に分化された細胞株を採用し、五株の抗アレルギー乳酸菌株の人体の腸内表皮細胞（ＣａＣｏ−２）を吸付する能力を分析する。人類の腸内表皮細胞（ＣａＣｏ−２）単層細胞株を被覆片上で単層細胞になるまで生長させ、多孔細胞培養盤中に置入する。その後、細胞：乳酸菌の比例１：２０で、１〜３時間共培養し、１×ＰＢＳで洗浄し、メチルアルコールにより細胞、及び、残りの付着菌数を固定し、１×ＰＢＳで洗浄し、メチルアルコールにより細胞と残りの付着菌数を固定し、グラム染色を実行し、付着した菌数を確定する。Jacobsen等の学者（１９９９）の分析方法を参照すると、１０００倍の顕微鏡下で２０個の視野を計数し、各視野の平均菌数が４０以下の時、不付着（nonadhesive)；各視野の平均菌数が４１〜１００の時、付着（adhesive）；各視野の平均菌数が１００以上の時、強烈な付着（strongly adhesive）であると判定する。

データの統計分析は、Ｍｅａｎ±ＳＤで表示される。平均では、４５個の視野の計算値を得て、その結果を表７と図４で整理する。図４は、Jacobsen等の学者（１９９９）の分析方法で、各視野の平均菌数が、４０以下の時、不付着（nonadhesive）；各視野の平均菌数が４１〜１００の時、付着（adhesive）；各視野の平均菌数が１００以上の時、強烈な付着（strongly adhesive）であると判定する。ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌ＰＭ−Ａ０００９菌株等の四株の抗アレルギー乳酸菌株が強烈な付着であると判定され、ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ００１３菌株が付着であると判定されることが示される。表７は、五株の抗アレルギー乳酸菌の人類の腸内表示細胞（ＣａＣｏ−２）細胞株の吸付能力試験である。

実施例６：抗アレルギー乳酸菌を補充飼料とする治療、或いは、アレルギー喘息を緩和する効果は、唾液でラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６をオボアルブミン（ovalbumin; OVA）を喘息のラットに与える例により、アレルギー改善を評価する。

Ａ．実験設計
１．実験動物
ＢＡＬＢ／ｃラット、生後６〜８週、メス、対照組と実験組各１４匹を使用する。常用のＢＡＬＢ／ｃメスラット、生後８週、餌６週、各組１４匹を選択する。台湾大学動物センターからＳＰＦ６週大のＢＡＬＢ／ｃメスラットを購買し、各ラットはそれぞれステンレス籠中で飼育し、室内温度は２２±２℃に制御し、明暗循環時間は、それぞれ、１２時間（朝６時に点灯、午後６時に消灯）、自由に餌、水を摂食する。ラットの生後８週時の体重により分類し、餌の提供方法の管理を開始し、乳酸菌（２．６×１０^６至２．６×１０^７ｃｆｕ／ｄａｙ）で反応させる。

２．気道炎症動物摸式の構築
ラットのアレルギーの工程は以下のようである。実験開始から二日以内に５０μｇのオボアルブミンとアルミアジュバント４ｍｇをラット体内に腹腔注射し、実験１６、３０、４４日目に、２５μｇのオボアルブミンとアルミアジュバント４ｍｇをラット体内に再度注射する。アレルギー後、実験５４、５５日目に、ラットに麻酔し、鼻腔内(intra-nasal, i.n.)に１００μｍのオボアルブミンを滴入させて、気道の炎症反応を誘発する。

３．実験工程は図５で示されるように、抗アレルギー乳酸菌がアレルギーを改善する実験の設計工程は、抗アレルギー乳酸菌を与えるのを管理する段階を四期に分ける。第一期は０〜２２日、第二期は２３〜３６日、第三期は３７〜５０日、第四期は５１〜５３日である。その間はラットにオボアルブミンを腹腔注射し、四回（1^st ip, 2^nd ip, 3^rd ip, 4^th ip）に分けてアレルギー反応させ、第一回は飼料管理の二日目、第二回は１６日目、第三回は３０日目、第四回は４４日目である。オボアルブミンを腹腔注射する隔週は、血液検査し、ラットのＩｇＥの体内含量の変化を調べる。ラットが犠牲になる四日前（第５４日目）に、鼻の粘膜から吸入する方式で、ラットに連続２日間アレルギーを生じさせ、ラットの肺呼吸抵抗の反応を検出し、次の日、犠牲になったラットに対し、その他の生化学値の検出を行う。

