JP4592954B2 - グルホシネート耐性イネ - Google Patents
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Description
【発明の属する技術分野】
本発明は、特にCaMV 35Sプロモーターの制御下にある、イネゲノム中の特定の場所の、bar遺伝子の存在による特定の形質転換イベントを有することにより特徴づけられるイネ植物、植物材料及び種子に関する。本発明のイネ植物は、グルホシネート耐性と最も望ましい全体的な農業的性能、すなわち遺伝的安定性及び異なった遺伝的背景に対する適合性とを兼ね備えている。
【0002】
ここで指摘する全ての文献は、ここに、参考文献によってこの文章中に組み込まれる。
【0003】
【従来の技術】
植物における導入遺伝子の表現型の発現は、遺伝子そのものの構造及び該植物ゲノム中でのその位置によって決定される。同時に、ゲノム中における異なる位置の導入遺伝子の存在は、その植物の表現型全般に影響し得る。遺伝的操作によって、植物において、商業的に興味深い形質の農業上又は産業上の首尾よい導入は異なる要因に依存して、非常に長い手順になり得る。遺伝的に形質転換された植物の実際の形質転換及び再生は、広範囲にわたる遺伝的特徴づけ、育種及び圃場試験における評価を含む、一連の選択段階の最初に過ぎない。
【0004】
米の生産は、共通して種々の雑草の脅威にさらされる。それらの中には、競争力が強く、激しく繁茂した場合は、その作物を経済的に魅力のないものにしてしまうほどの収穫減という結果になり得る。温帯生産に典型的な、直播の、機械化されたイネ栽培にとって、栽培技能(例えば、輪作、潅漑管理)及び除草剤が雑草の制御のために不可欠である(Hill et.al)。
【0005】
bar遺伝子(Thompson et al, 1987, EMBO J. 6:2519-2523;Deblock et al. 1987, EMBO J. 6:2513-2518)は、ホスフィノスリシン・アセチル化トランスフェラーゼ(PAT)をコードしている遺伝子であり、それが植物中で発現すると、除草剤化合物ホスフィノスリシン(グルホシネートとも呼ばれる)又はバイアラホス(例えば米国特許第5646024号及び第5561236号も参照のこと)及びそれらの塩及びそれらの光学異性体に対する耐性を与える。PATをコードする他の遺伝子は既に記載されている(例えば:Wohlleben et al., 1988, Gene 70:25-37; EP 275957; US 5276268; US5637489; US5273894を参照のこと)。
【0006】
密集した胚カルスを形成することができる完全な組織又はそのような組織から得られた密集したカルスのエレクトロポレーションによる単子葉植物の形質転換は米国特許第5641664号に記載されている。ここに、bar遺伝子のエレクトロポレーションによるイネ密集胚カルスの形質転換及びトランスジェニックイネ植物の再生が開示されている。
【0007】
DNAでコートした金粒子と一緒の爆発による未成熟イネカルスの細胞の形質転換によって得られた、bar遺伝子又はハイグロマイシン耐性を与えるhyg遺伝子と一緒にgus遺伝子を含む、トランスジェニックイネ植物が、記載されている(Christou et al,:1991: Biotechnology 9:957)
【0008】
集合懸濁細胞のエレクトロポレーションによるイネのbar遺伝子での形質転換は、米国特許第5679558号に記載されている。
【0009】
しかしながら、前述の文献は、本発明を教示又は示唆するものではない。
【0010】
【発明が解決しようとする課題】
本発明のまとめ
本発明は、以下の特徴:
a)植物、細胞、組織又は種子のゲノムDNAが、
i)約1159〜約1700bpの長さ、好ましくは1327bpの長さの1つのEcoRI断片;
ii)一方が約805〜1093bpの長さ、好ましくは約805bpの長さ、そして他方が約1700bp〜2140bpの長さ、好ましくは約2.0kbpの長さである一対のBamHI断片;
iii)一方が約2838〜4507bpの長さ、好ましくは約3.8kbpの長さ、そして他方が約5077bpより長い、好ましくは約12kbpの長さである一対のEcoRV断片;
iv)約5077〜11497bpの長さ、好ましくは約5.3kbpの長さである、1つのHindIII断片;
v)両方とも約2838〜約4507bpの長さの、好ましくは約3.1kbpの長さのもの及び約4.1kbpの長さのものである、一対のNcoI断片;
vi)約4749〜約11497bpの長さ、好ましくは約5.1kbpの長さである、1つのNsiI断片;
(ここで、各々の制限断片は標準的なストリンジェント条件下で、配列番号8のヌクレオチド配列を有するプラスミドのEcoRI消化によって得られる約1327bp断片とハイブリダイズすることができる)
の群から選択される制限断片の1つ以上、例えば少なくとも2つ、有利には少なくとも3つ、好ましくは少なくとも4つ、例えば少なくとも5つ、さらに好ましくは6つを生じることができ、及び/又は、
b)該植物、細胞、組織又は種子のDNAが、それぞれ配列番号4及び配列番号5のヌクレオチド配列を有する2つのプライマーでのポリメラーゼ連鎖反応を用いて290〜350bp、好ましくは約313bpのDNA断片を増幅するのに用いることができる(又は、それぞれ配列番号4及び配列番号5のヌクレオチド配列を有する2つのプライマーでのポリメラーゼ連鎖反応を用いて増幅された約290〜約350bp、好ましくは約313bpのDNA断片を含む)
の片方又は両方によって特徴づけられるトランスジェニック、グルホシネート耐性イネ植物、細胞、組織又は種子に関する。
【0011】
本発明は、その植物、細胞、組織又は種子が、上のi)、ii)、iii)、iV)及びvi)に記載された制限断片又は制限断片対(ここで、選択は、上のi)、ii)、iii)、iV)及びvi)のいかなる組合わせも含むことができる)を含む上記の群から選択される、少なくとも1つ、例えば少なくとも2つ、有利には少なくとも3つ、好ましくは少なくとも4つ、例えば少なくとも5つ、さらに好ましくは6つを生じることができることを特徴とする、トランスジェニック、グルホシネート耐性イネ植物、細胞、組織又は種子に関する。
【0012】
本発明は、好ましくは上記a)及びb)に記載された特長の両方によって特徴づけられる、トランスジェニック、グルホシネート耐性イネ植物、細胞、組織又は種子に関する。
【0013】
本発明は、ATCCに、ATCC203352の番号で寄託された種子、この種子から育成された植物、及びこの種子から育成された植物の細胞又は組織にも関する。
【0014】
