JP4257568B2 - 生体成分の測定方法およびそれに用いる試薬組成物 - Google Patents
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Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いた、ホルムアルデヒドまたは反応中間体としてホルムアルデヒドを生成する化合物の、簡便で高感度な測定方法、およびそのための試薬キットに関する。さらには、中間生成物としてホルムアルデヒドを経由する、クレアチニン、クレアチンおよびホモシステイン等の生体成分を測定する方法、およびそのための試薬キットに関する。本発明はまた、ホモシステインおよび他の物質を基質とする転移酵素を用いたホモシステインの測定方法およびそのための試薬キットに関する。
【０００２】
【従来の技術】
ホルムアルデヒドは、蛋白質、膜、ＤＮＡ等と反応性に富む細胞毒であり、吸引、内服することで種々の障害を引き起こすことが知られている。近年、大気中、工業廃液、食品等に含有されるホルムアルデヒドが問題視されており、これを簡便かつ正確に測定する方法が要求されている。
【０００３】
ホルムアルデヒドの測定法として、Ｈａｎｚ試薬、ＣＴＡ試薬（J.Biol.Chem.231,p813 (1958)）、Ｐｕｒｐａｌｄ試薬（Anal.Biochem.234 (1),p50(1996)）などを用いて比色分析する方法、フェニルヒドラジン、フェリシアン化カリウム、クロロホルム、メタノールを組み合わせた試薬を用いる分析法が知られている。しかしこれらの方法は操作が煩雑で測定に長時間要する、或いは有害試薬を使用するなどの問題点があり、その解決手段として、グルタチオン非依存性のホルムアルデヒド脱水素酵素（EC 2.1.1.46）を用いる酵素法が開示されている（特開平５−４２０００号公報、特開２０００−２２５０００号公報）。これら酵素法は、該酵素反応により、ホルムアルデヒドから蟻酸を生成する際に、同時に生成される還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、若しくはこれより導いた発色色素を分析するが、測定感度は還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドや色素の分子吸光係数に依存するため、微量のホルムアルデヒドの測定には必ずしも十分とは言えない。
【０００４】
一方、微量物質の酵素による高感度定量法として、測定対象とする基質や、基質に作用する酵素の補酵素をサイクリング反応により増幅、定量する方法が知られている（検査と技術、vol.27、No8、1999年7月）。サイクリング法の１つとして、脱水素酵素と２種類の補酵素（チオＮＡＤ類とＮＡＤＨ類、またはＮＡＤ類とチオＮＡＤＨ類）を用いて、可逆反応を利用した酵素サイクリング法による測定法が報告されている（特公平６−６１２７８号公報、特公平６−７３４７７号公報、特公平６−７３４７８号公報、特公平６−７３４７９号公報、特許第３０２３７００号公報、特許第３０３４９６９号公報、特許第３０３４９７９号公報、特許第３０３４９８４号公報、特許第３０３４９８６号公報、特許第３０３４９８７号公報、特許第３０３４９８８号公報、特開平８−１０３２９８号公報）。
【０００５】
特開平４−３４１１９８号公報にはアルコールデヒドロゲナーゼおよびチオＮＡＤ類とＮＡＤＨ類、またはＮＡＤ類とチオＮＡＤＨ類を用いるアルコール類またはアルデヒド類の高感度定量法が開示されている。ここで用いられるアルコールデヒドロゲナーゼの代表的な酵素として下記の反応を触媒するＥＣ１．１．１．１の酵素が挙げられている。
アルコール ＋ ＮＡＤ（Ｐ）+ ⇔ アルデヒド ＋ ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ
【０００６】
しかしながら、D.Schomburg,D.Stephan(Eds.) Enzyme Handbook 9（Springer-Verlag）には、本酵素は、基質としてメタノールを酸化するのみならず、その生成物であるホルムアルデヒドをも酸化することが記載されている。ホルムアルデヒドは水溶液中では水和にして存在し、アルコールの状態で存在するので、アルコールデヒドロデナーゼの被酸化基質となっており、酢酸まで酸化されるため、この酵素を用いてのホルムアルデヒドの高感度測定は成り立たない。
【０００７】
またグルタチオン非依存性のホルムアルデヒド脱水素酵素等アルデヒド脱水素酵素は非可逆的にホルムアルデヒドを酸化するので同様にサイクリング反応による高感度測定には適用できない。
【０００８】
一方、分析科学の分野において、ホルムアルデヒドを中間生成物として経由して測定できる化合物があることが知られている。中でも有用なものとして、臨床検査におけるクレチニン、クレアチンおよびホモシステイン等の測定が挙げられる。
【０００９】
クレアチニンは臨床検査において腎機能の主要な診断マーカーであり、クレアチンの測定は、筋ジストロフィー症、甲状腺機能亢進症などの病態解析に用いられる。これらの測定法としてはＪａｆｆｅ法が主流であるが特異性に関する問題点の指摘があった。また、最近は特異性の高いクレアチニンアミドハイドロラ−ゼ、クレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオコシダーゼ、ペルオキシダーゼを用いた酵素法も増加しているが、生体内に存在する還元物質の影響を受ける可能性の指摘があった。また、酵素法においてペルオキシダーゼの代わりにグルタチオン非依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いてサルコシンオキシダーゼ反応により生成するホルムアルデヒドを上記方法にて分析する方法も報告されている（Clin. Clim. Acta, 122,p181(1982), Ann.Clin.Biochem,29,p523(1992)）が、上述のように、微量の測定には必ずしも十分ではなかった。
【００１０】
ホモシステインは、生体内では必須アミノ酸であるメチオニンが代謝を受けて生成されるＳＨ基を有するアミノ酸であり、通常は低濃度で生体内に存在するが、血中ホモシステイン濃度の上昇をもたらすこれら代謝酵素の遺伝疾患であるホモシスチン尿症が動脈硬化症と関連のあることが知られており、近年では正常値より若干高いレベルのホモシステイン濃度においても脳梗塞、心筋梗塞、深部静脈血管症と関連付けられることが明らかにされ、現在では血中ホモシステイン濃度がこれら疾患の独立した危険因子として注目されている。ホモシステインの測定法はこれまで、ＨＰＬＣを用いた方法が標準法として用いられており（Clin.Chem.,39,p1590(1993)）、種々の改良法も報告されているが、ＨＰＬＣを用いる方法では精巧な分析装置を必要とする上、多量の検体を扱うには不適であるという欠点がある。ＨＰＬＣによる分離を要しない方法として、ホモシステインをアデノシン、フルオレセイン標識Ｓ−アデノシルホモシステイン存在下でＳ−アデノシルホモシステイン加水分解酵素と反応させ、反応系に存在するＳ−アデノシルホモシステインを、抗Ｓ−アデノシルホモシステイン抗体を用いて蛍光偏向イムノアッセイを行なうことでホモシステインを測定する方法（特表平８−５０６４７８号公報）などが知られている。また最近酵素法として、ホモシステインをホモシステインデスルフラーゼで反応させ、生成するアンモニア、α−ケト酸または硫化水素を測定する方法（特表２０００−５０２２６２号公報）、ホモシステインに対して分解作用を有するＬ−メチオニンγ−リアーゼやｏ−アセチルホモセリン−リアーゼを用いて、チオール化合物の存在下で生成する硫化水素またはチオール化合物置換ホモシステインを測定する方法（特開２０００−１６６５９７号公報）、ホモシステインのγ位メルカプト基と置換可能な求核試薬の存在下、γ−置換−α−アミノ酪酸合成酵素によりホモシステインから生成する、γ−置換−α−アミノ酪酸または硫化水素を定量する方法（特開２０００−２２８９９８号公報）なども報告されている。
【００１１】
しかし、イムノアッセイ法でも一般の生化学検査に比べて時間、費用を要することが知られており、酵素反応を用いた分析法も、一般に血中ホモシステイン量が正常値で１０μＭ程度若しくはそれ以下と微量であるため測定感度が不足していたり、あるいは使用する酵素の基質特異性により、検体中のホモシステイン以外の物質に作用するなどの点で、正確なホモシステイン量の測定には十分であるとは言えない。
【００１２】
服部と川村（特開２００１−１７１９８）は、ホモシステインと他の物質とを基質とする転移酵素を、当該他の基質とともにホモシステインを含む試料に作用させて、生成する化合物を測定することにより、ホモシステインをより高感度かつ高精度に測定できることを開示している。特に、転移酵素としてベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、および他の基質としてベタインを使用し、生成するジメチルグリシンを、ジメチルグリシンオキシダーゼを用いてさらにサルコシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素にまで分解し、これらの化合物のいずれかを測定することにより、ホモシステインを高感度かつ高精度に測定できることが記載されている。しかしながら、生体試料において、ホモシステインの多くは、ジスルフィド結合により蛋白質やチオール基を有する他のアミノ酸と結合した状態で存在するため、総ホモシステインの測定は還元条件下で行う必要があるが、還元条件下で十分に安定なジメチルグリシンオキシダーゼはこれまでに報告されておらず、したがって、かかる条件下では試薬性能の低下を引き起こす可能性があった。
【００１３】
一方、酵素サイクリング法を利用したホモシステイン測定法として、シスタチオニンβ−シンターゼとシスタチオニンβ−リアーゼにより生成するピルビン酸、アンモニアを測定する方法（ＵＳ６１７４６９６）、ホモシステインデスルフラーゼと２−ケト酪酸脱水素酵素をもちいて生成、または消費されるＮＡＤ類またはチオＮＡＤ類を分析する方法（特開２００１−１６１３９９、特開２００１−１４９０９２）などが知られているが、生体内でのホモシステイン量を考慮すると更に高感度で測定できる方法が望ましい。
【００１４】
【発明が解決しようとする課題】
したがって、本発明の目的は、ホルムアルデヒド、または反応中間体としてホルムアルデヒドが生成する化合物の高感度且つ簡便な測定手段を提供することである。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記事情に鑑み、酵素サイクリング法を用いたホルムアルデヒドの高感度測定法の確立を目標とした。そこでまず、当該方法に使用しうる酵素として、ホルムアルデヒドに可逆的に作用するグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（EC 1.2.1.1）に着目し、鋭意研究を重ねた結果、２種類の異なる酸化還元物質を補酵素として利用することが出来、かつ両者に対する反応性のバランスがサイクリング反応の進行を可能ならしめるものである、新規なグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素をスクリーニングすることに成功した。さらにこの酵素を、グルタチオン、酸化型の補酵素および還元型の他の補酵素とともに試料に作用させ、該酵素反応よるいずれかの補酵素量の変化を測定することにより、ホルムアルデヒド、ならびに反応中間体としてホルムアルデヒドを生成する化合物、例えばクレアチニン、クレアチン、ホモシステイン、メタノール、尿酸を測定できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
一方で、本発明者らは、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素とジメチルグリシンオキシダーゼを用いる測定系における使用に適した特性を有するジメチルグリシンオキシダーゼを鋭意探索した結果、チオール化合物に対して耐性であり、かつ従来の酵素に比べてジメチルグリシンに対するＫｍ値の小さい、新規なジメチルグリシンオキシダーゼを単離精製することに成功した。さらに、本酵素を上記測定系に適用したところ、ホモシステインをさらに高感度かつ高精度に測定できることを確認した。
【００１６】
即ち、本発明は以下のような構成からなる。
（１）試料に、アルコールオキシダーゼを作用させ、該酵素反応により生成したホルムアルデヒドに、グルタチオン及びグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を作用させ、該酵素反応より生成した化合物を分析することを特徴とするメタノールの測定方法。
（２）試料に、ウリカーゼを作用させ、該酵素反応により生成した過酸化水素を、さらにメタノールの存在下でカタラーゼと作用させることにより生成したホルムアルデヒドに、グルタチオン及びグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を作用させ、該酵素反応より生成した化合物を分析することを特徴とする尿酸の測定方法。
（３）緩衝液、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素およびアルコールオキシダーゼを少なくとも含有してなることを特徴とするメタノール測定用試薬組成物。
（４）緩衝液、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素およびウリカーゼ、カタラーゼを少なくとも含有してなることを特徴とする尿酸測定用試薬組成物。
【００１７】
【発明の実施の形態】
本発明のホルムアルデヒドの測定方法は、チオＮＡＤ類もしくはチオＮＡＤＰ類、およびＮＡＤ類もしくはＮＡＤＰ類の２種類の補酵素を利用でき、且つＮＡＤに対する反応性に対するチオＮＡＤに対する反応性の比が従来公知のものに比べて高い新規グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を、グルタチオンおよび上記いずれかの酸化型補酵素とともに試料に作用させ、生成もしくは消費される化合物の量を測定することを特徴とする。
【００１８】
本発明において使用されるグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（EC 1.2.1.1）は、正確には、酸化型補酵素の存在下、グルタチオンとホルムアルデヒドより非酵素的に生成するＳ−ヒドロキシメチルグルタチオンを基質として、Ｓ−ホルミルグルタチオンと還元型補酵素の生成を可逆的に触媒する酵素である。
【００１９】
本発明におけるグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、補酵素として、チオＮＡＤ類もしくはチオＮＡＤＰ類、およびＮＡＤ類もしくはＮＡＤＰ類を利用することができる。ＮＡＤ類としては、例えば、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、アセチルピリジンアデニンジヌクレオチド、アセチルピリジンアデニンヒポキサンチンジヌクレオチド、ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドなどが、ＮＡＤＰ類としては、例えば、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、アセチルピリジンアデニンジヌクレオチドリン酸、アセチルピリジンアデニンヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸、ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸などが例示される。また、チオＮＡＤ類としては、例えば、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、チオニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドなどが、チオＮＡＤＰ類としては、例えば、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、チオニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸などが具体例として挙げられる。
【００２０】
好ましい実施態様においては、本発明のホルムアルデヒドの測定方法は、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素、チオＮＡＤ類およびチオＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの化合物、および還元型ＮＡＤ類および還元型ＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物を試料に作用させて、サイクリング反応を行わせしめ、該反応より変化した化合物の量を分析することを特徴とする。
【００２１】
別の好ましい実施態様においては、本発明のホルムアルデヒドの測定方法は、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素、還元型チオＮＡＤ類および還元型チオＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物、およびＮＡＤ類とＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物を試料に作用させて、サイクリング反応を行わせしめ、該反応より変化した化合物の量を分析することを特徴とする。
【００２２】
該サイクリング反応では、酸化型補酵素から還元型補酵素、若しくは還元型補酵素から酸化型補酵素の生成が反応時間に比例して、基質の量に対して増幅して生成されることからから、補酵素がＮＡＤ類、ＮＡＤＰ類の場合は３４０ｎｍ付近の吸光度を、チオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類の場合は４００ｎｍ付近の吸光度を測定することで、ホルムアルデヒドを高感度に定量することができる。該サイクリング反応に用いるグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素としては、ホルムアルデヒドを分解してサイクリング系外に放出するような夾雑酵素、例えばＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼを含まないか測定値に影響を与えない程度に含量が低いことが望ましい。またＮＡＤ（Ｐ）分解酵素についても全く含まないか測定値に影響を与えない程度に含量が低いことが望ましい。
【００２３】
該サイクリング反応を効率的に行わせしめるためには、本発明で使用するグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、チオＮＡＤ類もしくはチオＮＡＤＰ類に対して十分な反応性を有する必要がある。具体的には、ＮＡＤに対する反応性に対してのチオＮＡＤに対する反応性の比が３０％以上であり、好ましくは６０％以上である。さらに、酸化型補酵素としてチオＮＡＤ（Ｐ）類を用いる場合、逆反応において、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、正反応により生成する還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類に対する反応性に対して、添加される還元型ＮＡＤ（Ｐ）類に対する反応性が十分に高いものである。一方、酸化型補酵素としてＮＡＤ（Ｐ）類を用いる場合、逆反応において、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、正反応により生成する還元型ＮＡＤ（Ｐ）類に対する反応性に対して、添加される還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類に対する反応性が十分に高いものである。グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は高等動物から微生物まで広く存在することが知られており、チオＮＡＤに対して比較的高い作用性を有する該酵素としてはヒト肝臓由来のものが報告されているが（Biochem. J., 177, 869-878 (1979)）、高等動物のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は通常、微生物由来の酵素と比べて比活性が低く、また、該酵素を用いてサイクリング反応を行うことができたという報告は未だなされていない。
【００２４】
従って、本発明は、上記のいずれかの条件を具備し、サイクリング反応を触媒することができる、新規グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を提供する。好ましくは、当該酵素は、さらに下記の理化学的性質を有する。
(a) 作用：ＮＡＤ類、ＮＡＤＰ類、チオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの補酵素、還元型グルタチオンの存在下にホルムアルデヒドに作用して、Ｓ−ホルミルグルタチオン、還元型補酵素を生成する。
(b) 至適ｐＨ：約７．５〜約８．５
(c) ｐＨ安定性：約６．０〜約９．０（２５℃で２４時間処理した後の残存活性が８０％以上のｐＨ範囲）
(d) 熱安定性：約４０℃以下（ｐＨ７．５で３０分間処理した後の残存活性が９０％以上の温度範囲）
【００２５】
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、サイクリング反応を触媒するのに必要な上記の条件を具備する限り、その由来は特に制限されないが、好ましくは微生物由来であり、より好ましくはメタノール資化性酵母由来、いっそう好ましくはHansenula属酵母由来、就中Hansenula nonfarmentans IFO1473株由来のものが挙げられる。IFO1473株は、（財）発酵研究所（〒532-8686，日本国大阪市淀川区十三本町2-17-85）より入手可能である。
【００２６】
また、本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、ランダムにもしくは部位特異的に変異を誘発することにより、サイクリング反応を触媒するのに必要な、２種類の補酵素に対する反応性のバランスを保持する範囲で、比活性や安定性を向上させるなどの酵素特性の改良をもたらすように遺伝的に改変されたものであってもよい。
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、該酵素を産生する細胞または組織の培養物を原料として単離精製する方法、あるいは当該酵素蛋白質をコードする遺伝子を常法によって単離し、遺伝子組換え技術を用いて適当な宿主中で発現させる方法によって取得することができる。前者の好ましい一実施態様として、以下の方法が例示される。
【００２７】
まず、上記のいずれかのグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素生産菌、例えば、Hansenula nonfarmentans IFO1473株などを栄養培地中で培養する。使用する栄養培地としては、使用菌株が資化しうる炭素源、窒素源、無機物、その他必要な栄養素を適量含有するものであれば、合成培地、天然培地のいずれも使用できる。炭素源としては、例えばリンゴ酸、コハク酸等が使用される。窒素源としては、例えばペプトン類、肉エキス、酵母エキス等の窒素含有天然物や、塩化アンモニウム、クエン酸アンモニウム等の無機窒素含有化合物が使用される。無機物としては、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム、硫酸マグネシウム等が使用される。