Ｂ．実験方法
１．動物犠牲と実験材料収集と分析
ａ．血清サンプルの収集
実験開始後第０、２３、３７、５１日目、及び、犠牲時、ラットに対し、眼球後部採血（retro-orbital）で採血する。ラットの麻酔後、迅速に微量の毛細血管で眼球後部の静脈洞で、２００〜２５０μＬの血液を取り、２〜４時間静置し、１２０００ｒｐｍの回転速度で２０分間遠心し、血清を収集して保存する。

ｂ.オボアルブミンの専一性抗体を測定する酵素免疫測定法
０．５ｍｇの抗原を１００μＬ炭酸塩コーティングバッファ（carbonate coating buffer）（０．１ＭＮａＨＣＯ_３）に溶かし、微量の培養盤を加え、４℃で一晩静置する。二日目に、０．０５％のＴｗｅｅｎ２０の１ＸＰＢＳ緩衝液で微量の培養盤を洗浄する。その後、ブロッキング溶液（blocking solution）（１％ＢＳＡを含有する１ＸＰＢＳ緩衝液）により二時間以上ブロッキングし、三回洗浄した後、１００μＬの測定サンプルを加えて、４℃で反応させ一晩静置し、４回洗浄した後、１００μＬの抗ラットＩｇＥ抗体を室温で１〜２時間反応させ、５回洗浄する。１００μＬを加えて、適当に希釈されたアビジン（avidin-HRP、avidin-horseradish peroxidase conjugated）により一時間反応させ、６回洗浄し、最後に、１００μＬのABTS(2.2'-Azino-bis-3-Ethylbenzthiazoline-6-Sulfonic Acid)を加え、溶液が室温で色が呈する３０分後、１００μＬの５％ＳＤＳで反応を終了させ、マイクロプレートリーダー（microplate reader）でマイクロプレートを読み取る。測定結果は、酵素免疫測定ｕｎｉｔ方式で以下のように表示する。
ＥＬＩＳＡユニット＝（Ａ_sample−Ａ_blank）／（Ａ_positive _control−Ａ_blank）

ｃ．気道過敏性（airway hyperresponsiveness, AHR）測定
経口抗アレルギー乳酸菌がラットのアレルギー反応を緩和することができるかを研究するため、二回の気管内アレルギー原刺激後、次の日、気道抵抗のテストを受ける。テストシステムは、バクスコシステム（Buxco system、Biosystem XA, Buxco Electronics Inc. Sharon, CT, USA）である。システム中のトランデューサー（transducer、differential pressure transducer, Buxco）、及び、プリアンプ（preamplifier、MAX II, Buxco）を利用して、ラット気道変化の情報を収集し、Ｐｅｎｈ値を計算する。Ｐｅｎｈ値の計算方式は、pause×PIF/PEF；Pause = (Te − Tr) / Tr, (PIF：peak inspiratory flow；PEF：peak expiratory flow；Te：expiratory time；Tr：relaxation time)である。ラットの意識がはっきりした状態で、全身をプレチスモグラフチャンバ中に放置し、超音波生理食塩水（normal saline）をチャンバに３分間導入し、その後、ラットの三分内の毎分の平均肺呼吸抵抗値Ｐｅｎｈを記録し、次第に増加する濃度のメタコリン（Methacholine、６．２５、１２．５、２５、５０ｍｇ／ｍＬ）をラットに噴霧して刺激し、各濃度は、３分間刺激した後、更に、３分間の気道生理変化を記録する。三分内の各分の平均Ｐｅｎｈ値を記録する。

ｄ.肺洗浄液、及び、肺部細胞分析
肺呼吸抵抗テスト終了後、ラットを犠牲にし、頚部頭皮肉を切り取って気管を露出し、静脈から管を気管に挿入し、まず、１ｍＬの無菌ＨＢＳＳバッファで肺部を洗浄し、取得した肺洗浄液は１５００ｒｐｍで５分間遠心させ、上澄み液を分離して、−８０℃で後続分析する。部分的な細胞を後の二回の肺洗浄液中に併入し、１５００ｒｐｍで５分間遠心し、上澄み液を捨てて、細胞を１ｍＬの２％ＢＳＡを含有するＨＢＳＳバッファにより懸濁させ、トリパンブルー（trypan blue）染色により計数し、約１×１０^５の細胞をサイトスピン（cytospin）により、５００ｒｐｍで３分間遠心して、細胞標本を製作し、自然乾燥を待って、ＬｉｕＡ、及び、ＬｉｕＢの順に染色し、少量のアラビアゴムによりシールし、油浸対物｛ゆしんたいぶつ｝レンズ（１０００ｘ）により少なくとも五個の視野の細胞、或いは、総数３００以上の細胞を判読し、リンパ球、及び、多核球の比例を計算する。