本発明は、さらに、ここで議論した35S−bar遺伝子フランキング領域(ここで議論した)のその間を含む植物、種子、細胞もしくは組織(例えば、イネ植物、種子、細胞又は組織)、又は、ここに開示した、フランキング領域−35S−bar、遺伝子−フランキング領域構築物、又は挿入領域のような配列の、少なくとも65%、例えば75%、例えば80%、例えば85%、例えば少なくとも90%、例えば少なくとも95%若しくは97%でもよく、又は100%同じヌクレオチド配列を含む植物、種子、細胞又は組織(例えばイネ植物、種子、細胞又は組織)にも関する。
【0015】
本発明は、さらに上記の本発明のイネ植物の栽培方法、さらに特定すると、グルホシネートを活性成分とする除草剤を栽培されるイネ植物に施すことを含む方法に関する。
【0016】
本発明のイネ植物は、グルホシネートを活性成分とする除草剤を施す上記の方法に従って栽培された場合、同じ栽培種の形質転換されていないイネに比較して改善された成長を示すことが確かめられている。したがって、本発明は、イネ植物の生産力又は成長を改善するための方法であると解することができる。
【0017】
本発明は、本発明のイネ植物との交雑を含む、イネの育種方法も提供する。
【0018】
本発明はさらに、配列番号9を特徴とする、イネ細胞の染色体DNAの一部への、組み換えDNA分子の挿入、及び場合により、該形質転換イネ細胞からのイネ植物の再生を含む、イネ植物のトランスジェニック細胞又はそれから得られる植物体の製造方法を提供する。
【0019】
本発明はさらに、トランスジェニック植物又はその細胞若しくは組織を同定する方法であって、該方法が、トランスジェニック植物、細胞又は組織のゲノムDNAが以下の特徴:
a)植物、細胞、組織又は種子のゲノムDNAが、
i)約1159〜約1700bpの長さ、好ましくは1327bpの長さの1つのEcoRI断片;
ii)一方が約805〜1093bpの長さ、好ましくは約805bpの長さ、そして他方が約1700bp〜2140bpの長さ、好ましくは約2.0kbpの長さである一対のBamHI断片;
iii)一方が約2838〜4507bpの長さ、好ましくは約3.8kbpの長さ、そして他方が約5077bpより長い、好ましくは約12kbpの長さである一対のEcoRV断片;
iv)約5077〜11497bpの長さ、好ましくは約5.3kbpの長さである、1つのHindIII断片;
v)両方とも約2838〜約4507bpの長さの、好ましくは約3.1kbpの長さのもの及び約4.1kbpの長さのものである、一対のNcoI断片;
vi)約4749〜約11497bpの長さ、好ましくは約5.1kbpの長さである、1つのNsiI断片;
(ここで、各々の制限断片は標準的なストリンジェント条件下で、配列番号8のヌクレオチド配列を有するプラスミドのEcoRI消化によって得られる約1327bp断片とハイブリダイズすることができる)
の群から選択される制限断片又は制限断片対の少なくとも3つ、例えば少なくとも5つ、さらに好ましくは6つを生じることができ、及び/又は、
b)該植物、細胞、組織又は種子のDNAが、それぞれ配列番号4及び配列番号5のヌクレオチド配列を有する2つのプライマーでのポリメラーゼ連鎖反応を用いて290〜350bp、好ましくは約313bpのDNA断片を増幅するのに用いることができる
の片方又は両方を確認することを含む方法にも関する。
【0020】
本発明はさらに、本発明の選ばれた事項を含むトランスジェニック植物を同定するためのキットであって、該キットが、PCR同定プロトコル中で用いる、外来DNAを認識するPCRプローブ及びGAT−OS2の3′又は5′フランキング配列、好ましくは、それぞれ配列番号4及び配列番号5のヌクレオチド配列を有するプローブを含むキットに関する。
【0021】
【課題を解決するための手段】
以下の、実施例によって説明されるが、本発明を記載された特定の実施態様に限定しようとするものではない、詳細な説明は、参照として組み込まれる、付随している図と関連して理解されなければならない。
【0022】
詳細な説明
ここで用いられる用語「遺伝子」は、一緒になってプロモーター領域を形成するプロモーター及び5′非翻訳領域(5′UTR)、コーディング領域(タンパク質をコードしていてもしていなくてもよい)、及びポリアデニル化部位を含む非翻訳3′領域(3′UTR)のような、作動可能に連結された数個のDNA断片を含むいかなるDNA配列をもいう。典型的に植物細胞中においては、5′UTR、コーディング領域及び3′UTRは、タンパク質をコードしている遺伝子である場合にはタンパク質に翻訳されるRNAに転写される。1つの遺伝子は例えばイントロンのような付加的なDNA断片を含んでもよい。ここで用いられているように、遺伝子座とは、ある遺伝子の植物のゲノムにおける位置である。
【0023】
遺伝子又はDNA配列に対していう場合の「キメラ」は、その遺伝子又は配列が、(プロモーター、5′UTR、コーディング領域、3′UTR、イントロンのように)少なくとも2つの機能的に関係のあるDNA断片であって、天然では互いに関連しておらず、例えば他の材料に由来するものを含んでいるという事実に言及するのに用いられる。植物種に関する遺伝子又はDNA配列についての「外来」は、その植物種に天然では発見されない遺伝子又はDNA配列を示すために用いられる。
【0024】
ここで用いられているように、用語「導入遺伝子」とは、植物のゲノムに組み込まれた組み換えDNA分子をいう。用語「組み換えDNA分子」は、組み換え又は他の手順で得ることができる、DNAであり得るような、単離された核酸分子を含むことができ、かつ例証するために用いられる。この組み換えDNA分子は、通常、形質転換された植物に1つ以上の特徴を与えることができる、少なくとも1つの「問題の遺伝子」(例えばキメラ遺伝子)の少なくとも1つのコピーを含む。「トランスジェニック植物」は、その全ての細胞のゲノムに導入遺伝子を含む植物をいう。
【0025】
組み換えDNA分子の植物ゲノムへの組み込みは、典型的には細胞又は組織の形質転換(又は他の遺伝的操作)から結果として生じる。組み込みの特定の部位は、機会又は予め決定された場所(もし標的を定めた組み込み法が用いられた場合は)による。
【0026】
導入遺伝子は、場所及び植物ゲノム中における組み換えDNA分子の組み込み部位の相対的位置によって特徴づけられる。導入遺伝子が挿入されている植物ゲノム中での部位はまた、「挿入部位」又は「標的部位」として言及されている。導入遺伝子の植物ゲノム中への挿入は、その植物DNAの欠失と関連しており「標的部位欠失」として言及されている。ここで用いられているように、「フランキング領域」又は「フランキング配列」は、導入遺伝子のすぐ上流でかつ隣接しているか、又はすぐ下流でかつ隣接している少なくとも20bp、好ましくは50bp、及び5000bpまでの植物ゲノムの配列をいう。導入遺伝子のランダム組み込みに先行する形質転換手順は、特徴づけられ、それぞれの形質転換体に独特の、異なるフランキング領域を有する形質転換体を生ずる。伝統的な交配によって導入遺伝子が植物に導入された場合、植物ゲノムにおけるその挿入部位又はそのフランキング領域は一般的に変化しないであろう。ここで用いられているように、「挿入領域」は、その挿入部位(及び起こり得る標的部位の欠失)、及びその(まだ形質転換されていない)植物ゲノムにおける導入遺伝子の上流及び下流フランキング領域、によって囲まれた領域に相当する領域をいう。