【００２８】
培養は通常、振盪培養あるいは通気撹拌培養により行う。培養温度は約２０〜約４０℃、好ましくは約２５〜約３７℃、培養ｐＨは約５〜約９の範囲で、好ましくは約６〜約８に制御するのが良い。使用する菌株が生育し得る限り、これら以外の条件下でも実施できる。培養期間は通常、約１〜約７日であり、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は通常、菌体内に生産蓄積される。
【００２９】
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の精製は、一般に使用される精製法を用いて行うことができる。例えば、菌体を回収後、超音波破砕、ガラスビーズを用いる機械的な破砕、フレンチプレス、界面活性化剤による溶解などにより、菌体内画分を抽出することができる。得られた抽出液を、硫安やぼう硝などによる塩析法、塩化マグネシウムや塩化カルシウムなどによる金属凝集法、プロタミンやポリエチレンイミンなどを用いた凝集法、さらにはＤＥＡＥ（ジエチルアミノエチル）−セファロース、ＣＭ（カルボキシメチル）−セファロースなどによるイオン交換クロマト法などに付すことにより、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を精製することができる。
【００３０】
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素によるサイクリング反応を用いたホルムアルデヒドの測定方法について、酸化型補酵素としてチオＮＡＤ（Ｐ）類化合物を用いる場合を例にとって詳述する。還元型グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素、酸化型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物および還元型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物を試料に接触させると、試料中に含まれるホルムアルデヒド、還元型グルタチオンおよび酸化型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物からＳ−ホルミルグルタチオンと還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物が生成する。次いで、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、過剰に存在する還元型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物を補酵素として利用し、生成されたＳ−ホルミルグルタチオンを再びホルムアルデヒドとグルタチオンに戻す。以下、酸化型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物を補酵素とする正反応と、還元型ＮＡＤ（Ｐ）類を補酵素とする逆反応とが繰り返され、結果として１分子のホルムアルデヒドに対して多数分子の還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物が生成される。一方で、還元型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物は反応サイクルの進行に伴って消費される。したがって、還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物量の増加または還元型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物量の減少を、上記のように吸光度を指標にしてモニタリングすることにより、低濃度のホルムアルデヒドも感度よく検出することができる。
【００３１】
また、上記測定系において、ＮＡＤ（Ｐ）類を補酵素として利用し得るがチオＮＡＤ（Ｐ）類を補酵素として実質的に利用できない他の酵素と当該酵素の基質をさらに添加することにより、酸化型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物を還元型に再生することができる。この場合、ホルムアルデヒドの測定は、還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物の増加を指標にして行われる。このような測定系に使用される他の酵素およびその基質の組み合わせとしては、ＮＡＤ類を利用し得るものとして、例えば、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.37）（例えば、ブタやウシの心筋由来）とＬ−リンゴ酸、グリセロール−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.8）（例えば、ウサギ筋肉由来）とＬ−グリセロール−３−リン酸、グリセロアルデヒドリン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.12）（例えば、ウサギ骨格筋もしくは肝、酵母または大腸菌由来）とＤ−グリセロアルデヒドリン酸およびリン酸、グルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.49）（例えば、Leuconostoc細菌由来）とグルコース−６−リン酸、グルコースデヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.47）（例えば、Bacillus細菌、Pseudomonas細菌由来）とβ−Ｄ−グルコース、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.4.1.3）（例えば、ウシ肝由来）とＬ−グルタミン酸等が、ＮＡＤＰ類を利用し得るものとして、例えば、グリオキシル酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.2.1.17）（例えば、Pseudomonas oxalaticus由来）とCoAおよびグリオキシル酸、ホスホグルコン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.44）（例えば、ラット肝、ビール酵母または大腸菌由来）と６−ホスホ−Ｄ−グルコン酸、グリセロアルデヒドリン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.13）（例えば、植物葉緑体由来）とＤ−グリセロアルデヒド−３−リン酸およびリン酸、グルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.49）（例えば、酵母またはLeuconostoc細菌由来）とグルコース−６−リン酸、グルコースデヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.47）（例えば、Bacillus細菌、Pseudomonas細菌由来）とβ−Ｄ−グルコース、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.4.1.3）（例えば、ウシ肝由来）とＬ−グルタミン酸等が挙げられる。
【００３２】
本発明のグルタチオンホルムアルデヒド脱水素酵素を用いたサイクリング法によれば、試料中の濃度が１μｍｏｌ／Ｌ以下の微量のホルムアルデヒドの検出が可能となる。
【００３３】
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いたホルムアルデヒドの測定は、サイクリング反応を介さずに、以下のようにして行うこともできる。
【００３４】
即ち、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素およびチオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類、ＮＡＤ類およびＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの酸化型補酵素を試料に接触させ、生成されるＳ−ホルミルグルタチオンを、紫外部における吸光度を指標として測定することにより、ホルムアルデヒドを測定することができる。あるいは、さらにＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ（EC 3.1.1.12）を作用させて生成するギ酸を、更にギ酸脱水素酵素（EC1.2.1.2；EC 1.2.1.43）を用いて二酸化炭素に分解し、生成する還元型補酵素を測定することによっても、ホルムアルデヒドの測定が可能である。
【００３５】
Ｓ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼは、動物臓器やメタノール資化性酵母、細菌などに存在することが知られており、これら給源より採取して使用することができる。また、ギ酸脱水素酵素は、植物種子、メタノール資化性酵母、細菌などに存在する酵素でこれら給源より採取して使用することができる。市販の酵素（例えば、シグマ製FORMATE DEHYDROGENASE等）を使用してもよい。
【００３６】
上記の一連の酵素反応により生成される還元型補酵素（ＮＡＤＨ類またはＮＡＤＰＨ類）は、紫外部での吸光度、或いは蛍光を測定することにより分析することができる。また、ジアホラーゼやメチルフェナジウムメチルスルフェートのような電子伝達体の存在下でテトラゾリウム塩を還元する際に生成するホルマザン色素を測定することによっても、還元型補酵素を測定することもできる。
【００３７】
本発明のホルムアルデヒドの測定方法は、多段階測定の反応中間体としてホルムアルデヒドを生成する種々の生体成分の測定の最終工程としても、好ましく使用され得る。
【００３８】
例えば、クレアチニンまたはクレアチンの測定は、クレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオキシダーゼおよび必要に応じてクレアチニンアミドハイドロラーゼを試料に作用させて、クレアチニンまたはクレアチンをグリシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素に分解させ、生成する過酸化水素を発色基質等を用いて測定することにより行われている。そこで、過酸化水素の定量用試薬の代わりに、本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いてホルムアルデヒドを測定することにより、クレアチニンまたはクレアチンを測定することができる。従って、本発明は、クレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオキシダーゼおよび必要に応じてクレアチニンアミドハイドロラーゼを試料に接触させてホルムアルデヒドを生成させ、さらに、本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素、グルタチオン、およびチオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類、ＮＡＤ類およびＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの酸化型補酵素、および必要に応じてさらに該酸化型補酵素とは異なる種類の還元型補酵素を接触させて、生成もしくは消費される化合物を測定することを含む、クレアチニンまたはクレアチンの測定方法を提供する。
【００３９】
使用するクレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオキシダーゼおよびクレアチニンアミドハイドロラーゼは特に限定されるものではなく、これらの酵素を生産する微生物などから公知の手法を用いて採取できる他、各種市販の酵素を用いることもできる。例えば、クレアチンアミジノハイドロラーゼとしては、バチルス属、コリネバクテリウム属、ミクロコッカス属、アクチノバチルス属、アルカリゲネス属に属する細菌等由来のものが、クレアチニンアミドハイドロラーゼとしては、シュードモナス属、コリネバクテリウム属、ミクロコッカス属、ペニシリウム属に属する細菌等由来のものが、サルコシンオキシダーゼとしては、各種動物や、アルスロバクター属、ペニシリウム属、バチルス属に属する細菌等由来のものが挙げられる。
【００４０】
また、ホモシステインの測定は、ベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素及びジメチルグリシンオキシダーゼを試料に作用させて、ホモシステインをサルコシン、過酸化水素およびホルムアルデヒドに分解し、生成する過酸化水素を発色基質などを用いて測定することにより行うことができる。そこで、上記と同様に、過酸化水素定量用試薬のかわりに、本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いてホルムアルデヒドを測定することにより、ホモシステインを測定することができる。
【００４１】
本発明において使用されるベタイン−ホモシステインメチル転移酵素（EC 2.1.1.5）は、ベタインをもう一方の基質として、ホモシステインに作用し、ジメチルグリシンとメチオニンを生成する酵素である。例えば、哺乳動物やシュードモナス（Pseudomonas）属、アスペルギルス（Aspergillus）属などの微生物から採取することが可能である。本酵素のもう一方の基質であるベタインは、塩酸塩の形で安価に市販されている。
【００４２】
ジメチルグリシンオキシダーゼは、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素により生成したジメチルグリシンに作用して、サルコシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素に分解する酵素であり、例えばシリンドロカーポン（Cylindrocarpon）属、アクロモバクター（Achromobacter）属、アースロバクター（Arthrobacter）属などの微生物から採取することができる。
【００４３】
また、ジメチルグリシンオキシダーゼにより生成されるサルコシンにサルコシンオキシダーゼを作用させれば、２倍量のホルムアルデヒドが生成するので検出感度を増加させることができる。サルコシンオキシダーゼとしてはクレアチニンまたはクレアチンの測定方法について上記した通りのものを使用することができる。
【００４４】
反応中間体としてホルムアルデヒドを生成する他の測定対象として、例えば、メタノール、尿酸などが例示される（Clin. Chem., 33/12, 2204-2208 (1987), Clin. Biochem., 27/2, 93-97 (1994)）。即ち、メタノールは、アルコールオキシダーゼ（EC 1.1.3.13）によりホルムアルデヒドと過酸化水素を生成する。また、尿酸は、ウリカーゼ（EC 1.7.3.3）の反応により生成される過酸化水素を、メタノールの存在下でカタラーゼ（EC 1.11.1.6）と作用させることでホルムアルデヒドを生成するので、これを上記測定方法により分析することができる。
【００４５】
本発明はまた、上記のホルムアルデヒドの測定方法に使用するための試薬キットを提供する。本発明におけるホルムアルデヒド測定用試薬キットは、緩衝液、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素および該酵素反応により生成する化合物を分析するための試薬を少なくとも含有してなる。当該試薬キットは、ＮＡＤ類、ＮＡＤＰ類、チオＮＡＤ類およびチオＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの酸化型補酵素をさらに含有する事が好ましい。
【００４６】
グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の反応により生成する化合物を分析するための試薬としては、Ｓ−ホルミルグルタチオンを分析するための試薬として、Ｓ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ、ギ酸脱水素酵素および生成する還元型補酵素を分析するための試薬が挙げられる。Ｓ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ、ギ酸脱水素酵素および生成する還元型補酵素を分析するための試薬は、それぞれ上述のものが好ましく使用され得る。なお、Ｓ−ホルミルグルタチオンは、反応液の紫外部での吸光度を分析することにより直接測定することができるので、この場合は上記の試薬に代えて、吸光度測定に必要な試薬もしくは器具を含むこともできる。
【００４７】
本発明の試薬キットにおいて使用される緩衝液としては、トリス塩酸緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、ＧＯＯＤ緩衝液などが挙げられる。トリス塩酸緩衝液、リン酸緩衝液は濃度、温度によりｐＨの変動を受けやすいが、安価という利点がある。一方、ＧＯＯＤ緩衝液は具体的にはＭＥＳ、Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ、ＡＤＡ、ＰＩＰＥＳ、ＡＣＥＳ、ＢＥＳ、ＭＯＰＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ、Ｔｒｉｃｉｎｅ、Ｂｉｃｉｎｅ、ＰＯＰＳＯ、ＴＡＰＳ、ＣＨＥＳ、ＣＡＰＳなどが例示され、臨床診断薬用として多用されている。これら緩衝液の種類、濃度およびｐＨは、各試薬成分の保存および酵素反応など目的に応じて一種もしくは複数が選択されるが、いずれの緩衝液を用いるに際しても、酵素反応時のｐＨとしては５．０〜１０．０の範囲で使用されることが好ましい。
【００４８】
また、本発明の試薬キットを構成する試薬には、金属塩、蛋白質、アミノ酸、糖、有機酸などを安定化剤として使用することができる。金属塩としてはナトリウム、カリウム、マグネシウム、カルシウム、鉄、銅、亜鉛、マンガンなどの塩が挙げられる。蛋白質としては酵素反応に影響を与えないものが望ましいが、例えば牛血清アルブミン、卵アルブミン、ゼラチンなどが挙げられる。アミノ酸としては、グリシン、リジン、グルタミン酸、グリシルグリシン、ポリリジンなどを挙げることができる。糖としては、単糖、二糖、オリゴ糖、多糖およびこれらの誘導体を用いることができる。具体的には、グルコース、フラクトース、ガラクトース、マンノース、キシロース、ラクトース、シュークロース、マルトース、トレハロース、マルトトリオース、マルトテトラオース、マルトシルシクロデキストリン、α−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、γ−シクロデキストリン、デキストリン、アミロース、グリコーゲン、デンプン、イヌリン、グルコサミン、イノシトール、マンニトール、ソルビトール、リビトール、デオキシグルコースなどが挙げられる。有機酸としては、α−ケトグルタル酸、リンゴ酸、フマル酸、グルコン酸、コール酸、デオキシコール酸などが例示される。その他、ホウ酸、ホウ砂、塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫酸アンモニウム、グリセロール、フィコールなども使用可能である。
【００４９】
更に、本発明の試薬キットを構成する試薬には、試薬性能に悪影響を及ぼさない範囲で防腐剤や界面活性剤を添加してもよい。防腐剤としてはアジ化ナトリウム、キレート剤、各種抗生物質、防菌剤、防黴剤などが挙げられる。具体的にはアジ化ナトリウムの他、ＥＤＴＡ及びその塩（金属キレートを含む）、ＣｙＤＴＡ、ＧＨＥＧ、ＤＰＴＡ−ＯＨ、ＤＴＰＡ、ＥＤＤＡ、ＥＤＤＰ、ＥＤＤＰＯ、ＥＤＴＡ−ＯＨ、ＥＤＴＰＯ、ＥＧＴＡ、ＨＢＥＤ、ＨＤＴＡ、ＨＩＤＡ、ＩＤＡ、Methyl-ＥＤＴＡ、ＮＴＡ、ＮＴＰ、ＮＴＰＯ、ＴＴＨＡ（これらは同仁より市販）等のキレート剤、ＢＮＤ、ＣＡＡ、ＨＰＯ、ＩＺＵ、ＭＩＴ（ロッシュより市販）、ProClin150、ProClin300（ローム＆ハースより市販）、ベンザルコニウムクロリド、KathonCG、ｐ−ヒドロキシメチルベンゾエート等の防菌（黴）剤、アンフォテリシンＢ、アンピシリン、ブラスティシジンＳ、クロラムフェニコール、ジヒドロストレプトマイシン、クリンダマイシン、シクロヘキシミド、フィリピン、Ｇ４１８、ゲンタマイシン、ハイグロマイシン、カナマイシン、リンコマイシン、ネオマイシン、ロモフンジン、ポリオキシン、ペニシリン、スルファメチゾール、テトラサイクリン等の抗生物質が使用可能である。界面活性剤としては、非イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤、両性界面活性剤が挙げられる。具体的には、アデカトール７２０Ｎ、Ｂ−７９５、Ｂ−７９７、ＬＯ−７、ＮＰ−６９０、ＮＰ−６９５、ＮＰ−７２０、ＰＣ−８、ＳＯ−１２０、ＳＯ−１４５、ブリジェ３５、９８、７００、エマルゲン１０９Ｐ、４３０、４６０、７０７、７０９、８１０、９１１、９３５、９５０、Ａ−６０，Ｂ６６、、ｎ−ドデシルマルトシド、ゲナポールＸ−０８０，ＭＥＧＡ−７、８、９、１０、ニッコールＢＬ−９ＥＸ、ＢＬ−２０ＴＸ、ＨＣＤ−１００、ＭＧＯ、ＭＹＯ−６、ＭＹＬ−１０、ＮＰ−１８ＴＸ、ＯＰ−１０、ＴＬ−１０、ＴＭＧＯ５、ＳＬ−１０、オクチル α―グルコシド、オクチル β―グルコシド、オクチルチオグルコシド、オクチルチオガラクトシド、ペンタエチレングリコールドデシルエーテル、ポリエチレンエーテルＷ−１、プルロニックＦ−６８、Ｌ−７１、Ｐ−１０３、ノニデットＰ４０、レオドール４６０、ＴＷＬ−１０３、ＴＷＬ−１０６、サポニン、サルコシネートＰＮ、スパン２０、８５、ＳＭ１０８０、スクロースモノラウレート、テトロニック７０４、テシット、トリトンＸ−１００、Ｘ−１１４、Ｘ−３０５、ツイーン２０、４０、８０等の非イオン性界面活性剤、ビス（ヒドロキシエチル）−（ステアロイルアミノメチルカルボニルオキシ）エチルアミンクロリド、メチル硫酸ベンジルラウリルメチルスルフォニウム、２−[（４−ｔ−オクチルフェノキシ）エトキシ]エチルモルフォリンクロリド、ラウリルピリジニウムクロリド、ラウリル（トリ−ｐ−トリル）ホスホニウムクロリド、ラウリルフェニルシクロテトラメチレンホフホニウムブロミド、セチルピリジウムクロリド、セチルトリメチルアンモニウムクロリド、（ポリオキシエチレン）ラウリルアミン、などの陽イオン性界面活性剤、コール酸ナトリウム、デオキシコール酸、Ｎ−ラウロイルサルコシン、タウロコール酸などの陰イオン性界面活性剤、ＣＨＡＰＳ、ＣＨＡＰＳＯ、Ｎ，Ｎ−ビス（オクチルアミノエチル）グリシン、Ｎ−カルボキシメチル−Ｎ−（ステアリルオキシメチル）ピリジウムベタイン、Ｎ−パルミチルスルホタウリン、ラウリルジメチルアミンオキシド、Ｎ−（ラウリルチオエトキシ）メチル−Ｎ，Ｎ−ジメチルベタインなどの両性界面活性剤が使用できる。
【００５０】
本発明の別のホルムアルデヒド測定用試薬キットは、グルタチオンおよび本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素に加えて、チオＮＡＤ類とチオＮＡＤＰ類から成る群より選ばれる1つの化合物、並びに還元型ＮＡＤ類と還元型ＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物をさらに含有してなるか、あるいは、還元型チオＮＡＤ類と還元型チオＮＡＤＰ類から成る群より選ばれる1つの化合物、並びにＮＡＤ類とＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物をさらに含有してなる。