ｅ.脾臓細胞培養
無菌条件下で、ラットの腹腔から脾臓を取り出して、３ｍＬのＨＢＳＳバッファの２０ｍｍを加えたペトリ皿内に放置し、無菌針末端により脾臓を砕き、リンパ細胞を採取し、細胞懸濁液に１５ｍＬの遠心管を吸入し、５分静置した後、上澄み液を１５００ｒｐｍで５分間遠心し、上澄み液を吸い取り、１ｍＬのＲＢＣ溶解バッファにより、二回洗浄し、更に、５ｍＬの５％のＦＢＳを含有するＲＰＭＩ−１６４０完全培地を加え、細胞を懸濁させる。トリパンブルー染色法により細胞総数を計算し、細胞数を１×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍＬｍｅｄｉｕｍまで調整する。細胞液０．５ｍＬを４８−ウェルプレート中に加え、更に、等体積の培養液を加え、含マイトジェン、或いは、オボアルブミン（ＯＶＡ）を含む培養液は、細胞の最終濃度を、５×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬｍｅｄｉｕｍにする。恒温の培養箱３７℃に置き、５％ＣＯ_２で４８時間培養し、上澄み液を−８０℃で保存し、その中の細胞サイトカイン分泌量を分析する。

ｆ.細胞サイトカインの測定
脾臓細胞分泌細胞サイトカインの含量は、サンドイッチ型酵素免疫測定法により測定する。簡単には、まず、抗細胞サイトカイン抗体をＮａＨＣＯ_３緩衝液（ｐＨ９．６）により希釈後、９６孔の微量培養盤を加入して４℃で一晩静置する。二日目、培養盤を３回洗浄後、１％のＢＳＡを含むＰＢＳを室温下で、少なくとも一時間反応させて、ブロッキング（blocking）する。測定サンプルを加え、３７℃で２時間反応させるか、或いは、４℃で一晩反応させる。四回の洗浄後、１％のＢＳＡ−ＰＢＳ緩衝液により希釈したバイオ接合（biotin-conjugated）抗細胞サイトカイン抗体を室温で１時間反応させ、５回洗浄し、続いて、ストレプトアビジン接合ペルオキシダーゼ（streptavidin-conjugated peroxidase）を加えて、更に１時間反応させる。最後に、洗浄後、各孔に１００μＬのテトラメチルベンジジンＴＭＢｓｕｂｓｔｒａｔｅ（Tetramethylbenzidine substrate）を加え、室温で約２０分遮光して反応させる。マイクロプレート読取り機（microplate autoreader）により波長４５０ｍｍの吸光度を読み取る。

２．統計方法
実験結果は平均値±基準誤差表示（Ｍｅａｎｓ±ＳＥＭｓ）により表示される。各組間の差異はスチューデントのｔ検定（Student t-test）で分析され、ｐ＜０．０５は顕著な差異（＊，ｐ＜０．０５；＊＊，ｐ＜０．００１）がある。また、ｐ＜０．１は差異があるとみなされる。

実験結果分析：
Ａ．オボアルブミン（ＯＶＡ）専一性抗体を測定する酵素免疫測定法結果
血清中のオボアルブミン（ＯＶＡ）の特異性抗体効価部分は、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌の対照組を与え、オボアルブミン（ＯＶＡ）がラットをアレルギーにする血清中のオボアルブミン（ＯＶＡ）特異性ＩｇＥ抗体の減少趨勢結果を表８と図６で示す。表８は、オボアルブミンの専一性抗体ＩｇＥ測定結果（Ｍｅａｎｓ±ＳＥＭｓ，Ｎ＝１４，Ｐｖａｌｕｅ＝Ｐ）である。

Ｂ．気道過敏性（airway hyperresponsiveness, AHR）測定結果
肺呼吸抵抗部分は、対照組に相対し、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与え、高濃度のメタコリン（Methacholine）刺激下で、ラットのＰｅｎｈ値が顕著に低下する。結果は表９と図７で示される。表９は、気道過敏性測定結果である（Ｍｅａｎｓ±ＳＥＭｓ，Ｎ＝１４，Ｐｖａｌｕｅ＝Ｐ）。

