JP4942322B2 - 皮膚線維芽細胞増殖促進剤 - Google Patents
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乾燥した月桃の葉30gを0.1〜3mmの粒径に粉砕し容器に入れた。粉砕月桃を入れた容器に水30g、糖蜜0.9gを添加した。これとは別に、ラクトバシルス・プランタリム、ストレプトコッカス・サーモフィルス、バシルス・ズブチルスの各菌をそれぞれ培養後、菌数1:1:1の割合で混合し、月桃の重量に対し、10重量%を添加し、容器を密閉し、静置培養により発酵を行った。発酵温度は40℃、発酵時間は72時間とした。その後、乾燥機により水分値が10重量%以下になるまで60℃で乾燥した後、滅菌処理(130℃蒸気、5〜15秒)を行い、発酵月桃30gを得た(以下「発酵月桃茶」という場合がある)。その後、発酵月桃茶1gに対して10mLの割合になるように水を加え、80℃で20分間熱水抽出し、上澄みをプールし、沈殿1gに対して10mLの割合になるように再度、水を加え、80℃で20分間熱水抽出し、前述の上澄みと合わせて熱水抽出エキスを得た。また、この熱水抽出エキスを凍結乾燥して得られる発酵月桃凍結乾燥物(熱水抽出物)(収率9.12%)を調製した。
実施例1と同様にして調製した発酵月桃茶1gに対して10mLの割合になるように80%エタノールを加え、室温で24時間抽出し、この抽出液を濃縮、乾固し、濃度20mg/mlになるようにDMSOを加え再溶解して、抽出物を調製した。
皮膚線維芽細胞(ヒト新生児由来、大日本製薬株式会社より購入、1×106)を、10%FBSを含むα−MEM培地を用いて、25cm2フラスコ中で4日間培養した。その後トリプシン処理して細胞を回収し、7×103cell/mLで24穴プレートに移し5%FBSを含むα−MEM培地で12時間培養した。次に、サンプルである発酵月桃の熱水抽出液を原液又は5倍希釈したもの5μLを皮膚線維芽細胞に添加し、37℃、5%CO2にて3日間培養した。コントロールとして抽出物無添加を、また、月桃の葉の無醗酵乾燥物も、同様に上記の条件で培養したものを用いた。比色法の一つであるMTT法にて細胞生存率を測定し、細胞増殖率を細胞増殖率(%)=[(A−C)−(B−D)/(B−D)]×100により求めた。式中、A:MTT(3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide)添加、熱水抽出液添加、B:MTT添加、熱水抽出液無添加、C:MTT無添加、熱水抽出液添加、D:MTT無添加、熱水抽出液無添加、をそれぞれ示す。結果を図1に示す。図1より、本発明の月桃発酵処理物の熱水抽出液を添加したものは、細胞増殖率は、コントロールに比べて約12〜17%高く、月桃を醗酵しないものと比べると約9〜11%高いことがわかった。なお、5倍希釈の方が原液より細胞増殖率がよいがその理由は不明である。
実施例2で調製した80%エタノール抽出物をDMSOに溶解し、最終濃度10μg/mL、又は4μg/mLとなるように用いて、実施例3と同様に細胞増殖率を求めた。結果を図2に示す。図2より、エタノール抽出物を添加した場合の細胞増殖率は、コントロールに比べて、10μg/mLでは約5%、4μg/mLでは約18%高いことがわかった。また、月桃を醗酵しないものと比べると、10μg/mLでは約61%、4μg/mLでは約18%高いことがわかった。なお、この実験でも4μg/mLの方が、10μg/mLより細胞増殖率がよいがその理由は不明である。
