JP2814433B2 - mRNAの翻訳 - Google Patents
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- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
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- C12N9/2434—Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
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- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- C12N9/50—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
- C12N9/64—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
- C12N9/6421—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
- C12N9/6478—Aspartic endopeptidases (3.4.23)
- C12N9/6481—Pepsins (3.4.23.1; 3.4.23.2; 3.4.23.3)
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明はmRNAの翻訳のエンハンサーに関する。
真核生物及び原核生物が翻訳を開始するメカニズム
は、一部共通の特徴を有しているが、他の点では異なっ
ていることが知られている。真核生物のメッセージは機
能上モノシストロニック(monocistronic)であって、
翻訳は5′末端で始まり、この末端におけるキャップ構
造(m7G5′ppp5′G...)の存在によって促進される〔シ
ャトキン,セル,第9巻,第645頁,1976年(Shatkin,Ce
ll,9,645(1976)〕。原核生物のメッセージはポリシス
トロニック(polycistronic)であって、5′末端以外
の部位で開始しうるが、キャップの存在は翻訳促進に繋
がらない。真核生物及び原核生物は双方ともコドンAUG
で翻訳を開始するが、但し原核生物はGUGを利用するこ
ともできる。双方における翻訳は、開始コドン近くのあ
る配列によって促進される。前核生物の場合には、それ
は所謂シャイン−ダルガルノ(Shine−Dalgarno)配列
(開始コドンより上流のプリンに富む3〜10ヌクレオチ
ドの領域)である。真核生物の場合には、それは(AUG
開始コドンのAが+1と表示される場合に)−3位のプ
リン及び+4位のG残基であるが、更に効果的なチュー
ニング(tuning)のためには他の配列も加わる必要があ
る。これはスキャニング(scannig)モデルの“緩和”
バージョン(“relaxed"version)の一部であり〔コザ
ック,ヌクレイック・アシッズ・リサーチ,第12巻,第
857頁,1984年(kozak,Nuclec Acids Research,12,857
(1984)〕、それによって40Sリボソームサブユニット
が真核生物mRNAの5′末端で結合し、モデルの要求を満
たす最初のAUGと出会うまで、即ち60Sサブユニットが40
Sサブユニットと結合してタンパク質合成が始まる時点
まで、配列をスキャニングし続ける。この点について
は、下記コザックの文献を参考にすることができる:セ
ル,第15巻,第1109頁,1978年;ヌクレイック・アシッ
ズ・リサーチ,第9巻,第5233頁,1981年;及びセル,
第44巻,第283頁,1986年。 開始コドンの中及び近辺で必要なこれらの配列以外
に、翻訳を複製の面で促進させることが知られた他のmR
NA領域は存在しない。 真核生物の転写において、“エンハンサー”領域とし
て知られる配列は転写促進を図ることができる。 RNAウイルスは、正もしくは負の一重鎖RNA又は二重鎖
RNAを含んでいる。RNAウイルス群としては、大多数の植
物ウイルス(90%以上)、一部の動物ウイルス及び数種
のバクテリオファージがある。 RNAウイルスの中で最も広く研究されたものの1つ
は、タバコモザイクウイルス(以後TMVと称される)で
ある。TMVの完全ヌクレオチド配列が知られている〔ゲ
レットら,プロシーディング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンス USA,第79巻,第5818頁,198
2年(Goelet et al.,Proceeding of National Academy
of Science USA,79,5818(1982))〕。TMV RNAの5′
領域は鎖長70ヌクレチオドのRNアーゼT1耐性断片として
1965年に始めて単離されたが〔マンドリー,ツァイトシ
ュリフト・フュール・フェレルブングスレーレ,第97
巻,第281頁,1965年(Mundry,Zeitschrift fr Vererb
ungslehre,97,281(1965))〕、内部G残基を有してい
なかった〔マンデレル,ジャーナル・オブ・バイオロジ
カル・ケミストリー,第243巻,第3671頁(Mandeles,Jo
urnal of Biological Chemistry,243,3671)〕。この領
域〔以後、オメガと称される;マンデレス,ジャーナル
・オブ・モレキュラー・バイオロジカル・ケミストリー
(Journal of Molecular Biological Chemistry),第2
43巻,第3671頁〕は配列決定され〔リチャーズら,ヨー
ロピアン・ジャーナル・オブ・バイオケミストリー,第
84巻,第513頁,1078年(Richards et al.,European Jou
rnl of Biochemistry,84,513(1978))〕、小麦麦芽リ
ボソームと二重(disome)開始複合体を形成することが
示された。1つのリボソームは、126キロドルトン(KD
a)のタンパク質コード領域のAUG開始部位を占めてお
り、第二のものは上流リーダー配列と結合している〔フ
ィリポウィクズ(Fillipowicz)及びヘッニ(Haenn
i),プロシーディング・オブ・ナショナル・アカデミ
ー・オブ・サイエンスUSA,第76巻,第3111頁,1979年;
コナルスカら,ヨーロピアン・ジャーナル・オブ・バイ
オケミストリー,第114巻,第221頁,1981年(Konarska
et al.,European Journal of Biochemistry,114,221(1
981))〕。リボソーム会合におけるオメガの役割を支
持するもう1つの最近の証拠は、ウィルソン(Wilson)
及び共同研究者の脱外被(uncoating)/遺伝子発現デ
ータからきている〔ジャーナル・オブ・ゼネラル・バイ
ロロジー,第66巻,第1201頁,1985年(Jounal of Gener
al Virology,66,1201(1985))及びUCLAシンポジウ
ム,第54巻,第159頁,1987年(UCLA Symposium,54,159
(1987))で差違検討されている〕。TMV粒子が5′末
端へのリボソームの結合及び3′末端方向へのそれらの
翻訳移動によって脱外被されていることは、様々なイン
ビトロ翻訳系で観察された。 RNAウイルスの5′領域はmRNAの翻訳エンハンサーと
して機能することが、ここに発見されたのである。 第一面として、本発明はウイルスRNAの最初の開始コ
ドンまでのRNAウイルスの5′−リーダー配列(又はそ
の誘導体もしくは部分)を含むmRNAを提供するが、この
mRNAはリーダー配列を供与するウイルスに由来しない下
流配列も含んでいる。 第二面として、本発明はウイルスRNAの最初の開始コ
ドンまでのRNAウイルスの5′リーダー配列(又はその
誘導体もしくは部分)と相補的なDNA配列を提供する。 第三面として、本発明は、プロモーター、ウイルスRN
Aの最初の開始コドンまでのRNAウイルスの5′−リーダ
ー配列(又はその誘導体もしくは部分)と相補的な配列
及び適切な開始コドンを含むオープン読取枠を含んでい
るDNA配列を提供する。本発明はこのようなDNA配列を含
む発現ベクターをも提供する。 第四面として、本発明は、ウイルスRNAの最初の開始
コドンまでのRNAウイルスの5′リーダー配列(又はそ
の誘導体もしくは部分)における、RNAとしての又は相
補的DNAとしての、即ち5′−リーダーRNAがmRNAと接続
している場合のmRNAの翻訳のエンハンサーとしての用途
を提供する。 配列決定されたほとんどのRNAウイルスは、5′−リ
ーダー配列、即ち最初の開始コドンまでの(但し、それ
を含まない)5′末端における配列を含んでいる。いず
れのRNAウイルスからの適切な5′リーダー配列も、本
発明の翻訳エンハンサーとして使用可能である。 前記のように、TMVの5′−リーダー配列+AUG開始コ
ドンはオメガとして知られており、かつそのヌクレオチ
ド配列も公知であるため(リチャーズら、ヨーロピアン
・ジャーナル・オブ・バイオケミストリー,第84巻,第
513頁,1978年)、cDNAは合成することができる。TMVの
オメガプライム(Ω′,第1図参照)配列は、本発明の
好ましい翻訳エンハンサーを表わしている。 下記のような他のRNAウイルスの5′リーダー配列に
よる翻訳増強に関する情報も利用可能である: カブ黄斑モザイクウイルスゲノムRNA(フィリポウィ
クズ及びヘッニ,プロシーディング・オブ・ナショナル
・アカデミー・オブ・サイエンスUSA,第76巻,第3111
頁,1979年)、ブロウム(brome)モザイクウイルスRNA
3、アルファルファモザイクウイルスRNA4(ゲレット
ら,プロシーディング・オブ・ナショナル・アカデミー
・オブ・サイエンスUSA,第79巻,第5818頁,1982年);
ラウス肉腫ウイルス〔ジェイ・エル・ダーリックス(J.