【0027】
導入遺伝子の表現は、該導入遺伝子に含まれる問題の遺伝子(単数又は複数)が、該植物に1つ以上の形態的形質(その形態的形質は、形質転換で用いられる組み換えDNA分子−形質転換するDNA(問題の遺伝子(単数又は複数)の一部又は全部の構造及び機能を基礎として)の導入によって与えられようとされていたものである)(例えば除草剤耐性)を与えるように発現されることを示すために用いられる。
【0028】
イベントは、遺伝的操作の結果、問題の遺伝子の少なくとも1コピーを含む導入遺伝子を有する(人工的な)遺伝子座として定義される。1つのイベントの典型的な対立遺伝子の状態は、導入遺伝子の存在又は不存在である。イベントは、導入遺伝子の発現によって形態的に特徴づけられる。分子レベルでは、イベントは制限地図(例えばサザンブロッティングによって決定されるようなもの)及び/又は導入遺伝子の上流及び/若しくは下流及び/又は該導入遺伝子の分子の相対的位置によって特徴づけられる。通常、問題の遺伝子の少なくとも1つを含む形質転換する遺伝子による植物の形質転換は、其々が独特な、多数のイベントへと導かれる。
【0027】
ここで用いられる、エリートイベントは、同じ形質転換DNAでの形質転換により得られるイベントの群から、該導入遺伝子の発現及び安定性、及びそれを含む植物の最も望ましい農業的特長に基づいて選択されるイベントである。エリートイベントの選択のための規準は、以下:
a)導入遺伝子の存在が、農業的性能又は商業的価値のような、該植物の他の望ましい特徴を損なわないこと;
b)該イベントが、安定に遺伝し、同一性管理のための適当な診断ツールが開発できる、よく定義された分子構成によって特徴づけられること;
c)ヘテロ接合体(又は半接合体)及びホモ接合体のイベント状態のどちらにおいても、そのイベントを有する植物が正常な農業的使用において暴露されるような環境状態の範囲における商業的に許容しうるレベルで、導入遺伝子中の問題の遺伝子(単数又は複数)が、正しい、適切なそして安定な空間的及び時間的な形態発現を示すこと;
の1つ以上、好ましくは2つ以上、有利には全てである。
【0030】
導入遺伝子は、好ましい商業的な遺伝的背景への遺伝子移入を可能とする植物ゲノム中の位置と結び付いていることが望ましい。エリートイベントとしてのイベントの状態は、異なった、相当する遺伝的背景中への、該エリートイベントの遺伝子移入及び例えば上記a)、b)及びc)の規準の1つ、2つ又は全てに従っていることの観察によって確認される。
【0031】
したがって、「エリートイベント」は、上記の規準に一致する導入遺伝子を含む遺伝子座をいう。植物体、植物材料又は種子のような後代は、そのゲノム中に該エリートイベントを含む。
【0032】
エリートイベント又はエリートイベントを有する植物若しくは植物材料を同定するために開発された診断ツールは、該導入遺伝子を含むゲノム領域の特定の制限地図及び/又は該導入遺伝子のフランキング領域(単数又は複数)の配列等の、当該エリートイベントの特定の遺伝的特徴に基づいている。ここで用いられる「制限地図」は、特定の制限酵素又は制限酵素のセットで植物ゲノムDNAを切断し、、該導入遺伝子と配列類似性を共有するプローブとの(特定の条件下における)ハイブリダイゼーションをした後に得られるサザンブロットパターンのセットをいう。導入遺伝子の組み込み前に植物ゲノム中に存在する(内因的な)制限部位により、導入遺伝子の挿入は、そのゲノムの特定の制限地図を変えるであろう。このように、特定の形質転換体又はそれに由来する後代は、1つ以上の特定の制限パターンによって同定され得る。1つのイベントの制限地図を決定する条件は、制限地図同定プロトコル中に示されている。
【0033】
代替的には、エリートイベントを含む植物又は植物材料は、PCR同定プロトコルによる試験で同定することができる。これは、該エリートイベントを特異的に認識するプライマーを用いるPCRである。要するに、プライマーの1セットは、
a)エリートイベントの3′又は5′フランキング配列、及び
b)外来のDNA中の配列
を認識し、それらのプライマーは、好ましくは100〜350ヌクレオチドの断片(組み込み断片)を増幅するように開発される。好ましくは、該植物種の管理維持遺伝子中の断片を増幅するプライマーの1セットとしての対照が含まれる(断片は好ましくは増幅された組み込み断片よりも大きいものである)。該特異的プライマーの配列を含む、PCRに最も好ましい条件は、PCR同定プロトコル中に特定されている。
【0034】
例えば、ヌクレオチド配列に関する、用語「類似性」は、2つの配列間のホモロジーの量的測定を示すことを目的とする。配列類似性百分率は、
(Nref−Ndif)*100/Ndif
〔式中、Ndifは、並べたときに2つの配列中の非同一塩基の合計数であり、Nrefは、一方の配列中の塩基の数である〕
のように計算することができる。したがって、DNA配列AGTCAGTCは、配列AATCAATCと、75%の類似性を有することとなる(Nref=8、Ndif=2)。本発明は、核酸分子及び、ここに開示されている配列と、少なくとも65%、例えば少なくとも70%、例えば少なくとも75%、又は少なくとも80%又は有利には少なくとも85%、例えば少なくとも90%、例えば少なくとも95%又はさらに97%若しくは100%の類似性を有する配列、並びにそのような核酸分子を含有する植物、細胞、組織、種子、及びその後代(例えば、イネ植物、細胞、組織、種子及びその後代)を包含する。代替的に、又は加えて、配列についての「類似性」は、2つの配列のうちの短いほうのヌクレオチド数によって分割される同一のヌクレオチドの位置の数に関係する(ここで、2つの配列の並び(アラインメント)は、読み枠サイズ20ヌクレオチド、1単語長さ4ヌクレオチド、ギャップペナルティ4を用いたWilburとLipmannのアルゴリズム(Wilbur and Lipman, 1983 PNAS USA 80:726)にしたがって決定することができ、コンピュータ支援解析及び並びを含めた配列データの解釈は、Intelligenetics(登録商標)Suite(Intelligenetics 社、CA)のプログラムを用いて簡便に実施することができる)。「本質的に類似の」配列は、少なくとも約75%、有利には少なくとも約80%、例えば少なくとも約85%、好ましくは少なくとも約90%、特に約95%、例えば少なくとも97%、及び特に約100%の配列の類似性又は同一性を有する。RNA配列が、DNA配列と本質的に類似する、又は類似するという場合には、DNA配列中のチミジン(T)は、RNA配列中のウラシル(U)と等しいと考慮される。