Ｃ．肺洗浄液、及び、肺部細胞分析結果
肺洗浄液中の細胞組成成分は、対照組に相対し、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与えた実験組において、顕著に低い好酸球（eosinophil）の数を有する。結果は表１０と図８で示される。表１０は、肺洗浄液分析結果（Ｍｅａｎｓ±ＳＥＭｓ，Ｎ＝１４，Ｐｖａｌｕｅ＝Ｐ）である。

Ｄ．肺洗浄液細胞サイトカイン分析結果
対照組に相対し、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与えた実験組は、肺洗浄液中のエオタキシン（eotaxin）分泌量が顕著に減少し、且つ、ＰＧＥ_２も減少する趨勢にある。結果は表１１と図９、及び、図１０で示される。表１１は、肺洗浄液細胞サイトカイン分析結果（Ｍｅａｎｓ±ＳＥＭｓ，Ｎ＝１４，Ｐｖａｌｕｅ＝Ｐ）である。

Ｅ．脾臓細胞培養の上澄み液細胞サイトカイン分析結果
脾臓細胞はＣｏｎＡ、或いは、オボアルブミン（ＯＶＡ）により４８時間刺激培養した後、ＣｏｎＡの刺激下で、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与えた実験組の脾臓細胞分泌のＩＦＮ−γは対照組より顕著に高い。結果は表１２と図１１で示される。表１２は、脾臓細胞培養の上澄み液で、異なる刺激物質の脾臓細胞に対する細胞サイトカイン分泌の影響を分析する（Ｍｅａｎｓ±ＳＥＭｓ，Ｎ＝１４，Ｐｖａｌｕｅ＝Ｐ）

上述を総合すると、本発明の電気化学免疫紙片試験は、免疫反応を利用し、効果的に、電気化学検査の干渉性問題を克服し、検査敏感度を向上させる。この他、本発明は、一工程で快速に紙片試験と定量の検査を提供し、また、生物技術と電子製造技術を結合して、生産コストを減少させ、生物化学紙片試験を簡単にする。

本発明の食品組成物は、上述の任意の一種、或いは、それ以上の菌株を組み合わせてなる各種組成物で、例えば、発酵乳、ヨーグルト、チーズ、乳飲料、全乳粉、茶飲料、或いは、コーヒー中のどれかであり、菌株は、活性菌、或いは、死菌の様態で、組成物に存在する。

乳酸菌は光アレルギーの効果を発揮するので、特定功能の菌株を探す以外に、菌株が人体の胃酸胆汁塩の環境を通過できるのを確認する以外に、小腸粘膜表皮細胞に対し、良好な吸付能力を有する乳酸菌株が必要で、この種の特性により、本発明の抗アレルギー乳酸菌は、治療、或いは、アレルギー症状を緩和する医療用途を提供することができる。本発明の抗アレルギー乳酸菌は、同時に、Ｔｈ１を増強し、Ｔｈ２のアレルギー反応を調整する。本発明の一目標は、大衆にアレルギー治療上、ステロイド、或いは、アンタゾリンの新選択を提供し、本発明は、人体に副作用がなく、且つ、健康に有益な抗アレルギー乳酸菌によりアレルギー治療する新選択を提供する。

本発明では好ましい実施例を前述の通り開示したが、これらは決して本発明に限定するものではなく、当該技術を熟知する者なら誰でも、本発明の精神と領域を脱しない範囲内で各種の変動や潤色を加えることができ、従って本発明の保護範囲は、特許請求の範囲で指定した内容を基準とする。