20代〜50代の女性20名を対象として、発酵月桃茶のアンケート調査を行った。実施例1で得られた発酵月桃茶2gを1リットルの水に入れ火にかけ、沸騰後5分間煮出した。この煮出液を1日500mL以上毎日摂取してもらい、8週間後に「肌のはり」、「肌の潤い」及び「肌のつや」についてアンケート調査を行った。アンケートは5段階評価(改善、やや改善、不変、やや悪化、悪化)にて実施した。肌のはりについてのアンケート結果を表1に、肌の潤いについてのアンケート結果を表2に、肌のつやについてのアンケート結果を表3に、それぞれ示す。
20代〜40代の女性6名を対象として、55日間モニターテストを実施してもらった。モニターを実施する前の肌状態を皮膚粘弾性測定装置CUTOMETERMPA580で肌(頬)のエリスマ(赤み)および弾力の測定を行った。発酵月桃エキス粒(実施例1における発酵月桃熱水抽出物の凍結乾燥物の粒剤;200mg×4粒)を就寝前(20時〜22時)にモニター期間中毎日服用してもらい、モニター開始から55日目に、同様に肌のエリスマおよび弾力の測定を行った。測定方法として、エリスマについてはプローブを各部位に直接当てプログラム上でデータ処理し、弾力に関しては、測定部位にプローブを当て吸引後、圧解除し、時間に対する変位を測定し、その波形から弾力を計算によって算出し評価した。測定環境は、温度25±1℃、湿度53〜63%であった。その結果を、エリスマ赤み(頬)については、個人別データを図3に、平均をとり統計処理(t検定)を行った結果を図4に示す。図3および図4より、どの被験者も減少傾向にあり、統計処理の結果から摂取前と比較して摂取後は有意に減少した。
[参考例1]
メラニン量、DNA量を測定し、DNA当たりのメラニン生成量を測定した。また、供試サンプルとして、実施例1における発酵月桃熱水抽出物の凍結乾燥物を、ビタミンCとしてL(+)アスコルビン酸ナトリウム(Wako社製)をPBS(−)溶液に溶解したものを加え、0.22μmフィルターで濾過滅菌した液を用いた。サンプル溶液は細胞増殖に影響を与えないよう、培地に対して1%以下になるように調製した。
(1)測定試料の調製:細胞として、B16メラノーマ細胞(理研セルバンクより購入、B16melanoma 4A5:Car No RCB0557)を10%FBS−MEM(pH7.4)培地で、所定濃度のサンプル溶液を添加して37℃、5%CO2にて3日間培養した。培地を除去し、PBS(−)溶液で細胞表面を2回洗浄し、その後50mM Tris−HCl buffer(pH7.5)を1mL加え、細胞をセルスクレイバー(Nunc社製)で集め、ソニケーター(Yamato powersonic社製 Model150)で破砕した。これを細胞破砕液とした。
(2)メラニン量の測定:(1)の細胞破砕液0.5mLに2N NaOHを0.5mL加え、80℃で加温し、メラニンを溶解した。冷却後、400nmの吸光度を測定した。メラニン標準液を用いて検量線を作成し、メラニン量を算出した。
(3)DNA量の測定:(1)の細胞破砕液80μにDAPI(4’,6−Diamidino-2-phenylindole(DAPI)[SIGMA]1mg/20mL Tris-HCI buffer(pH7.5)をストック溶液として−20℃で遮光保存。使用時にTris-HCI buffer(pH7.5)で500倍に希釈した。)を4mL加えて混合し、暗所に30分間置いた。励起波長(Ex)350nm、蛍光強度を測定した(Shimadzu spectofluorophotometer RF-540)。DNA標準液を用いて検量線を作成し、DNA量を算出した。
[参考例2]
細胞内におけるチロシナーゼ活性及びタンパク質量を測定し、タンパク質当たりの酵素活性を求めた。
