JP4555779B2 - 脂質代謝異常症の予測方法 - Google Patents

Description

本発明は、脂質代謝異常症の予測方法およびそのためのツールに関する。より詳細には、本発明は、フェニルアラニン代謝経路のバランス変化を指標とした、医薬候補化合物に起因する脂質代謝異常症の予測方法、並びに既存の薬物によるリピドーシス、あるいは遺伝性リピドーシスや脂肪酸代謝ホメオスタシス異常等の脂質代謝異常症およびその関連疾患の診断方法に関する。

薬物の投与により生体組織内にリン脂質、中性脂肪、スフィンゴミエリンなどの脂質が蓄積する脂質代謝異常症（リピドーシス）は、蓄積する脂質の種類に応じてそれぞれリン脂質症（ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｏｓｉｓ）、脂肪症（ｓｔｅａｔｏｓｉｓ）、スフィンゴミエリン蓄積症（ｓｐｈｉｎｇｏｌｉｐｉｄｏｓｉｓ）などと呼ばれ、薬物起因性脂質代謝異常症（薬物起因性リピドーシス：ｄｒｕｇ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｌｉｐｉｄｏｓｉｓ）と総称されることもある。リピドーシスを誘発する化合物の多くは、分子内に疎水性領域と陽性荷電した親水性領域とを併せ持つ構造、いわゆるｃａｔｉｏｎｉｃ ａｍｐｈｉｐｈｉｌｉｃ ｄｒｕｇ（ＣＡＤ）構造を有する。
近年、ゲノム解析の進展に伴いオーファン受容体の創薬ターゲットとしての価値が認識され、受容体に対する作動薬もしくは拮抗薬の開発が進められているが、そのような化合物は、ＣＡＤ構造を有する場合があり、リピドーシス惹起につながり、結果的に医薬品開発の妨げになるケースがある。また、既に認可されている医薬品の中にも副作用として脂質代謝異常症を惹き起こすことが報告されているものがある。
現在、医薬品候補化合物の毒性評価試験では、通常、ラット等の実験動物に化合物を投与してその病理組織学的変化を電顕的に調べるが、長期間投与でなければリピドーシスの病理組織学的変化が顕在化しないことが多く、さらに組織標本作製・検出にも時間、労力を要する等の欠点がある。特に、創薬の初期段階において、毒性の有無を迅速に予測し、構造の最適化を効率よく行うには、多検体をより簡便かつ短時間で評価し得るスクリーニング系の構築が必須である。
また、臨床試験における毒性試験や投薬患者における副作用の診断においては、生検標本の採取を必要とする上記の方法は、外科的侵襲が大きいためにその適用は非常に限定される。従って、薬物起因性リピドーシスを効率よく、且つ非侵襲的に予測または診断し得る評価系の開発が急務である。
非侵襲的なリピドーシスの予測・診断方法としては、例えば末梢血における細胞質が空胞化したリンパ球の出現を検出する方法が挙げられるが、血液塗沫標本の顕微鏡学的観察を必要とするなど効率面で問題があるだけでなく、リピドーシス誘発化合物の中には末梢血液中に空胞化リンパ球の出現を認めず、特定器官のみを標的とするものが相当程度存在することが知られており、予測・診断の信頼性の面でも不十分である。
末梢体液（尿、血漿など）あるいは臓器・細胞内の中間・最終代謝産物を網羅的に解析するメタボノミクス（ｍｅｔａｂｏｎｏｍｉｃｓ）は、トランスクリプトミクス・プロテオミクスの次の段階に来る生体反応の変化を捉える手法として、医学・生物学の種々の分野で利用されつつある。毒性学の分野でも、毒性発現メカニズムの解明や毒性予測の研究に本技術が活用され始めており、トキシコゲノミクス・トキシコプロテオミクスとともに、従来の毒性学的エンドポイント（症状、臨床検査、病理組織学的検査など）に代わる分子毒性学的エンドポイントへの示唆を与える技術として、薬物の安全性評価や臨床診断への応用が期待されている（例えば、Ｊ．Ｋ．Ｎｉｃｈｏｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．，１：１５３−１６１，２００２およびＪ．Ｃ．Ｌｉｎｄｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｔｏｘｉｃｏｌ．Ａｐｐｌ．Ｐｈａｍａｃｏｌ．，１８７：１３７−１４６，２００３参照）。
毒性現象には、１つの代謝物の独立した変化だけでなく、複数の代謝経路に位置する様々な中間および最終代謝産物の一体的な変動が伴うものと考えられる。そのため、核磁気共鳴（ＮＭＲ）法などの、ほぼすべての代謝物のシグナルを同時に検出できる技術を用いることで、毒性発現に関わる生体分子の挙動を包括的に捉えることが可能になると期待される。
薬物起因性リピドーシスとの関連では、リン脂質症（以下、「ＰＬｓｉｓ」と略記する場合がある）を誘発することが知られている薬物を投与したラットの尿をプロトンＮＭＲ（^１Ｈ ＮＭＲ）を用いて解析した結果、種々の代謝物に変動が認められ、特にフェナセツル酸（フェニルアセチルグリシン；ＰＡＧ）が薬物投与により共通して増加することが報告されており（Ｊ．Ｒ．Ｅｓｐｉｎａ ｅｔ ａｌ．，Ｍａｇｎ．Ｒｅｓｏｎ．Ｃｈｅｍ．，３９：５５９−５６５，２００１）、ＰＡＧが薬物のＰＬｓｉｓ誘発性のバイオマーカーとして利用できることが示唆されている。しかしながら、多数の薬物に関する知見はなく、実際のマーカーとしての信頼性については未知数のままである（例えば、Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ ４３ｒｄ Ａｎｎｕａｌ Ｍｅｅｔｉｎｇ Ａｂｓｔｒａｃｔｓ／Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ １９４（２００４）２０６−２０７では、尿中ＰＡＧは、ＰＬｓｉｓだけでなく、その他のｌｉｐｉｄｏｓｉｓのバイオマーカーとしても有効であると記載されているのに対し、Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，７５：４７８４−４７９２（２００３）では、ＰＡＧはせいぜいＰＬｓｉｓの弱いバイオマーカーであるにすぎないと評されている）。

本発明の目的の１つは、医薬候補化合物の毒性スクリーニングに有用な、化合物による脂質代謝異常症の予測方法を提供することである。本発明の別の目的は、既存の医薬品による副作用としての脂質代謝異常症の診断方法、特に非侵襲的な診断方法を提供することである。本発明のさらに別の目的は、薬物起因性リピドーシスだけでなく、遺伝性リピドーシスや脂肪酸代謝ホメオスタシス異常など、広く脂質代謝異常症およびその関連疾患を診断することができる診断方法を提供することである。
本発明者らは、上記の目的を達成すべく、種々のリピドーシス誘発性もしくは非誘発性の医薬品化合物を３日間投与したラットの尿を^１Ｈ ＮＭＲで分析して代謝物プロファイルを調べた結果、リピドーシス誘発性化合物を投与したラットに共通してＰＡＧの増加と馬尿酸の減少とが観察されることを見出した。そこで、本発明者らは、各ラットの尿におけるＰＡＧと馬尿酸との量比を算出し、末梢血検査および病理組織学的検査の結果と比較したところ、空胞化リンパ球の出現および種々の標的器官の細胞における脂質蓄積との間に良好な相関を認め、ＰＡＧと馬尿酸の連動的変化が薬物による脂質代謝異常症の指標となり得ることを実証した。
さらに、意外なことに、３日間の短期間投与では末梢血検査および病理組織学的検査において陽性変化が認められなかったリピドーシス誘発性化合物についても、ＰＡＧと馬尿酸との量比を指標とすれば毒性を検出し得ることが見出され、薬物による脂質代謝異常症の早期判定に有用であることが明らかとなった。
また、サルについて同様の薬物投与試験を行い、尿中のフェニルアセチルグルタミン（以下、「ＰＡＧＮ」と略記する場合がある。ヒトやサル等では、フェニルアセチルＣｏＡはグリシン抱合ではなくグルタミン抱合を受けてＰＡＧＮとして尿中に排泄される）と馬尿酸とを測定・量比を算出したところ、リピドーシス誘発性化合物を投与したサルに共通してＰＡＧＮ／馬尿酸比の有意な増加が認められた。従って、ＰＡＧ（ＰＡＧＮ）／馬尿酸比は、ラットだけでなく、ヒトを含めた哺乳動物一般において、薬物による脂質代謝異常症の指標となり得ることが示された。
本発明者らは、これらの知見に基づいてさらに研究を重ねた結果、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、
［１］ 化合物による脂質代謝異常症の予測方法であって、
（１）化合物を投与された哺乳動物より採取した試料または化合物に曝露された哺乳動物細胞もしくは組織培養物中の（ａ）フェニルアセチルグリシンおよび／もしくはフェニルアセチルグルタミン、またはフェニルアラニンからフェニルアセチルグリシンもしくはフェニルアセチルグルタミンに至る代謝経路における任意の代謝中間体と、（ｂ）馬尿酸またはフェニルアラニンから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体とを検出し、
（２）両者の量比を指標として該化合物の脂質代謝異常症誘発性を予測することを特徴とする方法、
［２］ フェニルアセチルグリシンおよび／もしくはフェニルアセチルグルタミンと馬尿酸との量比を指標とする上記［１］記載の方法、
［３］ 試料が尿、血清または血漿である上記［１］記載の方法、
［４］ 細胞もしくは組織が肝臓、腎臓または肺由来のもの、あるいはリンパ球である上記［１］記載の方法、
［５］ 脂質代謝異常症がリン脂質症、脂肪症およびスフィンゴミエリン蓄積症からなる群より選択される１以上の病態として発現するものである上記［１］記載の方法、
［６］ 哺乳動物における脂質代謝異常症またはその関連疾患の診断方法であって、
（１）哺乳動物より採取した試料中の（ａ）フェニルアセチルグリシンおよび／もしくはフェニルアセチルグルタミン、またはフェニルアラニンからフェニルアセチルグリシンもしくはフェニルアセチルグルタミンに至る代謝経路における任意の代謝中間体と、（ｂ）馬尿酸またはフェニルアラニンから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体とを検出し、
（２）両者の量比を指標として診断を行うことを特徴とする方法、
［７］ フェニルアセチルグリシンおよび／もしくはフェニルアセチルグルタミンと馬尿酸との量比を指標とする上記［６］記載の方法、
［８］ 試料が尿、血清または血漿である上記「６］記載の方法、
［９］ 脂質代謝異常症が遺伝性リピドーシス、薬物起因性リピドーシスまたは脂肪酸代謝ホメオスタシス異営である上記［６］記載の方法、
［１０］ 疾患が高脂血症、粥状硬化症、動脈硬化、心筋梗塞、脂肪肝、肝炎、肝硬変、糖尿病、痴呆症、アルツハイマー病、心臓病および慢性疲労症候群からなる群より選択される上記［６］記載の方法、
などを提供する。
本発明の予測・診断方法は、Ｌ−フェニルアラニン（以下、「Ｐｈｅ」と略記する場合がある；また、特にことわらない限り、本明細書において「フェニルアラニン」とはＬ−フェニルアラニンを意味する）の摂取量の影響を受けないので、高用量の薬物投与により被験動物の生理状態が悪化している場合でも高確度且つ高感度に脂質代謝異常症の予測が可能である。また、本発明の予測・診断方法によれば、長期間投与でなければリピドーシスの病理組織学的変化が顕在化しない化合物についても短期間投与で陽性判定が可能である。さらに、尿や血漿などの末梢体液を試料とすれば、脂質代謝異常症およびその関連疾患の臨床診断において非侵襲的な診断が可能となる。

