JP4047275B2 - ４−［（４−チアゾリル）フェノキシ］アルコキシ−ベンズアミジン誘導体の骨粗しょう症治療剤としての用途 - Google Patents

Description

本発明は下記化学式１で表される４−［（４−チアゾリル）フェノキシ］アルコキシ−ベンズアミジン誘導体を含有した骨粗しょう症予防及び治療用医薬組成物に係り、さらに詳しくはロイコトリエン−Ｂ_４（Ｌｅｕｋｏｔｒｉｅｎｅ−Ｂ４；以下、“ＬＴＢ−４”と略称する）の受容体拮抗作用を有することと知られた下記化学式１で表される４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン（以下、“ＤＷ１３５２”と称する）またはＮ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン（以下、“ＤＷ１３５０”と称する）の骨粗しょう症予防及び治療剤用医薬組成物に関する。

前記式でＲはＨまたはＯＨである。

骨は身体の物理的支持体として必要な骨量及び骨格を維持する役割を果たし、カルシウム（Ｃａ^２＋）どの保管庫としてカルシウムの血中濃度の維持に大事な役割を果たしている。このために、骨の成長とは、骨の再構築（ｒｅｍｏｄｅｌｌｉｎｇ）サイクルにおける骨芽細胞及び破骨細胞の活動の間の代謝バランスによる。したがって、骨は骨吸収及び骨形成のバランスが破壊されると、骨芽細胞により入れ替わる骨組織の量が破骨細胞により吸収される骨組織の量に追いつかず、その結果、骨密度又は骨量の減少を引き起こす骨粗しょう症を発症させる。これは中年・老年層の女性に多くみられる疾患である。

今日まで、破骨細胞の機能を阻害し過多な骨吸収の抑制を可能にする治療剤が開発されてきた。ＬＴＢ−４の受容体拮抗作用といった、代わりとなる治療剤の開発も試みられたが、骨吸収の抑制効果が不十分であり、骨粗しょう症の有効は治療剤としては失敗であった。従って、破骨細胞による骨吸収を効果的に抑制する、骨粗しょう症の薬剤の開発が早急に求められている。

４−［（４−チアゾリル）−フェノキシ］アルコキシ−ベンズアミジン誘導体はロイコトリエン−Ｂ_４（Ｌｅｕｋｏｔｒｉｅｎｅ−Ｂ_４；以下、“ＬＴＢ−４”と略称する）の受容体拮抗作用を有すると既に公知の物質であり、その製造方法も共に公知されている（李ソンウン，Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ Ｎａｔｕｒａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ ａｎｄ Ｄｅｓｉｇｎｅｄ Ｎｅｗ Ｈｙｂｒｉｄ Ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｏｆ ＬＴＢ_４ Ｒｅｌａｔｅｄ Ｄｉｓｅａｓｅ，釜山大学校大学院理学博士学位論文，１９９９．８）。天然物であるＬＴＢ−４は５−リポキシゲナーゼ経路によって形成されるアラキドン酸の代謝産物の一つであるが［Ｆｏｒｄ−Ｈｕｔｃｈｉｎｓｏｎ，Ａ．Ｗ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（Ｌｏｎｄｏｎ），２８６，２６４−２６５，１９８０］、最近の研究では、アラキドン酸の代謝産物が骨組織代謝に与える影響に注目があがっている。

造骨細胞で生成される５−リポキシゲナーゼ代謝産物が、骨吸収を促進し（Ｍｅｇｈｊｉ，Ｓ．ｅｔ．ａｌ．，Ｃａｌｃｉｆ．Ｔｉｓｓ．Ｉｎｔ．３６，１３９−１４９，１９８８）、巨大細胞種（ｇｉａｎｔ ｃｅｌｌ ｔｕｍｏｒ）で得られた間質細胞Ｃ４３３細胞が５−リポキシゲナーゼ代謝産物を生成し、破骨細胞数を増やし活性を促進させ（Ｍｕｎｄｙ，Ｇ．Ｒ．，Ｊ．Ｂｉｏ．Ｃｈｅｍ．２６８，１００８７−１００９４，１９９３）、骨吸収機能は骨組織培養時に合成ＬＴＢ−４を添加することにより骨吸収が促進され（Ｂｏｎｅｗａｌｄ，Ｌ．Ｆ．，Ｊ．Ｂｏｎｅ Ｍｉｎｅｒ．Ｒｅｓ．１１，５２１−５２９，１９９６）、ＬＴＢ−４はｉｎ ｖｉｔｒｏ、ｉｎ ｖｉｖｏの両方で破骨細胞生成を通して骨吸収を引き起こす（Ｂｏｎｅｗａｌｄ，Ｌ．Ｆ．，Ｊ．Ｂｏｎｅ Ｍｉｎｅｒ．Ｒｅｓ．１１，１６１９−１６２７，１９９６）とそれぞれ実証された。近年では、ＬＴＢ−４受容体に対する拮抗作用を示すある種の化合物は、骨組織の塞栓症疾患に影響を与えると見て、これらに対する多角的な研究がなされつつある。