【0035】
本発明は、イネにおけるエリートイベント、GAT−OS2、このイベントに由来する植物、植物材料又は植物細胞に関する。エリートイベントGAT−OS2を含有する植物は、実施例1に記載するように、プラスミドpB/35Sbarの1501bpのPvuI−HindIII断片(配列番号8)での形質転換を通じて得られる。このエリートイベントをつくり出すために用いられる組み換えDNA分子は、酵素ホスフィノスリシンアセチルトランスフェラーゼをコードするDNA及びカリフラワーモザイクウイルスの35Sプロモーターを含む(ここで、ホスフィノスリシンアセチルトランスフェラーゼをコードする配列は、(「35S−bar遺伝子」と称する)カリフラワーモザイクウイルスの35Sプロモーターの調節下にある)。35Sプロモーターは、イネにおいて「構成的」発現パターンを有し(Battraw et al., 1990, Plant Mol Biol 15:527-538)、それは、ほとんどの植物において、植物ライフサイクルのほとんどの間、著しく発現することを意味する。イネ植物における35S−barの発現は、除草剤化合物ホスフィノスリシン又はバイアラホス又はグルホシネート又はより一般的にはグルタミンシンテターゼ阻害剤又はその塩若しくは光学異性体に対する耐性を与える。
【0036】
GAT−OS2を含む植物又は植物材料は、ここで実施例3b)(1)に記載された制限地図同定プロトコルにしたがって同定することができる。簡単には、イネゲノムDNAを、以下の制限酵素:EcoRI、BamHI、EcoRV、HindIII、NcoI、NsiIの選択(好ましくは少なくとも1つ、例えば少なくとも2つ、有利には少なくとも3つ、又は少なくとも4つ、又は少なくとも5つ、例えば3つから6つ)で消化し、ナイロンメンブレン上にトランスファーし、プラスミドpB5/35Sbarの約1327bpのEcoRI断片とハイブリダイズする。次に、用いたそれぞれの制限酵素について以下の断片:
・EcoRI:約1159〜1700bpの、好ましくは約1327bpの1つの断片
・BamHI:約1700bp〜2140bpの、好ましくは約2.0kbpの1つの断片及び約805〜1093bpの、好ましくは約805bpの1つの断片
・EcoRV:約5077bpより大きい、好ましくは約12kbpの1つの断片及び約2838〜4507bpの、好ましくは約3.8kbpの1つの断片
・HindIII:約5077〜11497bpの、好ましくは約5.3kbpの1つの断片
・NcoI:約2838〜約4507bpの、好ましくは1つが約4.1kbpであり1つが約3.1kbpである2つの断片
・NsiI:約4749〜約11497bpの、好ましくは約5.1kbpの1つの断片
が同定されるかどうかを測定する。DNA断片の長さは公知の長さのDNA断片のセット、特にファージλDNAのPstI断片との比較で測定される。
もし、これらの制限酵素の、少なくとも1つ、例えば少なくとも2つ、有利には少なくとも3つ、好ましくは少なくとも4つ、特に少なくとも5つ、さらに好ましくは全てで消化した後の植物材料が、上に記載したものと同じ長さのDNA断片を生ずるならば、該イネ植物は、エリートイベントGAT−OS2を有すると決定される。
【0037】
GAT−OS2を含む植物又は植物材料は、ここで実施例3b)(2)に記載されたPCR同定プロトコルにしたがって同定することもできる。簡単には、GAT−OS2のフランキング配列を特異的に認識するプライマー、特に配列番号5の配列のプライマー、及び導入遺伝子中の配列を認識するプライマー、特に配列番号4の配列のプライマーを用いて、イネゲノムDNAをPCRによって増幅する。内因性のイネプライマーを対照として用いる。もし、植物材料が、約290〜約350bp、好ましくは約313bpの断片を生ずれば、該イネ植物はエリートイベントGAT−OS2を有すると決定される。
【0038】
GAT−OS2を有する植物は、それらのグルホシネート耐性によっても特徴づけられ、それは本発明の文脈において、植物が、除草剤Liberty(登録商標)に対して耐性であることを含んでいる。Liberty(登録商標)に対する耐性は、3〜4葉の段階で200g活性成分/ヘクタール(g.a.i/ha)、好ましくは400g.a.i/ha、そして可能ならば1600g.a.i/haまでの噴霧が、該植物を殺さないという規準で決定される。GAT−OS2を有する植物は、さらにその細胞中の、PATアッセイ(De Block et al, 1987, supra)で測定されるホスフィノスリシンアセチルトランスフェラーゼの存在によって特徴づけられる。
【0039】
GAT−OS2を有する植物は、例えばATCCにATCC203352の番号で寄託されている種子から得ることができる。そのような植物は、従来の育種スキームにおいて、同じ特徴についてさらに形質転換された植物を作るため、又は同じ植物種の他の栽培種に本発明のエリートイベントを導入するために、さらに増殖及び又は使用することができる。これらの植物から得られた種子は、それらのゲノムに安定に組み込まれるエリートイベントを含んでいる。
【0040】
本発明のイネ植物は、従来の方法で栽培することができる。導入遺伝子の存在は、それらがグルホシネートに対して耐性であることを確保する。したがって、そのようなイネ植物が育成される圃場中の雑草は、グルホシネートを活性成分として含有する除草剤(Liberty(登録商標)のような)の適用によって調節することができる。
【0041】
GAT−OS2を有する植物は、以下の市場で入手可能な米国におけるイネ品種:プリシラ、サイプレス、ベンガル、コカドリー、ジェファーソン、マジソン、M202、M201、M103、ドゥルー、カイボネット、レイグル、と同様の農業的特長によって特徴づけられる。関連する農業的特長は、植物丈、穂の強度/硬直性、耐倒伏性、葉形態(長さ、幅、刀状葉片の角度)、成熟までの期間、小花の構成、多穂、種子外皮の完全閉覆、穀粒サイズ及び形状、及び穀粒生産及び収量である。
【0042】
イネ植物ゲノムのこの領域、さらに詳しくはイネ植物ゲノムにおけるこの部位における導入遺伝子の存在が、このイベントに対して特定の問題とする表現型の又は分子レベルでの特徴を与えることが観察されている。さらに詳細には、ゲノム中のこの特定部位の導入遺伝子の存在が、該植物の望ましい農業的性質のいかなる側面も有意に損なうことのない、導入遺伝子の安定した表現型発現を生じさせるのである。このように、配列番号9に相当する挿入領域、さらに詳しくはその中のGAT−S2の挿入部位は、除草剤抵抗性遺伝子、さらに特定すると35Sプロモーターの調節下のホスフィノスリシンアセチルトランスフェラーゼ、特にプラスミドpB5/35SbarのPvuI−HindIII断片のような、問題の遺伝子(単数又は複数)の導入に特に適切であることが示されている。
【0043】