L.Darlix)ら,ヌクレイック・アシッズ・リサーチ,第
10巻,第5183頁,1982年〕。 いずれの具体的ケースにおいても、翻訳エンハンサー
としての機能が調節されるもののそれが損われないよう
な方法で天然5′−リーダー配列を変えることは、ほぼ
確実に可能であろう。このような変異体は本明細書にお
いて“誘導体”と呼ばれているが、天然配列の誘導体及
びそれらの翻訳エンハンサーとしての用途は本発明の一
部を構成している。天然5′リーダー配列(又は誘導体
配列)の一部のみが翻訳増強を起こすために必要とされ
るケースもあるであろう。配列のこのような一部は本明
細書において“部分”と呼ばれているが、天然配列もし
くはその誘導体の部分及びそれらの翻訳エンハンサーと
しての用途は本発明の一部を形成している。 いずれの具体的ケースにおいても、RNAウイルスの
5′リーダーのヌクレオチド配列の決定は、公知かつ易
利用性の技術を用いる当業者の技術的範囲内にあるべき
である。同様に、翻訳増強のための必要な天然5′−リ
ーダー配列の一部及び修正もしくは削除されうる配列の
同定(即ち、天然配列の誘導体及び部分の同定)は、ル
ーチン的実験により決定されうる問題である。 RNAウイルスの5′リーダー配列(又はその誘導体も
しくは部分)は、例えばT4RNAリガーゼを用いて適切なm
RNAの上流にそれらを結合させることによって、それ自
体を本発明の翻訳エンハンサーとして使用することがで
きる。5′−リーダー配列は下流mRNAの開始コドンのす
ぐ隣であってもよいし、又は介在配列によってそれから
離されていてもよい。しかしながら、相補的DNAの形で
5′−リーダー配列を用いることが好ましい。cDNAは望
ましいいかなる方法でも得ることができる。しかしなが
ら、問題の5′リーダー配列の比較的短い鎖長を考慮す
れば、cDNAを化学的に合成することが通常最も好都合で
あろう。cDNAは通常発現ベクターに組込まれる。発現ベ
クターは、ベクター中に含まれているそれらのDNA配列
を発現させることができ、かつそのDNA配列がそれらの
発現を行なわせうる他の配列と作働可能に結合せしめら
れているのであれば、いかなるベクターであってもよ
い。発現ベクターは、プロモーター、ウイルスRNAの最
初の開始コドンまでの(但しそれを含まない)RNAウイ
ルスの5′−リーダー配列(又はその誘導体もしくは部
分)と相補的な配列及び適切な開始コドンを含むオープ
ン読取枠を有するDNA配列を通常含んでいる。オープン
読取枠は通常重要な1種以上のタンパク質についてコー
ドしている。発現ベクターは、DNA配列が転写及び翻訳
により発現される宿主細胞中に安定的に又は一時的に直
接組込まれる。安定的発現の場合には、ベクターはエピ
ソームとして又は染色体DNAの必須部分として宿主中で
複製可能でなければならない。又は、発現ベクターはイ
ンビトロで転写させることができ、その際にはRNAが一
時的発現のために細胞中に直接組込まれる。 本発明の翻訳エンハンサーは、mRNAの翻訳能力を高め
ることが望まれるいかなる状況下においても使用可能で
ある。しかしながら、エンハンサーの効果はそれが存在
しなければ不十分にしか翻訳されないmRNAの場合におい
て最も著しいことに留意すべきである。したがって、本
発明のキャップもしくはエンハンサー又は双方の付加は
翻訳を促進させることになる。既にキャップを有してい
るmRNAの場合であっても、本発明のエンハンサーの効果
はなお存在している。 本発明の翻訳エンハンサーは、例えは植物細胞、細菌
及び動物細胞のような多数の異なるタイプの発現系にお
いて有効であるが、但し特定のエンハンサーは他の系よ
りむしろ1つの系とより適合するようである。例えばイ
ンビドロ試験時におけるTMVのオメガ配列はウサギ網状
赤血球溶解物系の場合よりも小麦麦芽系及び大腸菌(Es
chjrichia coll)の場合により大きな増強性を示すよう
であるが、翻訳の増強自体は3種すべての系で観察され
る。特定のエンハンサーと特定の発現系との適合性は、
通常当業者の技術的範囲内に十分属する事項であろう。 一般的に、本発明の翻訳エンハンサーは、農業を含む
商業面に対する生物又は細胞系の価値がその天然遺伝子
又は人工産生遺伝子の1つの発現レベルによって決定さ
れる場合であれば、いずれにおいても利点を生かしつつ
用いることができる。 (i) 遺伝子工学生物又は細胞系で商業的に有用なタ
ンパク質の産生に際して。 (ii) 酵素で触媒される中間代謝産物の産生速度が特
定酵素の合成速度を増加させることによって高められう
るような発酵に際して。 (iii) ウイルス感染の影響がウイルス弱毒体との前
接触によって抑制させることができ、かつ保護を付与す
る成分の産生レベルを増加させることにより保護レベル
を高めることが有利であるようなウイルス交差保護に際
して。例えば植物は、ウイルス外被(coat)タンパク質
についてコードするTMV RNA部分のcDNAコピーを含むア
ナロバクテリウム(Agrobacterium)遺伝子工学株にそ
れらを接触されることによってTMV感染から保護するこ
とができる。植物ゲノムに挿入された細菌cDNAは、ウイ
ルス自体による感染から植物を保護する外被タンパク質
を連続的に発現する。 (iv) 除草剤耐性等の性質が植物の中間代謝の人工的
修正によって付与されるような植物の遺伝子工学に際し
て。 (v) 例えば、部分的クローンの発現産物に対する抗
体を産生させることが望まれている場合における、遺伝
子の部分的クローンの発現に際して。 本発明は下記実験操作によって更に詳細に説明されて
いる。 実 験 mRNA 本発明の態様のキメラmRNAを、第1図で示されている
ように、下記方法で産生した。 TMV RNAブルガレ(vulgare)株の配列を用いて(ゲ
レットら,プロシーディング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンスUSA,第79巻,第5818頁,1982
年)、126kDaオープン読取枠のAUG開始コドンの上流に
おいて5′キャップ(m7Gppp及び隣接G残基)を含まな
い67塩基配列に対して相補的なDNA配列を含む81塩基オ
リゴヌレオチドを合成した。この配列はオメガプライム
と呼ばれている。Hind III部位をこのオリゴヌクレオチ
ドの5′末端に組込み、かつSal I部位を3′末端に組
込んだ。オメガプライム配列の3′末端における13塩基
及びSel I部位を含む20塩基の第二オリゴヌクレオチド
を、第二鎖合成用のプライマー(primer)として合成し
た。アニーリング(annealing)後、第二鎖合成はDNAポ
リメラーゼIのクレノウ断片を用いて完了させた。 得られた二重鎖81bp断片をHind III/Sal Iで消化させ
て一重鎖付着端をもつ77dp断片を作成し、pUC19の対応
部位に挿入した。合成の結果TMVのオメガプライム配列
が正しい向きをしているという事実は、ジデオキシ鎖タ
ーミネーション法〔サンガ(Sanger)ら,プロシーディ
ング・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエン
スUSA,第74巻,第5463頁,1977年〕を用いた配列分析に
よって立証された。次いで、TMVのオメガプライムを含
む断片をプラスミドpJ II 1のHind III/Sal I部位に組
込み、pJ II 101を得た。pJ II 1は、BamH I断片として
のアセンブリー(assenbly)配列のTMV源をpSP64の対応
部位に挿入し〔メルトン(Melton),ヌクレイック・ア
シッズ・リサーチ,第12巻,第7035頁,1984年〕、かつS
ma I部位をBg1 II部位に変えることにより〔ストリート
ら,バイオロジー,第155巻,第299頁,1986年(Sleat e
t al.,Virology,155,299(1986))〕得られる。 Tn9のクロラムフェニコールアセチルトランスフェラ
ーゼ遺伝子(CAT)を含むpCM1から779bpSal I)末端断
片〔クローズ及びロドリゲス,ジーン,第20巻,第305
頁,1982年(Close and Rodriguez,Gene,20,305(198
2))〕をpJ II1及びpJ II101のSa1 I部位に組込み、そ
れぞれpJ II2及びpJ II102を得た。Tn5のネオマイシン
ホスホトランスフェラーゼII遺伝子(NPT II)を含むpM
KNR−Hからの1.27kb Bg1 II/Sa1 I断片〔ギャリー
ら,ジャーナル・オブ・バイテリオロジー,第161巻,
第1034頁,1985年(Gallie et al.,Journal of Bacterio
logy,161,1034(1985))〕をクレノウ断片でブラント
末端化し、pJ II1及びpJ II101のAcc I部位に組込み、
それぞれpJ II3及びpJ II103を得た。CAT及びNPT II双
方の正確な配向性は制限断片分析によって立証された。 pJ II2及びpJ II102をBg1 IIでかつpJ II3及びpJ II1
03をEcoR Iで直鎖化後、各々のRNA転写体をSP6 RNAポ
リメラーゼの使用により産生した。各々のキャップ体
も、キャップ転写体の対応的産生を確保するGpppG及びS
P6ポリメラーゼの反応条件を用いて産生した。キャップ
及び非キャップ反応からのRNA並びにオメガ配列をもつ
又はもたない構造体に関する同量産生は、ホルムアルデ
ヒド−アガロースゲルを変性させることによって立証さ
れた。 同量の様々なCAT含有転写及びNRT II含有転写体を標
準的反応条件下でウサギ網状赤血球溶解物(MDL)、小
麦麦芽S−30(WG)及び大腸菌S−30のインビトロ翻訳
系に加えた。得られたポリペプチド産物を35S−メチオ
ニンで標識した。 第2図及び第3図は、MDL(第2図,トラック1〜1
1)、WG(第2図,トラック12〜22)及び大腸菌(第3
図)からの翻訳産物のSDS−PAGE分析について示してい
る。第2図において、鋳型添加物は:トラック1及び12
がH2O(内在性翻訳);トラック2及び13がBa1 II直鎖
化pJ II102 DNA;トラック3及び14がCAT RNA;トラッ
ク4及び15がオメガプライム−CAT RNA;トラック5及
び16が5′キャップCAT RNA;トラック6及び17が5′
キャップ−オメガプライム−CAT RNA;トラック7及び1
8がEcoR I直鎖化pJ II103 DNA;トラック8及び19がNPT
II RNA;トラック9及び20がオメガプライム−NPT II
RNA;トラック10及び21が5′キャップ−NPT II RNA;
トラック11及び22が5′キャップ−オメガプライム−NP
T II RNAであった。14C標識マーカータンパク質〔アメ
ルシャム・インターナショナル社(Amersham Internati
nonal,plc)〕はトラックMに加えた。キロドルトン(k
Da)としてのそれらの各々の大きさは左側に示されてい
る。乾燥ゲルを室温で3日間オートラジオグラフィーに
付した。第3図において、鋳型添加物は:トラック1が
H2O(内在性翻訳):トラック2がBg1 II直鎖化pJ II10
2 DNA;トラック3がCAT RNA;トラック4がオメガプラ
イム−CAT RNA;トラック5が5′キャップ−CAT RNA;
トラック6が5′キャップ−オメガプライム−CAT RN
A;トラック7がEcoR I直鎖化pJ II103 DNA;トラック8