本発明者らは鋭意研究を行い、有効なＬＴＢ−４受容体拮抗剤のように骨吸収抑制及び骨形成促進効果を持つ多種多様な構造の化合物を多数確認した。これらのうち次の化学式２の３−アミノ−１、２−ベンゾイソオキサゾール誘導体が骨粗しょう症の予防及び治療に効果があり、ＬＴＢ−４受容体について拮抗作用を示すことを確認した。本発明者らはこれらの化合物について１９９８年２月４日付けで特許出願した（ＫＲ９８−３１３８号）。

前記式においてｎは３〜５の整数である。

本発明者らは骨粗しょう症の代替治療法を見出すべく、ＬＴＢ−４受容体拮抗剤としての４−［（４−チアゾリル）フェノキシ］アルコキシ−ベンズアミジン誘導体についてその抑制作用を試験してきた。これら誘導体のうち、４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン又はＮ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン化合物が破骨細胞による骨吸収機能を抑制し、骨の欠損を防止するのにきわめて効果的であると言うことを見出した。このようにして、本発明は完成するに至った。

本発明は化学式１で表される４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン又はＮ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジンを含む医薬組成物の骨粗しょう症予防及び治療のための使用に関する。

前記式でＲはＨまたはＯＨである。

４−［（４−チアゾリル）−フェノキシ］アルコキシ−ベンズアミジン誘導体は公知の方法（李ソンウン，Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ Ｎａｔｕｒａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ ａｎｄ Ｄｅｓｉｇｎｅｄ Ｎｅｗ Ｈｙｂｒｉｄ Ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｏｆ ＬＴＢ４ Ｒｅｌａｔｅｄ Ｄｉｓｅａｓｅ，釜山大学大学院理学博士学位論文，１９９９．８）によって製造可能である。また、前記化学式１で表される本発明の化合物は以下の物質、即ち、無機酸（塩酸、臭素酸、硫酸及びリン酸）や有機酸（クエン酸、酢酸、乳酸、酒石酸、フマル酸、ギ酸、プロピオン酸、シュウ酸、トリフルオロ酢酸、メタンスルホン酸、安息香酸、マレイン酸、グルコン酸、グリコール酸、コハク酸、４−トルエンスルホン酸、ガラクトロン酸、エンボン酸、グルタミン酸またはアスパラギン酸）を用いた、薬剤学的に許容される塩としても使用可能である。本発明においては、無機酸としては塩酸が、また有機酸としてはメタンスルホン酸が好ましく用いられる。

本発明の骨粗しょう症組成物は各種の投与経路を通して骨粗しょう症を治療するのに有効量を投与できる。その剤型、投与量は投与目的、投与経路及び疾病の重傷度及び体重などを考慮して当業者が容易に決定することができる。

本発明の骨粗しょう症組成物は化学式１で表される４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジンまたはＮ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジンと薬剤学的に許容される担体を含有する。薬剤学的に許容される担体には滅菌溶液、錠剤、コーティング錠及びカプセルのような公知の剤型に使われる標準の製薬学的担体のうちいずれも含まれる。典型的にこのような担体は澱粉、ミルク、糖、特種なクレイ、ゼラチン、ステアリン酸、タルク、植物性油脂、ガム、グリコール類などの賦形剤またはその他の公知の賦形剤を含む。また、このような担体には風味剤、色素添加剤及び他の成分が含まれる。このような担体を含有する組成物は周知の方法によって剤型化できる。