組み換えDNA分子はこの挿入領域に標的挿入法を用いて特異的に挿入され得る。そのような方法は、当業者によく知られており、例えば、限定されるものではないが、Saccharomyces cervisiae 由来のFLPリコンビナーゼ(米国特許第5527695号)、Escherichia Coli ファージ P1由来のCREリコンビナーゼ(公開されたPCT出願明細書WO9109957)、Saccharomyces rouxiiのpSRI由来のリコンビナーゼ(Araki et al., 1985, J Mol Biol 182:191-203)、又は米国特許第4673640号に記載されているようなλファージ組み換え系を用いた相同性組み換えを含む。
【0044】
DNAは、エレクトロポレーション法、DNAで被覆した金粒子又は生分解性物質の火薬打ち込み法、又はアグロバクテリウム若しくはポリエチレングリコール媒介法等の方法を含む技術によって、イネゲノム等の植物ゲノム中に挿入することができる。
【0045】
ここで用いる「含む」は、言及された特長、整数、関連する工程又は成分の存在を定義するが、1つ以上の特徴、整数、工程若しくは成分、又はそれらの群の存在又は添加を排除しないというように解釈される。したがって、例えばヌクレオチド又はアミノ酸の配列を含む核酸又はタンパク質は、実際に指摘したよりも多くのヌクレオチド又はアミノ酸を含んでもよく、すなわち、より大きい核酸又はタンパク質に埋め込まれていてもよい。機能的に又は構造的に定義されるDNA配列を含むキメラ遺伝子は、付加的なDNA配列等を含んでいてよい。
【0046】
以下の実施例は、エリートイベントGAT−OS2を有するイネ植物の開発及び特徴を記載している。
【0047】
特に述べる場合を除き、全ての組み換えDNA技術は、Sambrook et al.(1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbour Laboratory Press, NY 及びAsusubel et al.(1994) Current Protocols in Molecular Biology, Current Protocols, USA の第1巻及び第2巻に記載された標準プロトコルにしたがって実施した。植物分子実験のための標準材料及び方法は、BIOS Scientific Publications Ltd(UK) 及び Blackwell Scientific Publications, UK によって出版された、R.D.D. Croy による、Plant Molecular Biology Labfax (1993) に記載されている。
【0048】
発明の詳細な説明及び実施例において、以下の配列の参照事項を述べる:
配列番号1: GAT−OS2の5′フランキング領域を含む配列である
配列番号2: GAT−OS2の3′フランキング領域を含む配列である
配列番号3: GAT−OS2の挿入部位を含む配列である
配列番号4: OSA03:PCR同定プロトコルのプライマーである
配列番号5: OSA04:PCR同定プロトコルのGAT−OS2特異的プライマーである
配列番号6: OSA01イネ内因性プライマーである
配列番号7: OSA02イネ内因性プライマーである
配列番号8: プラスミドpB5/35Sbarである
配列番号9: 挿入領域である
【0049】
【実施例】
実施例1 除草剤抵抗性をコードする遺伝子でのイネの形質転換
a)35Sプロモーターの調節下のbar遺伝子を含むキメラDNA(pB5/35Sbar)の構築
【0050】
プラスミドpB5/35Sbarを、以下の標準プロトコルに従って構築した。プラスミドpB5/35Sbarの配列は、配列番号8に与えられている。PvuI−HindIII消化によって、以下の遺伝的要素を含む1501bpの断片が生じた。
【0051】
【表1】
【0052】
該1501bpのPvuI−HindIII断片は、電気泳動後のこの断片の抽出によって精製した。
【0053】
b)イネの形質転換
ベンガル品種は、ルイジアナ農業研究所のイネ研究所が開発した中粒イネである。該品種は1992年に公的に開放された。来歴にはMARS及びM201(linscombe S.D. et al. 1993, Crop Science: 33: 645-646)が含まれている。
【0054】
pB5/35Sbarの1501bpのPvuI−HindIII断片でのイネ植物の形質転換は、直接DNA移入を用いて実施した。選抜は、生育を加速するためにPPT不存在において行った幼植物の再生段階を除く、全ての段階でホスフィノスリシン(PPT)について行った。その結果、最初の形質転換体のセット(世代T0の植物)を生じた。
【0055】
実施例2 イベントの開発
a)トランスジェニックホモ接合体系統の開発
種々のT0半接合体幼植物を組織培養から転化し、温室土壌に移し、開花及び結実を可能にした。幼植物を、ねん性、生産力、及びアンモニアグルホシネートに対する耐性について評価した。自家受粉によるT1種子をこれらの植物体から集め、圃場で生育した。T1植物にLiberty(登録商標)除草剤を1ヘクタールあたり活性成分800g(g.a.i./ha;農家への推奨用量は400g.a.i./ha)で噴霧した。除草剤の適用を生き延びたイベント及び除草剤耐性について3:1に分離したイベントを更なる評価のために選抜した。耐性植物は、損傷(葉先端枯れ)について評価した。
【0056】
T2種子は選抜されたイベントの全ての耐性植物の穂から収穫した。それらを列に蒔き、除草剤耐性の分離を評価するため、T2植物にLiberty(登録商標)除草剤(1600g.a.i/ha)を噴霧した。100%の生存を有した列、すなわち導入遺伝子についてホモ接合体である系統に相当する列を選抜した。それらを除草剤損傷および表現形質について再び評価した。その穂系列の(望ましい特徴に関しての)表現型の均一性に基づいて更なるイベントの選択を行った。
【0057】
b)導入遺伝子のイベントの特徴づけ−GAT−OS2の選択
導入遺伝子のイベントは、サザンブロットパターン、一般的形質及び農業的性質、そして収穫量についてさらに特徴づけられた。それが適切である場合には、それらの特徴は、圃場状態下で決定された。
【0058】
サザンブロット解析
導入遺伝子の存在は、イネゲノムDNAのEcoRVでの酵素消化産物及びpB5/35Sbarの1327bpのEcoRI断片とのハイブリダイゼーションを用いた標準的なサザンブロット解析によって確認した。関係するバンド強度は、導入遺伝子座について植物がホモ接合体であるか半接合体であるかについて示唆を提供した。2つのイベントは、単純な挿入であることがわかった。導入遺伝子の分離パターンは、単純な遺伝子座のメンデル遺伝によって説明できることが確認された。
【0059】