がNPT II RNA;トラック9がオメガプライム−NRT II
DNA;トラック10が5′キャップ−NPT II RNA;トラック
11が5′キャップ−オメガプライム−NPT II RNAであ
った。14C標識マーカータンパク質はトラックMに加
え、それらの大きさ(kDa)は左側に示されている。乾
燥ゲルを室温で3日間オートジオグラフィーに付した。
大腸菌S−30系は転写活性系であるが、天然大腸菌RNA
ポリメラーゼはSP6プロモーターを認識しえないことに
留意すべきである。 下記第1表はオメガプライム配列の促進効果について
示している。第2図及び第3図に示されたゲルからゾー
ンを取出し、翻訳産物の各バンドにおける放射能を測定
し、オメガプライム配列を含まないRNAからの放射能に
対して各々の場合データを標準化した。この方法でデー
タを表現すると、キャップ単独による何らかの促進効果
は除かれ、オメガプライム配列の促進効果のみが示され
る。 第 1 表 mRNA WG MDL 大腸菌 CAT 1 1 1 オメガプライム−CAT 10 1.2 11 GpppG−CAT 1 1 1 GpppG−オメガ プライム−CAT 3.8 2.2 2.7 NPT II 1 1 1 オメガプライム−NPT II 71 17.8 74 GpppG−NPT II 1 1 1 GpppG−オメガ プライム−NPT II 9.5 1.5 9.6 考 察 TMVのオメガプライム領域の存在は、キャップ又は非
キャップ状態でCAT又はNPT II配列を含む転写体の発現
を促進させる。促進は翻訳効率の悪いNPT II転写体を場
合に最も著しい。このように、NPT II遺伝子を含むTn5
断片は、NTP II遺伝子のAUG開始コドンのすぐ上流に更
にAUGを有している。しかも“コザック側(Kozak rul
e)”(これに関するコザックの論文参照)によれば、N
PT II開始コドン近辺の領域は翻訳開始能の乏しいシグ
ナルを構成していることを示唆する。WG及びMDLの場合
(第2図,第8列及び第19列)で観察されるように、キ
ャップ又はオメガプライムのないNPT II転写体はほとん
ど機能していない。キャップ又はオメガプライムの付加
は翻訳を改善するが、オメガプライムの存在はキャップ
単独の存在よりも優れた促進効果を有している。大腸菌
翻訳メカニズムは、キャップ依存性でないものの、オメ
ガプライム配列の存在によって著しく促進される(第3
図,第4、6、9及び11列)。大腸菌の場合において、
CAT又はNPT II mRNA上のオメガプライム配列にキャッ
プを付加してもその翻訳をほとんど促進しなかったが、
一方キャップCAT又はNPT II mRNAにオメガプライムを
付加すると著しく増強された。 CAT遺伝子mRNAは、たとえキャップ又はオメガプライ
ム配列を有していない場合であっても、真核生物系にお
いてはより効果的に機能する。5′末端から最初のAUG
はCATの開始コドンであって、開始コドン中の及びその
近辺の配列は“コザック則”に十分合致している。この
ことは、更に著しく低いmRNA濃度が利用可能な35S−メ
チオニンプールの消費を防ぐために必要とされるMDL系
の場合に最も明らかである。その際に驚くべきことでは
ないが、CAT mRNAにおけるオメガプライム配列の存在
は促進的でなかった。MDLはWGほどキャップ依存性でな
いと考えられるが、しかしながら、NPT II転写体上にお
けるキャップの存在はわずかに促進効果を有しており
(第2図,第8列及び第10列)、一方CAT転写上におけ
るその存在はさほど効果がなかった(第2図,第3列及
び第5列)。CAT mRNA単独ではWR系において著しく低
い活性しかなかった。結論として、キャップもしくはオ
メガプライム配列の存在又は双方の存在は非常に促進的
であった(第2図,第14〜17列)。WGにおいて、NPT II
mRNA上のオメガプライム配列にキャップを付加しても
(第2図,第20列及び第22列)、その翻訳をほとんど促
進しなかったが、一方キャップ又は非キャップNPT II
mRNAにオメガプライムを付加すると(第2図,第19列及
び第21列)著しく増強された。 したがって、オメガプライム配列の存在は真核生物系
(MDL及びWG)及び原核生物系双方において翻訳を増強
する。このことはTMV粒子の脱外被能と一致し、RNAは真
核生物又は原核生物の翻訳メカニズムによって翻訳され
る。オメガプライム配列は、キャップ単独の存在の場合
よりも転写体の発現に関して通常高い促進効果を有して
いる。しかも、オメガプライム配列は、例えば原核生物
系及びある程度MDL系において、キャッピング(cappin
g)では効果のない条件下で翻訳を増強する。 継続実験操作 CAT mRNA及びオメガプライムリーダー配列の誘導体
もしくは部分を含むキメラRNA構造体を前記と同様の方
法で作成したが、最初の合成DNA配列は必要なRNAを生じ
うるように選択しておいた。第4図に示されているよう
に、5つの欠失体(Δ1〜Δ5と表記されている)、1
つのA→Cトランスバージョン体(transversion)及び
1つの〔C,A〕n→〔U〕n置換体(substitution)が
あった。 CAT mRNAを含む別のキメラRNA構造体を、TMV(U1,ブ
ルガレ(vulgare)又は普通株)以外の下記ウイルスの
5′−リーダー配列を用いて同様の方法で作成した:TMV
のトマト株(SPS単離物)、カブ黄斑モザイクウイルス
(TYMV)、ブロウムモザイクウイルスRNA3(BMV3)、ラ
ウス肉腫ウイルス部分リーダー(RSV)及びアルファル
ファモザイクウイルスRNA4(A1MV4)。合成された最初
のDNA配列及び制限部位地図は第5図〜第9図にそれぞ
れ示されている。 RNA構造体の他の1組を同様の方法で製造したが、但
しCATの代わりに大腸菌リポーター遺伝子β−グルクロ
ニダーゼ(GUS)を用いた。用いられたリーダー配列
は、ポリリンカー(比較目的用)もしくはU1オメガ(即
ち、TMVからのオメガプライム)又はオメガプライムの
誘導体もしくは部分、及び前記のような他のウイルスの
リーダーであった。GUS遺伝子は、人工的に“良好な”
コザックの配列関係(context)(第9表参照)又は天
然の“悪い”コザックの配列関係においてpRAJ235/240
からのSa1 I断片として用いた〔ジェファーソン(Jeffe
rson)ら,プロシーディンクギ・オブ・ナショナル・ア
カデミー・オブ・サイエンスUSA,第83巻,第8447頁,198
6年〕。リーダー配列及び制限部位地図は第10〜第13図
に示されている。リポーター遺伝子の発現は、ジェファ
ーソンら,プロシーディング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンスUSA,第83巻,第8447頁,1986
年に記載されているような螢光測定法により調べた。 前記3つのインビトロ翻訳系に加えて、下記2つのイ
ンビボ系を用いたゼノパス・ラエビス(Xenopus laevi
s)卵母細胞の微量注入及びタバコ〔ニコチアナ・タバ
クム(Nicotiana tabacum)のキサンチ(Xanthi)種〕
葉肉原形質体のエレクトロポレーション(electroporat
ion)。それぞれの操作は下記のとおりであった: 各合成SP6 mRNA(又はそれらの対応DNA鋳型)2ngを
標準的方法〔コルマン・エー,ハーメス・ビー・デー及
びヒギンズ・エス・ジェイ(編集),転写及び翻訳:実
用的アプローチ,IRLプレス,オックスフォード,第271
頁,1984年(Colman A.In Hames,B.D.and Higgins,S.J.
(eds.),Transcripion and Translation:A practical
Approach,IRL Press,Oxford,271(1984))〕に従い30
のバッチ中の第6期のX.ラエビス卵母細胞の細胞質に微
量注入した。卵母細胞を修正バース塩水(Modified Ba
rths′ Saline MBS)中で18時間インキュベートし、
かかる後蒸留水で簡単に洗浄した。ゼノパス卵母細胞の
抽出物は、10mM DTT(17μ/卵母細胞)含有のpH7.4
の0.25MトリスHcl中に各サンプルを再懸濁し、しかる後
15秒間超音波処理することによって調製した。不溶性物
質を15分間の微量遠心分離によって除去し、卵母細胞と
同数得られた抽出物分を公表された方法でCAT又はGUS活
性について分析した(GAT:ガリーら,ヌクレイック・ア
シッズ・リサーチ,第15巻,第3257頁、1987年);GUS:
ジェファーソンら,プロシーディング・オブ・ナショナ
ル・アカデミー・オブ・サイエンスUSA,第83巻,第8447
頁,1986年)。 葉肉原形質体をN.タバクム(キサンチ種)の葉から分
離し、0.7Mマンニトール中で存在した。原形質体(1
06)を60xgで3分間遠心分離し、RNA(8μm)含有の
氷冷0.7Mマンニトール1ml中に再懸濁し、エレクトロポ
レーション用セルに移し、セルに50nFコンデンサーを取
付けることによって単一電圧パルス(2.5kV/cm)を加え
た。パルスは速い立上り時間(1μs以下)を有しかつ
半減時間約5μsの指数減衰性を有していた。エレクト
ロポレーション処理原形質体を0〜4℃で10分間保存し
た。0.7Mマンニトール0mlを加え、原形質体を60xgで3
分間の遠心分離によって回収した。次いで原形質体を培
地中に再懸濁、9cm径ペリト皿中25℃で21時間インキュ
ベートした。 エレクトロポレーション処理原形質体の各サンプル
を、CATアッセイの場合には2mMロイペプチン及び10mMジ
チオトレイトール(DTT)含有のpH7.4の0.25MトリスHCl
又はGUSアッセイの場合には10mM 2−メルカプトエタ
ノール含有のpH7.0の50mMリン酸ナトリウム150μ中で
沈降させ、再懸濁し、超音波処理した。抽出分を室温又
は4℃において10,000xgで10分間微量遠心分離した。 第14図は、エレクトロポレーション処理タバコ原形質
体中におけるキャップ又は非キャップCAT RNAの発現に
関してのオメガプライムの効果について示している。各
原スポットは5×104の生存原形質体に相当する抽出物
を含んでいた。各サプルに関する基質(14C−クロラム
フェニコール)からそのモノアセチル化体(左側に表
示)への変換率(%)はトラックの上部に示されてい
る。エレクトロポレーション処理RNA又は標準は:トラ
ック1がRNAなし(偽物);トラック2がCAT RNA;トラ
ック3がオメガプライム−CAT RNA;トラック4が5′
キャップ−CAT RNA;トラック5が5′キャップ−オメ
ガプライム−CAT RNA;トラック6がトラック1の同量
抽出物に加えられた0.1単位の精製CAT酵素;トラック7
が0.1単位の精製CAT酵素単独であった。乾燥tlcプレー
トを2日間オートラジオグラフィーに付した後、除去
し、モノアセチル化産物(3−Ac/1−Ac)に相当する14
C標識スポット中の放射能について測定したが、変換率
%データは抽出物中の関連CAT活性を表わしている。オ
メガプライム(+/5′キャップ)はCAT RNA発現に関し
て最も促進的であった。 第15図は、X.ラエビス卵母細胞中に微量注入されたキ
ャップ又は非キャップCAT RNAの発現に関するオメガプ
ライムの効果について示している。同量の各CAT RNA構
造体又は直鎖DNA鋳型(2ng)を完全に卵母細胞1個当た
りで注入した。同量の卵母細胞抽出物(0.3×細胞に相
