JP4981133B2 - 肺癌用マーカーとしてのnnmtの使用 - Google Patents
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Description
スクリーニングは、LCの症状の判断に医学注意を払わない個体で、LCを患う個体を十分なリスクで同定し、さらなる調査または直接予防作用の利益を得るような全身性適用の試験として定義される。
マーカーは特定の臓器における良性対悪性疾患の種々の診断を補助し得るか、または腫瘍の異なる組織学的種類の区別に役立ち得るかのいずれかである。Molina, R. et al., Tumor Biol. 24 (2003) 209-218によって報告されるように、CEA、CA 125、CYFRA 21-1、SSCおよびNSEが血清マーカーとしてLCの組織学的診断を補助するために使用された。また、その研究の結果は、試験されたマーカーの中で、CYFRA21-1が組織学に関連しないが肺癌における最も感度の高いマーカーであることを示す。
予後指標は、癌患者および疾患結果を予見する腫瘍の臨床、病理学的、または生化学特徴として定義することができる。その主な使用は患者管理の合理的な計画を補助すること、即ち、攻撃性疾患の過小治療および無痛性疾患の過剰治療を回避することである。Molina R. et al., Tumor Biol. (2003) 24:209-218 は、NSCLCにおいてCEA、CA 125、CYFRA 21-1、SSCおよびNSEの予後値を評価し、例えば、患者の全体生存を評価して、マーカーNSE、CEA、およびLDH(乳酸デヒドロゲナーゼ)の異常血清レベルが、短い生存を示すように思われた。
Merle, P. et al., Int. J. of Biological Markers 19 (2004) 310-315は、誘導化学療法で治療され局所的に進行したNSCLCを有する患者においてCYFRA21-1血清レベル変動を評価した。彼らはCYFRA21-1血清レベルの早期モニタリングが段階III NSCLC患者の腫瘍応答および生存のための有用な予後ツールであり得ることを結論付けた。また、報告は、LCを有する患者の治療のモニタリングにCEAを使用することを記載している(Fukasawa, T. et al., Gan to Kagaku Ryoho. Cancer & Chemotherapy 13 (1986) 1862-1867 (日本語で記載); Zhang, H. et al., Shandong Yike Daxue Xuebao 39 (2001) 537-538, 541 (中国語で記載))。これらのほとんどは遡及的にランダム化されず、小数の患者を含んだ。CYFRA 21-1を用いた研究の場合のように、CEA研究は:a)化学療法を受けておりCEAレベルの減少を有する患者はCEAレベルを減少できなかった患者よりも良好な結果を一般的に有したこと、および(b)ほとんどの全ての患者について、CEAレベルの増大が疾患進行と関連したことを示唆した。
癌性組織の完全な除去を目的とした外科切除を受けるLC患者の大部分は、後に再発または転移疾患を発症する(Wagner, H., Chest 117 (2000) 110-116; Buccheri, G. et al., Ann. Thorac. Surg. 75 (2003) 973-980)。これらのうちほとんどの再発は手術後の最初の2〜3年で生じる。再発/転移疾患は不変的に致命的であるために、かなりの研究が早期および潜在的に治療可能な段階でのLC同定に焦点を当てている。
肺癌マーカータンパク質NNMTに対する抗体の作製
免疫検出アッセイ、例えばウエスタンブロッティングおよびELISAによる、NNMTの血清中濃度および血漿中濃度ならびに血中濃度の測定における、抗体のさらなる使用のために、肺癌のマーカーのタンパク質NNMTに対するポリクローナル抗体を作製した。
NNMTに対する抗体を産生させるために、免疫原を得るために、タンパク質の組み換え発現を行なった。RTS 100発現系および大腸菌での発現の組み合わせを適用することにより発現させた。最初の段階において、「ProteoExpert RTS E.coli HY」システムを用いて、該DNA配列を分析し、高収率のcDNAサイレント突然変異体、およびそれぞれのPCRプライマー配列についての推奨を得た。これは商用ウェブベースサービス(www.proteoexpert.com)である。推奨されるプライマー対を用い、cDNAから線状PCR鋳型を産生させるための、ならびにNNMTタンパク質をコードするヌクレオチド配列のインビトロの転写および発現のための、「RTS 100大腸菌線状鋳型産生セット、His標識(RTS 100 E. coli Linear Template Generation Set, His-tag)」(Roche Diagnostics GmbH, Mannheim, Germany, カタログ番号3186237)を用いた。ウエスタンブロット検出および後の精製のために、発現されるタンパク質はHis標識を含んだ。最もよく発現する変異体を同定した。PCRから発現および検出までのすべての工程は、製造業者の使用説明書に従って行なった。すべての必要なT7調節領域(プロモーター、リボソーム結合部位、およびT7ターミネーター)を含むそれぞれのPCR産物を、製造業者の使用説明書に従い、pBAD TOPO(登録商標)ベクター(Invitrogen, Karlsruhe, Germany, カタログ番号K 4300/01)の中にクローン化させた。T7調節配列を用いる発現のために、該構築物を大腸菌BL 21 (DE 3)に形質転換させ (Studier, F.W.,ら, Methods Enzymol. 185 (1990)60〜89)、形質転換された細菌をタンパク質発現のために1lのバッチで培養した。