T1及びT2植物を、植物丈、穂の強度/硬直性、倒伏性、葉形態(刀状葉片について、細すぎる又は異常な角度)、晩生、小花の構成、穂の不稔又は不完全稔性、種子外皮の不完全閉覆(病害感受性を増加させることにつながる)、穀粒サイズ及び形状、及び穀粒生産及び収量を含む、多くの表現形質について評価した。系統は、形質転換されていないベンガル品種及び以下のイネ品種:プリシラ、サイプレス、ベンガル、コカドリー、ジェファーソン、マジソン、M202、M201、M103、ドゥルー、カイボネット、レイグル、と比較して、提示された農業的特長において同様である(又は改善されている)ことが評価された。いくつかのケースにおいては、1つ以上の上述の形質について、1つの穂系列中の植物がソマクローナル変異に関して分離した。これが農業的に興味深い表現形質の導入という結果にならない限り、これらの植物体は、排除した。
【0060】
収量評価のための圃場形質
T2種子を、選抜したホモ接合体集団からバルクで収穫し、標準品種ベンガルと比較した。種子を、穂系列としてそれぞれのイベントを表す隔離された区画に植えた。トランスジェニックの区画は、1600g.a.i./haのLiberty(登録商標)除草剤を噴霧するか、噴霧しなかった(「非噴霧」区画)。非トランスジェニック品種標準の区画は、Liberty(登録商標)を噴霧しなかった。その土地の雑草を調節するための標準除草剤処理を、全ての区画に適用した。
【0061】
トランスジェニックイベントを、ルイジアナ及びプエルトリコ(冬季種苗場)を含む異なった場所で収量特性について試験した。
【0062】
農業的パラメーター及び植物形態の順位統計の統計的解析、及び他の非パラメーターデータを、親品種ベンガル及び以下のイネ品種:プリシラ、サイプレス、ベンガル、コカドリー、ジェファーソン、マジソン、M202、M201、M103、ドゥルー、カイボネット、レイグル、と競争するための最適な商業的候補を同定するためにそろえた。GAT−OS2が、育種系統の組を作るために最も有用であることを示すイベントであった。
【0063】
実施例3 イベントGAT−OS2の特徴づけ
a)該遺伝子座の詳細な分子的及び遺伝学的解析
GAT−OS2イベントが、導入遺伝子の発現並びに農業的性質全般が最良であるイベントであると同定されると、導入遺伝子の遺伝子座が分子レベルで詳細に解析された。これには、サザンブロット解析及び導入遺伝子のフランキング領域のシークエンスも含まれた。
【0064】
(1)複数の制限酵素を用いたサザンブロット解析
葉組織をトランスジェニック植物及び対照植物から収穫した。Dellaporta et al. (1983, Plant Molecular Biology Reporter, 1, vol.3, p.19-21)にしたがって、葉組織から全ゲノムDNAを単離した。吸光度計で260nmの波長の吸光度を測定することにより、それぞれの調製物のDNA濃度を測定した。
【0065】
ゲノムDNA10ngを、製造者の推奨条件を適用して最終反応量40μlで制限酵素で消化した。消化の時間及び/又は制限酵素の量は、非特異的消化を伴わないゲノムDNAの完全な消化を確実なものとするように調節した。消化の後、消化したDNAサンプルに4μlの泳動用色素(loading dye)を添加し、1%アガロースゲル上に装填した。
【0066】
以下の対照DNAもゲル上に装填した:
・非トランスジェニック植物から調製したゲノムDNAの陰性対照
この陰性対照は、バックグラウンドハイブリダイゼーションがないことを確認するために用いられる。
・DNA陽性対照:導入遺伝子をヘテロ接合のシングルコピーで組み込んだOryza sativaゲノムであり、ゲノムDNA10μgは、pB5/35SbarDNAの1501bpのPvuI−HindIII断片の±19ピコグラムと同数の分子当量を有する(Oriza sativaの2倍体ゲノムサイズ:0.8×109bp)。ゲノム当り1コピーのプラスミドを示す量を、消化された非トランスジェニックOryza sativaDNA1μgに添加した。この再構成サンプルは、ハイブリダイゼーションがプローブと標的配列とのハイブリダイゼーションを可能にする条件下で実施されたことを示すために用いられた。
【0067】
PstIで消化したファージλDNA(CIind1ts857Sam7株、Life Technologies)をサイズスタンダードとして含めた。
【0068】
電気泳動の後、DNAサンプル(消化したイネゲノムDNA、対照、及びサイズスタンダード)を、12〜16時間のキャピラリーブロッティングでナイロンメンブレン上にトランスファーした。プローブの調製に用いたDNAテンプレートは、プラスミドpB5/35SbarのEcoRIでの制限酵素消化物であった。これは、形質転換DNA(1501bpのPvuI−HindIII断片)に関係する部分を包含する1327bpのDNA断片を放出した。精製の後、DNA断片を標準的な手順にしたがってラベルし、該メンブレンに対してハイブリダイズのために用いた。
【0069】
ハイブリダイゼーションは、標準的なストリンジェント条件下で行った。ラベルしたプローブを95℃〜100℃のウォーターバス中で5〜10分加熱して、氷上で5〜10分冷却することにより変性し、ハイブリダイゼーション溶液(6×SSC(20×SSCは、NaCl3.0M、クエン酸Na0.3M、pH7.0である)、5×デンハルト溶液(100×デンハルト溶液=フィコール2%、ポリビニルピロリドン2%、ウシ血清アルブミン2%である)、SDS0.5%及び変性したキャリアDNA(1本鎖魚精子DNA、平均長さ120〜3000ヌクレオチド)20μg/ml)に添加した。ハイブリダイゼーションは、65℃で一晩行った。ブロットを洗浄溶液(2×SSC、0.1%SDS)で、65℃、20〜40分で3回行った。
【0070】
オートラジオグラフを、電子的にスキャンした。
異なった制限酵素でのGAT−OS2ゲノムDNAの消化後に得られた制限パターンを図1に示し、及びまとめを表1に示した。
【0071】
【表2】
【0072】
(2)フランキング配列の同定
GAT−OS2イベント中の挿入された導入遺伝子のフランキング領域の配列を、Liu et al.(1995, The Plant Journal 8(3):457-463)により記載されたように、温度非対称組合わせ(TAIL−)PCR法を用いて決定した。この方法は、連続する反応中で、3つの入れ子状態の特異的プライマーを、より短い任意の緩認識(arbitrary degenerate: AD)プライマーと一緒に、特異的及び非特意的産物の相対的増幅効率を温度で調節できるように用いる。特異的プライマーは、導入遺伝子の境界にアニーリングするように、そしてそれらのアニーリング条件に基づいて選択された。未精製第二及び第三PCR産物の少量(5μl)を、1%アガロースゲル上で解析した。第三PCR産物を、予備増幅に用い、精製してDyeDeoxy Terminator cycleキットを用いた自動シークエンサーでシークエンスした。