当する)を他に言及のない限り各ケースにおいて分析し
た。14C−クロラムフェニコールからそのモノアセチル
化体への変換体(%)は各トラックの上部に示されてい
る。トラック5及び6において、ジアセチル化体への変
換率(%)は*で示されている。微量注入されたRNA又
は標準は:トラック1がRNAなし(偽物);トラック2
がBgl II直鎖化pJ II102;トラック3がCAT RNA;トラッ
ク4がオメガプライム−CAT RNA;トラック5が5′キ
ャップ−CAT RNA;トラック6が5′キャップ−オメガ
プライム−CAT RNA;トラック7が20倍希釈抽出物であ
ること以外はトラック5と同様;トラック8が20倍希釈
されていること以外はトラック6と同様;トラック9が
トラック1の同量抽出物に加えられた0.1単位の精製CAT
酵素;トラック10が0.1単位の精製CAT酵素単独であっ
た。乾燥tlcプレートを室温で18時間オートラジオグラ
フィーに付した後、関連14C標識スポットを取出してカ
ウントした。 下記表は更に得られた結果について示している。 すべてのRNAはキャップされていなかった。 上記結果は、オメガプライムがCATの翻訳を促進させ
ることを示している。欠失体1〜5は、この効果を完全
に消失させることなく低下させている。同様のことがA
→Cトランスバージョン体にもあてはまる。〔U〕n置
換体は、あるとしてもほとんどが効果をもっていない。 すべてのRNAはキャップされていなかった。 オメガU1はTMV(ブルガレ)の標準株に由来する。 オメガSPSはTMVのトマト株に由来する。 TYMV:カブ黄斑モザイクウイルスリーダー BMV3:ブロウモザイクウイルスRNA3 RSV:ラウス肉腫ウイルスからの部分リーダー配列 AlMV4:アルファルファモザイクウイルスRNA4 前記結果はTMV U1由来オメガプライムがこの系にお
いてCAT RNAの翻訳を促進することを示している。TMV
トマト株オメガプライムも同様であるが、但しやや劣っ
ている。他のウイルスリーダーはさほど又は全く効果が
なく、TYMVリーダーは阻害的であるかもしれない。注:これらの数値は、CATメッセージの5′未満の様々
な配列の付加によって生じる翻訳の促進率を比較したも
のである。翻訳はキャップのある又はキャップのないメ
ッセージに関して行われた。各欄は(第2表及び第3表
のように)独立したゲルから切除回収された放射性CAT
タンパク質の収率を示している。各バンドを切出し、カ
ウントし、かつmRNAが未修正CATメッセージであるバン
ドに対して標準化した。 前記結果は、オメガプライムが5′キャップの存在又
は非存在下でこの系において促進させることを示してい
る。他のウイルスリーダー配列及びオメガプライムの誘
導体もしくは部分は翻訳を様々な程度に増強させるが、
但しオメガプライム自体よりも優位に優れているケース
はまれである。 上記結果は、オメガプライム、その誘導体の一部及び
トマト株オメガプライムが翻訳を最大に促進させること
を示している。他の配列も大半は、但し異なる程度で促
進させる。大腸菌は翻訳のために5′キャップを要しな
い。 (*構造体は5′キャップのある又はない“悪い"GUS外
来(ex)pRAJ 235/240であった) すべてのmRNA構造体を8μg/mlでエレクトロポレーシ
ョン処理し、洗浄された原形質体を(ガリーら,ヌクレ
イック・アシッズ・リサーチ,第15巻,第3257頁,1987
年)記載のように20時間インキュベートした。 “悪い”コザック構造体(235)リーダーの配列は下
記のとおりである: ポリリンカー中へのオメガプライムの挿入は下記のとお
りである: *この箇所におけるオメガプライムは下記のとおりであ
る: 及び欠失オメガプライム誘導体父がしかるべく後に続
く。 子牛プレプロキモシン又はチキンプレリゾチームをコ
ードするメッセンジャーRNAを、TMV5′末端配列(オメ
ガプライム)を付加させて又はさせないでインビトロ合
成した。mRNAをウサギ網状赤血球(MDL)、小麦麦芽(W
G)又は大腸菌(EC)由来の系でインビトロ翻訳させ
た。 プラスミドpJ II6及びpJ II7(第16図)をプラスミド
pST64CT、pSP64LT〔スリート(Sleat)ら,バイロロジ
ー,第155巻,第299頁,1986年〕及びpJ II101の成分を
用いて作成した。pJ II6及びpJ II7は、M31 mp11由来
ポリリンカー配列に隣接するバクテリオファージSP6RNA
ポリメラーゼのプロモーターを含む転写プラスミドpSP6
4〔メルトン(Melton),1984年〕の誘導体である。pSP6
4CT及びpSP64LTのプレプロキモシン及びプレリゾチーム
コード領域をそれぞれHind III断片として取出し、DNA
ポリメラーゼIのクレノウ断片でブラント末端化し、pJ
II101のHinc II部位に組込んでクローニングし、それ
ぞれpJ II106及びpJ II107を得た(第16図)。これらの
構造体は、5′末端オメガプライム配列をもつメッセン
ジャー(messenger−sense)プレプロキモシン及びプレ
リゾチーム転写体の合成を指示させるために用いた。親
プラスミドpSP64CT及びpSP64LTはオメガプライムのない
mRNAの合成のための鋳型であった。 結果は下記第7表に示されている。 前記方法と同様の方法で、様々なキメラRNA構造体
を、NPT IIコード領域、及びオメガプライム、2つのタ
ンディ(tandem)オメガプライム領域、長鎖(77塩基)
“ジャンク(junk)”リーダー(ポリリンカー)配列も
しくは中央オメガプライムと一緒の“ジャンク”を用い
て作成した。構造体は第17図に示されており、結果は下
記第8表に示されている。 これは、ランダムポリリンカー配列が80Sリボソーム
系においてオメガプライムの代わりにならず、原核生物
(70S)系でのみわずかに代わりになることを示してい
る。2つのランダムオメガプライムのみが70S発現に寄
与する(例えば、オメガプライムの単一コピー)。 β−グルクロニダーゼmRNA(GUS mRNA)の発現に対
するオメガプライムの効果に関して第6表(前掲)に掲
示されたデータを更に拡張するために、別の一連の構造
体として開始コドン(AUG)近辺の配列関係が修正され
たGUS遺伝子を用いた。下記の“良好な配列関係”をも
つリーダー: を含むパルスミドpRAJ275は、GUSのこのバージョンのた
めの供給源であった。オメガプライム及び様々な他のリ
ーダー構造体を前記のようにHind III/Sal I部位に挿入
した。pRAJ275構造体の詳細は下記のとおりである: pRAJ275はpRAJ255の誘導体であって(ジェファーソン
ら,プロシーティグ・オブ・ナショナル・アカデミー・
オブ・サイエンスUSA,第83巻,第8447頁,1986年)、こ
こにおいてGUSの5′配列は連続的(progressive)BAL3
1削除によって除去され、ゴザック〔ミクロバイオロジ
ー・レビューズ,第47巻,第1頁,1983年(microbiolog
y Reviews,47,1(1983))〕により規定された“コンセ
ンサス(consensus)”翻訳イニシエーターを構成して
いた合成オリゴヌクレオチドで置き換えられている。こ
のプラスミドはイニシエーターATGコドンに位置する特
有のNco I部位(CCATGG)を有しており、その周囲配列
関係はGTCGACCATGGTCである。イニシエータ近辺の配列
関係は所定量のmRNAの翻訳産物レベルに関して充分な効
果を発揮しうることが、インビトロ及びインビボ双方で
示された。この構造はこの効果を最大化させるために調
整された。それはpUC19におけるSal I−EcoR I断片とし
て与えられた。 5′キャップ又は非キャップ転写体を前記のようにタ
バコ原形質体中にエレクトロポレーションし、GUS発現
レベルを抽出物中で測定した。 非キャップRNAもMDLまたはWG無細胞翻訳系に加え、合
成されたGUSタンパク質レベルは第2図及び第3図(第
1表)のように放射性ゲルバンドを切取ってカウントす
ることによって測定した。結果は第9表に示されてい
る。 RNA構造体の別の1組を、大腸菌リポーター遺伝子β
−グルクロニダーゼ(GUS)及び更に誘導トリプトファ
ン(Trp)プロモーターを用いて、前記と同様の方法に
より作成した。Trpプロモーターはファルマシア社(Pha
rmacia Ltd.)から購入し、制限エンドヌクレアーゼ消
化、補充、サブクローニング等の慣用的技術により修正
し、3′−Hind III部位(第18図)及びブラント5′末
端を作出した。次いで、この二重鎖(ds)DNA断片をSP6
プロモーター(インビボの大腸菌中では作動しない)及
び重要な5′−リーダー構造の間で様々なリーダー−リ
ポーター(GUS)遺伝子プラスミド中に挿入した。 得られたプラスミドDNAは標準的方法によりコンピテ
ント(competent)大腸菌細胞を形質転換させるために
用いたが、Trpプロモーターは現場で誘導されて、キメ
ラリーダー−リポーターmRNAを産出した。転写開始点は
Hind III部位(AAGCTT)中のGに対応する。 形質転換された大腸菌細胞中における転写体の発現
は、分光測定法により調べた(ジェファーソンら,プロ
シーディング・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・
サイエンスUSA,第83巻,第8447頁,1986年)。結果(第1
0表)は、GUS発現がオメガプライムの存在により及びあ
る程度オメガプライムの他のリーダー配列もしくは誘導
体により、コザック配列関係の“良好な”又は“悪い”
構造体のいずれかからインビボで増強されたことを示し
ている。 結 論 オメガプライムは、現場でTrpプロモーターを用いた
場合に、プラスミドDNAで形質転換された大腸菌中でのG
US RNAのインビボ発現を増強する。 継続実験は超らせん二重鎖pUC19 DNAを用いて行なわ
れたが、これはカリフラワーモザイクウイルス(CaMV)
35Sプロモーター、ノパリンシンターゼターミネーター
〔アグログバクテリウム・ツメファシエンス(Agrobact
erium tumefaciens)由来〕及びそれらの中間にCAT DN
A(●,▲)もしくはオメガプライムCAT DNA(○,
△)のいずれかを有するように修正されている。 構造体(第19図)は二元ベクター系から作成したが
〔ベバン(Bevan),ヌクレイック・アシッズ・リサー
チ,第12巻,第8711頁,1984年〕、その場合においてCaM
V35Sプロモーター及びNosターミネーターをHind III及
びEcoR I部位で切除し、プラスミドpUC19に挿入するこ
とによってpUC35S Nosを得た。 構造体pUC35SCATNos及びpUC35SオメガプライムCATNos
は、CAT又はオメガプライムCATをそれぞれBamH I部位で
プラスミド中に挿入することによって作成した。 様々な量のプラスミドDNA(μg/ml)を前記のように
原形質体にエレクトロポレーション処理し、細胞を25℃
で6時間(○,●)又は26時間インキュベートし、溶離
させて、(前記のような)CATアッセイを行なった。 第20図に示された結果は、図示された100〜150μgの
超らせんプラスミドDNAの注入をうけた細胞はオメガプ
ライムが構造体中に存在している場合(△,○)にCAT
発現を増強させていた(2倍)ことを示している。 これらの結果は、安定的形質転換原性(transgenic)