【００５１】
これらの試薬キットによれは、上記のサイクリング反応によるホルムアルデヒドの高感度測定を簡便に実施することが可能である。ＮＡＤ類、ＮＡＤＰ類、チオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類には、それぞれ上述のようなものを用いることができる。また、当該試薬キットには、サイクリング反応により生成する酸化型補酵素を還元型に再生する、上述のような酵素およびその基質をさらに含有させることもできる。
【００５２】
本発明のホルムアルデヒド測定用試薬キットは、上記の各試薬成分を、それぞれ単独で保存することもできるし、あるいは２以上の成分を同一の試薬中に保存することもできる。したがって、本発明の試薬キットは、上記の全ての試薬成分を含有してなる単一の試薬組成物であってもよい。しかしながら、互いに干渉を与える成分が存在するか、または単一の保存条件で安定性の確保が難しい成分が存在する場合には、構成成分を分割して保存することが好ましい。
【００５３】
本発明は、上記のホルムアルデヒド測定用の試薬税分に加えて、更にクレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオキシダーゼおよび必要に応じてクレアチニンアミドハイドロラーゼを含有してなる、クレアチニンまたはクレアチン測定用試薬キットを提供する。これら酵素は上述したようなものを適宜利用可能である。
【００５４】
また、別の本発明は、上記試薬以外に、更にベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼを少なくとも含有してなる、ホモシステイン測定用試薬キットを提供する。これらの酵素および基質としてはそれぞれ上述したようなものを好ましく使用することができる。
【００５５】
しかしながら、測定される試料が生体試料、特に血漿や尿の場合、含有されるホモシステインは、大部分がアルブミンのような循環蛋白質との結合した状態、あるいはシステインや他のホモシステイン分子とのジスルフィド結合体の状態で存在する。従って、総ホモシステインを測定する際には、予め試料を還元剤や酵素反応により処理し、遊離ホモシステインを生成させることが必要となる。
【００５６】
この場合に用いられる還元剤としては、例えばチオール類、水素化ホウ素類、アマルガム、ホスフィンやホスホチオエートなどを例示することができる。具体的には、チオール類としてはジチオスレイトール、ジチオエリスリトール、２−メルカプトエタノール、２−メルカプトメチルアミン、システイン、シスタミン、システインチオグリコレート、チオグリコール酸、還元型グルタチオンなど、水素化ホウ素類としては水素化ホウ素ナトリウムなど、アマルガムとしてはナトリウムアマルガムなどが挙げられる。
【００５７】
しかしながら、本発明において使用される酵素が該チオール化合物により活性阻害を受けた場合、試薬性能の低下を引き起こす可能性が考えられるが、チオール化合物に影響を受けないジメチルグリシンオキシダーゼはこれまでに報告されておらず、本発明によって初めて単離されたものである。
【００５８】
したがって、本発明は、チオール化合物に対して安定な新規ジメチルグリシンオキシダーゼを提供する。このようなチオール化合物としては、ジチオスレイトール、ジチオエリスリトール、２−メルカプトエタノール、２−メルカプトエタンスルホン酸、２−メルカプトエチルアミン、システイン、ホモシステイン、Ｎ−アセチルシステイン、チオグリセロール、チオグリコール酸、還元型グルタチオンまたはこれらの塩から選択される少なくとも一種が挙げられる。
【００５９】
ここで、「チオール化合物に対して安定」とは、試料中の総ホモシステインをすべて遊離型に還元するのに必要な量のチオール化合物の存在下において、ホモシステインの正確な測定に影響を与えない程度に酵素活性が保持されうることをいう。好ましくは、本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、ジチオスレイトール非存在下に対し、０．０５ｍｍｏｌ／Ｌジチオスレイトール存在下で、少なくとも５０％酵素活性が保持されるものである。
【００６０】
より好ましくは、本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、さらに下記の理化学的性質を有する酵素である。
(a) 作用：酸素の存在下にジメチルグリシンに作用して，サルコシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素を生成する。
(b) ジメチルグリシンに対するＫｍ値：１５ｍＭ以下
【００６１】
本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、上記の性質を有する限りその由来は特に制限されないが、好ましくはアルスロバクター属またはストレプトマイセス属等の微生物由来であり、特に好ましくは、アルスロバクター・ニコチアナエ（Arthrobacter nicotianae）IFO14234株、またはストレプトマイセス・ミュータビリス（Streptomyces mutabilis）IFO12800株由来のものが挙げられる。IFO14234株およびIFO12800株は、いずれも（財）発酵研究所（〒532-8686，日本国大阪市淀川区十三本町2-17-85）より入手可能である。
【００６２】
また、本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、ランダムにもしくは部位特異的に変異を誘発することにより、上記のチオール化合物に対する耐性を保持する範囲で、比活性や安定性を向上させるなどの酵素特性の改良をもたらすように遺伝的に改変されたものであってもよい。
【００６３】
本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、該酵素を産生する細胞または組織の培養物を原料として単離精製する方法、あるいは当該酵素蛋白質をコードする遺伝子を常法によって単離し、遺伝子組換え技術を用いて適当な宿主中で発現させる方法によって取得することができる。前者の好ましい一実施態様として、以下の方法が例示される。
【００６４】
まず、上記のいずれかのジメチルグリシンオキシダーゼ生産菌、例えば、アルスロバクター・ニコチアナエ（Arthrobacter nicotianae）IFO14234株またはストレプトマイセス・ミュータビリス（Streptomyces mutabilis）IFO12800株などを栄養培地中で培養する。使用する栄養培地としては、使用菌株が資化しうる炭素源、窒素源、無機物、その他必要な栄養素を適量含有するものであれば、合成培地、天然培地のいずれも使用できる。炭素源としては、例えばリンゴ酸、コハク酸等が使用される。窒素源としては、例えばペプトン類、肉エキス、酵母エキス等の窒素含有天然物や、塩化アンモニウム、クエン酸アンモニウム等の無機窒素含有化合物が使用される。無機物としては、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム、硫酸マグネシウム等が使用される。
【００６５】
培養は通常、振盪培養あるいは通気撹拌培養により行う。培養温度は約２０〜約４０℃、好ましくは約２５〜約３７℃、培養ｐＨは約５〜約９の範囲で、好ましくは約６〜約８に制御するのが良い。使用する菌株が生育し得る限り、これら以外の条件下でも実施できる。培養期間は通常、約１〜約７日であり、ジメチルグリシンオキシダーゼは通常、菌体内に生産蓄積される。
【００６６】
本発明のジメチルグリシンオキシダーゼの精製は、一般に使用される精製法を用いて行うことができる。例えば、菌体を回収後、超音波破砕、ガラスビーズを用いる機械的な破砕、フレンチプレス、界面活性化剤による溶解などにより、菌体内画分を抽出することができる。得られた抽出液を、硫安やぼう硝などによる塩析法、塩化マグネシウムや塩化カルシウムなどによる金属凝集法、プロタミンやポリエチレンイミンなどを用いた凝集法、さらにはＤＥＡＥ（ジエチルアミノエチル）−セファロース、ＣＭ（カルボキシメチル）−セファロースなどによるイオン交換クロマト法などに付すことにより、ジメチルグリシンオキシダーゼを精製することができる。
【００６７】
本発明はまた、上記の本発明のジメチルグリシンオキシダーゼを用いたホモシステインの測定方法を提供する。当該方法は、ベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、および本発明のジメチルグリシンオキシダーゼを試料に作用させて、試料中に含まれるホモシステインをサルコシン、過酸化水素およびホルムアルデヒドに分解し、これらの生成物のいずれかを分析することを特徴とする。
【００６８】
ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素は、それぞれ上述のものが好ましく使用されうる。
【００６９】
ジメチルグリシンオキシダーゼは、下記式のとおり、酸素の存在下にジメチルグリシンをサルコシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素に分解する酵素である。
ジメチルグリシン＋Ｈ2Ｏ＋Ｏ2→サルコシン＋ホルムアルデヒド＋Ｈ2Ｏ2
【００７０】
したがって、反応中の酸素消費量を測定するか、あるいは過酸化水素センサーを用いて、または直接もしくはペルオキシダーゼ存在下に酸化還元指示薬を用いて、過酸化水素の生成量を分析することにより、ジメチルグリシンを測定することができる。あるいは、生成したホルムアルデヒドを、Ｈａｎｚ試薬、ホルムアルデヒド脱水素酵素、ホルムアルデヒドオキシダーゼ等を用いて、紫外部もしくは可視部の吸光度、あるいは蛍光を計測することにより間接的に測定することが出来る。例えば、ホルムアルデヒド脱水素酵素によりＮＡＤより生成する還元型ＮＡＤ（ＮＡＤＨ）は、ジアホラーゼやメチルフェナジウムメチルスルフェートのような電子伝達体の存在下で、テトラゾリウム塩を還元してホルマザン色素を生じるので、これを測定することによりホモシステインを測定することが出来る。
【００７１】
さらに、サルコシンオキシダーゼを追加して加えると、サルコシンはグリシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素に分解されるので、ホルムアルデヒドまたは過酸化水素を感度的に倍加して測定することが出来る。また、さらに、ホルムアルデヒドオキシダーゼを作用させてホルムアルデヒドを過酸化水素に分解することにより、感度をさらに向上させることが出来る。
【００７２】
サルコシンオキシダーゼとしては、上述のように、各種動物や、アースロバクター（Arthrobacter）属、ペニシリウム（Penicillium）属、バチルス（Bacillus）属等の微生物などから採取することが可能である。また、市販の酵素を使用することもできる。
【００７３】
また、上記酵素は、それぞれの酵素蛋白質をコードする遺伝子を取り出し、遺伝子工学的技術により発現させた酵素であってもよい。更に、例えば酵素蛋白質の比活性や安定性を向上させるなど、酵素特性の改良をもたらすように遺伝子を改変したものも含まれる。
【００７４】
ジメチルグリシンオキシダーゼにより（場合によっては、さらにサルコシンオキシダーゼおよびホルムアルデヒドオキシダーゼにより）生成する過酸化水素は、紫外部の吸光度を直接測定するか、カタラーゼと酸化チタン試薬（Agric.Biol.Chem.,38 ,p1213 (1974)）による比色定量分析を行うか、あるいは過マンガン酸カリウムを用いた滴定定量などにより分析することが可能であるが、高感度測定の為には、ペルオキシダーゼ存在下、酸化系発色試薬及び、必要に応じて４−アミノアンチピリンや３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンなどのカップラーと反応させ、生成する色素を測定することにより定量することが好ましい。使用する発色試薬は特に制限されるものではなく、各種の市販されているものなどを使用することができるが、具体例としてＮ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−アニシジン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−アニリン、Ｎ−メチル−Ｎ−スルホプロピル−アニリン、Ｎ−ブチル−Ｎ−スルホプロピル−アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３,５−ジメトキシアニリン、Ｎ−スルホプロピル−３,５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３,５−ジメチルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｏ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｐ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−アニシジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３,５−ジメトキシアニリン、Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３,５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３,５−ジメチルシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−トルイジン、Ｎ−スルホプロピルアニリン、ｐ−クロロフェノール、ｐ−ブロモフェノール、２,４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシ安息香酸、３,３’,５,５’−テトラメチルベンジジン、Ｎ−（３−スルホプロピル）３,３’,５,５’−テトラメチルベンジジン、Ｎ,Ｎ,Ｎ’,Ｎ’,Ｎ”,Ｎ”−ヘキサ（３−スルホプロピル）−４，４’，４”−トリアミノトリフェニルメタンなどが挙げられる。また、過酸化水素は直接、またはカタラーゼ共存下で酸素の消費をセンサーを用いてモニタリングすることでも測定することができる。
【００７５】
ジメチルグリシンオキシダーゼにより生成するサルコシンは、サルコシンオキシダーゼを作用させることにより生成するホルムアルデヒドまたは過酸化水素を上述方法により分析できる他、電子伝達体、発色色素の存在下でサルコシン脱水素酵素を作用させ、生成する色素を測定することでも分析することが可能である。電子伝達体としては、ジアホラーゼやメチルフェナジウムメチルスルフェート、メチレンブルー、フェリシアン化カリウムなどが例示される。また、色素としてはテトラゾリウム塩、インドフェノールなどが挙げられる。また、サルコシン脱水素酵素は哺乳動物やシュードモナス（Pseudomonas）属微生物などから直接、もしくは該酵素の遺伝子を遺伝子工学的手法で作製した組換え体より採取可能である。
【００７６】
ジメチルグリシンオキシダーゼにより生成するホルムアルデヒドは、好ましくは、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素および酸化型補酵素、および必要に応じて当該酸化型酵素とは異なる種類の還元型補酵素を試料に作用させて、生成もしくは消費され化合物を測定することにより、測定することができる。
【００７７】
グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素としては、本発明において新たに取得された上述の酵素を用いることが最も好ましいが、哺乳動物、高等植物、メタノール資化性酵母、細菌などに由来する従来公知の酵素も同様に使用することができる。例えば、市販品である、キャンジダ（Candida）属酵母由来の酵素などを使用することができる。具体的には、シグマ製FORMALDEHYDE DEHYDROGENASE (Glutathione dependent)等が挙げられる。
【００７８】
該酵素は酵素蛋白質をコードする遺伝子を生産菌から単離し、遺伝子工学的技術により発現させたものであっても良く、更には、例えば酵素比活性や安定性を向上させるなど、酵素特性を改変した変異体や化学修飾酵素も含まれる。
【００７９】
補酵素としては、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド類（ＮＡＤ類）、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸類（ＮＡＤＰ類）、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド類（チオＮＡＤ類）またはチオニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸類（チオＮＡＤＰ類）が挙げられ、ＮＡＤ類またはＮＡＤＰ類は、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素が補酵素として利用できるものを適宜使用すれば良いが、公知のものではＮＡＤ類として、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、アセチルピリジンアデニンジヌクレオチド、アセチルピリジンアデニンヒポキサンチンジヌクレオチド、ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドなどが、ＮＡＤＰ類としてはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、アセチルピリジンアデニンジヌクレオチドリン酸、アセチルピリジンアデニンヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸、ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸などが例示される。また、チオＮＡＤ類またはチオＮＡＤＰ類においても、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素が補酵素として利用可能なものを適宜使用可能であるが、公知のものとして、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、チオニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチド、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、チオニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸などが具体例として挙げられる。
【００８０】
従来公知のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いた場合のホルムアルデヒドの測定方法としては、本発明の新規グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素について上述したもののうち、サイクリング反応を介した測定法を除くいかなる手段も同様に用いることができる。
【００８１】
ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、本発明のジメチルグリシンオキシダーゼおよびグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いた本発明の測定方法によれば、試料中の濃度が１μｍｏｌ／Ｌ以下の微量のホモシステインの検出が可能となる。
【００８２】
本発明はまた、上記のホモシステインの測定方法に使用するための試薬キットを提供する。本発明のホモシステイン測定用試薬キットは、緩衝液、ベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼ、および該酵素による反応により生成するホルムアルデヒド、サルコシンまたは過酸化水素の少なくとも１種を分析するための試薬を含有してなる。さらにサルコシンオキシダーゼを含んでいてもよい。ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼ、サルコシンオキシダーゼに関しては、上述したようなものが好ましいが、特に限定はされない。ここで、該酵素による反応により生成するホルムアルデヒド、サルコシン、または過酸化水素を分析するための試薬とは、具体的には上述したような原理に基づくものが挙げられる。すなわち、ホルムアルデヒドを分析するための試薬としては、ホルムアルデヒド脱水素酵素、ホルムアルデヒドオキシダーゼ、Ｈａｎｚ試薬、ＣＴＡ試薬（J. Biol. Chem., 231, 813 (1958)）、Ｐｕｒｐａｌｄ試薬（Anal. Biochem., 234(1), 50 (1996)）やフェニルヒドラジン、フェリアン化カリウム、クロロホルム、メタノールを組み合わせた試薬などがある。過酸化水素を分析するための試薬としては、ペルオキシダーゼ、酸化系発色試薬及び、必要に応じて４−アミノアンチピリンや３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンなどのカップラー、カタラーゼ、酸化チタン試薬、過マンガン酸カリウムなどがある。また、サルコシンを分析するための試薬としては、サルコシンオキシダーゼ及び該酵素反応により生成するホルムアルデヒド、過酸化水素を分析する上記試薬、サルコシン脱水素酵素、電子伝達体、発色色素などがある。
【００８３】
特に好ましい態様においては、本発明のホモシステイン測定用試薬キットは、緩衝液、ベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼ、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素および該グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素が利用し得る酸化型補酵素を含有してなる。必要に応じてサルコシンオキシダーゼをさらに含むことができる。ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼ、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素および酸化型補酵素としては、上述のものが好ましく使用できる。また、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素として、本発明において新たに得られた酵素を使用してサイクリング反応を介してホルムアルデヒドを測定する場合は、該試薬キットは、上記酸化型補酵素とは異なる種類の還元型補酵素をさらに含むことが好ましい。
【００８４】
緩衝液としては、トリス塩酸緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、ＧＯＯＤ緩衝液など、上記のホルムアルデヒド測定用試薬キット中に含まれる緩衝液として例示されたものが同様に使用可能である。緩衝液の種類、濃度もしくはｐＨは、各試薬成分のほぞんおよび酵素反応など目的に応じて１種もしくは複数が選択されるが、いずれの緩衝液を用いるに際しても、酵素反応時のｐＨとしては５．０〜１０．０の範囲で使用されることが好ましい。
【００８５】