図１は、哺乳動物におけるＬ−フェニルアラニンの代謝経路を示す。

本発明は、化合物を投与された哺乳動物より採取した試料または化合物に曝露された哺乳動物細胞もしくは組織培養物中の（ａ）ＰＡＧおよび／もしくはＰＡＧＮ、またはＰｈｅからＰＡＧもしくはＰＡＧＮに至る代謝経路における任意の代謝中間体（以下、「測定物質（ａ）」と総称する場合がある）と、（ｂ）馬尿酸またはＰｈｅから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体（以下、「測定物質（ｂ）」と総称する場合がある）とを検出し、両者の量比を指標として該化合物の脂質代謝異常症誘発性を予測する方法に関する。
本発明の予測方法の適用対象となる哺乳動物は、事前に化合物を投与されたものであれば動物種に特に制限はなく、例えばヒト、サル、ラット、マウス、ハムスター、モルモット、イヌ、ネコ、ウサギ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ウシ等が挙げられる。好ましくはヒト、サル、ラット、マウス等である。動物の性別、齢、体重等は特に制限されず、動物種によっても異なるが、例えばヒトの場合、母体保護の観点などから、第Ｉ相試験では、通常健常成人男性が好ましく選択される（女性・小児特有の疾患治療薬や抗癌剤などの場合はこの限りでない）。また、ラットの場合は、約２〜約２４月齢、体重約１００〜約７００ｇのものが好ましく用いられるが、これに限定されない。
哺乳動物がヒト以外である場合、遺伝学的および微生物学的に統御されている動物個体群を用いることが好ましい。例えば、遺伝学的には近交系、クローズドコロニーの動物を用いることが好ましく、ラットの場合、例えばＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ（ＳＤ）、Ｗｉｓｔａｒ、ＬＥＷ等の近交系ラットが挙げられ、マウスの場合、ＢＡＬＢ／ｃ、Ｃ５７ＢＬ／６、Ｃ３Ｈ／Ｈｅ、ＤＢＡ／２、ＳＪＬ、ＣＢＡ等の近交系マウスおよびＤＤＹ、ＩＣＲ等のクローズドコロニーマウスが挙げられるが、これらに限定されない。また、微生物学的にはコンベンショナル動物であってもよいが、感染症の影響を排除する観点から、ＳＰＦ（ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｐａｔｈｏｇｅｎ ｆｒｅｅ）もしくはノトバイオートグレードのものを用いるのがより好ましい。
一方、哺乳動物細胞もしくは組織は、上記の哺乳動物から採取された細胞もしくは組織であって、ＰｈｅからＰＡＧもしくはＰＡＧＮに至る代謝経路の全部もしくは一部およびＰｈｅから馬尿酸に至る代謝経路の全部もしくは一部を有する細胞を含有するものであれば特に制限はなく、あらゆる細胞［例えば、肝細胞、脾細胞、神経細胞、グリア細胞、膵臓β細胞、骨髄細胞、メサンギウム細胞、ランゲルハンス細胞、表皮細胞、上皮細胞、杯細胞、内皮細胞、平滑筋細胞、線維芽細胞、線維細胞、筋細胞、脂肪細胞、免疫細胞（例、マクロファージ、Ｔ細胞、Ｂ細胞、ナチュラルキラー細胞、肥満細胞、好中球、好塩基球、好酸球、単球）、巨核球、滑膜細胞、軟骨細胞、骨細胞、骨芽細胞、破骨細胞、乳腺細胞、間質細胞、またはこれら細胞の前駆細胞、幹細胞もしくは癌細胞など］もしくはそれらの細胞が存在するあらゆる組織［例えば、脳、脳の各部位（例、嗅球、扁桃核、大脳基底球、海馬、視床、視床下部、大脳皮質、延髄、小脳）、脊髄、下垂体、胃、膵臓、腎臓、肝臓、生殖腺、甲状腺、胆嚢、骨髄、副腎、皮膚、肺、消化管（例、大腸、小腸）、血管、心臓、胸腺、脾臓、顎下腺、末梢血、前立腺、睾丸、卵巣、胎盤、子宮、骨、関節、脂肪組織、骨格筋など］、あるいは上記の細胞・組織から樹立される細胞株などが例示される。好ましくは、肝臓、腎臓、肺、腸間膜リンパ節、脾臓等に由来する細胞もしくは組織、あるいは末梢血リンパ球、単球等が挙げられる。また、再現性の良さや（特にヒト細胞の場合）入手の容易さ等から細胞株の使用が好ましい。例えば、ヒト細胞株としては、肝癌由来のＨｅｐＧ２細胞株、腎由来のＨＥＫ２９３細胞株、肺癌由来のＡ５４９細胞株、リンパ腫由来のＵ−９３７細胞株、単球由来のＴＨＰ−１細胞株、大腸癌由来のＣａｃｏ−２細胞株、子宮頚癌由来のＨｅＬａ細胞株等が挙げられるが、これらに限定されない。
哺乳動物に投与または哺乳動物細胞もしくは組織が曝露される化合物としては、例えば医薬または動物薬の候補化合物（被験動物がヒトの場合は臨床試験段階の化合物）などが挙げられる。
哺乳動物に化合物を投与する方法は時に制限されず、例えば、試験化合物を固形、半固形、液状、エアロゾル等の形態で経口的もしくは非経口的（例：静脈内、筋肉内、腹腔内、動脈内、皮下、皮内、気道内等）に投与することができる。試験化合物の投与量は、化合物の種類、動物種、体重、投与形態、投与期間などによって異なり、例えば３日間程度の短期間投与の場合、動物が生存し得る範囲で、標的器官の細胞が生存し得る最高濃度の試験化合物に一定時間以上曝露され得るのに必要な量などが挙げられる。臨床試験においては、前臨床試験で得られたデータに基づいて設定された範囲内で種々の投与量が選択される。投与は１回ないし数回に分けて行うことができる。投与から試料採取までの時間は動物種、試験化合物の投与量、体内動態等によって異なるが、例えばラットの場合、高用量を短期間投与する場合は、初回投与から約１〜約７日間、好ましくは約３〜約５日間である。また、低用量を長期間投与する場合は、初回投与から約１ヶ月以上、好ましくは約２〜約６ヶ月程度が挙げられる。
投与期間中の給餌・給水、明暗周期などの飼育方法は特に制限されないが、例えばラットやマウスなどの場合、市販の固形もしくは粉末飼料と新鮮な水道水もしくは井戸水を自由摂取させ、１２時間明期／１２時間暗期のサイクルで飼育する方法が挙げられる。必要に応じて一定時間絶食および／または絶水させることもできる。また、本発明の予測方法は、後述するようにＰｈｅ摂取量の個体差に影響されないという利点を有するが、摂餌量からＰｈｅ摂取量を計算し得る飼料を用いることがより好ましい。
本発明の予測方法に用いられる哺乳動物より採取される試料は、ＰｈｅからＰＡＧもしくはＰＡＧＮに至る代謝経路のいずれかの代謝産物およびＰｈｅから馬尿酸に至る代謝経路のいずれかの代謝産物が検出され得る生体試料であれば特に制限はなく、例えば、尿、血漿、血清などの末梢体液、リンパ球、単球などの末梢血細胞あるいは肝臓、腎臓、肺、腸間膜リンパ節、脾臓等に由来する細胞もしくは組織の生検サンプルなどが挙げられるが、被験動物への侵襲が少ないことから末梢体液や末梢血細胞が好ましく、細胞抽出液の調製が不要であることから末梢体液がより好ましい。
末梢体液の採取方法としては、例えば尿の場合、ヒトであれば通常の検尿の方法が挙げられ、非ヒト哺乳動物であれば、化合物の投与から一定時間経過後に仙椎刺激もしくは膀胱圧迫により新鮮尿を強制採取するか、代謝ケージを用いて採尿容器内に一定時間（例えば約１〜約２４時間、好ましくは約３〜約１２時間）内の自然排泄尿を蓄尿することにより行うことができる。特殊な手技を必要としないことやデータのばらつきが少ない等の点では後者が好ましい。蓄尿する場合、尿中代謝物の変化を防ぐために採尿容器を氷冷しておくことが好ましく、また、防腐剤としてトルエン、チモール、濃塩酸等を微量滴下しておいてもよい。さらに、尿の蒸発を防ぐために採尿容器に少量の流動パラフィンを添加することもできる。採取した尿は必要に応じて遠心分離等により上清を精製した後測定に供されるが、測定までに時間を要する場合は凍結保存し、用時融解して用いてもよい。
血漿の場合は、ヒトであれば通常の採血方法により肘の裏側や手の甲等から静脈血を採取し、非ヒト哺乳動物であれば、尾静脈、尾動脈、眼窩静脈叢を傷つけて流出した血液を毛細管などを用いて採取し、必要に応じてヘパリン、ＥＤＴＡ、クエン酸ナトリウム等の抗凝固剤を添加して遠心分離もしくは血漿分離膜による濾過により血球を分離除去することにより調製することができる。血清の場合は、同様に採取した血液を一定時間以上放置して血餅を形成させた後、遠心分離等により上清を採取することにより調製することができる。血漿、血清とも測定までに時間を要する場合は凍結保存して用時融解して用いることができる。
一方、試料が細胞もしくは組織の場合は、生検により得られた各種器官由来の細胞もしくは組織、あるいは上記のようにして採取した血液から血漿を分離した後の血球画分をさらに常法により分画して得られる各種血液細胞を、哺乳動物細胞もしくは組織培養物について後述する方法に準じて処理し、細胞もしくは組織抽出液を調製すればよい。当該抽出液は凍結保存して用時融解して用いることもできる。
哺乳動物細胞もしくは組織を化合物に曝露させる方法も特に制限はないが、具体的には、例えば、細胞株を試料として用いる場合、適当な培地中、好適な条件下で培養した細胞増殖期の細胞を、トリプシン−ＥＤＴＡなどを用いて剥離させ、遠心して細胞を回収した後、適当な培地［例：約５〜約２０％の胎仔ウシ血清（ＦＢＳ）を含むＭＥＭ（Ｓｃｉｅｎｃｅ，１２２：５０１（１９５２））、ＤＭＥＭ（Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，８：３９６（１９５９））、ＲＰＭＩ １６４０培地（Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｍｅｄｉｃａｌ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ，１９９：５１９（１９６７））、１９９培地（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，７３：１（１９５０））など（必要に応じて、ペニシリン、ストレプトマイシン、ハイグロマイシン等の抗生物質をさらに添加してもよい）］を加えて所望の細胞密度となるように懸濁する。細胞密度は特に限定されないが、細胞が細胞増殖期の状態を保つように調整することが好ましい。したがって、好ましい当初細胞密度は使用する細胞の増殖速度等によって異なり、当業者であれば使用する細胞に応じて容易に設定することができるが、通常約５×１０^４〜約１×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍＬである。適当な溶媒に溶解（もしくは分散媒に分散）した試験化合物を培地でさらに希釈し、終濃度が、例えば細胞が生存し得る最高濃度（当該濃度は、別途病理組織学的観察を行って決定することができる）となるように、上記細胞懸濁液に添加して、通常条件下、例えば、ＣＯ_２インキュベーター中で、５％ＣＯ_２／９５％大気、５％ＣＯ_２／５％Ｏ_２／９０％大気等の雰囲気下、約３０〜約４０℃で、約３〜約１６８時間、好ましくは約６〜約７２時間、より好ましくは約１２〜約４８時間培養する。また、哺乳動物細胞もしくは組織としては、生体から採取した細胞もしくは組織をそのまま用いることもできる。
化合物に曝露された哺乳動物細胞もしくは組織培養物（本発明において、化合物への曝露は、細胞もしくは組織を一定時間インキュベートする工程を必然的に伴うので、生体から採取した細胞もしくは組織をそのまま化合物に曝露する場合も、ここでいう培養物に包含される）は、測定物質（ａ）および（ｂ）の種類等に応じて細胞／組織または培養上清のいずれかを遠心分離、濾過等により適宜分取し、培養上清についてはそのまま、あるいは必要に応じて濃縮等の処理を施した後で、細胞／組織については通常の抽出方法に従って可溶性画分を調製し、測定に供することができる。例えば、氷冷したリン酸緩衝液、トリス−塩酸緩衝液、酢酸緩衝液、ホウ酸緩衝液等の抽出用緩衝液中で、必要により超音波処理や界面活性剤等を用いて細胞／組織を破砕した後、遠心分離して上清を回収することにより得ることができる。
本発明の予測方法では、上記のようにして得られた検体中のＰＡＧおよび／もしくはＰＡＧＮ（以下、「ＰＡＧ／ＰＡＧＮ」と略記する場合がある）またはＰｈｅからＰＡＧもしくはＰＡＧＮに至る代謝経路における任意の代謝中間体（測定物質（ａ））と、馬尿酸またはＰｈｅから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体（測定物質（ｂ））とを検出する。ＰｈｅからＰＡＧもしくはＰＡＧＮに至る代謝経路における任意の代謝中間体とは、具体的には、２−フェニルエチルアミン、フェニルアセトアルデヒド、フェニル酢酸およびフェニルアセチルＣｏＡ（それらの抱合体（ＰＡＧおよびＰＡＧＮを除く）を含む）のいずれかを意味し、Ｐｈｅから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体とは、フェニルピルビン酸、フェニル乳酸、桂皮酸および安息香酸（それらの抱合体（馬尿酸を除く）を含む）のいずれかを意味する。
哺乳動物においては、Ｐｈｅは主としてフェニルアラニンヒドロキシラーゼによりＬ−チロシン（Ｔｙｒ）に酸化され、さらにカテコールアミンやメラニンなどに変換されるが、一部のＰｈｅは、フェニルピルビン酸、フェニル乳酸、桂皮酸、安息香酸を経て最終的に馬尿酸に代謝されるか（図１の経路Ｂ）、あるいは２−フェニルエチルアミン、フェニルアセトアルデヒド、フェニル酢酸、フェニルアセチルＣｏＡを経て最終的にＰＡＧ（ラット、マウス、イヌなどの場合）および／またはＰＡＧＮ（ヒト、サルなどの場合）に代謝されて（図１の経路Ａ）、尿中に排泄されることが知られている。例えばヒトやラットの場合、正常の状態では、Ｔｙｒ合成に利用されないＰｈｅの多くは経路Ｂを通じて代謝・排泄（クリアランス）されるので、尿中ＰＡＧ（ＰＡＧＮ）／馬尿酸比は馬尿酸側に偏っている。本発明者らは、リピドーシス誘発性化合物投与ラットの尿に共通するＰＡＧ増加と馬尿酸減少という変化は、Ｐｈｅクリアランスのバランスが、何らかの理由によって、通常はマイナー経路である第二の経路（経路Ａ）をより多く利用する方向に傾くためであることを見出した。
従って、検体中の測定物質（ａ）と測定物質（ｂ）との量比を測定して化合物非投与の場合のそれと比較し、その結果（ａ）／（ｂ）比が増加していれば、その化合物はリピドーシス誘発性であると予測することができる。前述の通り、ＰＡＧの増加を指標として化合物のＰＬｓｉｓ誘発性を予測し得ることが示唆されてはいたが、ＰＡＧ／ＰＡＧＮの増加を馬尿酸減少との連動的変化として捉える思想、さらにかかる連動性をＰｈｅクリアランス経路のバランス変化として捉える思想はこれまでに皆無である。また、哺乳動物にとってＰｈｅは必須アミノ酸であり、食餌から摂取する必要があるので、例えば脂質代謝異常症以外の状態悪化や給餌制限等によって摂食量が減少するとＰｈｅ摂取量も減少し、Ｔｙｒ合成に利用されずに排泄されるＰｈｅ量も減少する。従って、ＰＡＧ／ＰＡＧＮの増加のみを指標とした場合には、上記（ａ）／（ｂ）比が増加しているにもかかわらず、経路ＡへのＰｈｅの流入量が減少しているために、みかけ上ＰＡＧ／ＰＡＧＮ量の変化が認められない場合があり、予測の確度が低下するという問題が生じる。そのため、正しい予測結果を得るためには、Ｐｈｅ摂取量を厳密にモニターして測定値を補正しなければならない。これに対し、（ａ）／（ｂ）比を指標とすれば、Ｐｈｅ摂取量に関係なく測定値の変化のみで陽性／陰性の判定が可能であり（後記実施例４を参照）、簡便性の面で格別に優れている。