植物中での遺伝子発現がプロモーター(インビボ転写
用)及び翻訳オープン読取枠の間へのオメガプライム配
列の挿入によって同様に増強されるであろうということ
を示している。
は、一部共通の特徴を有しているが、他の点では異なっ
ていることが知られている。真核生物のメッセージは機
能上モノシストロニック(monocistronic)であって、
翻訳は5′末端で始まり、この末端におけるキャップ構
造(m7G5′ppp5′G...)の存在によって促進される〔シ
ャトキン,セル,第9巻,第645頁,1976年(Shatkin,Ce
ll,9,645(1976)〕。原核生物のメッセージはポリシス
トロニック(polycistronic)であって、5′末端以外
の部位で開始しうるが、キャップの存在は翻訳促進に繋
がらない。真核生物及び原核生物は双方ともコドンAUG
で翻訳を開始するが、但し原核生物はGUGを利用するこ
ともできる。双方における翻訳は、開始コドン近くのあ
る配列によって促進される。前核生物の場合には、それ
は所謂シャイン−ダルガルノ(Shine−Dalgarno)配列
(開始コドンより上流のプリンに富む3〜10ヌクレオチ
ドの領域)である。真核生物の場合には、それは(AUG
開始コドンのAが+1と表示される場合に)−3位のプ
リン及び+4位のG残基であるが、更に効果的なチュー
ニング(tuning)のためには他の配列も加わる必要があ
る。これはスキャニング(scannig)モデルの“緩和”
バージョン(“relaxed"version)の一部であり〔コザ
ック,ヌクレイック・アシッズ・リサーチ,第12巻,第
857頁,1984年(kozak,Nuclec Acids Research,12,857
(1984)〕、それによって40Sリボソームサブユニット
が真核生物mRNAの5′末端で結合し、モデルの要求を満
たす最初のAUGと出会うまで、即ち60Sサブユニットが40
Sサブユニットと結合してタンパク質合成が始まる時点
まで、配列をスキャニングし続ける。この点について
は、下記コザックの文献を参考にすることができる:セ
ル,第15巻,第1109頁,1978年;ヌクレイック・アシッ
ズ・リサーチ,第9巻,第5233頁,1981年;及びセル,
第44巻,第283頁,1986年。 開始コドンの中及び近辺で必要なこれらの配列以外
に、翻訳を複製の面で促進させることが知られた他のmR
NA領域は存在しない。 真核生物の転写において、“エンハンサー”領域とし
て知られる配列は転写促進を図ることができる。 RNAウイルスは、正もしくは負の一重鎖RNA又は二重鎖
RNAを含んでいる。RNAウイルス群としては、大多数の植
物ウイルス(90%以上)、一部の動物ウイルス及び数種
のバクテリオファージがある。 RNAウイルスの中で最も広く研究されたものの1つ
は、タバコモザイクウイルス(以後TMVと称される)で
ある。TMVの完全ヌクレオチド配列が知られている〔ゲ
レットら,プロシーディング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンス USA,第79巻,第5818頁,198
2年(Goelet et al.,Proceeding of National Academy
of Science USA,79,5818(1982))〕。TMV RNAの5′
領域は鎖長70ヌクレチオドのRNアーゼT1耐性断片として
1965年に始めて単離されたが〔マンドリー,ツァイトシ
ュリフト・フュール・フェレルブングスレーレ,第97
巻,第281頁,1965年(Mundry,Zeitschrift fr Vererb
ungslehre,97,281(1965))〕、内部G残基を有してい
なかった〔マンデレル,ジャーナル・オブ・バイオロジ
カル・ケミストリー,第243巻,第3671頁(Mandeles,Jo
urnal of Biological Chemistry,243,3671)〕。この領
域〔以後、オメガと称される;マンデレス,ジャーナル
・オブ・モレキュラー・バイオロジカル・ケミストリー
(Journal of Molecular Biological Chemistry),第2
43巻,第3671頁〕は配列決定され〔リチャーズら,ヨー
ロピアン・ジャーナル・オブ・バイオケミストリー,第
84巻,第513頁,1078年(Richards et al.,European Jou
rnl of Biochemistry,84,513(1978))〕、小麦麦芽リ
ボソームと二重(disome)開始複合体を形成することが
示された。1つのリボソームは、126キロドルトン(KD
a)のタンパク質コード領域のAUG開始部位を占めてお
り、第二のものは上流リーダー配列と結合している〔フ
ィリポウィクズ(Fillipowicz)及びヘッニ(Haenn
i),プロシーディング・オブ・ナショナル・アカデミ
ー・オブ・サイエンスUSA,第76巻,第3111頁,1979年;
コナルスカら,ヨーロピアン・ジャーナル・オブ・バイ
オケミストリー,第114巻,第221頁,1981年(Konarska
et al.,European Journal of Biochemistry,114,221(1
981))〕。リボソーム会合におけるオメガの役割を支
持するもう1つの最近の証拠は、ウィルソン(Wilson)
及び共同研究者の脱外被(uncoating)/遺伝子発現デ
ータからきている〔ジャーナル・オブ・ゼネラル・バイ
ロロジー,第66巻,第1201頁,1985年(Jounal of Gener
al Virology,66,1201(1985))及びUCLAシンポジウ
ム,第54巻,第159頁,1987年(UCLA Symposium,54,159
(1987))で差違検討されている〕。TMV粒子が5′末
端へのリボソームの結合及び3′末端方向へのそれらの
翻訳移動によって脱外被されていることは、様々なイン
ビトロ翻訳系で観察された。 RNAウイルスの5′領域はmRNAの翻訳エンハンサーと
して機能することが、ここに発見されたのである。 第一面として、本発明はウイルスRNAの最初の開始コ
ドンまでのRNAウイルスの5′−リーダー配列(又はそ
の誘導体もしくは部分)を含むmRNAを提供するが、この
mRNAはリーダー配列を供与するウイルスに由来しない下
流配列も含んでいる。 第二面として、本発明はウイルスRNAの最初の開始コ
ドンまでのRNAウイルスの5′リーダー配列(又はその
誘導体もしくは部分)と相補的なDNA配列を提供する。 第三面として、本発明は、プロモーター、ウイルスRN
Aの最初の開始コドンまでのRNAウイルスの5′−リーダ
ー配列(又はその誘導体もしくは部分)と相補的な配列
及び適切な開始コドンを含むオープン読取枠を含んでい
るDNA配列を提供する。本発明はこのようなDNA配列を含
む発現ベクターをも提供する。 第四面として、本発明は、ウイルスRNAの最初の開始
コドンまでのRNAウイルスの5′リーダー配列(又はそ
の誘導体もしくは部分)における、RNAとしての又は相
補的DNAとしての、即ち5′−リーダーRNAがmRNAと接続
している場合のmRNAの翻訳のエンハンサーとしての用途
を提供する。 配列決定されたほとんどのRNAウイルスは、5′−リ
ーダー配列、即ち最初の開始コドンまでの(但し、それ
を含まない)5′末端における配列を含んでいる。いず
れのRNAウイルスからの適切な5′リーダー配列も、本
発明の翻訳エンハンサーとして使用可能である。 前記のように、TMVの5′−リーダー配列+AUG開始コ
ドンはオメガとして知られており、かつそのヌクレオチ
ド配列も公知であるため(リチャーズら、ヨーロピアン
・ジャーナル・オブ・バイオケミストリー,第84巻,第
513頁,1978年)、cDNAは合成することができる。TMVの
オメガプライム(Ω′,第1図参照)配列は、本発明の
好ましい翻訳エンハンサーを表わしている。 下記のような他のRNAウイルスの5′リーダー配列に
よる翻訳増強に関する情報も利用可能である: カブ黄斑モザイクウイルスゲノムRNA(フィリポウィ
クズ及びヘッニ,プロシーディング・オブ・ナショナル
・アカデミー・オブ・サイエンスUSA,第76巻,第3111
頁,1979年)、ブロウム(brome)モザイクウイルスRNA
3、アルファルファモザイクウイルスRNA4(ゲレット
ら,プロシーディング・オブ・ナショナル・アカデミー
・オブ・サイエンスUSA,第79巻,第5818頁,1982年);
ラウス肉腫ウイルス〔ジェイ・エル・ダーリックス(J.
L.Darlix)ら,ヌクレイック・アシッズ・リサーチ,第
10巻,第5183頁,1982年〕。 いずれの具体的ケースにおいても、翻訳エンハンサー
としての機能が調節されるもののそれが損われないよう
な方法で天然5′−リーダー配列を変えることは、ほぼ
確実に可能であろう。このような変異体は本明細書にお
いて“誘導体”と呼ばれているが、天然配列の誘導体及
びそれらの翻訳エンハンサーとしての用途は本発明の一
部を構成している。天然5′リーダー配列(又は誘導体
配列)の一部のみが翻訳増強を起こすために必要とされ
るケースもあるであろう。配列のこのような一部は本明
細書において“部分”と呼ばれているが、天然配列もし
くはその誘導体の部分及びそれらの翻訳エンハンサーと
しての用途は本発明の一部を形成している。 いずれの具体的ケースにおいても、RNAウイルスの
5′リーダーのヌクレオチド配列の決定は、公知かつ易
利用性の技術を用いる当業者の技術的範囲内にあるべき
である。同様に、翻訳増強のための必要な天然5′−リ
ーダー配列の一部及び修正もしくは削除されうる配列の
同定(即ち、天然配列の誘導体及び部分の同定)は、ル
ーチン的実験により決定されうる問題である。 RNAウイルスの5′リーダー配列(又はその誘導体も
しくは部分)は、例えばT4RNAリガーゼを用いて適切なm
RNAの上流にそれらを結合させることによって、それ自
体を本発明の翻訳エンハンサーとして使用することがで
きる。5′−リーダー配列は下流mRNAの開始コドンのす
ぐ隣であってもよいし、又は介在配列によってそれから
離されていてもよい。しかしながら、相補的DNAの形で
5′−リーダー配列を用いることが好ましい。cDNAは望
ましいいかなる方法でも得ることができる。しかしなが
ら、問題の5′リーダー配列の比較的短い鎖長を考慮す
れば、cDNAを化学的に合成することが通常最も好都合で
あろう。cDNAは通常発現ベクターに組込まれる。発現ベ
クターは、ベクター中に含まれているそれらのDNA配列
を発現させることができ、かつそのDNA配列がそれらの
発現を行なわせうる他の配列と作働可能に結合せしめら
れているのであれば、いかなるベクターであってもよ
い。発現ベクターは、プロモーター、ウイルスRNAの最
初の開始コドンまでの(但しそれを含まない)RNAウイ
ルスの5′−リーダー配列(又はその誘導体もしくは部
分)と相補的な配列及び適切な開始コドンを含むオープ
ン読取枠を有するDNA配列を通常含んでいる。オープン
読取枠は通常重要な1種以上のタンパク質についてコー
ドしている。発現ベクターは、DNA配列が転写及び翻訳
により発現される宿主細胞中に安定的に又は一時的に直
接組込まれる。安定的発現の場合には、ベクターはエピ
ソームとして又は染色体DNAの必須部分として宿主中で
複製可能でなければならない。又は、発現ベクターはイ
ンビトロで転写させることができ、その際にはRNAが一