また、本発明のホモシステイン測定用試薬キットを構成する試薬には、上記のホルムアルデヒド測定用試薬キットを構成する試薬の安定化剤として例示された、各種の金属塩、蛋白質、アミノ酸、糖、有機酸などを同様に含有させることができる。更に、試薬性能に悪影響を及ぼさない範囲で上述のような防腐剤や界面活性剤を添加してもよい。
【００８６】
【実施例】
以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００８７】
実施例１ グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の取得
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の活性測定は以下の試薬及び測定条件にて行った。
〈試薬〉
試薬Ａ １００ｍＭ リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）
試薬Ｂ １０ｍＭ 酸化型ＮＡＤ水溶液
試薬Ｃ ２０ｍＭ ホルムアルデヒド水溶液
試薬Ｄ ２０ｍＭ グルタチオン水溶液
〈測定条件〉
試薬Ａ、試薬Ｂ、試薬Ｃおよび試薬Ｄを各２．１ｍｌ、０．３ｍｌ、０．３ｍｌ、０．３ｍｌの割合で混合し、試薬混液を作成する。この試薬混液３ｍｌを３７℃で約５分間予備加温した後、０．１ｍｌの酵素溶液を加えて混和し、３７℃で４分間反応させる。この時、３４０ｎｍにおける１分間当たりの吸光度変化を測定する。盲検は酵素溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定する。上記条件にて１分間に１マイクロモルの過酸化水素を生成する酵素量を１単位（Ｕ）とする。
メタノール資化性酵母ハンゼヌラ・ノンファーメンタンス（Hansenula nonfermentans）ＩＦＯ１４７３株を６０ｍｌ ＹＰＤ培地（１％ Ｄ−グルコース、１％ポリペプトン、１％酵母エキス；ｐＨ５．０）に一白金耳植菌し、３０℃、２４時間振とう培養後、６Ｌのグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素生産培地（２％ メタノール、０．５％ Ｄ−グルコース、１％ ポリペプトン、１．６％酵母エキス、０．２％リン酸水素二カリウム、０．７％リン酸二水素一カリウム）に移し、３０℃、４８時間通気攪拌培養した。 培養終了後、培養液を遠心分離し、２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体をガラスビーズで破砕し、遠心分離を行い上清液を得た。得られた酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸処理および硫安分画後、セファデックスＧ−２５による脱塩処理、ＤＥＡＥセファロースクロマトグラフィー、フェニルセファロースクロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイトクロマトグラフィーおよびスーパーデックス２００ゲル濾過クロマトグラフィーにより分離精製し、精製酵素標品約９０ｍｇを得た。該方法により得た標品は電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一なバンドを示し、この時の比活性は約２５０Ｕ／ｍｇ蛋白質であった。
また、上記方法で得たグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の酵素活性を、試薬Ｂの酸化型ＮＡＤの代りに酸化型チオＮＡＤを用いた以外は上記活性測定条件と同じ条件で測定した結果、この酵素の酸化型チオＮＡＤに対する反応性は、酸化型ＮＡＤに対するそれの６１％であった。
一方、比較例として、市販のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（Candida boidinii由来；ＳＩＧＭＡ社製）の酵素活性を、同様に測定した結果、当該酵素の酸化型チオＮＡＤに対する反応性は、酸化型ＮＡＤに対するそれの２２％であった。
【００８８】
実施例２ ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素の取得
本発明のベタイン−ホモシステインメチル転移酵素の活性測定は以下の試薬及び測定条件で行った。
〈試薬〉
試薬Ａ ５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）
試薬Ｂ １００ｍＭ ＤＬ−ホモシステイン溶液（試薬Ａで溶解）
試薬Ｃ １００ｍＭベタイン（試薬Ａで溶解）
試薬Ｄ ０．２％ペンタシアノアンミン鉄（III）ナトリウム水溶液
試薬Ｅ 酢酸
試薬Ｆ １０％亜硝酸ナトリウム水溶液
〈測定条件〉
酵素溶液２．３ｍｌに試薬Ｂ、試薬Ｃを各０．０７５ｍｌ、０．１２５ｍｌを加えて混和後、３７℃で１時間反応させる。反応終了後、直ちに試薬Ｄを５ｍｌ加えて攪拌し、一分間放置後、更に試薬Ｅ、試薬Ｆの順に各１ｍｌずつ加えて攪拌する。室温で３０分間放置後５２０ｍにおける吸光度を測定する。試薬Ａに溶解したＬ−メチオニンを酵素溶液の代わりに用いて同様の手順にて測定した吸光度より標準曲線を作成し、これから酵素反応により生成したメチオニンの量を測定する。上記条件にて１時間に１マイクロモルのメチオニンを生成する酵素量を１単位（Ｕ）とする。
遺伝子の塩基配列が公知であるヒト由来のベタイン−ホモシステインメチル転移酵素（J. Biol. Chem., 271(37), 22831 (1998)）をコードする遺伝子の全長を増幅可能な２種のプライマー（配列表の配列番号１および２に記載）を作成し、これを用いてヒト肝臓ｃＤＮＡ（クロンテック製）を鋳型として、ポリメラーゼチェーンリアクション（ＰＣＲ）法によりヒト由来のベタイン−ホモシステインメチル転移酵素をコードするＤＮＡ断片を増幅した。ＰＣＲは以下に示す反応液組成及び反応条件にて実施した。
〈反応液組成〉
ＫＯＤPlus ＤＮＡポリメラーゼ（東洋紡績製） １Ｕｎｉｔ／５０μｌ
１０倍濃度添付バッファー ５μｌ／５０μｌ
鋳型ｃＤＮＡ １．５μｇ／５０μｌ
ｄＡＴＰ、ｄＴＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰ 各０．２ｍＭ
プライマー 各２５pmols／５０μｌ
〈反応条件；下記（２）〜（４）を計３０サイクル実施した〉
（１）９５℃、２分間（変性）
（２）９５℃、３０秒間（変性）
（３）６０℃、３０秒間（アニーリング）
（４）６８℃、１分間（伸長反応）
ＰＣＲ反応後、反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供し、約１．２Ｋｂｐの単一の増幅バンドを確認した。この増幅断片をＤＮＡ断片精製キット（MagExtractor PCR&Gel Clean Up；東洋紡績製）を用いて回収した後、このＤＮＡ断片をＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ制限酵素にて処理した。次いで、ｐＥＴ１１ａプラスミド（ストラタジーン製）をＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ制限酵素で処理し、これを上記ＤＮＡ断片とＴ４ ＤＮＡリガーゼ（東洋紡績製）を用いて連結した。これを用いてEpicurian Coli BL21（DE3）-CodonPlusTM-RIL コンピテントセル（ストラタジーン製）を形質転換し、アンピシリンを含むＬＢ寒天培地（１％ポリペプトン、０．５％酵母エキス、０．５％ＮａＣｌ、１００μｇ／ｍｌアンピシリン；ｐＨ７．２）に塗布し、３７℃で１６時間培養した。
得られたコロニーは、アンピシリンを含むＬＢ培地６０ｍｌで３０℃、１６時間振とう培養後、塩化亜鉛およびアンピシリンを含む×２ＹＴ培地（１．６％ポリペプトン、１％酵母エキス、０．５％ＮａＣｌ、３４μｇ／ｍｌ塩化亜鉛、１００ｍｇ／ｍｌアンピシリン；ｐＨ７．２）６Ｌに接種し、３７℃で通気攪拌培養した。約２．５時間後、培養液の６００ｎｍの吸光度が約１．０に達した時点で、イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシドを１ｍＭになるように添加し、更に４時間培養を行った。培養終了後、培養液を遠心分離し、菌体を５ｍＭ２−メルカプトエタノール、１ｍＭ ＥＤＴＡを含む２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体フレンチプレスで破砕し、遠心分離を行い、上清液を得た。得られた酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸処理後、セファデックスＧ−２５による脱塩処理、ＤＥＡＥセファロースクロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、スーパーデックス２００ゲル濾過クロマトグラフィーにより分離精製し、精製酵素標品約５０ｍｇを得た。該方法により得た標品は、電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一なバンドを示し、この時の比活性は約２．１Ｕ／ｍｇ−蛋白質であった。
【００８９】
実施例３ ジメチルグリシンオキシダーゼの取得
本発明のジメチルグリシンオキシダーゼの活性測定は以下の試薬及び測定条件により行った。
〈試薬〉
試薬Ａ １００ｍＭジメチルグリシン溶液（１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）で溶解）
試薬Ｂ ０．１％４−アミノアンチピリン水溶液
試薬Ｃ ０．１％フェノール水溶液
試薬Ｄ ２５Ｕ／ｍｌペルオキシダーゼ（東洋紡績製；ＰＥＯ−３０１）水溶液
〈測定条件〉
試薬Ａ、試薬Ｂ、試薬Ｃおよび試薬Ｄを各１．５ｍｌ、０．３ｍｌ、０．６ｍｌ、０．６ｍｌの割合で混合し、試薬混液を作成する。この試薬混液３ｍｌを３７℃で約５分間予備加温した後、０．１ｍｌの酵素溶液を加えて混和し、３７℃で４分間反応させる。この時、５００ｎｍにおける１分間当たりの吸光度変化を測定する。盲検は酵素溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定する。上記条件にて１分間に１マイクロモルの過酸化水素を生成する酵素量を１単位（Ｕ）とする。
（１）Arthrobacter nicotianae IFO14234株からの単離
アルスロバクター・ニコチアナエ（Arthrobacter nicotianae）IFO14234株を６０ｍｌ ＬＢ培地（１％ポリペプトン、０．５％酵母エキス、０．５％ＮａＣｌ；ｐＨ７．２）に一白金耳植菌し、３０℃、１６時間振とう培養後、６Ｌのジメチルグリシンオキシダーゼ生産培地（２％ベタイン、１％ポリペプトン、１．６％酵母エキス、１．４％リン酸水素二カリウム、０．５５％リン酸二水素一カリウム）に移し、３０℃、４０時間通気攪拌培養した。 培養終了後、培養液を遠心分離し、２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体をガラスビーズで破砕し、遠心分離を行い上清液を得た。得られた酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸処理および硫安分画後、セファデックスＧ−２５による脱塩処理、ＤＥＡＥセファロースクロマトグラフィー、フェニルセファロースクロマトグラフィー、スーパーデックス２００ゲル濾過クロマトグラフィーにより分離精製し、精製酵素標品約１１０ｍｇを得た。該方法により得た標品は電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一なバンドを示し、この時の比活性は約９．３Ｕ／ｍｇ蛋白質であった。
また、上記方法で得たジメチルグリシンオキシダーゼの酵素活性を、０．０５ｍｍｏｌ／Ｌジチオスレイトール存在下で測定した以外は上記活性測定条件と同じ条件で測定した結果、その活性値はジチオスレイトール非存在下と比べて７１％であった。
（２）Streptomyces mutabilis IFO12800株からの単離
ストレプトマイセス・ミュータビリス（Streptomyces mutabilis）IFO12800株を、６０ｍｌジメチルグリシン生産培地（２％ベタイン、１％ポリペプトン、１．６％酵母エキス、１．４％リン酸ニ水素カリウム、０．５５％リン酸水素ニカリウム）に一白金耳接種し、３０℃、７２時間振とう培養した。培養終了後、培養液を遠心分離し、回収した菌体を２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体をガラスビーズで破砕し、遠心分離を行い、得られた抽出液をセファデックスＧ−２５により脱塩処理した。
また、上記抽出液について、ジメチルグリシンオキシダーゼの酵素活性を、０．０５ｍｍｏｌ／Ｌジチオスレイトール存在下で測定した以外は上記活性測定条件と同じ条件で測定した結果、その活性値はジチオスレイトール非存在下と比べて９８％であった。
さらに、上記２種のジメチルグリシンオキシダーゼのジメチルグリシンに対するＫｍ値を測定した結果、アルスロバクター・ニコチアナエ（Arthrobacter nicotianae）IFO14234株由来の酵素は１３．６ｍＭ、ストレプトマイセス・ミュータビリス（Streptomyces mutabilis）IFO12800株由来の酵素は１４．３ｍＭであった。
【００９０】
実施例４ ホルムアルデヒド標準液の測定（１）
本実施例で使用するＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼの活性測定はBiochimica. et Biophysica Acta,614(1980)p81-91記載の、またギ酸脱水素酵素の酵素活性はEur.J.Biochem.(1976)Feb 2;62(1)p151-160記載の方法にそれぞれ従って実施した。
本実施例で使用するＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼは以下にようにして取得した。
メタノール資化性酵母キャンジダ・ボイディニイ（Candida boidinii）ＩＦＯ１４７３株を６０ｍｌ ＹＰＤ培地（１％ Ｄ−グルコース、１％ポリペプトン、１％酵母エキス；ｐＨ５．０）に一白金耳植菌し、３０℃、２４時間振とう培養後、６ＬのＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ脱水素酵素生産培地（２％ メタノール、０．５％ Ｄ−グルコース、１％ ポリペプトン、１．６％酵母エキス、０．２％リン酸水素二カリウム、０．７％リン酸二水素一カリウム）に移し、３０℃、４８時間通気攪拌培養した。 培養終了後、培養液を遠心分離し、２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体をガラスビーズで破砕した後、遠心分離を行い上清液を得た。得られた酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸処理および硫安分画後、セファデックスＧ−２５による脱塩処理、ＤＥＡＥセファロースクロマトグラフィー、フェニルセファロースクロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイトクロマトグラフィーおよびスーパーデックス２００ゲル濾過クロマトグラフィーにより分離精製し、精製酵素標品約１０ｍｇを得た。該方法により得た標品は電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的にほぼ単一なバンドを示し、この時の比活性は約９００Ｕ／ｍｇ蛋白質であった。
種々の濃度のホルムアルデヒド水溶液１０μＬを試料に、１０／ｍｌグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（実施例１で調製）、１ｍＭ酸化型ＮＡＤ、３ｍＭグルタチオン、５Ｕ／ｍｌＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ（上記で調製したもの）、５Ｕ／ｍｌギ酸脱水素酵素（シグマ製）をそれぞれ含む５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）３００μｌと混合し、３７℃で１０分間反応させ、３４０ｎｍの吸光度を測定した。盲検はホルムアルデヒド水溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定した。反応終了時の吸光度と試料のホルムアルデヒド濃度の関係は表１および図１に示す通りであり、ホルムアルデヒド濃度が０〜５００μＭの範囲において直線性を示し、定量が可能であった。
【００９１】
【表１】
【００９２】
なお、この測定系はサイクリング法ではない。
【００９３】
実施例５ ホルムアルデヒド標準液の測定（２）
種々の濃度のホルムアルデヒド水溶液１０μＬを試料に、１００Ｕ／ｍｌグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（実施例１で調製）、１ｍＭ酸化型チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、０．５ｍＭ還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、３ｍＭグルタチオン、０．１％トリトンＸ−１００をそれぞれ含む５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ８．０）３００μｌと混合し、３７℃で５分間サイクリング反応を実施し、４０５ｎｍの吸光度を測定した。盲検はホルムアルデヒド水溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定した。反応開始後１分後と５分後の吸光度の増加と、試料中のホルムアルデヒド濃度の関係は図２に示す通りであり、ホルムアルデヒド濃度が０〜５０μＭの範囲において直線性を示し、定量が可能であった。
さらに、表２および図２からは、サイクリング法において１μｍｏｌ／Ｌのホルムアルデヒドが測定できていることがわかる。
【００９４】
【表２】
【００９５】
実施例６ クレアチニン標準液の測定
種々の濃度のクレアチニン水溶液５μＬを試料に、１００Ｕ／ｍｌクレアチニンアミドハイドロラーゼ（東洋紡績製；ＣＮＨ−３１１）、５０Ｕ／ｍｌクレアチンアミジノハイドロラーゼ（東洋紡績製；ＣＲＨ−２２１）、１０Ｕ／ｍｌサルコシンオキシダーゼ（東洋紡績製；ＳＡＯ−３４１）、０．１％トリトンＸ−１００をそれぞれ含む５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ８．０）２００μｌと混合し、３７℃で５分間反応させた後、３００Ｕ／ｍｌグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（実施例１で調製）、３ｍＭ酸化型チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、１．５ｍＭ還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、９ｍＭグルタチオン、０．１％トリトンＸ−１００をそれぞれ含む５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ８．０）１００μｌを加え、３７℃で５分間サイクリング反応を実施し、４０５ｎｍの吸光度を測定した。盲検はクレアチニン水溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定した。反応開始後１分後と５分後の吸光度の増加と、試料中のクレアチニン濃度の関係は図３に示す通りであり、クレアチニン濃度が０〜１００μＭの範囲において直線性を示し、定量が可能であった。
さらに、表３および図３からは、サイクリング法において１０μｍｏｌ／Ｌのクレアチニンが測定できていることがわかる。
【００９６】
【表３】
【００９７】
実施例７ ホモシステイン標準液の測定
ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素およびジメチルグリシンオキシダーゼは、それぞれ実施例２および実施例３（１）で取得したものを使用した。また、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素およびジメチルグリシンオキシダーゼの活性測定は、それぞれ実施例２および実施例３と同様にして行った。
種々の濃度のＬ−ホモシスチン水溶液を０．５ｍＭジチオスレイトール中で、３７℃、３０分間加温して生成したＬ−ホモシステイン１０μＬを試料に、２０ｍＭベタイン、１Ｕ／ｍｌベタイン−ホモシステインメチル転移酵素（上記で調製したもの）、７Ｕ／ｍｌジメチルグリシンオキシダーゼ（上記で調製したもの）、５Ｕ／ｍｌサルコシンオキシダーゼ（東洋紡績製；ＳＡＯ−３４１）をそれぞれ含む２０ｍＭ ＰＩＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．３）２００μｌと混合し、３７℃で５分間反応させた後、３００Ｕ／ｍｌグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（実施例１で調製）、３ｍＭ酸化型チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、１．５ｍＭ還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、９ｍＭグルタチオン、０．１％トリトンＸ−１００をそれぞれ含む５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ８．２）１００μｌを加え、３７℃で５分間サイクリング反応を実施し、４０５ｎｍの吸光度を測定した。盲検はＬ−ホモシステイン溶液の代わりに０．５ｍＭジチオスレイトールを試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定した。反応開始後１分後と５分後の吸光度の増加と、試料中のホモシステイン濃度の関係は図４に示す通りであり、ホモシステイン濃度が０〜１００μＭの範囲において直線性を示し、定量が可能であった。
さらに、表４および図４からは、サイクリング法において１μｍｏｌ／Ｌのホモシステインが測定できていることがわかる。
【００９８】
【表４】
【００９９】
【発明の効果】
本発明によれば、ホルムアルデヒドまたは反応中間体としてホルムアルデヒドカが生成するクレアチニン、クレアチン、ホモシステインの高感度且つ簡便な測定が可能である。
【０１００】
【配列表】
【０１０１】
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例４における、吸光度とホルムアルデヒド濃度との関係を示す図である。
【図２】実施例５における、吸光度とホルムアルデヒド濃度との関係を示す図である。
【図３】実施例６における、吸光度とクレアチニン濃度との関係を示す図である。
【図４】実施例７における、吸光度とホモシステイン濃度との関係を示す図である。
【発明の属する技術分野】
本発明は、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いた、ホルムアルデヒドまたは反応中間体としてホルムアルデヒドを生成する化合物の、簡便で高感度な測定方法、およびそのための試薬キットに関する。さらには、中間生成物としてホルムアルデヒドを経由する、クレアチニン、クレアチンおよびホモシステイン等の生体成分を測定する方法、およびそのための試薬キットに関する。本発明はまた、ホモシステインおよび他の物質を基質とする転移酵素を用いたホモシステインの測定方法およびそのための試薬キットに関する。