本明細書において「測定物質（ａ）と測定物質（ｂ）の量比」という場合、上記（ａ）／（ｂ）比だけでなく、（ａ）＋（ｂ）に対する（ａ）もしくは（ｂ）の比も含まれる。（ａ）＋（ｂ）はＰｈｅ摂取量に対応するものであるから、かかる比率は、クリアランス経路に流入したＰｈｅのうち経路Ａ（もしくはＢ）に流入する割合がどれだけ変化したかを示す。Ｐｈｅ摂取量を算出し得る場合には、測定物質（ａ）または（ｂ）の一方のみを測定し、Ｐｈｅ摂取量に対する当該測定値の比で比較することも可能である。Ｐｈｅ摂取量を算出する方法としては、Ｐｈｅ含有成分を均一に含んでなる食餌を与えて摂餌量をモニターすることなどが挙げられる。
測定物質（ａ）と測定物質（ｂ）の組み合わせは特に限定されないが、検体中に両者が含まれていることが必要である。例えば、化合物を投与された哺乳動物から採取された試料が尿、血清または血漿である場合、測定物質（ａ）としてはＰＡＧ／ＰＡＧＮ、測定物質（ｂ）としては馬尿酸が好ましいが、これらに限定されない。
測定物質（ａ）および（ｂ）はいかなる測定方法によって検出してもよく、両者を同時検出してもよいし、それぞれ別個に検出してもよい。両者を同時検出する方法としては、例えば核磁気共鳴法（例：^１Ｈ ＮＭＲ、^１３Ｃ ＮＭＲ）、ガスクロマトグラフィー（ＧＣ）法、ガスクロマトグラフィー−質量分析（ＧＣ−ＭＳ）法、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）法、ＨＰＬＣ−ＮＭＲ法、液体クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）法、ＬＣ−ＭＳ−ＭＳ法、薄層クロマトグラフィー−質量分析（ＴＬＣ−ＭＳ）法、キャピラリーゾーン電気泳動−質量分析（ＣＺＥ−ＭＳ）法、イムノアッセイを利用する方法等が挙げられるが、これらに限定されない。各検出方法における各種パラメータなどの測定条件については、測定物質の種類等に応じて当業者は容易に適宜選択して行うことができる。
例えば、^１Ｈ ＮＭＲ法によりＰＡＧと馬尿酸とを検出する場合、例えばＪ．Ｒ．Ｅｓｐｉｎａ ｅｔ ａｌ．（２００１；上述）、Ｄｒｕｇ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ Ｄｉｓｐｏｓｉｔｉｏｎ，２６（１１）：１１３４−１１４３（１９９８）に記載された方法あるいはこれらに準じた方法により行うことができる。具体的には、後記実施例に記載の方法等が挙げられる。^１３Ｃ ＮＭＲ法によりＰＡＧと馬尿酸を検出する場合、例えばＤｒｕｇ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ Ｄｉｓｐｏｓｉｔｉｏｎ（１９９８；上述）に記載された方法あるいはそれに準じた方法により、また、フェニル酢酸を検出する場合は、例えば、Ａｍ Ｊ Ｐｈｙｓｉｏｌ．，２７５（５ Ｐｔ １）：Ｅ８４３−Ｅ８５２（１９９８）に記載された方法あるいはそれに準じた方法により行うことができる。
ＨＰＬＣによりＰＡＧと馬尿酸とを検出する場合、例えばＤｒｕｇ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ Ｄｉｓｐｏｓｉｔｉｏｎ（１９９８；上述）に記載された方法あるいはそれに準じた方法により、また、馬尿酸または安息香酸を検出する場合は、例えばＤｒｕｇ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ Ｄｉｓｐｏｓｉｔｉｏｎ，３１（８）：９８７−９９２（２００３）、Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．，３０５（１）：２７９−２８９（２００３）に記載された方法あるいはこれらに準じた方法により行うことができる。
ＨＰＬＣ−ＮＭＲ法により馬尿酸等を検出する場合は、例えばＡｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２９１：２４５−２５２（２００１）に記載された方法あるいはそれに準じた方法により行うことができる。
ＧＣ法、ＧＣ−ＭＳ法によりＰＡＧと馬尿酸とを検出する場合、例えばＤｒｕｇ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ Ｄｉｓｐｏｓｉｔｉｏｎ（１９９８；上述）、Ｄｒｕｇ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ Ｄｉｓｐｏｓｉｔｉｏｎ（２００３；上述）に記載された方法あるいはこれらに準じた方法により行うことができる。
ＬＣ−ＭＳ−ＭＳ法により馬尿酸を検出する場合、例えばＲａｐｉｄ．Ｃｏｍｍｕｎ．Ｍａｓｓ．Ｓｐｅｃｔｒｏｍ．，１８：２６５−２７２（２００４）に記載された方法あるいはこれらに準じた方法により行うことができる。
イムノアッセイを利用してＰＡＧＮを検出する場合、例えば米国特許第５，１００，８０７号明細書に記載された方法あるいはこれらに準じた方法により行うことができる。この場合、ＰＡＧ／ＰＡＧＮと馬尿酸のそれぞれを抗体を用いて検出する場合、例えば特開平１１−３４３３００号公報に記載の方法等に準じて他方の化合物に対する交叉反応性がないことを予め検証しておくことが必要である。
上記のいずれかの方法により、（１）化合物を投与された哺乳動物から採取した試料または化合物に曝露された哺乳動物細胞もしくは組織培養物と、（２）化合物を投与されていない哺乳動物から採取した試料または化合物に曝露されていない哺乳動物細胞もしくは組織培養物とで、それぞれ測定物質（ａ）と測定物質（ｂ）との量比を測定・比較して、（ａ）／（ｂ）比［もしくは（ａ）／（ａ）＋（ｂ）比］が増加または（ｂ）／（ａ）＋（ｂ）比が減少していれば、当該化合物は脂質代謝異常症を誘発することが予測される。ここで量比の変動率は特に制限されず、動物種、細胞種、投与量、投与期間、投与形態、試料の種類などによっても異なるが、例えば化合物を３日間投与されたラットの尿を試料とする場合には、（ａ）（＝ＰＡＧ）／（ｂ）（＝馬尿酸）比が約０．３以上、化合物を７日間投与されたサルの尿を試料とする場合には、（ａ）（＝ＰＡＧＮ）／（ｂ）（＝馬尿酸）比が約４．０以上であれば、脂質代謝異常症誘発性であると予測することができる。
本発明の予測方法により予測することができる脂質代謝異常症は特に制限されないが、例えばＰＬｓｉｓ、脂肪症およびスフィンゴミエリン蓄積症等が挙げられる。
本発明の予測方法の確度は、化合物を一定期間（例えば、約３日〜約数ヶ月間）投与された哺乳動物から採取した各種標的器官の生検サンプルについての病理組織学的変化の観察などにより評価することができるが、化合物を実際に使用される程度の低用量で長期間投与された動物を用いて評価することが好ましい。短期間の大量投与においては、後記実施例に示される通り、ＰＬｓｉｓを誘発することが報告されている化合物について病理組織学的変化、空胞化リンパ球検査とも陰性である場合がある。
他方、本発明の予測方法によれば、短期間の大量投与においても（ａ）／（ｂ）比の顕著な増大が認められ、脂質代謝異常症誘発性であると予測することができる。このように、本発明の予測方法は、より短期間に陽性・陰性の確度の高い判定が可能であり、従って医薬品開発の初期段階においては毒性スクリーニングの効率化を図ることができ、一方、臨床試験段階においては、具体的な症状を発現する以前に脂質代謝異常症の発症リスクを予見することができ、被験者の危険を低減することができる。
本発明は、上述のように、Ｐｈｅのクリアランスにおける２つの代謝経路の利用バランスが変化することにより、脂質代謝異常症を予測し得ることを見出したことに基づく。従って、本発明の方法は、薬物による脂質代謝異常症（即ち、薬物起因性リピドーシス）に限らず、広く脂質代謝異常症、さらにはその関連疾患（即ち、脂質代謝異常症に起因する疾患、結果として脂質代謝異常症を伴う疾患など）の診断に使用することができる。従って、本発明はまた、哺乳動物より採取した試料中の（ａ）ＰＡＧ／ＰＡＧＮまたはＰｈｅからＰＡＧもしくはＰＡＧＮに至る代謝経路における任意の代謝中間体と、（ｂ）馬尿酸またはＰｈｅから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体とを検出し、両者の量比を指標として診断を行うことを特徴とする、哺乳動物における脂質代謝異常症またはその関連疾患の診断方法を提供する。ここで、哺乳動物、哺乳動物から採取される試料、任意の代謝中間体、量比はいずれも上記本発明の予測方法において記載したと同様である。また、ここで「診断」とは、罹患の有無の判定に限らず、確定診断後の重症度（進行度）、将来罹患・発症する可能性が高いか否かの判定など、あらゆる診断を包含する概念として用いられる。
本発明の診断方法により診断することができる脂質代謝異常症としては、例えば遺伝性リピドーシス（例：ゴーシェ病、ニーマンピック病（Ａ〜Ｃ型）、ファーブリ病、ウォルマン病、コレステロールエステル蓄積症、脳腱黄色腫症、フィトステロール血症、レフサム症、テイ−サックス病、全身性（ＧＭ１）ガングリオシドーシス、サルファチドリピドーシス（異染性白質萎縮症）、ガラクトシルセラミドリピドーシスなど）、薬物起因性リピドーシス（例：ＰＬｓｉｓ、脂肪症、スフィンゴミエリン蓄積症など）、脂肪酸代謝ホメオスタシス異常（例：脂肪酸β酸化異常など）等が挙げられる。ここで「薬物」とは、医薬品もしくは動物薬として既に認可され使用されている薬物のほか、被験動物が誤って服用ないし環境中から吸収した任意の薬物などが挙げられる。
また、脂質代謝異常症の関連疾患としては、脂肪酸代謝ホメオスタシス異常に関連する疾患として、例えば高脂血症、粥状硬化症、動脈硬化、心筋梗塞、脂肪肝、肝炎、肝硬変、糖尿病、痴呆症、アルツハイマー病、心臓病および慢性疲労症候群などが、また、薬物起因性リピドーシスに関連する疾患（副作用症状）として、例えば肺線維症、失明、脳症などが挙げられるが、それらに限定されない。また、非ヒト哺乳動物における疾患としては、例えばネコ、イヌなどのペット動物における肝リピドーシス等も挙げられる。
図１に示されるように、Ｐｈｅから馬尿酸に至る代謝経路において、桂皮酸から安息香酸への変換はβ酸化により行われる。ＰＬｓｉｓをはじめとする脂質代謝異常症においては、脂肪酸のβ酸化が抑制されることが各種文献において報告されていることから、脂質代謝異常症におけるＰｈｅクリアランス経路の利用バランスの変化は、桂皮酸から安息香酸への変換が抑制されるために、ＰＡＧ／ＰＡＧＮへ至る代謝経路がより利用されるからである可能性がある。従って、本発明の診断方法は、特に脂肪酸のβ酸化異常に関連する疾患の診断に有用であるかもしれない。
脂質代謝異常症またはその関連疾患に罹患している（罹患する可能性が高い）等の診断基準となる（ａ）／（ｂ）比の数値は、動物種、齢、性別、採取する試料の種類などによって異なる。例えば、同一条件下の正常動物における平均値＋２ＳＤ以上であれば、脂質代謝異常症であると診断する等の基準を設けることができるが、それに限定されない。
本発明はまた、本発明の予測方法および診断方法に好適に用いることができるキットを提供する。本発明のキットは、（ａ）ＰＡＧ／ＰＡＧＮまたはＰｈｅからＰＡＧもしくはＰＡＧＮに至る代謝経路における任意の代謝中間体の測定用試薬と、（ｂ）馬尿酸またはＰｈｅから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体の測定用試薬とを含むことを特徴とする。測定用試薬としては、定量的解析を可能とするものである限り特に限定されないが、抗体を含むものが好ましい。測定用試薬が抗体を含むものである場合、測定物質（ａ）に対する抗体、および測定物質（ｂ）に対する抗体は、（ａ）／（ｂ）比の測定に差し支えない程度に、他方の測定物質に対し交叉反応性が低いものがそれぞれ用いられる。抗体はまた、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれでもよく、標識剤で標識されていても標識されていなくともよい。測定物質（ａ）に対する抗体および／または測定物質（ｂ）に対する抗体が標識剤で標識されていない場合、本発明のキットは、標識剤をさらに含むこともできる。標識剤としては、例えば、放射性同位元素、酵素、蛍光物質、発光物質などが用いられる。放射性同位元素としては、例えば、〔^１２５Ｉ〕、〔^１３１Ｉ〕、〔^３Ｈ〕、〔^１４Ｃ〕などが用いられる。上記酵素としては、安定で比活性の大きなものが好ましく、例えば、β−ガラクトシダーゼ、β−グルコシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、パーオキシダーゼ、リンゴ酸脱水素酵素などが用いられる。蛍光物質としては、例えば、フルオレスカミン、フルオレッセンイソチオシアネートなどが用いられる。発光物質としては、例えば、ルミノール、ルミノール誘導体、ルシフェリン、ルシゲニンなどが用いられる。さらに、抗体と標識剤との結合にビオチン−（ストレプト）アビジン系を用いることもできる。
本発明のキットに含まれる抗体は、例えば米国特許第５，１００，８０７号明細書に記載された方法あるいはこれらに準じた方法により作製することができる。この場合、例えば特開平１１−３４３３００号公報に記載の方法等に準じて、（ａ）／（ｂ）比の測定に差し支えない程度に他方の測定物質に対する交叉反応性が低いことを予め検証しておくことが必要である。
本発明のキットはまた、測定物質（ａ）、および／または測定物質（ｂ）をさらに含むこともできる。この場合、測定物質（ａ）、測定物質（ｂ）は、標識剤で標識されていても標識されていなくともよい。測定物質（ａ）および／または測定物質（ｂ）が標識剤で標識されていない場合、本発明のキットは、標識剤をさらに含むこともできる。標識剤は上述と同様である。本発明のキットはさらに、測定物質（ａ）に対する抗体、および／または測定物質（ｂ）に対する抗体（一次抗体）を特異的に認識し得る二次抗体、あるいは抗体を固相化するための担体（例：マイクロタイタープレート、ガラスビーズなど）を含んでいてもよい。
以下に実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明するが、これらは単なる例示であって本発明の範囲を何ら限定するものではない。