時的発現のために細胞中に直接組込まれる。 本発明の翻訳エンハンサーは、mRNAの翻訳能力を高め
ることが望まれるいかなる状況下においても使用可能で
ある。しかしながら、エンハンサーの効果はそれが存在
しなければ不十分にしか翻訳されないmRNAの場合におい
て最も著しいことに留意すべきである。したがって、本
発明のキャップもしくはエンハンサー又は双方の付加は
翻訳を促進させることになる。既にキャップを有してい
るmRNAの場合であっても、本発明のエンハンサーの効果
はなお存在している。 本発明の翻訳エンハンサーは、例えは植物細胞、細菌
及び動物細胞のような多数の異なるタイプの発現系にお
いて有効であるが、但し特定のエンハンサーは他の系よ
りむしろ1つの系とより適合するようである。例えばイ
ンビドロ試験時におけるTMVのオメガ配列はウサギ網状
赤血球溶解物系の場合よりも小麦麦芽系及び大腸菌(Es
chjrichia coll)の場合により大きな増強性を示すよう
であるが、翻訳の増強自体は3種すべての系で観察され
る。特定のエンハンサーと特定の発現系との適合性は、
通常当業者の技術的範囲内に十分属する事項であろう。 一般的に、本発明の翻訳エンハンサーは、農業を含む
商業面に対する生物又は細胞系の価値がその天然遺伝子
又は人工産生遺伝子の1つの発現レベルによって決定さ
れる場合であれば、いずれにおいても利点を生かしつつ
用いることができる。 (i) 遺伝子工学生物又は細胞系で商業的に有用なタ
ンパク質の産生に際して。 (ii) 酵素で触媒される中間代謝産物の産生速度が特
定酵素の合成速度を増加させることによって高められう
るような発酵に際して。 (iii) ウイルス感染の影響がウイルス弱毒体との前
接触によって抑制させることができ、かつ保護を付与す
る成分の産生レベルを増加させることにより保護レベル
を高めることが有利であるようなウイルス交差保護に際
して。例えば植物は、ウイルス外被(coat)タンパク質
についてコードするTMV RNA部分のcDNAコピーを含むア
ナロバクテリウム(Agrobacterium)遺伝子工学株にそ
れらを接触されることによってTMV感染から保護するこ
とができる。植物ゲノムに挿入された細菌cDNAは、ウイ
ルス自体による感染から植物を保護する外被タンパク質
を連続的に発現する。 (iv) 除草剤耐性等の性質が植物の中間代謝の人工的
修正によって付与されるような植物の遺伝子工学に際し
て。 (v) 例えば、部分的クローンの発現産物に対する抗
体を産生させることが望まれている場合における、遺伝
子の部分的クローンの発現に際して。 本発明は下記実験操作によって更に詳細に説明されて
いる。 実 験 mRNA 本発明の態様のキメラmRNAを、第1図で示されている
ように、下記方法で産生した。 TMV RNAブルガレ(vulgare)株の配列を用いて(ゲ
レットら,プロシーディング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンスUSA,第79巻,第5818頁,1982
年)、126kDaオープン読取枠のAUG開始コドンの上流に
おいて5′キャップ(m7Gppp及び隣接G残基)を含まな
い67塩基配列に対して相補的なDNA配列を含む81塩基オ
リゴヌレオチドを合成した。この配列はオメガプライム
と呼ばれている。Hind III部位をこのオリゴヌクレオチ
ドの5′末端に組込み、かつSal I部位を3′末端に組
込んだ。オメガプライム配列の3′末端における13塩基
及びSel I部位を含む20塩基の第二オリゴヌクレオチド
を、第二鎖合成用のプライマー(primer)として合成し
た。アニーリング(annealing)後、第二鎖合成はDNAポ
リメラーゼIのクレノウ断片を用いて完了させた。 得られた二重鎖81bp断片をHind III/Sal Iで消化させ
て一重鎖付着端をもつ77dp断片を作成し、pUC19の対応
部位に挿入した。合成の結果TMVのオメガプライム配列
が正しい向きをしているという事実は、ジデオキシ鎖タ
ーミネーション法〔サンガ(Sanger)ら,プロシーディ
ング・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエン
スUSA,第74巻,第5463頁,1977年〕を用いた配列分析に
よって立証された。次いで、TMVのオメガプライムを含
む断片をプラスミドpJ II 1のHind III/Sal I部位に組
込み、pJ II 101を得た。pJ II 1は、BamH I断片として
のアセンブリー(assenbly)配列のTMV源をpSP64の対応
部位に挿入し〔メルトン(Melton),ヌクレイック・ア
シッズ・リサーチ,第12巻,第7035頁,1984年〕、かつS
ma I部位をBg1 II部位に変えることにより〔ストリート
ら,バイオロジー,第155巻,第299頁,1986年(Sleat e
t al.,Virology,155,299(1986))〕得られる。 Tn9のクロラムフェニコールアセチルトランスフェラ
ーゼ遺伝子(CAT)を含むpCM1から779bpSal I)末端断
片〔クローズ及びロドリゲス,ジーン,第20巻,第305
頁,1982年(Close and Rodriguez,Gene,20,305(198
2))〕をpJ II1及びpJ II101のSa1 I部位に組込み、そ
れぞれpJ II2及びpJ II102を得た。Tn5のネオマイシン
ホスホトランスフェラーゼII遺伝子(NPT II)を含むpM
KNR−Hからの1.27kb Bg1 II/Sa1 I断片〔ギャリー
ら,ジャーナル・オブ・バイテリオロジー,第161巻,
第1034頁,1985年(Gallie et al.,Journal of Bacterio
logy,161,1034(1985))〕をクレノウ断片でブラント
末端化し、pJ II1及びpJ II101のAcc I部位に組込み、
それぞれpJ II3及びpJ II103を得た。CAT及びNPT II双
方の正確な配向性は制限断片分析によって立証された。 pJ II2及びpJ II102をBg1 IIでかつpJ II3及びpJ II1
03をEcoR Iで直鎖化後、各々のRNA転写体をSP6 RNAポ
リメラーゼの使用により産生した。各々のキャップ体
も、キャップ転写体の対応的産生を確保するGpppG及びS
P6ポリメラーゼの反応条件を用いて産生した。キャップ
及び非キャップ反応からのRNA並びにオメガ配列をもつ
又はもたない構造体に関する同量産生は、ホルムアルデ
ヒド−アガロースゲルを変性させることによって立証さ
れた。 同量の様々なCAT含有転写及びNRT II含有転写体を標
準的反応条件下でウサギ網状赤血球溶解物(MDL)、小
麦麦芽S−30(WG)及び大腸菌S−30のインビトロ翻訳
系に加えた。得られたポリペプチド産物を35S−メチオ
ニンで標識した。 第2図及び第3図は、MDL(第2図,トラック1〜1
1)、WG(第2図,トラック12〜22)及び大腸菌(第3
図)からの翻訳産物のSDS−PAGE分析について示してい
る。第2図において、鋳型添加物は:トラック1及び12
がH2O(内在性翻訳);トラック2及び13がBa1 II直鎖
化pJ II102 DNA;トラック3及び14がCAT RNA;トラッ
ク4及び15がオメガプライム−CAT RNA;トラック5及
び16が5′キャップCAT RNA;トラック6及び17が5′
キャップ−オメガプライム−CAT RNA;トラック7及び1
8がEcoR I直鎖化pJ II103 DNA;トラック8及び19がNPT
II RNA;トラック9及び20がオメガプライム−NPT II
RNA;トラック10及び21が5′キャップ−NPT II RNA;
トラック11及び22が5′キャップ−オメガプライム−NP
T II RNAであった。14C標識マーカータンパク質〔アメ
ルシャム・インターナショナル社(Amersham Internati
nonal,plc)〕はトラックMに加えた。キロドルトン(k
Da)としてのそれらの各々の大きさは左側に示されてい
る。乾燥ゲルを室温で3日間オートラジオグラフィーに
付した。第3図において、鋳型添加物は:トラック1が
H2O(内在性翻訳):トラック2がBg1 II直鎖化pJ II10
2 DNA;トラック3がCAT RNA;トラック4がオメガプラ
イム−CAT RNA;トラック5が5′キャップ−CAT RNA;
トラック6が5′キャップ−オメガプライム−CAT RN
A;トラック7がEcoR I直鎖化pJ II103 DNA;トラック8
がNPT II RNA;トラック9がオメガプライム−NRT II
DNA;トラック10が5′キャップ−NPT II RNA;トラック
11が5′キャップ−オメガプライム−NPT II RNAであ
った。14C標識マーカータンパク質はトラックMに加
え、それらの大きさ(kDa)は左側に示されている。乾
燥ゲルを室温で3日間オートジオグラフィーに付した。
大腸菌S−30系は転写活性系であるが、天然大腸菌RNA
ポリメラーゼはSP6プロモーターを認識しえないことに
留意すべきである。 下記第1表はオメガプライム配列の促進効果について
示している。第2図及び第3図に示されたゲルからゾー
ンを取出し、翻訳産物の各バンドにおける放射能を測定
し、オメガプライム配列を含まないRNAからの放射能に
対して各々の場合データを標準化した。この方法でデー
タを表現すると、キャップ単独による何らかの促進効果
は除かれ、オメガプライム配列の促進効果のみが示され
る。 第 1 表 mRNA WG MDL 大腸菌 CAT 1 1 1 オメガプライム−CAT 10 1.2 11 GpppG−CAT 1 1 1 GpppG−オメガ プライム−CAT 3.8 2.2 2.7 NPT II 1 1 1 オメガプライム−NPT II 71 17.8 74 GpppG−NPT II 1 1 1 GpppG−オメガ プライム−NPT II 9.5 1.5 9.6 考 察 TMVのオメガプライム領域の存在は、キャップ又は非
キャップ状態でCAT又はNPT II配列を含む転写体の発現
を促進させる。促進は翻訳効率の悪いNPT II転写体を場
合に最も著しい。このように、NPT II遺伝子を含むTn5
断片は、NTP II遺伝子のAUG開始コドンのすぐ上流に更
にAUGを有している。しかも“コザック側(Kozak rul
e)”(これに関するコザックの論文参照)によれば、N
PT II開始コドン近辺の領域は翻訳開始能の乏しいシグ
ナルを構成していることを示唆する。WG及びMDLの場合
(第2図,第8列及び第19列)で観察されるように、キ
ャップ又はオメガプライムのないNPT II転写体はほとん
ど機能していない。キャップ又はオメガプライムの付加
は翻訳を改善するが、オメガプライムの存在はキャップ
単独の存在よりも優れた促進効果を有している。大腸菌
翻訳メカニズムは、キャップ依存性でないものの、オメ
ガプライム配列の存在によって著しく促進される(第3
図,第4、6、9及び11列)。大腸菌の場合において、
CAT又はNPT II mRNA上のオメガプライム配列にキャッ
プを付加してもその翻訳をほとんど促進しなかったが、
一方キャップCAT又はNPT II mRNAにオメガプライムを
付加すると著しく増強された。 CAT遺伝子mRNAは、たとえキャップ又はオメガプライ
ム配列を有していない場合であっても、真核生物系にお
いてはより効果的に機能する。5′末端から最初のAUG
はCATの開始コドンであって、開始コドン中の及びその