１０^６〜１０^８個ｃｆｕのラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株と１０^５〜１０^７個の人類の末梢血単核球（ＰＢＭＣ）を４８時間共培養し、細胞の上澄み液を採取して、酵素免疫測定法により、インターフェロンγ（ＩＦＮ−ｇａｍｍａ）の上澄み液中の含量を検出する。無抗アレルギー功能乳酸菌（Lactobacillus casei BCRC12249台湾食品工▲業▼▲発▼展研究所）を負制御組、ＰＨＡを正制御組とし、インターフェロンγが刺激を受ける濃度を検出する。結果は、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）は、これらの異なる乳酸菌株の刺激により、インターフェロンγ分泌を増加することができる。熱致死させた１０^６〜１０^８個ｃｆｕのラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株、或いは、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株と１０^５〜１０^７個の樹枝状細胞を４８時間共培養し、細胞の上澄み液を採取して、酵素免疫測定法により、インターロイキン（ＩＬ−１２）の上澄み液中の含量を検出する。無抗アレルギー功能乳酸菌（Lactobacillus casei BCRC12249台湾食品工▲業▼▲発▼展研究所）を負制御組、ＰＨＡを正制御組とし、インターロイキン（ＩＬ−１２）が刺激を受ける濃度を検出する。結果は、樹枝状細胞は、五個の乳酸菌の刺激により、インターロイキン（ＩＬ−１２）の分泌を増加させる。市販の抗アレルギー乳酸菌が培養基で活性化後、総菌数は酸性の緩衝溶液、及び、胆汁塩処理され、菌数が明らかに減少する。アレルギーを調整する乳酸菌株の培養基での活性後、菌株を酸性の緩衝溶液と胆汁塩で処理し、ＰＭ−Ａ０００６、ＰＭ−Ａ０００９、ＰＭ−Ａ００１３菌数は、胃酸コリン変化の影響に対して急激に下降せず、ＰＭ−Ａ０００２、及び、ＰＭ−Ａ０００５は胃酸の影響を受けないが、菌数に影響し、胃酸に対する耐受性を証明する。但し、菌株が胆汁塩で処理される時、菌株は少し減少するが、胆汁塩に対する耐受性はあり、抗アレルギーのこの五株の乳酸菌株は、人体の消化器系の厳しい環境をパスできることを証明する。 Jacobsen等の学者（１９９９）の分析方法で、各視野の平均菌数が、４０以下の時、不付着（nonadhesive）；各視野の平均菌数が４１〜１００の時、付着（adhesive）；各視野の平均菌数が１００以上の時、強烈な付着（strongly adhesive）であると判定する。ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ０００２菌株、ラクトバチルスガセリＰＭ−Ａ０００５菌株、ラクトバチルスサリバリウスＰＭ−Ａ０００６菌株、ラクトバシルスジョンソニイ菌ＰＭ−Ａ０００９菌株等の四株の抗アレルギー乳酸菌株が強烈な付着であると判定され、ラクトバチルスアシドフィラス菌ＰＭ−Ａ００１３菌株が付着であると判定されることが示される。抗アレルギー乳酸菌がアレルギーを改善する実験の設計工程は、抗アレルギー乳酸菌を与えるのを管理する段階を四期に分ける。第一期は０〜２２日、第二期は２３〜３６日、第三期は３７〜５０日、第四期は５１〜５３日である。その間はラットにオボアルブミンを腹腔注射し、四回（1^st ip, 2^nd ip, 3^rd ip, 4^th ip）に分けてアレルギー反応させ、第一回は飼料管理の二日目、第二回は１６日目、第三回は３０日目、第四回は４４日目である。オボアルブミンを腹腔注射する隔週は、血液検査し、ラットのＩｇＥの体内含量の変化を調べる。ラットが犠牲になる四日前（第５４日目）に、鼻の粘膜から吸入する方式で、ラットに連続２日間アレルギーを生じさせ、ラットの肺呼吸抵抗の反応を検出し、次の日、犠牲になったラットに対し、その他の生化学値の検出を行う。図６は、ラットの血清における、ラクトバチルスサリバリウス（Lactobacillus salivarius）ＰＭ−Ａ０００６を摂取した場合と偽薬を摂取した場合のオボアルブミン特異性ＩｇＥの発生の検出を示す。ラクトバチルスサリバリウス（Lactobacillus salivarius）ＰＭ−Ａ０００６の摂取によって、ラットの血清におけるオボアルブミン特異性ＩｇＥを低減することができる。肺呼吸抵抗部分は、対照組に相対し、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与え、高濃度のメタコリン（Methacholine）刺激下で、ラットのＰｅｎｈ値が顕著に低下する。肺洗浄液中の細胞組成成分は、対照組に相対し、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与えた実験組において、顕著に低い好酸球（eosinophil）の数を有する。対照組に相対し、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与えた実験組は、肺洗浄液中のエオタキシン（eotaxin）分泌量を顕著に減少させる。対照組に相対し、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与えた実験組は、ＰＧＥ_２分泌量を減少させる。脾臓細胞はＣｏｎＡ、或いは、オボアルブミン（ＯＶＡ）により４８時間刺激培養した後、ＣｏｎＡの刺激下で、ＰＭ−Ａ０００６乳酸菌を与えた実験組の脾臓細胞分泌のＩＦＮ−γは対照組より顕著に高い。