【０００２】
【従来の技術】
ホルムアルデヒドは、蛋白質、膜、ＤＮＡ等と反応性に富む細胞毒であり、吸引、内服することで種々の障害を引き起こすことが知られている。近年、大気中、工業廃液、食品等に含有されるホルムアルデヒドが問題視されており、これを簡便かつ正確に測定する方法が要求されている。
【０００３】
ホルムアルデヒドの測定法として、Ｈａｎｚ試薬、ＣＴＡ試薬（J.Biol.Chem.231,p813 (1958)）、Ｐｕｒｐａｌｄ試薬（Anal.Biochem.234 (1),p50(1996)）などを用いて比色分析する方法、フェニルヒドラジン、フェリシアン化カリウム、クロロホルム、メタノールを組み合わせた試薬を用いる分析法が知られている。しかしこれらの方法は操作が煩雑で測定に長時間要する、或いは有害試薬を使用するなどの問題点があり、その解決手段として、グルタチオン非依存性のホルムアルデヒド脱水素酵素（EC 2.1.1.46）を用いる酵素法が開示されている（特開平５−４２０００号公報、特開２０００−２２５０００号公報）。これら酵素法は、該酵素反応により、ホルムアルデヒドから蟻酸を生成する際に、同時に生成される還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、若しくはこれより導いた発色色素を分析するが、測定感度は還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドや色素の分子吸光係数に依存するため、微量のホルムアルデヒドの測定には必ずしも十分とは言えない。
【０００４】
一方、微量物質の酵素による高感度定量法として、測定対象とする基質や、基質に作用する酵素の補酵素をサイクリング反応により増幅、定量する方法が知られている（検査と技術、vol.27、No8、1999年7月）。サイクリング法の１つとして、脱水素酵素と２種類の補酵素（チオＮＡＤ類とＮＡＤＨ類、またはＮＡＤ類とチオＮＡＤＨ類）を用いて、可逆反応を利用した酵素サイクリング法による測定法が報告されている（特公平６−６１２７８号公報、特公平６−７３４７７号公報、特公平６−７３４７８号公報、特公平６−７３４７９号公報、特許第３０２３７００号公報、特許第３０３４９６９号公報、特許第３０３４９７９号公報、特許第３０３４９８４号公報、特許第３０３４９８６号公報、特許第３０３４９８７号公報、特許第３０３４９８８号公報、特開平８−１０３２９８号公報）。
【０００５】
特開平４−３４１１９８号公報にはアルコールデヒドロゲナーゼおよびチオＮＡＤ類とＮＡＤＨ類、またはＮＡＤ類とチオＮＡＤＨ類を用いるアルコール類またはアルデヒド類の高感度定量法が開示されている。ここで用いられるアルコールデヒドロゲナーゼの代表的な酵素として下記の反応を触媒するＥＣ１．１．１．１の酵素が挙げられている。
アルコール ＋ ＮＡＤ（Ｐ）+ ⇔ アルデヒド ＋ ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ
【０００６】
しかしながら、D.Schomburg,D.Stephan(Eds.) Enzyme Handbook 9（Springer-Verlag）には、本酵素は、基質としてメタノールを酸化するのみならず、その生成物であるホルムアルデヒドをも酸化することが記載されている。ホルムアルデヒドは水溶液中では水和にして存在し、アルコールの状態で存在するので、アルコールデヒドロデナーゼの被酸化基質となっており、酢酸まで酸化されるため、この酵素を用いてのホルムアルデヒドの高感度測定は成り立たない。
【０００７】
またグルタチオン非依存性のホルムアルデヒド脱水素酵素等アルデヒド脱水素酵素は非可逆的にホルムアルデヒドを酸化するので同様にサイクリング反応による高感度測定には適用できない。
【０００８】
一方、分析科学の分野において、ホルムアルデヒドを中間生成物として経由して測定できる化合物があることが知られている。中でも有用なものとして、臨床検査におけるクレチニン、クレアチンおよびホモシステイン等の測定が挙げられる。
【０００９】
クレアチニンは臨床検査において腎機能の主要な診断マーカーであり、クレアチンの測定は、筋ジストロフィー症、甲状腺機能亢進症などの病態解析に用いられる。これらの測定法としてはＪａｆｆｅ法が主流であるが特異性に関する問題点の指摘があった。また、最近は特異性の高いクレアチニンアミドハイドロラ−ゼ、クレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオコシダーゼ、ペルオキシダーゼを用いた酵素法も増加しているが、生体内に存在する還元物質の影響を受ける可能性の指摘があった。また、酵素法においてペルオキシダーゼの代わりにグルタチオン非依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いてサルコシンオキシダーゼ反応により生成するホルムアルデヒドを上記方法にて分析する方法も報告されている（Clin. Clim. Acta, 122,p181(1982), Ann.Clin.Biochem,29,p523(1992)）が、上述のように、微量の測定には必ずしも十分ではなかった。
【００１０】
ホモシステインは、生体内では必須アミノ酸であるメチオニンが代謝を受けて生成されるＳＨ基を有するアミノ酸であり、通常は低濃度で生体内に存在するが、血中ホモシステイン濃度の上昇をもたらすこれら代謝酵素の遺伝疾患であるホモシスチン尿症が動脈硬化症と関連のあることが知られており、近年では正常値より若干高いレベルのホモシステイン濃度においても脳梗塞、心筋梗塞、深部静脈血管症と関連付けられることが明らかにされ、現在では血中ホモシステイン濃度がこれら疾患の独立した危険因子として注目されている。ホモシステインの測定法はこれまで、ＨＰＬＣを用いた方法が標準法として用いられており（Clin.Chem.,39,p1590(1993)）、種々の改良法も報告されているが、ＨＰＬＣを用いる方法では精巧な分析装置を必要とする上、多量の検体を扱うには不適であるという欠点がある。ＨＰＬＣによる分離を要しない方法として、ホモシステインをアデノシン、フルオレセイン標識Ｓ−アデノシルホモシステイン存在下でＳ−アデノシルホモシステイン加水分解酵素と反応させ、反応系に存在するＳ−アデノシルホモシステインを、抗Ｓ−アデノシルホモシステイン抗体を用いて蛍光偏向イムノアッセイを行なうことでホモシステインを測定する方法（特表平８−５０６４７８号公報）などが知られている。また最近酵素法として、ホモシステインをホモシステインデスルフラーゼで反応させ、生成するアンモニア、α−ケト酸または硫化水素を測定する方法（特表２０００−５０２２６２号公報）、ホモシステインに対して分解作用を有するＬ−メチオニンγ−リアーゼやｏ−アセチルホモセリン−リアーゼを用いて、チオール化合物の存在下で生成する硫化水素またはチオール化合物置換ホモシステインを測定する方法（特開２０００−１６６５９７号公報）、ホモシステインのγ位メルカプト基と置換可能な求核試薬の存在下、γ−置換−α−アミノ酪酸合成酵素によりホモシステインから生成する、γ−置換−α−アミノ酪酸または硫化水素を定量する方法（特開２０００−２２８９９８号公報）なども報告されている。
【００１１】
しかし、イムノアッセイ法でも一般の生化学検査に比べて時間、費用を要することが知られており、酵素反応を用いた分析法も、一般に血中ホモシステイン量が正常値で１０μＭ程度若しくはそれ以下と微量であるため測定感度が不足していたり、あるいは使用する酵素の基質特異性により、検体中のホモシステイン以外の物質に作用するなどの点で、正確なホモシステイン量の測定には十分であるとは言えない。
【００１２】
服部と川村（特開２００１−１７１９８）は、ホモシステインと他の物質とを基質とする転移酵素を、当該他の基質とともにホモシステインを含む試料に作用させて、生成する化合物を測定することにより、ホモシステインをより高感度かつ高精度に測定できることを開示している。特に、転移酵素としてベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、および他の基質としてベタインを使用し、生成するジメチルグリシンを、ジメチルグリシンオキシダーゼを用いてさらにサルコシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素にまで分解し、これらの化合物のいずれかを測定することにより、ホモシステインを高感度かつ高精度に測定できることが記載されている。しかしながら、生体試料において、ホモシステインの多くは、ジスルフィド結合により蛋白質やチオール基を有する他のアミノ酸と結合した状態で存在するため、総ホモシステインの測定は還元条件下で行う必要があるが、還元条件下で十分に安定なジメチルグリシンオキシダーゼはこれまでに報告されておらず、したがって、かかる条件下では試薬性能の低下を引き起こす可能性があった。
【００１３】
一方、酵素サイクリング法を利用したホモシステイン測定法として、シスタチオニンβ−シンターゼとシスタチオニンβ−リアーゼにより生成するピルビン酸、アンモニアを測定する方法（ＵＳ６１７４６９６）、ホモシステインデスルフラーゼと２−ケト酪酸脱水素酵素をもちいて生成、または消費されるＮＡＤ類またはチオＮＡＤ類を分析する方法（特開２００１−１６１３９９、特開２００１−１４９０９２）などが知られているが、生体内でのホモシステイン量を考慮すると更に高感度で測定できる方法が望ましい。
【００１４】
【発明が解決しようとする課題】
したがって、本発明の目的は、ホルムアルデヒド、または反応中間体としてホルムアルデヒドが生成する化合物の高感度且つ簡便な測定手段を提供することである。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記事情に鑑み、酵素サイクリング法を用いたホルムアルデヒドの高感度測定法の確立を目標とした。そこでまず、当該方法に使用しうる酵素として、ホルムアルデヒドに可逆的に作用するグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（EC 1.2.1.1）に着目し、鋭意研究を重ねた結果、２種類の異なる酸化還元物質を補酵素として利用することが出来、かつ両者に対する反応性のバランスがサイクリング反応の進行を可能ならしめるものである、新規なグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素をスクリーニングすることに成功した。さらにこの酵素を、グルタチオン、酸化型の補酵素および還元型の他の補酵素とともに試料に作用させ、該酵素反応よるいずれかの補酵素量の変化を測定することにより、ホルムアルデヒド、ならびに反応中間体としてホルムアルデヒドを生成する化合物、例えばクレアチニン、クレアチン、ホモシステイン、メタノール、尿酸を測定できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
一方で、本発明者らは、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素とジメチルグリシンオキシダーゼを用いる測定系における使用に適した特性を有するジメチルグリシンオキシダーゼを鋭意探索した結果、チオール化合物に対して耐性であり、かつ従来の酵素に比べてジメチルグリシンに対するＫｍ値の小さい、新規なジメチルグリシンオキシダーゼを単離精製することに成功した。さらに、本酵素を上記測定系に適用したところ、ホモシステインをさらに高感度かつ高精度に測定できることを確認した。
【００１６】
即ち、本発明は以下のような構成からなる。
（１）試料に、アルコールオキシダーゼを作用させ、該酵素反応により生成したホルムアルデヒドに、グルタチオン及びグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を作用させ、該酵素反応より生成した化合物を分析することを特徴とするメタノールの測定方法。
（２）試料に、ウリカーゼを作用させ、該酵素反応により生成した過酸化水素を、さらにメタノールの存在下でカタラーゼと作用させることにより生成したホルムアルデヒドに、グルタチオン及びグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を作用させ、該酵素反応より生成した化合物を分析することを特徴とする尿酸の測定方法。
（３）緩衝液、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素およびアルコールオキシダーゼを少なくとも含有してなることを特徴とするメタノール測定用試薬組成物。
（４）緩衝液、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素およびウリカーゼ、カタラーゼを少なくとも含有してなることを特徴とする尿酸測定用試薬組成物。
【００１７】
【発明の実施の形態】
本発明のホルムアルデヒドの測定方法は、チオＮＡＤ類もしくはチオＮＡＤＰ類、およびＮＡＤ類もしくはＮＡＤＰ類の２種類の補酵素を利用でき、且つＮＡＤに対する反応性に対するチオＮＡＤに対する反応性の比が従来公知のものに比べて高い新規グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を、グルタチオンおよび上記いずれかの酸化型補酵素とともに試料に作用させ、生成もしくは消費される化合物の量を測定することを特徴とする。
【００１８】
本発明において使用されるグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（EC 1.2.1.1）は、正確には、酸化型補酵素の存在下、グルタチオンとホルムアルデヒドより非酵素的に生成するＳ−ヒドロキシメチルグルタチオンを基質として、Ｓ−ホルミルグルタチオンと還元型補酵素の生成を可逆的に触媒する酵素である。
【００１９】
本発明におけるグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、補酵素として、チオＮＡＤ類もしくはチオＮＡＤＰ類、およびＮＡＤ類もしくはＮＡＤＰ類を利用することができる。ＮＡＤ類としては、例えば、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、アセチルピリジンアデニンジヌクレオチド、アセチルピリジンアデニンヒポキサンチンジヌクレオチド、ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドなどが、ＮＡＤＰ類としては、例えば、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、アセチルピリジンアデニンジヌクレオチドリン酸、アセチルピリジンアデニンヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸、ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸などが例示される。また、チオＮＡＤ類としては、例えば、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、チオニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドなどが、チオＮＡＤＰ類としては、例えば、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、チオニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸などが具体例として挙げられる。
【００２０】
好ましい実施態様においては、本発明のホルムアルデヒドの測定方法は、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素、チオＮＡＤ類およびチオＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの化合物、および還元型ＮＡＤ類および還元型ＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物を試料に作用させて、サイクリング反応を行わせしめ、該反応より変化した化合物の量を分析することを特徴とする。
【００２１】
別の好ましい実施態様においては、本発明のホルムアルデヒドの測定方法は、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素、還元型チオＮＡＤ類および還元型チオＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物、およびＮＡＤ類とＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物を試料に作用させて、サイクリング反応を行わせしめ、該反応より変化した化合物の量を分析することを特徴とする。
【００２２】
該サイクリング反応では、酸化型補酵素から還元型補酵素、若しくは還元型補酵素から酸化型補酵素の生成が反応時間に比例して、基質の量に対して増幅して生成されることからから、補酵素がＮＡＤ類、ＮＡＤＰ類の場合は３４０ｎｍ付近の吸光度を、チオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類の場合は４００ｎｍ付近の吸光度を測定することで、ホルムアルデヒドを高感度に定量することができる。該サイクリング反応に用いるグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素としては、ホルムアルデヒドを分解してサイクリング系外に放出するような夾雑酵素、例えばＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼを含まないか測定値に影響を与えない程度に含量が低いことが望ましい。またＮＡＤ（Ｐ）分解酵素についても全く含まないか測定値に影響を与えない程度に含量が低いことが望ましい。
【００２３】
該サイクリング反応を効率的に行わせしめるためには、本発明で使用するグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、チオＮＡＤ類もしくはチオＮＡＤＰ類に対して十分な反応性を有する必要がある。具体的には、ＮＡＤに対する反応性に対してのチオＮＡＤに対する反応性の比が３０％以上であり、好ましくは６０％以上である。さらに、酸化型補酵素としてチオＮＡＤ（Ｐ）類を用いる場合、逆反応において、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、正反応により生成する還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類に対する反応性に対して、添加される還元型ＮＡＤ（Ｐ）類に対する反応性が十分に高いものである。一方、酸化型補酵素としてＮＡＤ（Ｐ）類を用いる場合、逆反応において、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、正反応により生成する還元型ＮＡＤ（Ｐ）類に対する反応性に対して、添加される還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類に対する反応性が十分に高いものである。グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は高等動物から微生物まで広く存在することが知られており、チオＮＡＤに対して比較的高い作用性を有する該酵素としてはヒト肝臓由来のものが報告されているが（Biochem. J., 177, 869-878 (1979)）、高等動物のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は通常、微生物由来の酵素と比べて比活性が低く、また、該酵素を用いてサイクリング反応を行うことができたという報告は未だなされていない。
【００２４】
従って、本発明は、上記のいずれかの条件を具備し、サイクリング反応を触媒することができる、新規グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を提供する。好ましくは、当該酵素は、さらに下記の理化学的性質を有する。
(a) 作用：ＮＡＤ類、ＮＡＤＰ類、チオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの補酵素、還元型グルタチオンの存在下にホルムアルデヒドに作用して、Ｓ−ホルミルグルタチオン、還元型補酵素を生成する。
(b) 至適ｐＨ：約７．５〜約８．５
(c) ｐＨ安定性：約６．０〜約９．０（２５℃で２４時間処理した後の残存活性が８０％以上のｐＨ範囲）
(d) 熱安定性：約４０℃以下（ｐＨ７．５で３０分間処理した後の残存活性が９０％以上の温度範囲）
【００２５】
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、サイクリング反応を触媒するのに必要な上記の条件を具備する限り、その由来は特に制限されないが、好ましくは微生物由来であり、より好ましくはメタノール資化性酵母由来、いっそう好ましくはHansenula属酵母由来、就中Hansenula nonfarmentans IFO1473株由来のものが挙げられる。IFO1473株は、（財）発酵研究所（〒532-8686，日本国大阪市淀川区十三本町2-17-85）より入手可能である。
【００２６】
また、本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、ランダムにもしくは部位特異的に変異を誘発することにより、サイクリング反応を触媒するのに必要な、２種類の補酵素に対する反応性のバランスを保持する範囲で、比活性や安定性を向上させるなどの酵素特性の改良をもたらすように遺伝的に改変されたものであってもよい。
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、該酵素を産生する細胞または組織の培養物を原料として単離精製する方法、あるいは当該酵素蛋白質をコードする遺伝子を常法によって単離し、遺伝子組換え技術を用いて適当な宿主中で発現させる方法によって取得することができる。前者の好ましい一実施態様として、以下の方法が例示される。
【００２７】
まず、上記のいずれかのグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素生産菌、例えば、Hansenula nonfarmentans IFO1473株などを栄養培地中で培養する。使用する栄養培地としては、使用菌株が資化しうる炭素源、窒素源、無機物、その他必要な栄養素を適量含有するものであれば、合成培地、天然培地のいずれも使用できる。炭素源としては、例えばリンゴ酸、コハク酸等が使用される。窒素源としては、例えばペプトン類、肉エキス、酵母エキス等の窒素含有天然物や、塩化アンモニウム、クエン酸アンモニウム等の無機窒素含有化合物が使用される。無機物としては、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム、硫酸マグネシウム等が使用される。
【００２８】
培養は通常、振盪培養あるいは通気撹拌培養により行う。培養温度は約２０〜約４０℃、好ましくは約２５〜約３７℃、培養ｐＨは約５〜約９の範囲で、好ましくは約６〜約８に制御するのが良い。使用する菌株が生育し得る限り、これら以外の条件下でも実施できる。培養期間は通常、約１〜約７日であり、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は通常、菌体内に生産蓄積される。