【0073】
1.HindIII部位のTAIL−PCR
使用したプライマー:
【0074】
【表3】
【0075】
MDB556−MDB411を用いて増幅した断片は、およそ400bpであり、その113bpをシークエンスした(5′フランク:配列番号1)。bp1〜bp92は、植物DNAを含んでおり、一方bp93〜bp113は、pB5/35SbarのDNAに相当する。
【0076】
PvuI部位のTAIL−PCR
使用したプライマー:
【0077】
【表4】
【0078】
MDB285−MDB410を用いて増幅した断片は、およそ1200bpであった(3′フランク:配列番号2)。bp1〜bp604は、pB5/35SbarのDNAに相当し、bp605〜bp1279は植物DNAを含んでいる。
【0079】
(3)標的部位欠失の同定
野生型Oryza sativa品種ベンガルにおける導入遺伝子のフランキング領域中の配列に相当するプライマーをテンプレートとして用い、導入遺伝子の挿入部位を同定した。
以下のプライマーを用いた:
【0080】
【表5】
【0081】
これは、bp83〜55が標的部位欠失に相当する、168bpの断片(配列番号3)を生じた。
【0082】
したがって、シークエンスしたイネ挿入領域(配列番号9)は:
1〜92: 5′フランキング領域 配列番号1のbp1〜92
93〜110: 標的部位欠失 配列番号3のbp38〜55
111〜785: 3′フランキング領域 配列番号2のbp605〜1279
を含む。
【0083】
(4)該遺伝子座の遺伝的解析
挿入断片の遺伝的安定性を、数代に渡る後代植物における分子及び表現型解析で確認した。
【0084】
T0、T1及びT2世代のGAT−OS2イネ植物のグルホシネート耐性植物のサザンブロット解析を比較し、同一であることがわかった。これは、GAT−OS2を含む植物における導入遺伝子の分子構成が安定しているということを証明している。
【0085】
GAT−OS2イベントは、挿入断片が安定であることを示している少なくとも3つの連続する後代において、単一遺伝子座としての導入遺伝子についてメンデル分離を示している。
【0086】
上記の結果に基づいて、GAT−OS2は、エリートイベントであると同定された。
【0087】
b)同一性調節のための診断ツールの開発
該エリートイベントGAT−OS2を含むいかなるイネ植物材料をも同定するために以下のプロトコルが開発された。
【0088】
(1)GAT−OS2エリートイベント制限地図同定プロトコル
該エリートイベントGAT−OS2を含むイネ植物は、実施例3a)(1)に記載されたのと本質的に同じサザンブロッティングによって同定することができる。すなわち、イネゲノムDNAを、以下:EcoRI、BamHI、EcoRV、HindIII、NcoI、NsiI、の制限酵素の少なくとも3つ、好ましくは少なくとも4つ、特に少なくとも5つ、さらに好ましくは全てで消化し、2)ナイロンメンブレン上にトランスファーし、そして3)プラスミドpB5/35Sbarの1327bpのEcoRI断片とハイブリダイズさせた。用いられたそれぞれの制限酵素について、もしDNA断片が表1に列記したそれらと同じ長さであると同定されれば、そのイネ植物は、該エリートイベントGAT−OS2を有すると決定される。
【0089】
(2)エリートイベントGAT−OS2のポリメラーゼ連鎖反応同定プロトコル未知のもののスクリーニングを試みる前に、全ての適切な対照でテストランをしなければならない。示したプロトコルは、研究所によって異なるであろう成分(テンプレートDNAの調製、TaqDNAポリメラーゼ、プライマーの品質、dNTP、サーマルサイクラー等)について最適化が必要とされるであろう。
【0090】
該プロトコルにおいて、内因性の配列の増幅が重要な役割を果たす。既知のゲノムDNAテンプレート中の内因の及び導入遺伝子の配列の両方を等モルの量で増幅するPCR及び温度サイクル条件を得なければならない。アガロースゲル電気泳動で判断して、目的の内因性断片が増幅されない場合や、同じエチジウムブロミド染色強度で目的配列が増幅されない場合には、PCR条件の最適化が必要とされよう。
【0091】
テンプレートDNA
テンプレートDNAは、Edwards et al.(Nucleic Acid Research, 19, p1349, 1991)に従って調製した。他の方法で調製したDNAを用いる場合は、異なる量のテンプレートを用いたテストランをすべきである。通常、最高の結果で50ngのDNAテンプレートが得られる。
【0092】
用いられる陽性及び陰性対照
以下の陽性及び陰性対照が、PCRの実施に含められるべきである:
*マスターミックス対照(DNA陰性対照)。これは反応液にDNAを添加しないPCRである。期待される結果、すなわちPCR産物がないという結果が観察された場合、PCRカクテルが目的DNAで汚染されていないということを示している。
*DNA陽性対照(導入遺伝子を含むことがわかっているゲノムDNAサンプル)。この陽性対照の成功した増幅は、PCRが、目的配列を増幅することができる条件下で行われたことを証明する。
*野生型DNA対照。これは、用いられたテンプレートDNAが、非トランスジェニック植物から調製されたゲノムDNAであるPCRである。期待される結果、すなわち導入遺伝子のPCR産物の増幅がないが内因性PCR産物の増幅があること、が観察された場合、これはゲノムDNAサンプル中に、検出し得る導入遺伝子バックグラウンド増幅がないことを示す。
【0093】
プライマー
導入遺伝子及びGAT−OS2のフランキング配列を特異的に認識する、以下のプライマーを用いた:
【0094】
【化1】
【0095】
内因性配列を標的とするプライマーは、PCRカクテル中に常に含まれている。これらのプライマーは、未知のサンプル中及びDNA陽性対照での内部対照として働く。内因性プライマーペアでの陽性の結果は、ゲノムDNAの調製において、PCR産物が作られるために適切な品質のサンプルDNAが得られたことを証明する。用いられた内因性のプライマーは、以下のものである:
【0096】
【化2】
【0097】
増幅された断片
PCR反応における、期待される増幅断片は、
プライマーペアOSA01−OSA02について: 457bp(内因性対照)
プライマーペアOSA03−OSA04について: 313bp(エリートイベントGAT−OS2)
である。
【0098】
PCR条件
50μl反応のためのPCR混合液は:
テンプレートDNA 5μl
10×増幅バッファー(Taqポリメラーゼとともに供給される) 5μl
10mMdNTP 1μl
OSA01(10pmol/μl) 1μl
OSA02(10pmol/μl) 1μl
OSA03(10pmol/μl) 2μl
OSA04(10pmol/μl) 2μl
Taqポリメラーゼ(5ユニット/μl) 0.2μl
水で50μlにするである。
【0099】
【0100】