４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン又はＮ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン又はその塩を含有する本発明の骨粗しょう症組成物は公知の方法、例えば経口、静脈内、筋肉内又は経皮投与などの方法によって投与できるが、投与方法はこれらに限定されるものではない。

骨粗しょう症の予防及び治療効果を期するための４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン又はＮ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジンの投与量は極めて広範である。骨粗しょう症治療剤としての有効量は１日に１０〜１０００ｍｇである。投与量及び投与回数は製剤の特性、投与対象の体重及び状態、炎症のサイズ及び投与経路によって当業者が容易に決定することができる。

次の実施例は本発明をさらに詳しく説明する。
＜破骨細胞の分化抑制効果＞
各実験物質が破骨細胞の形成と分化過程に及ぼす影響を造骨細胞との共存培養を通して評価した。
１．細胞の用意
イ．骨髄細胞の用意
６−８週齢の雄ｄｄＹマウスから無菌的に頸骨及び大腿骨を摘出し、摘出した硬骨から注射器（２１Ｇ、緑十字）を用いて骨髄細胞を回収した。α−ＭＥＭ培地（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ社、炭酸水素ナトリウム２．０ｇ／Ｌ、ストレプトマイシン１００ｍｇ／Ｌ、ペニシリン１００，０００ｕｎｉｔ／ｍＬを添加した後濾過滅菌する）５ｍＬに骨髄細胞を懸濁して集めて８００ｘｇで５分間遠心分離後全て回収した。骨髄細胞内の赤血球を除去するためＴｒｉｓ ＨＣｌ（０．８３％ ＮＨ_４Ｃｌ、ｐＨ７．５）３ｍＬを添加してよく混ぜた。上記細胞を遠心分離にかけた後、回収した骨髄細胞の有核細胞数を確かめ、共存培養のために早速使用した。

ロ．骨芽細胞の用意
１−２日齢の新生ＩＣＲマウスから頭蓋冠を無菌的に摘出し、ＰＢＳ溶液で洗い出した後、混合酵素溶液（０．２％コラーゲナーゼと０．１％ディスパーゼ）を用いて３７℃で培養した。この作業を連続的に繰り返し、（１０、１０、１０、２０、２０、２０分）骨芽細胞の特性を有する細胞が多く存在する３〜６回群の細胞を集中的に収集して培養液（ｓｅｒｕｍ ｆｒｅｅ α−ＭＥＭ）で洗浄した。洗浄された細胞を１０％ＦＢＳが含まれたα−ＭＥＭで２〜３日ほど培養した。その後１次継代培養し集めた細胞を実験に使用し、回収した細胞を１×１０^６ｃｅｌｌ／ｍＬの濃度になるよう稀釈し−７０℃で保管した。

２．破骨細胞の分化程度の測定
イ．試料の用意
本発明の試験物質であるＮ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン（ＤＷ１３５０）及び４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジン（ＤＷ１３５２）と対照群として使用されるＬＴＢ−４受容体拮抗剤であるＮ、Ｎ−ジイソプロピル−４−［４−（３−アミノベンゾ［ｄ］イソオクサゾル−６−イルオキシ）ブトキシ］−３−メトキシベンズアミド（以下、“ＨＳ−１１４１”と称する）及び４−［５−［４−（アミノイミノメチル）フェノキシ］ペントキシ］−３−メトキシ−Ｎ、Ｎ−ビス（１−メチルエチル）ベンズアミドマレイン酸（Ｍｏｒｒｉｓｓｅｙ，Ｍ．Ｍ．，Ｓｕｈ，Ｈ．アメリカ特許第５，４５１，７００号、以下“ＣＧＳ−２５０１９Ｃ”と称する）を全て滅菌蒸溜水に溶解して各所望の濃度に稀釈し、細胞培養液に入る最終試料の体積は１：１０００にした。