（参考例１）
ＰＬｓｉｓ誘発性化合物投与ラットにおける病理組織学的検査および末梢血リンパ球検査
以下の１０種の市販薬を試験化合物として、ＰＬｓｉｓ誘発性の有無を病理組織学的検査および末梢血リンパ球検査により調べた。アミオダロン、イミプラミン、クロミプラミン、タモキシフェン、クロルプロマジン、キナクリン、クロロキン、アマンタジンおよびペルヘキシリンはＳＩＧＭＡ社より、フルオキセチンは和光純薬工業よりそれぞれ購入した。陰性対照として、血管炎／動脈症を引き起こすがＰＬｓｉｓ等の脂質代謝異常症を引き起こすことは報告されていない３種の薬物（ロフルミラスト（ＷＯ ９５／０１３３８）、アリフロ（ＷＯ ９３／１９７４９）およびロリプラム（特公昭６０−１１０２８））を使用した。
５週齢のＣｒｊ：ＣＤ（ＳＤ）ＩＧＳラット（日本チャールズリバー株式会社、閉鎖環境下生産）雄４７５例（２００２年９月３日：９５匹；試験番号３２−２０７／ｓｕ、１０月１５日：９５匹；試験番号３２−２３１／ｓｕ、１１月５日：９５匹；試験番号３２−２３３／ｓｕ、１１月１２日：９５匹；試験番号３２−２３４／ｓｕ、１１月２８日：９５匹；試験番号３２−２３２／ｓｕ）を入手し、約１週間馴化飼育した。その間に検疫を実施するとともに一般状態の観察及び体重測定を行った。異常の認められなかった動物を選択し、試験ごとに採尿用として１群雄各４例からなる７群、血漿中薬物濃度測定用サテライト群として１群雄各３例からなる６群及び途中剖検動物として１群雄各６例からなる７群の合計２０群（計８８例）に無作為に群分けした。投薬開始時の６週齢での体重範囲は、１７１〜２００ｇ（試験番号３２−２０７／ｓｕ：１７２〜１９８ｇ、試験番号３２−２３１／ｓｕ：１７１〜１９８ｇ、試験番号３２−２３２／ｓｕ：１７６〜２００ｇ、試験番号３２−２３３／ｓｕ：１７８〜１９９ｇ、試験番号３２−２３４／ｓｕ：１７２〜１９７ｇ）であった。このうち、途中剖検動物を用いて以下の実験を行った。
動物は金網底の金属製ケージに個別に収容し、各ケージはクリーンブース内に設置した水洗式ラックに群間で無作為に配置した。動物室の環境条件は室温２０〜２６℃、相対湿度４０〜７０％、新鮮空気の換気回数８〜２５回／時間とし、照明時間は１２時間／日（点灯時間：午前７時〜午後７時）とした。動物にはγ線照射した粉末飼料（ＣＲ−ＬＰＦ，オリエンタル酵母）を与え、水道水とともに自由に摂取させた。
各被検物質に分散媒／媒体を加えて撹拌し高用量を調製した。高用量投与液を分散媒／溶媒で約３倍及び１０倍に希釈して中・低用量投与液を調製した。各被検物質の用量は以下の通りに設定した。［尚、ＬＤ_５０は各薬剤のＳｕｍｍａｒｙ Ｂａｓｉｓ ｏｆ Ａｐｐｒｏｖａｌ（ＦＤＡ）を参照した。］
アミオダロン：１００、３００及び１０００ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：３０００ｍｇ／ｋｇ以上）
理由：投薬可能な量を高用量とし以下、公比約３で減じた。
イミプラミン：１００、３００及び１０００ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：１８０７ｍｇ／ｋｇ）
理由：ＬＤ_５０の約半量を高用量とし以下、公比約３で減じた。
クロミプラミン：１００、３００及び１０００ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：９１４ｍｇ／ｋｇ）
理由：ＬＤ_５０を高用量とし以下、公比約３で減じた。
タモキシフェン：１００、３００及び１０００ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：１１９０ｍｇ／ｋｇ）
理由：ＬＤ_５０を高用量とし以下、公比約３で減じた。
クロルプロマジン：１０、３０及び１００ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：１４５ｍｇ／ｋｇ）
理由：ＬＤ_５０の約２／３量を高用量とし以下、公比約３で減じた。
キナクリン：６０、２００及び６００ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：９００ｍｇ／ｋｇ）
理由：ＬＤ_５０の約２／３量を高用量とし以下、公比約３で減じた。
クロロキン：２５、７５及び２５０ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：３３０ｍｇ／ｋｇ）
理由：ＬＤ_５０の約２／３量を高用量とし以下、公比約３で減じた。
アマンタジン：７５、２５０及び７５０ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：１２７５ｍｇ／ｋｇ）
理由：ＬＤ_５０の約２／３量を高用量とし以下、公比約３で減じた。
ペルヘキシリン：６０、２００及び６００ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：不明）
理由：１週間投与で病変がみられる量を高用量とし以下、公比約３で咸じた。
フルオキセチン：３０、１００及び３００ｍｇ／ｋｇ／日（ＬＤ_５０：４５２ｍｇ／ｋｇ）
理由：ＬＤ_５０の約２／３量を高用量とし以下、公比約３で減じた。
ロフルミラスト：１及び３ｍｇ／ｋｇ
理由：血管炎／動脈症がみられる用量を高用量とし、その１／３用量を低用量とした。
アリフロ：３０及び１００ｍｇ／ｋｇ
理由：血管炎／動脈症がみられる用量を高用量とし、その１／３用量を低用量とした。
ロリプラム：３０及び１００ｍｇ／ｋｇ
理由：血管炎／動脈症がみられる用量を高用量とし、その１／３用量を低用量とした。
対照群：０．５ｗ／ｖ％メチルセルロース溶液
投与液量１０ｍＬ／ｋｇ／日を１日１回、３日間（陰性対照については４日間）強制経口投与により投与した。動物の生死、一般状態、体重、摂餌量等をＰＭ４８００（メトラー）およびＥＢ３２００Ｄ（島津製作所）を用いて観察した。
投与終了後、すべての動物について肝臓、腎臓、心臓、脾臓、肺および腸間膜リンパ節（陰性対照投与群については肝臓、腎臓、心臓、脾臓、肺（気管支を含む）、冐（短胃動脈を含む）、腸間膜および精巣）その他各被検物質における追加器官・組織として、イミプラミンでは眼球、クロミプラミンでは脳および眼球、タモキシフェンでは副腎、下垂体および眼球、クロルプロマジンでは脳および眼球、キナクリンでは脳および大腿部筋肉、クロロキンでは脳および眼球、ペルヘキシリンでは脳および皮膚、フルオキセチンでは脳（陰性対照投与群については、剖検時に変化のみられた器官・組織）をサンプリングし、常法により光学顕微鏡及び電子顕微鏡学的にサンプリングした組織の病理組織学的変化を調べた。
また、ＡＤＶＩＡ１２０（バイエルメディカル）、Ｅ−４０００（シスメックス）を用いて、赤血球数、ヘマトクリット値、ヘモグロビン濃度、平均赤血球血色素量（ＭＣＨ）、平均赤血球血色素濃度（ＭＣＨＣ）、平均赤血球容積（ＭＣＶ）、血小板数、白血球数、網状赤血球数、白血球百分比、空胞化リンパ球率（ＰＬｓｉｓ誘発性化合物のみ）などの血液学的検査を実施した。
ＰＬｓｉｓ誘発性化合物投与群における病理組織学的変化（脂質蓄積を示す電顕像）および空胞化リンパ球率の結果を表１に示す。クロルプロマジンを除く９種の化合物について、少なくとも高用量では空胞化リンパ球率の顕著な増加およびいずれかの標的器官における病理組織学的変化が認められた。クロルプロマジンについては、３日間という短期間投与では、いずれの用量でも病理組織学的検査および空胞化リンパ球検査によってＰＬｓｉｓ陽性を判別できないことがわかった。陰性対照投与群においては、ＰＬｓｉｓなどの脂質代謝異常症を示す病理組織像は観察されなかった。