(1)測定試料の調製:参考例1と同様の方法により培地に所定濃度のサンプルを添加し、B16メラノーマ細胞を培養した。培地を除去し、PBS(−)溶液で細胞表面を2回洗浄し、その後0.5%DOC(デオキシコルチコステロン)1mLを加え、細胞をセルスクレイバーで集め、ソニケーターで破砕した。これを遠心分離(11000rpm、20min、4℃)し、その上清部を酵素溶液とした。
(2)チロシナーゼ活性測定:37℃で10分間プレインキュベートした0.05%L−ドーパ(L−DOPA)/0.1M リン酸緩衝溶液1mLに、前記酵素溶液0.5mLを加え、37℃でインキュベートしながら475nmの吸光度を経時的(1min)に10分間測定した。
L−ドーパ(L−DOPA)の自動酸化を測定するために、同時に、0.05%L−ドーパ/0.1M リン酸緩衝溶液1mLに0.5%DOC0.5mLを加えたものの吸光度も経時的に測定し、ベースラインとした。横軸に反応時間(min)、縦軸にタンパク質当たりの測定開始からのO.D.475nmの変化量をとったグラフから、その反応開始後の傾きを求め、チロシナーゼ活性とした。コントロールにおけるチロシナーゼ活性を100%として、各濃度で比較した。
(3)タンパク質量定量(Lowry法)
試薬A:2%Na2CO3−in0.1N NaOH
試薬B:0.5%CuSO4・5H2O−1%酒石酸カリウムまたはナトリウム
試薬C:試薬A/試薬B=50/1に混合。毎回新調
試薬D:フェノール試薬(市販品を使用時に蒸留水で2倍に希釈する)
タンパク質標準溶液:アルブミン標品約5mg/10mL。正確に秤量する。
[操作]0.2mL中にタンパク質5〜100μgを含むサンプル溶液を試験管に取り、試薬Cを1mL添加、混合する。室温で10分間以上放置した後、試薬D0.2mLを加え、すばやく混合する。20分以上2時間以内に吸光度750nmで比色を行う。検量線は標準アルブミン溶液を希釈して、30〜200μg/mL用いて作成した。
実施例1における発酵月桃熱水抽出物の凍結乾燥物20.47重量%、コラーゲンペプチド(ゼライズ(株)社製)75.0重量%、ヒアルロン酸0.15重量%((株)ホルス社製)、シリマリン(株式会社常盤植物化学研究所社製)0.5重量%の割合で混合し、粒状の錠剤を得た。
実施例1における発酵月桃熱水抽出物の凍結乾燥物100mgを50mLの水に添加し、ジュース原料のクエン酸、香料、ビタミンC、ブドウ糖、砂糖、異性化糖などを適宜添加し、混合撹拌して、ジュースを得た。
実施例1における発酵月桃の熱水抽出エキス(発酵月桃エキス)、精製水、グリセリン、及び尿素を下記のような配合にて混合し、スキンケア化粧料を得た。
精製水 93%
グリセリン 3%
尿素 3%
発酵月桃エキス 1%
Claims (6)
- 月桃を乳酸菌と枯草菌により発酵させて得られる発酵処理物を有効成分とすることを特徴とする皮膚線維芽細胞増殖促進剤。
- 発酵処理物が、月桃の葉の発酵処理物であることを特徴とする請求項1記載の皮膚線維芽細胞増殖促進剤。
- ラクトバシルス・プランタリム、ストレプトコッカス・サーモフィルス、バシルス・ズブチルスの混合菌による発酵処理物であることを特徴とする請求項1又は2記載の皮膚線維芽細胞増殖促進剤。
- 発酵処理物が、抽出エキス又はその凍結乾燥物であることを特徴とする請求項1〜3のいずれか記載の皮膚線維芽細胞増殖促進剤。
- 請求項1〜4のいずれか記載の皮膚線維芽細胞増殖促進剤を含有することを特徴とするスキンケア化粧料。
- さらに、シリマリン(Silymarin)、コラーゲンペプチド、及びヒアルロン酸から選ばれる1種以上の成分を含有することを特徴とする請求項5記載のスキンケア化粧料。
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