ロ．共存培養を通した試料との反応
破骨細胞の分化のために前記１番で用意した骨髄細胞と頭蓋冠から収集した骨芽細胞を共存培養した。１０％ＦＢＳが含まれたα−ＭＥＭ培地を使用して９６ウェルプレートに骨髄細胞（２５，０００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２）と骨芽細胞（１０，０００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２）を分柱して入れた後、実験しようとする試料を入れて７日間培養した。培養の間デキサメタゾン（１０^−６Ｍ）及びビタミンＤ３（１０^−９Ｍ）のような分化因子を培養の初日より複合投与し、２〜３日毎に前記試料と分化因子が混合された新たな培地に交換した。

ハ．破骨細胞の分化程度の評価
１） ＴＲＡＰ（Ｔａｒｔａｒａｔｅ Ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ Ａｃｉｄ Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ）染色液の調製
ＴＲＡＰ染色液に対して陽性反応を示す破骨細胞の特性を測定するためにＴＲＡＰをマーカー（ｍａｒｋｅｒ）として使用した。ＴＲＡＰ染色液の調剤は基質Ｎａｐｈｔｏｌ ＡＳ−ＭＳホスフェート（ｓｉｇｍａ Ｎ−４８７５）５ｍｇ及び色素（Ｆａｓｔ Ｒｅｄ Ｖｉｏｌｅｔ ＬＢ ｓａｌｔ）２５ｍｇをＮ、Ｎ−ジメチルホルムアミド（約０．５ｍＬ）に溶かした。５０ｍＭ酒石酸を含んだ０．１Ｎ ＮａＨＣＯ_３緩衝液５０ｍＬを添加した後冷蔵保管し染色液として利用した。
２） 染色法
７日間培養した後、細胞から培養液を除去し、ＰＢＳで１回洗浄した後１０％ホルマリンを含んだＰＢＳに細胞を２〜５分間固定した。エタノールとアセトンの混合液（１／１）に約１分間再度固定してから乾燥した。細胞はさらにＴＲＡＰ染色液にて１５分間処理した後水洗い乾燥し、顕微鏡下で染色有無を判断してその結果を判定した。
３） 結果の判定
顕微鏡下でＴＲＡＰ−陽性反応を示し３個以上の核を有する破骨細胞だけを観察してその数を数え、信頼性のあるデータを得るため各実験群について３回以上の反復試験を施した。
結果は対照群に対する各実験群の成熟破骨細胞分化抑制程度を％値で表示し、５０％破骨細胞分化抑制を示す濃度をＩＣ_５０と算定して下記の表１に示した。
それぞれの試験物質の骨粗しょう症治療効果を、ＣＧＳ−２５０１９Ｃ及びＨＳ−１１４１（アメリカ特許登録第６，１５０，３９０号、韓国特許出願第９８−３１３８号）、ＬＴＢ−４受容体に対する拮抗作用を有する公知のＣＧＳ−２５０１９Ｃと比較対照した。

前記表１に示した結果のように、本発明のＤＷ１３５０とＤＷ１３５２はＨＳ−１１４１及びＣＧＳ−２５０１９Ｃに比べて破骨細胞の分化及び形成過程に対する優れた抑制能力を有していることが分かる。極めて低い濃度下でも成熟した破骨細胞への分化過程に影響を与える本薬物の特性は骨粗しょう症治療及び予防のために有利な条件を持っていることと立証される。

＜Ｆｕｓｉｏｎ ａｓｓａｙ＞
このアッセーは、未熟の未融合破骨細胞（ｐｒｅｆｕｓｉｏｎ ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｓ（ｐＯＣ）、１個以上の核を有する破骨細胞で構成）が成熟した破骨細胞（ｍｕｌｔｉｎｕｃｌｅａｔｅｄ ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔ（ＯＣＬ））に転換して分化する課程中、各試験物質が破骨細胞融合において、どのような影響を与えるか評価する分析方法である（Ｇｒｅｇｇ Ｗｅｓｏｌｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｃｅｌｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ２１９，６７９−６８６，１９９５）。