ＰＬｓｉｓ誘発および非誘発化合物投与による尿中ＰＡＧ／馬尿酸比の発現変動
実施例１（参考例１）で準備した採尿用ラットに同様の方法により被検物質を投与し、１回及び３回投与後に約６時間の絶食、絶水下の蓄尿を採取した。容器を氷冷下の状態にして蓄尿した。採尿後、１５００×ｇ、１０分間遠心し、上清を１ｍＬ以上採取してマイクロチューブで超低温フリーザーにて測定まで凍結保存（−７０℃以下）した。陰性対照投与群については、２４時間の尿を氷冷下で採取し、採尿後、測定まで−３０℃で保存した。
^１Ｈ ＮＭＲは以下のようにして実施した。以下に記載する試薬類は精製をせずに使用した。重水（Ｄ_２Ｏ）はＩＳＯＴＥＣ．ＩＮＣ（ＵＳＡ）より、ＮａＨ_２ＰＯ_４・２Ｈ_２Ｏ，Ｎａ_２ＨＰＯ_４・１２Ｈ_２Ｏは関東化学（東京）から購入した。Ｓｏｄｉｕｍ ３−（ｔｒｉｍｅｔｈｙｌｓｉｌｙｌ）−ｐｒｏｐｉｏｎａｔｅ−２，２，３，３，−ｄ_４（ＴＳＰ）はＩＳＯＴＥＣ．ＩＮＣ（ＵＳＡ）から購入した。ＮＭＲスペクトルの測定はＵｎｉｔｙ ＩＮＯＶＡ６００（Ｖａｒｉａｎ）（^１Ｈ共鳴周波数５９９．５９ＭＨｚ）を使用した。
リン酸緩衝液は以下のように調製した。ＮａＨ_２ＰＯ_４・２Ｈ_２Ｏを使用して約０．２ｍｏｌ／ＬＮａＨ_２ＰＯ_４溶液およびＮａ_２ＨＰＯ_４・１２Ｈ_２Ｏを使用して約０．２ｍｏｌ／Ｌ Ｎａ_２ＨＰＯ_４溶液を調製した後、両液を混合し、ｐＨメータを用いて約ｐＨ＝７．４に調整した。
内部標準溶液として、ＴＳＰを約１１ｍｍｏｌ／Ｌの濃度となるように重水中に溶解させた。
尿試料５００μＬをエッペンドルフに採取し、上記リン酸緩衝液２５０μＬを添加して約１０分間室温で放置した後、約１０℃、１３０００ｒｐｍで約１０分間遠心分離し、上澄みを約６００μＬ採取してＮＭＲ試料管に移した。さらにＮＭＲ試料管にＴＳＰ重水溶液を約６０μＬ添加した。
核磁気共鳴装置は、^１Ｈ ＮＭＲ測定が行えるよう^１Ｈ核の測定が行えるプローブをあらかじめセットし、２５℃に設定しておいた。上記のＮＭＲ試料管を分光計にセットし、温度が安定するまで約１０分放置した後、分解能、チューニング、９０°パルスの測定、観測中心を水シグナルに合わせる等、ハードウェア側の設定やパラメータを準備した。測定条件は以下のようにセットした。 ｓｅｑｆｉｌ（パルス系列）：ｔｎｎｏｅｓｙ，ｓｓｐｕｌ（ｓｔｅａｄｙ ｓｔａｔｅ ｐｕｌｓｅ）：ｎ（オフ），ｓｓ（プレスキャン）：８回，ｍｉｘ（混合時間）：１００ｍｓ，ｓｗ（観測幅）：８０００Ｈｚ，ｎｐ（複合ポイント数）：６５５３６ポイント，ｄ１（待ち時間）：４．９０４ｓｅｃ，ｓａｔｐｗｒ（照射パワー）：１０ｄＢ，ｓａｔｄｌｙ（照射時間）：１ ｓｅｃ，積算回数：６４回
測定データを保存した後、以下の条件でフーリエ変換を行った。
ポイント数：６５５３６ポイント，ウィンドウ関数：ｅｘｐｏｎｅｎｔｉａｌ ｗｉｎｄｏｗ ｆｕｎｃｔｉｏｎ １ｂ＝０．２Ｈｚ
位相調整、ＴＳＰのメチルシグナルを０ｐｐｍとして基準の設定等を行った。
ＡＣＤ／ＳｐｅｃＭａｎａｇｅｒ（ＡＣＤ Ｌａｂｓ，Ｃａｎａｄａ）を使用し、ベースライン補正後、ＰＡＧ（３．６８ｐｐｍ）、クレアチニン（４．０６ｐｐｍ）、馬尿酸（７．８３ｐｐｍ）のシグナル強度を求め、比を計算した。その結果を表２および３に示す。