アガロースゲル解析
10〜20μlのPCRサンプルを、適当な分子量マーカー(例えば100bpラダー ファルマシア)を備えた1.5%アガロースゲル(トリス−ホウ酸バッファー)上に装填する。
【0101】
結果の有効性
1つのPCR反応及び1つのPCRカクテルに含まれるトランスジェニック植物DNAサンプルからのデータは、1)DNA陽性対照が期待されるPCR産物(導入及び内因性の断片)を示すこと、2)DNA陰性対照が、PCR増幅に対して陰性であること(断片なし)、及び3)野生型DNA対照が期待される結果(内因性断片の増幅)を示すこと、なしには受け入れられない。
【0102】
期待されるサイズの導入及び内因性PCR産物の可視量を示しているレーンは、テンプレートDNAを調製した相当する植物が、エリートイベントGAT−OS2を有していることを示す。導入PCR産物の可視量を示さず、内因性PCR産物の可視量を示しているレーンは、テンプレートDNAを調製した相当する植物が、該エリートイベントを有していないことを示す。内因性及び導入PCR産物の可視量を示していないレーンは、ゲノムDNAの質及び/又は量が、PCR産物を作ることができないものであることを示している。ゲノムDNAの調製をくり返し、適切な対照といっしょの新しいPCR反応を実施しなければならない。
【0103】
GAT−OS2を同定するための、弁別PCRプロトコルの使用
異なるトランスジェニックイベントを含む植物からのイネ葉材料(サンプル1〜10)を、上述のプロトコルに従って試験した。M202野生型及びベンガル野生型からのサンプルを、陰性対照として採用した。
【0104】
PCR解析の結果を、図2に示す。サンプル8及び9(実際には同じイベントに由来する植物からのDNAを含んでいる)が、エリートイベントGAT−OS2を含んでいると認識された。試験された他の全ての系統は、このエリートイベントを含んでいない。
【0105】
実施例4 好ましい栽培種へのGAT−OS2の導入交雑
エリートイベントGAT−OS2は、反復戻し交雑により以下の栽培種に導入された:
*カリフォルニア産温帯ジャポニカ種(M204、M202、M201、M103等であるが、これに限定されるわけではない)
*カリフォルニア産熱帯ジャポニカ種(L201、L202等であるが、これに限定されるわけではない)
*日本産及び韓国産温帯ジャポニカ種(コシヒカリ及びミリアン等であるが、これに限定されるわけではない)
*オーストラリア産温帯ジャポニカ種(ミリン及びジャラー等であるが、これに限定されるわけではない)
*地中海産温帯ジャポニカ種(バリラ、アルボリオ等であるが、これに限定されるわけではない)
*中国産インディカ種(ギチャオ、コンギ314、テキン等であるが、これに限定されるわけではない)
*南合衆国産熱帯ジャポニカ種(ドゥルー、サイプレス、ジェファーソン、プリシラ、コッケイドー等であるが、これに限定されるわけではない)
*南合衆国産熱帯ジャポニカ種、中粒種(ベンガル、マース、ブラッツォ、マーキュリー等であるが、これに限定されるわけではない)
*南アメリカ産熱帯ジャポニカ種、長粒種(エルパソ144、IRGA409等であるが、これに限定されるわけではない)
*極東産バスマティ及びジャスミン型(カシミール、クワオダックマリ)
*アフリカ産ジャバニカ型(青米種)
【0106】
これらの栽培種へのエリートイベントの導入は、これらの栽培種のいかなる望ましい表現型又は農業的特性にも重大に影響しておらず(連鎖障害なし)、一方グルホシネート耐性によって測定される導入遺伝子の発現は、商業的に受け入れられるレベルに合致していた。これは、エリートイベントGAT−OS2の状況をエリートイベントとして確認するものである。
【0107】
上記請求項で用いられている通り、明確に示されている場合を除いて、用語「植物」は、限定されないいかなる種子、葉、茎、花、根、単一細胞、配偶子、細胞培養物、組織培養物又はプロトプラストを含む、成熟のいかなる段階の植物組織、並びに、いかなるそのような植物から採取した/に由来する、いかなる細胞、組織又は器官、をも包含することを意図する。
【0108】
エリートイベントGAT−OS2を含む種子は、ATCCに番号:ATCC203352で、GAT−OS2として寄託されている。
【0109】
【図面の簡単な説明】
【図1】 GAT−OS2ゲノムDNA消化後に得られた制限地図である。
サザンブロットによって解析したゲルの装填順:レーン1、PstIで消化したλDNA、レーン2、EcoRIで消化したGAT−OS2DNA、レーン3BamHIで消化したGAT−OS2DNA、レーン4、EcoRVで消化したGAT−OS2DNA、レーン5、HindIIIで消化したGAT−OS2DNA、レーン6、NcoIで消化したGAT−OS2DNA、レーン7、NsiIで消化したGAT−OS2DNA、レーン8、未トンスジェニックイネDNA、レーン9、EcoRIで消化した対照プラスミドDNA。
【図2】 GAT−OS2 PCR同定プロトコルを用いた、異系統のPCR解析。
ゲルの装填順:レーン1、分子量マーカー(100bpラダー)、レーン2〜11、異なったトランスジェニックイベントを含むイネ植物由来のDNAサンプル、M202野生型由来のDNA、レーン13、ベンガル野生型由来のDNA、レーン14、陰性対照(水)、レーン15、分子量マーカー(100bpラダー)
Claims (9)
- ATCCに番号203352で寄託されている種子から育成したイネ植物の繁殖及び/又は該イネ植物との育種によって得ることができる、トランスジェニックの、グルホシネート耐性イネ植物、細胞、組織又は種子。
- ATCCに、ATCC203352の番号で寄託された種子から育成される植物。
- 請求項2記載の植物の細胞又は組織。
- ATCCに、ATCC203352の番号で寄託された種子。
- 請求項1記載の植物の育成を含む、イネ植物の栽培方法。
- 栽培されているイネ植物にグルホシネートを活性成分として含む除草剤を適用することを更に含む、請求項5記載の方法。
- 請求項1記載の植物の交配を含む、イネの育種方法。
- 請求項1記載のトランスジェニック植物、又はその細胞、組織又は種子を同定する方法であって、該方法が、該トランスジェニック植物、細胞、組織又は種子のゲノムDNAが、それぞれ配列番号4及び配列番号5のヌクレオチド配列を有する2つのプライマーでのポリメラーゼ連鎖反応を用いて、313bpのDNA断片を増幅することに用いることができるかどうかを確かめることを含む、方法。
- 請求項1記載のトランスジェニック植物、その細胞、組織又は種子を同定するためのキットであって、該キットが、それぞれ配列番号4及び配列番号5のヌクレオチド配列を有する少なくとも2つのPCRプライマーを含む、キット。
Applications Claiming Priority (3)
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