【００２９】
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の精製は、一般に使用される精製法を用いて行うことができる。例えば、菌体を回収後、超音波破砕、ガラスビーズを用いる機械的な破砕、フレンチプレス、界面活性化剤による溶解などにより、菌体内画分を抽出することができる。得られた抽出液を、硫安やぼう硝などによる塩析法、塩化マグネシウムや塩化カルシウムなどによる金属凝集法、プロタミンやポリエチレンイミンなどを用いた凝集法、さらにはＤＥＡＥ（ジエチルアミノエチル）−セファロース、ＣＭ（カルボキシメチル）−セファロースなどによるイオン交換クロマト法などに付すことにより、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を精製することができる。
【００３０】
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素によるサイクリング反応を用いたホルムアルデヒドの測定方法について、酸化型補酵素としてチオＮＡＤ（Ｐ）類化合物を用いる場合を例にとって詳述する。還元型グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素、酸化型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物および還元型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物を試料に接触させると、試料中に含まれるホルムアルデヒド、還元型グルタチオンおよび酸化型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物からＳ−ホルミルグルタチオンと還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物が生成する。次いで、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素は、過剰に存在する還元型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物を補酵素として利用し、生成されたＳ−ホルミルグルタチオンを再びホルムアルデヒドとグルタチオンに戻す。以下、酸化型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物を補酵素とする正反応と、還元型ＮＡＤ（Ｐ）類を補酵素とする逆反応とが繰り返され、結果として１分子のホルムアルデヒドに対して多数分子の還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物が生成される。一方で、還元型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物は反応サイクルの進行に伴って消費される。したがって、還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物量の増加または還元型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物量の減少を、上記のように吸光度を指標にしてモニタリングすることにより、低濃度のホルムアルデヒドも感度よく検出することができる。
【００３１】
また、上記測定系において、ＮＡＤ（Ｐ）類を補酵素として利用し得るがチオＮＡＤ（Ｐ）類を補酵素として実質的に利用できない他の酵素と当該酵素の基質をさらに添加することにより、酸化型ＮＡＤ（Ｐ）類化合物を還元型に再生することができる。この場合、ホルムアルデヒドの測定は、還元型チオＮＡＤ（Ｐ）類化合物の増加を指標にして行われる。このような測定系に使用される他の酵素およびその基質の組み合わせとしては、ＮＡＤ類を利用し得るものとして、例えば、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.37）（例えば、ブタやウシの心筋由来）とＬ−リンゴ酸、グリセロール−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.8）（例えば、ウサギ筋肉由来）とＬ−グリセロール−３−リン酸、グリセロアルデヒドリン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.12）（例えば、ウサギ骨格筋もしくは肝、酵母または大腸菌由来）とＤ−グリセロアルデヒドリン酸およびリン酸、グルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.49）（例えば、Leuconostoc細菌由来）とグルコース−６−リン酸、グルコースデヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.47）（例えば、Bacillus細菌、Pseudomonas細菌由来）とβ−Ｄ−グルコース、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.4.1.3）（例えば、ウシ肝由来）とＬ−グルタミン酸等が、ＮＡＤＰ類を利用し得るものとして、例えば、グリオキシル酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.2.1.17）（例えば、Pseudomonas oxalaticus由来）とCoAおよびグリオキシル酸、ホスホグルコン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.44）（例えば、ラット肝、ビール酵母または大腸菌由来）と６−ホスホ−Ｄ−グルコン酸、グリセロアルデヒドリン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.13）（例えば、植物葉緑体由来）とＤ−グリセロアルデヒド−３−リン酸およびリン酸、グルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.49）（例えば、酵母またはLeuconostoc細菌由来）とグルコース−６−リン酸、グルコースデヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.47）（例えば、Bacillus細菌、Pseudomonas細菌由来）とβ−Ｄ−グルコース、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（EC 1.4.1.3）（例えば、ウシ肝由来）とＬ−グルタミン酸等が挙げられる。
【００３２】
本発明のグルタチオンホルムアルデヒド脱水素酵素を用いたサイクリング法によれば、試料中の濃度が１μｍｏｌ／Ｌ以下の微量のホルムアルデヒドの検出が可能となる。
【００３３】
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いたホルムアルデヒドの測定は、サイクリング反応を介さずに、以下のようにして行うこともできる。
【００３４】
即ち、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素およびチオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類、ＮＡＤ類およびＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの酸化型補酵素を試料に接触させ、生成されるＳ−ホルミルグルタチオンを、紫外部における吸光度を指標として測定することにより、ホルムアルデヒドを測定することができる。あるいは、さらにＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ（EC 3.1.1.12）を作用させて生成するギ酸を、更にギ酸脱水素酵素（EC1.2.1.2；EC 1.2.1.43）を用いて二酸化炭素に分解し、生成する還元型補酵素を測定することによっても、ホルムアルデヒドの測定が可能である。
【００３５】
Ｓ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼは、動物臓器やメタノール資化性酵母、細菌などに存在することが知られており、これら給源より採取して使用することができる。また、ギ酸脱水素酵素は、植物種子、メタノール資化性酵母、細菌などに存在する酵素でこれら給源より採取して使用することができる。市販の酵素（例えば、シグマ製FORMATE DEHYDROGENASE等）を使用してもよい。
【００３６】
上記の一連の酵素反応により生成される還元型補酵素（ＮＡＤＨ類またはＮＡＤＰＨ類）は、紫外部での吸光度、或いは蛍光を測定することにより分析することができる。また、ジアホラーゼやメチルフェナジウムメチルスルフェートのような電子伝達体の存在下でテトラゾリウム塩を還元する際に生成するホルマザン色素を測定することによっても、還元型補酵素を測定することもできる。
【００３７】
本発明のホルムアルデヒドの測定方法は、多段階測定の反応中間体としてホルムアルデヒドを生成する種々の生体成分の測定の最終工程としても、好ましく使用され得る。
【００３８】
例えば、クレアチニンまたはクレアチンの測定は、クレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオキシダーゼおよび必要に応じてクレアチニンアミドハイドロラーゼを試料に作用させて、クレアチニンまたはクレアチンをグリシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素に分解させ、生成する過酸化水素を発色基質等を用いて測定することにより行われている。そこで、過酸化水素の定量用試薬の代わりに、本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いてホルムアルデヒドを測定することにより、クレアチニンまたはクレアチンを測定することができる。従って、本発明は、クレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオキシダーゼおよび必要に応じてクレアチニンアミドハイドロラーゼを試料に接触させてホルムアルデヒドを生成させ、さらに、本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素、グルタチオン、およびチオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類、ＮＡＤ類およびＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの酸化型補酵素、および必要に応じてさらに該酸化型補酵素とは異なる種類の還元型補酵素を接触させて、生成もしくは消費される化合物を測定することを含む、クレアチニンまたはクレアチンの測定方法を提供する。
【００３９】
使用するクレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオキシダーゼおよびクレアチニンアミドハイドロラーゼは特に限定されるものではなく、これらの酵素を生産する微生物などから公知の手法を用いて採取できる他、各種市販の酵素を用いることもできる。例えば、クレアチンアミジノハイドロラーゼとしては、バチルス属、コリネバクテリウム属、ミクロコッカス属、アクチノバチルス属、アルカリゲネス属に属する細菌等由来のものが、クレアチニンアミドハイドロラーゼとしては、シュードモナス属、コリネバクテリウム属、ミクロコッカス属、ペニシリウム属に属する細菌等由来のものが、サルコシンオキシダーゼとしては、各種動物や、アルスロバクター属、ペニシリウム属、バチルス属に属する細菌等由来のものが挙げられる。
【００４０】
また、ホモシステインの測定は、ベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素及びジメチルグリシンオキシダーゼを試料に作用させて、ホモシステインをサルコシン、過酸化水素およびホルムアルデヒドに分解し、生成する過酸化水素を発色基質などを用いて測定することにより行うことができる。そこで、上記と同様に、過酸化水素定量用試薬のかわりに、本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いてホルムアルデヒドを測定することにより、ホモシステインを測定することができる。
【００４１】
本発明において使用されるベタイン−ホモシステインメチル転移酵素（EC 2.1.1.5）は、ベタインをもう一方の基質として、ホモシステインに作用し、ジメチルグリシンとメチオニンを生成する酵素である。例えば、哺乳動物やシュードモナス（Pseudomonas）属、アスペルギルス（Aspergillus）属などの微生物から採取することが可能である。本酵素のもう一方の基質であるベタインは、塩酸塩の形で安価に市販されている。
【００４２】
ジメチルグリシンオキシダーゼは、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素により生成したジメチルグリシンに作用して、サルコシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素に分解する酵素であり、例えばシリンドロカーポン（Cylindrocarpon）属、アクロモバクター（Achromobacter）属、アースロバクター（Arthrobacter）属などの微生物から採取することができる。
【００４３】
また、ジメチルグリシンオキシダーゼにより生成されるサルコシンにサルコシンオキシダーゼを作用させれば、２倍量のホルムアルデヒドが生成するので検出感度を増加させることができる。サルコシンオキシダーゼとしてはクレアチニンまたはクレアチンの測定方法について上記した通りのものを使用することができる。
【００４４】
反応中間体としてホルムアルデヒドを生成する他の測定対象として、例えば、メタノール、尿酸などが例示される（Clin. Chem., 33/12, 2204-2208 (1987), Clin. Biochem., 27/2, 93-97 (1994)）。即ち、メタノールは、アルコールオキシダーゼ（EC 1.1.3.13）によりホルムアルデヒドと過酸化水素を生成する。また、尿酸は、ウリカーゼ（EC 1.7.3.3）の反応により生成される過酸化水素を、メタノールの存在下でカタラーゼ（EC 1.11.1.6）と作用させることでホルムアルデヒドを生成するので、これを上記測定方法により分析することができる。
【００４５】
本発明はまた、上記のホルムアルデヒドの測定方法に使用するための試薬キットを提供する。本発明におけるホルムアルデヒド測定用試薬キットは、緩衝液、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素および該酵素反応により生成する化合物を分析するための試薬を少なくとも含有してなる。当該試薬キットは、ＮＡＤ類、ＮＡＤＰ類、チオＮＡＤ類およびチオＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる１つの酸化型補酵素をさらに含有する事が好ましい。
【００４６】
グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の反応により生成する化合物を分析するための試薬としては、Ｓ−ホルミルグルタチオンを分析するための試薬として、Ｓ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ、ギ酸脱水素酵素および生成する還元型補酵素を分析するための試薬が挙げられる。Ｓ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ、ギ酸脱水素酵素および生成する還元型補酵素を分析するための試薬は、それぞれ上述のものが好ましく使用され得る。なお、Ｓ−ホルミルグルタチオンは、反応液の紫外部での吸光度を分析することにより直接測定することができるので、この場合は上記の試薬に代えて、吸光度測定に必要な試薬もしくは器具を含むこともできる。
【００４７】
本発明の試薬キットにおいて使用される緩衝液としては、トリス塩酸緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、ＧＯＯＤ緩衝液などが挙げられる。トリス塩酸緩衝液、リン酸緩衝液は濃度、温度によりｐＨの変動を受けやすいが、安価という利点がある。一方、ＧＯＯＤ緩衝液は具体的にはＭＥＳ、Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ、ＡＤＡ、ＰＩＰＥＳ、ＡＣＥＳ、ＢＥＳ、ＭＯＰＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ、Ｔｒｉｃｉｎｅ、Ｂｉｃｉｎｅ、ＰＯＰＳＯ、ＴＡＰＳ、ＣＨＥＳ、ＣＡＰＳなどが例示され、臨床診断薬用として多用されている。これら緩衝液の種類、濃度およびｐＨは、各試薬成分の保存および酵素反応など目的に応じて一種もしくは複数が選択されるが、いずれの緩衝液を用いるに際しても、酵素反応時のｐＨとしては５．０〜１０．０の範囲で使用されることが好ましい。
【００４８】
また、本発明の試薬キットを構成する試薬には、金属塩、蛋白質、アミノ酸、糖、有機酸などを安定化剤として使用することができる。金属塩としてはナトリウム、カリウム、マグネシウム、カルシウム、鉄、銅、亜鉛、マンガンなどの塩が挙げられる。蛋白質としては酵素反応に影響を与えないものが望ましいが、例えば牛血清アルブミン、卵アルブミン、ゼラチンなどが挙げられる。アミノ酸としては、グリシン、リジン、グルタミン酸、グリシルグリシン、ポリリジンなどを挙げることができる。糖としては、単糖、二糖、オリゴ糖、多糖およびこれらの誘導体を用いることができる。具体的には、グルコース、フラクトース、ガラクトース、マンノース、キシロース、ラクトース、シュークロース、マルトース、トレハロース、マルトトリオース、マルトテトラオース、マルトシルシクロデキストリン、α−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、γ−シクロデキストリン、デキストリン、アミロース、グリコーゲン、デンプン、イヌリン、グルコサミン、イノシトール、マンニトール、ソルビトール、リビトール、デオキシグルコースなどが挙げられる。有機酸としては、α−ケトグルタル酸、リンゴ酸、フマル酸、グルコン酸、コール酸、デオキシコール酸などが例示される。その他、ホウ酸、ホウ砂、塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫酸アンモニウム、グリセロール、フィコールなども使用可能である。
【００４９】
更に、本発明の試薬キットを構成する試薬には、試薬性能に悪影響を及ぼさない範囲で防腐剤や界面活性剤を添加してもよい。防腐剤としてはアジ化ナトリウム、キレート剤、各種抗生物質、防菌剤、防黴剤などが挙げられる。具体的にはアジ化ナトリウムの他、ＥＤＴＡ及びその塩（金属キレートを含む）、ＣｙＤＴＡ、ＧＨＥＧ、ＤＰＴＡ−ＯＨ、ＤＴＰＡ、ＥＤＤＡ、ＥＤＤＰ、ＥＤＤＰＯ、ＥＤＴＡ−ＯＨ、ＥＤＴＰＯ、ＥＧＴＡ、ＨＢＥＤ、ＨＤＴＡ、ＨＩＤＡ、ＩＤＡ、Methyl-ＥＤＴＡ、ＮＴＡ、ＮＴＰ、ＮＴＰＯ、ＴＴＨＡ（これらは同仁より市販）等のキレート剤、ＢＮＤ、ＣＡＡ、ＨＰＯ、ＩＺＵ、ＭＩＴ（ロッシュより市販）、ProClin150、ProClin300（ローム＆ハースより市販）、ベンザルコニウムクロリド、KathonCG、ｐ−ヒドロキシメチルベンゾエート等の防菌（黴）剤、アンフォテリシンＢ、アンピシリン、ブラスティシジンＳ、クロラムフェニコール、ジヒドロストレプトマイシン、クリンダマイシン、シクロヘキシミド、フィリピン、Ｇ４１８、ゲンタマイシン、ハイグロマイシン、カナマイシン、リンコマイシン、ネオマイシン、ロモフンジン、ポリオキシン、ペニシリン、スルファメチゾール、テトラサイクリン等の抗生物質が使用可能である。界面活性剤としては、非イオン性界面活性剤、陽イオン性界面活性剤、陰イオン性界面活性剤、両性界面活性剤が挙げられる。具体的には、アデカトール７２０Ｎ、Ｂ−７９５、Ｂ−７９７、ＬＯ−７、ＮＰ−６９０、ＮＰ−６９５、ＮＰ−７２０、ＰＣ−８、ＳＯ−１２０、ＳＯ−１４５、ブリジェ３５、９８、７００、エマルゲン１０９Ｐ、４３０、４６０、７０７、７０９、８１０、９１１、９３５、９５０、Ａ−６０，Ｂ６６、、ｎ−ドデシルマルトシド、ゲナポールＸ−０８０，ＭＥＧＡ−７、８、９、１０、ニッコールＢＬ−９ＥＸ、ＢＬ−２０ＴＸ、ＨＣＤ−１００、ＭＧＯ、ＭＹＯ−６、ＭＹＬ−１０、ＮＰ−１８ＴＸ、ＯＰ−１０、ＴＬ−１０、ＴＭＧＯ５、ＳＬ−１０、オクチル α―グルコシド、オクチル β―グルコシド、オクチルチオグルコシド、オクチルチオガラクトシド、ペンタエチレングリコールドデシルエーテル、ポリエチレンエーテルＷ−１、プルロニックＦ−６８、Ｌ−７１、Ｐ−１０３、ノニデットＰ４０、レオドール４６０、ＴＷＬ−１０３、ＴＷＬ−１０６、サポニン、サルコシネートＰＮ、スパン２０、８５、ＳＭ１０８０、スクロースモノラウレート、テトロニック７０４、テシット、トリトンＸ−１００、Ｘ−１１４、Ｘ−３０５、ツイーン２０、４０、８０等の非イオン性界面活性剤、ビス（ヒドロキシエチル）−（ステアロイルアミノメチルカルボニルオキシ）エチルアミンクロリド、メチル硫酸ベンジルラウリルメチルスルフォニウム、２−[（４−ｔ−オクチルフェノキシ）エトキシ]エチルモルフォリンクロリド、ラウリルピリジニウムクロリド、ラウリル（トリ−ｐ−トリル）ホスホニウムクロリド、ラウリルフェニルシクロテトラメチレンホフホニウムブロミド、セチルピリジウムクロリド、セチルトリメチルアンモニウムクロリド、（ポリオキシエチレン）ラウリルアミン、などの陽イオン性界面活性剤、コール酸ナトリウム、デオキシコール酸、Ｎ−ラウロイルサルコシン、タウロコール酸などの陰イオン性界面活性剤、ＣＨＡＰＳ、ＣＨＡＰＳＯ、Ｎ，Ｎ−ビス（オクチルアミノエチル）グリシン、Ｎ−カルボキシメチル−Ｎ−（ステアリルオキシメチル）ピリジウムベタイン、Ｎ−パルミチルスルホタウリン、ラウリルジメチルアミンオキシド、Ｎ−（ラウリルチオエトキシ）メチル−Ｎ，Ｎ−ジメチルベタインなどの両性界面活性剤が使用できる。
【００５０】
本発明の別のホルムアルデヒド測定用試薬キットは、グルタチオンおよび本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素に加えて、チオＮＡＤ類とチオＮＡＤＰ類から成る群より選ばれる1つの化合物、並びに還元型ＮＡＤ類と還元型ＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物をさらに含有してなるか、あるいは、還元型チオＮＡＤ類と還元型チオＮＡＤＰ類から成る群より選ばれる1つの化合物、並びにＮＡＤ類とＮＡＤＰ類からなる群より選ばれる1つの化合物をさらに含有してなる。
【００５１】
これらの試薬キットによれは、上記のサイクリング反応によるホルムアルデヒドの高感度測定を簡便に実施することが可能である。ＮＡＤ類、ＮＡＤＰ類、チオＮＡＤ類、チオＮＡＤＰ類には、それぞれ上述のようなものを用いることができる。また、当該試薬キットには、サイクリング反応により生成する酸化型補酵素を還元型に再生する、上述のような酵素およびその基質をさらに含有させることもできる。
【００５２】
本発明のホルムアルデヒド測定用試薬キットは、上記の各試薬成分を、それぞれ単独で保存することもできるし、あるいは２以上の成分を同一の試薬中に保存することもできる。したがって、本発明の試薬キットは、上記の全ての試薬成分を含有してなる単一の試薬組成物であってもよい。しかしながら、互いに干渉を与える成分が存在するか、または単一の保存条件で安定性の確保が難しい成分が存在する場合には、構成成分を分割して保存することが好ましい。