１．未融合破骨細胞（ｐＯＣ）の用意
未融合破骨細胞は前記実施例１で用意した骨髄細胞と骨芽細胞との共存培養を通して得られる。１００ｍｍ培養トレイに骨芽細胞（約５×１０^５ ｃｅｌｌ／ｐｌａｔｅ）と骨髄細胞（約１×１０^７ ｃｅｌｌｓ／ｐｌａｔｅ）を混合して接種した。デキサメタゾン（１０^−６Ｍ）とビタミンＤ３（１０^−９Ｍ）の分化因子を培養の初日より複合投与し、２日毎に分化因子が含まれた新たな培地に交換した。１個以上の破骨細胞が融合された状態である未融合破骨細胞は共存培養４日程度で多く形成されるため、４日目に細胞を分離して利用した。細胞から培養液を除去し０．２％コラーゲナーゼ溶液を４ｍＬ添加した後、３７℃で２０分間培養して付着細胞を分離した。この際、分離された殆んどの細胞は造骨細胞であってＰＢＳ溶液で２〜３回洗ってから残されている造骨細胞を全て除去した。１０％ＢＳＡを含有するエチスタチン（ｅｃｈｉｓｔａｔｉｎ）を加えて２０分間反応させ残されている未融合破骨細胞を分離させた後、遠心分離によって細胞を回収した。

２．融合実験の反応
各濃度別に稀釈した実験物質をα−ＭＥＭ培地（１０％ ＦＢＳ添加）に所望の濃度に稀釈してよく混ぜた後、９６ウェルマイクロプレート（９６ｗｅｌｌ ｍｉｃｒｏｐｌａｔｅ）に１００ｕＬ／ｗｅｌｌで添加した。前記１番項から分離した破骨細胞型単核細胞を９６ウェルマイクロプレートに５×１０^３ｃｅｌｌ／１００ｕＬ／ｗｅｌｌで添加し、２４時間３７℃で培養し破骨細胞の融合がなされるようにした。この際、試料を添加しない対照群と陽性対照群についても同一な条件下で実験を行った。陽性対照群としてはＨＳ−１１４１とＣＧＳ−２５０１９ＣだけではなくＤＷ１３５０及びＤＷ１３５２と類似化学構造を有している４−｛４−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ブトキシ｝−ベンズアミジン（以下、“ＤＷ１３５１”と称する）及びＮ−ヒドロキシ−４−｛４−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ブトキシ｝−ベンズアミジン（以下、“ＤＷ１３４９”と称する）なども使った。

２．破骨細胞の融合程度の測定及び分析
細胞を培養した後培養液を除去しＰＢＳで１回洗浄して１０％ホルマリンを含んだＰＢＳ溶液に細胞を約５分間固定した。エタノール／アセトン（１／１）に約５分間再度固定した後乾燥した。細胞をＴＲＡＰ染色液で１５分間処理した後水洗い乾燥して顕微鏡下で観察した。融合によって単核細胞から多核細胞（１１個以上の核を有する破骨細胞）に分化されたＴＲＡＰ陽性破骨細胞数を測定した。結果は測定された細胞数を対照群と比較して示した差異を％抑制濃度にして表２に示した。

前記表２の試験結果から分かるように、ＤＷ１３５０とＤＷ１３５２は破骨細胞の融合過程に対し優れた抑制効果（ＩＣ_５０：それぞれ０．８１と０．７４ｕＭ）を示した。より詳しくは、ＤＷ１３５０及びＤＷ１３５２の融合抑制効果によって成熟破骨細胞の形成が抑制され、その結果、破骨細胞由来の骨吸収機能が著しく抑制される。対照薬物として使われた公知のＣＧＳ−２５０１９Ｃは薬物濃度を問わず破骨細胞の融合阻害効果が殆んど見られず、ＨＳ−１１４１は薬物濃度の依存性が見られるが、ＤＷ１３５０とＤＷ１３５２より低い抑制能力を示した。特に、ＤＷ１３５０及びＤＷ１３５２と化学構造的に極めて類似したＤＷ１３４９及びＤＷ１３５１もやはりＨＳ−１１４１のように薬物濃度の依存性が見られるが、ＤＷ１３５０及びＤＷ１３５２より著しく低い抑制能力を示した。

従って、４−［（４−チアゾリル）フェノキシ］アルコキシ−ベンズアミジン誘導体の中でもＤＷ１３５０及びＤＷ１３５２は共に破骨細胞融合機能を阻害することにより、成熟破骨細胞の形成を抑制する点で新たな骨粗しょう症治療剤として開発されることが期待される。