すべてのＰＬｓｉｓ誘発性化合物について、非投与群と比較してＰＡＧ／馬尿酸比、ＰＡＧ／（ＰＡＧ＋馬尿酸）比が顕著に増大した（表２）。一方、ＰＬｓｉｓ非誘発性化合物投与群においては、高用量投与によっても非投与群との間に有意な差は認められなかった（表３）。クレアチニン量で校正した場合、ＰＡＧ量はＰＬｓｉｓ誘発性化合物の高用量投与により中用量投与よりむしろ減少する場合があるが（例えば、フルオキセチン参照）、ＰＡＧ／馬尿酸比、ＰＡＧ／（ＰＡＧ＋馬尿酸）比を指標とすると高用量投与の方がより高値を示し、ＰＬｓｉｓ発現の程度をより的確に反映することがわかる。高用量投与群では一般状態の悪化により摂餌量が減少し、クリアランス経路に流入するＰｈｅ量自体が減少しているため、ＰＡＧ量の変化を単独の指標とした場合、予測の確度が低下する可能性があるのに対し、ＰＡＧ／馬尿酸比を指標とした場合、Ｐｈｅ摂取量の変化に影響を受けず、またＰＡＧ／（ＰＡＧ＋馬尿酸）比を指標とした場合、（ＰＡＧ＋馬尿酸）量がＰｈｅ摂取量を反映するので、被験動物の摂餌状態に関係なく正確な判定が可能である。
また、ＰＡＧ／馬尿酸比、ＰＡＧ／（ＰＡＧ＋馬尿酸）比を指標とすると、クロルプロマジンについても高用量投与群では顕著な増加が認められ、この方法を用いれば、３日間投与でＰＬｓｉｓ誘発性の有無を迅速に判定することが可能であることがわかった。

（参考例２）
ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ誘発性化合物投与サルにおける病理組織学的検査および末梢血リンパ球検査
以下の２種の市販薬を試験化合物として、ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ誘発性の有無を病理組織学的検査および末梢血リンパ球検査により調べた。アミオダロンおよびペルヘキシリンはＳＩＧＭＡ社より購入した。
３〜５年齢のカニクイザル（シコンブレック、日本野生動物研究所、ナフォバニー）雄７例を入手し、約１週間馴化飼育した。その間に検疫を実施するとともに一般状態の観察及び体重測定を行った。その後対照群２例、各投薬群１群雄各１例からなる４群（計５例）に振り分けた。
動物はサル用金網底の金属製ケージに個別に収容し、各ケージは水洗式ラックに群間で無作為に配置した。動物室の環境条件は室温２０〜２６℃、相対湿度４０〜７０％、新鮮空気の換気回数８〜２５回／時間とし、照明時間は１２時間／日（点灯時間：午前７時〜午後７時）とした。動物にはγ線照射した固形飼料（Ｃｅｒｔｉｆｉｅｄ Ｐｒｉｍａｔｅ Ｄｉｅｔ ＃５０４８，ＰＭＩ Ｆｅｅｄｓ Ｉｎｃ．）を与え、水道水とともに自由に摂取させた。
各被検物質に分散媒／媒体を加えて撹拌し、高用量を調製した。高用量投与液を分散媒／溶媒で希釈して低用量投与液を調製した。各被検物質の用量は以下の通りに設定した。
アミオダロン：６０及び３００ｍｇ／ｋｇ／日
理由：ヒトでの臨床投与量の約１０倍及び５０倍とした。
ペルヘキシリン：６０ｍｇ／ｋｇ／日
理由：ヒトでの臨床量の１０倍とした。
対照群：０．５ｗ／ｖ％メチルセルロース溶液
投与液量５ｍＬ／ｋｇ／日を１日１回、７日間強制経口投与した。
投与終了後、すべての動物について肝臓、腎臓、心臓、脾臓、肺および腸間膜リンパ節、眼球、精巣及び脳を採取し、常法により光学顕微鏡で病理組織学的変化を調べた。また、投薬前期間、投与初日、投薬２及び６日に採血し、血液塗抹標本を作製し、空胞化リンパ球率の測定を実施した。
ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ誘発性化合物投与群における病理組織学的変化および空胞化リンパ球率の結果を表４に示す。アミオダロンの３００ｍｇ／ｋｇ及びペルヘキシリンの６０ｍｇ／ｋｇ群では空胞化リンパ球率の増加およびいずれかの標的器官における病理組織学的変化が認められた。アミオダロンの６０ｍｇ／ｋｇでは、ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓの誘発はみられなかった。対照群においては、ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓなどの脂質代謝異常症を示す病理組織像は観察されなかった。

ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ誘発による尿中ＰＡＧＮ／馬尿酸比の変動
実施例サルの投薬前期間（Ｐｒｅ）、投与初日（Ｄａｙ ０）、投薬２及び６日（Ｄａｙ ２，６）の約６時間絶食下の蓄尿を採取した。採尿後、１５００×ｇ、１０分間遠心し、上清１ｍＬ以上をマイクロチューブに分取後、超低温フリーザーにて測定まで凍結保存（−７０℃以下）した。
^１Ｈ ＮＭＲは以下のように実施した。試薬類は精製をせずに使用した。重水（Ｄ_２Ｏ）はＩＳＯＴＥＣ．ＩＮＣ（ＵＳＡ）より、ＮａＨ_２ＰＯ_４・２Ｈ_２Ｏ，Ｎａ_２ＨＰＯ_４・１２Ｈ_２Ｏは関東化学（東京）から購入した。Ｓｏｄｉｕｍ ３−（ｔｒｉｍｅｔｈｙｌｓｉｌｙｌ）−ｐｒｏｐｉｏｎａｔｅ−２，２，３，３，−ｄ_４（ＴＳＰ）はＩＳＯＴＥＣ．ＩＮＣ（ＵＳＡ）から購入した。ＮＭＲスペクトルの測定はＵｎｉｔｙ ＩＮＯＶＡ６００（Ｖａｒｉａｎ）（^１Ｈ共鳴周波数５９９．５９ＭＨｚ）を使用した。
リン酸緩衝液は以下のように調製した。ＮａＨ_２ＰＯ_４・２Ｈ_２ＯおよびＮａ_２ＨＰＯ_４・１２Ｈ_２Ｏを使用して、各々約０．２ｍｏｌ／Ｌ ＮａＨ_２ＰＯ_４溶液および約０．２ｍｏｌ／Ｌ Ｎａ_２ＨＰＯ_４溶液を調製した後、両液を混合し、ｐＨメータを用いて約ｐＨ７．４に調整した。
内部標準溶液として、ＴＳＰを１１ｍｍｏｌ／Ｌの濃度となるように重水中に溶解させた。
尿試料５００μＬをエッペンドルフチューブに採取し、上記リン酸緩衝液２５０μＬを添加して約１０分間室温で放置した後、約１０℃、１３０００ｒｐｍで約１０分間遠心分離し、上清を約６００μＬ採取してＮＭＲ試料管に移した。さらにＮＭＲ試料管にＴＳＰ重水溶液を約６０μＬ添加した。
核磁気共鳴装置は、^１Ｈ ＮＭＲ測定が行えるよう^１Ｈ核の測定が行えるプローブをあらかじめセットし、２５℃に設定した。上記のＮＭＲ試料管を分光計にセットし、温度が安定するまで約１０分放置した後、分解能、チューニング、９０°パルスの測定、観測中心を水シグナルに合わせる等、ハードウエア側の設定やパラメータを準備した。測定条件は以下のようにセットした。
Ｓｅｑｆｉｌ（パルス系列）：ｔｎｎｏｅｓｙ，ｓｓｐｕｌ（ｓｔｅａｄｙ ｓｔａｔｅ ｐｕｌｓｅ）：ｎ（オフ），ｓｓ（プレスキャン）：８回，ｍｉｘ（混合時間）：１００ｍｓｅｃ，ｓｗ（観測幅）：８０００Ｈｚ，ｎｐ（複合ポイント数）：６５５３６ポイント，ｄ１（待ち時間）：４．９０４ｓｅｃ，ｓａｔｐｗｒ（照射パワー）：１０ｄｂ，ｓａｔｄｌｙ（照射時間）：１ ｓｅｃ，積算回数：６４回
測定データを保存した後、以下の条件でフーリエ変換を行った。ポイント数：６５５３６ポイント，ウィンドウ関数：ｅｘｐｏｎｅｎｔｉａｌ ｗｉｎｄｏｗ ｆｕｎｃｔｉｏｎ １ｂ＝０．２Ｈｚ
位相調整、ＴＳＰのメチルシグナルを０ｐｐｍとして基準の設定等を行った。
ＡＣＤ／ＳｐｅｃＭａｎａｇｅｒ（ＡＣＤ Ｌａｂｓ，Ｃａｎａｄａ）を使用し、ベースライン補正後、ＰＡＧＮについては７．４２ｐｐｍ（ｔ，８．０Ｈｚ）、馬尿酸については７．５５ｐｐｍ（ｔ，８．０Ｈｚ）のシグナルの積分値から両者の比（ＰＡＧＮ／馬尿酸比）を計算した。その結果を表４に示す。
ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ誘発動物（アミオダロン；３００ｍｇ／ｋｇ，ペルヘキシリン；６０ｍｇ／ｋｇ投与動物）では、対照群と比較してＰＡＧＮ／馬尿酸比が増大した（表４）。一方、ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ非誘発動物（アミオダロン；６０ｍｇ／ｋｇ投与動物）では、対照群と比較してＰＡＧＮ／馬尿酸比に有意な差は認められなかった（表４）。
尚、ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ誘発動物では、対照群と比較して馬尿酸とＰＡＧＮの総排泄量が減少していた。これは、薬物投与により摂餌量が対照群に比べて顕著に減少したことによりＴｙｒ合成に利用されない余剰のＰｈｅ量自体が減少したためであると考えられた。しかしながら、ＰＡＧＮ量の減少率に比して馬尿酸量の減少率がきわめて顕著であったため、ＰＡＧＮ／馬尿酸比を指標とした場合には、ＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ誘発化合物を正しく判定することができた。この結果は、ＰＡＧもしくはＰＡＧＮの増加のみを指標とする従来のＰＬｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ予測方法に対する本発明の優位性を実証するものであるといえる。

（１）抗ＰＡＧＮ抗体、抗馬尿酸抗体の調製
ＰＡＧＮを米国特許第５，１００，８０７号明細書の実施例１の方法に従って調製する。馬尿酸はＳＩＧＭＡ社より購入する。同特許明細書の実施例２に記載の方法に準じてＰＡＧＮ−ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）コンジュゲートおよび馬尿酸−ＢＳＡコンジュゲートを作製する。得られたコンジュゲートを等量の完全フロイントアジュバント（ＦＣＡ）と混和した後、雌性ウサギ（日本白色種、体重２．７〜２．８ｋｇ）に皮内投与する。３週間間隔で追加免疫を行い、最終免疫の１週間後にネンブタール麻酔下、頚動脈より全血を採取し、室温で２．５時間保温後、２０００×ｇ（４０００ｒｐｍ）で１０分間遠心して抗血清を得る。血清に硫酸ナトリウムを少量ずつ添加して溶解させ後、遠心分離して沈殿を回収し、リン酸緩衝液（ｐＨ６．３）に溶解後、同緩衝液に対して４℃で５時間透析した後、透析外液を交換してさらに一夜透析する。上清を同緩衝液で平衡化したＤＥ５２−セルロースカラムのクロマトグラフィーに付し、ＩｇＧ画分を得る。各ＩｇＧを固相化した後、ＰＡＧＮまたは馬尿酸と常法により調製したＨＲＰ標識ＰＡＧＮ（馬尿酸）とを競合的に反応させてペルオキシダーゼ活性を測定し、両抗体とも交叉反応性を示さないことを確認する。
（２）ＰＡＧＮ、馬尿酸の検出
上記（１）で得られたウサギ抗ＰＡＧＮ ＩｇＧおよびウサギ抗馬尿酸ＩｇＧのＢＳＡ含有ＰＢＳ溶液、実施例４で採取した尿試料、並びに常法により調製したフルオレセイン標識ＰＡＧＮおよびピレン標識馬尿酸をチューブに加えて６０分間反応させた後、Ｆｕｌｌ−Ｒａｎｇｅ ＢＥＡＣＯＮ（登録商標）２０００を用いて、フルオレセインの蛍光を励起波長：４９０ｎｍ、蛍光波長：５２０ｎｍで、ピレンの蛍光を励起波長：３５０ｎｍ、蛍光波長：３９０ｎｍでそれぞれ測定する。予めＰＡＧＮおよび馬尿酸の標準溶液を用いて作成した検量線から尿試料中のＰＡＧＮおよび馬尿酸量をそれぞれ算出する。