近辺の配列は“コザック則”に十分合致している。この
ことは、更に著しく低いmRNA濃度が利用可能な35S−メ
チオニンプールの消費を防ぐために必要とされるMDL系
の場合に最も明らかである。その際に驚くべきことでは
ないが、CAT mRNAにおけるオメガプライム配列の存在
は促進的でなかった。MDLはWGほどキャップ依存性でな
いと考えられるが、しかしながら、NPT II転写体上にお
けるキャップの存在はわずかに促進効果を有しており
(第2図,第8列及び第10列)、一方CAT転写上におけ
るその存在はさほど効果がなかった(第2図,第3列及
び第5列)。CAT mRNA単独ではWR系において著しく低
い活性しかなかった。結論として、キャップもしくはオ
メガプライム配列の存在又は双方の存在は非常に促進的
であった(第2図,第14〜17列)。WGにおいて、NPT II
mRNA上のオメガプライム配列にキャップを付加しても
(第2図,第20列及び第22列)、その翻訳をほとんど促
進しなかったが、一方キャップ又は非キャップNPT II
mRNAにオメガプライムを付加すると(第2図,第19列及
び第21列)著しく増強された。 したがって、オメガプライム配列の存在は真核生物系
(MDL及びWG)及び原核生物系双方において翻訳を増強
する。このことはTMV粒子の脱外被能と一致し、RNAは真
核生物又は原核生物の翻訳メカニズムによって翻訳され
る。オメガプライム配列は、キャップ単独の存在の場合
よりも転写体の発現に関して通常高い促進効果を有して
いる。しかも、オメガプライム配列は、例えば原核生物
系及びある程度MDL系において、キャッピング(cappin
g)では効果のない条件下で翻訳を増強する。 継続実験操作 CAT mRNA及びオメガプライムリーダー配列の誘導体
もしくは部分を含むキメラRNA構造体を前記と同様の方
法で作成したが、最初の合成DNA配列は必要なRNAを生じ
うるように選択しておいた。第4図に示されているよう
に、5つの欠失体(Δ1〜Δ5と表記されている)、1
つのA→Cトランスバージョン体(transversion)及び
1つの〔C,A〕n→〔U〕n置換体(substitution)が
あった。 CAT mRNAを含む別のキメラRNA構造体を、TMV(U1,ブ
ルガレ(vulgare)又は普通株)以外の下記ウイルスの
5′−リーダー配列を用いて同様の方法で作成した:TMV
のトマト株(SPS単離物)、カブ黄斑モザイクウイルス
(TYMV)、ブロウムモザイクウイルスRNA3(BMV3)、ラ
ウス肉腫ウイルス部分リーダー(RSV)及びアルファル
ファモザイクウイルスRNA4(A1MV4)。合成された最初
のDNA配列及び制限部位地図は第5図〜第9図にそれぞ
れ示されている。 RNA構造体の他の1組を同様の方法で製造したが、但
しCATの代わりに大腸菌リポーター遺伝子β−グルクロ
ニダーゼ(GUS)を用いた。用いられたリーダー配列
は、ポリリンカー(比較目的用)もしくはU1オメガ(即
ち、TMVからのオメガプライム)又はオメガプライムの
誘導体もしくは部分、及び前記のような他のウイルスの
リーダーであった。GUS遺伝子は、人工的に“良好な”
コザックの配列関係(context)(第9表参照)又は天
然の“悪い”コザックの配列関係においてpRAJ235/240
からのSa1 I断片として用いた〔ジェファーソン(Jeffe
rson)ら,プロシーディンクギ・オブ・ナショナル・ア
カデミー・オブ・サイエンスUSA,第83巻,第8447頁,198
6年〕。リーダー配列及び制限部位地図は第10〜第13図
に示されている。リポーター遺伝子の発現は、ジェファ
ーソンら,プロシーディング・オブ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンスUSA,第83巻,第8447頁,1986
年に記載されているような螢光測定法により調べた。 前記3つのインビトロ翻訳系に加えて、下記2つのイ
ンビボ系を用いたゼノパス・ラエビス(Xenopus laevi
s)卵母細胞の微量注入及びタバコ〔ニコチアナ・タバ
クム(Nicotiana tabacum)のキサンチ(Xanthi)種〕
葉肉原形質体のエレクトロポレーション(electroporat
ion)。それぞれの操作は下記のとおりであった: 各合成SP6 mRNA(又はそれらの対応DNA鋳型)2ngを
標準的方法〔コルマン・エー,ハーメス・ビー・デー及
びヒギンズ・エス・ジェイ(編集),転写及び翻訳:実
用的アプローチ,IRLプレス,オックスフォード,第271
頁,1984年(Colman A.In Hames,B.D.and Higgins,S.J.
(eds.),Transcripion and Translation:A practical
Approach,IRL Press,Oxford,271(1984))〕に従い30
のバッチ中の第6期のX.ラエビス卵母細胞の細胞質に微
量注入した。卵母細胞を修正バース塩水(Modified Ba
rths′ Saline MBS)中で18時間インキュベートし、
かかる後蒸留水で簡単に洗浄した。ゼノパス卵母細胞の
抽出物は、10mM DTT(17μ/卵母細胞)含有のpH7.4
の0.25MトリスHcl中に各サンプルを再懸濁し、しかる後
15秒間超音波処理することによって調製した。不溶性物
質を15分間の微量遠心分離によって除去し、卵母細胞と
同数得られた抽出物分を公表された方法でCAT又はGUS活
性について分析した(GAT:ガリーら,ヌクレイック・ア
シッズ・リサーチ,第15巻,第3257頁、1987年);GUS:
ジェファーソンら,プロシーディング・オブ・ナショナ
ル・アカデミー・オブ・サイエンスUSA,第83巻,第8447
頁,1986年)。 葉肉原形質体をN.タバクム(キサンチ種)の葉から分
離し、0.7Mマンニトール中で存在した。原形質体(1
06)を60xgで3分間遠心分離し、RNA(8μm)含有の
氷冷0.7Mマンニトール1ml中に再懸濁し、エレクトロポ
レーション用セルに移し、セルに50nFコンデンサーを取
付けることによって単一電圧パルス(2.5kV/cm)を加え
た。パルスは速い立上り時間(1μs以下)を有しかつ
半減時間約5μsの指数減衰性を有していた。エレクト
ロポレーション処理原形質体を0〜4℃で10分間保存し
た。0.7Mマンニトール0mlを加え、原形質体を60xgで3
分間の遠心分離によって回収した。次いで原形質体を培
地中に再懸濁、9cm径ペリト皿中25℃で21時間インキュ
ベートした。 エレクトロポレーション処理原形質体の各サンプル
を、CATアッセイの場合には2mMロイペプチン及び10mMジ
チオトレイトール(DTT)含有のpH7.4の0.25MトリスHCl
又はGUSアッセイの場合には10mM 2−メルカプトエタ
ノール含有のpH7.0の50mMリン酸ナトリウム150μ中で
沈降させ、再懸濁し、超音波処理した。抽出分を室温又
は4℃において10,000xgで10分間微量遠心分離した。 第14図は、エレクトロポレーション処理タバコ原形質
体中におけるキャップ又は非キャップCAT RNAの発現に
関してのオメガプライムの効果について示している。各
原スポットは5×104の生存原形質体に相当する抽出物
を含んでいた。各サプルに関する基質(14C−クロラム
フェニコール)からそのモノアセチル化体(左側に表
示)への変換率(%)はトラックの上部に示されてい
る。エレクトロポレーション処理RNA又は標準は:トラ
ック1がRNAなし(偽物);トラック2がCAT RNA;トラ
ック3がオメガプライム−CAT RNA;トラック4が5′
キャップ−CAT RNA;トラック5が5′キャップ−オメ
ガプライム−CAT RNA;トラック6がトラック1の同量
抽出物に加えられた0.1単位の精製CAT酵素;トラック7
が0.1単位の精製CAT酵素単独であった。乾燥tlcプレー
トを2日間オートラジオグラフィーに付した後、除去
し、モノアセチル化産物(3−Ac/1−Ac)に相当する14
C標識スポット中の放射能について測定したが、変換率
%データは抽出物中の関連CAT活性を表わしている。オ
メガプライム(+/5′キャップ)はCAT RNA発現に関し
て最も促進的であった。 第15図は、X.ラエビス卵母細胞中に微量注入されたキ
ャップ又は非キャップCAT RNAの発現に関するオメガプ
ライムの効果について示している。同量の各CAT RNA構
造体又は直鎖DNA鋳型(2ng)を完全に卵母細胞1個当た
りで注入した。同量の卵母細胞抽出物(0.3×細胞に相
当する)を他に言及のない限り各ケースにおいて分析し
た。14C−クロラムフェニコールからそのモノアセチル
化体への変換体(%)は各トラックの上部に示されてい
る。トラック5及び6において、ジアセチル化体への変
換率(%)は*で示されている。微量注入されたRNA又
は標準は:トラック1がRNAなし(偽物);トラック2
がBgl II直鎖化pJ II102;トラック3がCAT RNA;トラッ
ク4がオメガプライム−CAT RNA;トラック5が5′キ
ャップ−CAT RNA;トラック6が5′キャップ−オメガ
プライム−CAT RNA;トラック7が20倍希釈抽出物であ
ること以外はトラック5と同様;トラック8が20倍希釈
されていること以外はトラック6と同様;トラック9が
トラック1の同量抽出物に加えられた0.1単位の精製CAT
酵素;トラック10が0.1単位の精製CAT酵素単独であっ
た。乾燥tlcプレートを室温で18時間オートラジオグラ
フィーに付した後、関連14C標識スポットを取出してカ
ウントした。 下記表は更に得られた結果について示している。 すべてのRNAはキャップされていなかった。 上記結果は、オメガプライムがCATの翻訳を促進させ
ることを示している。欠失体1〜5は、この効果を完全
に消失させることなく低下させている。同様のことがA
→Cトランスバージョン体にもあてはまる。〔U〕n置
換体は、あるとしてもほとんどが効果をもっていない。 すべてのRNAはキャップされていなかった。 オメガU1はTMV(ブルガレ)の標準株に由来する。 オメガSPSはTMVのトマト株に由来する。 TYMV:カブ黄斑モザイクウイルスリーダー BMV3:ブロウモザイクウイルスRNA3 RSV:ラウス肉腫ウイルスからの部分リーダー配列 AlMV4:アルファルファモザイクウイルスRNA4 前記結果はTMV U1由来オメガプライムがこの系にお
いてCAT RNAの翻訳を促進することを示している。TMV
トマト株オメガプライムも同様であるが、但しやや劣っ
ている。他のウイルスリーダーはさほど又は全く効果が
なく、TYMVリーダーは阻害的であるかもしれない。注:これらの数値は、CATメッセージの5′未満の様々
な配列の付加によって生じる翻訳の促進率を比較したも
のである。翻訳はキャップのある又はキャップのないメ
ッセージに関して行われた。各欄は(第2表及び第3表
のように)独立したゲルから切除回収された放射性CAT
タンパク質の収率を示している。各バンドを切出し、カ
ウントし、かつmRNAが未修正CATメッセージであるバン
ドに対して標準化した。 前記結果は、オメガプライムが5′キャップの存在又
は非存在下でこの系において促進させることを示してい
る。他のウイルスリーダー配列及びオメガプライムの誘
導体もしくは部分は翻訳を様々な程度に増強させるが、
但しオメガプライム自体よりも優位に優れているケース
はまれである。 上記結果は、オメガプライム、その誘導体の一部及び