a)免疫化
免疫化のために、タンパク質溶液の新鮮なエマルション(100μg/mlのタンパク質NNMT)および完全フロイントアジュバントを1:1の比で調製した。各ウサギを1日目、7日目、14日目、および30日目、60日目、ならびに90日目に1 mlのエマルションで免疫した。血液を取り、生じた抗NNMT血清を、実施例3および実施例4に記載したように、さらなる実験に用いた。
ウサギ血清1容積を酢酸塩緩衝液(60 mM、pH 4.0)4容積で希釈した。pHを2 M Tris塩基で4.5に調節した。カプリル酸(25μl/mlの希釈した試料)を激しい攪拌のもとで滴下した。30分後、試料を遠心分離し(13,000 x g、30分、4℃)、ペレットを捨て、上澄みを収集した。2 M Tris塩基を加えることにより上澄みのpHを7.5に調節し、濾過した(0.2μm)。
ポリクローナルウサギIgGを10 mMNaH2PO4/NaOH、pH 7.5、30 mM NaClで10 mg/mlにした。IgG溶液1 mlあたり50μlのビオチン-N-ヒドロキシスクシンイミド(DMSO中の3.6 mg/ml)を加えた。室温で30分放置した後に、試料をSuperdex200でクロマトグラフィーによって分離した(10 mM NaH2PO4/NaOH、pH 7.5、30 mM NaCl)。ビオチン化IgGを含有する画分を収集した。モノクローナル抗体を、同じ手順によってビオチン化した。
ポリクローナルウサギIgGを10 mMNaH2PO4/NaOH、30 mM NaCl、pH 7.5で10 mg/mlにした。IgG溶液1 mlあたり50μlのジゴキシゲニン-3-O-メチルカルボニル-ε-アミノカプロン酸-N-ヒドロキシスクシンイミドエステル(Roche Diagnostics, Mannheim, Germany, カタログ番号1 333 054)(DMSO中3.8 mg/ml)を加えた。室温で30分放置した後に、試料をSuperdex(登録商標)200でクロマトグラフィーによって分離した(10 mM NaH2PO4/NaOH、pH 7.5、30 mM NaCl)。ジゴキシゲニン化IgGを含有する画分を収集した。モノクローナル抗体を、同じ手順によってジゴキシゲニンで標識した。
ヒト血清および血漿試料中のNNMTの測定のためのELISA
ヒト血清および血漿中のNNMTの検出のために、サンドイッチ型ELISAを開発した。抗原の捕捉および検出のために、抗NNMTポリクローナル抗体のアリコート(実施例2参照)をビオチンおよびジゴキシゲニンとそれぞれ結合させた。
試験I:試験集団
第1の試験では、表1に示すUICC分類を有する56名の充分特徴付けされたLC患者由来の試料を使用した。このコホートの焦点はNSCLC (50の試料)に対するものとし、それは、この形態のLCがSC型よりも良好な予後を有し、したがってその早期検出が特に重要であるためである。
試験I:単一マーカーの感度
各マーカーの感度を、試験した個々の各マーカーについて、一般的な特異性レベル95%で計算した。表2に最も有望なLCマーカーそれぞれの感度をパーセントで示す。
試験I:マーカー組み合わせ
個体は、それぞれの組み合わせのマーカーの少なくとも1つが一定の閾値を超える場合、LCを有すると分類した。これらのカットオフ値は、例えば、対照コホートに対して95%特異性をもたらすように規定した。
試験II:試験集団
第1のものとは完全に独立した第2の試験は、NSCLCの主な型である腺癌および扁平上皮癌に焦点をあてた。表4aは、癌コホートの型および病期の分布を示す。
試験II:単一マーカーの感度
各マーカーの感度を、前述のように表4bに示した試料に基づいて計算した。感度(パーセントで)を、試験した個々の各マーカーについて一般的な特異性レベル95%で示す。表5は、それぞれ腺癌および扁平上皮癌の感度、ならびに各マーカーの全体の感度を示す。
試験II:マーカー組み合わせ
試験IIにおけるマーカー組み合わせの結果を表6に示す。組み合わせの型は、試験Iで上記のものと同じであった。
Claims (10)
- a) 試料中のニコチンアミドN-メチルトランスフェラーゼ(NNMT)のタンパク質濃度を測定する工程、および
b) 工程(a)で測定された濃度を肺癌の評価に使用する工程
を含み、
ここで、NNMTの増加が肺癌を示す、
肺癌のインビトロ評価のための方法。 - 工程a)が、試料中の1つ以上の他の肺癌マーカーのタンパク質濃度を測定する工程をさらに含む、請求項1記載の方法。
- 前記1つ以上の他のマーカーが、CYFRA21-1、CEA、NSEおよびSCCからなる群より選択される、請求項2記載の方法。
- 前記1つ以上の他のマーカーがCYFRA21-1である、請求項3記載の方法。
- 前記1つ以上の他のマーカーがCEAである、請求項3記載の方法。
- 前記1つ以上の他のマーカーがSCCである、請求項3記載の方法。
- 肺癌の評価におけるNNMTタンパク質濃度の使用であって、該NNMTタンパク質濃度は、請求項1記載の方法に従って使用される、使用。
- 肺癌の評価における、NNMTタンパク質濃度および1つ以上の他の肺癌マーカーを含むマーカーパネルの使用であって、該マーカーパネルは、請求項2記載の方法に従って使用される、使用。
- 1つ以上の他のマーカーが、CYFRA21-1、CEA、NSEおよびSCCからなる群より選択される、請求項8記載のマーカーパネルの使用。
- マーカーパネルが少なくともNNMTおよびCYFRA21-1を含む、請求項9記載のマーカーパネルの使用。
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