＜骨吸収能の測定（ｐｉｔ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）＞
成熟した破骨細胞（ＯＣＬ）の主機能は、骨吸収を通して骨のミネラルを除去することである。本実験は象牙切片を使用して破骨細胞による骨吸収能力の阻害に関して、各実験物質の抑制効果を測定する評価法である（Ｅｉｊｉｒｏ Ｊｉｍｉ ｅｔ ａｌ．Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ １３７，ｐ２１８７−２１９０，１９９６）。

１．成熟破骨細胞の用意
イ．コラーゲンジェル溶液の調剤
コラーゲンジェル（ｃｅｌｌ ｍａｔｒｉｘ Ｔｙｐｅ Ｉ−Ａ）培養トレイを用いて骨髄細胞及び骨芽細胞の共存培養を行った。これらの組成はコラーゲン、５倍濃縮されたα−ＭＥＭ培地及び０．０５Ｍ ＮａＯＨ緩衝液（２．２％ＮａＨＣＯ_３、ｐＨ７．４）をそれぞれ７：２：１の比率で低温で混合して低温保管した。その後１００ｍｍ培養トレイに４ｍＬの混合溶液を添加した後均一に塗布し３７℃で５分間放置した。

ロ．共存培養による成熟破骨細胞の用意
α−ＭＥＭ培地を使って前記実施例１で分離した骨髄細胞と骨芽細胞をそれぞれコラーゲンジェルが塗布された１００ｍｍ培養トレイに骨芽細胞（約５×１０^５ ｃｅｌｌ／ｐｌａｔｅ）と骨髄細胞（約１×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｐｌａｔｅ）を混合して接種した。ビタミンＤ（１０^−９Ｍ）及びデキサメタゾン（１０^−６Ｍ）のような分化因子の存在下で共存培養した。前述した方法のように、骨吸収能力を有する多核の成熟破骨細胞が７日間の共存培養を通して得られた。細胞から培養液を除去し、０．２％コラーゲナーゼを添加し２０分間培養して細胞を分離させた後、遠心分離により細胞を回収した。回収された粗（ｃｒｕｄｅ）破骨細胞は再びα−ＭＥＭ培地にて５，０００ｃｅｌｌｓ／１００ｕｌになるように稀釈した。

２．ヘマトキシリン（ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ）染色薬の製造
ヘマトキシリン１ｇを精製水５００ｍｌに溶かした後、精製水５００ｍｌ及びヨウ化ナトリウム０．２ｇを加え１５分間撹拌した。更にアンモニウムミョウバン５０ｇ及び酢酸（氷醋酸）７．５ｍｌを加え十分に撹拌してから濾過して染色薬として使用した。

３．象牙切片上における反応
１ｍｍ厚さに切断された象牙切片を滅菌して９６ウェルプレートに一つずつ入れ、α−ＭＥＭ培地（１０％ ＦＢＳ）１００μｌを添加した。破骨細胞のピット形成阻害効果を測定するために実験物質を濃度別に最高３μｌの量で添加した。試料添加後用意された破骨細胞溶液を１００μｌ入れ、よく振って混合した後、３７℃、５％ ＣＯ_２下で２４時間培養した。象牙切片に形成されたｐｉｔを観察するため、破骨細胞が成長した部分を上向きにして９６ウェルプレートから取り出してペーパタオルに載せた。象牙上の細胞を除去した後、ヘマトキシン溶液１０μｌを象牙上に滴下して約５分ほど染色を施した。染色液を除去し象牙切片の表面を柔らかい綿棒で拭いて染色液を完全に除去した。

４．生成されたピット（ｐｉｔ）の観察と分析
顕微鏡上で象牙切片に生成されたピットの数を測定し対照群と比較して示した差を％抑制活性程度で表した。

前記表３に示した通り、ＤＷ１３５０とＤＷ１３５２は破骨細胞の主機能である骨吸収機能について優秀な抑制能力を示している。ＤＷ１３５０は０．０７５ｕＭ、ＤＷ１３５２は０．１３１ｕＭのＩＣ_５０値を持って、ＨＳ−１１４１より３〜６倍ほどのさらに優秀な骨吸収抑制能力を有していることが前記実験を通して観察された。しかし、陽性対照群であるＣＧＳ−２５０１９Ｃは本実験について極めて低い骨吸収阻害機能を有することが分かった。