ＰＬｓｉｓ誘発化合物投与による尿中馬尿酸およびＰＡＧ濃度のＬＣ−ＭＳ／ＭＳによる測定
実施例１において病理組織学的変化の認められたアミオダロン、イミプラミン、タモキシフェンおよびキナクリンを試験化合物として、高速液体クロマトグラフィー／３連四重極型質量分析計（ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ）を用いた定量法によりラット尿中馬尿酸およびＰＡＧ濃度を測定した。
５週齢のＣｒｊ：ＣＤ（ＳＤ）ＩＧＳラット（日本チャールズリバー株式会社、閉鎖環境下生産）雄１００例（２００４年１１月１６日；試験番号３４−３５１／ｓｕ）を入手し、約１週間馴化飼育した。その間に検疫を実施するとともに一般状態の観察及び体重測定を行った。異常の認められなかった動物を選択し、採尿用として１群雄各４例からなる５群に無作為に群分けした。
動物は金網底の金属製ケージに個別に収容し、各ケージはクリーンブース内に設置した水洗式ラックに群間で無作為に配置した。動物室の環境条件は室温２０〜２６℃、相対湿度４０〜７０％、新鮮空気の換気回数８〜２５回／時間とし、照明時間は１２時間／日（点灯時間：午前７時〜午後７時）とした。動物にはγ線照射した粉末飼料（ＣＲ−ＬＰＦ、オリエンタル酵母）を与え、水道水とともに自由に摂取させた。
各被検物質に分散媒／媒体を加えて撹拌し、投与液を調製した。各被検物質の用量は以下の通りに設定した。
アミオダロン：３００ｍｇ／ｋｇ／日
イミプラミン：１００ｍｇ／ｋｇ／日
タモキシフェン：１００ｍｇ／ｋｇ／日
キナクリン：６０ｍｇ／ｋｇ／日
対照群：０．５ｗ／ｖ％メチルセルロース溶液
投与液量１０ｍＬ／ｋｇ／日を１日１回、７日間強制経口投与により投与した。
投与終了後、すべての動物について約６時間の絶食、絶水下の蓄尿を氷冷採取した。
採尿後、１５００×ｇ、１０分間遠心し、上清を１ｍＬ以上採取してマイクロチューブで低温フリーザーにて測定まで凍結保存（−１５℃以下）した。
ＬＣ−ＭＳ／ＭＳによるラット尿中馬尿酸、ＰＡＧの定量分析は以下のようにして実施した。標準物質として使用した馬尿酸（Ｌｏｔ Ｎｏ．ＰＫＥ１８７６、含量９９．８％）およびＰＡＧ（Ｌｏｔ Ｎｏ．ＰＫＧ７５８３、含量９９．４％）は和光純薬より、馬尿酸−ｄ５（Ｌｏｔ Ｎｏ．Ｈ６３Ｐ３、ｄ５化率９９．３％）はＣＤＮ ｉｓｏｔｏｐｅｓより、ＰＡＧ−ｄ４（Ｌｏｔ Ｎｏ．Ｂ１８６０７−０６０−１７、ｄ４化率１００．０％）はインハウスで合成したものをそれぞれ入手した。アセトニトリル、蟻酸アンモニウム、蟻酸、酢酸アンモニウムおよびメタノールはいずれも和光純薬より入手した。
ＨＰＬＣシステムはＬＣ−１０ＡＤｖｐシステム（島津製作所）を、ＭＳ／ＭＳシステムはＡＰＩ３０００（ＡＢ／ＭＤＳ ＳＣＩＥＸ）を使用した。
尿試料またはＱＣ試料２０μＬに５０％アセトニトリルを２０μＬ、馬尿酸−ｄ５およびＰＡＧ−ｄ５の５０％アセトニトリル溶液（内部標準液，Ｉ．Ｓ．）を１０μＬおよび５０％アセトニトリル１ｍＬを添加し、５秒間攪拌した後、室温で１３０００ｒｐｍ、５分間遠心分離した。遠心上清２０μＬを採取し、ＨＰＬＣ移動相（（Ａ）：（Ｂ）＝９５：５、ｖ／ｖ）を１ｍＬ加え、１０秒間攪拌した試料溶液をＬＣ／ＭＳ／ＭＳ分析に供した。
また１０ｍｍｏｌ／Ｌ酢酸アンモニウム水溶液２０μＬに馬尿酸，ＰＡＧ希釈標準２０μＬおよび内部標準液１０μＬを加えて同様に処理した試料を標準検量線用試料とした。馬尿酸およびＰＡＧの標準検量線用試料は以下の終濃度となるように調製した。馬尿酸：５０００、４０００、２０００、１０００、５００、２００、１００及び５０μｇ／ｍＬ、ＰＡＧ濃度：１０００、５００、４００、２００、１００、５０、２０、１０及び５μｇ／ｍＬ。
ＱＣ試料は、標準検量線を用いてラットコントロール尿の内因性成分である馬尿酸及びＰＡＧ濃度を測定し、本試料に馬尿酸、ＰＡＧ希釈標準溶液を添加してＱＣ−ＨおよびＱＣ−Ｍを調製した。またＱＣ−Ｈを１０ｍｍｏｌ／Ｌ酢酸アンモニウム水溶液で２０倍に希釈し、ＱＣ−Ｌを調製した。
ＨＰＬＣによるクロマト分離には分離カラムとしてＬ−Ｃｏｌｕｍｎ ＯＤＳ（粒子径；５μｍ、内径；２．１ｍｍ，長さ；５０ｍｍ、化学物質検査機構）を用い、グラジエントモードで実施した。移動相（Ａ）には１０ｍｍｏｌ／Ｌ蟻酸アンモニウム／蟻酸（５００：１、ｖ／ｖ）を、移動相（Ｂ）にはアセトニトリル／蟻酸（５００：１、ｖ／ｖ）を用い、流速０．２ｍＬ／ｍｉｎ．で送液した。グラジエントプログラムは移動相（Ｂ）濃度を０分（分析開始時）５％から３分間で６０％、その後３．２分までに８０％まで直線的に上昇させた。その後５分まで８０％で送液し、５．１分後に５％まで低下させ、分析終了時間（１０分）まで同条件で送液させた。なお、スイッチングバルブを用い、分析時間３．０−４．５分の溶出液をＭＳ／ＭＳに導入させた。カラム温度は４０℃、サンプル注入量は１０μＬで分析を実施した。
ＭＳ／ＭＳ分析はイオン化モードとしてターボイオンスプレーを用い、陽イオンモードでのｓｅｌｅｃｔｅｄ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ（ＳＲＭ）によりイオンを検出した。イオンスプレーにはゼロエアーを用い、電圧は４．２ｋＶで実施した。イオンの衝突誘起分解には窒素を用いた。モニターイオンとしてプリカーサーイオン、フラグメントイオンをそれぞれ馬尿酸；１８０ Ｄａ→１０５ Ｄａ、ＰＡＧ；１９４ Ｄａ→９１ Ｄａ、馬尿酸ｄ−５；１８５ Ｄａ→１１０ Ｄａ、ＰＡＧ−ｄ４；１９８ Ｄａ→９３Ｄａに設定した。
馬尿酸およびＰＡＧとそれぞれのＩ．Ｓ．とのピーク面積比を用い、標準検量線の回帰式（１／濃度の重み付け）から各試料の馬尿酸およびＰＡＧの濃度を算出した。その結果を表５に示す。

コントロール群と比較してアミオダロン、イミプラミン、タモキシフェン、キナクリン投与群のＰＡＧ／馬尿酸濃度比は増大した（表５）。また馬尿酸およびＰＡＧの尿中濃度の増減についても正確に評価することが出来た。本分析法は１分析あたりの時間が１０分と短時間での分析が可能であり、かつ尿中の馬尿酸、ＰＡＧの絶対濃度が評価できるため、Ｐｌｓｉｓ／ｓｔｅａｔｏｓｉｓ予測法における、ＰＬｓｉｓ誘発性の有無を迅速に判定することが可能であることがわかった。

本発明の予測方法は、薬物による脂質代謝異常症の高確度且つ高感度な予測が可能であり、また、長期間投与でなければ病理組織学的変化が顕在化しない化合物についても短期間投与で陽性判定が可能であることから、開発初期段階で迅速に毒性化合物を峻別し、リード化合物の選択を効率化するスクリーニング手段として有用である。
さらに、本発明の予測・診断方法は、尿や血漿などの末梢体液を試料とすれば非侵襲的な診断が可能となることから、脂質代謝異常症およびその関連疾患の臨床診断においてきわめて有用である。
本出願は、日本で出願された特願２００３−４３４１５１（出願日：２００３年１２月２６日）および特願２００４−１６８８４９（出願日：２００４年６月７日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (10)

1. 化合物による脂質代謝異常症の予測方法であって、
   （１）化合物を投与された哺乳動物より採取した試料または化合物に曝露された哺乳動物細胞もしくは組織培養物中の(a)フェニルアセチルグリシンおよび／もしくはフェニルアセチルグルタミン、またはフェニルアラニンからフェニルアセチルグリシンもしくはフェニルアセチルグルタミンに至る代謝経路における任意の代謝中間体と、(b)馬尿酸またはフェニルアラニンから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体とを検出し、
   （２）両者の量比を指標として該化合物の脂質代謝異常症誘発性を予測することを特徴とする方法。
2. フェニルアセチルグリシンおよび／もしくはフェニルアセチルグルタミンと馬尿酸との量比を指標とする請求の範囲１記載の方法。
3. 試料が尿、血清または血漿である請求の範囲１記載の方法。
4. 細胞もしくは組織が肝臓、腎臓または肺由来のもの、あるいはリンパ球である請求の範囲１記載の方法。
5. 脂質代謝異常症がリン脂質症、脂肪症およびスフィンゴミエリン蓄積症からなる群より選択される１以上の病態として発現するものである請求の範囲１記載の方法。
6. 哺乳動物における脂質代謝異常症またはその関連疾患の検出方法であって、
   （１）哺乳動物より採取した試料中の(a)フェニルアセチルグリシンおよび／もしくはフェニルアセチルグルタミン、またはフェニルアラニンからフェニルアセチルグリシンもしくはフェニルアセチルグルタミンに至る代謝経路における任意の代謝中間体と、(b)馬尿酸またはフェニルアラニンから馬尿酸に至る代謝経路における任意の代謝中間体とを検出し、
   （２）両者の量比を指標として検出を行うことを特徴とする方法。
7. フェニルアセチルグリシンおよび／もしくはフェニルアセチルグルタミンと馬尿酸との量比を指標とする請求の範囲６記載の方法。
8. 試料が尿、血清または血漿である請求の範囲６記載の方法。
9. 脂質代謝異常症が遺伝性リピドーシス、薬物起因性リピドーシスまたは脂肪酸代謝ホメオスタシス異常である請求の範囲６記載の方法。
10. 疾患が高脂血症、粥状硬化症、動脈硬化、心筋梗塞、脂肪肝、肝炎、肝硬変、糖尿病、痴呆症、アルツハイマー病、心臓病および慢性疲労症候群からなる群より選択される請求の範囲６記載の方法。

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