トマト株オメガプライムが翻訳を最大に促進させること
を示している。他の配列も大半は、但し異なる程度で促
進させる。大腸菌は翻訳のために5′キャップを要しな
い。 (*構造体は5′キャップのある又はない“悪い"GUS外
来(ex)pRAJ 235/240であった) すべてのmRNA構造体を8μg/mlでエレクトロポレーシ
ョン処理し、洗浄された原形質体を(ガリーら,ヌクレ
イック・アシッズ・リサーチ,第15巻,第3257頁,1987
年)記載のように20時間インキュベートした。 “悪い”コザック構造体(235)リーダーの配列は下
記のとおりである: ポリリンカー中へのオメガプライムの挿入は下記のとお
りである: *この箇所におけるオメガプライムは下記のとおりであ
る: 及び欠失オメガプライム誘導体父がしかるべく後に続
く。 子牛プレプロキモシン又はチキンプレリゾチームをコ
ードするメッセンジャーRNAを、TMV5′末端配列(オメ
ガプライム)を付加させて又はさせないでインビトロ合
成した。mRNAをウサギ網状赤血球(MDL)、小麦麦芽(W
G)又は大腸菌(EC)由来の系でインビトロ翻訳させ
た。 プラスミドpJ II6及びpJ II7(第16図)をプラスミド
pST64CT、pSP64LT〔スリート(Sleat)ら,バイロロジ
ー,第155巻,第299頁,1986年〕及びpJ II101の成分を
用いて作成した。pJ II6及びpJ II7は、M31 mp11由来
ポリリンカー配列に隣接するバクテリオファージSP6RNA
ポリメラーゼのプロモーターを含む転写プラスミドpSP6
4〔メルトン(Melton),1984年〕の誘導体である。pSP6
4CT及びpSP64LTのプレプロキモシン及びプレリゾチーム
コード領域をそれぞれHind III断片として取出し、DNA
ポリメラーゼIのクレノウ断片でブラント末端化し、pJ
II101のHinc II部位に組込んでクローニングし、それ
ぞれpJ II106及びpJ II107を得た(第16図)。これらの
構造体は、5′末端オメガプライム配列をもつメッセン
ジャー(messenger−sense)プレプロキモシン及びプレ
リゾチーム転写体の合成を指示させるために用いた。親
プラスミドpSP64CT及びpSP64LTはオメガプライムのない
mRNAの合成のための鋳型であった。 結果は下記第7表に示されている。 前記方法と同様の方法で、様々なキメラRNA構造体
を、NPT IIコード領域、及びオメガプライム、2つのタ
ンディ(tandem)オメガプライム領域、長鎖(77塩基)
“ジャンク(junk)”リーダー(ポリリンカー)配列も
しくは中央オメガプライムと一緒の“ジャンク”を用い
て作成した。構造体は第17図に示されており、結果は下
記第8表に示されている。 これは、ランダムポリリンカー配列が80Sリボソーム
系においてオメガプライムの代わりにならず、原核生物
(70S)系でのみわずかに代わりになることを示してい
る。2つのランダムオメガプライムのみが70S発現に寄
与する(例えば、オメガプライムの単一コピー)。 β−グルクロニダーゼmRNA(GUS mRNA)の発現に対
するオメガプライムの効果に関して第6表(前掲)に掲
示されたデータを更に拡張するために、別の一連の構造
体として開始コドン(AUG)近辺の配列関係が修正され
たGUS遺伝子を用いた。下記の“良好な配列関係”をも
つリーダー: を含むパルスミドpRAJ275は、GUSのこのバージョンのた
めの供給源であった。オメガプライム及び様々な他のリ
ーダー構造体を前記のようにHind III/Sal I部位に挿入
した。pRAJ275構造体の詳細は下記のとおりである: pRAJ275はpRAJ255の誘導体であって(ジェファーソン
ら,プロシーティグ・オブ・ナショナル・アカデミー・
オブ・サイエンスUSA,第83巻,第8447頁,1986年)、こ
こにおいてGUSの5′配列は連続的(progressive)BAL3
1削除によって除去され、ゴザック〔ミクロバイオロジ
ー・レビューズ,第47巻,第1頁,1983年(microbiolog
y Reviews,47,1(1983))〕により規定された“コンセ
ンサス(consensus)”翻訳イニシエーターを構成して
いた合成オリゴヌクレオチドで置き換えられている。こ
のプラスミドはイニシエーターATGコドンに位置する特
有のNco I部位(CCATGG)を有しており、その周囲配列
関係はGTCGACCATGGTCである。イニシエータ近辺の配列
関係は所定量のmRNAの翻訳産物レベルに関して充分な効
果を発揮しうることが、インビトロ及びインビボ双方で
示された。この構造はこの効果を最大化させるために調
整された。それはpUC19におけるSal I−EcoR I断片とし
て与えられた。 5′キャップ又は非キャップ転写体を前記のようにタ
バコ原形質体中にエレクトロポレーションし、GUS発現
レベルを抽出物中で測定した。 非キャップRNAもMDLまたはWG無細胞翻訳系に加え、合
成されたGUSタンパク質レベルは第2図及び第3図(第
1表)のように放射性ゲルバンドを切取ってカウントす
ることによって測定した。結果は第9表に示されてい
る。 RNA構造体の別の1組を、大腸菌リポーター遺伝子β
−グルクロニダーゼ(GUS)及び更に誘導トリプトファ
ン(Trp)プロモーターを用いて、前記と同様の方法に
より作成した。Trpプロモーターはファルマシア社(Pha
rmacia Ltd.)から購入し、制限エンドヌクレアーゼ消
化、補充、サブクローニング等の慣用的技術により修正
し、3′−Hind III部位(第18図)及びブラント5′末
端を作出した。次いで、この二重鎖(ds)DNA断片をSP6
プロモーター(インビボの大腸菌中では作動しない)及
び重要な5′−リーダー構造の間で様々なリーダー−リ
ポーター(GUS)遺伝子プラスミド中に挿入した。 得られたプラスミドDNAは標準的方法によりコンピテ
ント(competent)大腸菌細胞を形質転換させるために
用いたが、Trpプロモーターは現場で誘導されて、キメ
ラリーダー−リポーターmRNAを産出した。転写開始点は
Hind III部位(AAGCTT)中のGに対応する。 形質転換された大腸菌細胞中における転写体の発現
は、分光測定法により調べた(ジェファーソンら,プロ
シーディング・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・
サイエンスUSA,第83巻,第8447頁,1986年)。結果(第1
0表)は、GUS発現がオメガプライムの存在により及びあ
る程度オメガプライムの他のリーダー配列もしくは誘導
体により、コザック配列関係の“良好な”又は“悪い”
構造体のいずれかからインビボで増強されたことを示し
ている。 結 論 オメガプライムは、現場でTrpプロモーターを用いた
場合に、プラスミドDNAで形質転換された大腸菌中でのG
US RNAのインビボ発現を増強する。 継続実験は超らせん二重鎖pUC19 DNAを用いて行なわ
れたが、これはカリフラワーモザイクウイルス(CaMV)
35Sプロモーター、ノパリンシンターゼターミネーター
〔アグログバクテリウム・ツメファシエンス(Agrobact
erium tumefaciens)由来〕及びそれらの中間にCAT DN
A(●,▲)もしくはオメガプライムCAT DNA(○,
△)のいずれかを有するように修正されている。 構造体(第19図)は二元ベクター系から作成したが
〔ベバン(Bevan),ヌクレイック・アシッズ・リサー
チ,第12巻,第8711頁,1984年〕、その場合においてCaM
V35Sプロモーター及びNosターミネーターをHind III及
びEcoR I部位で切除し、プラスミドpUC19に挿入するこ
とによってpUC35S Nosを得た。 構造体pUC35SCATNos及びpUC35SオメガプライムCATNos
は、CAT又はオメガプライムCATをそれぞれBamH I部位で
プラスミド中に挿入することによって作成した。 様々な量のプラスミドDNA(μg/ml)を前記のように
原形質体にエレクトロポレーション処理し、細胞を25℃
で6時間(○,●)又は26時間インキュベートし、溶離
させて、(前記のような)CATアッセイを行なった。 第20図に示された結果は、図示された100〜150μgの
超らせんプラスミドDNAの注入をうけた細胞はオメガプ
ライムが構造体中に存在している場合(△,○)にCAT
発現を増強させていた(2倍)ことを示している。 これらの結果は、安定的形質転換原性(transgenic)
植物中での遺伝子発現がプロモーター(インビボ転写
用)及び翻訳オープン読取枠の間へのオメガプライム配
列の挿入によって同様に増強されるであろうということ
を示している。
Claims (1)
- (57)【特許請求の範囲】 1.下記のi)、ii)及びiii)を含む配列を有するDNA
分子: (i)プロモーター (ii)RNAウイルスの5′−非翻訳リーダー配列又はそ
の誘導体もしくは部分の配列に相補的な翻訳増強配列
(但し、ブロウムモザイクウイルスRNA 4の5′−非
翻訳リーダー配列を除く)、及び (iii)上記翻訳増強配列の下流に、5′−非翻訳リー
ダー配列が由来するRNAウイルスに非相同のコード配列
(但し、適切な開始コドンを含む) 但し、上記プロモーター、翻訳増強配列及びコード配列
間の該プロモーターのコントロール下における関係は、
mRNA種を産出するようなもので、上記コード配列の発現
産物を産出するその翻訳は、翻訳増強配列に相当するmR
NAの部分によって増強される。 2.転写エンハンサー配列をも含む、請求項1に記載の
DNA分子。 3.5′−非翻訳リーダー配列が植物ウイルス由来であ
る、請求項1又は2に記載のDNA分子。 4.5′−非翻訳リーダー配列がタバコモザイクウイル
スのオメガプライム(Ω′)配列又はその誘導体もしく
は部分である、請求項3に記載のDNA分子。 5.5′−非翻訳リーダー配列がアルファルファモザイ
クウイルスRNA4由来である、請求項3に記載のDNA分
子。 6.下記のi)、ii)及びiii)を含むDNA配列を細胞中
に組込んでなる微生物又は細胞培養物: (i)プロモーター (iii)RNAウイルスの5′−非翻訳リーダー配列又はそ
の誘導体もしくは部分の配列に相補的な翻訳増強配列
(但し、ブロウムモザイクウイルスRNA 4の5′−非
翻訳リーダー配列を除く)、及び (iii)上記翻訳増強配列の下流に、5′−非翻訳リー
ダー配列が由来するRNAウイルスの非相同のコード配列
(但し、適切な開始コドンを含む)但し、上記プロモー
ター、翻訳増強配列及びコード配列間の該プロモーター
のコントロール下における関係は、mRNA種を産生するよ
うなもので、上記コード配列の発現産物を産生するその
翻訳は、翻訳増強配列に相当するmRNAの部分によって増
強される。 7.DNA配列が転写エンハンサー配列をも含む、請求項
6に記載の微生物又は細胞培養物。 8.5′−非翻訳リーダー配列が植物ウイルス由来であ
る、請求項6又7に記載の微生物又は細胞培養物。 9.5′−非翻訳リーダー配列がタバコモザイクウイル
スのオメガプライム(Ω′)配列又はその誘導体もしく
は部分である、請求項8に記載の微生物又は細胞培養
物。 10.5′−非翻訳リーダー配列がアルファルファモザ
イクウイルスRNA4由来である、請求項8に記載の微生物
又は細胞培養物。
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