＜造骨細胞活性測定のためのＡＬＰ活性評価＞
これは造骨細胞の骨の形成と密接な関係を有しているＡＬＰ（アルカリ性ホスファターゼ）の活性を測定して造骨細胞の分化及び活性の程度を評価する実験である（Ｙ．Ｗａｄａ ｅｔ ａｌ．，Ｂｏｎｅ，２２，４７９−４８５，１９９８）。

造骨細胞から由来されたＭＣ３Ｔ３−Ｅ１細胞をウェル当たり３，０００ｃｅｌｌｓずつ９６ウェルプレートに培養して２４時間経過した後に分化因子であるアスコルビン酸（１００ｕｇ／ｍｌ）及び５ｍＭ β−グリセロリン酸が添加された新たな培地に交換した。実験薬物を同様に処理し、分化因子を添加した新たな培地へ３日毎に交換した。２週間後、ＡＬＰの活性を測定するために培養を止め、上澄液を除去する。０．５％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を添加し細胞を溶解させた後、５０μｌを取り出して、これにｐ−ニトロフェニルホスフェート（１．２１ｍＭ）を１００μｌ添加する。この混合物を３７℃で３０分間培養し、０．２Ｎ水酸化ナトリウムを５０μｌ添加して反応を止めさせる。標準物質としてｐ−ニトロフェノールを使って４０５ｎｍの吸光度で標準曲線を描いてから、反応した実験物質の吸光度を測定して生成されたｐ−ニトロフェノールの量を測定した。
ＡＬＰ活性の単位表示は各実験物質のタンパク質量を測定した後時間（分当たりあるいは時間当たり）当たり１μｇのタンパク質当たり生成するｐ−ニトロフェノール（ｎＭ）の量に決定し、その結果を次の表４に示した。

以上の結果のように、ＤＷ１３５０は対照群を含む全ての実験群に比べて最大の数値のＡＬＰ活性を示した。ＤＷ１３５２も対照群、ＨＳ−１１４１及びＣＧＳ−２５０１９Ｃに比べて優れた実験結果を示した。本実験を通してＤＷ１３５０及びＤＷ１３５２は造骨細胞の分化及び形成に密接な影響を与えて造骨細胞の活性を増加させる効果を有していることが分かった。従って、ＤＷ１３５０及びＤＷ１３５２は破骨細胞の抑制能力と同時に造骨細胞の活性能力を揃えている点で骨粗しょう症予防及び治療に大変有用な薬剤であるといえる。

前述した実施例の結果から、ＬＴＢ−４受容体の拮抗剤として働くＤＷ１３５０及びＤＷ１３５２は共に破骨細胞の分化、形成、融合及び骨吸収に対して優秀な阻害効果を発揮することが確認できた。これらの薬剤は共に、造骨細胞活性への刺激を増大させることで、破骨細胞の機能を抑制することができるので、ＨＳ−１１４１及びＣＧＳ−２５０１９Ｃだけではなく、構造が類似しているＤＷ１３４９及びＤＷ１３５１と比べても、骨粗しょう症予防及び治療の用途に適した物質であることが証明できるであろう。従って、本発明の化合物は、破骨細胞による骨の吸収を抑え、造骨細胞による骨の形成を促進することを目的とした、ＬＴＢ−４と関わる各種疾病を含む骨粗しょう症の治療に新たな基剤を提供することができる。

Claims (5)

1. 下記式で表される化合物またはその塩を有効量含有する骨粗しょう症予防又は治療剤。
   

   

   前記式でＲはＨまたはＯＨである。
2. Ｎ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジンまたはその塩を有効量含有する、請求項１に記載の骨粗しょう症予防及び治療剤。
3. ４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジンまたはその塩を有効量含有する、請求項１に記載の骨粗しょう症予防又は治療剤。
4. Ｎ−ヒドロキシ−４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジンのメタンスルホン酸塩を有効量含有する、請求項２に記載の骨粗しょう症予防又は治療剤。
5. ４−｛５−［４−（５−イソプロピル−２−メチル−１、３−チアゾール−４−イル）フェノキシ］ペントキシ｝−ベンズアミジンの塩酸塩を有効量含有する、請求項３に記載の骨粗しょう症予防又は治療剤。