【００５３】
本発明は、上記のホルムアルデヒド測定用の試薬税分に加えて、更にクレアチンアミジノハイドロラーゼ、サルコシンオキシダーゼおよび必要に応じてクレアチニンアミドハイドロラーゼを含有してなる、クレアチニンまたはクレアチン測定用試薬キットを提供する。これら酵素は上述したようなものを適宜利用可能である。
【００５４】
また、別の本発明は、上記試薬以外に、更にベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼを少なくとも含有してなる、ホモシステイン測定用試薬キットを提供する。これらの酵素および基質としてはそれぞれ上述したようなものを好ましく使用することができる。
【００５５】
しかしながら、測定される試料が生体試料、特に血漿や尿の場合、含有されるホモシステインは、大部分がアルブミンのような循環蛋白質との結合した状態、あるいはシステインや他のホモシステイン分子とのジスルフィド結合体の状態で存在する。従って、総ホモシステインを測定する際には、予め試料を還元剤や酵素反応により処理し、遊離ホモシステインを生成させることが必要となる。
【００５６】
この場合に用いられる還元剤としては、例えばチオール類、水素化ホウ素類、アマルガム、ホスフィンやホスホチオエートなどを例示することができる。具体的には、チオール類としてはジチオスレイトール、ジチオエリスリトール、２−メルカプトエタノール、２−メルカプトメチルアミン、システイン、シスタミン、システインチオグリコレート、チオグリコール酸、還元型グルタチオンなど、水素化ホウ素類としては水素化ホウ素ナトリウムなど、アマルガムとしてはナトリウムアマルガムなどが挙げられる。
【００５７】
しかしながら、本発明において使用される酵素が該チオール化合物により活性阻害を受けた場合、試薬性能の低下を引き起こす可能性が考えられるが、チオール化合物に影響を受けないジメチルグリシンオキシダーゼはこれまでに報告されておらず、本発明によって初めて単離されたものである。
【００５８】
したがって、本発明は、チオール化合物に対して安定な新規ジメチルグリシンオキシダーゼを提供する。このようなチオール化合物としては、ジチオスレイトール、ジチオエリスリトール、２−メルカプトエタノール、２−メルカプトエタンスルホン酸、２−メルカプトエチルアミン、システイン、ホモシステイン、Ｎ−アセチルシステイン、チオグリセロール、チオグリコール酸、還元型グルタチオンまたはこれらの塩から選択される少なくとも一種が挙げられる。
【００５９】
ここで、「チオール化合物に対して安定」とは、試料中の総ホモシステインをすべて遊離型に還元するのに必要な量のチオール化合物の存在下において、ホモシステインの正確な測定に影響を与えない程度に酵素活性が保持されうることをいう。好ましくは、本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、ジチオスレイトール非存在下に対し、０．０５ｍｍｏｌ／Ｌジチオスレイトール存在下で、少なくとも５０％酵素活性が保持されるものである。
【００６０】
より好ましくは、本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、さらに下記の理化学的性質を有する酵素である。
(a) 作用：酸素の存在下にジメチルグリシンに作用して，サルコシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素を生成する。
(b) ジメチルグリシンに対するＫｍ値：１５ｍＭ以下
【００６１】
本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、上記の性質を有する限りその由来は特に制限されないが、好ましくはアルスロバクター属またはストレプトマイセス属等の微生物由来であり、特に好ましくは、アルスロバクター・ニコチアナエ（Arthrobacter nicotianae）IFO14234株、またはストレプトマイセス・ミュータビリス（Streptomyces mutabilis）IFO12800株由来のものが挙げられる。IFO14234株およびIFO12800株は、いずれも（財）発酵研究所（〒532-8686，日本国大阪市淀川区十三本町2-17-85）より入手可能である。
【００６２】
また、本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、ランダムにもしくは部位特異的に変異を誘発することにより、上記のチオール化合物に対する耐性を保持する範囲で、比活性や安定性を向上させるなどの酵素特性の改良をもたらすように遺伝的に改変されたものであってもよい。
【００６３】
本発明のジメチルグリシンオキシダーゼは、該酵素を産生する細胞または組織の培養物を原料として単離精製する方法、あるいは当該酵素蛋白質をコードする遺伝子を常法によって単離し、遺伝子組換え技術を用いて適当な宿主中で発現させる方法によって取得することができる。前者の好ましい一実施態様として、以下の方法が例示される。
【００６４】
まず、上記のいずれかのジメチルグリシンオキシダーゼ生産菌、例えば、アルスロバクター・ニコチアナエ（Arthrobacter nicotianae）IFO14234株またはストレプトマイセス・ミュータビリス（Streptomyces mutabilis）IFO12800株などを栄養培地中で培養する。使用する栄養培地としては、使用菌株が資化しうる炭素源、窒素源、無機物、その他必要な栄養素を適量含有するものであれば、合成培地、天然培地のいずれも使用できる。炭素源としては、例えばリンゴ酸、コハク酸等が使用される。窒素源としては、例えばペプトン類、肉エキス、酵母エキス等の窒素含有天然物や、塩化アンモニウム、クエン酸アンモニウム等の無機窒素含有化合物が使用される。無機物としては、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム、硫酸マグネシウム等が使用される。
【００６５】
培養は通常、振盪培養あるいは通気撹拌培養により行う。培養温度は約２０〜約４０℃、好ましくは約２５〜約３７℃、培養ｐＨは約５〜約９の範囲で、好ましくは約６〜約８に制御するのが良い。使用する菌株が生育し得る限り、これら以外の条件下でも実施できる。培養期間は通常、約１〜約７日であり、ジメチルグリシンオキシダーゼは通常、菌体内に生産蓄積される。
【００６６】
本発明のジメチルグリシンオキシダーゼの精製は、一般に使用される精製法を用いて行うことができる。例えば、菌体を回収後、超音波破砕、ガラスビーズを用いる機械的な破砕、フレンチプレス、界面活性化剤による溶解などにより、菌体内画分を抽出することができる。得られた抽出液を、硫安やぼう硝などによる塩析法、塩化マグネシウムや塩化カルシウムなどによる金属凝集法、プロタミンやポリエチレンイミンなどを用いた凝集法、さらにはＤＥＡＥ（ジエチルアミノエチル）−セファロース、ＣＭ（カルボキシメチル）−セファロースなどによるイオン交換クロマト法などに付すことにより、ジメチルグリシンオキシダーゼを精製することができる。
【００６７】
本発明はまた、上記の本発明のジメチルグリシンオキシダーゼを用いたホモシステインの測定方法を提供する。当該方法は、ベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、および本発明のジメチルグリシンオキシダーゼを試料に作用させて、試料中に含まれるホモシステインをサルコシン、過酸化水素およびホルムアルデヒドに分解し、これらの生成物のいずれかを分析することを特徴とする。
【００６８】
ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素は、それぞれ上述のものが好ましく使用されうる。
【００６９】
ジメチルグリシンオキシダーゼは、下記式のとおり、酸素の存在下にジメチルグリシンをサルコシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素に分解する酵素である。
ジメチルグリシン＋Ｈ2Ｏ＋Ｏ2→サルコシン＋ホルムアルデヒド＋Ｈ2Ｏ2
【００７０】
したがって、反応中の酸素消費量を測定するか、あるいは過酸化水素センサーを用いて、または直接もしくはペルオキシダーゼ存在下に酸化還元指示薬を用いて、過酸化水素の生成量を分析することにより、ジメチルグリシンを測定することができる。あるいは、生成したホルムアルデヒドを、Ｈａｎｚ試薬、ホルムアルデヒド脱水素酵素、ホルムアルデヒドオキシダーゼ等を用いて、紫外部もしくは可視部の吸光度、あるいは蛍光を計測することにより間接的に測定することが出来る。例えば、ホルムアルデヒド脱水素酵素によりＮＡＤより生成する還元型ＮＡＤ（ＮＡＤＨ）は、ジアホラーゼやメチルフェナジウムメチルスルフェートのような電子伝達体の存在下で、テトラゾリウム塩を還元してホルマザン色素を生じるので、これを測定することによりホモシステインを測定することが出来る。
【００７１】
さらに、サルコシンオキシダーゼを追加して加えると、サルコシンはグリシン、ホルムアルデヒドおよび過酸化水素に分解されるので、ホルムアルデヒドまたは過酸化水素を感度的に倍加して測定することが出来る。また、さらに、ホルムアルデヒドオキシダーゼを作用させてホルムアルデヒドを過酸化水素に分解することにより、感度をさらに向上させることが出来る。
【００７２】
サルコシンオキシダーゼとしては、上述のように、各種動物や、アースロバクター（Arthrobacter）属、ペニシリウム（Penicillium）属、バチルス（Bacillus）属等の微生物などから採取することが可能である。また、市販の酵素を使用することもできる。
【００７３】
また、上記酵素は、それぞれの酵素蛋白質をコードする遺伝子を取り出し、遺伝子工学的技術により発現させた酵素であってもよい。更に、例えば酵素蛋白質の比活性や安定性を向上させるなど、酵素特性の改良をもたらすように遺伝子を改変したものも含まれる。
【００７４】
ジメチルグリシンオキシダーゼにより（場合によっては、さらにサルコシンオキシダーゼおよびホルムアルデヒドオキシダーゼにより）生成する過酸化水素は、紫外部の吸光度を直接測定するか、カタラーゼと酸化チタン試薬（Agric.Biol.Chem.,38 ,p1213 (1974)）による比色定量分析を行うか、あるいは過マンガン酸カリウムを用いた滴定定量などにより分析することが可能であるが、高感度測定の為には、ペルオキシダーゼ存在下、酸化系発色試薬及び、必要に応じて４−アミノアンチピリンや３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンなどのカップラーと反応させ、生成する色素を測定することにより定量することが好ましい。使用する発色試薬は特に制限されるものではなく、各種の市販されているものなどを使用することができるが、具体例としてＮ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−アニシジン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−アニリン、Ｎ−メチル−Ｎ−スルホプロピル−アニリン、Ｎ−ブチル−Ｎ−スルホプロピル−アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３,５−ジメトキシアニリン、Ｎ−スルホプロピル−３,５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３,５−ジメチルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｏ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｐ−トルイジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−アニシジン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）アニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３,５−ジメトキシアニリン、Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３,５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３,５−ジメチルシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−トルイジン、Ｎ−スルホプロピルアニリン、ｐ−クロロフェノール、ｐ−ブロモフェノール、２,４−ジクロロフェノール、ｐ−ヒドロキシ安息香酸、３,３’,５,５’−テトラメチルベンジジン、Ｎ−（３−スルホプロピル）３,３’,５,５’−テトラメチルベンジジン、Ｎ,Ｎ,Ｎ’,Ｎ’,Ｎ”,Ｎ”−ヘキサ（３−スルホプロピル）−４，４’，４”−トリアミノトリフェニルメタンなどが挙げられる。また、過酸化水素は直接、またはカタラーゼ共存下で酸素の消費をセンサーを用いてモニタリングすることでも測定することができる。
【００７５】
ジメチルグリシンオキシダーゼにより生成するサルコシンは、サルコシンオキシダーゼを作用させることにより生成するホルムアルデヒドまたは過酸化水素を上述方法により分析できる他、電子伝達体、発色色素の存在下でサルコシン脱水素酵素を作用させ、生成する色素を測定することでも分析することが可能である。電子伝達体としては、ジアホラーゼやメチルフェナジウムメチルスルフェート、メチレンブルー、フェリシアン化カリウムなどが例示される。また、色素としてはテトラゾリウム塩、インドフェノールなどが挙げられる。また、サルコシン脱水素酵素は哺乳動物やシュードモナス（Pseudomonas）属微生物などから直接、もしくは該酵素の遺伝子を遺伝子工学的手法で作製した組換え体より採取可能である。
【００７６】
ジメチルグリシンオキシダーゼにより生成するホルムアルデヒドは、好ましくは、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素および酸化型補酵素、および必要に応じて当該酸化型酵素とは異なる種類の還元型補酵素を試料に作用させて、生成もしくは消費され化合物を測定することにより、測定することができる。
【００７７】
グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素としては、本発明において新たに取得された上述の酵素を用いることが最も好ましいが、哺乳動物、高等植物、メタノール資化性酵母、細菌などに由来する従来公知の酵素も同様に使用することができる。例えば、市販品である、キャンジダ（Candida）属酵母由来の酵素などを使用することができる。具体的には、シグマ製FORMALDEHYDE DEHYDROGENASE (Glutathione dependent)等が挙げられる。
【００７８】
該酵素は酵素蛋白質をコードする遺伝子を生産菌から単離し、遺伝子工学的技術により発現させたものであっても良く、更には、例えば酵素比活性や安定性を向上させるなど、酵素特性を改変した変異体や化学修飾酵素も含まれる。
【００７９】
補酵素としては、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド類（ＮＡＤ類）、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸類（ＮＡＤＰ類）、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド類（チオＮＡＤ類）またはチオニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸類（チオＮＡＤＰ類）が挙げられ、ＮＡＤ類またはＮＡＤＰ類は、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素が補酵素として利用できるものを適宜使用すれば良いが、公知のものではＮＡＤ類として、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、アセチルピリジンアデニンジヌクレオチド、アセチルピリジンアデニンヒポキサンチンジヌクレオチド、ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドなどが、ＮＡＤＰ類としてはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、アセチルピリジンアデニンジヌクレオチドリン酸、アセチルピリジンアデニンヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸、ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸などが例示される。また、チオＮＡＤ類またはチオＮＡＤＰ類においても、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素が補酵素として利用可能なものを適宜使用可能であるが、公知のものとして、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、チオニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチド、チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸、チオニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸などが具体例として挙げられる。
【００８０】
従来公知のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いた場合のホルムアルデヒドの測定方法としては、本発明の新規グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素について上述したもののうち、サイクリング反応を介した測定法を除くいかなる手段も同様に用いることができる。
【００８１】
ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、本発明のジメチルグリシンオキシダーゼおよびグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を用いた本発明の測定方法によれば、試料中の濃度が１μｍｏｌ／Ｌ以下の微量のホモシステインの検出が可能となる。
【００８２】
本発明はまた、上記のホモシステインの測定方法に使用するための試薬キットを提供する。本発明のホモシステイン測定用試薬キットは、緩衝液、ベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼ、および該酵素による反応により生成するホルムアルデヒド、サルコシンまたは過酸化水素の少なくとも１種を分析するための試薬を含有してなる。さらにサルコシンオキシダーゼを含んでいてもよい。ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼ、サルコシンオキシダーゼに関しては、上述したようなものが好ましいが、特に限定はされない。ここで、該酵素による反応により生成するホルムアルデヒド、サルコシン、または過酸化水素を分析するための試薬とは、具体的には上述したような原理に基づくものが挙げられる。すなわち、ホルムアルデヒドを分析するための試薬としては、ホルムアルデヒド脱水素酵素、ホルムアルデヒドオキシダーゼ、Ｈａｎｚ試薬、ＣＴＡ試薬（J. Biol. Chem., 231, 813 (1958)）、Ｐｕｒｐａｌｄ試薬（Anal. Biochem., 234(1), 50 (1996)）やフェニルヒドラジン、フェリアン化カリウム、クロロホルム、メタノールを組み合わせた試薬などがある。過酸化水素を分析するための試薬としては、ペルオキシダーゼ、酸化系発色試薬及び、必要に応じて４−アミノアンチピリンや３−メチル−２−ベンゾチアゾリノンなどのカップラー、カタラーゼ、酸化チタン試薬、過マンガン酸カリウムなどがある。また、サルコシンを分析するための試薬としては、サルコシンオキシダーゼ及び該酵素反応により生成するホルムアルデヒド、過酸化水素を分析する上記試薬、サルコシン脱水素酵素、電子伝達体、発色色素などがある。
【００８３】
特に好ましい態様においては、本発明のホモシステイン測定用試薬キットは、緩衝液、ベタイン、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼ、グルタチオン、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素および該グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素が利用し得る酸化型補酵素を含有してなる。必要に応じてサルコシンオキシダーゼをさらに含むことができる。ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素、ジメチルグリシンオキシダーゼ、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素および酸化型補酵素としては、上述のものが好ましく使用できる。また、グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素として、本発明において新たに得られた酵素を使用してサイクリング反応を介してホルムアルデヒドを測定する場合は、該試薬キットは、上記酸化型補酵素とは異なる種類の還元型補酵素をさらに含むことが好ましい。
【００８４】
緩衝液としては、トリス塩酸緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、ＧＯＯＤ緩衝液など、上記のホルムアルデヒド測定用試薬キット中に含まれる緩衝液として例示されたものが同様に使用可能である。緩衝液の種類、濃度もしくはｐＨは、各試薬成分のほぞんおよび酵素反応など目的に応じて１種もしくは複数が選択されるが、いずれの緩衝液を用いるに際しても、酵素反応時のｐＨとしては５．０〜１０．０の範囲で使用されることが好ましい。
【００８５】
また、本発明のホモシステイン測定用試薬キットを構成する試薬には、上記のホルムアルデヒド測定用試薬キットを構成する試薬の安定化剤として例示された、各種の金属塩、蛋白質、アミノ酸、糖、有機酸などを同様に含有させることができる。更に、試薬性能に悪影響を及ぼさない範囲で上述のような防腐剤や界面活性剤を添加してもよい。
【００８６】
【実施例】
以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００８７】
実施例１ グルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の取得
本発明のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の活性測定は以下の試薬及び測定条件にて行った。
〈試薬〉
試薬Ａ １００ｍＭ リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）
試薬Ｂ １０ｍＭ 酸化型ＮＡＤ水溶液
試薬Ｃ ２０ｍＭ ホルムアルデヒド水溶液
試薬Ｄ ２０ｍＭ グルタチオン水溶液
〈測定条件〉