符号の説明

なし。

Claims

（１）免疫細胞を刺激し、抗アレルギーのサイトカイン濃度を分泌するのに効果的な量のラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ０００２菌株（Ｍ２０７０３８）の生物性純培養物、ラクトバチルスガセリ（Lactobacillus gasseri）ＰＭ−Ａ０００５菌株（Ｍ２０７０３９）の生物性純培養物、ラクトバチルスサリバリウス（Lactobacillus salivarius subsp. salicinius）ＰＭ−Ａ０００６菌株（Ｍ２０７０４０）の生物性純培養物、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株（Ｍ２０７０４１）の生物性純培養物、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株（Ｍ２０７０４２）の生物性純培養物、又はこれらの組み合わせ、並びに
（２）生理上許容できる賦形剤、或いは、希釈剤
を含むことを特徴とする食品組成物。
前記の菌株中の任意の一種、或いは、一種以上を含むことを特徴とする請求項１に記載の食品組成物。
前記菌株は、活性菌か死菌であることを特徴とする請求項２に記載の食品組成物。
前記賦形剤、或いは、希釈剤は食品であることを特徴とする請求項１に記載の食品組成物。
前記食品は、発酵乳、ヨーグルト、チーズ、乳飲料、茶、或いは、コーヒーのどれかであることを特徴とする請求項４に記載の食品組成物。
（１）免疫細胞を刺激し、抗アレルギーのサイトカイン濃度を分泌するのに効果的な量のラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ０００２菌株（Ｍ２０７０３８）の生物性純培養物、ラクトバチルスガセリ（Lactobacillus gasseri）ＰＭ−Ａ０００５菌株（Ｍ２０７０３９）の生物性純培養物、ラクトバチルスサリバリウス（Lactobacillus salivarius subsp. salicinius）ＰＭ−Ａ０００６菌株（Ｍ２０７０４０）の生物性純培養物、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株（Ｍ２０７０４１）の生物性純培養物、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株（Ｍ２０７０４２）の生物性純培養物、又はこれらの組み合わせ、並びに
（２）医薬上許容できる賦形剤、或いは、希釈剤
を含むことを特徴とする抗アレルギーに応用する調合薬。
前記の菌株中の任意の一種、或いは、一種以上を含むことを特徴とする請求項６に記載の調合薬。
前記菌株は、活性菌か死菌であることを特徴とする請求項７に記載の調合薬。
前記生物性純培養物は、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ０００２菌株（Ｍ２０７０３８）であることを特徴とする請求項６に記載の調合薬。
前記生物性純培養物は、ラクトバチルスガセリ（Lactobacillus gasseri）ＰＭ−Ａ０００５菌株（Ｍ２０７０３９）であることを特徴とする請求項６に記載の調合薬。
前記生物性純培養物は、ラクトバチルスサリバリウス（Lactobacillus salivarius subsp. salicinius）ＰＭ−Ａ０００６菌株（Ｍ２０７０４０）であることを特徴とする請求項６に記載の調合薬。
前記生物性純培養物は、ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株（Ｍ２０７０４１）であることを特徴とする請求項６に記載の調合薬。
前記生物性純培養物は、ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株（Ｍ２０７０４２）であることを特徴とする請求項６に記載の調合薬。
免疫細胞の光アレルギーの相関細胞ホルモン分泌を刺激する薬物中に用いる、
（１）ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ０００２菌株（Ｍ２０７０３８）の生物性純培養物、
（２）ラクトバチルスガセリ（Lactobacillus gasseri）ＰＭ−Ａ０００５菌株（Ｍ２０７０３９）の生物性純培養物、
（３）ラクトバチルスサリバリウス（Lactobacillus salivarius subsp. salicinius）ＰＭ−Ａ０００６菌株（Ｍ２０７０４０）の生物性純培養物、
（４）ラクトバシルスジョンソニイ菌（Lactobacillus johnsonii）ＰＭ−Ａ０００９菌株（Ｍ２０７０４１）の生物性純培養物、
（５）ラクトバチルスアシドフィラス菌（Lactobacillus acidophilus）ＰＭ−Ａ００１３菌株（Ｍ２０７０４２）の生物性純培養物、又は
（６）前記（１）〜（５）から選択された少なくとも２つの生物性純培養物の組み合わせ。