試薬Ａ、試薬Ｂ、試薬Ｃおよび試薬Ｄを各２．１ｍｌ、０．３ｍｌ、０．３ｍｌ、０．３ｍｌの割合で混合し、試薬混液を作成する。この試薬混液３ｍｌを３７℃で約５分間予備加温した後、０．１ｍｌの酵素溶液を加えて混和し、３７℃で４分間反応させる。この時、３４０ｎｍにおける１分間当たりの吸光度変化を測定する。盲検は酵素溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定する。上記条件にて１分間に１マイクロモルの過酸化水素を生成する酵素量を１単位（Ｕ）とする。
メタノール資化性酵母ハンゼヌラ・ノンファーメンタンス（Hansenula nonfermentans）ＩＦＯ１４７３株を６０ｍｌ ＹＰＤ培地（１％ Ｄ−グルコース、１％ポリペプトン、１％酵母エキス；ｐＨ５．０）に一白金耳植菌し、３０℃、２４時間振とう培養後、６Ｌのグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素生産培地（２％ メタノール、０．５％ Ｄ−グルコース、１％ ポリペプトン、１．６％酵母エキス、０．２％リン酸水素二カリウム、０．７％リン酸二水素一カリウム）に移し、３０℃、４８時間通気攪拌培養した。 培養終了後、培養液を遠心分離し、２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体をガラスビーズで破砕し、遠心分離を行い上清液を得た。得られた酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸処理および硫安分画後、セファデックスＧ−２５による脱塩処理、ＤＥＡＥセファロースクロマトグラフィー、フェニルセファロースクロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイトクロマトグラフィーおよびスーパーデックス２００ゲル濾過クロマトグラフィーにより分離精製し、精製酵素標品約９０ｍｇを得た。該方法により得た標品は電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一なバンドを示し、この時の比活性は約２５０Ｕ／ｍｇ蛋白質であった。
また、上記方法で得たグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素の酵素活性を、試薬Ｂの酸化型ＮＡＤの代りに酸化型チオＮＡＤを用いた以外は上記活性測定条件と同じ条件で測定した結果、この酵素の酸化型チオＮＡＤに対する反応性は、酸化型ＮＡＤに対するそれの６１％であった。
一方、比較例として、市販のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（Candida boidinii由来；ＳＩＧＭＡ社製）の酵素活性を、同様に測定した結果、当該酵素の酸化型チオＮＡＤに対する反応性は、酸化型ＮＡＤに対するそれの２２％であった。
【００８８】
実施例２ ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素の取得
本発明のベタイン−ホモシステインメチル転移酵素の活性測定は以下の試薬及び測定条件で行った。
〈試薬〉
試薬Ａ ５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）
試薬Ｂ １００ｍＭ ＤＬ−ホモシステイン溶液（試薬Ａで溶解）
試薬Ｃ １００ｍＭベタイン（試薬Ａで溶解）
試薬Ｄ ０．２％ペンタシアノアンミン鉄（III）ナトリウム水溶液
試薬Ｅ 酢酸
試薬Ｆ １０％亜硝酸ナトリウム水溶液
〈測定条件〉
酵素溶液２．３ｍｌに試薬Ｂ、試薬Ｃを各０．０７５ｍｌ、０．１２５ｍｌを加えて混和後、３７℃で１時間反応させる。反応終了後、直ちに試薬Ｄを５ｍｌ加えて攪拌し、一分間放置後、更に試薬Ｅ、試薬Ｆの順に各１ｍｌずつ加えて攪拌する。室温で３０分間放置後５２０ｍにおける吸光度を測定する。試薬Ａに溶解したＬ−メチオニンを酵素溶液の代わりに用いて同様の手順にて測定した吸光度より標準曲線を作成し、これから酵素反応により生成したメチオニンの量を測定する。上記条件にて１時間に１マイクロモルのメチオニンを生成する酵素量を１単位（Ｕ）とする。
遺伝子の塩基配列が公知であるヒト由来のベタイン−ホモシステインメチル転移酵素（J. Biol. Chem., 271(37), 22831 (1998)）をコードする遺伝子の全長を増幅可能な２種のプライマー（配列表の配列番号１および２に記載）を作成し、これを用いてヒト肝臓ｃＤＮＡ（クロンテック製）を鋳型として、ポリメラーゼチェーンリアクション（ＰＣＲ）法によりヒト由来のベタイン−ホモシステインメチル転移酵素をコードするＤＮＡ断片を増幅した。ＰＣＲは以下に示す反応液組成及び反応条件にて実施した。
〈反応液組成〉
ＫＯＤPlus ＤＮＡポリメラーゼ（東洋紡績製） １Ｕｎｉｔ／５０μｌ
１０倍濃度添付バッファー ５μｌ／５０μｌ
鋳型ｃＤＮＡ １．５μｇ／５０μｌ
ｄＡＴＰ、ｄＴＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰ 各０．２ｍＭ
プライマー 各２５pmols／５０μｌ
〈反応条件；下記（２）〜（４）を計３０サイクル実施した〉
（１）９５℃、２分間（変性）
（２）９５℃、３０秒間（変性）
（３）６０℃、３０秒間（アニーリング）
（４）６８℃、１分間（伸長反応）
ＰＣＲ反応後、反応液の一部をアガロースゲル電気泳動に供し、約１．２Ｋｂｐの単一の増幅バンドを確認した。この増幅断片をＤＮＡ断片精製キット（MagExtractor PCR&Gel Clean Up；東洋紡績製）を用いて回収した後、このＤＮＡ断片をＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ制限酵素にて処理した。次いで、ｐＥＴ１１ａプラスミド（ストラタジーン製）をＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ制限酵素で処理し、これを上記ＤＮＡ断片とＴ４ ＤＮＡリガーゼ（東洋紡績製）を用いて連結した。これを用いてEpicurian Coli BL21（DE3）-CodonPlusTM-RIL コンピテントセル（ストラタジーン製）を形質転換し、アンピシリンを含むＬＢ寒天培地（１％ポリペプトン、０．５％酵母エキス、０．５％ＮａＣｌ、１００μｇ／ｍｌアンピシリン；ｐＨ７．２）に塗布し、３７℃で１６時間培養した。
得られたコロニーは、アンピシリンを含むＬＢ培地６０ｍｌで３０℃、１６時間振とう培養後、塩化亜鉛およびアンピシリンを含む×２ＹＴ培地（１．６％ポリペプトン、１％酵母エキス、０．５％ＮａＣｌ、３４μｇ／ｍｌ塩化亜鉛、１００ｍｇ／ｍｌアンピシリン；ｐＨ７．２）６Ｌに接種し、３７℃で通気攪拌培養した。約２．５時間後、培養液の６００ｎｍの吸光度が約１．０に達した時点で、イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシドを１ｍＭになるように添加し、更に４時間培養を行った。培養終了後、培養液を遠心分離し、菌体を５ｍＭ２−メルカプトエタノール、１ｍＭ ＥＤＴＡを含む２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体フレンチプレスで破砕し、遠心分離を行い、上清液を得た。得られた酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸処理後、セファデックスＧ−２５による脱塩処理、ＤＥＡＥセファロースクロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、スーパーデックス２００ゲル濾過クロマトグラフィーにより分離精製し、精製酵素標品約５０ｍｇを得た。該方法により得た標品は、電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一なバンドを示し、この時の比活性は約２．１Ｕ／ｍｇ−蛋白質であった。
【００８９】
実施例３ ジメチルグリシンオキシダーゼの取得
本発明のジメチルグリシンオキシダーゼの活性測定は以下の試薬及び測定条件により行った。
〈試薬〉
試薬Ａ １００ｍＭジメチルグリシン溶液（１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）で溶解）
試薬Ｂ ０．１％４−アミノアンチピリン水溶液
試薬Ｃ ０．１％フェノール水溶液
試薬Ｄ ２５Ｕ／ｍｌペルオキシダーゼ（東洋紡績製；ＰＥＯ−３０１）水溶液
〈測定条件〉
試薬Ａ、試薬Ｂ、試薬Ｃおよび試薬Ｄを各１．５ｍｌ、０．３ｍｌ、０．６ｍｌ、０．６ｍｌの割合で混合し、試薬混液を作成する。この試薬混液３ｍｌを３７℃で約５分間予備加温した後、０．１ｍｌの酵素溶液を加えて混和し、３７℃で４分間反応させる。この時、５００ｎｍにおける１分間当たりの吸光度変化を測定する。盲検は酵素溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定する。上記条件にて１分間に１マイクロモルの過酸化水素を生成する酵素量を１単位（Ｕ）とする。
（１）Arthrobacter nicotianae IFO14234株からの単離
アルスロバクター・ニコチアナエ（Arthrobacter nicotianae）IFO14234株を６０ｍｌ ＬＢ培地（１％ポリペプトン、０．５％酵母エキス、０．５％ＮａＣｌ；ｐＨ７．２）に一白金耳植菌し、３０℃、１６時間振とう培養後、６Ｌのジメチルグリシンオキシダーゼ生産培地（２％ベタイン、１％ポリペプトン、１．６％酵母エキス、１．４％リン酸水素二カリウム、０．５５％リン酸二水素一カリウム）に移し、３０℃、４０時間通気攪拌培養した。 培養終了後、培養液を遠心分離し、２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体をガラスビーズで破砕し、遠心分離を行い上清液を得た。得られた酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸処理および硫安分画後、セファデックスＧ−２５による脱塩処理、ＤＥＡＥセファロースクロマトグラフィー、フェニルセファロースクロマトグラフィー、スーパーデックス２００ゲル濾過クロマトグラフィーにより分離精製し、精製酵素標品約１１０ｍｇを得た。該方法により得た標品は電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一なバンドを示し、この時の比活性は約９．３Ｕ／ｍｇ蛋白質であった。
また、上記方法で得たジメチルグリシンオキシダーゼの酵素活性を、０．０５ｍｍｏｌ／Ｌジチオスレイトール存在下で測定した以外は上記活性測定条件と同じ条件で測定した結果、その活性値はジチオスレイトール非存在下と比べて７１％であった。
（２）Streptomyces mutabilis IFO12800株からの単離
ストレプトマイセス・ミュータビリス（Streptomyces mutabilis）IFO12800株を、６０ｍｌジメチルグリシン生産培地（２％ベタイン、１％ポリペプトン、１．６％酵母エキス、１．４％リン酸ニ水素カリウム、０．５５％リン酸水素ニカリウム）に一白金耳接種し、３０℃、７２時間振とう培養した。培養終了後、培養液を遠心分離し、回収した菌体を２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体をガラスビーズで破砕し、遠心分離を行い、得られた抽出液をセファデックスＧ−２５により脱塩処理した。
また、上記抽出液について、ジメチルグリシンオキシダーゼの酵素活性を、０．０５ｍｍｏｌ／Ｌジチオスレイトール存在下で測定した以外は上記活性測定条件と同じ条件で測定した結果、その活性値はジチオスレイトール非存在下と比べて９８％であった。
さらに、上記２種のジメチルグリシンオキシダーゼのジメチルグリシンに対するＫｍ値を測定した結果、アルスロバクター・ニコチアナエ（Arthrobacter nicotianae）IFO14234株由来の酵素は１３．６ｍＭ、ストレプトマイセス・ミュータビリス（Streptomyces mutabilis）IFO12800株由来の酵素は１４．３ｍＭであった。
【００９０】
実施例４ ホルムアルデヒド標準液の測定（１）
本実施例で使用するＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼの活性測定はBiochimica. et Biophysica Acta,614(1980)p81-91記載の、またギ酸脱水素酵素の酵素活性はEur.J.Biochem.(1976)Feb 2;62(1)p151-160記載の方法にそれぞれ従って実施した。
本実施例で使用するＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼは以下にようにして取得した。
メタノール資化性酵母キャンジダ・ボイディニイ（Candida boidinii）ＩＦＯ１４７３株を６０ｍｌ ＹＰＤ培地（１％ Ｄ−グルコース、１％ポリペプトン、１％酵母エキス；ｐＨ５．０）に一白金耳植菌し、３０℃、２４時間振とう培養後、６ＬのＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ脱水素酵素生産培地（２％ メタノール、０．５％ Ｄ−グルコース、１％ ポリペプトン、１．６％酵母エキス、０．２％リン酸水素二カリウム、０．７％リン酸二水素一カリウム）に移し、３０℃、４８時間通気攪拌培養した。 培養終了後、培養液を遠心分離し、２０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁した。次いで菌体をガラスビーズで破砕した後、遠心分離を行い上清液を得た。得られた酵素液をポリエチレンイミンによる除核酸処理および硫安分画後、セファデックスＧ−２５による脱塩処理、ＤＥＡＥセファロースクロマトグラフィー、フェニルセファロースクロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイトクロマトグラフィーおよびスーパーデックス２００ゲル濾過クロマトグラフィーにより分離精製し、精製酵素標品約１０ｍｇを得た。該方法により得た標品は電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的にほぼ単一なバンドを示し、この時の比活性は約９００Ｕ／ｍｇ蛋白質であった。
種々の濃度のホルムアルデヒド水溶液１０μＬを試料に、１０／ｍｌグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（実施例１で調製）、１ｍＭ酸化型ＮＡＤ、３ｍＭグルタチオン、５Ｕ／ｍｌＳ−ホルミルグルタチオンハイドロラーゼ（上記で調製したもの）、５Ｕ／ｍｌギ酸脱水素酵素（シグマ製）をそれぞれ含む５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）３００μｌと混合し、３７℃で１０分間反応させ、３４０ｎｍの吸光度を測定した。盲検はホルムアルデヒド水溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定した。反応終了時の吸光度と試料のホルムアルデヒド濃度の関係は表１および図１に示す通りであり、ホルムアルデヒド濃度が０〜５００μＭの範囲において直線性を示し、定量が可能であった。
【００９１】
【表１】
なお、この測定系はサイクリング法ではない。
【００９３】
実施例５ ホルムアルデヒド標準液の測定（２）
種々の濃度のホルムアルデヒド水溶液１０μＬを試料に、１００Ｕ／ｍｌグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（実施例１で調製）、１ｍＭ酸化型チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、０．５ｍＭ還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、３ｍＭグルタチオン、０．１％トリトンＸ−１００をそれぞれ含む５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ８．０）３００μｌと混合し、３７℃で５分間サイクリング反応を実施し、４０５ｎｍの吸光度を測定した。盲検はホルムアルデヒド水溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定した。反応開始後１分後と５分後の吸光度の増加と、試料中のホルムアルデヒド濃度の関係は図２に示す通りであり、ホルムアルデヒド濃度が０〜５０μＭの範囲において直線性を示し、定量が可能であった。
さらに、表２および図２からは、サイクリング法において１μｍｏｌ／Ｌのホルムアルデヒドが測定できていることがわかる。
【００９４】
【表２】
実施例６ クレアチニン標準液の測定
種々の濃度のクレアチニン水溶液５μＬを試料に、１００Ｕ／ｍｌクレアチニンアミドハイドロラーゼ（東洋紡績製；ＣＮＨ−３１１）、５０Ｕ／ｍｌクレアチンアミジノハイドロラーゼ（東洋紡績製；ＣＲＨ−２２１）、１０Ｕ／ｍｌサルコシンオキシダーゼ（東洋紡績製；ＳＡＯ−３４１）、０．１％トリトンＸ−１００をそれぞれ含む５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ８．０）２００μｌと混合し、３７℃で５分間反応させた後、３００Ｕ／ｍｌグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（実施例１で調製）、３ｍＭ酸化型チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、１．５ｍＭ還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、９ｍＭグルタチオン、０．１％トリトンＸ−１００をそれぞれ含む５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ８．０）１００μｌを加え、３７℃で５分間サイクリング反応を実施し、４０５ｎｍの吸光度を測定した。盲検はクレアチニン水溶液の代わりに蒸留水を試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定した。反応開始後１分後と５分後の吸光度の増加と、試料中のクレアチニン濃度の関係は図３に示す通りであり、クレアチニン濃度が０〜１００μＭの範囲において直線性を示し、定量が可能であった。
さらに、表３および図３からは、サイクリング法において１０μｍｏｌ／Ｌのクレアチニンが測定できていることがわかる。
【００９６】
【表３】
実施例７ ホモシステイン標準液の測定
ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素およびジメチルグリシンオキシダーゼは、それぞれ実施例２および実施例３（１）で取得したものを使用した。また、ベタイン−ホモシステインメチル転移酵素およびジメチルグリシンオキシダーゼの活性測定は、それぞれ実施例２および実施例３と同様にして行った。
種々の濃度のＬ−ホモシスチン水溶液を０．５ｍＭジチオスレイトール中で、３７℃、３０分間加温して生成したＬ−ホモシステイン１０μＬを試料に、２０ｍＭベタイン、１Ｕ／ｍｌベタイン−ホモシステインメチル転移酵素（上記で調製したもの）、７Ｕ／ｍｌジメチルグリシンオキシダーゼ（上記で調製したもの）、５Ｕ／ｍｌサルコシンオキシダーゼ（東洋紡績製；ＳＡＯ−３４１）をそれぞれ含む２０ｍＭ ＰＩＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．３）２００μｌと混合し、３７℃で５分間反応させた後、３００Ｕ／ｍｌグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素（実施例１で調製）、３ｍＭ酸化型チオニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、１．５ｍＭ還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、９ｍＭグルタチオン、０．１％トリトンＸ−１００をそれぞれ含む５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ８．２）１００μｌを加え、３７℃で５分間サイクリング反応を実施し、４０５ｎｍの吸光度を測定した。盲検はＬ−ホモシステイン溶液の代わりに０．５ｍＭジチオスレイトールを試薬混液に加えて、以下同様に吸光度変化を測定した。反応開始後１分後と５分後の吸光度の増加と、試料中のホモシステイン濃度の関係は図４に示す通りであり、ホモシステイン濃度が０〜１００μＭの範囲において直線性を示し、定量が可能であった。
さらに、表４および図４からは、サイクリング法において１μｍｏｌ／Ｌのホモシステインが測定できていることがわかる。
【００９８】
【表４】
【発明の効果】
本発明によれば、ホルムアルデヒドまたは反応中間体としてホルムアルデヒドカが生成するクレアチニン、クレアチン、ホモシステインの高感度且つ簡便な測定が可能である。
【０１００】
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例４における、吸光度とホルムアルデヒド濃度との関係を示す図である。
【図２】実施例５における、吸光度とホルムアルデヒド濃度との関係を示す図である。
【図３】実施例６における、吸光度とクレアチニン濃度との関係を示す図である。
【図４】実施例７における、吸光度とホモシステイン濃度との関係を示す図である。
Claims (4)
- 試料に、アルコールオキシダーゼを作用させ、該酵素反応により生成したホルムアルデヒドに、グルタチオン及びメタノール資化性酵母ハンゼヌラ・ノンファーメンタンス（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ｎｏｎｆｅｒｍｅｎｔａｎｓ）ＩＦＯ１４７３株由来のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を作用させ、該酵素反応より生成した化合物の吸光度を分析することを特徴とするメタノールの測定方法。
- 試料に、ウリカーゼを作用させ、該酵素反応により生成した過酸化水素を、さらにメタノールの存在下でカタラーゼと作用させることにより生成したホルムアルデヒドに、グルタチオン及びメタノール資化性酵母ハンゼヌラ・ノンファーメンタンス（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ｎｏｎｆｅｒｍｅｎｔａｎｓ）ＩＦＯ１４７３株由来のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素を作用させ、該酵素反応より生成した化合物の吸光度を分析することを特徴とする尿酸の測定方法。
- 緩衝液、グルタチオン、メタノール資化性酵母ハンゼヌラ・ノンファーメンタンス（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ｎｏｎｆｅｒｍｅｎｔａｎｓ）ＩＦＯ１４７３株由来のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素およびアルコールオキシダーゼを少なくとも含有してなることを特徴とするメタノール測定用試薬組成物。
- 緩衝液、グルタチオン、メタノール資化性酵母ハンゼヌラ・ノンファーメンタンス（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ｎｏｎｆｅｒｍｅｎｔａｎｓ）ＩＦＯ１４７３株由来のグルタチオン依存性ホルムアルデヒド脱水素酵素およびウリカーゼ、カタラーゼを少なくとも含有してなることを特徴とする尿酸測定用試薬組成物。
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